JP5029877B2 - Method for producing icosapentaenoic acid and docosahexaenoic acid - Google Patents
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Description
本発明は、ハプト植物門に属するパブロバ藻体を培養することにより、イコサペンタエン酸及びドコサヘキサエン酸を生産する方法に関する。 The present invention relates to a method for producing icosapentaenoic acid and docosahexaenoic acid by culturing Pavlova alga bodies belonging to the haptophyta.
従来、単細胞微細藻類を縦型偏平水槽中の無機液体培地に接種して、光照射しつつ、かつ、炭酸ガス含有空気を通気しつつ培養する方法において、ナンノクロロプシス藻体を、PVC濃度を0 .9 〜1 .7ml /l 接種して、水槽の前後面の何れかの片面から照度6000〜16000lx の光を照射しつつ、PVC濃度が1 .8 〜4 .9ml /l になるまで培養する第1工程と、当該PVC濃度1 .8 〜4 .9ml /l の培養液に、水槽の前後面の両面から照度11000 〜21000lx の光を照射しつつ、PVC濃度が5 .0 〜7 .Oml /l になるまで培養する第2工程と、当該PVC濃度5 .0 〜7 .Oml /l の培養液に、水槽の前後面の両面から照度10000 〜35000lx の光を照射しつつ、PVC濃度が10.3 〜11.Oml /l になるまで培養する第3工程とから成ることを特徴とするエイコサペンタエン酸を生産させることは、特許文献1に開示されており公知である。
Conventionally, in a method of inoculating a single-cell microalgae into an inorganic liquid medium in a vertical flat water tank and cultivating while irradiating with light and aeration with carbon dioxide-containing air, 0. 9-1. Inoculate 7 ml / l and irradiate light with illuminance of 6000 to 16000 lx from one of the front and rear surfaces of the aquarium. 8-4. A first step of culturing until 9 ml / l, and the
また、単細胞微細藻類を縦型偏平水槽中の無機液体培地に接種して、光照射しつつ、かつ、炭酸ガス含有空気を通気しつつ培養する方法において、円石藻体を、PVC濃度を0 .1 〜0 .4ml /l に接種して、水槽の前後面の何れかの片面から照度3000〜4000lxの光照射をしつつ、PVC濃度が0 .5 〜1ml /l まで培養する第1工程と、該0 .5 〜1ml /l 濃度の培養液に、水槽の前後の両面から照度3000〜4000lxの光照射をしつつ、PVC濃度が2 .0 〜2 .3ml /l まで培養する第2工程と、該2 .0 〜2 .3ml /l 濃度の培養液に、水槽の前後の両面から照度5000〜6000lxの光照射しつつ、PVC濃度が5 .0 〜5 .5ml /l まで培養する第3工程とから成ることを特徴とするドコサヘキサエン酸を生産させることは、特許文献2に開示されており公知である。
しかしながら、上記従来のナンノクロロプシス藻体の培養法では、(エ)イコサペンタエン酸だけしか生産させることができなかった。 However, only the (e) icosapentaenoic acid can be produced by the conventional culture method of the above-mentioned Nannochloropsis alga.
さらに、上記従来の円石藻体の培養法では、ドコサヘキサエン酸だけしか生産させることができなかった。 Furthermore, only the docosahexaenoic acid was able to be produced by the conventional method for cultivating cobble stones.
そこで、本発明者は、イコサペンタエン酸及びドコサヘキサエン酸を同時に大量に生産させるパブロバ藻体の培養法について研究した結果、本発明を達成したのである。 Therefore, the present inventor has achieved the present invention as a result of studying a culture method for Pavlova alga bodies that simultaneously produce a large amount of icosapentaenoic acid and docosahexaenoic acid.
本発明は、単細胞微細藻類を培養槽中の無機液体培地に接種して、光照射しつつ、かつ、炭酸ガス含有空気を通気しつつ培養する方法において、パブロバ藻体であるハプト植物部門(Haptophyta)に属するハプト藻網(Haptophyceae)のパブロバ目(Pavlovales)のパブロバ(Pavlova)を重量乾燥藻体濃度10〜40mg/l に接種して、培養槽に光強度75〜100 μE /m ・s2 の光を照射しつつ、50〜100mg /l まで培養する第1工程と、この50〜100mg /l 濃度の培養液に、培養槽に光強度125 〜150 μE /m ・s2 の光を照射しつつ、200 〜230mg /l まで培養する第2工程と、この200 〜230mg /l 濃度の培養液に、培養液のpHを6 .8 〜7 .2 の範囲に調整して、500 〜550mg /l まで培養する第3工程とから成ることを特徴とするものである。 The present invention relates to a method of inoculating single-cell microalgae into an inorganic liquid medium in a culture tank, cultivating while irradiating with light and aeration of carbon dioxide-containing air, and a haptophyte department (Haptophyta ) that is a Pavlova alga. Haptophyceae Pavlova Pavlova belonging to) is inoculated to a dry dry alga concentration of 10 to 40 mg / l, and the culture tank has a light intensity of 75 to 100 μE / m · s 2 The first step of culturing to 50 to 100 mg / l while irradiating the light of 50 and the culture solution of 50 to 100 mg / l is irradiated with light with a light intensity of 125 to 150 μE / m · s 2 However, the second step of culturing up to 200 to 230 mg / l and the culture solution at a concentration of 200 to 230 mg / l are adjusted to pH 6. 8-7. And the third step of culturing up to 500 to 550 mg / l.
