JP5800263B2 - アレルギー性鼻炎治療剤のスクリーニング方法およびその利用 - Google Patents

Description

本発明はアレルギー性鼻炎モデル動物、アレルギー性鼻炎治療剤のスクリーニング方法およびその利用に関する。特に、ブタクサ花粉で感作し、ブタクサ花粉を鼻腔内投与することにより作製されたアレルギー性鼻炎モデル動物、およびこれを用いたアレルギー性鼻炎治療剤のスクリーニング方法並びにその利用に関する。

アレルギー性鼻炎患者は先進国を中心に増加の一途にある。患者数は世界中で推定５億人を超えており、わが国でも国民の約３０％がアレルギー性鼻炎に罹患しているとの報告がある。

米国、欧州諸国においては、アレルギー性鼻炎の原因アレルゲンの約５０％はブタクサ花粉である（以下、ブタクサ花粉を「ＲＷ」と称する場合もある）。アレルギー性鼻炎は、それ単独では重篤な健康被害を伴うものではないが、例えば喘息患者の約４割がアレルギー性鼻炎を合併しており、アレルギー性鼻炎の病態解明は喘息をコントロールする上で非常に重要である。

アレルギー性鼻炎は、くしゃみ、鼻水、鼻詰まりを三主徴とする代表的なＩ型アレルギーであるが、その発症機序は未だ不明な点が多い。例えば、本発明者はアレルギー性鼻炎患者では血清インターロイキン３３（以下、インターロイキン３３を「ＩＬ−３３」と称する）が高値を示し、ＩＬ−３３遺伝子領域にスギ花粉症と相関のある遺伝子多型が存在することを明らかにしているが（非特許文献１）、ヒトのアレルギー性鼻炎の症状に酷似した症状を示すモデル動物が存在していないため、アレルギー性鼻炎の発症機序は未だ明らかになっていない。

また、ＩＬ−３３については、非特許文献１の他、例えば、ＩＬ−３３を含むcaspase I-依存性サイトカインの特異的阻害剤を投与することによる慢性神経変性障害の治療（特許文献１）、ＩＬ−３３特異的結合性組成物を用いた喘息の治療方法（特許文献２）、対象からの試料におけるＳＴ２、ＩＬ−３３またはその両方のバイオマーカーレベルを決定する段階を含む、致死性の予測および重大な疾患の検出を行う方法（特許文献３）、有効量のＩＬ−３３ レセプター複合体のＩＬ−３３ のアゴニストまたはアンタゴニストを投与する工程を含む、喘息またはアレルギーを調節する方法（特許文献４）などが知られている。

さらに、非特許文献２には、ＩＬ−３３などが「自然型アレルギー」および「獲得性アレルギー」に関与するサイトカインであることが開示されており、非特許文献３、４にはブタクサ花粉特異的アレルギー性結膜炎モデルマウスの作製と結膜炎に対するＩＬ−３３の病因的役割の解析について開示されている。

特表２０１１−５００７４８号公報（２０１１年１月６日公表） 特表２０１０−５２７９３６号公報（２０１０年８月１９日公表） 特表２００９−５３４６９１号公報（２００９年９月２４日公表） 特表２００７−５２３０８９号公報（２００７年８月１６日公表）

Sakashita, Yoshimoto et. al.，Clin Exp Allergy 2008; 38:1875-81. アレルギー・免疫、Vol. 18, No.4（２０１１年３月１５日発行） 第３８回日本免疫学界総会・予稿集（２００８年１１月５日発行） アレルギー、60(1)、16-25（2011）

しかしながら、上述のような従来技術は、ヒトのアレルギー性鼻炎の症状に酷似した病態を示すモデル動物については開示も示唆もしておらず、アレルギー性鼻炎の発生機序に対するＩＬ−３３の病因的役割を明らかにするものでもない。アレルギー性鼻炎の即時相、遅発相はともにその発症、誘導機序が不明なままであり、アレルギー性鼻炎発症を阻止する薬剤（抗ヒスタミン、抗ロイコトリエン、点鼻ステロイド）以外の生物製剤の開発は遅れているのが実情であるという問題がある。また、開発された薬剤の治療効果を十分に判定する手段も存在しないという問題がある。

本発明は、上記問題点に鑑みてなされたものであって、その目的は、ブタクサ花粉で感作し、ブタクサ花粉を鼻腔内投与することにより作製されたアレルギー性鼻炎モデル動物、およびこれを用いたアレルギー性鼻炎治療剤のスクリーニング方法並びにその利用を提供することにある。

本発明者は、上記課題に鑑み鋭意検討した結果、ブタクサ花粉で感作されたヒト以外のモデル動物に対し、ブタクサ花粉を鼻腔内投与することによって、ヒトのアレルギー性鼻炎の症状と酷似した症状を示すアレルギー性鼻炎モデル動物を作製できることを独自に見出し、本発明を完成させるに至った。

すなわち、本発明にかかるアレルギー性鼻炎モデル動物は、鼻粘膜上皮細胞核内にインターロイキン３３を含有するヒト以外のモデル動物をブタクサ花粉で感作した後に、ブタクサ花粉を当該モデル動物の鼻腔内に投与することによって得られることを特徴としている。

後述する実施例に示すように、上記構成のモデル動物は、ヒトのアレルギー性鼻炎に酷似した病態を示すことができ、かつ、簡便に作製し、解析することが可能である。それゆえ、アレルギー性鼻炎の発症機序の解析に寄与することができ、アレルギー性鼻炎治療薬のスクリーニング、アレルギー性鼻炎治療薬の効果判定などに用いることができる。

本発明にかかるアレルギー性鼻炎モデル動物は、鼻粘膜上皮細胞の核内におけるインターロイキン３３の量が、ブタクサ花粉を鼻腔内投与する前の鼻粘膜上皮細胞の核内におけるインターロイキン３３の量よりも少ないことが好ましい。

後述する実施例に示すように、本発明にかかるアレルギー性鼻炎モデル動物は、ブタクサ花粉を鼻腔内投与されているため、鼻粘膜上皮細胞から内因性ＩＬ−３３が迅速に誘導され、その結果上記構成を備える。それゆえ、上記構成を備えるアレルギー性鼻炎モデル動物は、アレルギー性鼻炎の発症機序の解析に寄与することができ、アレルギー性鼻炎治療薬のスクリーニング、アレルギー性鼻炎治療薬の効果判定などに用いることができる。

本発明にかかるアレルギー性鼻炎モデル動物は、インターロイキン３３を中和することによって、アレルギー性鼻炎の症状が改善されることが好ましい。

後述するように、ＩＬ−３３はアレルギー性鼻炎の発症原因となる。それゆえ、上記構成を備えるアレルギー性鼻炎モデル動物は、アレルギー性鼻炎の発症機序の解析に寄与することができ、アレルギー性鼻炎治療薬のスクリーニング、アレルギー性鼻炎治療薬の効果判定などに用いることができる。

本発明にかかるアレルギー性鼻炎治療剤のスクリーニング方法は、本発明にかかるアレルギー性鼻炎モデル動物に被検物質を投与し、アレルギー性鼻炎の改善効果を検定する工程を含むことを特徴としている。

後述する実施例に示すように、上記モデル動物は、ヒトのアレルギー性鼻炎と酷似した病態を示すことができるため、上記構成によれば、被検物質がヒトのアレルギー性鼻炎治療剤として機能するか否かをヒトに投与することなくin vivoで効率よく判定することができる。それゆえ、ヒトアレルギー性鼻炎治療剤の開発の効率化に寄与することができる。

本発明にかかるアレルギー性鼻炎治療剤のスクリーニング方法は、上記アレルギー性鼻炎の改善効果を検定する工程が、上記被検物質を投与する前の上記アレルギー性鼻炎モデル動物の鼻汁中におけるインターロイキン３３の量と、上記被検物質を投与した後の上記アレルギー性鼻炎モデル動物の鼻汁中におけるインターロイキン３３の量とを比較する工程を含むことが好ましい。

上記アレルギー性鼻炎モデル動物では、後述する実施例に示すように、鼻粘膜上皮細胞から内因性ＩＬ−３３が誘導され、鼻汁中に移行する。それゆえ、上記構成によれば、アレルギー性鼻炎の改善効果を確実に検定することができる。

本発明にかかるアレルギー性鼻炎治療剤のスクリーニングキットは、本発明にかかるアレルギー性鼻炎治療剤のスクリーニング方法を行うためのキットであって、被検物質を投与したアレルギー性鼻炎モデル動物の鼻汁を採取する鼻汁採取手段と、上記鼻汁に含まれるインターロイキン３３の定量を行うための検体を調製するために用いられる検体調製手段とを備えることを特徴としている。

上記構成によれば、被検物質を投与したアレルギー性鼻炎モデル動物の鼻汁採取と、上記鼻汁中に含まれるインターロイキン３３の定量とをＥＬＩＳＡを用いて行うことができるため、アレルギー性鼻炎治療剤のスクリーニングを迅速かつ効率的に行うことが可能である。

本発明にかかるアレルギー性鼻炎治療剤の治療効果判定方法は、本発明にかかるアレルギー性鼻炎モデル動物にアレルギー性鼻炎治療剤を投与し、アレルギー性鼻炎の改善効果を検定する工程を含むことを特徴としている。

上記アレルギー性鼻炎モデル動物は、ヒトのアレルギー性鼻炎に酷似した症状を呈するため、例えば既存のアレルギー性鼻炎治療剤の治療効果を、ヒトに投与することなくin vivoで効率よく判定することができる。それゆえ、例えば既存のアレルギー性鼻炎治療剤の改良を行う場合などに有効に用いることができる。

本発明にかかるアレルギー性鼻炎モデル動物は、鼻粘膜上皮細胞核内にＩＬ−３３を含有するヒト以外のモデル動物をブタクサ花粉で感作した後に、ブタクサ花粉を当該モデル動物の鼻腔内に投与することによって得られるという構成である。それゆえ、アレルギー性鼻炎の発症機序の解析に寄与することができ、アレルギー性鼻炎治療薬のスクリーニング、アレルギー性鼻炎治療薬の効果判定などに用いることができるという効果を奏する。

本発明にかかるアレルギー性鼻炎モデルマウス、および、il33^−/−マウス（ＩＬ−３３欠損マウス）をブタクサ花粉で感作し、その後ブタクサ花粉を点鼻することによって得たマウスを用いた場合の、くしゃみの回数（図１の（ａ））、血清ＩｇＥの総量（図１の（ｂ））、ブタクサ花粉に特異的な血清ＩｇＥの量（図１の（ｃ））を示す図である。 ブタクサ花粉で感作し、ブタクサ花粉を点鼻したil33^＋/＋マウス（本発明にかかるアレルギー性鼻炎モデルマウス）の鼻を、ヘマトキシリン・エオジンで染色した冠状切片（図２の（ａ）および（ｂ））、上記il33^−/−マウスをブタクサ花粉で感作し、ブタクサ花粉を点鼻することによって得たマウスの鼻の、ヘマトキシリン・エオジンで染色した冠状切片（図２の（ｃ））を示す図である。 ブタクサ花粉で感作し、ＰＢＳを点鼻したマウス、および、ブタクサ花粉で感作し、ブタクサ花粉を点鼻したマウスの外側鼻粘膜中の好酸球数をカウントした結果を示す図である。 ブタクサ花粉で感作し、ブタクサ花粉を点鼻したil33^＋/＋マウスおよびil33^ー/ーマウスの鼻中隔を過ヨウ素酸シッフ（ＰＡＳ）によって染色した結果を示す図である。 （ａ）〜（ｃ）は、ブタクサ花粉で感作し、ＰＢＳを点鼻した上記il33^＋/＋マウスの鼻の、ヘマトキシリン・エオジンで染色した冠状切片を示し、（ｄ）〜（ｆ）は、ブタクサ花粉で感作し、ブタクサ花粉を点鼻した上記il33^＋/＋マウスの鼻を、ヘマトキシリン・エオジンで染色した冠状切片を示す。 （ａ）は、ブタクサ花粉で感作し、ブタクサ花粉を点鼻したil33^＋/＋マウス（本発明にかかるアレルギー性鼻炎モデルマウス）の鼻の、ヘマトキシリン・エオジンで染色した冠状切片を更に詳細に観察した結果を示す図である。（ｂ）は、図６の（ａ）において左上に枠囲みした領域の拡大図である。 ブタクサ花粉で感作し、ブタクサ花粉またはＰＢＳを点鼻したil33^＋/＋マウスおよびil33^−/−マウスにつき、外側鼻粘膜（図７の（ａ））、鼻甲介（図７の（ｂ））、鼻中隔（図７の（ｃ））の好酸球数を示すものである。 ＩＬ−３３欠損マウスでは上皮細胞の多列化の程度、および、鼻粘膜における杯細胞の増殖が減少することを示す図である。 ＩＬ−３３欠損マウスでは頚部リンパ節への好酸球浸潤が行われないことを示す図である。 ブタクサ花粉で感作し、ブタクサ花粉を点鼻したil33^＋/＋マウスおよびil33^−/−マウス由来の頚部リンパ節ＳＳＣ^ｈｉｇｈＳｉｇｌｅｃ−Ｆ^＋ＣＣＲ３^＋好酸球をフローサイトメトリーによって解析した結果を示すものである。 ブタクサ花粉を点鼻したil33^−/−マウスのリンパ球では、il33^＋/＋マウス由来のリンパ球と比べて、in vitroでの刺激後のＩＬ−４，ＩＬ−５およびＩＬ−１３の産生が著しく減少することを示す図である。 ブタクサ花粉の点鼻により、鼻粘膜上皮細胞からＩＬ−３３の分泌が誘導されることを示す図である。 ＩＬ−３３がＦｃεＲＩ＋細胞からのヒスタミン放出を誘導することを示す図である。 ブタクサ花粉で感作され、ブタクサ花粉を点鼻されたマウス（本発明にかかるアレルギー性鼻炎モデルマウス）の鼻粘膜には、脱顆粒した結合組織型マスト細胞（ＣＴＭＣ）が観察されることを示す図である。 ブタクサ花粉によって誘導された内因性ＩＬ−３３が鼻への好塩基球の浸潤を制御することを示す図である。 ＩＬ−３３が好酸球遊走因子および好塩基球遊走因子の産生を誘導することを示す図である。 アレルギー性鼻炎患者の鼻上皮細胞ではＩＬ−３３の発現が減少することを示す図である。 ＩＬ−３３のデコイレセプターを点鼻すると、即時相のくしゃみ回数が有意に抑制されることを示す図である。 ブタクサ花粉で感作したマウスに、ブタクサ花粉およびフルチカゾンフランカルボン酸エステルを投与し、フルチカゾンフランカルボン酸エステルによるアレルギー性鼻炎の治療効果を判定した結果を示す図である。 アレルギー性鼻炎の早期相および遅発相へのＩＬ−３３の関与を示す図である。

