JP3887435B2

JP3887435B2 - Spheroid formation promoter

Info

Publication number: JP3887435B2
Application number: JP20287696A
Authority: JP
Inventors: 和守船津; 琢松下; 博之井嶋; 栄太郎熊沢
Original assignee: 第一製薬株式会社; 和守船津
Priority date: 1996-07-12
Filing date: 1996-07-12
Publication date: 2007-02-28
Anticipated expiration: 2016-07-12
Also published as: JPH1029951A

Description

【０００１】
【発明の属する技術分野】
本発明は、スフェロイド形成促進剤に関する。さらに本発明は、スフェロイド形成促進剤を用いた、人工肝臓に関する。本発明により、短期間で効率的に人工肝臓の基礎となる肝細胞スフェロイドを形成することができ、効率のよい人工肝臓を提供することができる。尚本発明でいうスフェロイドとは、肝細胞が 100個以上集合して組織構造をとった集合体である。
【０００２】
【従来の技術】
現在、国内において肝炎、肝臓癌等の肝疾患に罹患している患者は約 160万人に達するとも言われており、その治療のために、人工肝臓の開発が切望されている。人工肝臓は、心臓におけるポンプ機能を補う人工心臓や、腎臓における透析機能を補う人工腎臓のような単純なものではなく、生命維持に不可欠な物質の合成貯蔵や、毒性物質の解毒排泄等に携わる 500種以上にも及ぶ複雑な機能を要求される。このため、近年では、広範な肝機能を有する培養肝細胞そのものを何らかの方法で固定化し、これに肝機能補助を行わせるというハイブリッド型人工肝臓の研究開発が主流となっている。これにより、一時的な肝機能補助が可能となり、その結果肝再生による肝機能回復や、肝移植までの延命が行えるものと期待される。又、最近では動物愛護の観点から、各種動物実験の見直しが検討されており、その中で臓器シミュレーターの概念が提案され、これが動物実験代替法（臓器シミュレーター）になり得るものとして期待されている。
【０００３】
劇症肝炎では、経過中に意識障害をはじめとする重篤な肝不全症状が現れ、短期間のうちに死亡する予後不良な病態を示し、死亡率は80〜90％にものぼる。しかしこの場合、２週間という短期間でも人工肝臓を用いて悪化した肝臓を休ませることができれば、発病初期において肝臓内に生存する十分な数の正常細胞が増殖して悪化した細胞を更新し、肝機能の再生が可能であると言われている。これが可能になるためには、ヒト肝臓機能の数分の一に相当する機能を有し、且つそれが２週間以上持続する装置（人工肝臓）を開発することが必要である。
【０００４】
