JP5414087B2 - Evaluation method and evaluation kit for improvement / maintenance / recovery effect of motor function, screening method for substance, and use as marker - Google Patents

Evaluation method and evaluation kit for improvement / maintenance / recovery effect of motor function, screening method for substance, and use as marker Download PDF

Info

Publication number
JP5414087B2
JP5414087B2 JP2008115002A JP2008115002A JP5414087B2 JP 5414087 B2 JP5414087 B2 JP 5414087B2 JP 2008115002 A JP2008115002 A JP 2008115002A JP 2008115002 A JP2008115002 A JP 2008115002A JP 5414087 B2 JP5414087 B2 JP 5414087B2
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
substance
mass
protein
marker
subjected
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Active
Application number
JP2008115002A
Other languages
Japanese (ja)
Other versions
JP2009264932A (en
Inventor
憲一 三原
一樹 柳田
準 向井
亜尚 山口
泰士 矢野原
豊 高橋
敏一 吉川
裕二 内藤
嘉一 高波
渉 青井
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
BIOMARKERSCIENCE CO., LTD
Original Assignee
BIOMARKERSCIENCE CO., LTD
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by BIOMARKERSCIENCE CO., LTD filed Critical BIOMARKERSCIENCE CO., LTD
Priority to JP2008115002A priority Critical patent/JP5414087B2/en
Publication of JP2009264932A publication Critical patent/JP2009264932A/en
Application granted granted Critical
Publication of JP5414087B2 publication Critical patent/JP5414087B2/en
Active legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Description

本発明は、運動機能の向上・維持・回復効果の評価方法及び評価用キット、物質のスクリーニング方法、並びに、マーカーとしての使用に関し、さらに詳細には、被験物質を摂取させると共に運動負荷をかけた動物から採取した体液におけるマーカー物質の濃度を基準値と比較し、被験物質が有する運動機能の向上・維持・回復効果を評価する運動機能の向上・維持・回復効果の評価方法、当該方法に用いる評価用キット、当該方法を用いて所望の運動機能の向上・維持・回復効果を有する物質をスクリーニングする物質のスクリーニング方法、並びに、マーカーとしての使用に関する。 The present invention relates to an evaluation method and evaluation kit for an improvement / maintenance / recovery effect of motor function, a method for screening a substance, and use as a marker . More specifically, the test substance is ingested and exercise load is applied. Compare the marker substance concentration in body fluids collected from animals with the reference value, and evaluate the improvement, maintenance, and recovery effects of the motor function of the test substance. The present invention relates to an evaluation kit, a screening method for a substance for screening a substance having an effect of improving / maintaining / recovering a desired motor function using the method, and use as a marker .

近年の健康志向の増大に伴い、運動に対する関心が高まっている。継続的・習慣的な運動が疾病予防や健康維持に有用であることは、経験的に明らかである。また、運動機能に関係する食品素材としてホエイタンパク質(whey protein)が知られており、ホエイタンパク質を含有する筋強化剤や筋肉疲労改善剤が開発されている(特許文献1,2)。   With the recent increase in health orientation, interest in exercise has increased. It is empirically clear that continuous and habitual exercise is useful for disease prevention and health maintenance. In addition, whey protein is known as a food material related to motor function, and muscle strengthening agents and muscle fatigue improving agents containing whey protein have been developed (Patent Documents 1 and 2).

ホエイタンパク質と運動機能との関係については、動物を用いて科学的に調べられている。例えば非特許文献1には、ホエイタンパク質の摂取はカゼイン摂取、大豆タンパク質摂取に比べてトレッドミル運動負荷ラットの肝臓グリコーゲン含量を有意に増加させた旨が記載されている。また、そのメカニズムとして、グリコーゲン構成に関わる糖転移酵素の変動の可能性が示唆されている。また非特許文献2には、ホエイタンパク質を摂取させたラットはカゼインを摂取させたラットに比べて、水泳運動負荷ラットの肝臓及び筋肉中のグリコーゲン含量を有意に増加させた旨が記載されている。さらに非特許文献3には、ホエイタンパク質を摂取させたラットはカゼインを摂取させたラットに比べて、水泳運動負荷ラットの肝臓及び筋肉における脂肪酸合成を促進させた旨が記載されている。これらの結果は、ホエイタンパク質の摂取と継続的な運動とを組み合わせが、より高い運動機能の向上効果や維持・回復効果を生じさせることを示している。すなわち、運動負荷をかけると共にホエイタンパク質を摂取させた動物においては、運動機能(運動能力、運動パフォーマンス等)が特に高い状態となる。   The relationship between whey protein and motor function has been scientifically investigated using animals. For example, Non-Patent Document 1 describes that intake of whey protein significantly increased the liver glycogen content of treadmill-exercised rats compared to casein intake and soy protein intake. In addition, as a mechanism, it is suggested that glycosyltransferases involved in glycogen composition may change. Non-Patent Document 2 describes that rats fed whey protein significantly increased glycogen content in the liver and muscle of rats with swimming exercise compared to rats fed casein. . Furthermore, Non-Patent Document 3 describes that rats fed whey protein promoted fatty acid synthesis in the liver and muscles of swimming exercise-loaded rats compared to rats fed casein. These results indicate that the combination of whey protein intake and continuous exercise produces higher motor function improvement and maintenance / recovery effects. That is, in an animal that is subjected to exercise load and ingested whey protein, the exercise function (exercise ability, exercise performance, etc.) is particularly high.

一方、運動機能と相関する体液中のマーカー物質に関する報告は見当たらず、ホエイタンパク質のような物質の摂取と継続的な運動との組み合わせによりもたらされる運動機能の変動(向上、維持、回復など)を反映するマーカー物質についても知られていない。もしそのようなマーカー物質が特定されれば、ホエイタンパク質と同様の作用を有する物質のスクリーニング等に有用である。   On the other hand, there are no reports on marker substances in body fluids that correlate with motor function, and fluctuations in motor function (improvement, maintenance, recovery, etc.) caused by the combination of ingestion of substances such as whey protein and continuous exercise There is no known marker substance to reflect. If such a marker substance is specified, it is useful for screening a substance having the same action as whey protein.

特開2002−65212号公報JP 2002-65212 A 特開2004−182630号公報JP 2004-182630 A モリフジ(Morifuji)ら,エクスペリメンタル・バイオロジー・アンド・メディシン(Experimental Biology and Medicine),2004年,第230巻,第1号,p23−30Morifuji et al., Experimental Biology and Medicine, 2004, Vol. 230, No. 1, p23-30 モリフジ(Morifuji)ら,ブリティッシュ・ジャーナル・オブ・ニュートリション(British Journal of Nutrition),2005年,第93巻,第1号,p439−445Morifuji et al., British Journal of Nutrition, 2005, Vol. 93, No. 1, p439-445. モリフジ(Morifuji)ら,ニュートリション(Nutrition),2005年,第21巻,第10号,p1052−1058Morifuji et al., Nutrition, 2005, Vol. 21, No. 10, p1052-1058

本発明の目的は、運動機能や筋肉の状態を反映するマーカー物質を特定し、該マーカー物質を指標とした運動機能の向上効果や維持・回復効果を有する物質のスクリーニングに有用な一連の技術を提供することにある。   An object of the present invention is to identify a marker substance that reflects motor function and muscle condition, and to develop a series of techniques useful for screening substances that have an effect of improving and maintaining / recovering motor function using the marker substance as an index. It is to provide.

上記した課題を解決するための請求項1に記載の発明は、被験物質を摂取させると共に運動負荷をかけた動物から採取した体液における下記マーカー物質(A1)、(A2)、(A3)、(A4)、(A5)、及び(A7)の少なくとも1つの濃度を基準値と比較することにより、ただしマーカー物質(A1)と(A2)の濃度測定は質量/電荷比を指標とする方法で行い、前記被験物質が有する運動機能の向上・維持・回復効果を評価することを特徴とする運動機能の向上・維持・回復効果の評価方法である
(A1)pH3.0で弱陽イオン交換体に結合し、かつ質量分析に供すると質量/電荷比が約5280のイオンピークを生じるタンパク質、
(A2)pH9.0で強陰イオン交換体に結合し、かつ質量分析に供すると質量/電荷比が約6830のイオンピークを生じるタンパク質、
(A3)pH3.0で弱陽イオン交換体に結合し、かつ質量分析に供すると質量/電荷比が約7010のイオンピークを生じるタンパク質、
(A4)pH3.0で弱陽イオン交換体に結合し、かつ質量分析に供すると質量/電荷比が約7920のイオンピークを生じるタンパク質、
(A5)pH3.0で弱陽イオン交換体に結合し、かつ質量分析に供すると質量/電荷比が約13700のイオンピークを生じるタンパク質、
(A7)pH3.0で弱陽イオン交換体に結合し、かつ質量分析に供すると質量/電荷比が約47100のイオンピークを生じるタンパク質、であり、
さらに、
マーカー物質(A3)は配列番号7〜9で表される少なくとも1つのアミノ酸配列を含み、
マーカー物質(A4)は配列番号10〜14で表される少なくとも1つのアミノ酸配列を含み、
マーカー物質(A5)はトランスサイレチンに特異的な抗体に対する反応性を有し、
マーカー物質(A7)は配列番号15〜21で表される少なくとも1つのアミノ酸配列を含む。
The invention according to claim 1 for solving the above-described problem is the following marker substances (A1), (A2), (A3), (A) in a body fluid collected from an animal ingested with a test substance and subjected to exercise load. By comparing at least one concentration of A4), (A5), and (A7) with a reference value, the concentration of marker substances (A1) and (A2) is measured by a method using the mass / charge ratio as an index. A method for evaluating an improvement, maintenance, and recovery effect of motor function, characterized by evaluating an improvement, maintenance, and recovery effect of motor function of the test substance .
(A1) a protein that binds to a weak cation exchanger at pH 3.0 and produces an ion peak with a mass / charge ratio of about 5280 when subjected to mass spectrometry;
(A2) a protein that binds to a strong anion exchanger at pH 9.0 and produces an ion peak with a mass / charge ratio of about 6830 when subjected to mass spectrometry;
(A3) a protein that binds to a weak cation exchanger at pH 3.0 and produces an ion peak with a mass / charge ratio of about 7010 when subjected to mass spectrometry;
(A4) a protein that binds to a weak cation exchanger at pH 3.0 and produces an ion peak with a mass / charge ratio of about 7920 when subjected to mass spectrometry;
(A5) a protein that binds to a weak cation exchanger at pH 3.0 and produces an ion peak with a mass / charge ratio of about 13700 when subjected to mass spectrometry;
(A7) a protein that binds to a weak cation exchanger at pH 3.0 and produces an ion peak with a mass / charge ratio of about 47100 when subjected to mass spectrometry,
further,
The marker substance (A3) comprises at least one amino acid sequence represented by SEQ ID NOs: 7 to 9,
The marker substance (A4) includes at least one amino acid sequence represented by SEQ ID NOs: 10 to 14,
The marker substance (A5) has reactivity with an antibody specific to transthyretin,
The marker substance (A7) includes at least one amino acid sequence represented by SEQ ID NOs: 15 to 21.

本発明は物質が有する運動機能の向上・維持・回復効果の評価方法に係るものであり、被験物質を摂取させると共に運動負荷をかけた動物から採取した体液における上記マーカー物質(A1)、(A2)、(A3)、(A4)、(A5)、及び(A7)の少なくとも1つの濃度を基準値と比較することにより、被験物質が有する運動機能の向上・維持・回復効果を評価するものである。上記マーカー物質(A1)、(A2)、(A3)、(A4)、(A5)、及び(A7)は、運動負荷をかけると共にホエイタンパク質を摂取させた動物の体液中で有意に増減するタンパク質であり、継続的な運動とホエイタンパク質摂取との併用によってもたらされる運動機能(運動能力、運動パフォーマンス等)の変動(向上、維持、回復など)を反映するものである。本発明によれば、被験物質が有する運動機能の向上・維持・回復効果を容易かつ高精度に評価することができる。なお、「動物」には、マウス等の飼育可能な動物の他、ヒトも含むものとする。 The present invention relates to a method for evaluating the effect of improving, maintaining, and recovering the motor function of a substance. The marker substance (A1) , (A2 ) in a body fluid collected from an animal ingested with a test substance and subjected to exercise load ), (A3), (A4), (A5), and (A7) by comparing at least one concentration with a reference value to evaluate the improvement / maintenance / recovery effect of the test substance. is there. The marker substances (A1) , (A2), (A3), (A4), (A5), and (A7) are proteins that increase or decrease significantly in the body fluid of an animal that is subjected to exercise load and ingested whey protein It reflects fluctuations (improvement, maintenance, recovery, etc.) of motor functions (exercise ability, exercise performance, etc.) brought about by combined use of continuous exercise and whey protein intake. ADVANTAGE OF THE INVENTION According to this invention, the improvement / maintenance / recovery effect of the motor function which a test substance has can be evaluated easily and with high precision. The “animal” includes humans as well as animals such as mice.

ここで「運動機能の向上効果」とは、正常レベルにある運動機能をさらに向上させる効果をいう。物質が有する運動機能の向上効果を評価することにより、例えば、運動機能のさらなる向上を目指すアスリートに適した食品素材等のスクリーニングを行うことができる。また「運動機能の維持効果」とは、運動機能の低下を抑えて正常レベルに維持しようとする効果をいう。物質が有する運動機能の維持効果を評価することにより、例えば、運動機能の低下を予防したい高齢者に適した食品素材等のスクリーニングを行うことができる。また「運動機能の回復効果」とは、低下した運動機能を正常レベルに戻そうとする効果をいう。物質が有する運動機能の回復効果を評価することにより、例えば、リハビリテーションによって運動機能の回復を目指す負傷者に適した食品素材等のスクリーニングを行うことができる。そして「運動機能の向上・維持・回復効果」とは、運動機能の向上効果、維持効果、及び回復効果のうちの少なくとも1つの効果を指すものとする。   Here, the “effect of improving motor function” refers to an effect of further improving motor function at a normal level. By evaluating the improvement effect of the motor function of the substance, for example, it is possible to screen food materials suitable for athletes aiming at further improvement of the motor function. Moreover, the “maintenance effect of motor function” refers to an effect of attempting to maintain a normal level while suppressing a decrease in motor function. By evaluating the maintenance effect of the motor function possessed by the substance, for example, it is possible to screen food materials and the like suitable for elderly people who want to prevent a decrease in motor function. The “motor function recovery effect” refers to an effect of trying to return a reduced motor function to a normal level. By evaluating the recovery effect of the motor function of the substance, for example, a food material suitable for an injured person who aims to recover the motor function by rehabilitation can be screened. The “improvement / maintenance / recovery effect of motor function” refers to at least one of the improvement effect, maintenance effect, and recovery effect of motor function.

ここで、各マーカー物質における質量/電荷比(以下、「m/z」と略記することもある。)の「約5280」、「約13700」、「約47100」等の値は、質量分析における測定値の誤差範囲を考慮した値であり、概ね±0.2%の幅を有する。すなわち、約5280は概ね5280±0.2%、約13700は概ね13700±0.2%、約647100は概ね47100±0.2%を表す。他の質量/電荷比についても全く同様に、概ね±0.2%の幅を有する。また、これらのマーカー物質はいずれも主に血液中に存在するタンパク質である。被験物質が運動機能の向上・維持・回復効果を有する場合、動物の体液中のマーカー物質(A1)、(A4)、及び(A7)の濃度はより高値を示し、(A2)、(A3)、及び(A5)の濃度はより低値を示す。 Here, the values such as “about 5280”, “about 13700”, “about 47100”, etc. of the mass / charge ratio (hereinafter sometimes abbreviated as “m / z”) in each marker substance are This is a value that takes into account the error range of the measured value, and has a width of approximately ± 0.2%. That is, about 5280 represents about 5280 ± 0.2%, about 13700 represents about 13700 ± 0.2%, and about 647100 represents about 47100 ± 0.2%. The other mass / charge ratios have a width of approximately ± 0.2% in a similar manner. In addition, these marker substances are mainly proteins present in blood. When the test substance has an effect of improving / maintaining / recovering the motor function, the concentrations of the marker substances (A1), (A4), and (A7) in the body fluid of the animal show higher values (A2), (A3) , the concentration of and (A5) shows a lower value.

請求項2に記載の発明は、被験物質を摂取させると共に運動負荷をかけた動物から採取した体液における下記マーカー物質(A1)、(A2)、(A3)、(A4)、(A5)及び(A7)の少なくとも1つの濃度を基準値と比較することにより、ただしマーカー物質(A1)と(A2)の濃度測定は質量/電荷比を指標とする方法で行い、前記被験物質が有する運動機能の向上・維持・回復効果を評価することを特徴とする運動機能の向上・維持・回復効果の評価方法である
(A1)pH3.0で弱陽イオン交換体に結合し、かつ質量分析に供すると質量/電荷比が約5280のイオンピークを生じるタンパク質、
(A2)pH9.0で強陰イオン交換体に結合し、かつ質量分析に供すると質量/電荷比が約6830のイオンピークを生じるタンパク質、
(A3)pH3.0で弱陽イオン交換体に結合し、かつ質量分析に供すると質量/電荷比が約7010のイオンピークを生じるタンパク質、
(A4)pH3.0で弱陽イオン交換体に結合し、かつ質量分析に供すると質量/電荷比が約7920のイオンピークを生じるタンパク質、
(A5)pH3.0で弱陽イオン交換体に結合し、かつ質量分析に供すると質量/電荷比が約13700のイオンピークを生じるタンパク質、
(A7)pH3.0で弱陽イオン交換体に結合し、かつ質量分析に供すると質量/電荷比が約47100のイオンピークを生じるタンパク質、であり、
さらに、
マーカー物質(A3)はアポリポタンパク質C1又はその修飾体であり、
マーカー物質(A4)はアポリポタンパク質A2又はその修飾体であり、
マーカー物質(A5)はトランスサイレチン又はその修飾体であり、
マーカー物質(A7)はβ2−グリコプロテイン1又はその修飾体である。
The invention according to claim 2 includes the following marker substances (A1), (A2), (A3), (A4), (A5) and (A) in a body fluid collected from an animal that is ingested and exercised. By comparing at least one concentration of A7) with a reference value, the concentration of marker substances (A1) and (A2) is measured by a method using the mass / charge ratio as an index, and the motor function of the test substance is measured . This is a method for evaluating the improvement, maintenance and recovery effects of motor function, characterized by evaluating the improvement, maintenance and recovery effects .
(A1) a protein that binds to a weak cation exchanger at pH 3.0 and produces an ion peak with a mass / charge ratio of about 5280 when subjected to mass spectrometry;
(A2) a protein that binds to a strong anion exchanger at pH 9.0 and produces an ion peak with a mass / charge ratio of about 6830 when subjected to mass spectrometry;
(A3) a protein that binds to a weak cation exchanger at pH 3.0 and produces an ion peak with a mass / charge ratio of about 7010 when subjected to mass spectrometry;
(A4) a protein that binds to a weak cation exchanger at pH 3.0 and produces an ion peak with a mass / charge ratio of about 7920 when subjected to mass spectrometry;
(A5) a protein that binds to a weak cation exchanger at pH 3.0 and produces an ion peak with a mass / charge ratio of about 13700 when subjected to mass spectrometry;
(A7) a protein that binds to a weak cation exchanger at pH 3.0 and produces an ion peak with a mass / charge ratio of about 47100 when subjected to mass spectrometry,
further,
The marker substance (A3) is apolipoprotein C1 or a modified form thereof,
The marker substance (A4) is apolipoprotein A2 or a modified form thereof,
The marker substance (A5) is transthyretin or a modified form thereof,
The marker substance (A7) is β2-glycoprotein 1 or a modified form thereof.

アポリポタンパク質C1、アポリポタンパク質A2、トランスサイレチン、及びβ2−グリコプロテイン1はいずれも物理化学的性質がよく知られているので、本発明の運動機能の向上・維持・回復効果の評価方法によればマーカー物質(A3)、(A4)、(A5)、(A7)の解析が容易である。   Since all of apolipoprotein C1, apolipoprotein A2, transthyretin, and β2-glycoprotein 1 are well known in physicochemical properties, the method for evaluating the improvement / maintenance / recovery effect of motor function according to the present invention For example, the marker substances (A3), (A4), (A5), and (A7) can be easily analyzed.

「タンパク質の修飾体」の代表例は、当該タンパク質を構成するアミノ酸残基の少なくとも1つが修飾されたタンパク質である。「修飾」には化合物や官能基の付加(例:リン酸化)のみならず、脱離(例:脱リン酸化)も含まれる。また「タンパク質又はその修飾体」には、当該タンパク質のアイソフォームが含まれる。さらに「タンパク質又はその修飾体」には、当該タンパク質の1次構造において数個のアミノ酸残基が欠失、置換若しくは付加されたような実質的に同一のタンパク質が含まれる。またさらに、「タンパク質又はその修飾体」には、プロテアーゼによる切断を受けた当該タンパク質由来のタンパク質断片が含まれる。なお、複合体タンパク質の場合には「タンパク質又はその修飾体」にはそのサブユニットも含まれるものとする。   A representative example of “modified protein” is a protein in which at least one of the amino acid residues constituting the protein is modified. “Modification” includes not only addition of a compound or functional group (eg, phosphorylation) but also elimination (eg, dephosphorylation). The “protein or a modified form thereof” includes an isoform of the protein. Further, “protein or a modified form thereof” includes substantially the same protein in which several amino acid residues are deleted, substituted or added in the primary structure of the protein. Furthermore, “protein or a modified product thereof” includes a protein fragment derived from the protein that has been cleaved by a protease. In the case of a complex protein, “protein or a modified product thereof” includes its subunits.