以下、本発明の実施の形態について、詳細に説明する。なお、本明細書において数値範囲が「Ａ〜Ｂ」と表現されている場合、Ａ以上Ｂ以下であることを示す。

〔１．アレルギー性鼻炎モデル動物〕
本発明にかかるアレルギー性鼻炎モデル動物は、鼻粘膜上皮細胞核内にＩＬ−３３を含有するヒト以外のモデル動物をブタクサ花粉で感作した後に、ブタクサ花粉を当該モデル動物の鼻腔内に投与することによって得られる。

上記「鼻粘膜上皮細胞核内にＩＬ−３３を含有するヒト以外のモデル動物」には、鼻粘膜上皮細胞核内のＩＬ−３３を欠損した動物は含まれない。健常な動物であれば元々鼻粘膜上皮細胞核内にＩＬ−３３を含有しているが（内因性ＩＬ−３３）、例えば後述するil33^−／−マウスのようなＩＬ−３３を欠損した動物は、実施例に示すように、鼻粘膜上皮細胞核内にＩＬ−３３を含まないため、アレルギー性鼻炎の発症が著明に抑制される。よって、鼻粘膜上皮細胞核内のＩＬ−３３を欠損した動物をブタクサ花粉で感作し、ブタクサ花粉を鼻腔内に投与して得られた動物は本発明に含まれない。

なお、鼻粘膜上皮細胞核内のＩＬ−３３は、抗体免疫染色法によってその存在を確認することができる。さらに、正常な鼻粘膜上皮細胞をホモジェネートした上清は、概ねタンパク質１ｍｇあたり２３．７ｎｇのＩＬ−３３を含有する（Matsuba-Kitamura S, Yoshimoto et al., Int Immunol 2010; 22:479-89.）。

上記「鼻粘膜上皮細胞核内にＩＬ−３３を含有するヒト以外のモデル動物」は、鼻粘膜上皮細胞の核外にもＩＬ−３３を含有していてもよいが、鼻粘膜上皮細胞の核外へＩＬ−３３が放出されているモデル動物は、既にアレルギー性鼻炎を発症している可能性があるため、鼻粘膜上皮細胞の核内のみにＩＬ−３３を含有していることが好ましい。

上記モデル動物の動物種としてはブタクサ花粉によってアレルギー性鼻炎を発症しうるものであれば特に限定されるものではない。例えば、マウス、ラット、イヌ、ネコ、サル等の哺乳動物を用いることができる。

中でも、近交系が多数作出されており、受精卵の培養、体外受精等の技術が整っているマウスを用いることが好ましく、il33^＋/＋マウスを用いることがさらに好ましい。il33^＋/＋マウスについては、後述する実施例で説明する。なお、il33^＋/＋マウスの製造方法は実施例１に記載されている。

「ブタクサ花粉で感作した」とは、モデル動物の生体内に、ブタクサ花粉特異的Ｔｈ２免疫応答（ブタクサ花粉特異的Ｔｈ２細胞およびブタクサ花粉特異的ＩｇＥ抗体）を誘導することを意味する。ブタクサ花粉としては、市販のものでも天然のものでも構わない。

上記感作に用いるブタクサ花粉の投与量および投与方法は、上記モデル動物の種類や、体重、年齢等にあわせて、適宜設定すればよい。例えば、上記モデル動物がマウスである場合、感作に用いるブタクサ花粉の投与量は、体重１ｋｇあたり４ｍｇ〜８ｍｇであることが好ましい。

上記モデル動物がマウスである場合、感作時のブタクサ花粉の投与方法としては、例えば、Ｔｈ２免疫応答を誘導するアジュバントである水酸化アルミニウムと上記量のブタクサ花粉とを皮下注射し、その後（例えば１週間後）にブタクサ花粉を皮下注射または腹腔内投与する方法等を挙げることができる。

本発明では、上記モデル動物の感作を行った後に、ブタクサ花粉を当該モデル動物の鼻腔内に投与する。ブタクサ花粉の鼻腔内への投与量および投与方法は、上記モデル動物の種類や、体重、年齢等にあわせて、適宜設定すればよい。例えば、上記モデル動物がマウスである場合、鼻腔内投与に用いるブタクサ花粉の量は、体重１ｋｇあたり４０ｍｇ〜２００ｍｇを３回〜６回投与することが好ましい。

感作終了後、ブタクサ花粉を鼻腔内へ投与するまでの時間は、６日〜９日であることが好ましい。

上記アレルギー性鼻炎モデル動物が発症するアレルギー性鼻炎の程度は、例えば、上記鼻腔内投与（以下、単に「点鼻」ともいう）の終了後１０分間に上記モデル動物がしたくしゃみの回数を測定することによって早期相の程度を評価することができる。

また、例えば、上記鼻腔内投与の終了から２４時間後に鼻粘膜の組織学的解析、頚部リンパ節細胞からのＴｈ２サイトカイン産生の解析、ブタクサ花粉特異的な血清ＩｇＥ値の測定を行うことなどにより、遅発相の程度を評価することができる。

なお、上記早期相とは、ＩｇＥ抗体依存性の反応であり、症状としては、ブタクサ花粉に曝露された後１０分以内に出現するくしゃみや鼻水が挙げられる。一方、遅発相はＴｈ２サイトカイン依存性の反応であり、症状としては、ブタクサ花粉に曝露された後６〜１２時間後に鼻粘膜に好酸球が浸潤し、鼻粘膜の過敏性が亢進することにより生じる鼻詰まりや不快感の持続が挙げられる。

後述する実施例に示すように、本発明者は、上記アレルギー性鼻炎モデル動物では、ブタクサ花粉を鼻腔内投与する前には鼻粘膜上皮細胞の核内に局在していた内因性ＩＬ−３３が、上記鼻腔内投与によって鼻粘膜上皮細胞から放出され、鼻汁中へ移行することを初めて明らかにした。

それゆえ、上記アレルギー性鼻炎モデル動物は、鼻粘膜上皮細胞の核内におけるＩＬ−３３の発現強度が、ブタクサ花粉を鼻腔内投与する前の鼻粘膜上皮細胞の核内におけるＩＬ−３３の発現強度よりも小さいという性質を有している。後述するように、この性質は、ＩＬ−３３がアレルギー性鼻炎発症の原因物質であることに基づいている。上記ＩＬ−３３の発現強度は、従来公知の方法（例えば、後述する〔免疫組織化学的試験の定量〕、〔ＥＬＩＳＡ分析〕の項に記載の方法）によって確認することができる。

本発明にかかるアレルギー性鼻炎モデル動物は、後述する実施例に示すように、ブタクサ花粉の代わりにＰＢＳを鼻腔内投与した群と比較して、鼻腔内投与後１０分間のくしゃみ回数の亢進が見られ（例えば図１の（ａ））、鼻腔内投与２４時間後の鼻粘膜への好酸球浸潤（例えば図２、３、５、６、７）、鼻粘膜上皮の多列化（例えば図２、５）および杯細胞からのムチン産生の亢進（例えば図４、８）を伴い、ブタクサ花粉特異的な血清ＩｇＥおよび頚部リンパ節細胞からのＴｈ２サイトカイン産生が著明に増強されるという病態を示した。

このことから分かるように、本発明にかかるアレルギー性鼻炎モデル動物は、ヒトアレルギー性鼻炎の病態に酷似した病態を示すモデル動物であるといえる。

さらに、後述する実施例に示すように、本発明にかかるアレルギー性鼻炎モデル動物では、元来鼻粘膜に存在しない好塩基球が、ブタクサ花粉の鼻腔内投与後に経時的に著明に浸潤増加するのに対し（例えば図１５）、マスト細胞数に変化は見られなかった。また、組織学的鼻粘膜への好酸球浸潤は、マウス頚部リンパ節細胞中の好酸球（ＳＳＣ^ｈｉｇｈＳｉｇｌｅｃ−Ｆ^＋ＣＣＲ３^＋好酸球）数と比例し、フローサイトメトリーによって簡易に判定することができた（例えば図９，１０）。

一方、ＩＬ−３３欠損マウスとＦｃεＲＩ欠損マウスとではくしゃみ回数、好酸球浸潤、および好塩基球浸潤が著明に抑制された（例えば図１３の（ａ），（ｂ）、図１５の（ｂ））。また、上述のように鼻粘膜上皮細胞核内に局在するＩＬ−３３は、ブタクサ花粉の鼻腔内投与によって鼻粘膜上皮細胞から放出された（例えば図１２の（ａ）〜（ｄ））。そして、ナイーブマウスにブタクサ花粉を１回点鼻後経時的に鼻洗浄液を採取してＩＬ−３３の産生をＥＬＩＳＡにて測定した結果、点鼻後４時間をピークとしてＩＬ−３３が検出された（図１２の（ｆ））。

これらの結果から、本発明にかかるアレルギー性鼻炎モデル動物において、ブタクサ花粉によって誘導された内因性ＩＬ−３３は、鼻粘膜上皮細胞から放出され、ＦｃεＲＩ^＋細胞（ＣＴＭＣ，ＭＭＣおよび好塩基球）を刺激してくしゃみ発生、並びに好酸球および好塩基球の遊走に関与することが示唆された。

実際、実施例に示すように、ＦｃεＲＩが架橋された結合組織型マスト細胞（ＣＴＭＣ）と粘膜型マスト細胞（ＭＭＣ）はＩＬ−３３濃度依存的にヒスタミン産生を増強することが確認された（図１３）。このことから、アレルギー性鼻炎におけるくしゃみ発生は、ＩＬ−３３およびＦｃεＲＩ^＋細胞（マスト細胞および抗塩基球）を介して生じることが明らかとなった（図２０）。図２０は、アレルギー性鼻炎の早期相および遅発相へのＩＬ−３３の関与を示す図である。

さらに、ＣＴＭＣ，ＭＭＣおよび好塩基球は、ＦｃεＲＩが架橋され、ＩＬ−３３で刺激されると、好酸球遊走因子であるＩＬ−１３，エオタキシンおよびランテス、好塩基球遊走因子であるＭＣＰ−１およびＭＩＰ−１αを著明に産生した（図１６）。このことから、鼻粘膜への好酸球および好塩基球の浸潤は、ＩＬ−３３およびＦｃεＲＩ^＋細胞（マスト細胞および抗塩基球）を介して生じることが明らかとなった（図２０）。