人工肝臓製造の試みとして、遊離肝細胞浮遊培養法として、犬遊離肝細胞封入ＰＭＭＡ膜モジュールを用いるにより成犬が最長86時間生存した例（葛西ら、人工臓器、14巻、 228頁、1985年）、遊離肝細胞単層培養法として、犬培養肝細胞平板積層型人工肝をを用いることにより成犬が65時間生存した例（J.Uchino et al., ASAIO Trans., Vol.34, p972 (1988)）、ゲルビーズ被包化肝細胞培養法として、アルギニン酸カルシウムゲルビーズ被包化肝細胞が７日間肝機能を維持した例（Y.Miura et al., Artificial Organs, Vol.10, p460 (1986)）、及び回転ディスク型人工肝により６時間以上肝機能が維持された例（大島ら、人工臓器、18巻、1273頁、1989年）、バイオマトリックス培養法として、プロテオグリカンコートによる肝細胞スフェロイドが培養により２週間以上、及びアルギン酸カルシウムゲルによるカプセル化肝細胞スフェロイドが液噴流層培養により64時間以上肝機能が維持された例（N.Koide et al., Exp.Cell Res., Vol.186, p227 (1990))、ＰＶＦを用いた肝細胞が高密度培養により50時間以上肝機能が維持された例（大島ら、人工臓器、20巻、162 頁、1991年）、ポリリジンコートした肝スフェロイドが培養により３週間以上肝機能が維持された例（鈴木ら、化学工学論文集、17巻、667 頁、1991年）、或いは本発明者らによるＰＵＦ（ポリウレタンフォーム）孔内の肝細胞スフェロイドが培養により３週間以上肝機能が維持された例（T.Matushima et al., Appl.Microbiol.Biotechnol., Vol.36, p324 (1991) 等）等が報告されている。このように、現在までに様々な人工肝臓の製造の試みがなされてきたが、この中でも特に本発明者らによるＰＵＦを用いた方法が簡便且つ効率的であることがわかる。又、本発明者らは多細管型ＰＵＦ／スフェロイド充填層人工肝臓を用いることにより、血中アンモニアの解毒代謝を良好に行うことができるという知見（松下ら、人工臓器、24巻、３号、815-820 頁、1995年) も得ている。
【０００５】
【発明が解決しようとする課題】
これらの状況に鑑み、本発明者らは、肝細胞スフェロイドの形成を促進する物質を求めて鋭意探索した結果、肝細胞増殖因子であるＴＣＦ−II（以下、ＴＣＦと略記することもある）と上皮細胞増殖因子（ＥＧＦ）を組み合わせて用いることにより、従来と比較して飛躍的に肝細胞スフェロイドの形成を促進することを見出した。即ち本発明は、新規な肝細胞スフェロイドの形成促進剤を提供することを目的とする。さらに、具体的には、肝細胞増殖因子及び上皮細胞増殖因子（ＥＧＦ）を有効成分として含有するスフェロイド形成促進剤を提供することを課題とする。また、本発明は、スフェロイド形成促進剤を用いた、効率的な人工肝臓を提供することを課題とする。
【０００６】
【発明を解決するための手段】
本発明は、肝細胞増殖因子及び上皮細胞増殖因子（ＥＧＦ）を有効成分として含有することを特徴とするスフェロイド形成促進剤に関する。本発明における肝細胞増殖因子としては、ＴＣＦ−II (腫瘍細胞障害因子) 、ＨＧＦ、ＴＧＦ−β、インシュリン、ＩＧＦ等が用いられるが、その活性からみてＴＣＦ−IIを用いることが望ましい。
また、本発明は、前記のスフェロイド形成促進剤を含有させた人工肝臓に関する。
本発明により、人工肝臓の基礎となる肝細胞スフェロイドの形成を短期間で効率的に行なうことができる。
【０００７】
【発明の実施の形態】
本発明で用いられるＴＣＦ−IIは、ヒト線維芽細胞由来の公知の蛋白質であり、ヒト線維芽細胞由来のものは下記の特性を有する。