さらに、本発明は、単細胞微細藻類を培養槽中の無機液体培地に接種して、光照射しつつ、かつ、炭酸ガス含有空気を通気しつつ培養する方法において、パブロバ藻体であるハプト植物部門(Haptophyta)に属するハプト藻網(Haptophyceae)のパブロバ目(Pavlovales)のパブロバ(Pavlova)を重量乾燥藻体濃度10〜40mg/l に接種して、培養槽の片側から光強度75〜100 μE /m ・s2 の光を照射しつつ、50〜100mg /l まで培養する第1工程と、この50〜100mg /l 濃度の培養液に、培養槽の両側から光強度125 〜150 μE /m ・s2 の光を照射しつつ、200 〜230mg /l まで培養する第2工程と、この200 〜230mg /l 濃度の培養液に、培養液のpHを6 .8 〜7 .2 の範囲に調整して、500 〜550mg /l まで培養する第3工程とから成ることを特徴とするものである。 Furthermore, the present invention relates to a haptophyte department that is a Pavlova alga body in a method of inoculating single-cell microalgae into an inorganic liquid medium in a culture tank, cultivating while irradiating with light and aeration of carbon dioxide-containing air. Pavlova of the Haptophyceae belonging to (Haptophyta) is inoculated at a dry dry algal body concentration of 10 to 40 mg / l and light intensity from one side of the culture tank is 75 to 100 μE / The first step of culturing to 50 to 100 mg / l while irradiating light of m · s 2 , and the light intensity of 125 to 150 μE / m The second step of culturing to 200 to 230 mg / l while irradiating the light of s 2 , and adding the pH of the culture solution to 6 to 200 to 230 mg / l concentration of the culture solution. 8-7. And the third step of culturing up to 500 to 550 mg / l.
本発明で使用する培養槽としては、例えば縦型偏平水槽が挙げられる。この縦型偏平水槽とは、好ましくは、前後の各面の幅が0 .5 〜2m程度、高さが1 .5 〜2 .5m程度で、左右の各側面の幅が7 〜17cmの縦長の偏平の水槽で、上端の細い長方形の開口部には、周壁に適数個の通気孔が設けられ、かつ先端部が閉鎖されている。炭酸ガス含有空気を無機液体培地に送入する通気管が、その先端から挿入され、また、下端部に形成された船底形状の底部には、培養液の排出管が、開閉自在の弁部材を介して装着されているものである。そして、側面幅は、17cmを超えると、パブロバ藻体が光りを十分に受けることかできず、イコサペンタエン酸(以下、EPAという)及びドコサヘキサエン酸(以下、DHAという)の生産が低下するので好ましくない。また、船底形態の底部は、培養液が排出され易いように培養液排出管に向けて下方に傾斜されていることが好ましく、水槽を形成するガラス板またはアクリル板の厚さは3cm程度が望ましい。なお、本発明での光照射は、白色、昼色蛍光灯または白熱灯の照射をいう。 Examples of the culture tank used in the present invention include a vertical flat water tank. The vertical flat water tank preferably has a width of 0. About 5 to 2m, height is 1. 5-2. This is a vertically long flat water tank with a width of about 7 to 17 cm with a width of 7 to 17 cm on the left and right sides. An appropriate number of air holes are provided in the peripheral wall of the thin rectangular top and the tip is closed. ing. A vent pipe for feeding carbon dioxide-containing air into the inorganic liquid medium is inserted from the tip, and a culture medium discharge pipe is provided at the bottom of the bottom formed at the lower end of the openable valve member. Is attached. If the side width exceeds 17 cm, the Pavlova alga body cannot receive light sufficiently, and production of icosapentaenoic acid (hereinafter referred to as EPA) and docosahexaenoic acid (hereinafter referred to as DHA) is not preferable. . Moreover, it is preferable that the bottom of the ship bottom shape is inclined downward toward the culture medium discharge pipe so that the culture medium can be easily discharged, and the thickness of the glass plate or acrylic plate forming the water tank is preferably about 3 cm. . In addition, the light irradiation in this invention means irradiation of a white, daylight fluorescent lamp, or an incandescent lamp.
本発明でいうパブロバ藻体とは、ハプト植物部門(Haptophyta)に属するハプト藻網(Haptophyceae)のパブロバ目(Pavlovales)のパブロバ(Pavlova)が挙げられる。 Examples of the Pavlova alga used in the present invention include Pavlova of the order Pavlovales of the haptophyceae belonging to the haptophyta department.