このように、本発明にかかるアレルギー性鼻炎モデル動物は、臨床的、病理的にヒトのアレルギー性鼻炎に酷似した病態を示し、かつ、簡便に作製、解析が可能であり、アレルギー性鼻炎の発症機序の解析に非常に有効であるといえる。また、アレルギー性鼻炎に有効な新規治療薬、治療方法の開発などに好適に用いることができるという点でも非常に有用である。

本発明にかかるアレルギー性鼻炎モデル動物は、ＩＬ−３３を中和することによって、アレルギー性鼻炎の症状が改善される。これは、上述のように、本発明にかかるアレルギー性鼻炎モデル動物において、アレルギー性鼻炎の発症はＩＬ−３３に依存していることによる。

本明細書において「アレルギー性鼻炎の症状が改善される」とは、アレルギー性鼻炎の諸症状（くしゃみ、鼻水、鼻詰まり等）のうち一以上が、ＩＬ−３３の中和前に比べて緩和されることを意味する。例えば上記くしゃみ、鼻水、鼻詰まり等のうち、全ての症状が緩和されることが望ましいが、一つの症状が緩和される場合でも、患者から不快感を除去することができるため、ＩＬ−３３を中和することによってアレルギー性鼻炎の症状の一以上が改善される場合も本発明に含まれる。

なお、本明細書において、「ＩＬ−３３を中和する」とは、「ＩＬ−３３の機能を阻害する」との意味のみならず、「ＩＬ−３３を分解する」、および「ＩＬ−３３の産生を阻害する」の意味を包含する。

したがって、上記アレルギー性鼻炎モデル動物において、アレルギー性鼻炎の症状を改善する方法としては、ＩＬ−３３に対する抗体の使用、ＩＬ−３３の阻害剤の使用、ＩＬ−３３拮抗剤の使用、およびＩＬ−３３の産生抑制剤の使用が挙げられる。例えば、上記ＩＬ−３３拮抗剤としては、ｓＳＴ２−Ｆｃ融合タンパク質等が挙げられる。上記ｓＳＴ２−Ｆｃ融合タンパク質は、ＩＬ−３３に選択的に結合し、ＩＬ−３３を中和するものである。つまり、ｓＳＴ２−Ｆｃ融合タンパク質は、デコイＩＬ−３３Ｒである。

〔２．アレルギー性鼻炎治療剤のスクリーニング方法〕
本発明にかかるアレルギー性鼻炎治療剤のスクリーニング方法は、本発明にかかるアレルギー性鼻炎モデル動物に被検物質を投与し、アレルギー性鼻炎の改善効果を検定する工程を含む方法である。

具体的には、上記スクリーニング方法は、上記アレルギー性鼻炎モデル動物に被験物質を投与する工程（以下、「被験物質投与工程」ともいう）と、上記被験物質のアレルギー性鼻炎の改善効果を検定する工程（以下、「検定工程」ともいう）を含んでいればよく、その他の具体的な構成は特に限定されるものではない。以下、上記被験物質投与工程および検定工程について説明する。

（２−１．被検物質投与工程）
上記被験物質投与工程では、本発明にかかるアレルギー性鼻炎モデル動物に被験物質を投与する。上記被検物質は特に限定されるものではなく、上記アレルギー性鼻炎モデル動物が発症するアレルギー性鼻炎に有効と考えられる物質を用いればよい。

例えば、上記アレルギー性鼻炎モデル動物は、上述したように、ＩＬ−３３の中和により、アレルギー性鼻炎の症状が改善される。したがって、ＩＬ−３３を中和することが期待される物質を被検物質とすればよい。具体的には、ＩＬ−３３に対する抗体、ＩＬ−３３の阻害剤、ＩＬ−３３の拮抗剤、およびＩＬ−３３の産生阻害剤などが例示できる。

上記被検物質を上記アレルギー性鼻炎モデル動物に投与する方法は特に限定されるものではなく、上記被検物質の性質などによって、適宜選択して行えばよい。例えば、鼻腔内投与、経皮投与、筋内投与、腹腔内投与、静脈内投与、関節内投与、皮下投与、または経口投与などを挙げることができる。本発明では、スクリーニングされたアレルギー性鼻炎治療剤の実用化の観点から、鼻腔内投与することが好ましい。

（２−２．検定工程）
上記検定工程では、上記被検物質のアレルギー性鼻炎の改善効果を検定する。上記アレルギー性鼻炎の改善効果の検定方法は特に限定されるものではないが、例えば、以下の項目に記載の事項が低減されるか否かを検証することによって、アレルギー性鼻炎の改善効果を検定することができる。なお、これらの検証項目は、全てを実施してもよいし、一部のみを実施するだけでもよい。

（ａ）くしゃみの回数
（ｂ）鼻汁中のＩＬ−３３の量
（ｃ）鼻粘膜への好酸球の浸潤
（ｄ）鼻粘膜への好塩基球の浸潤
（ｅ）ＣＴＭＣ，ＭＭＣおよび好塩基球からの好酸球遊走因子および好塩基球遊走因子の産生
（ｆ）鼻粘膜における杯細胞の増殖
（ｇ）頚部リンパ節中のＳＳＣ^ｈｉｇｈＳｉｇｌｅｃ−Ｆ^＋ＣＣＲ３^＋好酸球数
上述のように本発明にかかるアレルギー性鼻炎モデル動物では、即時相におけるくしゃみの回数が有意に増加し、鼻粘膜上皮細胞から鼻汁中へＩＬ−３３が放出され、鼻粘膜への好酸球および好塩基球の浸潤が見られ、ＣＴＭＣ，ＭＭＣおよび好塩基球からの好酸球遊走因子および好塩基球遊走因子産生が見られる。そのため、被検物質の投与によってこれらの病態が有意に低減されれば、アレルギー性鼻炎の改善効果があると考えることができる。

例えば、上記被検物質を投与する前の上記アレルギー性鼻炎モデル動物の鼻汁中におけるＩＬ−３３の量と、上記被検物質を投与した後の上記アレルギー性鼻炎モデル動物の鼻汁中におけるＩＬ−３３の量とを比較して、被検物質投与後の上記鼻汁中のＩＬ−３３の量が有意に低ければ、当該被検物質にはアレルギー性鼻炎の改善効果があると考えることができる。

なお、上記項目（ａ）〜（ｇ）の検証方法としては、例えば、後述の実施例に記載の方法を挙げることができる。例えば、上記鼻汁中のＩＬ−３３の量を測定する方法としては、後述する〔ＥＬＩＳＡ分析〕に記載した方法を例示することができる。

上記スクリーニング方法によってアレルギー性鼻炎の改善効果があると判断された被検物質は、アレルギー性鼻炎治療剤として用いることができる。このように、上記スクリーニング方法は新規アレルギー性鼻炎治療剤の開発に非常に有用である。

〔３．アレルギー性鼻炎治療剤のスクリーニングキット〕
本発明にかかるアレルギー性鼻炎治療剤のスクリーニングキットは、本発明にかかるアレルギー性鼻炎治療剤のスクリーニング方法を行うためのスクリーニングキットであって、被検物質を投与したアレルギー性鼻炎モデル動物の鼻汁を採取する鼻汁採取手段と、上記鼻汁に含まれるＩＬ−３３の定量を行うための検体を調製するために用いられる検体調製手段とを備える。

上記鼻汁採取手段としては、従来公知の綿棒、吸引用チューブなどを用いることができる。上記鼻汁中に含まれるＩＬ−３３の定量を行うための検体としては、例えばＥＬＩＳＡ測定用に調製したサンプルを挙げることができる。上記検体調製手段としては、例えばＥＬＩＳＡ測定用のサンプル調製に用いる部材、すなわち、抗体固相化プレート、ビオチン結合抗体溶液、酵素-ストレプトアビジン結合物、酵素基質溶液、標準溶液などの組み合わせを挙げることができる。上記キットには、その他の構成として、例えばＥＬＩＳＡ装置を含んでいても良い。

〔４．アレルギー性鼻炎治療剤の治療効果判定方法〕
本発明にかかるアレルギー性鼻炎治療剤の治療効果判定方法は、本発明にかかるアレルギー性鼻炎モデル動物にアレルギー性鼻炎治療剤を投与し、アレルギー性鼻炎の改善効果を検定する工程を含む。

上記「アレルギー性鼻炎治療剤」とは、アレルギー性鼻炎の治療効果を有する薬剤をいう。「治療効果を有する」とは、上記アレルギー性鼻炎治療剤の投与によってアレルギー性鼻炎の諸症状のうち一以上が投与前よりも改善されることをいう。

よって、上記「アレルギー性鼻炎治療剤」には、アレルギー性鼻炎の治療効果を有するものであれば、既存のアレルギー性鼻炎治療剤の他、開発中の試作品なども含まれる。

上記アレルギー性鼻炎モデル動物は、ヒトのアレルギー性鼻炎に酷似した症状を呈するため、例えば既存のアレルギー性鼻炎治療剤の治療効果を、ヒトに投与することなくin vivoで効率よく判定することができる。

本発明にかかるアレルギー性鼻炎モデル動物にアレルギー性鼻炎治療剤を投与する方法は特に限定されるものではなく、上記アレルギー性鼻炎治療剤の性質などによって、適宜選択して行えばよい。例えば、鼻腔内投与、経皮投与、筋内投与、腹腔内投与、静脈内投与、関節内投与、皮下投与、または経口投与などを挙げることができる。

上記治療効果の判定は、鼻粘膜への好酸球および／または好塩基球の浸潤、鼻粘膜における杯細胞の増殖、頚部リンパ節中の好酸球数、くしゃみの回数、Ｔｈ２サイトカインの産生、鼻汁中のＩＬ−３３の量などをアレルギー性鼻炎治療剤の投与前後において測定し、結果を異なるアレルギー性鼻炎治療剤間で比較すること等によって行うことができる。中でも、頚部リンパ節中の好酸球数をフローサイトメトリーによって解析する方法は、組織染色法よりも極めて簡便に、かつ迅速に治療効果を判定できるため好ましい。

なお本発明は、以上例示した各構成に限定されるものではなく、特許請求の範囲に示した範囲で種々の変更が可能であり、異なる実施形態にそれぞれ開示された技術的手段を適宜組み合わせて得られる実施形態についても本発明の技術範囲に含まれる。

本発明について、実施例および図面に基づいてより具体的に説明するが、本発明はこれに限定されるものではない。当業者は本発明の範囲を逸脱することなく、種々の変更、修正、および改変を行うことができる。

〔サンプル等〕
正常な鼻粘膜の被験体は、粘膜下鼻介骨切除術、鼻形成術、上顎全摘出術または下鼻甲介の摘出を受けた患者の下鼻甲介から取得した。アレルギー性鼻炎患者の鼻粘膜の被験体は、粘膜下鼻介骨切除術を受けたアレルギー性鼻炎患者から取得した。上記被験体を、１０％のバッファーを含有するホルマリン中で室温にて一晩固定し、パラフィンに包埋した。総勢１０人のアレルギー性鼻炎患者は京都府立医科大学病院の患者である。

７つのエアロアレルゲン、すなわちヤケヒョウダニ（チリダニ）、スギ、ヒノキ、鴨茅、ハンノキ、ブタクサ、ヨモギに特異的なＩｇＥを、ファルマシアＣＡＰシステム（ファルマシアＣＡＰ，Upsala, スウェーデン）を用いて測定した。アレルゲン特異的な血清ＩｇＥレベルが＞０．７（ＣＡＰ ＲＡＳＴスコアが２）である場合に感作陽性とした。上記患者の個体群統計学的特徴および臨床的特徴を表１にまとめた。

患者全員が２年を超えて鼻炎症状（くしゃみ、鼻水、鼻詰まり）を示しており、血清中にチリダニに対する特異的ＩｇＥを有していた。また、アレルギー性鼻炎の症状を示しておらず、全てのアレルゲンに感作を示していない総勢５人の健常者を集めた（表１を参照）。被験者は全員が日本人で、実験への参加に同意した者である。

〔試薬〕
組み換えマウスＩＬ−３３、および、マウスＩＬ−３３に対するポリクローナルウサギＩｇＧ抗体は、従来公知の方法（Kondo, Y. et al., Int Immunol 20, 791-800 (2008)、Matsuba-Kitamura, S. et al. Int Immunol 22, 479-489 (2010)）によって発明者らの研究室において調製した。ヒトＩＬ−３３に対するポリクローナルウサギＩｇＧ抗体はＭＢＬ社（日本）より購入した。

