JP5711877B2 - Method for detecting cancer malignancy and diagnostic agent for cancer malignancy - Google Patents
Method for detecting cancer malignancy and diagnostic agent for cancer malignancy Download PDFInfo
- Publication number
- JP5711877B2 JP5711877B2 JP2009137643A JP2009137643A JP5711877B2 JP 5711877 B2 JP5711877 B2 JP 5711877B2 JP 2009137643 A JP2009137643 A JP 2009137643A JP 2009137643 A JP2009137643 A JP 2009137643A JP 5711877 B2 JP5711877 B2 JP 5711877B2
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- antibody
- glca
- glcnh
- cancer
- malignancy
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Expired - Fee Related
Links
Description
本発明は、癌の悪性度の検知方法及び癌の悪性度の診断剤に関する。 The present invention relates to a method for detecting cancer malignancy and a diagnostic agent for cancer malignancy.
従来、増殖の激しい細胞や生物学的悪性度の高い癌細胞を免疫組織的に検出する方法として、例えばＫｉ−６７タンパク質を抗体で染色し検出する方法（非特許文献１）が知られている。Ｋｉ−６７タンパク質の検出には、あらかじめ試料をマイクロオーブンで前処理する等の操作が必要であるなど、操作の迅速性の面で改善の余地がある。
また、染色体やＤＮＡを指標に癌の悪性度を判別する方法も知られているが（特許文献１、特許文献２）、ハイブリダイゼーション等の操作が必要であり、迅速性・簡便性等の面で改善の余地がある。
また、特定のＮ型糖鎖を指標として膀胱癌の悪性度を診断する方法（特許文献３）や、ヘパラン硫酸プロテオグリカン遺伝子を包含する多種類の遺伝子群のなかから選択された少なくとも８種類の遺伝子の発現量を評価することによる胃癌の悪性度の評価方法（特許文献４）も知られているが、ヘパラン硫酸糖鎖自体を指標とするものではない。
Conventionally, as a method for immunologically detecting rapidly proliferating cells or cancer cells with high biological malignancy, for example, a method for detecting Ki-67 protein by staining with an antibody (Non-patent Document 1) is known. . For detection of Ki-67 protein, there is room for improvement in terms of speed of operation, such as pre-treatment of the sample in a micro-oven in advance.
In addition, although a method for discriminating the malignancy of cancer using chromosomes or DNA as an index is known (Patent Documents 1 and 2), operations such as hybridization are required, and aspects such as rapidity and simplicity are required. There is room for improvement.
In addition, a method for diagnosing bladder cancer malignancy using a specific N-type sugar chain as an index (Patent Document 3), or at least 8 genes selected from a variety of genes including heparan sulfate proteoglycan genes A method for evaluating the malignancy of gastric cancer by evaluating the expression level of the gastric cancer (Patent Document 4) is also known, but heparan sulfate sugar chain itself is not used as an index.
ヘパラン硫酸プロテオグリカンは、通常、細胞膜や基底膜などの細胞外マトリクスに存在している。ヘパラン硫酸糖鎖に対するモノクローナル抗体の一つとしてＪＭ４０３が知られており、このモノクローナル抗体は、ヘパラン硫酸糖鎖分子中のＧｌｃＡ−ＧｌｃＮＨ3 +構造を認識することが知られている。フローサイトメトリーを用いた解析により、この抗体は、扁平上皮癌由来細胞株であるＨＳＣ−４株及びＨＯ−１Ｎ−１株、大腸癌由来細胞株であるＬＳ１７４Ｔ株及びＣ−１株の細胞表面に結合することが知られている（特許文献５）。しかしながら、ＪＭ４０３の結合性が癌と正常細胞で異なるということは示されておらず、この抗体が癌の診断に用いることができるかどうかは不明であった。 Heparan sulfate proteoglycans are usually present in extracellular matrices such as cell membranes and basement membranes. JM403 is known as one of the monoclonal antibodies against heparan sulfate sugar chain, and this monoclonal antibody is known to recognize the GlcA-GlcNH 3 + structure in the heparan sulfate sugar chain molecule. According to the analysis using flow cytometry, this antibody was obtained from cell surfaces of HSC-4 and HO-1N-1 strains, which are cell lines derived from squamous cell carcinoma, and LS174T and C-1 strains, which are cell lines derived from colon cancer. It is known to bind to (Patent Document 5). However, JM403 binding has not been shown to be different between cancer and normal cells, and it was unclear whether this antibody could be used for cancer diagnosis.
本発明は、癌の悪性度の新たな検知法を提供することを課題とする。 An object of the present invention is to provide a new method for detecting the malignancy of cancer.
本発明者らは鋭意検討を重ねた結果、悪性度の高い癌組織ではヘパラン硫酸糖鎖が意外なことに細胞質内に存在していること、しかもそのヘパラン硫酸糖鎖は、浸潤性癌であるか非浸潤性であるかを問わず極めて特徴的な二糖構造を保持していることを見出し、この知見を癌の悪性度の検知方法に応用して、本発明に至った。 As a result of intensive studies, the present inventors have found that heparan sulfate sugar chains are unexpectedly present in the cytoplasm in highly malignant cancer tissues, and that the heparan sulfate sugar chains are invasive cancers. It was found that it retains a very characteristic disaccharide structure regardless of whether it is non-invasive or not, and this finding was applied to a method for detecting the malignancy of cancer, leading to the present invention.
すなわち本発明は、癌組織の細胞質内に存在するヘパラン硫酸糖鎖分子中のＧｌｃＡ−ＧｌｃＮＨ3 +構造の存在の程度を検出するステップを含む、癌の悪性度の検知方法（以下、「本発明方法」という。）を提供する。
（ただし、前記構造におけるＧｌｃＡはＤ−グルクロン酸残基を、ＧｌｃＮＨ3 +はＤ−グルコサミン残基を、−はグリコシド結合をそれぞれ示す。以下同じ。）
この検出は、免疫組織染色法により行われることが好ましい。またその場合、ヘパラン硫酸糖鎖分子中のＧｌｃＡ−ＧｌｃＮＨ3 +構造の検出は、当該ＧｌｃＡ−ＧｌｃＮＨ3 +構造に結合する抗体を用いて行われることが好ましい。また、このような抗体はＪＭ４０３抗体であることが好ましい。
また、検知の対象となる癌組織は、乳癌組織であることが好ましく、乳管癌組織であることがより好ましい。
また、本発明は、ＧｌｃＡ−ＧｌｃＮＨ3 +構造に結合する抗体を含む癌の悪性度の診断剤（以下、「本発明診断剤」という。）を提供する。ここで、ＧｌｃＡ−ＧｌｃＮＨ3 +構造に結合する抗体はＪＭ４０３抗体であることが好ましく、癌は乳癌であることが好ましい。
That is, the present invention relates to a method for detecting the malignancy of cancer (hereinafter referred to as “the present invention”), which comprises the step of detecting the presence of a GlcA-GlcNH 3 + structure in a heparan sulfate sugar chain molecule present in the cytoplasm of cancer tissue. Method ").