ハプト植物部門に属するハプト藻網には、前記パブロバ目の他に、イソクリシス目(Isochrysidales)、コッコスフェラ目(Coccosphaerales) 、プリムネシウム目(Prymnesiales)が存在する。そして、パブロバ目には、前記パブロバの他に、ディアクロネマ(Diacronema)、エキサンテマクリシス(Exanthemachrysis)等が知られている。イソクリシス目には、アピストネマ(Apistonema)、クリソネマ(Chrysonema)、クリソティラ(Chrysotila)、クリコスフェラ(Cricosphaera)、ディクラテリア(Dicrateria)、エミリアニア(Emiliania) 、ゲフィロカプサ(Gephyrocapsa)、ヒメノモナス(Hymenomonas) 、イマントニア(Imantonia) 、イソクリシス(Isochrysis)、ペルロクリシス(Pleurochrysis) 、オクロスフェラ(Ochrosphaera)等が知られている。コッコスフェラ目には、アカントイカ(Acanthoica)、アノプロソレニア(Anoplosolenia) 、アントスフェラ(Anthosphaera)、ブラルドスフェラ(Braarudosphaera) 、カルシオパップス(Calciopappus)、カルシオソレニア(Calciosolenia) 、カリプトロスフェラ(Calyptrosphaera) 、コッコリタス(Coccolithus) 、コリスフェラ(Corisphaera) 、クリスタロリタス(Crystallolithus) 、シクロコッコリタス(Cyclococcolithus)、ドイツランディア(Deutschlandia) 、ディスコスフェラ(Discosphaera)、ヘリコスフェラ(Helicosphaera) 、ヘラドスフェラ(Helladosphaera)、ホモジゴスフェラ(Homozygosphaera) 、ミカエルサルシア(Michaelsarsia) 、オフィアスター(Ophiaster) 、パッポスフェラ(Papposphaera)、ポントスフェラ(Pontosphaera)、ラブドスフェラ(Rhabdosphaera) 、ラブドソラックス(Rhabdothorax)、シフォスフェラ(Scyphosphaera) 、スフェロカリテプトラ(Sphaerocalyptra) 、シラコリタス(Syracolithus)、シラコスフェラ(Syracosphaera) 、トラコスフェラ(Thoracosphaera)、ジゴスフェラ(Zygosphaera) 等が知られている。プリムネシウム目には、クリソクロムリナ(Chrysochromulina)、コリムベラス(Corymbellus) 、フェオシスティス(Phaeocystis) 、プラティクリシス(Platychrysis)、プリムネシウム(Prymnesium)等が知られている。 In addition to the Pavlova, there are Isochrysidales, Coccosphaerales, and Prymnesiales in the haptophyte net belonging to the haptophyte department. In addition to Pavlova, Diacronema, Exanthhemachrysis, and the like are known as Pavlova. In the isochrysis, Apistonema, Chrysonema, Chrysotila, Cricosphaera, Dicrateria, Emiliania, Gephyrocapsa, Hymenonas (Hymenonas) ), Isochrysis, perlechrysis, and Ochrosphaera are known. In the order of Cocosfera, Acanthoica, Anoplosolenia, Anthosphaera, Braarudosphaera, Calciopappus, Calciosolenia, Calyptosphaera, Calyptrosphaera (Coccolithus), Corisphaera, Crystallolithus, Cyclococcolithus, Deutschlandia, Discosphaera, Helicosphaera, Helladosphaera, Helladosphaera, Helladosphaera, Ella Sarcia (Ophiaster), Papposphaera, Pontosphaera, Rhabdosphaera, Rhabdothorax, Scyphosphaera, Spherocaritept (Sphaerocalyptra), Shirakoritasu (Syracolithus), Shirakosufera (Syracosphaera), Torakosu Blow (Thoracosphaera), Jigosufera (Zygosphaera) and the like are known. As the primumesium, Chrysochromulina, Corymbellus, Phaeocystis, Platychrysis, Primnesium and the like are known.
本発明では、これら多くのハプト植物部門に属するハプト藻網のうち、前記パブロバ目のパブロバが、EPA及びDHAを同時に大量に生産させることを見いだしたものである。 In the present invention, it has been found that among the haptoalgal nets belonging to many of these haptophyte departments, the Pavlova-type Pavlova simultaneously produces EPA and DHA in large quantities.
本発明でいう無機液体培地とは、培地100 リットルに対して、NaClが2400〜3000g 、MgSO4 ・7H2 Oが600 〜700g、KNO3 が30〜100g、CaCl2 ・2H2 Oが10〜18g 、KH2 PO4 が5 〜9g、NaHCO3 が3 〜5g、Tris−HClが220 〜260g、ビタミンB12が0 .3 〜0 .7mg 、チアミン−HClが40〜60mg、ビオチンが0 .1 〜1mg 、FeCl2 ・6H2 Oが200 〜300mg 、Na2 EDTAが1500〜2500mg、ZnCl2 が0 .4 〜40mg、H3 BO3 が6 〜60mg、CoCl2 ・6H2 Oが0 .15〜1 .5mg 、CuCl2 ・2H2 Oが0 .4 〜4mg 、MnCl2 ・4H2 Oが4 〜40mg、(NH4 )6 MoO24が0 .37〜37mgの割合で含まれている培地をいう。
The inorganic liquid medium referred to in the present invention is 2400 to 3000 g of NaCl, 600 to 700 g of MgSO 4 .7H 2 O, 30 to 100 g of KNO 3 , and 10 to 10 of CaCl 2 · 2H 2 O per 100 liters of medium. 18g, KH 2 PO 4 is 5 ~9g, NaHCO 3 is 3 ~5g, Tris-HCl is 220 ~260g, vitamin B 12 is 0. 3-0. 7 mg, thiamine-HCl 40-60 mg,
本発明で、第1工程において、培養開始重量乾燥藻体濃度10〜40mg/l を接種し、培養槽の片側から光強度75〜100 μE /m ・s2光を照射して培養するのは、好適に培養することができるからであり、また50〜100mg / lまで培養するのは、100mg /l を超えてまで培養すると、照度が不足となり、培養液中のパブロバ藻体を凝集・黄変させ、EPA及びDHAの生産が低下するからである。よって、上記条件で培養することにより、EPA及びDHAの生産を低下させることなく、順調に第2工程の培養に移行することができるからである。 In the present invention, in the first step, inoculating with a culture start weight dry alga body concentration of 10-40 mg / l and irradiating with light intensity of 75-100 μE / m · s 2 light from one side of the culture tank This is because it can be suitably cultured, and the culture is carried out to 50 to 100 mg / l. If the culture exceeds 100 mg / l, the illuminance is insufficient, and the Pavlova alga in the culture is agglomerated / yellowed. This is because the production of EPA and DHA decreases. Therefore, by culturing under the above conditions, it is possible to smoothly shift to the second step culture without reducing the production of EPA and DHA.