ＰＥ−抗マウスｃ−ｋｉｔ、ＰＥ−抗マウスSiglec-F（E50-2440）およびビオチン抗マウスＩｇＥ（R35-118）はＢＤバイオサイエンス社（San Diego, CA, USA）より購入した。ＦＩＴＣ−抗マウスＳＴ２（ＩＬ−３３レセプターα鎖）はＭＤバイオサイエンス社（St.Paul, MN, USA）より購入した。

ビオチン−抗マウスＦｃεＲＩα（ＭＡＲ−１）およびストレプトアビジン−アロフフィコシアニン（ＡＰＣ）はｅバイオサイエンス社（San Diego, CA, USA）より購入した。抗ＣＤ１６／３２（ＦｃγＲＩＩ／ＩＩＩ）はバイオレジェンド社（San Diego, CA, USA）より購入した。ラット抗マウスＩｇＥ（２３Ｇ３）およびアフィニティ精製ヤギ抗マウスＩｇＧ１はSouthern Biotechnology Associates Inc.（Birmingham, AL, USA）から購入した。

マウスｍＭＣＰ−８に特異的なモノクローナル抗体（クローン；ＴＵＧ８）は、東京医科歯科大学より提供を受けた。ブタクサ花粉はPolyScience（Niles, IL, USA）より購入した。ブタクサ花粉抽出物はＬＳＬ社（日本）より購入した。マウスＩＬ−３、ＩＬ−４、幹細胞因子（ＳＣＦ）およびＦＩＴＣ−抗マウスＣＣＲ３はR&D Systems社（Minneapolis, MN, USA）より購入した。抗ＤＮＰＩｇＥｍＡｂおよびＯＶＡ（グレードＶ）はSigma社から購入し、２，４-ジニトロフェニル（ＤＮＰ）複合ＯＶＡは発明者らの研究室で調製した。

〔In vitroにおけるサイトカインおよびヒスタミンの産生〕
１０％ウシ胎児血清、２−ＭＥ（５０μＭ）、Ｌ−グルタミン（２ｍＭ）、ペニシリン（１００Ｕ／ｍｌ）およびストレプトマイシン（１００μｇ／ｍｌ）を含有するＲＰＭＩ１６４０培地中に、従来公知の照射された抗原提示細胞（ＡＰＣｓ；照射されたＴ細胞除去BALB/c 脾細胞）１×１０^５個の存在下、頚部リンパ球を、ＩＬ−２（１００ｐＭ）およびブタクサ花粉抽出物（５μｇ／ｍｌ）とともに２×１０^５個／０．２ｍｌ／ｗｅｌｌとなるように９６穴プレートに入れ、５日間培養した。

後述するように調製し、精製した骨髄由来の結合組織型マスト細胞（ＣＴＭＣ）、粘膜型マスト細胞（ＭＭＣ）または好塩基球（５×１０^４個／０．２ｍｌ／Ｗｅｌｌ）を、ＦｃεＲＩを架橋して、または架橋せずに、ＩＬ−３（２０Ｕ／ｍｌ）のみ、または、ＩＬ−３およびＩＬ−３３（１００ｎｇ／ｍｌ）で刺激した。

ＦｃεＲＩを架橋するため、精製したＣＴＭＣ，ＭＭＣおよび好塩基球をマウスＩｇＥ抗ＤＮＰ（１μｇ／ｍｌ）で１時間感作し、ＩＬ−３のみ、またはＩＬ−３およびＩＬ−３３の存在下で、ＤＮＰ−ＯＶＡ（１０μｇ／ｍｌ）と共に５時間（ヒスタミン放出用）または１６時間（サイトカイン放出用）培養した。

上清を回収し、サイトカインまたはヒスタミンの産生を、ＥＬＩＳＡキット（R&D Systems）、Ｂｉｏ−Ｐｌｅｘ システム（BioRad, Hercules, CA, USA）またはヒスタミンＥＬＩＳＡキット（Immunotech, Marseille Cedex, France）をそれぞれ用いて評価した。

〔フローサイトメトリーおよび細胞の精製〕
骨髄由来のＣＴＭＣ、ＭＭＣおよび好塩基球を従来公知の方法（Kondo, Y. et al., Int Immunol 20, 791-800 (2008)、Karimi, K. et al., Exp Hematol 27, 654-662 (1999)、Yoshimoto, T. et al. Nat Immunol 10, 706-712 (2009)）によって調製した。つまり、ＩＬ−４（１０ｎｇ／ｍｌ）およびＳＣＦ（１００ｎｇ／ｍｌ）またはＩＬ−３（１０Ｕ／ｍｌ）と共に、完全ＲＰＭＩ１６４０培地中でそれぞれ３０日または１４日培養した骨髄細胞を２回洗浄した。

まず、当該骨髄細胞を抗ＦｃγＲＩＩ／ＩＩＩ（１０μｇ／ｍｌ）を用いて４℃で３０分間処理し、次に、ビオチン−抗マウスＦｃεＲＩα（５μｇ／ｍｌ）を用い、染色バッファー（１％（ｖｏｌ／ｖｏｌ）ＦＣＳ含有ＰＢＳ）中で４℃で２時間処理した。２回洗浄した後、細胞をストレプトアビジンＡＰＣおよびＰＥ−抗マウスｃ−ｋｉｔを用いて３０分間染色した。

サンプルは、蛍光セルソーター（FACS Aria; BD Bioscience）を用いてＦｃεＲＩ^＋ｃ−ｋｉｔ^＋細胞（マスト細胞）またはＦｃεＲＩ^＋ｃ−ｋｉｔ⁻細胞（好塩基球）に精製した。それぞれの集団の純度は９７％以上であった。さらに、得られた集団をＦＩＴＣ−抗マウスＳＴ２（ＩＬ−３３レセプターα鎖）を用いて染色した。頚部リンパ節中の好酸球を解析するため、細胞を回収し、FACS Calibur（BD Biosciences社製）を用いて、ＳＳＣ^high 細胞（Matsuba-Kitamura, S. et al., Int Immunol 22, 479-489 (2010)）上にゲートされたＳｉｇｌｅｃ−Ｆ^＋ＣＣＲ３^＋細胞の発現を調べた。

〔組織化学的解析〕
マウスの顔面の皮膚を剥離した後、マウスの頭部を上顎と下顎との間で切断し、鼻を除去した。サンプルをすぐに４％のパラホルムアルデヒド中に固定し、４℃で３日間放置し、０．１２ＭのＥＤＴＡ溶液（ｐＨ６．５）中、室温で７日間脱石灰した。上記ＥＤＴＡ溶液は毎日交換した。

脱石灰後、組織をパラフィンに包埋し、４μｍの冠状切片に切断し、ヘマトキシリン・エオジン（Ｈ＆Ｅ）、過ヨウ素酸シッフ（ＰＡＳ）、トルイジンブルー、またはアルシアンブルーを用いて染色した。ＣＴＭＣ、ＭＭＣおよび好塩基球のサイトスピン標本は、ディフ・クイック（登録商標）またはトルイジンブルーで染色した。好塩基球の免疫組織化学的染色は、従来公知の方法（Ugajin, T. et al. J Leukoc Biol 86, 1417-1425 (2009)）に従って行った。

まず組織切片をマイクロ波で処理し、続いて、内因性ペルオキシダーゼを阻害するための０．３％過酸化水素含有メタノールおよび抗体の非特異的結合を回避するための０．２５％カゼイン含有タンパク質ブロッキング溶液（Dako, Carpinteria, CA, USA）と反応させた。

次に、組織切片を抗ｍＭＣＰ−８（ＴＵＧ８）（２．５μｇ／ｍｌ）と４℃で一晩反応させ、続いてＨＲＰ複合ヤギ抗ラットＩｇＧ（１：５００に希釈）と反応させた。得られた組織切片は、次に、３’−ジアミノベンジデンテトラヒドロクロライド溶液（Dako 製）中で反応させ、ヘマトキシリンを用いて対比染色した。

〔共焦点顕微鏡〕
新たに分離した鼻の検体由来の凍結切片を固定し、ＦＩＴＣ−抗マウスＳＴ２およびＰＥ−抗マウスＳｉｇｌｅｃ−Ｆと４℃で一晩反応させた。ＩＬ−３３タンパク質を染色するために、サンプルを４％パラホルムアルデヒド中で４℃で一晩反応させた。上記鼻のパラフィン包埋切片（４μｍ厚）からパラフィンを除去し、クエン酸バッファー（ｐＨ６．０）中、マイクロ波により加熱（５００ワット５分、３回）した後、ブロッキングする前に室温で５０分間冷却した。

上記切片を１．０％ＢＳＡおよび０．０５％Ｔｗｅｅｎ２０を含有するＰＢＳ中で反応させ、ブロッキングさせた。上記切片を一次抗体、すなわち、マウスＩＬ−３３またはヒトＩＬ−３３に対する精製ポリクローナルウサギＩｇＧ抗体と共に４℃で一晩反応させ、次に二次抗体、すなわちウサギＩｇＧに対するビオチン複合ヤギ抗体（Vector Laboratory製、Burlingame, CA, USA）と共に室温で３０分間反応させた。

次に、切片を三次抗体、すなわちAlexa Fluor 555 複合ストレプトアビジン（Invitrogen製、Carlsbad, CA, USA）を用いて室温で３０分間染色した。ＤＡＰＩ（4',6-ジアミジノ−２−フェニルインドール）（Invitrogen製）を含有する封入剤を用いてカバーガラスをかけた切片を、Zeiss LSM 510（Carl Zeiss, Thomwood, NY, USA）を用いて観察した。コンピュータソフトウェアとしては、Zeiss LSM 510 ver.3.2（Carl Zeiss）を用い、イメージプロセシングおよび解析を行った。

〔免疫組織化学的試験の定量〕
免疫組織化学的に染色した鼻膜中のＩＬ−３３の定量画像解析を従来公知の方法（Vrekoussis, T. et al., Anticancer Res 29, 4995-4998 (2009)）によって行った。つまり、マウス鼻介甲中のＩＬ−３３染色画像をZeiss LSM 510によって捕捉し、白黒の状態で保存した。サンプルあたり１０個のランダムに選択した領域（２０μｍ×２０μｍ）の平均灰色値をＮＩＨのウェブサイト(http://rsb.info.nih.gov/ij)からダウンロードしたfreeware image J 1.42qによって測定し、平均値±s.e.mとして解析した。

〔ＥＬＩＳＡ分析〕
ＩｇＥの総量は従来公知の方法（Yoshimoto, T et al., Proc Natl Acad Sci U S A 92, 11931-11934 (1995)）によって測定した。ブタクサ花粉に特異的な血清ＩｇＥを検出するため、ビオチン複合ブタクサ花粉抽出物を発明者らの研究室において調製した（Matsuba-Kitamura, S. et al. Int Immunol 22, 479-489 (2010)）。鼻汁中のＩＬ−３３をマニュアルに従い、ＥＬＩＳＡ（R&D System製）を用いて分析した。

〔統計処理〕
統計的有意差は、two-tailed Student's t-testを用いて計算し、ｐ＜０．０５で統計的有意差ありと判断した。

〔実施例１：アレルギー性鼻炎モデルマウスの作製、および、ブタクサ花粉で感作し、ブタクサ花粉で誘導したアレルギー性鼻炎の確立〕
ＩＬ−３３欠損マウスであるil33^−/−マウス（129SvJ×C57BL/6）を、BALB/cマウス（日本チャールスリバー（株）より購入）と７世代に渡り戻し交雑させ、得られたil33^＋/＋マウスを実験に用いた。上記il33^−/−マウスは、大阪大学審良静男教授より譲渡頂いた。

上記il33^＋/＋マウスをブタクサ花粉で感作し、その後ブタクサ花粉を点鼻することにより、本発明にかかるアレルギー性鼻炎モデルマウスを得た。すなわち、ブタクサ花粉（２００μｌのＰＢＳに溶解させたブタクサ花粉１００μｇ）と水酸化アルミニウム水和ゲル（２００μｌのＰＢＳに溶解させた水酸化アルミニウム水和ゲル１ｍｇ、Sigma Aldrich, St. Louis, Mo, USA）との混合物を皮下注射し（当該皮下注射を行った日を０日目とする）、７日目に２００μｌのＰＢＳに溶解させたブタクサ花粉１００μｇを皮下注射した。