(However, GlcA in the above structure represents a D-glucuronic acid residue, GlcNH 3 + represents a D-glucosamine residue, and − represents a glycosidic bond. The same shall apply hereinafter.)
This detection is preferably performed by immunohistochemical staining. The case, detection of GlcA-GlcNH 3 + structure in heparan sulfate sugar chain molecules is preferably performed using an antibody that binds to the GlcA-GlcNH 3 + structure. Such an antibody is preferably a JM403 antibody.
The cancer tissue to be detected is preferably a breast cancer tissue, and more preferably a breast cancer tissue.
The present invention also provides a diagnostic agent for malignancy of cancer (hereinafter referred to as “the diagnostic agent of the present invention”) comprising an antibody that binds to a GlcA-GlcNH 3 + structure. Here, the antibody binding to the GlcA-GlcNH 3 + structure is preferably JM403 antibody, and the cancer is preferably breast cancer.
本発明方法は、癌の悪性度を簡便、迅速かつ安価に検知することができ、極めて有用である。従来、特別な訓練・経験を積んだ専門の病理医が、病理組織における細胞の大きさ、形態その他の病理組織学的特徴を肉眼的に観察し、知識・経験に裏打ちされた総合的考察のもとに癌の悪性度を判定してきた。本発明方法を用いることにより、このような専門的な訓練・経験のない者であっても簡便、迅速かつ容易に、癌の悪性度を検知することができ、極めて有用である。
The method of the present invention can detect the malignancy of cancer simply, quickly and inexpensively, and is extremely useful. Traditionally, specialized pathologists with special training and experience have observed macroscopically the cell size, morphology and other histopathological features in histopathology, and have comprehensive consideration backed by knowledge and experience. Based on the malignancy of cancer. By using the method of the present invention, even a person who does not have such specialized training / experience can detect the malignancy of cancer easily, quickly and easily, which is extremely useful.
＜１＞癌の悪性度の検知方法
本発明方法は、癌組織の細胞質内に存在するヘパラン硫酸糖鎖分子中のＧｌｃＡ−ＧｌｃＮＨ3 +構造の存在の程度を検出するステップを含む、癌の悪性度の検知方法である。
<1> Method for Detecting Cancer Malignancy The method of the present invention comprises a step of detecting the degree of presence of a GlcA-GlcNH 3 + structure in a heparan sulfate sugar chain molecule present in the cytoplasm of a cancer tissue. It is a method of detecting the degree.
本発明方法における「癌組織」は、癌の部位や種類に応じて、癌患者又は癌の疑いがある者から通常の方法で摘出された組織を用いることができる。すなわち、本明細書にいう「癌組織」は、癌であることが確定した組織のみならず、癌であることが疑われる組織をも包含する概念である。
検知の対象となる癌組織は、特に限定はされないが、乳癌組織であることが好ましく、なかでも乳管癌組織であることが好ましい。
As the “cancer tissue” in the method of the present invention, a tissue extracted by a usual method from a cancer patient or a person suspected of cancer can be used according to the site and type of cancer. That is, the “cancer tissue” referred to in this specification is a concept including not only a tissue that has been confirmed to be cancer, but also a tissue that is suspected to be cancer.
The cancer tissue to be detected is not particularly limited, but is preferably a breast cancer tissue, and in particular, a breast cancer tissue.
本発明方法では、悪性度の検知対象とする癌組織の、細胞質内におけるヘパラン硫酸糖鎖分子中のＧｌｃＡ−ＧｌｃＮＨ3 +構造を検出することが必要となる。細胞質内におけるかかる構造を検出する方法は特に限定されないが、細胞質内の状態を最も忠実に反映させるべく、免疫組織染色法により行われることが好ましい。免疫組織染色法は、組織切片の作成、抗原抗体反応（一次）、洗浄、抗原抗体反応（二次）、洗浄、発色等の一連の各ステップを含め、それ自体公知の、通常の方法で行うことができる。 In the method of the present invention, it is necessary to detect the GlcA-GlcNH 3 + structure in the heparan sulfate sugar chain molecule in the cytoplasm of the cancer tissue to be detected for malignancy. A method for detecting such a structure in the cytoplasm is not particularly limited, but it is preferably performed by an immunohistochemical staining method in order to reflect the state in the cytoplasm most faithfully. The immunohistochemical staining method is performed by a conventional method known per se including a series of steps such as preparation of a tissue section, antigen-antibody reaction (primary), washing, antigen-antibody reaction (secondary), washing, and color development. be able to.
また、上記構造の検出は、かかる構造が特異的に検出できる方法である限りにおいて特に限定されないが、当該ＧｌｃＡ−ＧｌｃＮＨ3 +構造に結合する抗体を用いて行われることが好ましい。 Moreover, the detection of the structure is not particularly limited as long as the structure can be specifically detected, but it is preferably performed using an antibody that binds to the GlcA-GlcNH 3 + structure.
抗体の種類は特に制限されず、モノクローナル抗体であっても、ポリクローナル抗体であってもよいが、モノクローナル抗体がより好ましい。モノクローナル抗体はそのフラグメントであってもよい。モノクローナル抗体のフラグメントとしては、例えば、Ｆ（ａｂ’）2化抗体、Ｆａｂ化抗体、短鎖抗体（ｓｃＦｖ）、ダイアボディ（Ｄｉａｂｏｄｉｅｓ）及びミニボディ（Ｍｉｎｉｂｏｄｉｅｓ）などが挙げられる。
モノクローナル抗体の免疫グロブリンクラスは特に制限されないが、IgMであることが好ましく、IgM, κ-chainであることがより好ましい。
The type of antibody is not particularly limited and may be a monoclonal antibody or a polyclonal antibody, but a monoclonal antibody is more preferable. The monoclonal antibody may be a fragment thereof. Examples of the monoclonal antibody fragment include F (ab ′) 2 antibody, Fab antibody, short chain antibody (scFv), diabody, and minibody.
The immunoglobulin class of the monoclonal antibody is not particularly limited, but is preferably IgM, and more preferably IgM or κ-chain.