【０００８】
上記ＴＣＦ−IIは、ヒト線維芽細胞培養液を濃縮しイオン交換体に吸着させ、その溶出液をアフィニティークロマトグラフィーを用いて精製する方法（ＷＯ90/10651号公報）や、或いは遺伝子工学的手法（ＷＯ92/01053号公報）によって得られる。この時、宿主細胞又は微生物の違いによる糖鎖の異なったものや、糖鎖の結合していないものであっても使用可能である。しかし、糖鎖は生体内の代謝速度に関係しているため、糖鎖の結合しているものを用いることが望ましい。これらの方法により得られたＴＣＦ−IIは、通常の単離精製法によってさらに濃縮、精製することができる。例えば、有機溶媒による沈殿法、塩析、ゲル濾過、モノクローナル抗体を用いたアフィニティークロマト、電気泳動法等が挙げられる。モノクローナル抗体を用いたアフィニティークロマトによる精製は、特開平５−97号公報に開示されているモノクローナル抗体を用いて精製することができる。得られた精製ＴＣＦ−IIは、凍結乾燥或いは凍結保存することができる。
【０００９】
又、上皮細胞増殖因子（ＥＧＦ）については、広く市販されており、一般に入手可能である。
本発明のスフェロイド形成促進剤における肝細胞増殖因子と上皮細胞増殖因子との使用割合は前者10〜10,000に対し、後者 0〜50とすることが望ましい。従って、本発明のスフェロイド形成促進剤は、肝細胞増殖因子10〜10,000と上皮細胞増殖因子 0〜50とを液剤のような剤の形態とすることが好ましい。
人工肝臓としては、従来知られている人工肝臓であればどのようなものでも使用できるが、特に本発明者らによって開発された前記した多細管型ポリウレタンフォーム（ＰＵＦ）／スフェロイド充填層人工肝臓に用いることが望ましい。
【００１０】
以下の実施例により、本発明をより詳細に説明するが、これらは単に例示するのみであり、本発明はこれらによって何ら限定されるものではない。
【００１１】
【実施例１】
ＴＣＦ− II の精製
ＷＯ90/10651号公報に開示された方法及び東尾らの方法（Higashio,K. et al, B.B.R.C., vol.170, pp397-404 (1990)) に準じて細胞を培養し、精製ＴＣＦ−IIを得た。ヒト繊維芽細胞ＩＭＲ-90(ATCC CCL 186) 細胞を５％仔牛血清を含むＤＭＥＭ培地100ml をいれたローラーボトルに３×10⁶個移植し、 0.5〜２回転／分の回転速度で回転させながら７日間培養を続けた。総細胞数が１×10⁷個になったところでトリプシンにより細胞を剥離し細胞をボトル底面に集め、５〜９メッシュのセラミック100g（東芝セラミック社製）を殺菌して投入し、24時間静置して培養した。その後、上記培養液を500ml 加え、培養を継続した。７〜10日ごとに培地を全量回収し、新鮮培地を補給した。このようにして２ヵ月間生産を継続し、ローラーボトル一本当たり4lの培養液を回収した。このようにして得た培養液当たりの比活性は32u/mlであった。培養液750lをメンブランフィルター（ＭＷ6000カット；アミコン社製）処理によりＵＦ濃縮し、ＣＭセファデックスＣ−50（ファルマシア社製）、Con Ａセファロース（ファルマシア社製）、MonoＳカラム（ファルマシア社製）、ヘパリンセファロース（ファルマシア社製）による４段階のクロマト精製を行い、精製ＴＣＦ−IIを得た。
【００１２】
【実施例２】
遺伝子組換ＴＣＦ− II の生産
ＷＯ92/01053号公報に開示された方法に従い、ＴＣＦ−II遺伝子を組み込んだ細胞を培養し、精製ＴＣＦ−IIを得た。形質転換ナマルバ(Namalwa) 細胞を培養し、培養液 20lを得た。この培養液をＣＭ−セファデックスＣ−50クロマト（ファルマシア社製）、Con −ＡセファロースＣＬ−６Ｂクロマト（ファルマシア社製）、MonoＳカラム（ファルマシア社製）を装着したＨＰＬＣの順に処理を行い、約11mgの活性ＴＣＦ−IIを得た。
【００１３】
【実施例３】
肝細胞スフェロイド形成の評価
ラット初代肝細胞を用いて、ポリウレタンフォーム（ＰＵＦ）を用いた培養における肝細胞スフェロイドの形成を確認した。即ち、Wistar系雄性ラットからコラゲナーゼ還流により調製した 3×10⁶個のラット初代肝細胞を、ＰＵＦシート (25×25×1mm)を入れた培養ディッシュ（直径35mm、岩城硝子社）に播種し、ＨＤＭ培地（William's 培地Ｅ（シグマ社）10.8g/L に、50ng/ml ＥＧＦ、10mg/Lインシュリン（シグマ社）、0.1 μM 硫酸銅・５水和物（和光純薬社）、3 μg/L セレン酸（和光純薬社）、50pM硫酸亜鉛・７水和物（和光純薬社）、50mg/Lリノレン酸（シグマ社）、58.8mg/Lペニシリン（明治製菓社）、100mg/L ストレプトマイシン（明治製菓社）、1mg/L アムホテリシンＢ（シグマ社）、1.05g/L 炭酸水素ナトリウム（和光純薬社）、1.19g/L ＨＥＰＥＳ（同人堂社）を加えた培地）を用いて37℃で培養した。この時、ＥＧＦと実施例２で得られたＴＣＦ−IIを表１の濃度に従って添加し、肝細胞スフェロイドの形成を表２に従って経時的に評価した。結果を表３及び図１〜図４に示す。又、ＴＣＦ無添加で、ＥＧＦを無添加又は50ng/ml 添加した時のスフェロイド形成の結果を、表４に示す。
【００１４】
【表１】