１週間後、上記マウス（１グループあたり５匹）にブタクサ花粉（２０μｌのＰＢＳに溶解したブタクサ花粉１ｍｇ）またはＰＢＳ（２０μｌ）を４日連続で点鼻し、本発明にかかるアレルギー性鼻炎モデルマウスを得た。また、上記il33^−/−マウスに対して上記il33^＋/＋マウスに対するのと同様の処置を施したマウスも調製した。

最終点鼻後すぐに、マウスがくしゃみをした回数を盲検法で１０分間測定した。最終点鼻の２４時間後に、下大静脈から末梢血を回収し、血清を遠心分離によって調製した。次にマウスを屠殺し、鼻および頚部リンパ節を分離し、さらなる組織学的および免疫学的解析に供した。

いくつかの実験では、ナイーブマウスまたはブタクサ花粉で感作した上記アレルギー性鼻炎モデルマウスにブタクサ花粉（２０μｌのＰＢＳに溶解させたブタクサ花粉１ｍｇ）を１回点鼻し、点鼻後１，２，４，８，１２，２４，４８時間後にマウスを屠殺し、鼻の組織学的検査および鼻洗浄液の回収を行った。鼻は１５０μｌのＰＢＳを用いて２回洗浄し、得られた鼻洗浄液を遠心分離して上清を調製し、解析を行うまで−８０℃で保存した。

図１は、本発明にかかるアレルギー性鼻炎モデルマウスおよび上記il33^−/−マウスをブタクサ花粉で感作し、ブタクサ花粉を点鼻することによって得たマウスを用いた場合の、くしゃみの回数（図１のａ）、血清ＩｇＥの総量（図１のｂ）、ブタクサ花粉に特異的な血清ＩｇＥの量（図１のｃ）を示している。

図１および他の図面の横軸において、「normal」は免疫および点鼻を行わない試験区、「ＰＢＳ」はブタクサ花粉で感作し、ＰＢＳを点鼻することによって得たマウスを用いた試験区、「ＲＷ」は、ブタクサ花粉で感作し、ブタクサ花粉を点鼻することによって得たマウスを用いた試験区を表す。

図１の（ａ）に示すように、ＰＢＳを点鼻したコントロールマウスと比較して、ブタクサ花粉を点鼻したマウスでは、くしゃみの回数が有意に増加していた（ＰＢＳを点鼻したコントロールマウスでは４．５±２．２回、ブタクサ花粉を点鼻したマウスでは６９．３±５．５回；Ｐ＜０．００１）。このことは、ブタクサ花粉の点鼻によって、ＩｇＥ依存的に即時相タイプのアレルギー性鼻炎を誘導可能であることを示唆している。

図１の（ｂ）および（ｃ）に示すように、ＰＢＳを点鼻したマウスと比較して、ブタクサ花粉を点鼻したマウスでは、最終点鼻の１日後に測定すると、血清ＩｇＥの総量およびブタクサ花粉に特異的な血清ＩｇＥの量が有意に増加していた（Ｐ＜０．００５）。なお、図１の（ａ）〜（ｃ）において、＊はtwo-tailed Student's t-testにおいてｐ＜０．０５であることを示し、＊＊はＰ＜０．００５であることを示し、＊＊＊はＰ＜０．００１であることを示す。

図２は、ブタクサ花粉で感作し、ブタクサ花粉を点鼻したil33^＋/＋マウス（本発明にかかるアレルギー性鼻炎モデルマウス）の鼻の、ヘマトキシリン・エオジンで染色した冠状切片（図２の（ａ）および（ｂ））、上記il33^−/−マウスをブタクサ花粉で感作し、ブタクサ花粉を点鼻することによって得たマウスの鼻の、ヘマトキシリン・エオジンで染色した冠状切片（図２の（ｃ））を示している。図２の（ｂ）、（ｃ）は、図２の（ａ）中枠囲みした領域に相当する部分を拡大したものである。

図３は、ブタクサ花粉で感作し、ＰＢＳを点鼻したマウス、および、ブタクサ花粉で感作し、ブタクサ花粉を点鼻したマウスの外側鼻粘膜中の好酸球数をカウントした結果を示している。図中、＊はtwo-tailed Student's t-testにおいてｐ＜０．０５であることを示し、＊＊＊はＰ＜０．００１であることを示す。

図４は、ブタクサ花粉で感作し、ブタクサ花粉を点鼻したil33^＋/＋マウスおよびil33^ー/ーマウスの鼻中隔を過ヨウ素酸シッフ（ＰＡＳ）によって染色した結果を示している。

なお、図２〜４では、１５〜２０個の鼻を用いて得られた結果のうち、代表的な結果を示している。

図５，６は、ブタクサ花粉で感作し、ブタクサ花粉を点鼻したil33^＋/＋マウスでは鼻へ好酸球が誘導されることを示している。

図５の（ａ）〜（ｃ）は、ブタクサ花粉で感作し、ＰＢＳを点鼻した上記il33^＋/＋マウスの鼻の、ヘマトキシリン・エオジンで染色した冠状切片を示し、図５の（ｄ）〜（ｆ）は、ブタクサ花粉で感作し、ブタクサ花粉を点鼻した上記il33^＋/＋マウスの鼻を、ヘマトキシリン・エオジンで染色した冠状切片を示す。図５の（ａ），（ｄ）は外側鼻粘膜、（ｂ）、（ｅ）は鼻甲介、（ｃ）、（ｆ）は鼻中隔の切片である。図２の（ｂ）は図５の（ｄ）に該当する。

図６の（ａ）は、ブタクサ花粉で感作し、ブタクサ花粉を点鼻したil33^＋/＋マウス（本発明にかかるアレルギー性鼻炎モデルマウス）の鼻の、ヘマトキシリン・エオジンで染色した冠状切片（図２）を更に詳細に観察した結果を示すものである。図６の（ａ）において、枠囲みした領域１は外側鼻粘膜；枠囲みした領域２は鼻甲介、領域３は鼻中隔をそれぞれ示す。図６の（ｂ）は、図６の（ａ）において左上に枠囲みした領域の拡大図である。

図７は、ＩＬ−３３欠損マウスでは鼻への好酸球の浸潤が減少することを示している。図７は、ブタクサ花粉で感作し、ブタクサ花粉またはＰＢＳを点鼻したil33^＋/＋マウスおよびil33^−/−マウスにつき、最終点鼻の２４時間後に鼻を各グループのマウスから除去し、パラホルムアルデヒド中で固定し、脱石灰し、４μｍの冠状切片に切断し、ヘマトキシリン・エオジンで染色した場合の、外側鼻粘膜（図７の（ａ））、鼻甲介（図７の（ｂ））、鼻中隔（図７の（ｃ））の好酸球数を示すものである。データは３回の独立した実験のうち代表的なものを示す（５匹のマウスの平均値およびs.e.m）。図中、＊印は、two-tailed Student's t-testにおいてｐ＜０．０５であったことを示す。

図８は、ＩＬ−３３欠損マウスでは上皮細胞の多列化の程度、および、鼻粘膜における杯細胞の増殖が減少することを示している。（ａ）はブタクサ花粉で感作し、ＰＢＳを点鼻したil33^＋/＋マウスおよびil33^−/−マウスの鼻中隔の冠状切片、（ｂ）はブタクサ花粉で感作し、ブタクサ花粉を点鼻したil33^＋/＋マウスおよびil33^−/−マウスの鼻中隔の冠状切片、（ｃ）、（ｄ）はそれぞれ、（ｂ）に示すil33^＋/＋マウスの結果の枠囲みした部分の拡大図、（ｂ）に示すil33^−/−マウスの結果の枠囲みした部分の拡大図である。

なお、図８の（ｂ）は図４と同じである。観察した鼻中隔は、最終点鼻の２４時間後に鼻を各グループのマウスから除去し、パラホルムアルデヒド中で固定し、脱石灰し、４μｍの冠状切片に切断し、過ヨウ素酸シッフ（ＰＡＳ）で染色したものである。

図２〜８に示すように、組織化学的解析を行った結果、ブタクサ花粉を点鼻したマウスでは、上皮の多列化、杯細胞の増殖、並びに外側鼻粘膜、鼻甲介および鼻中隔粘膜において好酸球の顕著な浸潤が見られたが、ＰＢＳを点鼻したマウスでは見られなかった。

図６の（ｂ）に示すように、ブタクサ花粉を点鼻したいくつかのマウスでは、鼻腔内に好酸球およびブタクサ花粉を備えたクラスターが見られた。

また、ブタクサ花粉に特異的なアレルギー性結膜炎の結膜組織に浸潤した好酸球（Matsuba-Kitamura, S. et al. Int Immunol 22, 479-489 (2010)を参照）のように、鼻における好酸球の殆どはＳＴ２（ＩＬ−３３レセプターα）を発現していた。

図９は、ＩＬ−３３欠損マウスでは頚部リンパ節への好酸球浸潤が行われないことを示している。図９の（ａ）は、il33^＋/＋マウスの頚部リンパ球におけるＳＳＣ^highＳｉｇｌｅｃ−Ｆ^＋ＣＣＲ３^＋細胞（ＳＳＣ^high 細胞（Matsuba-Kitamura, S. et al., Int Immunol 22, 479-489 (2010)）上にゲートされたＳｉｇｌｅｃ−Ｆ^＋ＣＣＲ３^＋細胞）の発現をフローサイトメトリーによって解析した結果を示すものである。

図９の（ａ）の左側の図は、ブタクサ花粉で感作し、ＰＢＳを点鼻したil33^＋/＋マウス、図９の（ａ）の右側の図は、ブタクサ花粉で感作し、ブタクサ花粉を点鼻したil33^＋/＋マウスについての結果を示す。図中の数字（９．８４、３２．４）はＳＳＣ^ｈｉｇｈＳｉｇｌｅｃ−Ｆ^＋ＣＣＲ３^＋細胞の割合（％）を示しており、グループあたり１６〜２０の頚部リンパ節を用いた結果を表している。

図９の（ｂ）は、il33^＋/＋マウスおよびil33^−/−マウス由来の頚部リンパ球中のＳＳＣ^highＳｉｇｌｅｃ−Ｆ^＋ＣＣＲ３^＋好酸球の割合を示している。データは、独立した３つの実験のうち代表的なものである（５匹のマウスの平均値およびs.e.m.）。図中、＊はtwo-tailed Student's t-testにおいてｐ＜０．００５であることを示し、＊＊はＰ＜０．００１であることを示す。

図１０は、ブタクサ花粉で感作し、ブタクサ花粉を点鼻したil33^＋/＋マウス（図１０の（ａ））およびil33^−/−マウス（図１０の（ｂ））由来の頚部リンパ節ＳＳＣ^ｈｉｇｈＳｉｇｌｅｃ−Ｆ^＋ＣＣＲ３^＋好酸球をフローサイトメトリーによって解析した結果を示すものである。図１０の（ａ）は、図９の（ａ）の右側の図と同じである。

図中の数字（３２．４および８．９４）は、頚部リンパ球に占めるＳＳＣ^ｈｉｇｈＳｉｇｌｅｃ−Ｆ^＋ＣＣＲ３^＋好酸球の割合（％）を示している。なお、図１０では、２０の頚部リンパ節を用いて得られた結果のうち、代表的な結果を示している。

図９，１０に示すように、ブタクサ花粉で感作し、ブタクサ花粉を点鼻したマウス（本発明にかかるアレルギー性鼻炎モデルマウス）では、鼻粘膜へ好酸球が浸潤するとともに、頚部リンパ節における好酸球の数が増加していた。

野生型のBALB/cマウスでも、同じ条件下でブタクサ花粉を用いて感作し、ブタクサ花粉を点鼻すると、ブタクサ花粉に特異的なアレルギー性鼻炎を発現することが確認された。本発明にかかるブタクサ花粉特異的なアレルギー性鼻炎モデルマウスは、ヒトのアレルギー性鼻炎、特にブタクサ花粉による花粉症の主な特徴に酷似した病態を示す。

〔実施例２：ＩＬ−３３欠損マウスを用いた場合の、ブタクサ花粉により誘導されるアレルギー性鼻炎〕
アレルギー性鼻炎における内因性ＩＬ−３３の生理学的な役割を明確にするため、BALB/cマウスをバックグラウンドとするil33^−/−マウスを用いた。図１〜４、図９の（ｂ）、図１０に示すように、il33^＋/＋マウスに比べて、il33^−/−マウスは、くしゃみの回数、血清ＩｇＥの総量、ブタクサ花粉に特異的な血清ＩｇＥの量、並びに、ブタクサ花粉点鼻後の鼻粘膜および頚部リンパ節における好酸球の浸潤が有意に減少していた。