上記モノクローナル抗体は、例えば、タンパク質とＧｌｃＡ−ＧｌｃＮＨ3 +とを化学的に結合させてなる物質を抗原として免疫した哺乳動物（好ましくはマウス）の抗体産生細胞（好ましくはリンパ球）と哺乳動物（好ましくはマウス）のミエローマ細胞との細胞融合によりハイブリドーマを作製し、得られたハイブリドーマからヘパラン硫酸糖鎖分子中のＧｌｃＡ−ＧｌｃＮＨ3 +構造に特異的に結合するモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマを選択し、該ハイブリドーマの培養上清からモノクローナル抗体を回収することにより得ることができる。 The monoclonal antibody may be, for example, an antibody-producing cell (preferably lymphocyte) and a mammal (preferably lymphocyte) and a mammal (preferably a lymphocyte) and a mammal (preferably a mouse) immunized with a substance obtained by chemically binding a protein and GlcA-GlcNH 3 + as an antigen. Preferably, a hybridoma is produced by cell fusion with myeloma cells of a mouse, and a hybridoma that produces a monoclonal antibody that specifically binds to a GlcA-GlcNH 3 + structure in a heparan sulfate sugar chain molecule is selected from the obtained hybridoma. The monoclonal antibody can be recovered from the culture supernatant of the hybridoma.
以下に、モノクローナル抗体を得るための方法を詳細に示す。
モノクローナル抗体を得るための第一段階としては、抗体を産生する単クローンハイブリドーマを確立することが挙げられる。このハイブリドーマを確立する方法の具体的詳細は実施例で示すが、簡単には次の３工程からなる。
1.免疫
2.細胞融合
3. ハイブリドーマの選択と単クローン化
Below, the method for obtaining a monoclonal antibody is shown in detail.
The first step in obtaining a monoclonal antibody includes establishing a monoclonal hybridoma that produces the antibody. Specific details of the method for establishing this hybridoma are shown in the Examples, but it is simply composed of the following three steps.
1.immunity
2.Cell fusion
3. Hybridoma selection and single cloning
１．免疫
免疫の工程で用いる抗原は、タンパク質とＧｌｃＡ−ＧｌｃＮＨ3 +そのもの、あるいはその繰り返し構造（ＧｌｃＡ−ＧｌｃＮＨ3 +）ｎ （ここでいうｎは1以上の自然数）よりなる糖鎖、あるいはＧｌｃＡ−ＧｌｃＮＨ3 +そのもの、あるいはその繰り返し構造（ＧｌｃＡ−ＧｌｃＮＨ3 +）ｎ （ここでいうｎは1以上の自然数）よりなる糖鎖を含む糖鎖とを化学的に結合させてなる物質が好ましい。上記タンパク質は、ウシ血清アルブミン（以下、「ＢＳＡ」という。）又はヘモシアニン（以下、「ＫＬＨ」という。）であることが好ましい。
例えば、ＧｌｃＡ−ＧｌｃＮＨ3 +またはその繰り返し構造とＮ−スクシンイミジル−３−（２−ピリジルジチオ）プロピオネート（以下、「ＳＰＤＰ」という）を反応させて、２−ピリジルジチオプロピニルＧｌｃＡ−ＧｌｃＮＨ3 +を得る。これをジチオスレイトール等の還元剤で還元し、チオール化ＧｌｃＡ−ＧｌｃＮＨ3 +を得る。同様に、タンパク質とＳＰＤＰを反応させ、２−ピリジルジチオプロピニル化タンパク質を得る。次に、チオール化ＧｌｃＡ−ＧｌｃＮＨ3 +溶液と２−ピリジルジチオプロピニル化タンパク質溶液を混合することによって、ＧｌｃＡ−ＧｌｃＮＨ3 +とタンパク質間にＳＳ結合を生成させ、ＧｌｃＡ−ＧｌｃＮＨ3 +−ＳＳ−タンパク質を得る（以下、「ＧｌｃＡ−ＧｌｃＮＨ3 +抗原」という）。
免疫される動物は豚、牛、マウス、ラット等の哺乳動物であることが好ましく、抗体産生細胞の相手となるミエローマ細胞がマウス由来のものであることが好ましいため、特にマウスが好ましい。例えば上記方法により調製したＧｌｃＡ−ＧｌｃＮＨ3 +抗原を哺乳動物に皮下注射することにより免疫を行うことができる。注射方法はこれに限らず、腹腔内注射、静脈注射でも良い。通常、免疫は数回に分けて行うが、免疫はアジュバントと共に投与することが好ましい。アジュバンとしては、ミョウバン、結核死菌、核酸、完全フロインドアジュバント、不完全フロイントアジュバント等、アジュバント効果が期待できるもので有ればよいが、特に、ＴｉｔｅｒＭＡＸ Ｇｏｌｄ（シグマ社製）が良い。
1. Immunization The antigen used in the immunization step is a sugar chain consisting of a protein and GlcA-GlcNH 3 + itself, or its repeating structure (GlcA-GlcNH 3 + ) n (where n is a natural number of 1 or more), or GlcA-GlcNH A substance obtained by chemically binding a sugar chain containing a sugar chain consisting of 3 + itself or a repeating structure thereof (GlcA-GlcNH 3 + ) n (where n is a natural number of 1 or more) is preferable. The protein is preferably bovine serum albumin (hereinafter referred to as “BSA”) or hemocyanin (hereinafter referred to as “KLH”).
For example, GlcA-GlcNH 3 + or a repeating structure thereof is reacted with N-succinimidyl-3- (2-pyridyldithio) propionate (hereinafter referred to as “SPDP”) to obtain 2-pyridyldithiopropynyl GlcA-GlcNH 3 + . This is reduced with a reducing agent such as dithiothreitol to obtain thiolated GlcA-GlcNH 3 + . Similarly, the protein and SPDP are reacted to obtain 2-pyridyldithiopropynylated protein. Next, an SS bond is generated between GlcA-GlcNH 3 + and the protein by mixing the thiolated GlcA-GlcNH 3 + solution and the 2-pyridyldithiopropynylated protein solution, and the GlcA-GlcNH 3 + -SS-protein (Hereinafter referred to as “GlcA-GlcNH 3 + antigen”).
The animal to be immunized is preferably a mammal such as a pig, cow, mouse or rat, and the myeloma cell which is the partner of the antibody-producing cell is preferably derived from a mouse, and therefore a mouse is particularly preferable. For example, immunization can be performed by subcutaneously injecting a mammal with the GlcA-GlcNH 3 + antigen prepared by the above method. The injection method is not limited to this, and may be intraperitoneal injection or intravenous injection. Usually, immunization is performed in several times, but immunization is preferably administered with an adjuvant. The adjuvant may be any one that can be expected to have an adjuvant effect such as alum, tuberculosis killed bacteria, nucleic acid, complete Freund's adjuvant, incomplete Freund's adjuvant, etc., and TiterMAX Gold (manufactured by Sigma) is particularly preferable.
２．細胞融合
最終免疫後にリンパ節或は脾臓を摘出し、得られるリンパ球を細胞融合に供する。細胞融合に使用される腫瘍細胞株としてはミエローマ細胞が好ましく、通常、マウスのBALB/c
由来のP3 -NS-1/1-Ag4-1、P3 -X63-Ag8-U1(P3 U1)、P3 -X63-Ag8-653、SP2/0-Ag14 等を用いることができる。
2. Cell fusion Lymph nodes or spleen are removed after final immunization, and the resulting lymphocytes are subjected to cell fusion. The tumor cell line used for cell fusion is preferably myeloma cells, usually mouse BALB / c
P3-NS-1 / 1-Ag4-1, P3-X63-Ag8-U1 (P3U1), P3-X63-Ag8-653, SP2 / 0-Ag14, etc. can be used.