【００１５】
【表２】

【００１６】
【表３】

【００１７】
【表４】

【００１８】
表４の結果より、ＥＧＦを添加することにより、肝細胞スフェロイドの形成が促進された。さらに表３及び図１〜４の結果より、ＴＣＦとＥＧＦを添加することにより、ＥＧＦのみを添加した系と比較しスフェロイドの形成が促進され、これは50ng/ml ＥＧＦ存在下でＴＣＦ濃度が100〜10000ng/mlの時に顕著であった。又、ＴＣＦのみを添加した系では、ＴＣＦとＥＧＦを両方添加した系に比較して、若干スフェロイドの形成が遅かった。これらの結果より、ＴＣＦとＥＧＦを共存させることにより、肝細胞スフェロイドの形成が促進されることが確認された。
【００１９】
【実施例４】
アルブミン合成分泌活性の測定
実施例３と同様の方法によりラット初代肝細胞を播種し、ＰＵＦシートに入れた培養ディッシュにＨＤＭ培地を用いて培養した培地内のアルブミン活性を測定した。即ち、２日間培養した培地に含まれるアルブミン濃度を、ＥＬＩＳＡmate (Kirkegaad ＆ Perry Laboratories, Inc) によって測定した。この時、一次抗体としてヤギ由来ＩｇＧ画分を、二次抗体としてヒツジ由来ペルオキシダーゼ標識ＩｇＧ画分（いずれもOrganon Teknika 社）を用いた。結果を図２に示す。
【００２０】
図５（Ｂ）の結果より、ＴＣＦとＥＧＦを添加することにより、ＴＣＦのみを添加した系と比較して、著明にアルブミン合成が促進された。又、図５（Ａ )の結果より、アルブミン合成は50ng/ml ＥＧＦ存在下でＴＣＦ濃度が100〜10000ng/mlの時に特に顕著であった。この結果、ＴＣＦとＥＧＦを共存させることにより、肝細胞スフェロイドの形成が促進され、それらが機能していることが確認された。
【００２１】
【発明の効果】
これらの結果より、本発明により肝細胞増殖因子及び上皮細胞増殖因子（ＥＧＦ）を有効成分として含有することを特徴とする、スフェロイド形成促進剤が提供される。詳しくは、肝細胞増殖因子ＴＣＦ−II及び上皮細胞増殖因子を有効成分として含有することを特徴とする、スフェロイド形成促進剤が提供される。さらに本発明により、スフェロイド形成促進剤を用いた人工肝臓が提供される。本発明により、人工肝臓の基礎となる肝細胞スフェロイドを、短期間で効率的に製造することができる。
【図面の簡単な説明】
【図１】実施例３において、ＥＧＦ 50ng/mlのみを加えて、ポリウレタンフォームでラット初代肝細胞を培養した時の、1.19日経過後のスフェロイド形成の状態を示す。
【図２】実施例３において、ＴＣＦ−II 100ng/ml とＥＧＦ 50ng/mlを加えて、ポリウレタンフォームでラット初代肝細胞を培養した時の、1.19日経過後のスフェロイド形成の状態を示す。
【図３】実施例３において、ＥＧＦ 50ng/mlのみを加えて、ポリウレタンフォームでラット初代肝細胞を培養した時の、2.66日経過後のスフェロイド形成の状態を示す。
【図４】実施例３において、ＴＣＦ−II 100ng/ml とＥＧＦ 50ng/mlを加えて、ポリウレタンフォームでラット初代肝細胞を培養した時の、2.66日経過後のスフェロイド形成の状態を示す。
【図５】実施例４で培養した時の肝細胞のアルブミン合成分泌活性を示す。
（Ａ）ＴＣＦ−IIとＥＧＦとを併用した時
（Ｂ）ＴＣＦ−IIとＥＧＦとを併用あるいはＴＣＦ−II単独添加の時[0001]
BACKGROUND OF THE INVENTION
The present invention relates to a spheroid formation promoter. Furthermore, the present invention relates to an artificial liver using a spheroid formation promoter. According to the present invention, hepatocyte spheroids that are the basis of an artificial liver can be efficiently formed in a short period of time, and an efficient artificial liver can be provided. The spheroid referred to in the present invention is an aggregate in which 100 or more hepatocytes are assembled to take a tissue structure.
[0002]
[Prior art]
At present, it is said that there are about 1.6 million patients suffering from liver diseases such as hepatitis and liver cancer in Japan, and the development of an artificial liver is eagerly desired for the treatment. The artificial liver is not as simple as the artificial heart that supplements the pump function in the heart or the artificial kidney that supplements the dialysis function in the kidney, but is involved in the synthesis and storage of substances essential for life support, detoxification and excretion of toxic substances, etc. More than 500 types of complex functions are required. For this reason, in recent years, research and development of hybrid artificial livers in which cultured hepatocytes themselves having a wide range of liver functions are fixed by some method and liver functions are assisted in this manner have become mainstream. As a result, it is possible to temporarily assist liver function, and as a result, it is expected that liver function can be recovered by liver regeneration and life can be extended to liver transplantation. Recently, various animal experiments have been reviewed from the viewpoint of animal welfare, and the concept of an organ simulator has been proposed, and this is expected to be an alternative to animal experiments (organ simulator). .
[0003]
In fulminant hepatitis, severe liver failure symptoms such as impaired consciousness appear during the course of the disease, showing a poor prognosis of dying in a short period of time, with a mortality rate of 80-90%. However, in this case, if it is possible to rest the deteriorated liver using an artificial liver even in a short period of 2 weeks, a sufficient number of normal cells that survive in the liver in the early stage of the disease proliferate and update the deteriorated cells, It is said that regeneration of liver function is possible. In order to be able to do this, it is necessary to develop a device (artificial liver) that has a function equivalent to a fraction of human liver function and that lasts more than two weeks.