さらに、図２，４，８に示すように、組織学的解析により、il33^−/−マウスでは、上皮における多列化の程度、鼻粘膜における杯細胞の増殖の程度が減少していることが分かった。

しかしながら、ブタクサ花粉で感作し、ＰＢＳを点鼻したil33^−/−マウスは、il33^＋/＋マウスのように、非免疫il33^−/−マウスと比べて、血清中のＩｇＥの総量がかなり増加していた（図１の（ｂ））。このことは、il33^−/−マウスは免疫に応じてＴｈ２／ＩｇＥ応答を高める能力を持っているが、ブタクサ花粉の点鼻によってＴｈ２／ＩｇＥ応答を増加させる能力が顕著に低下することを示唆している。

次に、ブタクサ花粉点鼻２４時間後のブタクサ花粉免疫マウスの頚部リンパ節由来のＴ細胞を、in vitroでブタクサ花粉抽出タンパク質を用いて刺激し、Ｔｈ２サイトカインを産生する能力を比較した。

図１１は、以下のように調製した細胞の上清中のＩＬ−４，ＩＬ−５，およびＩＬ−１３をＥＬＩＳＡにより測定した結果を示すものである。上記最終点鼻の２４時間後に、マウスから分離した頚部リンパ球（２×１０^５個／０．２ｍｌ／ｗｅｌｌ）を、従来公知の照射された抗原提示細胞（ＡＰＣｓ；照射されたＴ細胞除去BALB/c 脾細胞；１×１０^５個／０．２ｍｌ／ｗｅｌｌ）の存在下で、ＩＬ−２（１００ｐＭ）およびブタクサ花粉抽出物（５μｇ／ｍｌ）を用いて９６穴プレート中で５日間再刺激した。データは３つの独立した実験の代表的なデータである（５匹のマウスの平均値およびs.e.m）。図１１中、＊はtwo-tailed Student's t-testにおいてｐ＜０．０１であることを示し、＊＊はＰ＜０．０００５であることを示し、＊＊＊はＰ＜０．０００１であることを示す。

図１１に示すように、ブタクサ花粉を点鼻したil33^−/−マウスのリンパ球では、il33^＋/＋マウス由来のリンパ球と比べて、in vitroでの刺激後のＩＬ−４，ＩＬ−５およびＩＬ−１３の産生が著しく減少した。この結果は、ブタクサ花粉の点鼻によって産生誘導された内因性ＩＬ−３３が即時性および遅発性アレルギー性鼻炎の発現に寄与していることを明確に示している。

〔実施例３：ブタクサ花粉の点鼻による鼻上皮からのＩＬ−３３放出誘導〕
発明者らは、以前に、ＩＬ−３３がナイーブマウスの結膜上皮細胞の核内に局在することを免疫組織化学的な解析によって確認しており、ホモジナイズした結膜の上清が機能的な生物活性を有するＩＬ−３３を含有することをバイオアッセイによって確認している（Matsuba-Kitamura, S. et al. Int Immunol 22, 479-489 (2010)）。そこで続いて、鼻粘膜上皮細胞中におけるＩＬ−３３の発現、および鼻へのブタクサ花粉の曝露に応答したＩＬ−３３の分泌について検討した。

図１２は、ブタクサ花粉の点鼻により、鼻粘膜上皮細胞からＩＬ−３３の分泌が誘導されることを示している。図１２の（ａ），（ｂ）は、Balb/cマウスをバックグラウンドに持つil33^＋/＋マウスおよびil33^−/−マウスから分離した鼻粘膜上皮細胞の免疫蛍光染色を行った結果を示している。ＩＬ−３３が存在する部分は赤く染色され、ＤＡＰＩ（4',6-ジアミジノ−２−フェニルインドール）が存在する部分（細胞核）は青く染色される。

例えば、図１２の（ａ）において枠囲みした部分には赤い蛍光が強く観察されている。図１２の（ｂ）は、図１２の（ａ）に示したil33^＋/＋マウスの免疫蛍光染色結果において枠囲みした部分を拡大したものである。図１２の（ｂ）の左上の写真はバックグランドの組織構造を表し、右上の写真（「ＩＬ−３３」と表示された写真）は赤く染色されたＩＬ−３３を示す。左下の写真（「ＤＡＰ１」と表示された写真）は青く染色された細胞核を表し、右下の写真（「Merged」と表示された写真）は、上記右上の画像と左下の画像とを合成したものである。

図１２の（ｃ）は、ブタクサ花粉で感作され、ＰＢＳまたはブタクサ花粉を４日連続で点鼻したil33^＋/＋マウスから除去した鼻粘膜上皮細胞の免疫蛍光染色結果を示す。図中、明るく表示されている部分は、赤く染色されたＩＬ−３３を示し、暗く表示されている部分は、青く染色された上皮細胞以外の細胞核を表す。図１２の（ａ）〜（ｃ）においては、グループあたり１０〜１５個の鼻を用いた場合の代表的な結果を示した。

図１２の（ｄ）〜（ｆ）は、ナイーブBalb/c 野生型（ＷＴ）マウスにブタクサ花粉（２０μｌのＰＢＳに溶解したブタクサ花粉１ｍｇ）を１回点鼻し、所定の時間に上記マウスを屠殺し、鼻の組織学的検査および鼻洗浄液の回収を行った場合の結果を示している。

図１２の（ｄ）は、上記組織学的検査におけるＩＬ−３３の染色結果を示しており、before と表示されている図は上記点鼻を行う前、「１ｈ」と表示されている図は点鼻１時間後、「４ｈ」と表示されている図は点鼻４時間後の染色結果を示している。

図１２の（ｅ）は、免疫組織化学的に染色された鼻粘膜中のＩＬ−３３の定量的な画像解析を行った結果を示すものである。

図１２の（ｆ）は、鼻洗浄液中のＩＬ−３３タンパク質レベルの経時変化を示すものである。

データは、３つの独立した実験のうち代表的なものである（各時間あたり３匹のマウスを使用）。図１２において、＊はtwo-tailed Student's t-testにおいてｐ＜０．００５であることを示し、＊＊はＰ＜０．０００１であることを示す。

図１２の（ａ）、（ｂ）に示すように、免疫組織化学的な解析により、鼻上皮細胞の核内にＩＬ−３３が局在していることが明らかとなった。図１２の（ａ）に示すように、ＩＬ−３３はil33^−/−マウスの鼻粘膜には検出されなかった。図１２の（ｃ）に示すように、４日連続でブタクサ花粉を点鼻したマウス由来の鼻上皮細胞の核内におけるＩＬ−３３の発現（図１２の（ｃ）の「ＲＷ」と記載した写真に示す）は、ＰＢＳを点鼻したマウス由来の鼻上皮細胞の核内におけるＩＬ−３３の発現（図１２の（ｃ）の「ＰＢＳ」と記載した写真に示す）よりも顕著に減少していた。図中、明るく見える箇所（白く抜けたように見える箇所）がＩＬ−３３の発現を示している。このことは、ブタクサ花粉への曝露により、上皮細胞からＩＬ−３３が分泌され、鼻上皮細胞の核内におけるＩＬ−３３が減少した可能性を示唆している。

上記可能性を証明するため、ブタクサ花粉点鼻後の鼻上皮細胞におけるＩＬ−３３の発現を経時的に解析した。その結果、図１２の（ｄ）、（ｅ）に示すように、鼻上皮細胞におけるＩＬ−３３の発現は迅速に減少し、ブタクサ花粉点鼻１時間後に非常に弱くなり、その後徐々に回復した。この観察は、野生型のナイーブマウスの鼻洗浄液においてＩＬ−３３タンパク質のレベルは迅速に増加するが（図２の（ｆ））、ブタクサ花粉点鼻後のil33^−/−マウスでは増加しないこと（データは示さない）と一致している。

このように、鼻がブタクサ花粉に曝露されると、鼻上皮細胞から内因性ＩＬ−３３が迅速に誘導され、当該内因性ＩＬ−３３はアレルギー性鼻炎発症の誘導に寄与する。

〔実施例４：ＩＬ−３３によるＦｃεＲＩ^＋マスト細胞の刺激〕
アレルギー性鼻炎の即時相の症状は、アレルゲンと、アレルゲン特異的なＩｇＥとの複合体によるＦｃεＲＩの架橋後に活性化マスト細胞および好塩基球によって放出されるメディエーターにより誘導される。

アレルギー性鼻炎では、ヒスタミンがかゆみ、くしゃみおよび鼻詰まりの誘導に重要な役割を果たしている。図１の（ａ）に示すように、ブタクサ花粉で感作したil33^−/−マウスではこれらの症状は有意に減少した。

次に、活性化されたマスト細胞および好塩基球における、ＩＬ−３３の病理学的役割について検討した。当該検討のために、マスト細胞欠損マウスであるＷＢＢ６Ｆ１−Ｗ／Ｗ^Ｖマウス、好塩基球除去マウス、およびＦｃεＲＩ欠損マウスであるＦｃεＲＩ^−／−マウスを用いた。

図１３は、ＩＬ−３３がＦｃεＲＩ＋細胞からのヒスタミン放出を誘導することを示している。野生型Balb/c マウス（ＷＴ）、抗ＦｃεＲＩ抗体を投与して好塩基球を除去したBalb/c マウス（＋ＭＡＲ−１）、ＷＢＢ６ＦＩ−^＋／＋マウス（＋／＋）およびＷＢＢ６Ｆ１−Ｗ／Ｗ^Ｖ（Ｗ／Ｗ^Ｖ）マウスを、実施例１に記載の方法によってブタクサ花粉で感作し、ＰＢＳまたはブタクサ花粉を点鼻した。

くしゃみの回数は最終点鼻後すぐに１０分間測定した。結果を図１３の（ａ）に示す。外側鼻粘膜中の好酸球の数は、実施例１の図２，３に関する箇所で述べたようにカウントした。

結果を図１３の（ｂ）に示す。実施例２の図１１に関する箇所で述べたように、各マウス由来の頚部リンパ節の上清中のＩＬ−４をＥＬＩＳＡにより測定した。結果を図１３の（ｃ）に示す。データは２つの独立した実験のうち、代表的なものである（５匹のマウスの平均値およびs.e.m）。図１３の（ａ）〜（ｃ）において、＊はtwo-tailed Student's t-testにおいてｐ＜０．０５であることを示し、＊＊はＰ＜０．０１であることを示す。

ＩＬ−４（１０ｎｇ／ｍｌ）およびＳＣＦ（１００ｎｇ／ｍｌ）と共に３０日間培養した骨髄細胞を蛍光セルソーター（FACS Aria; BD Bioscience）を用いてＦｃεＲＩ^＋ｃ−ｋｉｔ^＋細胞（ＣＴＭＣ）に精製した。ＩＬ−３（１０Ｕ／ｍｌ）と共に１４日間培養した骨髄細胞は、上記蛍光セルソーターによってＦｃεＲＩ^＋ｃ−ｋｉｔ^＋細胞（ＭＭＣ）またはＦｃεＲＩ^＋ｃ−ｋｉｔ⁻細胞（好塩基球）に精製した。精製されたＣＴＭＣ，ＭＭＣおよび好塩基球によってＦｃεＲＩおよびｃ−ｋｉｔの発現をフローサイトメトリーによって解析した。

図１３の（ｄ）において枠囲みした領域は、左から、ＣＴＭＣ，ＭＭＣ，好塩基球を示しており、数字は、図１３の（ｄ）に表れている細胞の数に対するＣＴＭＣ，ＭＭＣ，好塩基球の数が占める割合（％）を示す。

図１３の（ｅ）は、精製されたＣＴＭＣ，ＭＭＣ，および好塩基球をＤｉｆｆ−Ｑｕｉｋ（登録商標）により染色した結果、およびトルイジンブルーによって染色した結果を示している。倍率はいずれも４００倍である。

図１３の（ｄ）に示された、骨髄細胞由来の、精製されたＣＴＭＣ，ＭＭＣまたは好塩基球（５×１０^４個／０．２ｍｌ／ｗｅｌｌ）を、ＦｃεＲＩを架橋して、または架橋せずに（架橋しないものを「ＣＬ⁻」、架橋したものを「ＣＬ^＋」と表示した）、ＩＬ−３のみ（２０Ｕ／ｍｌ）、またはＩＬ−３＋ＩＬ−３３（０．１−１００ｎｇ／ｍｌ）を用いて９６穴プレート中で５時間刺激した。図１３の（ｆ）は、このように調製した細胞の上清中のヒスタミンをＥＬＩＳＡによって測定した結果を示すものである。