３．ハイブリドーマの選択と単クローン化
ハイブリドーマの選択と単クローン化は下記に例示される方法により行うことができる。すなわち、ハイブリドーマの増殖の盛んな細胞培養上清を種々の分析法（例えばRIA法 、プラーク法、凝集反応法、ELISA法、フローサイトメトリー法、組織染色法、ウェスタンブロッティング法 等）でヘパラン硫酸糖鎖分子中のＧｌｃＡ−ＧｌｃＮＨ3 +に反応する目的の抗体を産生するハイブリドーマを選択し、次に、得られたハイブリドーマについてクローニングを行う。クローニングの方法としてはFACS（Fluorescent Activated Cell Sorter ）もしくは、一般によく用いられる限界希釈法等が挙げられる。例えば、限界希釈法では９６ウェルプレートの１ウェルあたり細胞が１個以下になるように行うことが好ましい。どの方法を用いてもクローニングは２回繰返し行うことが好ましく、単一クローンとすることが好ましい。
3. Selection of hybridoma and single cloning Hybridoma selection and single cloning can be performed by the methods exemplified below. That is, heparan sulfate sugar can be obtained by analyzing cell culture supernatants with active hybridoma growth using various analytical methods (eg, RIA method, plaque method, agglutination method, ELISA method, flow cytometry method, tissue staining method, Western blotting method, etc.). A hybridoma that produces an antibody of interest that reacts with GlcA-GlcNH 3 + in the chain molecule is selected, and the resulting hybridoma is then cloned. Examples of the cloning method include FACS (Fluorescent Activated Cell Sorter) or a generally used limiting dilution method. For example, the limiting dilution method is preferably performed so that the number of cells per well of a 96-well plate is 1 or less. Whichever method is used, cloning is preferably repeated twice, and preferably a single clone.
モノクローナル抗体を産生する方法としては、得られた単一クローンを、大量にin vitro で培養する方法、in vivo で培養（腹水化）する方法が挙げられ、目的に応じて選択することができる。単一のハイブリドーマが作るモノクローナル抗体は、細胞培養液又は、ハイブリドーマを移植したマウスの腹水から分離精製することができる。これら粗抗体液からの抗体精製は、塩析、イオン交換、ゲル濾過、アフィニティークロマトグラフィー、電気泳動等、生化学的一般的手法を適宜組み合わせることによって達成することができる。 Methods for producing a monoclonal antibody include a method of culturing the obtained single clone in a large amount in vitro and a method of culturing in vivo (ascites), and can be selected according to the purpose. Monoclonal antibodies produced by a single hybridoma can be isolated and purified from cell culture fluid or ascites of mice transplanted with the hybridoma. Antibody purification from these crude antibody solutions can be achieved by appropriately combining general biochemical techniques such as salting out, ion exchange, gel filtration, affinity chromatography, electrophoresis and the like.
本発明の方法に用いることのできるモノクローナル抗体として、上記構造に特異的に結合するものである限りにおいて特に限定されないが、具体的には、ＪＭ４０３抗体が例示される。ＪＭ４０３抗体（特表２００５−５２４０７４号公報：Diabetologia, 37(3), p313-320 (1994)）は、ヘパラン硫酸糖鎖分子中のＧｌｃＡ−ＧｌｃＮＨ3 +構造を特異的に認識するモノクローナル抗体である。その免疫グロブリンクラスはマウスＩｇＭであり、抗原をヘパリチナーゼ処理することによって結合性が消失し、ＨＡ（ヒアルロン酸）、ＣＳ（コンドロイチン硫酸）、ＤＳ（デルマタン硫酸）、ＫＳ（ケラタン硫酸）とは実質的に結合しない。
このＪＭ４０３抗体は生化学バイオビジネス株式会社から市販されており、その市販品をそのまま本発明方法に用いることもできる。
ＪＭ４０３抗体を用いる場合には、本発明方法は、「癌組織の細胞質内に存在する、ＪＭ４０３抗体に結合する抗原の存在の程度を検出するステップを含む、癌の悪性度の検知方法」と換言して理解することもできる。
The monoclonal antibody that can be used in the method of the present invention is not particularly limited as long as it specifically binds to the above structure, and specific examples include JM403 antibody. The JM403 antibody (Japanese Patent Publication No. 2005-524074: Diabetologia, 37 (3), p313-320 (1994)) is a monoclonal antibody that specifically recognizes the GlcA-GlcNH 3 + structure in the heparan sulfate sugar chain molecule. . Its immunoglobulin class is mouse IgM, and its binding is lost by treating the antigen with heparitinase, which is substantially different from HA (hyaluronic acid), CS (chondroitin sulfate), DS (dermatan sulfate), and KS (keratan sulfate). Do not bind to.
This JM403 antibody is commercially available from Seikagaku Biobusiness Co., Ltd., and the commercially available product can be used as it is in the method of the present invention.
In the case of using the JM403 antibody, the method of the present invention is, in other words, “a method for detecting the malignancy of cancer, comprising the step of detecting the degree of the presence of an antigen that binds to the JM403 antibody present in the cytoplasm of cancer tissue”. Can also be understood.
免疫組織染色によって癌組織の細胞質内に存在するヘパラン硫酸糖鎖分子中のＧｌｃＡ−ＧｌｃＮＨ3 +構造を検出する場合には、当該構造の「存在の程度」は、例えば免疫組織染色後の切片標本を光学顕微鏡で観察し、細胞質が免疫染色された細胞をカウントして、その全細胞数に占める割合を算出することによって示すことができる。また、前記構造の「存在の程度」は、細胞質が免疫染色された細胞の割合に応じて、例えば以下のように分類して示してもよい。
＋＋：癌細胞の５０％以上が染色されている
＋： 癌細胞の１０％以上５０％未満が染色されている
−： 染色されている癌細胞が１０％未満である
When detecting a GlcA-GlcNH 3 + structure in a heparan sulfate sugar chain molecule present in the cytoplasm of cancer tissue by immunohistochemical staining, the “degree of presence” of the structure is, for example, a section sample after immunohistological staining Is observed with an optical microscope, and the number of cells in which the cytoplasm is immunostained is counted, and the percentage of the total cell number is calculated. Further, the “existence degree” of the structure may be classified and shown, for example, as follows according to the proportion of cells whose cytoplasm is immunostained.