同様の課題を解決するための請求項3に記載の発明は、被験物質を摂取させると共に運動負荷をかけた動物から採取した体液における下記マーカー物質(B1)〜(B4)のいずれかに属する少なくとも1つの濃度を基準値と比較することにより、前記被験物質が有する運動機能の向上・維持・回復効果を評価することを特徴とする運動機能の向上・維持・回復効果の評価方法である。
(B1)アポリポタンパク質C1又はその修飾体、
(B2)アポリポタンパク質A2又はその修飾体、
(B3)トランスサイレチン又はその修飾体、
(B4)β2−グリコプロテイン1又はその修飾体。
The invention according to claim 3 for solving the same problem includes at least one of the following marker substances (B1) to (B4) in a body fluid collected from an animal ingested with a test substance and subjected to exercise load: This is a method for evaluating the improvement / maintenance / recovery effect of motor function, characterized by evaluating the improvement / maintenance / recovery effect of motor function of the test substance by comparing one concentration with a reference value.
(B1) Apolipoprotein C1 or a modified product thereof,
(B2) Apolipoprotein A2 or a modified product thereof,
(B3) transthyretin or a modified form thereof,
(B4) β2-glycoprotein 1 or a modified form thereof.

本発明の運動機能の向上・維持・回復効果の評価方法は、被験物質を摂取させると共に運動負荷をかけた動物から採取した体液における上記マーカー物質(B1)〜(B4)のいずれかに属する少なくとも1つの濃度を基準値と比較することにより、被験物質が有する運動機能の向上・維持・回復効果を評価するものである。上記マーカー物質(B1)〜(B4)は、ホエイタンパク質を摂取させると共に運動負荷をかけた動物の体液中で有意に増減するタンパク質であり、継続的な運動とホエイタンパク質摂取との併用によってもたらされる運動機能(運動能力、運動パフォーマンス等)の変動(向上、維持、回復など)を反映するものである。本発明によれば、被験物質が有する運動機能の向上・維持・回復効果を容易かつ高精度に評価することができる。さらに、アポリポタンパク質C1、アポリポタンパク質A2、トランスサイレチン、及びβ2−グリコプロテイン1はいずれも物理化学的性質がよく知られているので、解析が容易である。なお本発明においても、「動物」には、マウス等の飼育可能な動物の他、ヒトも含むものとする。   The method for evaluating the improvement / maintenance / recovery effect of the motor function according to the present invention includes at least one of the marker substances (B1) to (B4) in a body fluid collected from an animal ingested with a test substance and subjected to exercise load. By comparing one concentration with a reference value, the effect of improving, maintaining and restoring the motor function of the test substance is evaluated. The marker substances (B1) to (B4) are proteins that increase and decrease significantly in body fluids of animals that are ingested and exercised whey protein, and are brought about by the combined use of continuous exercise and whey protein intake. It reflects fluctuations (improvement, maintenance, recovery, etc.) of motor function (motor ability, exercise performance, etc.). ADVANTAGE OF THE INVENTION According to this invention, the improvement / maintenance / recovery effect of the motor function which a test substance has can be evaluated easily and with high precision. Further, since apolipoprotein C1, apolipoprotein A2, transthyretin, and β2-glycoprotein 1 are all well known in physicochemical properties, they are easy to analyze. In the present invention, the term “animal” includes humans as well as animals such as mice.

(B1)〜(B4)に属するマーカー物質は、いずれも主に血液中に存在する。被験物質がホエイタンパク質と同様の運動機能の向上・維持・回復効果を有する場合、動物の体液中のマーカー物質(B2)及び(B)の濃度はより高値を示し、(B1)及び(B3)の濃度はより低値を示す。 All of the marker substances belonging to (B1) to (B4) are mainly present in blood. When the test substance has the effect of improving, maintaining and restoring the motor function similar to whey protein, the concentrations of the marker substances (B2) and (B 4 ) in the body fluid of the animal show higher values, and (B1) and (B3 ) Concentration is lower.

本発明においても「タンパク質の修飾体」の代表例は、当該タンパク質を構成するアミノ酸残基の少なくとも1つが修飾されたタンパク質であり、「修飾」には化合物や官能基の付加のみならず、脱離も含まれる。また「タンパク質又はその修飾体」には、当該タンパク質のアイソフォーム、当該タンパク質の1次構造において数個のアミノ酸残基が欠失、置換若しくは付加されたような実質的に同一のタンパク質、並びに、プロテアーゼによる切断を受けた当該タンパク質由来のタンパク質断片が含まれる。さらに、複合体タンパク質の場合には「タンパク質又はその修飾体」にはそのサブユニットも含まれるものとする。   In the present invention, a representative example of a “modified protein” is a protein in which at least one of the amino acid residues constituting the protein is modified. The “modification” includes not only addition of a compound or functional group but also desorption. Separation is also included. In addition, “protein or a modified form thereof” includes an isoform of the protein, a substantially identical protein in which several amino acid residues are deleted, substituted or added in the primary structure of the protein, and Protein fragments derived from the protein that have been cleaved by a protease are included. Furthermore, in the case of a complex protein, the “protein or a modified form thereof” includes its subunits.

請求項4に記載の発明は、前記基準値は、下記(I)及び/又は(II)であることを特徴とする請求項1〜3のいずれか1項に記載の運動機能の向上・維持・回復効果の評価方法である。
(I)前記被験物質を摂取させずに運動負荷をかけた動物から採取した体液における前記マーカー物質の濃度、
(II)運動負荷をかけずに前記被験物質を摂取させた動物から採取した体液における前記マーカー物質の濃度。
The invention according to claim 4 is characterized in that the reference value is the following (I) and / or (II): Improvement / maintenance of motor function according to any one of claims 1 to 3 -It is a method for evaluating the recovery effect.
(I) the concentration of the marker substance in a body fluid collected from an animal subjected to exercise without taking the test substance,
(II) The concentration of the marker substance in a body fluid collected from an animal ingested with the test substance without applying an exercise load.

かかる構成により、被験物質が有する運動機能の向上・維持・回復効果を、より容易かつ高精度に評価することができる。   With such a configuration, it is possible to more easily and accurately evaluate the improvement / maintenance / recovery effect of the motor function of the test substance.

請求項5に記載の発明は、前記体液は、血液であることを特徴とする請求項1〜4のいずれか1項に記載の運動機能の向上・維持・回復効果の評価方法である。   The invention according to claim 5 is the method for evaluating the improvement / maintenance / recovery effect of motor function according to any one of claims 1 to 4, wherein the body fluid is blood.

かかる構成により、測定試料となる体液を簡単に採取でき、より簡便かつ迅速に、被験物質が有する運動機能の向上・維持・回復効果を評価することができる。   With this configuration, it is possible to easily collect a body fluid as a measurement sample, and to evaluate the improvement / maintenance / recovery effect of the motor function of the test substance more easily and quickly.

請求項6に記載の発明は、前記被験物質は、食品素材であることを特徴とする請求項1〜5のいずれか1項に記載の運動機能の向上・維持・回復効果の評価方法である。   The invention according to claim 6 is the method for evaluating the improvement / maintenance / recovery effect of motor function according to any one of claims 1 to 5, wherein the test substance is a food material. .

かかる構成により、機能性食品の開発を目的として、被験物質が有する運動機能の向上・維持・回復効果を評価することができる。   With such a configuration, for the purpose of developing functional foods, the improvement / maintenance / recovery effect of the motor function of the test substance can be evaluated.

請求項7に記載の発明は、前記体液又は体液成分を、前記マーカー物質に対する親和性を有する物質を固定化した担体に接触させて、体液中の前記マーカー物質を担体上に捕捉し、捕捉された前記マーカー物質の量に基づいて体液中の前記マーカー物質の濃度を算出することを特徴とする請求項1〜6のいずれか1項に記載の運動機能の向上・維持・回復効果の評価方法である。   In the invention according to claim 7, the bodily fluid or bodily fluid component is brought into contact with a carrier on which a substance having affinity for the marker substance is immobilized, and the marker substance in the bodily fluid is captured on the carrier. The method for evaluating the improvement / maintenance / recovery effect of motor function according to claim 1, wherein the concentration of the marker substance in a body fluid is calculated based on the amount of the marker substance. It is.

本発明の運動機能の向上・維持・回復効果の評価方法においては、マーカー物質に対する親和性を有する物質を固定化した担体を使用する。そして、該担体に体液又は体液成分を接触させて、体液又は体液成分に含まれるマーカー物質を、マーカー物質に対する親和性を有する物質を介して担体上に捕捉し、捕捉されたマーカー物質の量に基づいて体液中のマーカー物質の濃度を算出する。本発明の運動機能の向上・維持・回復効果の評価方法によれば、担体上に捕捉されたマーカー物質を測定対象とするので、測定試料中に含まれる夾雑物質の影響を低減させることができ、より高感度かつ高精度でマーカー物質の濃度を測定することができる。なお、体液成分の例としては、体液が血液である場合の血清又は血漿が挙げられる。   In the method for evaluating the improvement / maintenance / recovery effect of the motor function of the present invention, a carrier on which a substance having affinity for a marker substance is immobilized is used. Then, the body fluid or body fluid component is brought into contact with the carrier, and the marker substance contained in the body fluid or body fluid component is captured on the carrier via a substance having affinity for the marker substance, and the amount of the marker substance captured is increased. Based on this, the concentration of the marker substance in the body fluid is calculated. According to the method for evaluating the improvement / maintenance / recovery effect of the motor function according to the present invention, since the marker substance captured on the carrier is the measurement object, the influence of the contaminant contained in the measurement sample can be reduced. The concentration of the marker substance can be measured with higher sensitivity and higher accuracy. Examples of the body fluid component include serum or plasma when the body fluid is blood.

請求項8に記載の発明は、前記担体は平面部分を有し、前記マーカー物質に対する親和性を有する物質は、該平面部分の一部に固定化されていることを特徴とする請求項7に記載の運動機能の向上・維持・回復効果の評価方法である。   The invention according to claim 8 is characterized in that the carrier has a flat portion, and the substance having affinity for the marker substance is immobilized on a part of the flat portion. This is a method for evaluating the improvement, maintenance, and recovery effects of motor function.

本発明の運動機能の向上・維持・回復効果の評価方法では、平面部分を有する担体を用い、マーカー物質に対する親和性を有する物質は該平面部分の一部に固定化されている。かかる構成により、マーカー物質に対する親和性を有する物質を、担体上の複数箇所にスポット的に固定化することができる。その結果、1個の担体で複数の測定試料を同時処理することや、1個の担体で複数のマーカー物質の濃度を同時測定することが可能となり、作業効率がよい。さらに、各スポットの面積を小さくすることにより、微量の測定試料からでもマーカー物質の濃度を測定することができる。なお、平面部分を有する担体の例としては、チップ等の基板が挙げられる。   In the method for evaluating the improvement / maintenance / recovery effect of the motor function of the present invention, a carrier having a planar portion is used, and a substance having affinity for the marker substance is immobilized on a part of the planar portion. With this configuration, a substance having affinity for the marker substance can be spot-fixed at a plurality of locations on the carrier. As a result, it is possible to simultaneously process a plurality of measurement samples with one carrier, and simultaneously measure the concentrations of a plurality of marker substances with one carrier, and work efficiency is improved. Furthermore, by reducing the area of each spot, the concentration of the marker substance can be measured even from a very small amount of measurement sample. An example of the carrier having a planar portion is a substrate such as a chip.

請求項9に記載の発明は、前記マーカー物質に対する親和性を有する物質は、イオン交換体又は抗体であることを特徴とする請求項7又は8に記載の運動機能の向上・維持・回復効果の評価方法である。   The invention according to claim 9 is characterized in that the substance having affinity for the marker substance is an ion exchanger or an antibody, and the effect of improving, maintaining and restoring the motor function according to claim 7 or 8 It is an evaluation method.

本発明の運動機能の向上・維持・回復効果の評価方法においては、マーカー物質に対する親和性を有する物質としてイオン交換体又は抗体を用い、イオン交換体又は抗体を介して測定試料中のマーカー物質を担体上に捕捉する。当該物質がイオン交換体の場合は各種のものが入手容易であり、マーカー物質を捕捉するための担体を容易に調製することができる。また、当該物質が抗体の場合は、より特異的にマーカー物質を捕捉することができる。捕捉されたマーカー物質の量を測定する方法としては、質量分析、イムノアッセイ(抗体の場合)が挙げられる。   In the method for evaluating the improvement / maintenance / recovery effect of the motor function of the present invention, an ion exchanger or an antibody is used as a substance having affinity for the marker substance, and the marker substance in the measurement sample is added via the ion exchanger or the antibody. Capture on the carrier. When the substance is an ion exchanger, various substances are easily available, and a carrier for capturing the marker substance can be easily prepared. Further, when the substance is an antibody, the marker substance can be captured more specifically. Examples of the method for measuring the amount of the captured marker substance include mass spectrometry and immunoassay (in the case of an antibody).

請求項10に記載の発明は、請求項1〜9のいずれか1項に記載の運動機能の向上・維持・回復効果の評価方法によって被験物質が有する運動機能の向上・維持・回復効果を評価し、当該評価結果に基づいて所望の運動機能の向上・維持・回復効果を有する物質をスクリーニングすることを特徴とする物質のスクリーニング方法である。   The invention according to claim 10 evaluates the improvement / maintenance / recovery effect of the test substance possessed by the test substance by the method for evaluating the improvement / maintenance / recovery effect of the motor function according to any one of claims 1 to 9. And screening a substance having an effect of improving / maintaining / recovering a desired motor function based on the evaluation result.

本発明は物質のスクリーニング方法にかかり、動物の体液中における上記(A1)、(A2)、(A3)、(A4)、(A5)、及び(A7)の各マーカー物質および上記(B1)〜(B)に属する各マーカー物質の少なくとも1つの濃度を基準値と比較し、所望の運動機能の向上・維持・回復効果を有する物質をスクリーニングするものである。上記(A1)、(A2)、(A3)、(A4)、(A5)、及び(A7)の各マーカー物質および上記(B1)〜(B)に属する各マーカー物質は、いずれもホエイタンパク質を摂取させると共に運動負荷をかけた動物の体液中で有意に増減するタンパク質であり、継続的な運動とホエイタンパク質摂取との併用によってもたらされる運動機能(運動能力、運動パフォーマンス等)の変動(向上、維持、回復など)を反映するものである。本発明の物質のスクリーニング方法によれば、所望の運動機能の向上・維持・回復効果を有する物質を、容易かつ高精度にスクリーニングすることができる。特に、被験物質が食品素材の場合は、運動機能の向上・維持・回復効果を有する機能性食品の開発に有用な食品素材をスクリーニングすることができる。 The present invention relates to a method for screening a substance, wherein each of the marker substances (A1) , (A2), (A3), (A4), (A5), and (A7) in animal body fluids and (B1) to (B1) to By comparing at least one concentration of each marker substance belonging to (B 4 ) with a reference value, a substance having an effect of improving / maintaining / recovering a desired motor function is screened. Above (A1), (A2), (A3), (A4), (A5), and (A7) each marker substances belonging to each marker substance and the above (B1) ~ (B 4) , both whey protein Is a protein that significantly increases or decreases in the body fluid of an animal subjected to exercise load, and changes (improvement) in motor functions (motor ability, exercise performance, etc.) brought about by continuous exercise and whey protein intake , Maintenance, recovery, etc.). According to the screening method for a substance of the present invention, a substance having an effect of improving / maintaining / recovering a desired motor function can be screened easily and with high accuracy. In particular, when the test substance is a food material, it is possible to screen for a food material useful for developing a functional food having an effect of improving / maintaining / recovering motor function.

請求項11に記載の発明は、請求項1〜9のいずれか1項に記載の運動機能の向上・維持・回復効果の評価方法に用いるためのキットであって、前記マーカー物質に対する親和性を有する物質を固定化した担体を含むことを特徴とする運動機能の向上・維持・回復効果の評価用キットである。   The invention described in claim 11 is a kit for use in the method for evaluating the improvement / maintenance / recovery effect of motor function according to any one of claims 1 to 9, wherein the kit has an affinity for the marker substance. It is a kit for evaluating the improvement / maintenance / recovery effect of motor function, comprising a carrier on which a substance having the substance is immobilized.

本発明の運動機能の向上・維持・回復効果の評価用キットは、マーカー物質に対する親和性を有する物質を固定化した担体を含む。かかる構成により、マーカー物質の濃度測定に際して当該担体を別途用意する必要がなく、きわめて簡便にマーカー物質の濃度を測定することができる。   The kit for evaluating the improvement / maintenance / recovery effect of the motor function of the present invention includes a carrier on which a substance having affinity for a marker substance is immobilized. With this configuration, it is not necessary to prepare the carrier separately when measuring the concentration of the marker substance, and the concentration of the marker substance can be measured very simply.

請求項12に記載の発明は、前記マーカー物質に対する親和性を有する物質は、イオン交換体であることを特徴とする請求項11に記載の運動機能の向上・維持・回復効果の評価用キットである。   The invention according to claim 12 is the kit for evaluating the improvement / maintenance / recovery effect of motor function according to claim 11, wherein the substance having affinity for the marker substance is an ion exchanger. is there.

かかる構成により、マーカー物質をより確実に担体上に捕捉することができる。   With this configuration, the marker substance can be more reliably captured on the carrier.

運動機能の向上・維持・回復効果を有する物質をスクリーニングするために使用される構成が推奨される(請求項13)。   A configuration used for screening a substance having an effect of improving / maintaining / recovering motor function is recommended (claim 13).

請求項14に記載の発明は、動物の体内に存在する下記(A1)、(A2)、(A3)、(A4)、(A5)、及び(A7)の少なくとも1つのタンパク質の、ただしマーカー物質(A1)と(A2)の検出は質量/電荷比を指標とする方法により行う、運動機能の変動を反映するマーカーとしての使用である
(A1)pH3.0で弱陽イオン交換体に結合し、かつ質量分析に供すると質量/電荷比が約5280のイオンピークを生じるタンパク質、
(A2)pH9.0で強陰イオン交換体に結合し、かつ質量分析に供すると質量/電荷比が約6830のイオンピークを生じるタンパク質、
(A3)pH3.0で弱陽イオン交換体に結合し、かつ質量分析に供すると質量/電荷比が約7010のイオンピークを生じるタンパク質、
(A4)pH3.0で弱陽イオン交換体に結合し、かつ質量分析に供すると質量/電荷比が約7920のイオンピークを生じるタンパク質、
(A5)pH3.0で弱陽イオン交換体に結合し、かつ質量分析に供すると質量/電荷比が約13700のイオンピークを生じるタンパク質、
(A7)pH3.0で弱陽イオン交換体に結合し、かつ質量分析に供すると質量/電荷比が約47100のイオンピークを生じるタンパク質、であり、
さらに、
マーカー物質(A3)は配列番号7〜9で表される少なくとも1つのアミノ酸配列を含み、
マーカー物質(A4)は配列番号10〜14で表される少なくとも1つのアミノ酸配列を含み、
マーカー物質(A5)はトランスサイレチンに特異的な抗体に対する反応性を有し、
マーカー物質(A7)は配列番号15〜21で表される少なくとも1つのアミノ酸配列を含む。
The invention according to claim 14 is a marker substance of at least one protein of the following (A1), (A2), (A3), (A4), (A5), and (A7) present in an animal body The detection of (A1) and (A2) is performed by a method using the mass / charge ratio as an index, and is used as a marker reflecting the fluctuation of motor function .
(A1) a protein that binds to a weak cation exchanger at pH 3.0 and produces an ion peak with a mass / charge ratio of about 5280 when subjected to mass spectrometry;
(A2) a protein that binds to a strong anion exchanger at pH 9.0 and produces an ion peak with a mass / charge ratio of about 6830 when subjected to mass spectrometry;
(A3) a protein that binds to a weak cation exchanger at pH 3.0 and produces an ion peak with a mass / charge ratio of about 7010 when subjected to mass spectrometry;
(A4) a protein that binds to a weak cation exchanger at pH 3.0 and produces an ion peak with a mass / charge ratio of about 7920 when subjected to mass spectrometry;
(A5) a protein that binds to a weak cation exchanger at pH 3.0 and produces an ion peak with a mass / charge ratio of about 13700 when subjected to mass spectrometry;
(A7) a protein that binds to a weak cation exchanger at pH 3.0 and produces an ion peak with a mass / charge ratio of about 47100 when subjected to mass spectrometry,
further,
The marker substance (A3) comprises at least one amino acid sequence represented by SEQ ID NOs: 7 to 9,
The marker substance (A4) includes at least one amino acid sequence represented by SEQ ID NOs: 10 to 14,
The marker substance (A5) has reactivity with an antibody specific to transthyretin,
The marker substance (A7) includes at least one amino acid sequence represented by SEQ ID NOs: 15 to 21.