図１３の（ｇ）は、図１３（ｄ）に示されたＣＴＭＣ，ＭＭＣおよび好塩基球によるＩＬ−３３レセプターα鎖の発現をフローサイトメトリーによって解析した結果を示すものである。図１３の（ｄ）〜（ｇ）において、データは５つの独立した実験のうち、代表的なものについて示している。

図１３の（ａ）の左側のグラフに「+MAR-1」で示すように、ブタクサ花粉で感作したコントロールのBALB/cマウスに比べて、ブタクサ花粉で感作した好塩基球除去マウスでは、くしゃみの回数が有意に減少した。

また、図１３の（ａ）の左側のグラフに示すように、ＦｃεＲＩ^−／−マウスではくしゃみの回数はさらに減少した。この減少は有意ではなかったので（ｐ＝０．１４）、好塩基球およびマスト細胞が、共にくしゃみに必須であるとまでは言えない。図１３の（ａ）の右側のグラフに示すように、マスト細胞の重要性は、ブタクサ花粉によって感作され、ブタクサ花粉を点鼻されたＷＢＢ６Ｆ１−Ｗ／Ｗ^Ｖマウスにおいて有意に減少したくしゃみの回数によって示される。

図１３の（ｂ）に示すように、好塩基球除去マウスおよびＦｃεＲＩ^−／−マウスでは、くしゃみの他に、鼻粘膜への好酸球の浸潤も有意に減少した。このことは、好塩基球または、好塩基球およびマスト細胞が好酸球の浸潤に重要であることを示唆している。

にもかかわらず、図１３の（ｃ）に示すように、ブタクサ花粉を点鼻した好塩基球除去マウス、ＦｃεＲＩ^−／−マウス、およびＷＢＢ６Ｆ１−Ｗ／Ｗ^Ｖマウス由来の頚部リンパ球は、in vitroでの刺激後、コントロールマウスによって生産されたＴｈ２サイトカインの量に匹敵する量のＴｈ２サイトカインを産生した。

この結果は、アレルギー性鼻炎においては、Ｔｈ２細胞の他に、活性化されたＦｃεＲＩ^＋マスト細胞および好塩基球が、即時相のくしゃみおよび遅発相の好酸球浸潤の両方に寄与しうることを示唆している。

マスト細胞および好塩基球から放出されるヒスタミンによる感覚神経の刺激はくしゃみを誘導する（Baraniuk, J.N. J Allergy Clin Immunol 90, 1045-1050 (1992)、Sarin, S., et al J Allergy Clin Immunol 118, 999-1016 (2006)）。il33^−/−マウスがくしゃみの誘導を抑制するメカニズムについて検討するため、マスト細胞および好塩基球からのヒスタミン放出に対するＩＬ−３３の役割を検討した。

マスト細胞は一般に結合組織型マスト細胞（ＣＴＭＣ）と粘膜型マスト細胞（ＭＭＣ）に分類され、共にアレルギー性鼻炎患者の鼻粘膜に存在する。今日までに、どのタイプのマスト細胞または好塩基球がアレルギー性鼻炎において重要な役割を果たしているのかについては意見が分かれている。そこで、マウスの骨髄細胞由来のＣＴＭＣ，ＭＭＣ，および好塩基球を増やし、これらの細胞がin vitroでＩＬ−３３に応答してヒスタミンを放出する能力について検討した。

図１３の（ｄ）に示すように、ＩＬ−３のみと共に１４日間培養し、高度に精製した、骨髄細胞由来のＦｃεＲＩ^＋ｃ−Ｋｉｔ^＋またはＦｃεＲＩ^＋ｃ−Ｋｉｔ⁻の集団がＭＭＣまたは好塩基球である（それぞれ、Kondo, Y. et al. Int Immunol 20, 791-800 (2008)、Yoshimoto, T. et al. Nat Immunol 10, 706-712 (2009)を参照）。同時に、図１３の（ｄ）に示すように、ＩＬ−４およびＳＣＦと共に３０日間培養したマウス骨髄細胞由来のＦｃεＲＩ^＋ｃ−Ｋｉｔ^＋細胞を精製した。

図１３の（ｅ）に示すように、光学顕微鏡による観察およびトルイジンブルーを用いた陽性染色によって、ＩＬ−４およびＳＣＦによって誘導され、精製されたＦｃεＲＩ^＋ｃ−Ｋｉｔ^＋細胞がＣＴＭＣ（Karimi, K. et al., Exp Hematol 27, 654-662 (1999)）であることが明らかとなった。

図１３の（ｆ）に示すように、ＩＬ−３によって刺激したＣＴＭＣおよび好塩基球は、十分量のヒスタミンを放出したが、ヒスタミンの産生がＩＬ−３３の存在によって増強されることはなかった。ＦｃεＲＩを架橋すると、ＣＴＭＣ，ＭＭＣ，および好塩基球からのヒスタミン放出が有意に増強された。さらに、ＣＴＭＣ、ＭＭＣおよび好塩基球はＩＬ−３３レセプターα（ＩＬ−３３Ｒα）鎖を発現しているが、図１３の（ｆ），（ｇ）に示すように、ＣＴＭＣおよびＭＭＣからのヒスタミン放出がＩＬ−３３の濃度依存的に増強され、好塩基球からのヒスタミン放出は増強されなかった。

これらの結果は、ブタクサ花粉の点鼻によって産生された内因性ＩＬ−３３がＣＴＭＣおよびＭＭＣを刺激し、ＩｇＥ−ブタクサ花粉を備えたＦｃεＲＩが架橋された条件下でヒスタミンの放出を増強することを示唆している。

〔実施例５：ＩＬ−３３欠損マウスにおいて減少する、ブタクサ花粉により誘導される鼻への好塩基球浸潤〕
本発明にかかる、ブタクサ花粉によりアレルギー性鼻炎を誘導したモデルマウスの鼻粘膜にはＣＴＭＣおよびＭＭＣが存在することが、組織学的検討により明らかとなった。ＣＴＭＣおよびＭＭＣの数はＰＢＳまたはブタクサ花粉の点鼻によっては変化しなかった（データ示さず）。

しかしながら、ブタクサ花粉で感作され、ブタクサ花粉を点鼻されたマウス（本発明にかかるアレルギー性鼻炎モデルマウス）の鼻粘膜には、図１４に示すように、脱顆粒したＣＴＭＣが観察された。図１４の（ａ）は、ブタクサ花粉で感作され、ブタクサ花粉を点鼻された、Balb/cをバックグラウンドとするil33^＋／＋マウス（本発明にかかるアレルギー性鼻炎モデルマウス）由来の鼻の冠状切片をトルイジンブルーで染色した結果を示し、図１４の（ｂ）はアルシアンブルーで染色した結果を示すものである。

対照的に、ブタクサ花粉で感作され、ＰＢＳを点鼻されたマウスの鼻粘膜中の好塩基球の数は非常に少なかった。

しかしながら、マウス好塩基球に特異的なモノクローナル抗体（クローン；ＴＵＧ８）を用いた免疫組織化学的染色によって示されるように（図１５の（ａ），（ｂ））、ブタクサ花粉の点鼻によって、ブタクサ花粉で感作されたマウスの鼻粘膜中の好塩基球数が特に鼻の後部で有意に増加した（鼻の前部では１８．５±４．５であったのに対し、鼻の後部では３４．５±１０．６であった）。

図１５は、ブタクサ花粉によって誘導された内因性ＩＬ−３３が鼻への好塩基球の浸潤を制御することを示している。Balb/cをバックグラウンドとするil33^＋／＋マウスおよびil33^−／−マウス、Balb/cの野生型（ＷＴ）、およびBalb/cをバックグラウンドとするＦｃεＲＩ−欠損（ＦｃεＲＩ^−／−）マウスをブタクサ花粉で感作し、実施例１で述べた方法により、ＰＢＳまたはブタクサ花粉を点鼻した。

図２の（ａ）〜（ｃ）のところで述べたように、ブタクサ花粉で感作し、ＰＢＳまたはブタクサ花粉を点鼻したil33^＋／＋マウスの鼻後部の切片を、抗ｍＭＣＰ−８抗体ＴＵＧ８を用いて染色した。結果を図１５の（ａ）に示した。図１５の（ａ）では、１グループあたり１０〜１５の鼻の代表的結果を示している。

図１５の（ｂ）は、上記鼻後部の切片中の好塩基球数をカウントした結果を示している。図中、ＮＤは検出されなかったことを示す。図１５の（ｂ）では、２または３の独立した実験のうち代表的なデータを示している（５匹のマウスの平均値およびs.e.m.）。＊はtwo-tailed Student's t-testにおいてｐ＜０．０５であることを示す。

図１５の（ｃ）は、ナイーブマウス（左側のグラフ）またはブタクサ花粉で感作したBalb/cの野生型（ＷＴ）（右側のグラフ）について、鼻の前方の切片および後方の切片における好塩基球の浸潤の経時変化を示すものである。

ナイーブマウスおよびブタクサ花粉で感作したBalb/cの野生型（ＷＴ）マウスは、ブタクサ花粉（２０μｌのＰＢＳに溶解させたブタクサ花粉１ｍｇ）を１回点鼻し、点鼻後図１５の（ｃ）の横軸に記載した時間にマウスを屠殺し、抗ｍＭＣＰ−８抗体ＴＵＧ８を用いた免疫組織化学的染色を行った。データは２つの独立した実験（各時間あたりに３匹のマウス）の代表的データである。＊は、ブタクサ花粉点鼻前（０ｈ）と比較して、two-tailed Student's t-testにおいてｐ＜０．０５であることを示す。

il33^−/−マウスまたはＦｃεＲ^−/−マウスの鼻粘膜中の好塩基球浸潤の程度は、図１５の（ｂ）に示すように、コントロールより有意に低かった。

次に、ブタクサ花粉点鼻後の鼻粘膜中の、好塩基球浸潤の経時変化につき検討した。図１５の（ｃ）に示すように、ブタクサ花粉で感作された野生型マウスの鼻粘膜中では、特に鼻の後部で、点鼻後２４時間をピークとして有意に好塩基球浸潤が増加した。一方、ナイーブマウスではそのような増加は見られなかった。これらの結果は、アレルギー性鼻炎における好塩基球の浸潤が、ブタクサ花粉によって誘導された内因性ＩＬ−３３によって調節され、ＩＬ−３３はＴｈ２細胞とＦｃεＲＩ^＋細胞の活性を順に増強することが示唆された。

〔実施例６：ＩＬ−３３によるＦｃεＲＩ^＋細胞の刺激によって生産される、好酸球および好塩基球の遊走因子〕
図３、図１３の（ｂ）、図１５の（ｂ）に示すように、ブタクサ花粉によって感作され、ブタクサ花粉を点鼻されたil33^−/−マウスまたはＦｃεＲ^−/−マウスの鼻粘膜への好酸球および好塩基球の浸潤は、コントロールマウスよりも有意に低かった。このことは、ＩＬ−３３が刺激したＦｃεＲＩ^＋細胞（ＣＴＭＣ，ＭＭＣおよび好塩基球）が好酸球および／または好塩基球の浸潤に寄与していることを示唆している。

炎症組織への好酸球および好塩基球の浸潤におけるサイトカインおよびケモカインの役割については周知である。そこで、ＣＴＭＣ，ＭＭＣおよび好塩基球がＩＬ−３３とＦｃεＲＩの架橋とに応答してサイトカインおよびケモカインを産生する能力について検討した。

図１６は、ＩＬ−３３が好酸球遊走因子および好塩基球遊走因子の産生を誘導することを示している。図１３の（ｄ）に示され、骨髄に由来し、精製されたＣＴＭＣ，ＭＭＣ，または好塩基球（５×１０^４個／０．２ｍｌ／ｗｅｌｌ）を、ＦｃεＲＩを架橋し、ＩＬ−３（２０Ｕ／ｍｌ）のみ、または、ＩＬ−３（２０Ｕ／ｍｌ）＋ＩＬ−３３（０．１−１００ｎｇ／ｍｌ）を用いて９６穴プレート中で１６時間刺激した。

上清を回収し、上記Ｂｉｏ−Ｐｌｅｘシステムを用いてサイトカインおよびケモカインを測定した。結果を図１６の（ａ）〜（ｊ）に示す。縦軸はサイトカインまたはケモカインの濃度を示している。データは、３つの独立した実験のうち代表的データを示すものである（平均値およびs.e.m.）。