++: 50% or more of cancer cells are stained +: 10% or more and less than 50% of cancer cells are stained −: Less than 10% of cancer cells are stained
癌の悪性度は、このようにして検出され示された「癌組織の細胞質内に存在するヘパラン硫酸糖鎖分子中のＧｌｃＡ−ＧｌｃＮＨ3 +構造の存在の程度」と関連付けることによって検知することができる。すなわち、当該構造の存在の程度が高ければ高いほど、それだけ悪性度も高い、と評価することで検知することができる。すなわち、例えば、前記の「−」、「＋」、「＋＋」にしたがって分類した場合には、「＋＋」が最も悪性度が高い、と評価・検知することができる。 The malignancy of cancer can be detected by correlating with “the degree of presence of GlcA-GlcNH 3 + structure in heparan sulfate sugar chain molecules present in the cytoplasm of cancer tissue” thus detected and shown. it can. That is, it can be detected by evaluating that the higher the degree of existence of the structure, the higher the malignancy. That is, for example, in the case of classification according to the “−”, “+”, and “++”, it is possible to evaluate and detect that “++” has the highest malignancy.
ここにいう悪性度は、核異型度、核分裂指数、核グレード、腋窩リンパ節転移、及び／又は抗Ｋｉ−６７抗体を用いたラベリング・インデックス（Labeling Index）として把握してもよい。すなわち本発明方法における「癌の悪性度の検知方法」は、これら各指標の検知方法、例えば「核グレードの検知方法」等としての概念をも包含するものである。 The grade of malignancy mentioned here may be grasped as a nuclear index, a fission index, a nuclear grade, axillary lymph node metastasis, and / or a labeling index using an anti-Ki-67 antibody. In other words, the “cancer malignancy detection method” in the method of the present invention includes the concept of a detection method for each of these indicators, for example, “nuclear grade detection method”.
＜２＞本発明診断剤
本発明診断剤は、ＧｌｃＡ−ＧｌｃＮＨ3 +構造に結合する抗体を有効成分とする、癌の悪性度の診断剤である。
本発明診断剤の有効成分である、「ＧｌｃＡ−ＧｌｃＮＨ3 +構造に結合する抗体」についての説明は、前記＜１＞と同様である。すなわち、本発明検知方法において用いることができる抗体を、そのまま本発明診断剤の有効成分として用いることができる。当該抗体に標識物質が直接結合していてもよいことはいうまでもない。
本発明診断剤は、「ＧｌｃＡ−ＧｌｃＮＨ3 +構造に結合する抗体」を有効成分として含有している限りにおいて、さらに他の成分を含有してもよい。このような他の成分の一例としては、例えば試薬的に許容される安定化剤、保存剤、賦形剤等を例示することができる。
本発明診断剤は、「ＧｌｃＡ−ＧｌｃＮＨ3 +構造に結合する抗体」をそのまま、又は必要に応じてさらに前記のような他の成分を添加して、通常の試薬・製剤等の調製方法にしたがって製造することができる。
また本発明診断剤は、前記＜１＞における本発明検知方法に記載の方法にしたがって使用することができる。
<2> Diagnostic Agent of the Present Invention The diagnostic agent of the present invention is a diagnostic agent for malignancy of cancer comprising an antibody that binds to a GlcA-GlcNH 3 + structure as an active ingredient.
The description of “an antibody that binds to a GlcA-GlcNH 3 + structure”, which is an active ingredient of the diagnostic agent of the present invention, is the same as in <1> above. That is, an antibody that can be used in the detection method of the present invention can be used as an active ingredient of the diagnostic agent of the present invention as it is. Needless to say, a labeling substance may be directly bound to the antibody.
The diagnostic agent of the present invention may further contain other components as long as it contains “an antibody that binds to a GlcA-GlcNH 3 + structure” as an active ingredient. Examples of such other components include reagent-acceptable stabilizers, preservatives, excipients, and the like.
The diagnostic agent of the present invention is prepared by adding the “GlcA-GlcNH 3 + structure-binding antibody” as it is, or by adding other components as described above, if necessary, according to a usual method for preparing reagents and preparations. Can be manufactured.
The diagnostic agent of the present invention can be used in accordance with the method described in the detection method of the present invention in <1>.
また、本発明診断剤は、ＧｌｃＡ−ＧｌｃＮＨ3 +構造に結合する抗体を検出する試薬をさらに含んでもよい。このような試薬としては、例えば、二次抗体（ＧｌｃＡ−ＧｌｃＮＨ3 +構造に結合する抗体（一次抗体）に結合し、かつ標識物質が結合した抗体（当該一次抗体に係る免疫グロブリンに結合する抗体））を例示することができる。また、ＧｌｃＡ−ＧｌｃＮＨ3 +構造に結合する抗体が標識物質と直接結合しているような場合において、例えば当該標識物質が酵素である場合には、当該酵素の基質（発色基質など）であってもよい。
さらに、他の構成成分として、例えば洗浄液、酵素反応停止液等を含んでもよい。また、測定バッチ同士の実施レベルを一定水準に保つための陽性コントロール（ＱＣコントロール）を含有させることもできる。
これらの構成成分は、それぞれ別体の容器に収容し保存しておくことができる。
The diagnostic agent of the present invention may further contain a reagent for detecting an antibody that binds to the GlcA-GlcNH 3 + structure. Examples of such a reagent include a secondary antibody (an antibody that binds to an antibody (primary antibody) that binds to a GlcA-GlcNH 3 + structure and an antibody that binds to a labeling substance (an antibody that binds to an immunoglobulin related to the primary antibody). )). Further, in the case where an antibody that binds to the GlcA-GlcNH 3 + structure is directly bound to a labeling substance, for example, when the labeling substance is an enzyme, it is a substrate (such as a chromogenic substrate) of the enzyme. Also good.
Furthermore, as other components, for example, a cleaning solution, an enzyme reaction stop solution and the like may be included. Moreover, the positive control (QC control) for maintaining the implementation level between measurement batches to a fixed level can also be included.
These components can be stored in separate containers.
以下、実施例によって本発明をさらに具体的に説明するが、これにより本発明の技術的範囲が限定されるものではない。 EXAMPLES Hereinafter, although an Example demonstrates this invention further more concretely, this does not limit the technical scope of this invention.
１．癌組織
悪性度の検知の対象として、６０名の乳癌患者から外科手術により切除した乳管癌組織を用いた。この６０名の年齢は２７〜８７歳（平均５４．６歳）であり、その他の各種指標の内訳は以下のとおりであった。
（１）浸潤／非浸潤の別 非浸潤癌：５例、浸潤癌：５５例
（２）Ｔ分類 Ｔ１：４０例、Ｔ２：１３例、Ｔ３：２例
（３）腋窩リンパ節転移 陽性１７例、陰性３８例
（４）ホルモンレセプター ＥＲ陽性：３７例、ＰｇＲ陽性：２３例
（５）ＨＥＲ２過剰発現 あり：１０例、なし：５０例
（６）浸潤性癌の核グレード グレード１：２２、同２：２２例、同３：１１例
核グレードは、日本乳癌学会編「乳癌取扱い規約 第１６版」（金原出版株式会社）に記載された基準にしたがって判定した。
1. Cancer tissue Breast cancer tissue excised from 60 breast cancer patients by surgery was used as a target for detecting malignancy. The age of these 60 persons was 27 to 87 years old (average 54.6 years old), and the breakdown of other various indicators was as follows.