請求項15に記載の発明は、動物の体内に存在する下記(A1)、(A2)、(A3)、(A4)、(A5)、及び(A7)の少なくとも1つのタンパク質の、ただしマーカー物質(A1)と(A2)の検出は質量/電荷比を指標とする方法により行う、運動機能の変動を反映するマーカーとしての使用である
(A1)pH3.0で弱陽イオン交換体に結合し、かつ質量分析に供すると質量/電荷比が約5280のイオンピークを生じるタンパク質、
(A2)pH9.0で強陰イオン交換体に結合し、かつ質量分析に供すると質量/電荷比が約6830のイオンピークを生じるタンパク質、
(A3)pH3.0で弱陽イオン交換体に結合し、かつ質量分析に供すると質量/電荷比が約7010のイオンピークを生じるタンパク質、
(A4)pH3.0で弱陽イオン交換体に結合し、かつ質量分析に供すると質量/電荷比が約7920のイオンピークを生じるタンパク質、
(A5)pH3.0で弱陽イオン交換体に結合し、かつ質量分析に供すると質量/電荷比が約13700のイオンピークを生じるタンパク質、
(A7)pH3.0で弱陽イオン交換体に結合し、かつ質量分析に供すると質量/電荷比が約47100のイオンピークを生じるタンパク質、であり、
さらに、
マーカー物質(A3)はアポリポタンパク質C1又はその修飾体であり、
マーカー物質(A4)はアポリポタンパク質A2又はその修飾体であり、
マーカー物質(A5)はトランスサイレチン又はその修飾体であり、
マーカー物質(A7)はβ2−グリコプロテイン1又はその修飾体である。
The invention according to claim 15 is a marker substance of at least one protein of the following (A1), (A2), (A3), (A4), (A5), and (A7) present in an animal body The detection of (A1) and (A2) is performed by a method using the mass / charge ratio as an index, and is used as a marker that reflects fluctuations in motor function .
(A1) a protein that binds to a weak cation exchanger at pH 3.0 and produces an ion peak with a mass / charge ratio of about 5280 when subjected to mass spectrometry;
(A2) a protein that binds to a strong anion exchanger at pH 9.0 and produces an ion peak with a mass / charge ratio of about 6830 when subjected to mass spectrometry;
(A3) a protein that binds to a weak cation exchanger at pH 3.0 and produces an ion peak with a mass / charge ratio of about 7010 when subjected to mass spectrometry;
(A4) a protein that binds to a weak cation exchanger at pH 3.0 and produces an ion peak with a mass / charge ratio of about 7920 when subjected to mass spectrometry;
(A5) a protein that binds to a weak cation exchanger at pH 3.0 and produces an ion peak with a mass / charge ratio of about 13700 when subjected to mass spectrometry;
(A7) a protein that binds to a weak cation exchanger at pH 3.0 and produces an ion peak with a mass / charge ratio of about 47100 when subjected to mass spectrometry,
further,
The marker substance (A3) is apolipoprotein C1 or a modified form thereof,
The marker substance (A4) is apolipoprotein A2 or a modified form thereof,
The marker substance (A5) is transthyretin or a modified form thereof,
The marker substance (A7) is β2-glycoprotein 1 or a modified form thereof.

請求項16に記載の発明は、動物の体内に存在する下記(B1)〜(B4)の少なくとも1つのタンパク質の、運動機能の変動を反映するマーカーとしての使用である。The invention according to claim 16 is the use of at least one protein of the following (B1) to (B4) present in the body of an animal as a marker reflecting a change in motor function.
(B1)アポリポタンパク質C1又はその修飾体、(B1) Apolipoprotein C1 or a modified product thereof,
(B2)アポリポタンパク質A2又はその修飾体、(B2) Apolipoprotein A2 or a modified product thereof,
(B3)トランスサイレチン又はその修飾体、(B3) transthyretin or a modified form thereof,
(B4)β2−グリコプロテイン1又はその修飾体。(B4) β2-glycoprotein 1 or a modified form thereof.

本発明の運動機能の向上・維持・回復効果の評価方法によれば、被験物質が有する運動機能の向上・維持・回復効果を容易かつ高精度に評価することができる。   According to the evaluation method of the improvement / maintenance / recovery effect of the motor function of the present invention, the improvement / maintenance / recovery effect of the motor function of the test substance can be evaluated easily and with high accuracy.

本発明の物質のスクリーニング方法によれば、所望の運動機能の向上・維持・回復効果を有する物質を容易かつ高精度にスクリーニングすることができる。   According to the screening method for a substance of the present invention, a substance having an effect of improving / maintaining / recovering a desired motor function can be easily and accurately screened.

本発明の運動機能の向上・維持・回復効果の評価用キットによれば、マーカー物質の濃度測定に際して当該担体を別途用意する必要がなく、きわめて簡便にマーカー物質の濃度を測定することができる。   According to the kit for evaluating the improvement / maintenance / recovery effect of the motor function of the present invention, it is not necessary to prepare the carrier separately when measuring the concentration of the marker substance, and the concentration of the marker substance can be measured very simply.

以下、本発明を実施するための最良の形態について詳細に説明する。   Hereinafter, the best mode for carrying out the present invention will be described in detail.

本発明の運動機能の向上・維持・回復効果の評価方法は3つの様相を含む。1つの様相では、被験物質を摂取させると共に運動負荷をかけた動物から採取した体液における下記マーカー物質(A1)、(A2)、(A3)、(A4)、(A5)、及び(A7)の少なくとも1つの濃度を基準値と比較することにより、ただしマーカー物質(A1)と(A2)の濃度測定は質量/電荷比を指標とする方法で行い、前記被験物質が有する運動機能の向上・維持・回復効果を評価する
(A1)pH3.0で弱陽イオン交換体に結合し、かつ質量分析に供すると質量/電荷比が約5280のイオンピークを生じるタンパク質、
(A2)pH9.0で強陰イオン交換体に結合し、かつ質量分析に供すると質量/電荷比が約6830のイオンピークを生じるタンパク質、
(A3)pH3.0で弱陽イオン交換体に結合し、かつ質量分析に供すると質量/電荷比が約7010のイオンピークを生じるタンパク質、
(A4)pH3.0で弱陽イオン交換体に結合し、かつ質量分析に供すると質量/電荷比が約7920のイオンピークを生じるタンパク質、
(A5)pH3.0で弱陽イオン交換体に結合し、かつ質量分析に供すると質量/電荷比が約13700のイオンピークを生じるタンパク質、
(A7)pH3.0で弱陽イオン交換体に結合し、かつ質量分析に供すると質量/電荷比が約47100のイオンピークを生じるタンパク質、であり、
さらに、
マーカー物質(A3)は配列番号7〜9で表される少なくとも1つのアミノ酸配列を含み、
マーカー物質(A4)は配列番号10〜14で表される少なくとも1つのアミノ酸配列を含み、
マーカー物質(A5)はトランスサイレチンに特異的な抗体に対する反応性を有し、
マーカー物質(A7)は配列番号15〜21で表される少なくとも1つのアミノ酸配列を含む。
The evaluation method of the improvement / maintenance / recovery effect of the motor function of the present invention includes three aspects. In one aspect, the following marker substances (A1), (A2), (A3), (A4), (A5), and (A7) in body fluid collected from animals that have been ingested and exercised: By comparing at least one concentration with a reference value, the concentration of marker substances (A1) and (A2) is measured by a method using the mass / charge ratio as an index, and the motor function of the test substance is improved and maintained.・ Evaluate the recovery effect .
(A1) a protein that binds to a weak cation exchanger at pH 3.0 and produces an ion peak with a mass / charge ratio of about 5280 when subjected to mass spectrometry;
(A2) a protein that binds to a strong anion exchanger at pH 9.0 and produces an ion peak with a mass / charge ratio of about 6830 when subjected to mass spectrometry;
(A3) a protein that binds to a weak cation exchanger at pH 3.0 and produces an ion peak with a mass / charge ratio of about 7010 when subjected to mass spectrometry;
(A4) a protein that binds to a weak cation exchanger at pH 3.0 and produces an ion peak with a mass / charge ratio of about 7920 when subjected to mass spectrometry;
(A5) a protein that binds to a weak cation exchanger at pH 3.0 and produces an ion peak with a mass / charge ratio of about 13700 when subjected to mass spectrometry;
(A7) a protein that binds to a weak cation exchanger at pH 3.0 and produces an ion peak with a mass / charge ratio of about 47100 when subjected to mass spectrometry,
further,
The marker substance (A3) comprises at least one amino acid sequence represented by SEQ ID NOs: 7 to 9,
The marker substance (A4) includes at least one amino acid sequence represented by SEQ ID NOs: 10 to 14,
The marker substance (A5) has reactivity with an antibody specific to transthyretin,
The marker substance (A7) includes at least one amino acid sequence represented by SEQ ID NOs: 15 to 21.

これらのマーカー物質はいずれも主に血液中に存在するタンパク質であり、ホエイタンパク質を摂取させると共に運動負荷をかけた動物の体液中で有意に増減し、継続的な運動とホエイタンパク質摂取との併用によってもたらされる運動機能(運動能力、運動パフォーマンス等)の変動(向上、維持、回復など)を反映するものである。被験物質がホエイタンパク質と同様の運動機能の向上・維持・回復効果を有する場合、動物の体液中のマーカー物質(A1)、(A4)、及び(A7)(以下、これらのマーカー物質からなるグループを「グループ1」と称することがある。)の濃度はより高値を示し、(A2)、(A3)、及び(A5)(以下、これらのマーカー物質からなるグループを「グループ2」と称することがある。)の濃度はより低値を示す。 All of these marker substances are proteins mainly present in the blood, and they increase or decrease significantly in the body fluids of animals subjected to exercise load as well as intake of whey protein, and combined use of continuous exercise and whey protein intake It reflects the fluctuations (improvement, maintenance, recovery, etc.) of motor function (motor ability, motor performance, etc.) brought about by. When the test substance has the same improvement / maintenance / restoration effect of motor function as whey protein, the marker substances (A1), (A4), and (A7) in the body fluids of animals (hereinafter, groups consisting of these marker substances) (A2), (A3), and (A5) (hereinafter, a group consisting of these marker substances is referred to as “Group 2”). Concentration is lower).

ある条件のペプチドマッピングによれば、マーカー物質(A3)、(A4)、及び(A7)は、それぞれアポリポタンパク質C1、アポリポタンパク質A2、及びβ2−グリコプロテイン1と同定され得る。また、マーカー物質(A5)はトランスサイレチンに特異的な抗体に対する反応性を有する。すなわち、他の様相では、下記(1)、(2)、(3)、及び(5)の少なくとも1つを満たす。
(1)マーカー物質(A3)はアポリポタンパク質C1又はその修飾体である、
(2)マーカー物質(A4)はアポリポタンパク質A2又はその修飾体である、
(3)マーカー物質(A5)はトランスサイレチン又はその修飾体である、
(5)マーカー物質(A7)はβ2−グリコプロテイン1又はその修飾体である。
According to certain conditions of peptide mapping, the marker substances (A3), (A4), and (A7) can be identified as apolipoprotein C1, apolipoprotein A2, and β2-glycoprotein 1, respectively. The marker substance (A5) has reactivity with an antibody specific for transthyretin. That is, in other aspects , at least one of the following (1) , (2), (3), and (5) is satisfied.
(1) The marker substance (A3) is apolipoprotein C1 or a modified form thereof.
(2) The marker substance (A4) is apolipoprotein A2 or a modified form thereof.
(3) The marker substance (A5) is transthyretin or a modified form thereof.
(5) The marker substance (A7) is β2-glycoprotein 1 or a modified form thereof.

本発明の他の様相では、被験物質を摂取させると共に運動負荷をかけた動物から採取した体液における下記マーカー物質(B1)〜(B4)のいずれかに属する少なくとも1つの濃度を基準値と比較することにより、前記被験物質が有する運動機能の向上・維持・回復効果を評価する。
(B1)アポリポタンパク質C1又はその修飾体、
(B2)アポリポタンパク質A2又はその修飾体、
(B3)トランスサイレチン又はその修飾体、
(B4)β2−グリコプロテイン1又はその修飾体。
In another aspect of the present invention, at least one concentration belonging to any of the following marker substances (B1) to (B4) in a body fluid collected from an animal that has been ingested and exercised is compared with a reference value. Thus, the improvement / maintenance / recovery effect of the motor function of the test substance is evaluated.
(B1) Apolipoprotein C1 or a modified product thereof,
(B2) Apolipoprotein A2 or a modified product thereof,
(B3) transthyretin or a modified form thereof,
(B4) β2-glycoprotein 1 or a modified form thereof.

タンパク質の修飾の例としては、N末端αアミノ基やリジンεアミノ基のメチル化、アセチル化、アデニリル化、ミリスチル化等;セリン・スレオニン・アスパラギンへの糖又は糖鎖の付加;セリン・スレオニン・チロシン・アルギニン・ヒスチジンのリン酸化;システインのシステイニル化、ホモシステイニル化、スルホニル化等;グルタミン酸のγ−カルボキシル化;N末端グルタミン酸のピログルタミン酸への変換、等が挙げられる。また、これらの修飾の脱離(脱メチル化、糖又は糖鎖の脱離、脱リン酸化等)も「修飾」に含まれる。   Examples of protein modifications include methylation, acetylation, adenylylation, myristylation, etc. of N-terminal α-amino group and lysine ε-amino group; addition of sugar or sugar chain to serine / threonine / asparagine; serine / threonine / Examples include phosphorylation of tyrosine, arginine, histidine; cysteine cysteinylation, homocysteinylation, sulfonylation, etc .; γ-carboxylation of glutamic acid; conversion of N-terminal glutamic acid to pyroglutamic acid, and the like. Further, elimination of these modifications (demethylation, elimination of sugars or sugar chains, dephosphorylation, etc.) is also included in “modification”.

「タンパク質又はその修飾体」には、当該タンパク質のアイソフォームが含まれる。アイソフォームとしては、前記した各種の修飾の他、選択的スプライシングによって生じたタンパク質が挙げられる。さらに、「タンパク質又はその修飾体」には、当該タンパク質の1次構造において数個のアミノ酸残基が欠失、置換若しくは付加されたような実質的に同一のタンパク質が含まれる。またさらに、「タンパク質又はその修飾体」には、プロテアーゼによる切断を受けた当該タンパク質由来のタンパク質断片が含まれる。例えば、当該タンパク質由来と認められうる長さのタンパク質断片、例えば20個以上のアミノ酸残基からなるタンパク質断片、分子量が2千以上のタンパク質断片、等が挙げられる。また、複合体タンパク質の場合には「タンパク質又はその修飾体」にはそのサブユニットも含まれるものとする。   The “protein or a modified form thereof” includes an isoform of the protein. Isoforms include proteins generated by alternative splicing in addition to the various modifications described above. Furthermore, the “protein or a modified form thereof” includes substantially the same protein in which several amino acid residues are deleted, substituted or added in the primary structure of the protein. Furthermore, “protein or a modified product thereof” includes a protein fragment derived from the protein that has been cleaved by a protease. For example, a protein fragment having a length that can be recognized as derived from the protein, for example, a protein fragment comprising 20 or more amino acid residues, a protein fragment having a molecular weight of 2,000 or more, and the like can be mentioned. In the case of a complex protein, the “protein or a modified product thereof” includes its subunits.

例えば、シグナル配列が切断された後のアポリポタンパク質C1(配列番号1,マウス由来)のN末端アミノ酸配列は「Ala−Pro」から始まるが、これら2つのアミノ酸は切断され得ることが報告されている(Oleg Chertov et al., Proteomics, Vol. 4, No. 4, 2004)。このようなN末端の2アミノ酸が欠損したアポリポタンパク質C1の断片は「アポリポタンパク質C1の修飾体」に含まれる。   For example, the N-terminal amino acid sequence of apolipoprotein C1 (SEQ ID NO: 1, derived from mouse) after cleavage of the signal sequence starts with “Ala-Pro”, but it has been reported that these two amino acids can be cleaved. (Oleg Chertov et al., Proteomics, Vol. 4, No. 4, 2004). Such a fragment of apolipoprotein C1 lacking two N-terminal amino acids is included in the “modified product of apolipoprotein C1”.

同様に、シグナル配列が切断された後のアポリポタンパク質A2(配列番号2,マウス由来)は78アミノ酸からなるが、これのN末端側70アミノ酸(配列番号3)からなるタンパク質断片は「アポリポタンパク質A2の修飾体」に含まれる。   Similarly, the apolipoprotein A2 (SEQ ID NO: 2, derived from mouse) after cleavage of the signal sequence consists of 78 amino acids, but the protein fragment consisting of 70 amino acids on the N-terminal side (SEQ ID NO: 3) is “apolipoprotein A2 Is included in the "modified form".

トランスサイレチン(transthyretin;プレアルブミンとも呼ばれる)は血漿タンパク質の一種であり、分子量約1万4千のサブユニット4個からなる複合タンパク質である。マウス由来およびヒト由来のトランスサイレチンのアミノ酸配列は、それぞれ配列番号4と5に示すとおりであり、システイン残基を1つ有している。この唯一のシステイン残基のチオール基(−SH)は修飾可能であり、システイン残基への修飾の種類が異なる複数種のトランスサイレチンの修飾体が知られている(例えば、リム(Lim)ら,ジャーナル・オブ・バイオロジカル・ケミストリー(Journal of Biological Chemistry),2003年,第278巻,p49707−49713;リム(Lim)ら,プロテイン・サイエンス(Protein Science),2003年,第12巻,p1775−1785;ゲリック(Gericke)ら,ビー・エム・シー・キャンサー(BMC Cancer),2005年,5:133)。具体的には、システイン残基にスルホン基、システイン、ホモシステイン、システイニルグリシン、又はグルタチオンが付加されたトランスサイレチンの修飾体が知られている。例えばこれらのトランスサイレチンの修飾体が本発明におけるマーカー物質になり得る。なお、本明細書においてはトランスサイレチンのサブユニットについても単に「トランスサイレチン」と呼ぶこととし、複合体とサブユニットとを特に区別しない。   Transthyretin (also called prealbumin) is a kind of plasma protein and is a complex protein consisting of four subunits having a molecular weight of about 14,000. The amino acid sequences of mouse-derived and human-derived transthyretin are as shown in SEQ ID NOs: 4 and 5, respectively, and have one cysteine residue. The thiol group (-SH) of this unique cysteine residue can be modified, and a plurality of modified forms of transthyretin differing in the type of modification to the cysteine residue are known (for example, Lim) , Journal of Biological Chemistry, 2003, 278, p49707-49713; Lim et al., Protein Science, 2003, 12, p1775. -1785; Gericke et al., BMC Cancer, 2005, 5: 133). Specifically, a modified form of transthyretin in which a sulfone group, cysteine, homocysteine, cysteinyl glycine, or glutathione is added to a cysteine residue is known. For example, these modified transthyretins can be used as marker substances in the present invention. In the present specification, the subunit of transthyretin is also simply referred to as “transthyretin”, and the complex and the subunit are not particularly distinguished.

β2−グリコプロテイン1(β2-glycoprotein1;アポリポタンパク質Hとも呼ばれる)についても、その修飾体には上記で例示した各修飾体が含まれる。マウス由来のβ2−グリコプロテイン1のアミノ酸配列を配列番号6に示す。   As for β2-glycoprotein 1 (β2-glycoprotein1; also referred to as apolipoprotein H), the modifications include the respective modifications illustrated above. The amino acid sequence of β2-glycoprotein 1 derived from mouse is shown in SEQ ID NO: 6.

本発明の運動機能の向上・維持・回復効果の評価方法では、(A1)〜(A7)の各マーカー物質並びに(B1)〜(B)に属するマーカー物質の1つだけを用いてもよいし、複数を組み合わせて用いてもよい。 In the evaluation method of improving, maintaining and recovery effect of motor function of the present invention, even when using only one of each marker substances belonging to the (A1) ~ (A7) of and the marker substance (B1) ~ (B 4) It may be used in combination.

動物に運動負荷をかける方法としては、通常の生活で行われる運動以上の負荷がかけられる方法であれば特に限定はなく、例えば、トレッドミルを用いることができる。運動負荷をかける時間や頻度についても特に限定はなく、負荷の内容等によって適宜選択すればよい。例えば、1回あたり数分〜数十分の運動負荷を1日に1回以上与え、これを1週間あたり5日以上実施することが挙げられる。   The method for applying an exercise load to an animal is not particularly limited as long as it is a method that can apply a load more than the exercise performed in normal life. For example, a treadmill can be used. There is no particular limitation on the time and frequency of applying the exercise load, and it may be appropriately selected depending on the content of the load. For example, exercise load of several minutes to several tens of minutes per time is given once or more per day, and this is performed for 5 days or more per week.

本発明の運動機能の向上・維持・回復効果の評価方法では、動物の体液におけるマーカー物質の濃度を基準値と比較する。好ましい実施形態では、当該基準値が下記(I)及び/又は(II)である。
(I)前記被験物質を摂取させずに運動負荷をかけた動物から採取した体液における前記マーカー物質の濃度、
(II)運動負荷をかけずに前記被験物質を摂取させた動物から採取した体液における前記マーカー物質の濃度。
被験物質が運動機能の向上・維持・回復効果を有する場合、動物の体液におけるグループ1に属するマーカー物質の濃度は(I)、(II)より高い値を示し、グループ2に属するマーカー物質の濃度は(I)、(II)より低い値を示す。なお(I)と(II)の基準値はどちらか一方のみを使用してもよいし、併用してもよい。
In the method for evaluating the improvement / maintenance / recovery effect of the motor function of the present invention, the concentration of the marker substance in the animal body fluid is compared with a reference value. In a preferred embodiment, the reference value is (I) and / or (II) below.
(I) the concentration of the marker substance in a body fluid collected from an animal subjected to exercise without taking the test substance,
(II) The concentration of the marker substance in a body fluid collected from an animal ingested with the test substance without applying an exercise load.
When the test substance has an effect of improving / maintaining / recovering motor function, the concentration of the marker substance belonging to group 1 in the body fluid of the animal is higher than (I) and (II), and the concentration of the marker substance belonging to group 2 Indicates a lower value than (I) and (II). Note that either one of the reference values (I) and (II) may be used or may be used in combination.

基準値は予め設定することもできる。例えば、運動機能の向上・維持・回復効果を有する既知物質(例えば、ホエイタンパク質)を用いて事前に動物実験を行い、その蓄積されたデータを元にマーカー物質ごとの基準値(固定値)を決定することができる。すなわち、各種の臨床検査で設定されている基準値(カットオフ値など)と同様の取り扱いが可能である。   The reference value can also be set in advance. For example, using a known substance (for example, whey protein) that has an effect of improving / maintaining / restoring motor function, animal experiments are performed in advance, and a reference value (fixed value) for each marker substance is determined based on the accumulated data. Can be determined. That is, the same handling as the reference values (cut-off values, etc.) set in various clinical tests is possible.