[0004]
As an attempt to manufacture artificial liver, adult dog survived up to 86 hours by using canine free hepatocyte-encapsulated PMMA membrane module as free hepatocyte suspension culture method (Kasai et al., Artificial Organ, Vol. 14, 228, 1985) ), An example in which an adult dog survived for 65 hours by using canine cultured hepatocyte plate-type artificial liver as a free hepatocyte monolayer culture method (J. Uchino et al., ASAIO Trans., Vol. 34, p972) (1988)), an example in which calcium alginate gel bead-encapsulated hepatocytes maintained liver function for 7 days (Y. Miura et al., Artificial Organs, Vol. 10, p460 ( 1986)), and an example in which liver function was maintained for 6 hours or more by a rotating disk type artificial liver (Oshima et al., Artificial Organs, Vol. 18, 1273, 1989). As a biomatrix culture method, hepatocyte spheroids with proteoglycan coat Has been cultured for more than 2 weeks Hepatocyte spheroids encapsulated with calcium phosphate gel maintained liver function for more than 64 hours by liquid spouted bed culture (N. Koide et al., Exp. Cell Res., Vol. 186, p227 (1990)), An example of hepatocytes using PVF maintained for 50 hours or more by high-density culture (Oshima et al., Artificial Organs, 20, 162, 1991). Polylysine-coated liver spheroids were cultured for more than 3 weeks. Examples of sustained function (Suzuki et al., Chemical Engineering Papers, Vol. 17, 667, 1991), or hepatocyte spheroids in the PUF (polyurethane foam) pores by the present inventors were cultured for more than 3 weeks. (T. Matushima et al., Appl. Microbiol. Biotechnol., Vol. 36, p324 (1991), etc.) have been reported. Thus, various attempts to produce artificial livers have been made so far, and among these, it can be seen that the method using the PUF by the present inventors is particularly simple and efficient. In addition, the present inventors have found that the use of a multitubular PUF / spheroid packed-layer artificial liver enables good detoxification metabolism of blood ammonia (Matsushita et al., Artificial Organs, Vol. 24, No. 3, 815-820 (1995).
[0005]
[Problems to be solved by the invention]
In view of these circumstances, as a result of earnest searches for substances that promote the formation of hepatocyte spheroids, the present inventors have found that TCF-II (hereinafter sometimes abbreviated as TCF), which is a hepatocyte growth factor. It has been found that the use of a combination of epidermal growth factor (EGF) dramatically promotes the formation of hepatocyte spheroids as compared with the prior art. That is, an object of the present invention is to provide a novel hepatocyte spheroid formation promoter. Furthermore, specifically, an object is to provide a spheroid formation promoter containing hepatocyte growth factor and epidermal growth factor (EGF) as active ingredients. Another object of the present invention is to provide an efficient artificial liver using a spheroid formation promoter.
[0006]
[Means for Solving the Invention]
The present invention relates to a spheroid formation promoter characterized by containing hepatocyte growth factor and epidermal growth factor (EGF) as active ingredients. As the hepatocyte growth factor in the present invention, TCF-II (tumor cytotoxic factor), HGF, TGF-β, insulin, IGF and the like are used, and it is desirable to use TCF-II in view of its activity.
The present invention also relates to an artificial liver containing the aforementioned spheroid formation promoter.
According to the present invention, the formation of hepatocyte spheroids that are the basis of an artificial liver can be efficiently performed in a short period of time.
[0007]
DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION
TCF-II used in the present invention is a known protein derived from human fibroblasts, and one derived from human fibroblasts has the following characteristics.