(1) Classification of invasion / non-invasion Non-invasive cancer: 5 cases, invasive cancer: 55 cases (2) T classification T1: 40 cases, T2: 13 cases, T3: 2 cases (3) Axillary lymph node metastasis 17 positive cases 38 cases (4) Hormone receptor ER positive: 37 cases, PgR positive: 23 cases (5) HER2 overexpression Yes: 10 cases, None: 50 cases (6) Nuclear grade of invasive cancer Grade 1:22, 2:22 cases, 3:11 cases The nuclear grade was determined according to the standards described in the Japanese Breast Cancer Society edited by "Breast Cancer Handling Rules 16th Edition" (Kanehara Publishing Co., Ltd.).
２．切片標本の作製と免疫組織染色
上記の乳管癌組織について、フォルマリン・パラフィン切片を作成した。免疫組織染色は、抗ヘパラン硫酸モノクローナル抗体であるＪＭ４０３、１０Ｅ４及びＮＡＨ４６（いずれも生化学バイオビジネス株式会社販売）、並びに抗Ｋｉ−６７抗体（MIB-1, Abcam社, Cambridge, UK））を用い、ＡＢＣ法（Avidin-Biotin Complex法）によって行った。具体的には、以下のとおり行った。
2. Preparation of Section Specimen and Immunohistochemical Staining Formalin and paraffin sections were prepared for the above breast cancer tissues. For immunohistochemical staining, anti-heparan sulfate monoclonal antibodies JM403, 10E4 and NAH46 (all sold by Seikagaku Biobusiness Co., Ltd.) and anti-Ki-67 antibody (MIB-1, Abcam, Cambridge, UK)) were used. The ABC method (Avidin-Biotin Complex method) was used. Specifically, it was performed as follows.
パラフィン包埋した組織を４マイクロメートルの厚さに薄切した。この切片を脱パラフィン処理して内因性ペルオキシダーゼを０．１％の窒化ナトリウムと過酸化水素で不活化し、次いで内因性アビジン、ビオチン結合部位をAvidin/Biotin Blocking Kit SP-2001（Vector Laboratories Inc., Burlingame, CA）を用いてブロックした。次いで、この切片を０．０５％のカゼインと１０％のヤギ血清を含有するリン酸緩衝化生理食塩水（ＰＢＳ）中で３０分間インキュベートして非特異的吸着をブロックした。
次いで、この切片を０．１％のカゼインを含有するＰＢＳで０．５から５マイクログラム／ｍｌに希釈した一次抗体（ＪＭ４０３、１０Ｅ４、ＮＡＨ４６又は抗Ｋｉ−６７抗体）中でインキュベートした。インキュベートは、摂氏４度で一晩行った。その後、切片を０．０５％のカゼインを含有するＰＢＳで洗浄した。
次いでこの切片を、ビオチン標識化されたマウス免疫グロブリンに対するヤギのF(ab')
(Jackson ImmunoResearch Laboratories, West Grove, PA) 中で３０分間、室温でインキュベートした。その後、この切片を０．０５％のカゼインを含有するＰＢＳで洗浄した。
次いで、この切片をhorseradish peroxidase-streptavidin (Vectastain Elite ABC kit PK6100, Vector Laboratories Inc.)と反応させた。その後、この切片を０．０５％のカゼインを含有するＰＢＳで洗浄し、3,3'-diaminobenzidine tetrahydrochloride（Sigma）で染色して、さらにメチールグリーン溶液でカウンター染色を行った。
The paraffin-embedded tissue was sliced to a thickness of 4 micrometers. The sections were deparaffinized to inactivate endogenous peroxidase with 0.1% sodium nitride and hydrogen peroxide, and then the endogenous avidin and biotin binding sites were removed from the Avidin / Biotin Blocking Kit SP-2001 (Vector Laboratories Inc. , Burlingame, CA). The sections were then incubated in phosphate buffered saline (PBS) containing 0.05% casein and 10% goat serum for 30 minutes to block nonspecific adsorption.
The sections were then incubated in primary antibody (JM403, 10E4, NAH46 or anti-Ki-67 antibody) diluted to 0.5-5 microgram / ml with PBS containing 0.1% casein. Incubation was performed overnight at 4 degrees Celsius. The sections were then washed with PBS containing 0.05% casein.
The sections were then analyzed for goat F (ab ′) against biotinylated mouse immunoglobulin.
(Jackson ImmunoResearch Laboratories, West Grove, Pa.) For 30 minutes at room temperature. The sections were then washed with PBS containing 0.05% casein.
Next, this section was reacted with horseradish peroxidase-streptavidin (Vectastain Elite ABC kit PK6100, Vector Laboratories Inc.). Thereafter, the sections were washed with PBS containing 0.05% casein, stained with 3,3′-diaminobenzidine tetrahydrochloride (Sigma), and further counter-stained with a methyl green solution.
なお、ＪＭ４０３、１０Ｅ４及びＮＡＨ４６は、それぞれ、ヘパラン硫酸糖鎖分子中の次の構造を認識するものである。
ＪＭ４０３：ＧｌｃＡ−ＧｌｃＮＨ3 +構造
１０Ｅ４：ＧｌｃＡ−ＧｌｃＮＳ構造（ＧｌｃＮＳは、Ｎ−硫酸グルコサミン残基を示す）
ＮＡＨ４６：ＧｌｃＡ−ＧｌｃＮＡｃ構造（ＧｌｃＮＡｃは、Ｎ−アセチルグルコサミン残基を示す）
JM403, 10E4 and NAH46 each recognize the following structure in the heparan sulfate sugar chain molecule.
JM403: GlcA-GlcNH 3 + structure 10E4: GlcA-GlcNS structure (GlcNS indicates N-sulfate glucosamine residue)
NAH46: GlcA-GlcNAc structure (GlcNAc represents an N-acetylglucosamine residue)
３．観察・評価
（１）細胞質における免疫染色の程度
免疫組織染色後の切片標本を光学顕微鏡で観察し、細胞質が免疫染色された細胞の数をカウントし、以下のとおり免疫染色の程度を評価した。
＋＋：乳癌細胞の５０％以上が染色されている
＋：乳癌細胞の１０％以上５０％未満が染色されている
−：染色されている乳癌細胞が１０％未満である
3. Observation / Evaluation (1) Degree of immunostaining in cytoplasm Section specimens after immunohistochemical staining were observed with an optical microscope, the number of cells immunostained with cytoplasm was counted, and the degree of immunostaining was evaluated as follows.