本発明の運動機能の向上・維持・回復効果の評価方法において使用する動物としては特に限定はなく、例えば、ヒト、マウス、ラット、ウサギ、ブタ等を採用することができる。   The animal used in the method for evaluating the improvement / maintenance / recovery effect of the motor function of the present invention is not particularly limited, and for example, humans, mice, rats, rabbits, pigs and the like can be employed.

本発明の運動機能の向上・維持・回復効果の評価方法において使用する動物の体液としては、血液が好ましく用いられる。特に、血液から調製した血清又は血漿(体液成分)を測定試料とすることが好ましい。血清又は血漿は遠心分離等の公知の方法で血液から調製することができる。   Blood is preferably used as the animal body fluid used in the method for evaluating the improvement / maintenance / recovery effect of the motor function of the present invention. In particular, it is preferable to use serum or plasma (body fluid component) prepared from blood as a measurement sample. Serum or plasma can be prepared from blood by a known method such as centrifugation.

本発明の運動機能の向上・維持・回復効果の評価方法における被験物質としては、食品素材、医薬原体などが挙げられる。特に、食品素材を評価対象とする場合は、機能性食品の開発に役立てることができる。   Examples of the test substance in the method for evaluating the improvement / maintenance / recovery effect of the motor function of the present invention include food materials and drug substances. In particular, when food materials are to be evaluated, it can be used for the development of functional foods.

本発明の運動機能の向上・維持・回復効果の評価方法において、マーカー物質の濃度を測定する方法は、そのマーカー物質の濃度を特異的に測定できる方法であれば、タンパク質の定量に一般に用いられている方法をそのまま用いることができる。例えば、各種のイムノアッセイ、質量分析(MS)、クロマトグラフィー、電気泳動等を用いることができる。   In the method for evaluating the improvement / maintenance / recovery effect of the motor function of the present invention, the method for measuring the concentration of a marker substance is generally used for protein quantification as long as it can specifically measure the concentration of the marker substance. Can be used as is. For example, various immunoassays, mass spectrometry (MS), chromatography, electrophoresis and the like can be used.

イムノアッセイによれば、夾雑物質の多い試料のままでも正確にマーカー物質の濃度を測定することができる。イムノアッセイの例としては、抗原抗体結合物を直接的又は間接的に測定する沈降反応、凝集反応、溶血反応などの古典的な方法や、標識法と組み合わせて検出感度を高めたエンザイムイムノアッセイ(EIA)、ラジオイムノアッセイ(RIA)、蛍光イムノアッセイ(FIA)等の方法が挙げられる。なお、これらのイムノアッセイに用いるマーカー物質に特異的な抗体は、モノクローナルでもよいし、ポリクローナルでもよい。   According to the immunoassay, the concentration of the marker substance can be accurately measured even with a sample having a lot of contaminants. Examples of immunoassays include classical methods such as precipitation, agglutination, and hemolysis, which directly or indirectly measure antigen-antibody conjugates, and enzyme immunoassays (EIA) with increased detection sensitivity in combination with labeling methods. , Radioimmunoassay (RIA), fluorescent immunoassay (FIA) and the like. The antibody specific for the marker substance used in these immunoassays may be monoclonal or polyclonal.

質量分析によれば、各マーカー物質由来のイオンピークを特定し、そのイオンピーク強度をもって各マーカー物質の量(濃度)を測定することができる。質量分析によってマーカー物質の濃度を測定する場合のイオン化の方法としては、マトリクス支援レーザーイオン化(matrix-assisted laser desorption/ionization、MALDI)、エレクトロスプレーイオン化(electrospray ionization、ESI)のいずれも適用可能であるが、多価イオンの生成が少ないMALDIが好ましい。特に、飛行時間質量分析計(time-of-flight mass spectrometer、TOF)と組み合わせたMALDI−TOF−MSによれば、より正確にマーカー物質由来のイオンピークを特定することができる。   According to mass spectrometry, an ion peak derived from each marker substance can be specified, and the amount (concentration) of each marker substance can be measured with the ion peak intensity. As the ionization method for measuring the concentration of the marker substance by mass spectrometry, any of matrix-assisted laser desorption / ionization (MALDI) and electrospray ionization (ESI) can be applied. However, MALDI is preferred because it produces less multivalent ions. In particular, according to MALDI-TOF-MS combined with a time-of-flight mass spectrometer (TOF), an ion peak derived from a marker substance can be identified more accurately.

電気泳動によりマーカー物質の濃度を測定する場合は、例えば、検査材料をSDS−ポリアクリルアミドゲル電気泳動(SDS−PAGE)に供して目的のマーカー物質を分離し、適宜の色素や蛍光物質でゲルを染色し、目的のマーカー物質に相当するバンドの濃さや蛍光強度を測定すればよい。SDS−PAGEだけではマーカー物質の分離が不十分な場合は、等電点電気泳動(IEF)と組み合わせた2次元電気泳動を用いることもできる。さらに、ゲルから直接検出するのではなく、ウエスタンブロッティングを行って膜上のマーカー物質の量を測定することもできる。   When measuring the concentration of the marker substance by electrophoresis, for example, the test material is subjected to SDS-polyacrylamide gel electrophoresis (SDS-PAGE) to separate the target marker substance, and the gel is prepared with an appropriate dye or fluorescent substance. It is only necessary to stain and measure the intensity and fluorescence intensity of the band corresponding to the target marker substance. When the separation of the marker substance is insufficient by SDS-PAGE alone, two-dimensional electrophoresis combined with isoelectric focusing (IEF) can also be used. Furthermore, instead of detecting directly from the gel, Western blotting can also be performed to measure the amount of marker substance on the membrane.

クロマトグラフィーによってマーカー物質の濃度を測定する場合は、例えば、液体高速クロマトグラフィー(HPLC)による方法を用いることができる。すなわち、試料をHPLCに供して目的のマーカー物質を分離し、そのクロマトグラムのピーク面積を測定することにより試料中のマーカー物質の濃度を測定することができる。   When measuring the concentration of the marker substance by chromatography, for example, a method by liquid high performance chromatography (HPLC) can be used. That is, the concentration of the marker substance in the sample can be measured by subjecting the sample to HPLC to separate the target marker substance and measuring the peak area of the chromatogram.

好ましい実施形態では、マーカー物質を担体上に捕捉し、その捕捉されたマーカー物質を測定対象とする。すなわち、マーカー物質に対する親和性を有する物質を担体に固定化し、その親和性を有する物質を介してマーカー物質を担体上に捕捉する。そして、捕捉された前記マーカー物質の量に基づいて体液中の前記マーカー物質の濃度を算出する。本実施形態によれば、試料中に含まれる夾雑物質の影響を低減させることができ、より高感度かつ高精度でマーカー物質の濃度を測定することができる。本実施形態において用いることができる担体の例としては、ビーズ、金属、ガラス、樹脂等のような一般的なものの他、基板のような、平面部分を有する担体を用いることができる。基板を用いる場合は、その平面部分の一部にマーカー物質に対する親和性を有する物質を固定化することが好ましい。例としては、基板としてチップを用い、その表面の複数箇所にスポット的にマーカー物質に親和性を有する物質を固定化した担体が挙げられる。なお「親和性」の例としては、イオン結合、金属キレート体とタンパク質中のヒスチジン残基等とのアフィニティ、抗原と抗体、酵素と基質、若しくはホルモンとレセプターのようなバイオアフィニティ、及び、疎水性相互作用のような化学的な相互作用、が挙げられる。   In a preferred embodiment, a marker substance is captured on a carrier, and the captured marker substance is a measurement target. That is, a substance having affinity for the marker substance is immobilized on the carrier, and the marker substance is captured on the carrier via the substance having the affinity. Then, the concentration of the marker substance in the body fluid is calculated based on the amount of the captured marker substance. According to this embodiment, it is possible to reduce the influence of contaminants contained in the sample, and to measure the concentration of the marker substance with higher sensitivity and higher accuracy. As an example of the carrier that can be used in the present embodiment, a carrier having a flat portion such as a substrate can be used in addition to a general one such as beads, metal, glass, resin, and the like. In the case of using a substrate, it is preferable to immobilize a substance having affinity for the marker substance on a part of the planar portion. As an example, there may be mentioned a carrier in which a chip is used as a substrate and a substance having affinity for a marker substance is spot-fixed at a plurality of spots on the surface. Examples of “affinity” include ion binding, affinity between metal chelate and histidine residue in protein, antigen and antibody, enzyme and substrate, bioaffinity such as hormone and receptor, and hydrophobicity. Chemical interactions such as interactions.

イオン結合によってマーカー物質を担体に捕捉する場合は、イオン交換体を担体に固定化する。この場合、イオン交換体には陽イオン交換体、陰イオン交換体のいずれも用いることができ、さらに、強陽イオン交換体、弱陽イオン交換体、強陰イオン交換体、弱陰イオン交換体のいずれも用いることができるが、強陰イオン交換体と弱陽イオン交換体が好ましく用いられる。強陰イオン交換体の例としては、4級アンモニウム(トリメチルアミノメチル)(QA)、4級アミノエチル(ジエチル,モノ・2−ヒドロキシブチルアミノエチル)(QAE)、4級アンモニウム(トリメチルアンモニウム)(QMA)等の強陰イオン交換基を有するものが挙げられる。また、弱陽イオン交換体の例としては、カルボキシメチル(CM)等の弱陽イオン交換基を有するものが挙げられる。また、強陽イオン交換体の例としては、スルホプロピル(SP)等の強陽イオン交換基を有するものが挙げられる。さらに、弱陰イオン交換体の例としては、ジメチルアミノエチル(DE)、ジエチルアミノエチル(DEAE)等の弱陰イオン交換基を有するものが挙げられる。   When capturing the marker substance on the carrier by ionic bonding, the ion exchanger is immobilized on the carrier. In this case, either a cation exchanger or an anion exchanger can be used as the ion exchanger, and further, a strong cation exchanger, a weak cation exchanger, a strong anion exchanger, and a weak anion exchanger. Either of these can be used, but a strong anion exchanger and a weak cation exchanger are preferably used. Examples of strong anion exchangers include quaternary ammonium (trimethylaminomethyl) (QA), quaternary aminoethyl (diethyl, mono-2-hydroxybutylaminoethyl) (QAE), quaternary ammonium (trimethylammonium) ( And those having a strong anion exchange group such as QMA). Examples of weak cation exchangers include those having weak cation exchange groups such as carboxymethyl (CM). Examples of strong cation exchangers include those having a strong cation exchange group such as sulfopropyl (SP). Furthermore, examples of the weak anion exchanger include those having a weak anion exchange group such as dimethylaminoethyl (DE) and diethylaminoethyl (DEAE).

金属キレート体を介してマーカー物質を捕捉する場合は、例えば、Cu2+、Zn2+、Ni2+、Co2+、Al3+、Fe3+、Ga3+等の金属キレート体を固定化した担体を用いることができる。 When capturing a marker substance via a metal chelate, for example, a metal chelate such as Cu 2+ , Zn 2+ , Ni 2+ , Co 2+ , Al 3+ , Fe 3+ , Ga 3+ is fixed. A fluorinated carrier can be used.

抗体によってマーカー物質を担体に捕捉する場合は、マーカー物質に特異的な抗体を担体に固定化すればよい。   When a marker substance is captured on a carrier by an antibody, an antibody specific for the marker substance may be immobilized on the carrier.

疎水性相互作用によってマーカー物質を担体に捕捉する場合は、担体に疎水基をもつ物質を固定化する。疎水基の例としては、C4〜C20のアルキル基、フェニル基等が挙げられる。   When a marker substance is captured on a carrier by hydrophobic interaction, a substance having a hydrophobic group is immobilized on the carrier. Examples of hydrophobic groups include C4-C20 alkyl groups, phenyl groups, and the like.

本実施形態においてマーカー物質の測定方法にイムノアッセイを用いる場合は、抗体を固定化した担体を用いることが好ましい。このようにすれば、担体に固定化された抗体を1次抗体としたイムノアッセイの系を簡単に構築することができる。例えば、マーカー物質に特異的でエピトープの異なる2種類の抗体を用意し、一方を1次抗体として担体に固定化し、他方を2次抗体として酵素標識し、サンドイッチEIAの系を構築することができる。その他、結合阻止法や競合法によるイムノアッセイの系も構築可能である。さらに、担体として基板を用いる場合は、抗体チップによるイムノアッセイが可能である。抗体チップによれば、複数のマーカー物質の濃度を同時に測定でき、迅速な測定が可能である。   In this embodiment, when an immunoassay is used as a method for measuring a marker substance, it is preferable to use a carrier on which an antibody is immobilized. In this way, an immunoassay system using the antibody immobilized on the carrier as the primary antibody can be easily constructed. For example, two types of antibodies specific to a marker substance and having different epitopes are prepared, one is immobilized on a carrier as a primary antibody, and the other is enzyme-labeled as a secondary antibody to construct a sandwich EIA system. . In addition, immunoassay systems based on binding inhibition methods and competitive methods can be constructed. Further, when a substrate is used as a carrier, immunoassay using an antibody chip is possible. According to the antibody chip, the concentration of a plurality of marker substances can be measured simultaneously, and rapid measurement is possible.

一方、本実施形態において質量分析を用いる場合は、例えば、抗体の他、イオン交換体、金属キレート体又は疎水基を固定化した担体を用いることができる。なお、これらの物質による結合は抗原と抗体等のバイオアフィニティほどの特異性がないので、これらの物質を固定化した担体を用いる場合はマーカー物質以外の物質も担体上に捕捉されうるが、質量分析によれば分子量を反映した質量分析計スペクトルによって定量するので、問題はない。特に、担体として基板を用い、表面エンハンス型レーザー脱離イオン化(surface-enhanced laser desorption/ionization)−飛行時間質量分析(time-of-flight mass spectrometry)(以下、「SELDI−TOF−MS」と称する)を行うことにより、マーカー物質の濃度をより正確に測定することができる。使用できる基板の種類としては、陽イオン交換基板、陰イオン交換基板、順相基板、逆相基板、金属イオン基板、抗体基板等を用いることができるが、陽イオン交換基板、特に弱陽イオン交換基板と、陰イオン交換基板、特に強陰イオン交換基板が好ましく用いられる。   On the other hand, when mass spectrometry is used in the present embodiment, for example, in addition to antibodies, ion exchangers, metal chelates, or carriers on which hydrophobic groups are immobilized can be used. Since binding by these substances is not as specific as bioaffinity such as antigens and antibodies, when using a carrier on which these substances are immobilized, substances other than the marker substance can also be captured on the carrier. According to the analysis, there is no problem because it is quantified by the mass spectrometer spectrum reflecting the molecular weight. In particular, using a substrate as a carrier, surface-enhanced laser desorption / ionization-time-of-flight mass spectrometry (hereinafter referred to as "SELDI-TOF-MS") ), The concentration of the marker substance can be measured more accurately. As the types of substrates that can be used, cation exchange substrates, anion exchange substrates, normal phase substrates, reverse phase substrates, metal ion substrates, antibody substrates, etc. can be used, but cation exchange substrates, particularly weak cation exchanges. A substrate and an anion exchange substrate, particularly a strong anion exchange substrate are preferably used.

本発明の物質のスクリーニング方法は、本発明の運動機能の向上・維持・回復効果の評価方法によって被験物質が有する運動機能の向上・維持・回復効果を評価し、所望の運動機能の向上・維持・回復効果を有する物質をスクリーニングするものである。本発明の物質のスクリーニング方法においても、上記した本発明の運動機能の向上・維持・回復効果の評価方法の実施形態と全く同様の実施形態をとることができる。   The screening method for a substance of the present invention evaluates the improvement / maintenance / recovery effect of a test substance by the method for evaluating the improvement / maintenance / recovery effect of the motor function of the present invention, and improves / maintains the desired motor function. -Screening for substances that have a recovery effect. In the substance screening method of the present invention, the same embodiment as the above-described method for evaluating the improvement / maintenance / recovery effect of motor function of the present invention can be employed.

本発明の運動機能の向上・維持・回復効果の評価方法を簡便に行なうために、必要な試薬類をまとめて評価用キットを構築することができる。当該評価用キットとしては、例えば、マーカー物質に対する親和性を有する物質を固定化した担体を含むものが挙げられる。特に、担体として、CM等の弱陽イオン交換体、あるいはQAやQAE等の強陰イオン交換体を固定化した基板を含めた評価用キットによれば、SELDI−TOF−MS等を簡便に行なうことができる。本キット中には他の試薬類、例えば、標準物質、前処理用の各種緩衝液等を含めてもよい。なお本キットは、所望の運動機能の向上・維持・回復効果を有する物質をスクリーニングするためのキットとしても使用できる。本発明のキットの構成例を以下に挙げる。   In order to easily perform the method for evaluating the improvement / maintenance / recovery effect of the motor function of the present invention, an evaluation kit can be constructed by collecting necessary reagents. Examples of the evaluation kit include those containing a carrier on which a substance having affinity for a marker substance is immobilized. In particular, according to the evaluation kit including a substrate on which a weak cation exchanger such as CM or a strong anion exchanger such as QA or QAE is immobilized as a carrier, SELDI-TOF-MS or the like is easily performed. be able to. The kit may contain other reagents such as standard substances and various pretreatment buffers. The kit can also be used as a kit for screening for substances having an effect of improving / maintaining / recovering a desired motor function. Examples of the configuration of the kit of the present invention are given below.

〔キットの構成例〕
・弱陽イオン交換基板:1枚
・強陰イオン交換基板:1枚
・基板洗浄用バッファーA(pH3.0):適量
・基板洗浄用バッファーB(pH9.0):適量
・各マーカー物質の標準品:各適量
[Example of kit configuration]
・ Weak cation exchange substrate: 1 sheet ・ Strong anion exchange substrate: 1 sheet ・ Substrate cleaning buffer A (pH 3.0): appropriate amount ・ Substrate cleaning buffer B (pH 9.0): appropriate amount ・ Standard of each marker substance Product: each appropriate amount

以下に、本発明によって被験物質が有する運動機能の向上・維持・回復効果を評価する具体的手順の一例を挙げる。この例では、4群のマウスを用い、体液として血液、マーカー物質の測定にSELDI−TOF−MSを採用する。   Below, an example of the specific procedure which evaluates the improvement / maintenance / recovery effect of the motor function which a test substance has by this invention is given. In this example, four groups of mice are used, and SELDI-TOF-MS is employed for measuring blood and marker substances as body fluids.

マウスを4群に分け、以下の条件で飼育する。
第1群(SC):運動負荷なし(S)+対照食摂取(C)
第2群(TC):運動負荷あり(T)+対照食摂取(C)
第3群(TP):運動負荷あり(T)+被験物質含有食摂取(P)
第4群(SP):運動負荷なし(S)+被験物質含有食摂取(P)
対照食は運動機能の向上・維持・回復効果を有する物質(例えば、ホエイタンパク質)を一切含まず、運動機能の向上・維持・回復効果を有さないことがわかっている成分(例えば、カゼイン)のみで構成する。被験物質含有食は、被験物質を含有する以外は対照食と基本的に同じ組成とする。第2群と第3群にはトレッドミルによる運動負荷を継続的にかける。
The mice are divided into 4 groups and reared under the following conditions.
Group 1 (SC): no exercise load (S) + control food intake (C)
Group 2 (TC): exercise load (T) + control food intake (C)
Group 3 (TP): exercise load (T) + intake of test substance-containing food (P)
Group 4 (SP): No exercise load (S) + test substance-containing food intake (P)
The control diet does not contain any substances that have an effect of improving, maintaining, and restoring motor function (for example, whey protein), and it is known that it has no effect of improving, maintaining, or recovering motor function (for example, casein) Consists only of. The test substance-containing food has basically the same composition as the control food except that it contains the test substance. The second group and the third group are continuously subjected to exercise load by a treadmill.

一定期間飼育後の各群のマウスから血液を採取し、血漿サンプルを調製する。界面活性剤等で変性処理をした後、強陰イオン交換カラムにアプライし、pH9.0、pH5.0、pH3.0の各バッファー、並びに有機溶媒で順次溶出して分画する。   Blood is collected from each group of mice after breeding for a certain period, and a plasma sample is prepared. After denaturation with a surfactant or the like, it is applied to a strong anion exchange column, and sequentially eluted with each of pH 9.0, pH 5.0 and pH 3.0 buffers and an organic solvent for fractionation.

pH9.0の溶出画分を弱陽イオン交換基板にスポットし、次いでpH3.0のバッファーで洗浄する。このとき、マーカー物質(A3)、(A5)、及び(A7)が基板上に捕捉される。また、pH3.0の溶出画分を弱陽イオン交換基板にスポットし、次いでpH3.0のバッファーで洗浄する。このとき、マーカー物質(A2)及び(A4)が基板上に捕捉される。また、有機溶媒の溶出画分を強陰イオン交換基板にスポットし、次いでpH9.0のバッファーで洗浄する。このとき、マーカー物質(A1)が基板上に捕捉される。各基板をSELDI−TOF−MSに供し、生じたイオンピークから各マーカー物質の濃度を算出する。   The pH 9.0 elution fraction is spotted on a weak cation exchange substrate and then washed with a pH 3.0 buffer. At this time, the marker substances (A3), (A5), and (A7) are captured on the substrate. Moreover, the pH 3.0 elution fraction is spotted on a weak cation exchange substrate, and then washed with a pH 3.0 buffer. At this time, the marker substances (A2) and (A4) are captured on the substrate. The elution fraction of the organic solvent is spotted on a strong anion exchange substrate and then washed with a buffer of pH 9.0. At this time, the marker substance (A1) is captured on the substrate. Each substrate is subjected to SELDI-TOF-MS, and the concentration of each marker substance is calculated from the generated ion peak.