第1工程で培養した重量乾燥藻体濃度50〜100mg /l の培養液に、第2工程において、培養槽の両側から光強度125 〜150 μE /m ・s2の光を照射して、200 〜230mg /l まで培養するのは、パブロバ藻体を順調に培養してEPA及びDHAを生産させるためであり、そして、230mg /l を超えるとEPA及びDHAの生産速度を低下させるからである。また、培養液中のパブロバ藻体を凝集体させたり、黄変させたりして、第3工程の培養に移行できないからである。 In the second step, the weight-dried algal body concentration cultured in the first step is irradiated with light having a light intensity of 125 to 150 μE / m · s 2 from both sides of the culture tank. The reason for culturing up to ˜230 mg / l is to cultivate Pavlova alga bodies smoothly to produce EPA and DHA, and when it exceeds 230 mg / l, the production rate of EPA and DHA is reduced. Moreover, it is because it cannot transfer to the culture | cultivation of a 3rd process by aggregating or yellowing the Pavlova alga body in a culture solution.
第2工程で培養した重量乾燥藻体濃度200 〜230mg /l の培養液に、第3工程として、培養液のpHを6 .8 〜7 .2 の範囲に調整して500 〜550mg /l まで培養するのは、550mg /l まで培養した後の重量乾燥藻体濃度の増加は殆ど無くなり、従って、EPA及びDHAの生産も無くなるからである。 In the third step, the culture solution having a weight-dried algal body concentration of 200 to 230 mg / l cultured in the second step is adjusted to pH 6. 8-7. The reason for culturing from 500 to 550 mg / l after adjusting to the range of 2 is that there is almost no increase in the weight-dried algal body concentration after culturing to 550 mg / l, and therefore production of EPA and DHA is also eliminated.
本発明において、第1工程〜第3工程を通じ、温度10〜30℃で行うのが好ましく、10℃未満では重量乾燥藻体濃度の増加は殆どなく、30℃を超えればパブロバ藻体が凝集し、光照射時間が18〜24時間/日であればEPA及びDHAの生産量の低下は来さず、また、炭酸ガス1 〜5 %含有空気を5 〜7ml /l の割合で通気、攪拌することにより、EPA及びDHAの生産量の低下を来すことがない。 In the present invention, it is preferable to carry out at a temperature of 10 to 30 ° C. through the first to third steps. When the temperature is less than 10 ° C., there is almost no increase in the weight-dried alga body concentration. If the light irradiation time is 18-24 hours / day, the production of EPA and DHA will not decrease, and air containing carbon dioxide 1-5% will be aerated and stirred at a rate of 5-7 ml / l. Therefore, the production amount of EPA and DHA does not decrease.
なお、確認試験として、パブロバ藻体を上記条件下において、10mg/l 培養(30日間)したところ、図1に示したように、第1工程だけを行った場合は150mg /l (26日目)までしか増殖せず、第1工程、第2工程(6日目に開始)を行った場合は、287mg /l (24日目)までしか増殖しなかったが、第1工程、第2工程(6日目に開始)、第3工程(18日目に開始)を行った場合は、503mg /l (26日目)まで増殖した。 As a confirmation test, Pavlova alga bodies were cultured at 10 mg / l (30 days) under the above conditions. As shown in FIG. 1, when only the first step was carried out, 150 mg / l (day 26) ), And when the first step and the second step (started on the 6th day) were performed, the growth increased only to 287 mg / l (the 24th day). When the third step (started on the 18th day) was performed (started on the 6th day), the cells grew to 503 mg / l (the 26th day).
本発明は、以上に述べたように構成されているので、パブロバ藻体を容易に大量培養することができ、EPA及びDHAを同時に効率よく生産できるものとなった。 Since the present invention is configured as described above, Pavlova alga bodies can be easily cultured in large quantities, and EPA and DHA can be efficiently produced at the same time.