[0008]
The TCF-II is a method of concentrating a human fibroblast culture solution and adsorbing it on an ion exchanger, and purifying the eluate using affinity chromatography (WO90 / 10651) or a genetic engineering method ( WO92 / 01053). At this time, even those having different sugar chains due to differences in host cells or microorganisms, or those having no sugar chain attached thereto can be used. However, since sugar chains are related to the metabolic rate in the living body, it is desirable to use those having sugar chains bound thereto. TCF-II obtained by these methods can be further concentrated and purified by an ordinary isolation and purification method. Examples thereof include precipitation using an organic solvent, salting out, gel filtration, affinity chromatography using a monoclonal antibody, electrophoresis, and the like. Purification by affinity chromatography using a monoclonal antibody can be performed using a monoclonal antibody disclosed in JP-A-5-97. The obtained purified TCF-II can be freeze-dried or cryopreserved.
[0009]
In addition, epidermal growth factor (EGF) is widely commercially available and is generally available.
The ratio of hepatocyte growth factor and epithelial cell growth factor used in the spheroid formation promoter of the present invention is preferably 0-50 for the former 10-10,000. Therefore, the spheroid formation promoter of the present invention is preferably a hepatocyte growth factor 10 to 10,000 and epithelial cell growth factor 0 to 50 in the form of a liquid-like agent.
Any artificial liver known in the art can be used as the artificial liver. In particular, the above-described multitubular polyurethane foam (PUF) / spheroid packed layer artificial liver developed by the present inventors is used. It is desirable to use it.
[0010]
The following examples illustrate the invention in more detail, but these are merely illustrative and the invention is not limited thereby.
[0011]
[Example 1]
TCF-II purification WO90 / 10651 Patent disclosed in Japanese method and Higashio et al's method (Higashio, K. Et al, BBRC, vol.170, pp397-404 (1990)) Cells were cultured in accordance with, purification TCF-II was obtained. 3 × 10 ⁶ human fibroblasts IMR-90 (ATCC CCL 186) cells were transferred to a roller bottle containing 100 ml of DMEM medium containing 5% calf serum and rotated at a rotation speed of 0.5 to 2 rotations / minute. The culture was continued for 7 days. When the total number of cells reaches 1 × 10 ⁷ cells, the cells are detached with trypsin, the cells are collected on the bottom of the bottle, and 100 g of 5 to 9 mesh ceramic (manufactured by Toshiba Ceramics) is sterilized and placed, and left for 24 hours. And cultured. Thereafter, 500 ml of the above culture solution was added, and the culture was continued. Every 7-10 days, the entire medium was collected and replenished with fresh medium. In this way, production was continued for 2 months, and 4 l of culture broth was collected per roller bottle. The specific activity per culture thus obtained was 32 u / ml. 750 l of the culture solution was concentrated with a membrane filter (MW6000 cut; manufactured by Amicon), UF concentrated, CM Sephadex C-50 (Pharmacia), Con A Sepharose (Pharmacia), MonoS column (Pharmacia), heparin Four steps of chromatographic purification with Sepharose (Pharmacia) were performed to obtain purified TCF-II.
[0012]
[Example 2]
According genetically modified TCF-II method disclosed in Production WO92 / 01053 discloses the culturing the cells incorporating the TCF-II gene, to obtain purified TCF-II. Transformed Namalwa cells were cultured to obtain 20 l of culture broth. This culture solution was processed in the order of CM equipped with CM-Sephadex C-50 chromatography (Pharmacia), Con-A Sepharose CL-6B chromatography (Pharmacia), and MonoS column (Pharmacia). 11 mg of active TCF-II was obtained.
[0013]
[Example 3]
Evaluation of hepatocyte spheroid formation Rat primary hepatocytes were used to confirm the formation of hepatocyte spheroids in culture using polyurethane foam (PUF). That is, 3 × 10 ⁶ rat primary hepatocytes prepared by collagenase reflux from Wistar male rats were seeded in a culture dish (diameter 35 mm, Iwaki Glass) containing a PUF sheet (25 × 25 × 1 mm). HDM medium (William's medium E (Sigma) 10.8 g / L, 50 ng / ml EGF, 10 mg / L insulin (Sigma), 0.1 μM copper sulfate pentahydrate (Wako Pure Chemical Industries), 3 μg / L Selenic acid (Wako Pure Chemical Industries, Ltd.), 50pM zinc sulfate heptahydrate (Wako Pure Chemical Industries, Ltd.), 50mg / L linolenic acid (Sigma), 58.8mg / L penicillin (Meiji Seika Co., Ltd.), 100mg / L Streptomycin ( Meiji Seika Co., Ltd.), 1 mg / L Amphotericin B (Sigma), 1.05 g / L Sodium bicarbonate (Wako Pure Chemical Industries, Ltd.), 1.19 g / L HEPES (Dojindo) medium) Cultured. At this time, EGF and TCF-II obtained in Example 2 were added according to the concentrations in Table 1, and the formation of hepatocyte spheroids was evaluated over time according to Table 2. The results are shown in Table 3 and FIGS. Table 4 shows the results of spheroid formation when TCF is not added and EGF is not added or 50 ng / ml is added.
[0014]
[Table 1]