図１６に示すように、ＩＬ−３の存在下でＣＴＭＣ上およびＭＭＣ上のＦｃεＲＩを架橋すると、ＩＬ−１βおよびエオタキシンの産生が強く誘導された。しかしながら、図１６に示すように、上記ＣＴＭＣおよびＭＭＣは、さらにＩＬ−３３で刺激すると、ＩＬ−９、ＩＬ−１３、ランテス、ＧＭ−ＣＳＦ、ＭＩＰ−１α、ＭＣＰ−１を強く産生した。すでに報告されているように、好塩基球は測定した全てのサイトカインおよびケモカインを強く産生した（Kondo, Y. et al., Int Immunol 20, 791-800 (2008) 、Yoshimoto, T. et al. Nat Immunol 10, 706-712 (2009)）。

エオタキシンとランテスとの組み合わせ、並びにランテス、ＭＩＰ−１αおよびＭＣＰ−１の組み合わせは、それぞれ好酸球、好塩基球の遊走因子として作用することが既知の事実である。ブタクサ花粉により誘導された内因性ＩＬ−３３は、好酸球および好塩基球の遊走因子の産生を誘導することによって、好酸球および好塩基球の浸潤に重要な役割を果たすと考えられる。

〔実施例７：アレルギー性鼻炎患者の鼻上皮細胞におけるＩＬ−３３発現の減少〕
アレルギー性鼻炎モデルマウスとアレルギー性鼻炎患者との相関性を明らかにするため、アレルギー性鼻炎患者および健常者から採取した鼻上皮細胞におけるＩＬ−３３タンパク質の発現について検討した。

図１７は、アレルギー性鼻炎患者の鼻上皮細胞ではＩＬ−３３の発現が減少することを示している。図１７の（ａ）は健常人の鼻粘膜を免疫蛍光染色した結果を、図１７の（ｂ）はアレルギー性鼻炎患者の鼻粘膜を免疫蛍光染色した結果を示している。ＩＬ−３３が存在する部分は赤く染色され、ＤＡＰＩ（4',6-ジアミジノ−２−フェニルインドール）が存在する部分（細胞核）は青く染色される。

図１７の（ｃ）は、免疫組織化学的に染色された鼻粘膜中のＩＬ−３３を定量的に画像解析した結果を示している。＊はtwo-tailed Student's t-testにおいてｐ＜０．００５であることを示す。

ＩＬ−３３は健常者３人からのサンプル由来の鼻上皮細胞の核内に強く発現していたが（図１７の（ａ））、アレルギー性鼻炎患者５人の鼻上皮細胞中ではＩＬ−３３の発現は減少したか、検出できなかった（図１７の（ｂ））。

なお、検討した健常者５人全ての鼻上皮細胞中にＩＬ−３３が発現し、アレルギー性鼻炎患者１０人全ての鼻上皮細胞中ではＩＬ−３３が減少していた。図１７の（ａ）と（ｂ）は、その代表例を示すものである。定量的な解析を行ったところ、アレルギー性鼻炎患者の鼻上皮細胞でのＩＬ−３３の発現は有意に減少していた（図１７の（ｃ））。

これらの結果は、アレルギー性鼻炎患者の鼻がアレルゲンに連続的に曝露されると、鼻上皮細胞からの内因性ＩＬ−３３の放出が誘導され、アレルギー性鼻炎患者の鼻上皮細胞でのＩＬ−３３の発現が減少するということを示しており、アレルギー性鼻炎の誘導における鼻ＩＬ−３３の関与を示している。

〔実施例８：ブタクサ花粉により誘導されたアレルギー性鼻炎の治療剤〕
in vivoでＩＬ−３３をブロックするために、実施例１で作製したアレルギー性鼻炎モデルマウスに対し、ブタクサ花粉と、ｓＳＴ２−Ｆｃ融合タンパク質（デコイＩＬ−３３Ｒ）またはヒトＩｇＧ（ｈ−ＩｇＧ）とを、それぞれが２０μｇ／ｄｏｓｅとなるようにして４日連続で点鼻し、ｓＳＴ２−Ｆｃ融合タンパク質（デコイＩＬ−３３Ｒ）の点鼻によってアレルギー性鼻炎に対する防御効果が得られるかどうかを検討した。最終点鼻後すぐに、マウスがくしゃみをした回数を盲検法で１０分間測定した。

図１８は、ＩＬ−３３のデコイレセプター（デコイＩＬ−３３Ｒ）、つまりＩＬ−３３の阻害剤を点鼻すると、即時相のくしゃみ回数が有意に抑制されることを示している。図１８に示すように、ｈ−ＩｇＧで処理したマウスと比べて、ｓＳＴ２−Ｆｃ融合タンパク質で処理したマウスでは、有意にくしゃみの回数が減少した。ｓＳＴ２−Ｆｃ融合タンパク質の点鼻は、ブタクサ花粉によって鼻粘膜から誘導された内因性ＩＬ−３３の生理活性を弱め、結果としてくしゃみを抑制したものと考えられる。

〔実施例９：既存のアレルギー性鼻炎治療剤の効果判定〕
既存のアレルギー性鼻炎治療剤である、フルチカゾンフランカルボン酸エステル（Avamys（登録商標））を投与するため、ブタクサ花粉で感作したマウスに、ブタクサ花粉（２０μｌのＰＢＳに溶解したブタクサ花粉１ｍｇ）とフルチカゾンフランカルボン酸エステル（２．５μｇ／１回点鼻）とを１日１回、４日連続で点鼻した。

最終点鼻後すぐに、くしゃみの回数を１０分間盲検法により測定した。最終点鼻の２４時間後に、下大静脈から末梢血を回収し、血清を遠心分離によって調製した。次にマウスを屠殺し、鼻および頚部リンパ節を分離し、さらなる組織学的および免疫学的解析に供した。

図１９は、フルチカゾンフランカルボン酸エステルによるアレルギー性鼻炎の治療効果を判定した結果を示す図である。図１９の（ａ）〜（ｃ）において、横軸の「ＰＢＳ」はブタクサ花粉で感作したマウスにＰＢＳを点鼻した試験区を示す。横軸に「ＲＷ」と示されている試験区において、白抜きのグラフはフルチカゾンフランカルボン酸エステル未点鼻でブタクサ花粉のみ点鼻の試験区を表し、黒塗りのグラフはブタクサ花粉およびフルチカゾンフランカルボン酸エステルを点鼻した試験区を表す。

図１９の（ｄ）のうち、「コントロール」と表示したものは、ブタクサ花粉で感作し、フルチカゾンフランカルボン酸エステルを点鼻せず、ブタクサ花粉のみを点鼻したマウスの鼻中隔の写真である。「フルチカゾンフランカルボン酸エステル」と表示したものは、ブタクサ花粉で感作し、ブタクサ花粉およびフルチカゾンフランカルボン酸エステルを点鼻したマウスの鼻中隔の写真である。

図１９に示すように、フルチカゾンフランカルボン酸エステルの点鼻は、鼻粘膜における好酸球の浸潤（図１９の（ｂ））、杯細胞の増殖（図１９の（ｄ））だけでなく、くしゃみの回数（図１９の（ａ））、Ｔｈ２サイトカインの産生（図１９の（ｃ））を有意に減少させた。

このように、本発明にかかるアレルギー性鼻炎モデル動物は、既存のアレルギー性鼻炎治療剤の治療効果判定にも用いることができることが分かる。

なお本発明は、以上説示した各構成に限定されるものではなく、特許請求の範囲に示した範囲で種々の変更が可能であり、異なる実施形態や実施例にそれぞれ開示された技術的手段を適宜組み合わせて得られる実施形態や実施例についても本発明の技術範囲に含まれる。また、本明細書中に記載された学術文献および特許文献の全てが、本明細書中において参考として援用される。

本発明は、ヒトのアレルギー性鼻炎の病態に酷似したアレルギー性鼻炎をモデル動物で発症させることを可能にするものである。したがって、本発明は、アレルギー性鼻炎の発症メカニズムの解明、アレルギー性鼻炎の新規治療薬・治療方法などの開発、既存のアレルギー性鼻炎治療剤の治療効果判定などに好適に用いることができる。すなわち、本発明は、医療分野、医薬品分野をはじめ、幅広い分野に利用可能である。

Claims (9)

1. アレルギー性鼻炎モデル動物に被検物質を投与し、アレルギー性鼻炎の改善効果を検定する工程を含み、
   当該アレルギー性鼻炎の改善効果を検定する工程が、上記被検物質を投与する前の上記アレルギー性鼻炎モデル動物の鼻汁中におけるインターロイキン３３の量と、上記被検物質を投与した後の上記アレルギー性鼻炎モデル動物の鼻汁中におけるインターロイキン３３の量とを比較する工程を含み、
   当該アレルギー性鼻炎モデル動物は、鼻粘膜上皮細胞核内にインターロイキン３３を含有するヒト以外の哺乳動物をブタクサ花粉で感作した後に、ブタクサ花粉を当該モデル動物の鼻腔内に投与することによって得られることを特徴とする、アレルギー性鼻炎治療剤のスクリーニング方法。
2. 上記アレルギー性鼻炎モデル動物は、鼻粘膜上皮細胞の核内におけるインターロイキン３３の量が、ブタクサ花粉を鼻腔内投与する前の鼻粘膜上皮細胞の核内におけるインターロイキン３３の量よりも少ないことを特徴とする、請求項１に記載のアレルギー性鼻炎治療剤のスクリーニング方法。
3. 上記アレルギー性鼻炎モデル動物は、インターロイキン３３を中和することによって、アレルギー性鼻炎の症状が改善されることを特徴とする、請求項１または２に記載のアレルギー性鼻炎治療剤のスクリーニング方法。
4. 請求項１から３のいずれか１項に記載の方法を行うためのアレルギー性鼻炎治療剤のスクリーニングキットであって、
   被検物質を投与したアレルギー性鼻炎モデル動物の鼻汁を採取する鼻汁採取手段と、上記鼻汁に含まれるインターロイキン３３の定量を行うための検体を調製するために用いられる検体調製手段とを備えることを特徴とする、アレルギー性鼻炎治療剤のスクリーニングキット。
5. アレルギー性鼻炎モデル動物に被検物質を投与し、アレルギー性鼻炎の改善効果を検定する工程を含み、
   当該アレルギー性鼻炎の改善効果を検定する工程が、上記被検物質を投与する前の上記アレルギー性鼻炎モデル動物の鼻汁中におけるインターロイキン３３の量と、上記被検物質を投与した後の上記アレルギー性鼻炎モデル動物の鼻汁中におけるインターロイキン３３の量とを比較する工程を含み、
   当該アレルギー性鼻炎モデル動物は、鼻粘膜上皮細胞核内にインターロイキン３３を含有するヒト以外の哺乳動物をブタクサ花粉で感作した後に、ブタクサ花粉を当該モデル動物の鼻腔内に投与することによって得られることを特徴とする、アレルギー性鼻炎治療剤の治療効果判定方法。
6. 上記アレルギー性鼻炎モデル動物は、鼻粘膜上皮細胞の核内におけるインターロイキン３３の量が、ブタクサ花粉を鼻腔内投与する前の鼻粘膜上皮細胞の核内におけるインターロイキン３３の量よりも少ないことを特徴とする、請求項５に記載のアレルギー性鼻炎治療剤の治療効果判定方法。
7. 上記アレルギー性鼻炎モデル動物は、インターロイキン３３を中和することによって、アレルギー性鼻炎の症状が改善されることを特徴とする、請求項５または６に記載のアレルギー性鼻炎治療剤の治療効果判定方法。
8. 上記アレルギー性鼻炎の改善効果を検定する工程は、上記比較する工程の後に、上記被検物質を投与する前の上記アレルギー性鼻炎モデル動物の鼻汁中におけるインターロイキン３３の量と比較して、上記被検物質を投与した後の上記アレルギー性鼻炎モデル動物の鼻汁中におけるインターロイキン３３の量が有意に低ければ、当該被検物質にはアレルギー性鼻炎の改善効果があると判断する工程を含んでいることを特徴とする、請求項１から３のいずれか１項に記載のアレルギー性鼻炎治療剤のスクリーニング方法。
9. 上記アレルギー性鼻炎の改善効果を検定する工程は、上記比較する工程の後に、上記被検物質を投与する前の上記アレルギー性鼻炎モデル動物の鼻汁中におけるインターロイキン３３の量と比較して、上記被検物質を投与した後の上記アレルギー性鼻炎モデル動物の鼻汁中におけるインターロイキン３３の量が有意に低ければ、当該被検物質にはアレルギー性鼻炎の改善効果があると判断する工程を含んでいることを特徴とする、請求項５から７のいずれか１項に記載のアレルギー性鼻炎治療剤の治療効果判定方法。