以下、本発明を実施例に基づき詳細に説明する。
〔実施例1〕
培地100 リットルに対して、NaClが2700g 、MgSO4 ・7H2 Oが660g、KNO3 が36g 、CaCl2 ・2H2 Oが15g 、KH2 PO4 が7g、NaHCO3 が4g、Tris−HClが242g、ビタミンB12が0 .5mg 、チアミン−HClが60mg、ビオチンが0 .1mg 、FeCl2 ・6H2 Oが276.9mg 、Na2 EDTAが1860mg、ZnCl2 が0 .4 mg、H3 BO3 が6 mg、CoCl2 ・6H2 Oが0 .15mg、CuCl2 ・2H2 Oが0 .4mg 、MnCl2 ・4H2 Oが4mg 、(NH4 )6 MoO24が3.7mg の割合で含まれている無機液体培地(pH8 .0 )100 リットルを、高さ2 m 、前後の各面の幅1m、左右の各面の幅13cmのアクリル製の縦型偏平水槽に入れ、培養温度を26℃とし、照射の時間を18時間/日として、炭酸ガス1 %を含む空気を5 l /min の割合で通気しつつ、第1工程として、水槽中の無機液体培地に、パブロバを重量乾燥藻体濃度10mg/l の割合で接種し、水槽の前面片面に光強度75μE /m・s2 の白色蛍光灯を照射し、培養して、50mg/l となった後、第2工程として、水槽の前後の両面に、光強度150 μE /m・s2 の白色蛍光灯を照射し、培養して、230mg /l となった後、第3工程として、培養液のpHを6 .8 に調整して培養して、507mg /l となった後、培養処理を止めて、得られた培養液をシャープレス遠心分離機(15000 回/分)で分別して得た藻体を蒸留水で洗浄してから凍結乾燥して、48g の乾燥藻体を得た。
Hereinafter, the present invention will be described in detail based on examples.
[Example 1]
For 100 liters of medium, 2700 g of NaCl, 660 g of MgSO 4 .7H 2 O, 36 g of KNO 3 , 15 g of CaCl 2 .2H 2 O, 7 g of KH 2 PO 4, 4 g of NaHCO 3 , Tris-HCl 242g, vitamin B 12 is 0. 5 mg, thiamine-HCl 60 mg,
得られた乾燥藻体中のEPA量及びDHA量を、5%の塩酸を含むメタノール溶媒に入れ、95℃で3 時間還流後、ヘキサン溶媒で脂肪酸メチルエステルを抽出し、トリコサン酸を内部標準によるガスタロマイグラフイー分析法で定量した結果、2 .2gのEPA及び1 .OgのDHAを得た。 The EPA content and DHA content in the dried alga obtained are put in a methanol solvent containing 5% hydrochloric acid, refluxed at 95 ° C. for 3 hours, extracted with fatty acid methyl ester with hexane solvent, and tricosanoic acid according to the internal standard. As a result of quantification by gas taromy graphie analysis method, 2. 2 g EPA and 1. Og DHA was obtained.
〔実施例2〕
実施例1記載と同様に、無機液体培地100 リットルを縦型偏平水槽に入れ、培養温度を25℃とし、照射の時間を18時間/日として、炭酸ガス1 %含有空気を5 l /min の割合で通気しつつ、第1工程として、水槽中の100 リットルの無機液体培地に、パブロバを重量乾燥藻体濃度20mg/l の割合で接種して、水槽の前面片面に光強度75μE /m・s2 の白色蛍光灯を照射し、培養して、100mg /l となった後、第2工程として、水槽の前後の両面に、光強度125 μE /m・s2 の白色蛍光灯を照射し、培養して、230mg /l となった後、第3工程として、培養液のpHを7 .2 に調整して515mg /l となった後、培養処理を止めて、得られた100 リットルの培養液から分取した70リットルの培養液をシャープレス遠心分離機(15000 回転/分)で分取した藻体を蒸留水で洗浄し、凍結乾燥して32g の乾燥藻体を得た。そして、得られた乾燥藻体中のEPA量及びDHA量を実施例1記載と同様に定量した結果、1 .6gのEPA及び0 .6gのDHAを得た。
[Example 2]
As described in Example 1, 100 liters of an inorganic liquid medium was placed in a vertical flat water tank, the culture temperature was 25 ° C., the irradiation time was 18 hours / day, and the air containing 1% carbon dioxide was 5 l / min. As a first step, inoculate 100 liters of inorganic liquid medium in the aquarium with pavlova at a rate of 20 mg / l by weight dry algal body concentration, and light intensity 75μE / m · After irradiating with white fluorescent lamp of s 2 and culturing to 100 mg / l, as a second step, irradiate both front and rear sides of the water tank with white fluorescent lamp with light intensity of 125 μE / m · s 2 After culturing to reach 230 mg / l, as a third step, the pH of the culture solution is set to 7. After adjusting to 2 to reach 515 mg / l, the culture treatment was stopped, and 70 liters of the culture solution taken from the 100 liters of culture solution obtained were separated using a Sharpless centrifuge (15000 rpm). The collected algal bodies were washed with distilled water and freeze-dried to obtain 32 g of dried algal bodies. And as a result of quantifying the amount of EPA and the amount of DHA in the obtained dry alga body as described in Example 1, 6 g EPA and 0. 6 g of DHA was obtained.