マーカー物質ごとに第1群〜第4群の濃度値を横に並べ、増減パターンを解析する。「第1群−第2群−第3群−第4群」の値について、グループ1に属するマーカー物質の場合は「低−低−高−低」のパターンを示したときに、グループ2に属するマーカー物質の場合は「高−高−低−高」のパターンを示したときに、当該被験物質は運動機能の向上・維持・回復効果を有すると評価する。なお第2群と第4群の値は、それぞれ上記した(I)と(II)の基準値に相当する。この際、いずれか1つのマーカー物質を指標としてもよいし、複数のマーカー物質を指標としてもよい。   The concentration values of the first group to the fourth group are arranged horizontally for each marker substance, and the increase / decrease pattern is analyzed. Regarding the value of “first group-second group-third group-fourth group”, when the marker substance belonging to group 1 shows a pattern of “low-low-high-low”, In the case of the marker substance to which it belongs, when the pattern of “high-high-low-high” is shown, it is evaluated that the test substance has an effect of improving / maintaining / recovering motor function. The values of the second group and the fourth group correspond to the reference values (I) and (II) described above, respectively. At this time, any one marker substance may be used as an index, or a plurality of marker substances may be used as an index.

以下に、実施例をもって本発明をさらに具体的に説明するが、本発明はこれらの実施例に限定されるものではない。   Hereinafter, the present invention will be described more specifically with reference to examples. However, the present invention is not limited to these examples.

1.動物の飼育と体液試料の調製
8週齢の雄性C57BL/6J系統マウス(日本エスエルシー社)を予備飼育し、4群に分けた。各群の個体数は7以上とした。
1. Animal Breeding and Body Fluid Sample Preparation Eight week old male C57BL / 6J strain mice (Japan SLC) were preliminarily raised and divided into 4 groups. The number of individuals in each group was 7 or more.

〔各群の飼育条件〕
第1群(SC):運動負荷なし(S)+対照食摂取(C)
第2群(TC):運動負荷あり(T)+対照食摂取(C)
第3群(TP):運動負荷あり(T)+ホエイタンパク質含有食摂取(P)
第4群(SP):運動負荷なし(S)+ホエイタンパク質含有食摂取(P)
[Raising conditions for each group]
Group 1 (SC): no exercise load (S) + control food intake (C)
Group 2 (TC): exercise load (T) + control food intake (C)
Group 3 (TP): Exercise load (T) + intake of whey protein-containing food (P)
Group 4 (SP): No exercise load (S) + whey protein containing food intake (P)

〔飼料等〕
・対照食:AIN93
・ホエイタンパク質含有食(明治製菓株式会社製):対照食に含まれるカゼインをホエイタンパク質に置換した組成を有する。
・水と飼料は自由摂取
[Feed, etc.]
・ Control food: AIN93
-Whey protein-containing food (Meiji Seika Co., Ltd.): It has a composition in which casein contained in a control food is replaced with whey protein.
・ Free consumption of water and feed

〔飼育期間〕
・4週間
〔明暗、室温〕
・明時:8時〜20時,暗時:20時〜8時
・室温:22±2℃
[Breeding period]
・ 4 weeks (light / dark, room temperature)
・ Light: 8 o'clock to 20 o'clock, Dark: 20 o'clock to 8 o'clock ・ Room temperature: 22 ± 2 ℃

〔運動負荷〕
トレッドミル運動負荷を採用した。飼育1週目は15m/分で15分間、傾斜なしの条件から始め、徐々にスピードと運動時間を上げて慣れさせた。飼育2週目から飼育終了までは22m/分で30分、傾斜なしの条件で運動負荷を与えた。頻度は1日に1回、1週間あたり5日とし、2日以上の休息期間が生じないようにした。
[Exercise load]
A treadmill exercise load was adopted. The first week of breeding was started at 15m / min for 15 minutes with no inclination, and gradually got used to speed and exercise time. From the second week of the breeding to the end of the breeding, an exercise load was applied at 22 m / min for 30 minutes without tilting. The frequency was once a day, 5 days per week, so that no more than 2 days of rest occurred.

飼育終了後に各群のマウスから血液を採取した。採取した血液から血漿を調製し、体液試料とした。   Blood was collected from each group of mice after the rearing. Plasma was prepared from the collected blood and used as a body fluid sample.

2.プロテインチップによる解析とイオンピークの選抜
各体液試料20μLに、変性バッファー(9M 尿素、2% CHAPS、50mM Tris−HCl(pH9.0))30μLを加えて前処理を行い、タンパク質を変性させた。次に、前処理した各体液試料を強陰イオン交換樹脂カラム(Q−Sepharose、GEヘルスケア社)にアプライした。次いで、pH9.0の緩衝液(50mM Tris−HCl(pH9.0)、0.1%(w/v)1−o−N−オクチル−β−D−グルコピラノシド(以下、「OGP」と称する。))、pH5.0の緩衝液(100mM 酢酸ナトリウム(pH5.0)、0.1%(w/v)OGP)、pH3.0の緩衝液(50mM クエン酸ナトリウム(pH3.0)、0.1%(w/v)OGP)、及び有機溶媒(0.1%トリフルオロ酢酸、50.0%アセトニトリルからなる混合液)各200μLで順に溶出させ、画分1(pH9.0で溶出、素通り)、画分2(pH5.0で溶出)、画分3(pH3.0で溶出)、画分4(有機溶媒で溶出)の4つの粗分画画分を得た。
2. Analysis by Protein Chip and Selection of Ion Peak To 20 μL of each body fluid sample, 30 μL of denaturation buffer (9 M urea, 2% CHAPS, 50 mM Tris-HCl (pH 9.0)) was added for pretreatment to denature the protein. Next, each pretreated body fluid sample was applied to a strong anion exchange resin column (Q-Sepharose, GE Healthcare). Next, a pH 9.0 buffer solution (50 mM Tris-HCl (pH 9.0), 0.1% (w / v) 1-o-N-octyl-β-D-glucopyranoside (hereinafter referred to as “OGP”). )), PH 5.0 buffer (100 mM sodium acetate (pH 5.0), 0.1% (w / v) OGP), pH 3.0 buffer (50 mM sodium citrate (pH 3.0), 0. 1% (w / v) OGP) and organic solvent (mixed solution consisting of 0.1% trifluoroacetic acid, 50.0% acetonitrile) were eluted in order with 200 μL each, and fraction 1 (eluted at pH 9.0, passed) ), Fraction 2 (eluted at pH 5.0), fraction 3 (eluted at pH 3.0), and fraction 4 (eluted with an organic solvent).

得られた各画分10μLをpH3.0のプロテインチップ結合バッファー(50mM クエン酸ナトリウム)で10倍希釈した後、弱陽イオン交換チップCM10(バイオラッド社)に添加した。同様に、得られた各画分10μLをpH9.0のプロテインチップ結合バッファー(50mM Tris−HCl(pH9.0))で10倍希釈した後、強陰イオン交換チップQ10(バイオラッド社)に添加した。各チップを各結合バッファーで3回洗浄した後に脱イオン水で1回洗浄し、乾燥させた。次に、エネルギー吸収分子であるシナピン酸(SPA−H、SPA−L)又はα−シアノ−4−ヒドロキシケイ皮酸(CHCA)を添加し、プロテインチップリーダーModel PBS IIc(バイオラッド社)を用いて、SELDI−TOF−MSを行なった。なお、測定分子量範囲(m/z)は、3000〜200000の範囲で行なった。また、測定は2連で行い、m/zの平均値を算出した。データ解析は、Protein Chip Software、CiphergenExpress Data Manager、及びBiomarker Patterns Software(いずれもバイオラッド社)を用いて行なった。具体的には、ベースライン補正、分子量校正、スペクトルの正規化処理を行なった後、シングルマーカー解析及び数本のマーカーを組み合わせたマルチフロー解析を行なった。その結果、粗分画画分の種類、プロテインチップの種類、チップの洗浄条件等の組み合わせによって多数のピークが検出された。各ピークについて、p値(Mann−Whitney検定法)、ROC面積、及びイオンピーク強度を算出した。これらの情報を元にして以下の手順S1〜S4にてピークを絞り込んだ。   10 μL of each of the obtained fractions was diluted 10-fold with a pH 3.0 protein chip binding buffer (50 mM sodium citrate), and then added to a weak cation exchange chip CM10 (BioRad). Similarly, 10 μL of each obtained fraction was diluted 10-fold with a pH 9.0 protein chip binding buffer (50 mM Tris-HCl (pH 9.0)) and then added to a strong anion exchange chip Q10 (Bio-Rad). did. Each chip was washed 3 times with each binding buffer, then once with deionized water and dried. Next, sinapinic acid (SPA-H, SPA-L) or α-cyano-4-hydroxycinnamic acid (CHCA), which is an energy absorbing molecule, is added and a protein chip reader Model PBS IIc (Bio-Rad) is used. Then, SELDI-TOF-MS was performed. In addition, the measurement molecular weight range (m / z) was performed in the range of 3000-200000. Moreover, the measurement was performed in duplicate and the average value of m / z was calculated. Data analysis was performed using Protein Chip Software, Ciphergen Express Data Manager, and Biomarker Patterns Software (all from Bio-Rad). Specifically, after performing baseline correction, molecular weight calibration, and spectrum normalization processing, single marker analysis and multiflow analysis combining several markers were performed. As a result, a large number of peaks were detected depending on the combination of the type of crude fraction, the type of protein chip, the washing conditions of the chip, and the like. For each peak, a p-value (Mann-Whitney test method), ROC area, and ion peak intensity were calculated. Based on these pieces of information, the peaks were narrowed down in the following steps S1 to S4.

S1:運動マウス同士を比較した場合にホエイタンパク質摂取により発現量が増減したピークを選抜した。具体的には、第2群(TC)と第3群(TP)との間でイオン強度に有意差(p<0.05)があるピークを選抜した。この段階で57個の候補ピークが選抜された。
S2:57個のピークから運動により(a)の増減が抑制されたピークを除去した。具体的には、第1群(SC)と第2群(TC)との間でイオン強度に有意差(p<0.05)があるマーカーを除去した。これにより、43個の候補ピークに絞られた。
S3:43個の候補ピークからアーティファクト(2価イオン、ノイズ等)を除去した。これにより、22個の候補ピークに絞られた。
S4:22個の候補ピークから、ホエイタンパク質を摂取したマウス同士を比較した場合に運動により発現量が増減したピークを選抜した。具体的には、第3群(TP)と第4群(SP)との間でイオン強度に有意差(p<0.05または0.1)があるマーカーを選抜した。これにより、7個の候補ピークが最終的に選抜された。
なお、最終的に選抜されたピークの増減パターンは、いずれも第3群のみが高値または低値を示し、第1群、第2群および第4群の間ではあまり差がないものであった。
S1: When exercise mice were compared with each other, a peak in which the expression level increased or decreased due to whey protein intake was selected. Specifically, peaks having a significant difference (p <0.05) in ionic strength were selected between the second group (TC) and the third group (TP). At this stage, 57 candidate peaks were selected.
S2: Peaks in which increase / decrease in (a) was suppressed by exercise were removed from 57 peaks. Specifically, a marker having a significant difference (p <0.05) in ionic strength between the first group (SC) and the second group (TC) was removed. This narrowed down to 43 candidate peaks.
S3: Artifacts (divalent ions, noise, etc.) were removed from 43 candidate peaks. This narrowed down to 22 candidate peaks.
S4: From the 22 candidate peaks, when the mice that ingested the whey protein were compared, the peak whose expression level was increased or decreased by exercise was selected. Specifically, a marker having a significant difference (p <0.05 or 0.1) in ionic strength was selected between the third group (TP) and the fourth group (SP). As a result, seven candidate peaks were finally selected.
In addition, as for the increase / decrease pattern of the peak finally selected, only the third group showed a high value or a low value, and there was not much difference among the first group, the second group, and the fourth group. .

3.マーカー物質(A1)の特定
画分4(有機溶媒)を弱陽イオン交換チップCM10に接触させ、pH3.0のプロテインチップ結合バッファーで洗浄してSELDI−TOF−MS(EAM:CHCA)を行なった場合に、質量/電荷比が5280(平均値)のイオンピークが検出された。増減パターン解析の結果、本ピークは第1群、第2群および第4群で低値を示し、第3群で高値を示した。図1に、各群に分けて本ピークのピーク強度をプロットした場合の箱髭図を示す。図中、髭の上端と下端はそれぞれ最大値と最小値、箱の上辺と下辺はそれぞれ第3四分位(75パーセンタイル)と第1四分位(25パーセンタイル)、箱の中の線は中央値である(図2以降も同じ)。各ROC面積と各p値は以下のとおりとなった。
3. Identification of marker substance (A1) Fraction 4 (organic solvent) was brought into contact with a weak cation exchange chip CM10, washed with a pH 3.0 protein chip binding buffer and subjected to SELDI-TOF-MS (EAM: CHCA). In some cases, an ion peak with a mass / charge ratio of 5280 (average value) was detected. As a result of the increase / decrease pattern analysis, this peak showed a low value in the first group, the second group, and the fourth group, and a high value in the third group. FIG. 1 shows a box diagram when the peak intensity of each peak is plotted for each group. In the figure, the upper and lower edges of the bag are the maximum and minimum values, respectively, the upper and lower sides of the box are the third quartile (75th percentile) and the first quartile (25th percentile), respectively, and the line in the box is the center Value (the same applies to FIG. 2 and subsequent figures). Each ROC area and each p value were as follows.

ROC面積(第2群vs第3群):0.774
p値(第2群vs第3群):0.009
ROC面積(第1群vs第2群):0.667
p値(第1群vs第2群):0.184
ROC面積(第1群vs第4群):0.506
p値(第1群vs第4群):0.918
ROC面積(第3群vs第4群):0.735
p値(第3群vs第4群):0.031
ROC area (second group vs. third group): 0.774
p value (second group vs. third group): 0.009
ROC area (first group vs second group): 0.667
p value (first group vs second group): 0.184
ROC area (first group vs. fourth group): 0.506
p value (first group vs. fourth group): 0.918
ROC area (third group vs. fourth group): 0.735
p value (third group vs. fourth group): 0.031

以上より、SELDI−TOF−MSに供すると質量/電荷比が約5280のピークを生じるタンパク質(マーカー物質(A1))が、運動負荷をかけると共にホエイタンパク質を摂取させた動物の体液中で有意に増減するものであり、継続的な運動とホエイタンパク質摂取との併用によってもたらされる運動機能(運動能力、運動パフォーマンス等)の変動(向上、維持、回復など)を反映するマーカーとなり得ることが分かった。これにより、被験物質を摂取させると共に運動負荷をかけた動物の体液中におけるマーカー物質(A1)の濃度を指標として、被験物質が有する運動機能の向上・維持・回復効果の評価が行なえることが示された。例えば、被験物質を使用して同様の動物実験を行なって体液試料を調製し、同様の手順でSELDI−TOF−MSを行なった場合に、質量/電荷比が約5280のピークを生じるタンパク質の濃度が第1群〜第4群にかけて「低−低−高−低」のパターンを示したとき、当該被験物質はホエイタンパク質と同様の運動機能の向上・維持・回復効果を有する、と評価することができる。   From the above, when subjected to SELDI-TOF-MS, the protein (marker substance (A1)) that produces a peak with a mass / charge ratio of about 5280 is significantly increased in the body fluid of the animal that is subjected to exercise load and ingested whey protein. It was found that it can increase and decrease, and can be a marker that reflects fluctuations (improvement, maintenance, recovery, etc.) of motor function (exercise ability, exercise performance, etc.) brought about by continuous exercise and whey protein intake. . This makes it possible to evaluate the improvement / maintenance / recovery effect of the test substance on the test substance using the concentration of the marker substance (A1) in the body fluid of the animal that is ingested as well as ingesting the test substance as an index. Indicated. For example, the concentration of a protein that produces a peak with a mass / charge ratio of about 5280 when a test sample is used to prepare a body fluid sample and SELDI-TOF-MS is performed according to the same procedure. When the test substance shows a pattern of “low-low-high-low” from the first group to the fourth group, the test substance should be evaluated to have the same improvement, maintenance, and recovery effects of motor function as whey protein Can do.

4.マーカー物質(A2)の特定
画分3(pH3.0)を強陰イオン交換チップQ10に接触させ、pH9.0のプロテインチップ結合バッファーで洗浄してSELDI−TOF−MS(EAM:CHCA)を行なった場合に、質量/電荷比が6829(平均値)のイオンピークが検出された。増減パターン解析の結果、本ピークは第1群、第2群および第4群で高値を示し、第3群で低値を示した。図2に、各群に分けて本ピークのピーク強度をプロットした場合の箱髭図を示す。各ROC面積と各p値は以下のとおりとなった。
4). Identification of Marker Substance (A2) Fraction 3 (pH 3.0) is brought into contact with strong anion exchange chip Q10, washed with pH 9.0 protein chip binding buffer and subjected to SELDI-TOF-MS (EAM: CHCA). In this case, an ion peak having a mass / charge ratio of 6829 (average value) was detected. As a result of the increase / decrease pattern analysis, this peak showed a high value in the first group, the second group, and the fourth group, and a low value in the third group. FIG. 2 shows a box diagram when the peak intensity of this peak is plotted for each group. Each ROC area and each p value were as follows.

ROC面積(第2群vs第3群):0.810
p値(第2群vs第3群):0.010
ROC面積(第1群vs第2群):0.639
p値(第1群vs第2群):0.225
ROC面積(第1群vs第4群):0.536
p値(第1群vs第4群):0.537
ROC面積(第3群vs第4群):0.658
p値(第3群vs第4群):0.089
ROC area (second group vs. third group): 0.810
p value (second group vs. third group): 0.010
ROC area (first group vs second group): 0.639
p value (first group vs second group): 0.225
ROC area (first group vs. fourth group): 0.536
p value (first group vs. fourth group): 0.537
ROC area (third group vs fourth group): 0.658
p value (third group vs. fourth group): 0.089

以上より、SELDI−TOF−MSに供すると質量/電荷比が約6830のピークを生じるタンパク質(マーカー物質(A2))が、運動負荷をかけると共にホエイタンパク質を摂取させた動物の体液中で有意に増減するものであり、継続的な運動とホエイタンパク質摂取との併用によってもたらされる運動機能(運動能力、運動パフォーマンス等)の変動(向上、維持、回復など)を反映するマーカーとなり得ることが分かった。これにより、被験物質を摂取させると共に運動負荷をかけた動物の体液中におけるマーカー物質(A2)の濃度を指標として、被験物質が有する運動機能の向上・維持・回復効果の評価が行なえることが示された。例えば、被験物質を使用して同様の動物実験を行なって体液試料を調製し、同様の手順でSELDI−TOF−MSを行なった場合に、質量/電荷比が約6830のピークを生じるタンパク質の濃度が第1群〜第4群にかけて「高−高−低−高」のパターンを示したとき、当該被験物質はホエイタンパク質と同様の運動機能の向上・維持・回復効果を有する、と評価することができる。   From the above, when subjected to SELDI-TOF-MS, the protein (marker substance (A2)) that produces a peak with a mass / charge ratio of about 6830 is significantly increased in the body fluid of animals that are subjected to exercise load and ingested whey protein. It was found that it can increase and decrease, and can be a marker that reflects fluctuations (improvement, maintenance, recovery, etc.) of motor function (exercise ability, exercise performance, etc.) brought about by continuous exercise and whey protein intake. . This makes it possible to evaluate the improvement / maintenance / recovery effect of the test substance on the test substance, using the concentration of the marker substance (A2) in the body fluid of the animal that is ingested as well as ingesting the test substance as an index. Indicated. For example, when a test sample is used to conduct a similar animal experiment to prepare a body fluid sample and SELDI-TOF-MS is performed according to the same procedure, the protein concentration that produces a peak with a mass / charge ratio of about 6830 When the test substance shows a pattern of “high-high-low-high” from the first group to the fourth group, the test substance should be evaluated as having the same improvement / maintenance / recovery effect of motor function as whey protein Can do.

5.マーカー物質(A3)の特定
画分1(pH9.0)を弱陽イオン交換チップCM10に接触させ、pH3.0のプロテインチップ結合バッファーで洗浄してSELDI−TOF−MS(EAM:SPA−L)を行なった場合に、質量/電荷比が7011(平均値)のイオンピークが検出された。増減パターン解析の結果、本ピークは第1群、第2群および第4群で高値を示し、第3群で低値を示した。図3に、各群に分けて本ピークのピーク強度をプロットした場合の箱髭図を示す。各ROC面積と各p値は以下のとおりとなった。
5. Identification of Marker Substance (A3) Fraction 1 (pH 9.0) is contacted with weak cation exchange chip CM10, washed with pH 3.0 protein chip binding buffer, and SELDI-TOF-MS (EAM: SPA-L) , An ion peak with a mass / charge ratio of 7011 (average value) was detected. As a result of the increase / decrease pattern analysis, this peak showed a high value in the first group, the second group, and the fourth group, and a low value in the third group. FIG. 3 shows a box diagram when the peak intensity of this peak is plotted for each group. Each ROC area and each p value were as follows.