++: 50% or more of breast cancer cells are stained +: 10% or more and less than 50% of breast cancer cells are stained-: Less than 10% of breast cancer cells are stained
コントロールとして、正常乳腺部分の切片標本をＪＭ４０３、１０Ｅ４又はＮＡＨ４６で免疫組織染色した結果を図１に示す。その結果、６０例のすべてにおいて、いずれの抗体を用いた場合にも、細胞質の染色は見られず、正常乳腺の基底膜及び血管壁に染色が見られた。 As a control, the result of immunohistological staining of a specimen of a normal mammary gland portion with JM403, 10E4 or NAH46 is shown in FIG. As a result, in all 60 cases, no cytoplasmic staining was observed when any antibody was used, and staining was observed in the basement membrane and blood vessel wall of the normal mammary gland.
乳管癌組織の切片標本をＪＭ４０３、１０Ｅ４又はＮＡＨ４６で免疫組織染色した結果を図２に示す。その結果、ＪＭ４０３又はＮＡＨ４６を用いた場合に、細胞質の染色がみられた。 FIG. 2 shows the results of immunohistochemical staining of breast cancer tissue sections with JM403, 10E4 or NAH46. As a result, cytoplasmic staining was observed when JM403 or NAH46 was used.
また、上記の各免疫染色の程度に対応する像の一例として、乳管癌組織の切片標本をＪＭ４０３で免疫組織染色した場合の結果を図３に示す。図３の「−」の像における矢印は、血管壁における染色を示すものである。 Moreover, as an example of an image corresponding to the degree of each of the above immunostainings, the results when immunostaining tissue specimens of breast cancer tissues with JM403 are shown in FIG. The arrow in the “−” image in FIG. 3 indicates staining in the blood vessel wall.
これらの結果から、乳管癌組織の切片標本をＪＭ４０３又はＮＡＨ４６で染色した場合には、細胞質が染色されることが示された。このことから、これら各々の抗体に特異的に結合する構造を有するヘパラン硫酸糖鎖が、乳管癌組織の細胞質内に存在していることが示された。 From these results, it was shown that when a section sample of ductal cancer tissue was stained with JM403 or NAH46, the cytoplasm was stained. This indicates that heparan sulfate sugar chains having a structure that specifically binds to each of these antibodies are present in the cytoplasm of breast cancer tissue.
（２）乳管癌組織の細胞質内における染色の程度
乳管癌組織の切片標本をＪＭ４０３、１０Ｅ４又はＮＡＨ４６で免疫組織染色した場合における、細胞質内の染色程度の分布（％）を表１に示す。表１から、ＪＭ４０３について陽性を示したもの（前記の「＋」と「＋＋」を合わせたもの）は、症例の約６割近くに及んだ。
なお、１０Ｅ４で免疫組織染色したものについては、ほとんどが細胞膜のみ染色された。そこで、１０Ｅ４で染色したものについては、細胞膜のみが染色されたものも含めてカウントした。
(2) Degree of staining in the cytoplasm of the breast cancer tissue Table 1 shows the distribution (%) of the degree of staining in the cytoplasm when the section specimen of the breast cancer tissue was immunohistologically stained with JM403, 10E4 or NAH46. . From Table 1, those that were positive for JM403 (the combination of “+” and “++” above) accounted for approximately 60% of cases.
In most cases, those stained with immunohistochemistry with 10E4 stained only the cell membrane. Therefore, for those stained with 10E4, counting was performed including those stained only for the cell membrane.
（３）細胞質の免疫染色の程度と、癌の悪性度に関する各指標との関係
（３−１）浸潤性乳管癌について、上記の免疫染色の程度と、核異型度、核分裂指数、核グレード及び腋窩リンパ節転移の状況との関係をグラフ化した。
ＪＭ４０３で染色した場合の結果を図４に、１０Ｅ４で染色した場合の結果を図５に、ＮＡＨ４６で染色した場合の結果を図６にそれぞれ示す。
(3) Relationship between the degree of cytoplasmic immunostaining and each index relating to the malignancy of cancer (3-1) Regarding invasive ductal carcinoma, the degree of immunostaining, the degree of nuclear atypia, the fission index, and the nuclear grade And the relationship with the status of axillary lymph node metastasis was graphed.
FIG. 4 shows the results when stained with JM403, FIG. 5 shows the results when stained with 10E4, and FIG. 6 shows the results when stained with NAH46.
その結果、ＪＭ４０３で染色した場合には、細胞質の免疫染色の程度が強いほど核異型度・核分裂指数・核グレードが高く、腋窩リンパ節転移も陽性症例が増加し、これらの諸項目とJM403の発現には強い正の相関が各々認められた。また１０Ｅ４で染色した場合には、免疫染色の程度と、核異型度、核分裂指数、核グレード及び腋窩リンパ節転移のいずれの間にも、有意な相関関係は認められなかった。
またＮＡＨ４６で染色した場合には、免疫染色の程度と腋窩リンパ節転移との間において有意な正の相関は認められなかった。
As a result, when staining with JM403, the stronger the degree of cytoplasmic immunostaining, the higher the nuclear atypia, fission index, and nuclear grade, and the number of cases with positive axillary lymph node metastasis increased. A strong positive correlation was observed for each expression. When stained with 10E4, no significant correlation was observed between the degree of immunostaining and any of the degree of nuclear atypia, fission index, nuclear grade, and axillary lymph node metastasis.
When stained with NAH46, no significant positive correlation was observed between the degree of immunostaining and axillary lymph node metastasis.
（３−２）非浸潤性乳管癌の評価については、上記の免疫染色の程度と核グレードは浸潤癌の評価に用いられるものであり、非浸潤癌の評価には使用されないので（日本乳癌学会編「乳癌取扱い規約 第１６版」（金原出版株式会社））、Ki-67 Labeling Indexとの関係を悪性度の評価指標に使用した。非浸潤癌3例と浸潤性乳管癌標本内の非浸潤性乳管癌のうち評価可能であった21例を合わせて解析した。結果を図７に示す。
その結果、ＪＭ４０３で染色した場合のみ、細胞質の染色の程度と公知の悪性度の指標であるＫｉ−６７ラベリング・インデックスとの間に有意に強い正の相関が認められた。
なお以上のデータ解析において、独立性の検定にはカイ二乗検定を、平均値の差の検定にはウィルコクソン（Wilcoxon）の順位和検定を用いた。
(3-2) Regarding the evaluation of noninvasive breast cancer, the above-mentioned degree of immunostaining and nuclear grade are used for evaluation of invasive cancer, and are not used for evaluation of noninvasive cancer (Japanese breast cancer The relationship with the Kikai 67 Labeling Index was used as an evaluation index for malignancy. We analyzed 3 cases of noninvasive cancer and 21 cases that could be evaluated among noninvasive breast cancer in invasive ductal carcinoma specimens. The results are shown in FIG.