また、70リットルを分別した残余の、重量乾燥藻体濃度515mg /l の培養液30リットルに、実施例1の無機液体培地を適量加えて、上記実施例2の第3工程と同様に光強度125 μE /m・s2 の白色蛍光灯を18時間/日照射しつつ培養することを6回繰り返して得た培養液をシャープレス遠心分離機(15000 回転/分)で得た藻体を洗浄、凍結乾燥した乾燥藻体中のEPA量及びDHA量を定量した結果、9 .2gのEPA及び3 .8gのDHAが得られた。 In addition, an appropriate amount of the inorganic liquid medium of Example 1 is added to the remaining 30 liters of the culture solution having a weight dry algal body concentration of 515 mg / l after separating 70 liters, and the light intensity is the same as in the third step of Example 2 above. Wash the algae obtained with a sharp press centrifuge (15000 rpm) by culturing 6 times with 125 μE / m · s 2 of white fluorescent light for 18 hours / day. 8. As a result of quantifying the amount of EPA and the amount of DHA in the freeze-dried dried algal bodies, 2 g EPA and 3. 8 g of DHA was obtained.
〔実施例3〕
培地200 リットルに対して、NaClが5400g 、MgSO4 ・7H2 Oが1320g 、KNO3 が72g 、CaCl2 ・2H2 Oが30g 、KH2 PO4 が14g 、NaHCO3 が8g、Tris−HClが482g、ビタミンB12が1mg 、チアミン−HClが120mg 、ビオチンが0 .2mg 、FeCl2 ・6H2 Oが553.8mg 、Na2 EDTAが3730mg、ZnCl2 が0 .8 mg、H3 BO3 が12mg、CoCl2 ・6H2 Oが0 .3mg 、CuCl2 ・2H2 Oが0 .8mg 、MnCl2 ・4H2 Oが8mg 、(NH4 )6 MoO24が7.4mg の割合で含まれている無機液体培地(pH8 .0 )200 リットルを、高さ2 m 、前後面の各幅2m、左右側面の各幅13cmのアクリル製の縦型偏平水槽に入れ、培養温度を23℃とし、照射の時間を18時間/日として、炭酸ガス1 %を含む空気を7 l /min の割合で通気しつつ、第1工程として、水槽中の無機液体培地に、パブロバを重量乾燥藻体濃度10mg/l の割合で接種し、水槽の前面片面に光強度75μE /m・s2 の昼色蛍光灯を照射し、培養して、70mg/l となった後、第2工程として、水槽の前後の両面に、光強度150 μE /m・s2 の昼色蛍光灯を照射し、培養して、220mg /l となった後、第3工程として、培養液のpHを6 .8 に調整して培養して、520mg /l となった後、培養処理を止めて、得られた培養液をシャープレス遠心分離機(15000 回/分)で分別して得た藻体を蒸留水で洗浄してから凍結乾燥して、101gの乾燥藻体を得た。
Example 3
For 200 liters of medium, 5400 g of NaCl, 1320 g of MgSO 4 .7H 2 O, 72 g of KNO 3 , 30 g of CaCl 2 .2H 2 O, 14 g of KH 2 PO 4 , 8 g of NaHCO 3 , and Tris-HCl 482 g, vitamin B 12 is 1 mg, thiamine -HCl is 120 mg,
得られた乾燥藻体中のEPA量及びDHA量を実施例1と同様にして定量した結果、EPAは4 .4g、DHAは1 .8gであった。 As a result of quantifying the amount of EPA and the amount of DHA in the obtained dry algal cells in the same manner as in Example 1, EPA was 4. 4g, DHA is 1. It was 8g.
〔実施例4〕
培地50リットルに対して、NaClが1350g 、MgSO4 ・7H2 Oが330g、KNO3 が18g 、CaCl2 ・2H2 Oが7g、KH2 PO4 が3.5g、NaHCO3 が2g、Tris−HClが121g、ビタミンB12が0.25mg、チアミン−HClが30mg、ビオチンが0 .05mg、FeCl2 ・6H2 Oが138.5mg 、Na2 EDTAが930mg 、ZnCl2 が0 .2mg 、H3 BO3 が3mg 、CoCl2 ・6H2 Oが0 .075mg 、CuCl2 ・2H2 Oが0 .2mg 、MnCl2 ・4H2 Oが2mg 、(NH4 )6 MoO24が1.85mgの割合で含まれている無機液体培地(pH8 .0 )50リットルを、高さ2 m 、前後面の各幅0.5m、左右側面の各幅13cmのガラス製の縦型偏平水槽に入れ、培養温度を26℃とし、照射の時間を18時間/日として、炭酸ガス1 %を含む空気を5 l /min の割合で通気しつつ、第1工程として、水槽中の無機液体培地に、パブロバを重量乾燥藻体濃度13mg/l の割合で接種し、水槽の前面片面に光強度75μE /m・s2 の白熱灯を照射し、培養して、50mg/l となった後、第2工程として、水槽の前後の両面に、光強度138 μE /m・s2 の白熱灯を照射し、培養して、220mg /l となった後、第3工程として、培養液のpHを7 .0 に調整して培養して、510mg /l となった後、培養処理を止めて、得られた培養液をシャープレス遠心分離機(15000 回/分)で分別して得た藻体を蒸留水で洗浄してから凍結乾燥して、26g の乾燥藻体を得た。
Example 4
For 50 liters of medium, NaCl is 1350 g, MgSO 4 · 7H 2 O is 330 g, KNO 3 is 18 g, CaCl 2 · 2H 2 O is 7 g, KH 2 PO 4 is 3.5 g, NaHCO 3 is 2 g, Tris-HCl 121 g, vitamin B 12 0.25 mg, thiamine-
得られた乾燥藻体中のEPA量及びDHA量を実施例1と同様にして定量した結果、EPAは1 .1g、DHAは0 .5gであった。 As a result of quantifying the amount of EPA and the amount of DHA in the obtained dry algal cells in the same manner as in Example 1, EPA was 1. 1 g, DHA is 0. It was 5g.