ROC面積(第2群vs第3群):0.810
p値(第2群vs第3群):0.003
ROC面積(第1群vs第2群):0.583
p値(第1群vs第2群):0.564
ROC面積(第1群vs第4群):0.732
p値(第1群vs第4群):0.057
ROC面積(第3群vs第4群):は0.684
p値(第3群vs第4群):0.039
ROC area (second group vs. third group): 0.810
p value (second group vs. third group): 0.003
ROC area (first group vs second group): 0.583
p value (first group vs second group): 0.564
ROC area (first group vs. fourth group): 0.732
p value (first group vs. fourth group): 0.057
ROC area (3rd group vs 4th group): 0.684
p value (third group vs. fourth group): 0.039

以上より、SELDI−TOF−MSに供すると質量/電荷比が約7010のピークを生じるタンパク質(マーカー物質(A3))が、運動負荷をかけると共にホエイタンパク質を摂取させた動物の体液中で有意に増減するものであり、継続的な運動とホエイタンパク質摂取との併用によってもたらされる運動機能(運動能力、運動パフォーマンス等)の変動(向上、維持、回復など)を反映するマーカーとなり得ることが分かった。これにより、被験物質を摂取させると共に運動負荷をかけた動物の体液中におけるマーカー物質(A3)の濃度を指標として、被験物質が有する運動機能の向上・維持・回復効果の評価が行なえることが示された。例えば、被験物質を使用して同様の動物実験を行なって体液試料を調製し、同様の手順でSELDI−TOF−MSを行なった場合に、質量/電荷比が約7010のピークを生じるタンパク質の濃度が第1群〜第4群にかけて「高−高−低−高」のパターンを示したとき、当該被験物質はホエイタンパク質と同様の運動機能の向上・維持・回復効果を有する、と評価することができる。   From the above, when subjected to SELDI-TOF-MS, a protein (marker substance (A3)) that produces a peak with a mass / charge ratio of about 7010 is significantly increased in the body fluid of an animal that is subjected to exercise load and ingested whey protein. It was found that it can increase and decrease, and can be a marker that reflects fluctuations (improvement, maintenance, recovery, etc.) of motor function (exercise ability, exercise performance, etc.) brought about by continuous exercise and whey protein intake. . This makes it possible to evaluate the improvement / maintenance / recovery effect of the test substance on the test substance, using the concentration of the marker substance (A3) in the body fluid of the animal subjected to exercise load as well as taking the test substance as an index. Indicated. For example, when the same animal experiment is performed using the test substance to prepare a body fluid sample, and the SELDI-TOF-MS is performed according to the same procedure, the concentration of the protein that produces a peak with a mass / charge ratio of about 7010 When the test substance shows a pattern of “high-high-low-high” from the first group to the fourth group, the test substance should be evaluated as having the same improvement / maintenance / recovery effect of motor function as whey protein Can do.

6.マーカー物質(A4)の特定
画分3(pH3.0)を弱陽イオン交換チップCM10に接触させ、pH3.0のプロテインチップ結合バッファーで洗浄してSELDI−TOF−MS(EAM:CHCA)を行なった場合に、質量/電荷比が7924(平均値)のイオンピークが検出された。増減パターン解析の結果、本ピークは第1群、第2群および第4群で低値を示し、第3群で高値を示した。図4に、各群に分けて本ピークのピーク強度をプロットした場合の箱髭図を示す。各ROC面積と各p値は以下のとおりとなった。
6). Identification of marker substance (A4) Fraction 3 (pH 3.0) is brought into contact with a weak cation exchange chip CM10, washed with a protein chip binding buffer of pH 3.0 and subjected to SELDI-TOF-MS (EAM: CHCA). In this case, an ion peak having a mass / charge ratio of 7924 (average value) was detected. As a result of the increase / decrease pattern analysis, this peak showed a low value in the first group, the second group, and the fourth group, and a high value in the third group. FIG. 4 shows a box diagram when the peak intensity of this peak is plotted for each group. Each ROC area and each p value were as follows.

ROC面積(第2群vs第3群):0.714
p値(第2群vs第3群):0.035
ROC面積(第1群vs第2群):は0.611
p値(第1群vs第2群):0.488
ROC面積(第1群vs第4群):0.542
p値(第1群vs第4群):0.643
ROC面積(第3群vs第4群):0.760
p値(第3群vs第4群):0.019
ROC area (second group vs. third group): 0.714
p value (second group vs. third group): 0.035
ROC area (first group vs second group): 0.611
p value (first group vs second group): 0.488
ROC area (first group vs. fourth group): 0.542
p value (first group vs. fourth group): 0.643
ROC area (third group vs. fourth group): 0.760
p value (third group vs. fourth group): 0.019

以上より、SELDI−TOF−MSに供すると質量/電荷比が約7920のピークを生じるタンパク質(マーカー物質(A4))が、運動負荷をかけると共にホエイタンパク質を摂取させた動物の体液中で有意に増減するものであり、継続的な運動とホエイタンパク質摂取との併用によってもたらされる運動機能(運動能力、運動パフォーマンス等)の変動(向上、維持、回復など)を反映するマーカーとなり得ることが分かった。これにより、被験物質を摂取させると共に運動負荷をかけた動物の体液中におけるマーカー物質(A4)の濃度を指標として、被験物質が有する運動機能の向上・維持・回復効果の評価が行なえることが示された。例えば、被験物質を使用して同様の動物実験を行なって体液試料を調製し、同様の手順でSELDI−TOF−MSを行なった場合に、質量/電荷比が約7920のピークを生じるタンパク質の濃度が第1群〜第4群にかけて「低−低−高−低」のパターンを示したとき、当該被験物質はホエイタンパク質と同様の運動機能の向上・維持・回復効果を有する、と評価することができる。   From the above, when subjected to SELDI-TOF-MS, the protein (marker substance (A4)) that produces a peak with a mass / charge ratio of about 7920 is significantly increased in the body fluid of the animal that is subjected to exercise load and ingested whey protein. It was found that it can increase and decrease, and can be a marker that reflects fluctuations (improvement, maintenance, recovery, etc.) of motor function (exercise ability, exercise performance, etc.) brought about by continuous exercise and whey protein intake. . This makes it possible to evaluate the improvement / maintenance / recovery effect of the test substance on the test substance by using the concentration of the marker substance (A4) in the body fluid of the animal subjected to exercise load as well as ingesting the test substance. Indicated. For example, when a test sample is used to conduct a similar animal experiment to prepare a body fluid sample, and a SELDI-TOF-MS is performed according to the same procedure, the protein concentration that produces a peak with a mass / charge ratio of about 7920 When the test substance shows a pattern of “low-low-high-low” from the first group to the fourth group, the test substance should be evaluated to have the same improvement, maintenance, and recovery effects of motor function as whey protein Can do.

7.マーカー物質(A5)の特定
画分1(pH9.0)を弱陽イオン交換チップCM10に接触させ、pH3.0のプロテインチップ結合バッファーで洗浄してSELDI−TOF−MS(EAM:SPA−HJ)を行なった場合に、質量/電荷比が13678(平均値)のイオンピークが検出された。増減パターン解析の結果、本ピークは第1群、第2群および第4群で高値を示し、第3群で低値を示した。図5に、各群に分けて本ピークのピーク強度をプロットした場合の箱髭図を示す。各ROC面積と各p値は以下のとおりとなった。
7). Identification of Marker Substance (A5) Fraction 1 (pH 9.0) is contacted with a weak cation exchange chip CM10, washed with a pH 3.0 protein chip binding buffer, and SELDI-TOF-MS (EAM: SPA-HJ) , An ion peak with a mass / charge ratio of 13678 (average value) was detected. As a result of the increase / decrease pattern analysis, this peak showed a high value in the first group, the second group, and the fourth group, and a low value in the third group. FIG. 5 shows a box diagram when the peak intensity of this peak is plotted for each group. Each ROC area and each p value were as follows.

ROC面積(第2群vs第3群):0.899
p値(第2群vs第3群):0.001
ROC面積(第1群vs第2群):0.667
p値(第1群vs第2群):0.225
ROC面積(第1群vs第4群):0.780
p値(第1群vs第4群):0.027
ROC面積(第3群vs第4群):0.684
p値(第3群vs第4群):0.081
ROC area (second group vs. third group): 0.899
p value (second group vs. third group): 0.001
ROC area (first group vs second group): 0.667
p value (first group vs second group): 0.225
ROC area (first group vs. fourth group): 0.780
p value (first group vs. fourth group): 0.027
ROC area (third group vs. fourth group): 0.684
p value (third group vs. fourth group): 0.081

以上より、SELDI−TOF−MSに供すると質量/電荷比が約13700のピークを生じるタンパク質(マーカー物質(A5))が、運動負荷をかけると共にホエイタンパク質を摂取させた動物の体液中で有意に増減するものであり、継続的な運動とホエイタンパク質摂取との併用によってもたらされる運動機能(運動能力、運動パフォーマンス等)の変動(向上、維持、回復など)を反映するマーカーとなり得ることが分かった。これにより、被験物質を摂取させると共に運動負荷をかけた動物の体液中におけるマーカー物質(A5)の濃度を指標として、被験物質が有する運動機能の向上・維持・回復効果の評価が行なえることが示された。例えば、被験物質を使用して同様の動物実験を行なって体液試料を調製し、同様の手順でSELDI−TOF−MSを行なった場合に、質量/電荷比が約13700のピークを生じるタンパク質の濃度が第1群〜第4群にかけて「高−高−低−高」のパターンを示したとき、当該被験物質はホエイタンパク質と同様の運動機能の向上・維持・回復効果を有する、と評価することができる。   As described above, when subjected to SELDI-TOF-MS, a protein (marker substance (A5)) that generates a peak with a mass / charge ratio of about 13700 is significantly increased in the body fluid of an animal that is subjected to exercise load and ingested whey protein. It was found that it can increase and decrease, and can be a marker that reflects fluctuations (improvement, maintenance, recovery, etc.) of motor function (exercise ability, exercise performance, etc.) brought about by continuous exercise and whey protein intake. . This makes it possible to evaluate the improvement / maintenance / recovery effect of the test substance on the test substance, using the concentration of the marker substance (A5) in the body fluid of the animal subjected to exercise load as well as taking the test substance as an index. Indicated. For example, the concentration of a protein that produces a peak with a mass / charge ratio of approximately 13700 when a test sample is used to prepare a body fluid sample and SELDI-TOF-MS is performed according to the same procedure. When the test substance shows a pattern of “high-high-low-high” from the first group to the fourth group, the test substance should be evaluated as having the same improvement / maintenance / recovery effect of motor function as whey protein Can do.

8.マーカー物質(A6)の特定
画分1(pH9.0)を弱陽イオン交換チップCM10に接触させ、pH3.0のプロテインチップ結合バッファーで洗浄してSELDI−TOF−MS(EAM:SPA−HJ)を行なった場合に、質量/電荷比が13881(平均値)のイオンピークが検出された。増減パターン解析の結果、本ピークは第1群、第2群および第4群で高値を示し、第3群で低値を示した。図6に、各群に分けて本ピークのピーク強度をプロットした場合の箱髭図を示す。各ROC面積と各p値は以下のとおりとなった。
8). Identification of Marker Substance (A6) Fraction 1 (pH 9.0) is contacted with a weak cation exchange chip CM10, washed with a pH 3.0 protein chip binding buffer, and SELDI-TOF-MS (EAM: SPA-HJ) , An ion peak with a mass / charge ratio of 13881 (average value) was detected. As a result of the increase / decrease pattern analysis, this peak showed a high value in the first group, the second group, and the fourth group, and a low value in the third group. FIG. 6 shows a box diagram when the peak intensity of this peak is plotted for each group. Each ROC area and each p value were as follows.

ROC面積(第2群vs第3群):0.810
p値(第2群vs第3群):0.003
ROC面積(第1群vs第2群):0.639
p値(第1群vs第2群):0.248
ROC面積(第1群vs第4群):0.780
p値(第1群vs第4群):0.021
ROC面積(第3群vs第4群):0.760
p値(第3群vs第4群):0.019
ROC area (second group vs. third group): 0.810
p value (second group vs. third group): 0.003
ROC area (first group vs second group): 0.639
p value (first group vs second group): 0.248
ROC area (first group vs. fourth group): 0.780
p value (first group vs. fourth group): 0.021
ROC area (third group vs. fourth group): 0.760
p value (third group vs. fourth group): 0.019

以上より、SELDI−TOF−MSに供すると質量/電荷比が約13900のピークを生じるタンパク質(マーカー物質(A6))が、運動負荷をかけると共にホエイタンパク質を摂取させた動物の体液中で有意に増減するものであり、継続的な運動とホエイタンパク質摂取との併用によってもたらされる運動機能(運動能力、運動パフォーマンス等)の変動(向上、維持、回復など)を反映するマーカーとなり得ることが分かった。これにより、被験物質を摂取させると共に運動負荷をかけた動物の体液中におけるマーカー物質(A6)の濃度を指標として、被験物質が有する運動機能の向上・維持・回復効果の評価が行なえることが示された。例えば、被験物質を使用して同様の動物実験を行なって体液試料を調製し、同様の手順でSELDI−TOF−MSを行なった場合に、質量/電荷比が約13900のピークを生じるタンパク質の濃度が第1群〜第4群にかけて「高−高−低−高」のパターンを示したとき、当該被験物質はホエイタンパク質と同様の運動機能の向上・維持・回復効果を有する、と評価することができる。   From the above, when subjected to SELDI-TOF-MS, the protein (marker substance (A6)) that produces a peak with a mass / charge ratio of about 13900 is significantly increased in the body fluid of the animal that is subjected to exercise load and ingested whey protein. It was found that it can increase and decrease, and can be a marker that reflects fluctuations (improvement, maintenance, recovery, etc.) of motor function (exercise ability, exercise performance, etc.) brought about by continuous exercise and whey protein intake. . This makes it possible to evaluate the improvement / maintenance / recovery effect of the test substance on the test substance by using the concentration of the marker substance (A6) in the body fluid of the animal subjected to exercise load as well as taking the test substance. Indicated. For example, the same animal experiment is performed using the test substance to prepare a body fluid sample, and the SELDI-TOF-MS is performed according to the same procedure. When the test substance shows a pattern of “high-high-low-high” from the first group to the fourth group, the test substance should be evaluated as having the same improvement / maintenance / recovery effect of motor function as whey protein Can do.

9.マーカー物質(A7)の特定
画分1(pH9.0)を弱陽イオン交換チップCM10に接触させ、pH3.0のプロテインチップ結合バッファーで洗浄してSELDI−TOF−MS(EAM:SPA−HJ)を行なった場合に、質量/電荷比が47095(平均値)のイオンピークが検出された。増減パターン解析の結果、本ピークは第1群、第2群および第4群で低値を示し、第3群で高値を示した。図7に、各群に分けて本ピークのピーク強度をプロットした場合の箱髭図を示す。各ROC面積と各p値は以下のとおりとなった。
9. Identification of Marker Substance (A7) Fraction 1 (pH 9.0) is contacted with weak cation exchange chip CM10, washed with pH 3.0 protein chip binding buffer, and SELDI-TOF-MS (EAM: SPA-HJ) , An ion peak with a mass / charge ratio of 47095 (average value) was detected. As a result of the increase / decrease pattern analysis, this peak showed a low value in the first group, the second group, and the fourth group, and a high value in the third group. FIG. 7 shows a box diagram when the peak intensity of this peak is plotted for each group. Each ROC area and each p value were as follows.

ROC面積(第2群vs第3群):0.786
p値(第2群vs第3群):0.009
ROC面積(第1群vs第2群):0.500
p値(第1群vs第2群):0.954
ROC面積(第1群vs第4群):0.655
p値(第1群vs第4群):0.136
ROC面積(第3群vs第4群)は0.760
p値(第3群vs第4群)は0.015
ROC area (second group vs. third group): 0.786
p value (second group vs. third group): 0.009
ROC area (first group vs second group): 0.500
p value (first group vs second group): 0.954
ROC area (first group vs. fourth group): 0.655
p value (first group vs. fourth group): 0.136
ROC area (3rd group vs. 4th group) is 0.760
p value (3rd group vs 4th group) is 0.015.

以上より、SELDI−TOF−MSに供すると質量/電荷比が約47100のピークを生じるタンパク質(マーカー物質(A7))が、運動負荷をかけると共にホエイタンパク質を摂取させた動物の体液中で有意に増減するものであり、継続的な運動とホエイタンパク質摂取との併用によってもたらされる運動機能(運動能力、運動パフォーマンス等)の変動(向上、維持、回復など)を反映するマーカーとなり得ることが分かった。これにより、被験物質を摂取させると共に運動負荷をかけた動物の体液中におけるマーカー物質(A7)の濃度を指標として、被験物質が有する運動機能の向上・維持・回復効果の評価が行なえることが示された。例えば、被験物質を使用して同様の動物実験を行なって体液試料を調製し、同様の手順でSELDI−TOF−MSを行なった場合に、質量/電荷比が約47100のピークを生じるタンパク質の濃度が第1群〜第4群にかけて「低−低−高−低」のパターンを示したとき、当該被験物質はホエイタンパク質と同様の運動機能の向上・維持・回復効果を有する、と評価することができる。   From the above, when subjected to SELDI-TOF-MS, the protein (marker substance (A7)) that produces a peak with a mass / charge ratio of about 47100 is significantly increased in the body fluid of animals that have been subjected to exercise load and ingested whey protein. It was found that it can increase and decrease, and can be a marker that reflects fluctuations (improvement, maintenance, recovery, etc.) of motor function (exercise ability, exercise performance, etc.) brought about by continuous exercise and whey protein intake. . This makes it possible to evaluate the improvement / maintenance / recovery effect of the test substance on the test substance, using the concentration of the marker substance (A7) in the body fluid of the animal subjected to exercise load as well as ingesting the test substance as an index. Indicated. For example, when the same animal experiment is performed using the test substance to prepare a body fluid sample and SELDI-TOF-MS is performed according to the same procedure, the concentration of the protein that produces a peak with a mass / charge ratio of about 47100 When the test substance shows a pattern of “low-low-high-low” from the first group to the fourth group, the test substance should be evaluated to have the same improvement, maintenance, and recovery effects of motor function as whey protein Can do.

1.マーカー物質(A3)の精製と同定
強陰イオン交換樹脂Q−Sepharose HP(GEヘルスケア社)を充填したスピンカラム(1mL)を平衡化バッファー(50mM Tris−HCl(pH9.0),1M 尿素,0.22% CHAPS)にて平衡化した。C57BLマウス血清(清水実験材料社)500μLに対して変性バッファー(50mM Tris−HCl(pH9.0),9M 尿素,2% CHAPS)を750μL加えて変性処理し、平衡化した前記カラムに添加した。非吸着画分を回収し、SELDI−TOF−MSにて精製度を確認した。
1. Purification and identification of marker substance (A3) Spin column (1 mL) packed with strong anion exchange resin Q-Sepharose HP (GE Healthcare) was equilibrated with buffer (50 mM Tris-HCl (pH 9.0), 1 M urea, 0.22% CHAPS). Denaturation buffer (50 mM Tris-HCl (pH 9.0), 9 M urea, 2% CHAPS) 750 μL was added to 500 μL of C57BL mouse serum (Shimizu Experimental Materials Co., Ltd.) and added to the equilibrated column. The non-adsorbed fraction was collected and the degree of purification was confirmed by SELDI-TOF-MS.

回収した画分の一部をアセトン沈殿処理した後、ポリペプチド分離用ゲル(15−20%)NTH−5A0T(DRC社)を用いてSDS−PAGEを行った。図8に結果を示す。図8中、レーン1〜6はいずれも回収画分、Mは分子量マーカーである。分離された約7.0kDaのバンド(図8の矢印)を切り出してタンパク質を抽出し、SELDI−TOF−MS分析を行い、マーカー物質(A3)と同等の質量/電荷比を示すピークを確認した(図9のa)。   A portion of the collected fraction was subjected to acetone precipitation, and then subjected to SDS-PAGE using a polypeptide separating gel (15-20%) NTH-5AOT (DRC). The results are shown in FIG. In FIG. 8, lanes 1 to 6 are all collected fractions, and M is a molecular weight marker. The separated band of about 7.0 kDa (arrow in FIG. 8) was cut out, protein was extracted, SELDI-TOF-MS analysis was performed, and a peak showing a mass / charge ratio equivalent to that of the marker substance (A3) was confirmed. (A of FIG. 9).

あらためて同様のSDS−PAGEを行って約7.0kDaのバンドを切り出し、還元アルキル化処理した後、0.01μg/μLのトリプシン溶液(50mM 炭酸水素アンモニウム(pH8.0)に溶解)を作用させてゲル内で消化した。消化したサンプル1μLを金属プレート上に滴下し、飽和CHCA溶液0.4μLをさらに滴下して乾燥させた後、質量分析計Proteomics Analyzer 4700(アプライドバイオシステムズ社)で測定したところ、少なくとも3個のピークが検出され、それらの精密質量は、「1279.70」、「1299.71」、及び「1042.53」と算出された。これらのデータを元にMascotデータベース(マトリックスサイエンス社)によって既知タンパク質を検索し、ペプチドマスフィンガープリンティングを行ったところ、精密質量「1279.70」、「1299.71」、及び「1042.53」のペプチドはそれぞれ配列番号7〜9で表わされるアミノ酸配列のペプチドと一致し、目的のタンパク質は99%以上の確率で「アポリポタンパク質C1」と同定された。各ペプチドの精密質量、アミノ酸配列、及び配列番号の対応関係を第1表に示す。既報のアポリポタンパク質C1のアミノ酸配列は配列番号1に示すとおりである。   The same SDS-PAGE was performed again to cut out a band of about 7.0 kDa, and after reduction alkylation treatment, 0.01 μg / μL trypsin solution (dissolved in 50 mM ammonium bicarbonate (pH 8.0)) was allowed to act. Digested in the gel. 1 μL of the digested sample was dropped on a metal plate, 0.4 μL of saturated CHCA solution was further dropped and dried, and then measured with a mass spectrometer Proteomics Analyzer 4700 (Applied Biosystems). At least three peaks Were detected, and their accurate masses were calculated as “127.70”, “1299.71”, and “1042.53”. Based on these data, a known protein was searched by Mascot database (Matrix Science), and peptide mass fingerprinting was performed. As a result, accurate masses “127.70”, “1299.71”, and “1042.53” Each of the peptides matched the peptide having the amino acid sequence represented by SEQ ID NOs: 7 to 9, and the target protein was identified as “apolipoprotein C1” with a probability of 99% or more. Table 1 shows the correspondence between the exact mass, amino acid sequence, and SEQ ID NO of each peptide. The amino acid sequence of the previously reported apolipoprotein C1 is as shown in SEQ ID NO: 1.