As a result, only when stained with JM403, a significantly strong positive correlation was observed between the degree of cytoplasmic staining and the Ki-67 labeling index, which is a known index of malignancy.
In the above data analysis, the chi-square test was used for the independence test, and the Wilcoxon rank sum test was used for the difference test of the mean values.
以上の結果から、癌組織の細胞質内に存在するヘパラン硫酸糖鎖分子中のＧｌｃＡ−ＧｌｃＮＨ3 +構造の存在の程度を検出することにより、浸潤性・非浸潤性の癌を問わず、従来行われてきた病理組織学的判定に極めて近いかたちで、癌の悪性度の検知が可能であることが示された。 From the above results, by detecting the presence of the GlcA-GlcNH 3 + structure in the heparan sulfate sugar chain molecule present in the cytoplasm of the cancer tissue, the conventional method can be used regardless of whether the cancer is invasive or non-invasive. It was shown that the malignancy of cancer can be detected very closely to the histopathological determination.
Claims (6)
（ただし、前記構造におけるＧｌｃＡはＤ−グルクロン酸残基を、ＧｌｃＮＨ3 +はＤ−グルコサミン残基を、−はグリコシド結合をそれぞれ示す。） Comprising the step of detecting the extent of the presence of GlcA-GlcNH 3 + structure of breast cancer tissue of heparan sulfate sugar chain molecule present in the cytoplasm, the detection method of the breast cancer axillary lymph node metastasis.
(However, GlcA in the above structure represents a D-glucuronic acid residue, GlcNH 3 + represents a D-glucosamine residue, and − represents a glycosidic bond.)
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP2009137643A JP5711877B2 (en) | 2009-06-08 | 2009-06-08 | Method for detecting cancer malignancy and diagnostic agent for cancer malignancy |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP2009137643A JP5711877B2 (en) | 2009-06-08 | 2009-06-08 | Method for detecting cancer malignancy and diagnostic agent for cancer malignancy |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JP2010281799A JP2010281799A (en) | 2010-12-16 |
| JP5711877B2 true JP5711877B2 (en) | 2015-05-07 |
Family
ID=43538648
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP2009137643A Expired - Fee Related JP5711877B2 (en) | 2009-06-08 | 2009-06-08 | Method for detecting cancer malignancy and diagnostic agent for cancer malignancy |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JP5711877B2 (en) |
Families Citing this family (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2013205362A (en) * | 2012-03-29 | 2013-10-07 | Forerunner Pharma Research Co Ltd | Colorectal cancer marker and prognosis prediction method |
Family Cites Families (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO1997028446A1 (en) * | 1996-02-01 | 1997-08-07 | University Of Miami | Methods for detection and evaluation of bladder cancer |
| JP2004208693A (en) * | 2002-12-17 | 2004-07-29 | Sanyo Chem Ind Ltd | Anti-hyaluronic acid antibody, reagent kit containing the sane, method for producing the anti-hyaluronic acid antibody and method for measuring hyaluronic acid |
| JP4841546B2 (en) * | 2005-03-31 | 2011-12-21 | 生化学工業株式会社 | Novel anti-heparan sulfate antibody, detection method of heparan sulfate, and heparan sulfate detection kit |
| JP4787666B2 (en) * | 2006-04-28 | 2011-10-05 | 愛知県 | Cancer detection method and detection kit |
-
2009
- 2009-06-08 JP JP2009137643A patent/JP5711877B2/en not_active Expired - Fee Related
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JP2010281799A (en) | 2010-12-16 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| US11525003B2 (en) | Anti-B7-H3 antibodies and diagnostic uses thereof | |
| JP2023040115A (en) | Antibodies and assays for detecting folate receptor 1 | |
| EP2501724B1 (en) | Monoclonal antibodies and diagnostic uses thereof | |
| US6596503B1 (en) | Monoclonal antibody DS6, tumor-associated antigen CA6, and methods of use thereof | |
| EP2525832A1 (en) | Cancer stem cell markers and uses thereof | |
| JP6324970B2 (en) | Anti-uroplakin II antibody system and method | |
| AU2016299166B2 (en) | Methods for detecting tissue infiltrating NK cells | |
| RU2641968C2 (en) | Compositions and methods for prostate cancer analysis | |
| RU2706967C2 (en) | Igf-1r antibody and use thereof for diagnosing cancer | |
| JP5711877B2 (en) | Method for detecting cancer malignancy and diagnostic agent for cancer malignancy | |
| WO2020167927A1 (en) | Antibodies to cell adhesion molecule-related/down-regulated by oncogenes (cdon) and uses thereof | |
| US20140087400A1 (en) | Diagnosis and prognosis of triple negative breast and ovarian cancer | |
| US9040018B2 (en) | Monoclonal antibodies against alpha-actinin-4 antigens, and uses therefor | |
| WO2021136550A1 (en) | Anti-claudin 18.2 antibody and use thereof | |
| RU2706959C2 (en) | Igf-1r antibody and use thereof for diagnosing cancer | |
| JPH01141355A (en) | Detection of cancerous or precancerous disease for colon and rectum | |
| US20240117042A1 (en) | Immunohistochemistry methods and kir3dl2-specific reagents | |
| CN113924148A (en) | Companion diagnostic assay for GLOBO-H related cancer therapy | |
| Schmidt et al. | Blood group antigen A type 3 expression is a favorable prognostic factor in advanced NSCLC | |
| WO2022269534A1 (en) | Use of single cell elisa starting from deparaffinzed cells for the detection of molecules of interest | |
| US20080131916A1 (en) | Reagents and Methods For Use In Cancer Diagnosis, Classification and Therapy | |
| US20150297762A1 (en) | Monoclonal antibody ds6, tumor-associated antigen ca6, and methods of use thereof | |
| JP2013234156A (en) | MONOCLONAL ANTIBODY SPECIFICALLY RECOGNIZING Smad3 HAVING PHOSPHORYLATED LINKER REGION |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| A621 | Written request for application examination |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A621 Effective date: 20120606 |
|
| A977 | Report on retrieval |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A971007 Effective date: 20130311 |
|
| A131 | Notification of reasons for refusal |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131 Effective date: 20140107 |
|
| A521 | Written amendment |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523 Effective date: 20140310 |
|
| A131 | Notification of reasons for refusal |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131 Effective date: 20140715 |
|
| A521 | Written amendment |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523 Effective date: 20140905 |
|
| TRDD | Decision of grant or rejection written | ||
| A01 | Written decision to grant a patent or to grant a registration (utility model) |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A01 Effective date: 20150210 |
|
| A61 | First payment of annual fees (during grant procedure) |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A61 Effective date: 20150309 |
|
| R150 | Certificate of patent or registration of utility model |
Ref document number: 5711877 Country of ref document: JP Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R150 |
|
| LAPS | Cancellation because of no payment of annual fees |