〔実施例5〕
培地50リットルに対して、NaClが1200g 、MgSO4 ・7H2 Oが330g、KNO3 が15g 、CaCl2 ・2H2 Oが6g、KH2 PO4 が2.5g、NaHCO3 が1.5g、Tris−HClが110g、ビタミンB12が0.15mg、チアミン−HClが20mg、ビオチンが0 .05mg、FeCl2 ・6H2 Oが100mg 、Na2 EDTAが750mg 、ZnCl2 が0 .2mg 、H3 BO3 が3mg 、CoCl2 ・6H2 Oが0 .075mg 、CuCl2 ・2H2 Oが0 .2mg 、MnCl2 ・4H2 Oが2mg 、(NH4 )6 MoO24が1.85mgの割合で含まれている無機液体培地(pH8 .0 )50リットルを、高さ1.5m、前後面の各幅0.5m、左右側面の各幅7cm のガラス製の縦型偏平水槽に入れ、培養温度を10℃とし、照射の時間を18時間/日として、炭酸ガス0.5 %を含む空気を5 l /min の割合で通気しつつ、第1工程として、水槽中の無機液体培地に、パブロバを重量乾燥藻体濃度10mg/l の割合で接種し、水槽の前面片面に光強度75μE /m・s2 の白色蛍光灯を照射し、培養して、50mg/l となった後、第2工程として、水槽の前後の両面に、光強度148 μE /m・s2 の白色蛍光灯を照射し、培養して、200mg /l となった後、第3工程として、培養液のpHを7 .1 に調整して培養して、507mg /l となった後、培養処理を止めて、得られた培養液をシャープレス遠心分離機(15000 回/分)で分別して得た藻体を蒸留水で洗浄してから凍結乾燥して、24g の乾燥藻体を得た。
Example 5
For 50 liters of medium, 1200 g of NaCl, 330 g of MgSO 4 .7H 2 O, 15 g of KNO 3 , 6 g of CaCl 2 .2H 2 O, 2.5 g of KH 2 PO 4 , 1.5 g of NaHCO 3 , Tris− HCl is 110g, vitamin B 12 is 0.15 mg, thiamine -HCl is 20 mg,
得られた乾燥藻体中のEPA量及びDHA量を実施例1と同様にして定量した結果、EPAは1 .1g、DHAは0 .6gであった。 As a result of quantifying the amount of EPA and the amount of DHA in the obtained dry algal cells in the same manner as in Example 1, EPA was 1. 1 g, DHA is 0. It was 6g.
〔実施例6〕
培地50リットルに対して、NaClが1500g 、MgSO4 ・7H2 Oが350g、KNO3 が20g 、CaCl2 ・2H2 Oが9g、KH2 PO4 が4.5g、NaHCO3 が2.5g、Tris−HClが130g、ビタミンB12が0.35mg、チアミン−HClが30mg、ビオチンが0 .5mg 、FeCl2 ・6H2 Oが150mg 、Na2 EDTAが1250mg、ZnCl2 が1mg 、H3 BO3 が15mg、CoCl2 ・6H2 Oが0 .375mg 、CuCl2 ・2H2 Oが1mg 、MnCl2 ・4H2 Oが10mg、(NH4 )6 MoO24が9.25mgの割合で含まれている無機液体培地(pH8 .0 )50リットルを、高さ2.5m、前後面の各幅2m、左右側面の各幅16cmのアクリル製の縦型偏平水槽に入れ、培養温度を30℃とし、照射の時間を24時間/日として、炭酸ガス5 %を含む空気を7 l /min の割合で通気しつつ、第1工程として、水槽中の無機液体培地に、パブロバを重量乾燥藻体濃度40mg/l の割合で接種し、水槽の前面片面に光強度100 μE /m・s2 の白色蛍光灯を照射し、培養して、100mg /l となった後、第2工程として、水槽の前後の両面に、光強度100 μE /m・s2 の白色蛍光灯を照射し、培養して、220mg /l となった後、第3工程として、培養液のpHを7 .0 に調整して培養して、550mg /l となった後、培養処理を止めて、得られた培養液をシャープレス遠心分離機(15000 回/分)で分別して得た藻体を蒸留水で洗浄してから凍結乾燥して、43g の乾燥藻体を得た。
Example 6
For 50 liters of medium, NaCl is 1500 g, MgSO 4 · 7H 2 O is 350 g, KNO 3 is 20 g, CaCl 2 · 2H 2 O is 9 g, KH 2 PO 4 is 4.5 g, NaHCO 3 is 2.5 g, Tris- HCl is 130 g, vitamin B 12 is 0.35 mg, thiamine -HCl is 30mg,
得られた乾燥藻体中のEPA量及びDHA量を実施例1と同様にして定量した結果、EPAは1 .2g、DHAは0 .5gであった。 As a result of quantifying the amount of EPA and the amount of DHA in the obtained dry algal cells in the same manner as in Example 1, EPA was 1. 2 g, DHA is 0. It was 5g.