なお、図9に示すように、SELDI−TOF−MS分析においてマーカー物質(A3)よりも小さい質量(約6.8kDa)を示すピークも検出された(図9のb)。これら2種のタンパク質は性質が非常に似ていること、並びに、質量の値の比較から、ピークbのタンパク質はアポリポタンパク質C1(配列番号1)のN末端の2アミノ酸(Ala−Pro)が欠損した「アポリポタンパク質C1の修飾体」であると考えられた。アミノ酸配列から計算される質量は、ピークaが6993Da、ピークbが6825Daであった。   In addition, as shown in FIG. 9, the peak which shows mass (about 6.8 kDa) smaller than a marker substance (A3) in the SELDI-TOF-MS analysis was also detected (b of FIG. 9). From the comparison of these two proteins with very similar properties and mass values, the protein of peak b lacks the N-terminal 2 amino acids (Ala-Pro) of apolipoprotein C1 (SEQ ID NO: 1). It was considered to be a “modified product of apolipoprotein C1”. The mass calculated from the amino acid sequence was 6993 Da for peak a and 6825 Da for peak b.

2.マーカー物質(A4)の精製と同定
強陰イオン交換樹脂Q−Sepharose HP(GEヘルスケア社)を充填したスピンカラム(1mL)を平衡化バッファー(50mM Tris−HCl(pH9.0),1M 尿素,0.22% CHAPS)にて平衡化した。C57BLマウス血清(清水実験材料社)1mLに対して変性バッファー(50mM Tris−HCl(pH9.0),9M 尿素,2% CHAPS)を1.5mL加えて変性処理し、平衡化した前記カラムに添加した。50mM Tris−HCl(pH9.0),100mM 酢酸ナトリウムバッファー(pH5.0)、及び50mM クエン酸ナトリウムバッファー(pH3.0)にてカラムを順次洗浄した後、溶出バッファー(33.3% イソプロパノール,16.7% アセトニトリル,0.1% TFA)にて溶出した。溶出画分の精製度をSELDI−TOF−MSにて確認した。
2. Purification and identification of marker substance (A4) Spin column (1 mL) packed with strong anion exchange resin Q-Sepharose HP (GE Healthcare) was equilibrated with buffer (50 mM Tris-HCl (pH 9.0), 1 M urea, 0.22% CHAPS). C57BL mouse serum (Shimizu Experimental Materials Co., Ltd.) 1 mL of denaturation buffer (50 mM Tris-HCl (pH 9.0), 9 M urea, 2% CHAPS) was denatured and added to the equilibrated column. did. The column was sequentially washed with 50 mM Tris-HCl (pH 9.0), 100 mM sodium acetate buffer (pH 5.0), and 50 mM sodium citrate buffer (pH 3.0), and then the elution buffer (33.3% isopropanol, 16 Elution with 7% acetonitrile, 0.1% TFA). The degree of purification of the eluted fraction was confirmed by SELDI-TOF-MS.

回収した画分の一部をアセトン沈殿処理した後、2次元電気泳動(1次元目:Immobiline DryStrip(GEヘルスケア社)pH4−7,7cm;2次元目:ポリペプチド分離用ゲル(15−20%)NTH−5A2T(DRC社))に供した。結果を図10に示す。分離された約7.9kDaのバンド(図10の矢印)を切り出してタンパク質を抽出し、SELDI−TOF−MS分析を行った。マーカー物質(A4)と同等の質量/電荷比を示すピークを確認した(図11)。   A part of the collected fraction was subjected to acetone precipitation treatment, and then two-dimensional electrophoresis (first dimension: Immobiline DryStrip (GE Healthcare) pH 4-7, 7 cm; second dimension: polypeptide separating gel (15-20) %) NTH-5A2T (DRC)). The results are shown in FIG. The separated band of about 7.9 kDa (arrow in FIG. 10) was cut out, protein was extracted, and SELDI-TOF-MS analysis was performed. A peak showing a mass / charge ratio equivalent to that of the marker substance (A4) was confirmed (FIG. 11).

あらためて同様の条件で2次元電気泳動を行って約7.9kDaのバンド(図10の矢印)を切り出し、上記1と同様にしてゲル内消化及び質量分析を行ったところ、少なくとも5個のピークが検出され、それらの精密質量は「3239.45」、「3454.62」、「2832.46」、「1831.99」、及び「1193.67」と算出された。これらのデータを元に上記1と同様にしてペプチドマスフィンガープリンティングを行ったところ、精密質量「3239.45」、「3454.62」、「2832.46」、「1831.99」、及び「1193.67」のペプチドは、それぞれ配列番号10〜14で表わされるアミノ酸配列のペプチドと一致し、目的のタンパク質は99%以上の確率で「アポリポタンパク質A2」と同定された。各ペプチドの精密質量、アミノ酸配列、及び配列番号の対応関係を第2表に示す。さらに、アポリポタンパク質A2(配列番号2、78アミノ酸、等電点4.94、分子量8736)のN末端側70アミノ酸に相当するタンパク質断片の予想される等電点が5.13、分子量が7925であり、これらの値がマーカー物質(A4)の物性とよく一致した。これにより、マーカー物質(A4)はアポリポタンパク質A2の断片(配列番号3)と最終的に同定された。   When a two-dimensional electrophoresis was performed again under the same conditions to cut out a band of about 7.9 kDa (arrow in FIG. 10), and in-gel digestion and mass spectrometry were performed in the same manner as 1 above, at least 5 peaks were found. Detected and their exact masses were calculated as “3239.45”, “3454.62”, “28332.46”, “18331.99”, and “1193.67”. Based on these data, peptide mass fingerprinting was performed in the same manner as in the above 1. As a result, accurate masses “323.45”, “3454.62”, “28332.46”, “18331.99”, and “1193” were obtained. The peptide of .67 ”matches the peptide of the amino acid sequence represented by SEQ ID NOs: 10 to 14, respectively, and the target protein was identified as“ apolipoprotein A2 ”with a probability of 99% or more. Table 2 shows the correspondence between the exact mass, amino acid sequence, and SEQ ID NO of each peptide. Furthermore, the predicted isoelectric point of the protein fragment corresponding to the 70 amino acids on the N-terminal side of apolipoprotein A2 (SEQ ID NO: 2, 78 amino acids, isoelectric point 4.94, molecular weight 8736) is 5.13, and the molecular weight is 7925. These values were in good agreement with the physical properties of the marker substance (A4). Thereby, the marker substance (A4) was finally identified as a fragment of apolipoprotein A2 (SEQ ID NO: 3).

3.マーカー物質(A5)と(A6)の同定
C57BLマウス血清(清水実験材料社)を実施例1と同様にして変性処理とカラム精製に供し、4つの画分を得た。画分1(pH9.0、素通り)をSDS−PAGEにて分離した後、抗ヒトトランスサイレチン抗体(サンタクルーズ社)を用いたウエスタンブロッティングを行った。図12に結果を示す。図12中、レーン1はヒトトランスサイレチン標品(陽性対照)、レーン2はサンプル50μL相当、レーン3はサンプル100μL相当、である。その結果、レーン2,3において約13.7kDaのバンドが反応した。
3. Identification of marker substances (A5) and (A6) C57BL mouse serum (Shimizu Experimental Materials Co., Ltd.) was subjected to denaturation treatment and column purification in the same manner as in Example 1 to obtain four fractions. Fraction 1 (pH 9.0, pass-through) was separated by SDS-PAGE, and then Western blotting using an anti-human transthyretin antibody (Santa Cruz) was performed. The results are shown in FIG. In FIG. 12, lane 1 is a human transthyretin preparation (positive control), lane 2 is equivalent to 50 μL of sample, and lane 3 is equivalent to 100 μL of sample. As a result, a band of about 13.7 kDa reacted in lanes 2 and 3.

図13(a)に実施例1の第3群(TP)の画分1、図13(b)に本実施例で調製した画分1のSELDI−TOF−MS分析の結果をそれぞれ示す。これらのイオンピークのパターンはよく似ており、マーカー物質(A5)に相当する約13.7kDaのピークと、マーカー物質(A6)に相当する約13.8kDaのピークが検出された。   FIG. 13 (a) shows the results of SELDI-TOF-MS analysis of the fraction 1 of the third group (TP) of Example 1 and FIG. 13 (b) of the fraction 1 prepared in this example. The pattern of these ion peaks was very similar, and a peak of about 13.7 kDa corresponding to the marker substance (A5) and a peak of about 13.8 kDa corresponding to the marker substance (A6) were detected.

トランスサイレチンには、システイン残基への修飾の種類が異なる種々の修飾体が存在することが知られている。各分子量の値から、マーカー物質(A5)は非修飾のトランスサイレチン、マーカー物質(A6)はSPAが結合した修飾トランスサイレチンであると考えられた。   It is known that transthyretin includes various modified products having different types of modification to cysteine residues. From each molecular weight value, it was considered that the marker substance (A5) was unmodified transthyretin, and the marker substance (A6) was modified transthyretin bound to SPA.

4.マーカー物質(A7)の精製と同定
強陰イオン交換樹脂Q−Sepharose HP(GEヘルスケア社)を充填したスピンカラム(5mL)を平衡化バッファー(50mM Tris−HCl(pH9.0),1M 尿素,0.22% CHAPS)にて平衡化した。C57BLマウス血清(清水実験材料社)1.5mLを20,000G、4℃で10分間遠心し、上清を回収した。回収した上清1.0mLに対して変性バッファー(50mM Tris−HCl(pH9.0),9M 尿素,2% CHAPS)を1.5mL加えて変性処理した。さらに平衡化バッファー2.5mLを加えて希釈した後、平衡化した前記カラムに添加した。50mM Tris−HCl(pH9.0)でカラムを洗浄した後、50mM 酢酸ナトリウムバッファー(pH5.0)で2段階に分けて溶出した。溶出画分の精製度をSELDI−TOF−MSにて確認した。
4). Purification and identification of marker substance (A7) Spin column (5 mL) packed with strong anion exchange resin Q-Sepharose HP (GE Healthcare) was equilibrated with buffer (50 mM Tris-HCl (pH 9.0), 1 M urea, 0.22% CHAPS). 1.5 mL of C57BL mouse serum (Shimizu Experimental Materials Co., Ltd.) was centrifuged at 20,000 G and 4 ° C. for 10 minutes, and the supernatant was collected. To 1.0 mL of the collected supernatant, 1.5 mL of denaturation buffer (50 mM Tris-HCl (pH 9.0), 9M urea, 2% CHAPS) was added for denaturation treatment. Further, 2.5 mL of equilibration buffer was added for dilution, and then added to the equilibrated column. The column was washed with 50 mM Tris-HCl (pH 9.0), and then eluted in two steps with 50 mM sodium acetate buffer (pH 5.0). The degree of purification of the eluted fraction was confirmed by SELDI-TOF-MS.

HiTrap SP HP(GEヘルスケア社)(1mL)を50mM MES−NaOH(pH6.0)にて平衡化した。前記溶出画分2mLを50mM MES−NaOH(pH6.0)で5倍希釈した後、平衡化した前記カラムに添加した。50,70,80,90,又は100mM NaClを含有する各50mM MES−NaOH(pH6.0)にてカラムを順次洗浄した後、1M NaClを含有する50mM MES−NaOH(pH6.0)にて溶出した。回収した溶出画分の精製度をSELDI−TOF−MSにて確認した。   HiTrap SP HP (GE Healthcare) (1 mL) was equilibrated with 50 mM MES-NaOH (pH 6.0). 2 mL of the eluted fraction was diluted 5-fold with 50 mM MES-NaOH (pH 6.0) and then added to the equilibrated column. The column was washed sequentially with 50 mM MES-NaOH (pH 6.0) containing 50, 70, 80, 90, or 100 mM NaCl, and then eluted with 50 mM MES-NaOH (pH 6.0) containing 1 M NaCl. did. The purity of the collected elution fraction was confirmed by SELDI-TOF-MS.

回収した画分の一部をAmicon Ultra(5kDaカット;ミリポア社)にて脱塩および濃縮した後、SDS−PAGE(7.5%ポリアクリルアミドゲル使用)を行った。結果を図14に示す。図14中、レーン4〜6が回収画分、Mは分子量マーカーである。分離された約47kDaのバンド(図14の矢印)を切り出してタンパク質を抽出し、SELDI−TOF−MS分析を行い、マーカー物質(A7)と同等の質量/電荷比を示すピークを確認した(図15)。   A portion of the collected fraction was desalted and concentrated with Amicon Ultra (5 kDa cut; Millipore), and then SDS-PAGE (7.5% polyacrylamide gel was used). The results are shown in FIG. In FIG. 14, lanes 4 to 6 are collected fractions, and M is a molecular weight marker. The separated band of about 47 kDa (arrow in FIG. 14) was cut out, protein was extracted, SELDI-TOF-MS analysis was performed, and a peak showing a mass / charge ratio equivalent to that of the marker substance (A7) was confirmed (FIG. 15).

あらためて同様のSDS−PAGEを行って約42kDaのバンドを切り出し、上記1と同様にしてゲル内消化及び質量分析を行ったところ、少なくとも7個のピークが検出され、それらの精密質量は「2306.08」、「1822.90」、「1545.82」、「1876.83」、「1105.60」、「1325.63」、及び「1038.54」と算出された。これらのデータを元に上記1と同様にしてペプチドマスフィンガープリンティングを行ったところ、精密質量「2306.08」、「1822.90」、「1545.82」、「1876.83」、「1105.60」、「1325.63」、及び「1038.54」のペプチドはそれぞれ配列番号15〜21で表わされるアミノ酸配列のペプチドと一致し、目的のタンパク質は99%以上の確率で「β−2−グリコプロテイン1」と同定された。各ペプチドの精密質量、アミノ酸配列、及び配列番号の対応関係を第3表に示す。既報のβ2−グリコプロテイン1のアミノ酸配列は配列番号6に示すとおりである。   When the same SDS-PAGE was performed again to cut out a band of about 42 kDa, and in-gel digestion and mass spectrometry were performed in the same manner as in 1 above, at least 7 peaks were detected, and their accurate masses were “2306. It was calculated as “08”, “1822.90”, “1545.82”, “1876.83”, “1105.60”, “1325.63”, and “1038.54”. Peptide mass fingerprinting was performed in the same manner as in 1 above based on these data. As a result, precise masses “2306.08”, “1822.90”, “1545.82”, “1876.83”, “1105. The peptides of “60”, “1325.63”, and “1038.54” match the peptides of the amino acid sequences represented by SEQ ID NOs: 15 to 21, respectively, and the target protein has a probability of “β-2- Identified as “Glycoprotein 1”. Table 3 shows the correspondence between the exact mass, amino acid sequence, and SEQ ID NO of each peptide. The amino acid sequence of previously reported β2-glycoprotein 1 is as shown in SEQ ID NO: 6.

質量/電荷比が5280(平均値)のイオンピークについての箱髭図である。It is a box diagram about the ion peak whose mass / charge ratio is 5280 (average value). 質量/電荷比が6829(平均値)のイオンピークについての箱髭図である。It is a box diagram about an ion peak whose mass / charge ratio is 6829 (average value). 質量/電荷比が7011(平均値)のイオンピークについての箱髭図である。It is a box diagram about the ion peak whose mass / charge ratio is 7011 (average value). 質量/電荷比が7924(平均値)のイオンピークについての箱髭図である。It is a box diagram about the ion peak whose mass / charge ratio is 7924 (average value). 質量/電荷比が13678(平均値)のイオンピークについての箱髭図である。It is a box diagram about the ion peak whose mass / charge ratio is 13678 (average value). 質量/電荷比が13881(平均値)のイオンピークについての箱髭図である。It is a box diagram about the ion peak whose mass / charge ratio is 13881 (average value). 質量/電荷比が47095(平均値)のイオンピークについての箱髭図である。It is a box diagram about the ion peak whose mass / charge ratio is 47095 (average value). マーカー物質(A3)の精製過程で行ったSDS−PAGEの結果を示す写真である。It is a photograph which shows the result of SDS-PAGE performed in the refinement | purification process of a marker substance (A3). マーカー物質(A3)の精製過程で行ったSELDI−TOF−MS分析の結果を示すイオンピーク図である。It is an ion peak figure which shows the result of the SELDI-TOF-MS analysis performed in the refinement | purification process of a marker substance (A3). マーカー物質(A4)の精製過程で行った2次元電気泳動の結果を示す写真である。It is a photograph which shows the result of the two-dimensional electrophoresis performed in the refinement | purification process of a marker substance (A4). マーカー物質(A4)の精製過程で行ったSELDI−TOF−MS分析の結果を示すイオンピーク図である。It is an ion peak figure which shows the result of the SELDI-TOF-MS analysis performed in the refinement | purification process of a marker substance (A4). 実施例2で行ったウエスタンブロッティングの結果を表す写真である。2 is a photograph showing the results of Western blotting performed in Example 2. FIG. (a)は実施例1の第3群(TP)の画分1をSELDI−TOF−MS分析に供した結果を表すイオンピーク図、(b)は実施例2で調製した画分1をSELDI−TOF−MS分析に供した結果を表すイオンピーク図である。(A) is an ion peak diagram showing the result of subjecting the fraction 1 of the third group (TP) of Example 1 to SELDI-TOF-MS analysis, and (b) is the fraction 1 prepared in Example 2 by SELDI. -It is an ion peak diagram showing the result which used for the TOF-MS analysis. マーカー物質(A7)の精製過程で行ったSDS−PAGEの結果を示す写真である。It is a photograph which shows the result of SDS-PAGE performed in the refinement | purification process of a marker substance (A7). マーカー物質(A7)の精製過程で行ったSELDI−TOF−MS分析の結果を示すイオンピーク図である。It is an ion peak figure which shows the result of the SELDI-TOF-MS analysis performed in the refinement | purification process of a marker substance (A7).

Claims (16)