〔実施例7〕
培地500 リットルに対して、NaClが13. 5kg 、MgSO4 ・7H2 Oが3.3kg 、KNO3 が180g、CaCl2 ・2H2 Oが70g 、KH2 PO4 が35g 、NaHCO3 が20g 、Tris−HClが1.21kg、ビタミンB12が2.5mg 、チアミン−HClが300mg 、ビオチンが0 .5mg 、FeCl2 ・6H2 Oが1385mg、Na2 EDTAが9.3g、ZnCl2 が2mg 、H3 BO3 が30mg、CoCl2 ・6H2 Oが0 .75mg、CuCl2 ・2H2 Oが2mg 、MnCl2 ・4H2 Oが20mg、(NH4 )6 MoO24が18.5mgの割合で含まれている無機液体培地(pH8 .0 )500 リットルを、直径1.1m、高さ0.8mの500リットル容積の円形ポリタンクに入れ、培養温度を26℃とし、照射の時間を18時間/日として、炭酸ガス1 %を含む空気を5 l /min の割合で通気しつつ、第1工程として、円形ポリタンク中の無機液体培地に、パブロバを重量乾燥藻体濃度13mg/l の割合で接種し、円形ポリタンクの上方から光強度75μE /m・s2 の白色蛍光灯を照射し、培養して、50mg/l となった後、第2工程として、円形ポリタンクの上方から光強度138 μE /m・s2 の白色蛍光灯を照射し、培養して、220mg /l となった後、第3工程として、培養液のpHを7 .0 に調整して培養して、510mg /l となった後、培養処理を止めて、得られた培養液をシャープレス遠心分離機(15000 回/分)で分別して得た藻体を蒸留水で洗浄してから凍結乾燥して、260gの乾燥藻体を得た。
Example 7
For 500 liters of medium, NaCl is 13.5 kg, MgSO 4 .7H 2 O is 3.3 kg, KNO 3 is 180 g, CaCl 2 .2H 2 O is 70 g, KH 2 PO 4 is 35 g, NaHCO 3 is 20 g, Tris -HCl is 1.21kg, vitamin B 12 is 2.5mg, thiamine -HCl is 300mg, biotin is 0. 5 mg, FeCl 2 .6H 2 O 1385 mg, Na 2 EDTA 9.3 g,
得られた乾燥藻体中のEPA量及びDHA量を実施例1と同様にして定量した結果、EPAは1 1g、DHAは5gであった。 As a result of quantifying the amount of EPA and the amount of DHA in the obtained dry algal cells in the same manner as in Example 1, 11 g of EPA and 5 g of DHA were found.
〔実施例8〕
培地2000リットルに対して、NaClが54Kg、MgSO4 ・7H2 Oが13.2Kg、KNO3 が720g、CaCl2 ・2H2 Oが300g、KH2 PO4 が140g、NaHCO3 が80g 、Tris−HClが4.82Kg、ビタミンB12が10mg、チアミン−HClが1.2g、ビオチンが2mg 、FeCl2 ・6H2 Oが5.538g、Na2 EDTAが37.3g 、ZnCl2 が8mg 、H3 BO3 が120mg 、CoCl2 ・6H2 Oが3mg 、CuCl2 ・2H2 Oが8mg 、MnCl2 ・4H2 Oが80mg、(NH4 )6 MoO24が74mgの割合で含まれている無機液体培地(pH8 .0 )2000リットルを、縦10m、横3mの2トン容の強化プラスチック製レースウェイ培養タンクに入れ、培養温度を23℃とし、照射の時間を18時間/日として、炭酸ガス1 %を含む空気を7 l /min の割合で通気しつつ、第1工程として、培養タンク中の無機液体培地に、パブロバを重量乾燥藻体濃度10mg/l の割合で接種し、培養タンクの前面片面に光強度75μE /m・s2 の白色蛍光灯を照射し、培養して、70mg/l となった後、第2工程として、培養タンクの前後の両面に、光強度150 μE /m・s2 の白色蛍光灯を照射し、培養して、220mg /l となった後、第3工程として、培養液のpHを6 .8 に調整して培養して、520mg /l となった後、培養処理を止めて、得られた培養液をシャープレス遠心分離機(15000 回/分)で分別して得た藻体を蒸留水で洗浄してから凍結乾燥して、1010g の乾燥藻体を得た。
Example 8
For 2000 liters of medium, NaCl 54 kg, MgSO 4 · 7H 2 O 13.2 kg, KNO 3 720 g, CaCl 2 · 2H 2 O 300 g, KH 2 PO 4 140 g, NaHCO 3 80 g, Tris-HCl 4.82 Kg, vitamin B 12 10 mg, thiamine-HCl 1.2 g,
得られた乾燥藻体中のEPA量及びDHA量を実施例1と同様にして定量した結果、EPAは44g 、DHAは18g であった。 As a result of quantifying the amount of EPA and the amount of DHA in the obtained dry algal cells in the same manner as in Example 1, 44 g of EPA and 18 g of DHA were found.
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