被験物質を摂取させると共に運動負荷をかけた動物から採取した体液における下記マーカー物質(A1)、(A2)、(A3)、(A4)、(A5)、及び(A7)の少なくとも1つの濃度を基準値と比較することにより、ただしマーカー物質(A1)と(A2)の濃度測定は質量/電荷比を指標とする方法で行い、前記被験物質が有する運動機能の向上・維持・回復効果を評価することを特徴とする運動機能の向上・維持・回復効果の評価方法
(A1)pH3.0で弱陽イオン交換体に結合し、かつ質量分析に供すると質量/電荷比が約5280のイオンピークを生じるタンパク質、
(A2)pH9.0で強陰イオン交換体に結合し、かつ質量分析に供すると質量/電荷比が約6830のイオンピークを生じるタンパク質、
(A3)pH3.0で弱陽イオン交換体に結合し、かつ質量分析に供すると質量/電荷比が約7010のイオンピークを生じるタンパク質、
(A4)pH3.0で弱陽イオン交換体に結合し、かつ質量分析に供すると質量/電荷比が約7920のイオンピークを生じるタンパク質、
(A5)pH3.0で弱陽イオン交換体に結合し、かつ質量分析に供すると質量/電荷比が約13700のイオンピークを生じるタンパク質、
(A7)pH3.0で弱陽イオン交換体に結合し、かつ質量分析に供すると質量/電荷比が約47100のイオンピークを生じるタンパク質、であり、
さらに、
マーカー物質(A3)は配列番号7〜9で表される少なくとも1つのアミノ酸配列を含み、
マーカー物質(A4)は配列番号10〜14で表される少なくとも1つのアミノ酸配列を含み、
マーカー物質(A5)はトランスサイレチンに特異的な抗体に対する反応性を有し、
マーカー物質(A7)は配列番号15〜21で表される少なくとも1つのアミノ酸配列を含む。
A concentration of at least one of the following marker substances (A1), (A2), (A3), (A4), (A5), and (A7) in a body fluid collected from an animal that is ingested and exercised with a test substance: By comparing with the reference value, the concentration of marker substances (A1) and (A2) is measured by the method using the mass / charge ratio as an index, and the improvement / maintenance / recovery effect of the test substance is evaluated. A method for evaluating the effect of improvement, maintenance and recovery of motor function .
(A1) a protein that binds to a weak cation exchanger at pH 3.0 and produces an ion peak with a mass / charge ratio of about 5280 when subjected to mass spectrometry;
(A2) a protein that binds to a strong anion exchanger at pH 9.0 and produces an ion peak with a mass / charge ratio of about 6830 when subjected to mass spectrometry;
(A3) a protein that binds to a weak cation exchanger at pH 3.0 and produces an ion peak with a mass / charge ratio of about 7010 when subjected to mass spectrometry;
(A4) a protein that binds to a weak cation exchanger at pH 3.0 and produces an ion peak with a mass / charge ratio of about 7920 when subjected to mass spectrometry;
(A5) a protein that binds to a weak cation exchanger at pH 3.0 and produces an ion peak with a mass / charge ratio of about 13700 when subjected to mass spectrometry;
(A7) a protein that binds to a weak cation exchanger at pH 3.0 and produces an ion peak with a mass / charge ratio of about 47100 when subjected to mass spectrometry,
further,
The marker substance (A3) comprises at least one amino acid sequence represented by SEQ ID NOs: 7 to 9,
The marker substance (A4) includes at least one amino acid sequence represented by SEQ ID NOs: 10 to 14,
The marker substance (A5) has reactivity with an antibody specific to transthyretin,
The marker substance (A7) includes at least one amino acid sequence represented by SEQ ID NOs: 15 to 21.
被験物質を摂取させると共に運動負荷をかけた動物から採取した体液における下記マーカー物質(A1)、(A2)、(A3)、(A4)、(A5)及び(A7)の少なくとも1つの濃度を基準値と比較することにより、ただしマーカー物質(A1)と(A2)の濃度測定は質量/電荷比を指標とする方法で行い、前記被験物質が有する運動機能の向上・維持・回復効果を評価することを特徴とする運動機能の向上・維持・回復効果の評価方法
(A1)pH3.0で弱陽イオン交換体に結合し、かつ質量分析に供すると質量/電荷比が約5280のイオンピークを生じるタンパク質、
(A2)pH9.0で強陰イオン交換体に結合し、かつ質量分析に供すると質量/電荷比が約6830のイオンピークを生じるタンパク質、
(A3)pH3.0で弱陽イオン交換体に結合し、かつ質量分析に供すると質量/電荷比が約7010のイオンピークを生じるタンパク質、
(A4)pH3.0で弱陽イオン交換体に結合し、かつ質量分析に供すると質量/電荷比が約7920のイオンピークを生じるタンパク質、
(A5)pH3.0で弱陽イオン交換体に結合し、かつ質量分析に供すると質量/電荷比が約13700のイオンピークを生じるタンパク質、
(A7)pH3.0で弱陽イオン交換体に結合し、かつ質量分析に供すると質量/電荷比が約47100のイオンピークを生じるタンパク質、であり、
さらに、
マーカー物質(A3)はアポリポタンパク質C1又はその修飾体であり、
マーカー物質(A4)はアポリポタンパク質A2又はその修飾体であり、
マーカー物質(A5)はトランスサイレチン又はその修飾体であり、
マーカー物質(A7)はβ2−グリコプロテイン1又はその修飾体である。
Based on the concentration of at least one of the following marker substances (A1), (A2), (A3), (A4), (A5) and (A7) in a body fluid collected from an animal subjected to exercise load while ingesting the test substance The concentration of marker substances (A1) and (A2) is measured by the method using the mass / charge ratio as an index, and the improvement / maintenance / recovery effect on the motor function of the test substance is evaluated. This is a method for evaluating the improvement, maintenance, and recovery effects of motor function .
(A1) a protein that binds to a weak cation exchanger at pH 3.0 and produces an ion peak with a mass / charge ratio of about 5280 when subjected to mass spectrometry;
(A2) a protein that binds to a strong anion exchanger at pH 9.0 and produces an ion peak with a mass / charge ratio of about 6830 when subjected to mass spectrometry;
(A3) a protein that binds to a weak cation exchanger at pH 3.0 and produces an ion peak with a mass / charge ratio of about 7010 when subjected to mass spectrometry;
(A4) a protein that binds to a weak cation exchanger at pH 3.0 and produces an ion peak with a mass / charge ratio of about 7920 when subjected to mass spectrometry;
(A5) a protein that binds to a weak cation exchanger at pH 3.0 and produces an ion peak with a mass / charge ratio of about 13700 when subjected to mass spectrometry;
(A7) a protein that binds to a weak cation exchanger at pH 3.0 and produces an ion peak with a mass / charge ratio of about 47100 when subjected to mass spectrometry,
further,
The marker substance (A3) is apolipoprotein C1 or a modified form thereof,
The marker substance (A4) is apolipoprotein A2 or a modified form thereof,
The marker substance (A5) is transthyretin or a modified form thereof,
The marker substance (A7) is β2-glycoprotein 1 or a modified form thereof.
被験物質を摂取させると共に運動負荷をかけた動物から採取した体液における下記マーカー物質(B1)〜(B4)のいずれかに属する少なくとも1つの濃度を基準値と比較することにより、前記被験物質が有する運動機能の向上・維持・回復効果を評価することを特徴とする運動機能の向上・維持・回復効果の評価方法。
(B1)アポリポタンパク質C1又はその修飾体、
(B2)アポリポタンパク質A2又はその修飾体、
(B3)トランスサイレチン又はその修飾体、
(B4)β2−グリコプロテイン1又はその修飾体。
By comparing at least one concentration belonging to any of the following marker substances (B1) to (B4) in a body fluid collected from an animal subjected to exercise load while ingesting the test substance, the test substance has A method for evaluating the improvement, maintenance and recovery effect of motor function, characterized by evaluating the improvement, maintenance and recovery effect of motor function.
(B1) Apolipoprotein C1 or a modified product thereof,
(B2) Apolipoprotein A2 or a modified product thereof,
(B3) transthyretin or a modified form thereof,
(B4) β2-glycoprotein 1 or a modified form thereof.
前記基準値は、下記(I)及び/又は(II)であることを特徴とする請求項1〜3のいずれか1項に記載の運動機能の向上・維持・回復効果の評価方法。
(I)前記被験物質を摂取させずに運動負荷をかけた動物から採取した体液における前記マーカー物質の濃度、
(II)運動負荷をかけずに前記被験物質を摂取させた動物から採取した体液における前記マーカー物質の濃度。
The said reference value is following (I) and / or (II), The evaluation method of the improvement / maintenance / recovery effect of a motor function of any one of Claims 1-3 characterized by the above-mentioned.
(I) the concentration of the marker substance in a body fluid collected from an animal subjected to exercise without taking the test substance,
(II) The concentration of the marker substance in a body fluid collected from an animal ingested with the test substance without applying an exercise load.
前記体液は、血液であることを特徴とする請求項1〜4のいずれか1項に記載の運動機能の向上・維持・回復効果の評価方法。   The method for evaluating an improvement / maintenance / recovery effect of motor function according to claim 1, wherein the body fluid is blood. 前記被験物質は、食品素材であることを特徴とする請求項1〜5のいずれか1項に記載の運動機能の向上・維持・回復効果の評価方法。   The said test substance is a food material, The evaluation method of the improvement / maintenance / recovery effect of a motor function of any one of Claims 1-5 characterized by the above-mentioned. 前記体液又は体液成分を、前記マーカー物質に対する親和性を有する物質を固定化した担体に接触させて、体液中の前記マーカー物質を担体上に捕捉し、捕捉された前記マーカー物質の量に基づいて体液中の前記マーカー物質の濃度を算出することを特徴とする請求項1〜6のいずれか1項に記載の運動機能の向上・維持・回復効果の評価方法。   The bodily fluid or bodily fluid component is brought into contact with a carrier on which a substance having affinity for the marker substance is immobilized, the marker substance in the bodily fluid is captured on the carrier, and based on the amount of the captured marker substance The method for evaluating the improvement / maintenance / recovery effect of motor function according to claim 1, wherein the concentration of the marker substance in a body fluid is calculated. 前記担体は平面部分を有し、前記マーカー物質に対する親和性を有する物質は、該平面部分の一部に固定化されていることを特徴とする請求項7に記載の運動機能の向上・維持・回復効果の評価方法。   8. The improvement and maintenance of motor function according to claim 7, wherein the carrier has a planar portion, and the substance having affinity for the marker substance is immobilized on a part of the planar portion. Evaluation method of recovery effect. 前記マーカー物質に対する親和性を有する物質は、イオン交換体又は抗体であることを特徴とする請求項7又は8に記載の運動機能の向上・維持・回復効果の評価方法。   9. The method for evaluating an improvement / maintenance / recovery effect on motor function according to claim 7 or 8, wherein the substance having affinity for the marker substance is an ion exchanger or an antibody. 請求項1〜9のいずれか1項に記載の運動機能の向上・維持・回復効果の評価方法によって被験物質が有する運動機能の向上・維持・回復効果を評価し、当該評価結果に基づいて所望の運動機能の向上・維持・回復効果を有する物質をスクリーニングすることを特徴とする物質のスクリーニング方法。   The improvement / maintenance / recovery effect of the test substance is evaluated by the method for evaluating the improvement / maintenance / recovery effect of the motor function according to any one of claims 1 to 9, and desired based on the evaluation result A screening method for a substance, comprising screening a substance having an effect of improving, maintaining, and recovering the motor function of human. 請求項1〜9のいずれか1項に記載の運動機能の向上・維持・回復効果の評価方法に用いるためのキットであって、前記マーカー物質に対する親和性を有する物質を固定化した担体を含むことを特徴とする運動機能の向上・維持・回復効果の評価用キット。   A kit for use in the method for evaluating an improvement / maintenance / recovery effect of motor function according to any one of claims 1 to 9, comprising a carrier on which a substance having affinity for the marker substance is immobilized. A kit for evaluating the improvement, maintenance, and recovery effects of motor function. 前記マーカー物質に対する親和性を有する物質は、イオン交換体であることを特徴とする請求項11に記載の運動機能の向上・維持・回復効果の評価用キット。   12. The kit for evaluating the improvement / maintenance / recovery effect of motor function according to claim 11, wherein the substance having affinity for the marker substance is an ion exchanger. 運動機能の向上・維持・回復効果を有する物質をスクリーニングするために使用されることを特徴とする請求項11又は12に記載の運動機能の向上・維持・回復効果の評価用キット。   13. The kit for evaluating an improvement / maintenance / recovery effect of motor function according to claim 11 or 12, which is used for screening a substance having an improvement / maintenance / recovery effect of motor function. 動物の体内に存在する下記(A1)、(A2)、(A3)、(A4)、(A5)、及び(A7)の少なくとも1つのタンパク質の、ただしマーカー物質(A1)と(A2)の検出は質量/電荷比を指標とする方法により行う、運動機能の変動を反映するマーカーとしての使用
(A1)pH3.0で弱陽イオン交換体に結合し、かつ質量分析に供すると質量/電荷比が約5280のイオンピークを生じるタンパク質、
(A2)pH9.0で強陰イオン交換体に結合し、かつ質量分析に供すると質量/電荷比が約6830のイオンピークを生じるタンパク質、
(A3)pH3.0で弱陽イオン交換体に結合し、かつ質量分析に供すると質量/電荷比が約7010のイオンピークを生じるタンパク質、
(A4)pH3.0で弱陽イオン交換体に結合し、かつ質量分析に供すると質量/電荷比が約7920のイオンピークを生じるタンパク質、
(A5)pH3.0で弱陽イオン交換体に結合し、かつ質量分析に供すると質量/電荷比が約13700のイオンピークを生じるタンパク質、
(A7)pH3.0で弱陽イオン交換体に結合し、かつ質量分析に供すると質量/電荷比が約47100のイオンピークを生じるタンパク質、であり、
さらに、
マーカー物質(A3)は配列番号7〜9で表される少なくとも1つのアミノ酸配列を含み、
マーカー物質(A4)は配列番号10〜14で表される少なくとも1つのアミノ酸配列を含み、
マーカー物質(A5)はトランスサイレチンに特異的な抗体に対する反応性を有し、
マーカー物質(A7)は配列番号15〜21で表される少なくとも1つのアミノ酸配列を含む。
Detection of at least one protein of the following (A1), (A2), (A3), (A4), (A5), and (A7) present in the animal body, but with marker substances (A1) and (A2) Is used as a marker that reflects fluctuations in motor function , using a method that uses the mass / charge ratio as an index .
(A1) a protein that binds to a weak cation exchanger at pH 3.0 and produces an ion peak with a mass / charge ratio of about 5280 when subjected to mass spectrometry;
(A2) a protein that binds to a strong anion exchanger at pH 9.0 and produces an ion peak with a mass / charge ratio of about 6830 when subjected to mass spectrometry;
(A3) a protein that binds to a weak cation exchanger at pH 3.0 and produces an ion peak with a mass / charge ratio of about 7010 when subjected to mass spectrometry;
(A4) a protein that binds to a weak cation exchanger at pH 3.0 and produces an ion peak with a mass / charge ratio of about 7920 when subjected to mass spectrometry;
(A5) a protein that binds to a weak cation exchanger at pH 3.0 and produces an ion peak with a mass / charge ratio of about 13700 when subjected to mass spectrometry;
(A7) a protein that binds to a weak cation exchanger at pH 3.0 and produces an ion peak with a mass / charge ratio of about 47100 when subjected to mass spectrometry,
further,
The marker substance (A3) comprises at least one amino acid sequence represented by SEQ ID NOs: 7 to 9,
The marker substance (A4) includes at least one amino acid sequence represented by SEQ ID NOs: 10 to 14,
The marker substance (A5) has reactivity with an antibody specific to transthyretin,
The marker substance (A7) includes at least one amino acid sequence represented by SEQ ID NOs: 15 to 21.
動物の体内に存在する下記(A1)、(A2)、(A3)、(A4)、(A5)、及び(A7)の少なくとも1つのタンパク質の、ただしマーカー物質(A1)と(A2)の検出は質量/電荷比を指標とする方法により行う、運動機能の変動を反映するマーカーとしての使用
(A1)pH3.0で弱陽イオン交換体に結合し、かつ質量分析に供すると質量/電荷比が約5280のイオンピークを生じるタンパク質、
(A2)pH9.0で強陰イオン交換体に結合し、かつ質量分析に供すると質量/電荷比が約6830のイオンピークを生じるタンパク質、
(A3)pH3.0で弱陽イオン交換体に結合し、かつ質量分析に供すると質量/電荷比が約7010のイオンピークを生じるタンパク質、
(A4)pH3.0で弱陽イオン交換体に結合し、かつ質量分析に供すると質量/電荷比が約7920のイオンピークを生じるタンパク質、
(A5)pH3.0で弱陽イオン交換体に結合し、かつ質量分析に供すると質量/電荷比が約13700のイオンピークを生じるタンパク質、
(A7)pH3.0で弱陽イオン交換体に結合し、かつ質量分析に供すると質量/電荷比が約47100のイオンピークを生じるタンパク質、であり、
さらに、
マーカー物質(A3)はアポリポタンパク質C1又はその修飾体であり、
マーカー物質(A4)はアポリポタンパク質A2又はその修飾体であり、
マーカー物質(A5)はトランスサイレチン又はその修飾体であり、
マーカー物質(A7)はβ2−グリコプロテイン1又はその修飾体である。
Detection of at least one protein of the following (A1), (A2), (A3), (A4), (A5), and (A7) present in the animal body, but with marker substances (A1) and (A2) Is used as a marker that reflects fluctuations in motor function , using a method that uses the mass / charge ratio as an index .
(A1) a protein that binds to a weak cation exchanger at pH 3.0 and produces an ion peak with a mass / charge ratio of about 5280 when subjected to mass spectrometry;
(A2) a protein that binds to a strong anion exchanger at pH 9.0 and produces an ion peak with a mass / charge ratio of about 6830 when subjected to mass spectrometry;
(A3) a protein that binds to a weak cation exchanger at pH 3.0 and produces an ion peak with a mass / charge ratio of about 7010 when subjected to mass spectrometry;
(A4) a protein that binds to a weak cation exchanger at pH 3.0 and produces an ion peak with a mass / charge ratio of about 7920 when subjected to mass spectrometry;
(A5) a protein that binds to a weak cation exchanger at pH 3.0 and produces an ion peak with a mass / charge ratio of about 13700 when subjected to mass spectrometry;
(A7) a protein that binds to a weak cation exchanger at pH 3.0 and produces an ion peak with a mass / charge ratio of about 47100 when subjected to mass spectrometry,
further,
The marker substance (A3) is apolipoprotein C1 or a modified form thereof,
The marker substance (A4) is apolipoprotein A2 or a modified form thereof,
The marker substance (A5) is transthyretin or a modified form thereof,
The marker substance (A7) is β2-glycoprotein 1 or a modified form thereof.
動物の体内に存在する下記(B1)〜(B4)の少なくとも1つのタンパク質の、運動機能の変動を反映するマーカーとしての使用。
(B1)アポリポタンパク質C1又はその修飾体、
(B2)アポリポタンパク質A2又はその修飾体、
(B3)トランスサイレチン又はその修飾体、
(B4)β2−グリコプロテイン1又はその修飾体。
Use of at least one protein of the following (B1) to (B4) present in an animal body as a marker that reflects fluctuations in motor function.
(B1) Apolipoprotein C1 or a modified product thereof,
(B2) Apolipoprotein A2 or a modified product thereof,
(B3) transthyretin or a modified form thereof,
(B4) β2-glycoprotein 1 or a modified form thereof.
JP2008115002A 2008-04-25 2008-04-25 Evaluation method and evaluation kit for improvement / maintenance / recovery effect of motor function, screening method for substance, and use as marker Active JP5414087B2 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2008115002A JP5414087B2 (en) 2008-04-25 2008-04-25 Evaluation method and evaluation kit for improvement / maintenance / recovery effect of motor function, screening method for substance, and use as marker

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2008115002A JP5414087B2 (en) 2008-04-25 2008-04-25 Evaluation method and evaluation kit for improvement / maintenance / recovery effect of motor function, screening method for substance, and use as marker

Publications (2)

Publication Number Publication Date
JP2009264932A JP2009264932A (en) 2009-11-12
JP5414087B2 true JP5414087B2 (en) 2014-02-12

Family

ID=41390965

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP2008115002A Active JP5414087B2 (en) 2008-04-25 2008-04-25 Evaluation method and evaluation kit for improvement / maintenance / recovery effect of motor function, screening method for substance, and use as marker

Country Status (1)

Country Link
JP (1) JP5414087B2 (en)

Families Citing this family (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP6539511B2 (en) * 2015-06-17 2019-07-03 花王株式会社 Marker for judgment of motor function

Family Cites Families (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH07102112B2 (en) * 1990-04-06 1995-11-08 大塚製薬株式会社 High protein high viscosity nutritional supplement composition
JP2005047839A (en) * 2003-07-31 2005-02-24 Toyo Shinyaku:Kk Proanthocyanidin-containing composition
US8008020B2 (en) * 2004-06-03 2011-08-30 Vermillion, Inc. Biomarkers for peripheral artery disease
WO2006073195A1 (en) * 2005-01-07 2006-07-13 Biomarker Science Co., Ltd Method for predicting or diagnosing diabetes and kit for predicting or diagnosing diabetes

Also Published As

Publication number Publication date
JP2009264932A (en) 2009-11-12

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Koeberl et al. Next generation of food allergen quantification using mass spectrometric systems
US20150219672A1 (en) Novel biomarkers for non-alcoholic fatty liver disease, and methods for detecting non-alcoholic fatty liver disease by using such biomarkers
Chutipongtanate et al. Plasma prefractionation methods for proteomic analysis and perspectives in clinical applications
JP5468218B2 (en) Skin aging improvement / progression delay evaluation method, substance screening method, and use as a marker
JP5041506B2 (en) Disease detection method, substance evaluation method, substance screening method, and use as a marker
WO2011010372A1 (en) Method and kit for evaluation of substance, method for screening of substance, and method and kit for determination of presence of occurrence of diabetic nephropathy or potential risk of diabetic nephropathy
JP2007064747A5 (en)
WO2017104289A1 (en) Protein detection method, and protein immunoassay method
JP5414087B2 (en) Evaluation method and evaluation kit for improvement / maintenance / recovery effect of motor function, screening method for substance, and use as marker
JP5717331B2 (en) Evaluation method and evaluation kit of visceral fat increase inhibitory effect, screening method for substance, and use as marker
JP5373322B2 (en) Evaluation method of arteriosclerosis improvement / prevention effect, screening method of substance, and use as marker
Martos et al. Identification of an IgE reactive peptide in hen egg riboflavin binding protein subjected to simulated gastrointestinal digestion
JP2010190804A (en) Method and kit for evaluating improvement/preventive effect of arteriosclerosis, and substance screening method
JP6712369B2 (en) Anti-peptide antibody production method and design method
JP6634653B2 (en) Method for screening samples to be subjected to mass spectrometry
Perez-Gregorio et al. Chromatographic and mass spectrometry analysis of wheat flour prolamins, the causative compounds of celiac disease
JP5710097B2 (en) Evaluation method of arteriosclerosis improvement / prevention effect, screening method of substance, and use as marker
JP5669349B2 (en) Method for evaluating relaxation / induction suppression effect of tension state in vivo, and screening method for substance
JP5684969B2 (en) Interferon therapy effect prediction method and prediction kit
JP6358625B2 (en) Protein detection method
JP5349857B2 (en) Evaluation method of arteriosclerosis improvement / prevention effect, screening method of substance, and use as marker
JP2010038898A (en) Method and kit for evaluating improvement of arteriosclerosis and preventive effect, and method for screening substance
JP6358630B2 (en) Immunoassay method
JP5777227B2 (en) Substance evaluation method and evaluation kit, substance screening method, presence / absence of onset of diabetic nephropathy or future onset risk detection method and detection kit
JP2009180531A (en) Substance evaluation method, evaluation kit, substance screening method, determining method of presence of sideration of diabetic nephropathy or future sideration risk and determining kit

Legal Events

Date Code Title Description
A621 Written request for application examination

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A621

Effective date: 20110422

A521 Written amendment

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523

Effective date: 20120420

A977 Report on retrieval

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A971007

Effective date: 20120919

A131 Notification of reasons for refusal

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131

Effective date: 20121004

A521 Written amendment

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523

Effective date: 20121128

A131 Notification of reasons for refusal

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131

Effective date: 20130829

A521 Written amendment

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523

Effective date: 20131016

TRDD Decision of grant or rejection written
A01 Written decision to grant a patent or to grant a registration (utility model)

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A01

Effective date: 20131107

A61 First payment of annual fees (during grant procedure)

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A61

Effective date: 20131111

R150 Certificate of patent or registration of utility model

Ref document number: 5414087

Country of ref document: JP

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R150

S111 Request for change of ownership or part of ownership

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R313117

R350 Written notification of registration of transfer

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R350