[0015]
[Table 2]

[0016]
[Table 3]

[0017]
[Table 4]

[0018]
From the results in Table 4, the formation of hepatocyte spheroids was promoted by adding EGF. Further, from the results of Table 3 and FIGS. 1 to 4, the addition of TCF and EGF promotes the formation of spheroids as compared with the system to which only EGF was added. This is because the TCF concentration is 100 in the presence of 50 ng / ml EGF. It was remarkable at ˜10000 ng / ml. In addition, in the system to which only TCF was added, the formation of spheroids was slightly delayed compared to the system to which both TCF and EGF were added. From these results, it was confirmed that the coexistence of TCF and EGF promotes the formation of hepatocyte spheroids.
[0019]
[Example 4]
Measurement of albumin synthesis / secretion activity Rat primary hepatocytes were seeded in the same manner as in Example 3, and the albumin activity in the culture medium cultured in HDM medium in a culture dish placed in a PUF sheet was measured. That is, the albumin concentration contained in the medium cultured for 2 days was measured by ELISAmate (Kirkegaad & Perry Laboratories, Inc). At this time, a goat-derived IgG fraction was used as a primary antibody, and a sheep-derived peroxidase-labeled IgG fraction (both from Organon Teknika) was used as a secondary antibody. The results are shown in FIG.
[0020]
From the result of FIG. 5 (B) , albumin synthesis was significantly promoted by adding TCF and EGF as compared with the system to which only TCF was added. From the results of FIG. 5 (A ) , albumin synthesis was particularly remarkable when the TCF concentration was 100 to 10,000 ng / ml in the presence of 50 ng / ml EGF. As a result, it was confirmed that the coexistence of TCF and EGF promoted the formation of hepatocyte spheroids and they functioned.
[0021]
【The invention's effect】
From these results, the present invention provides a spheroid formation promoter characterized by containing hepatocyte growth factor and epidermal growth factor (EGF) as active ingredients. Specifically, a spheroid formation promoter characterized by containing hepatocyte growth factor TCF-II and epidermal growth factor as active ingredients is provided. Furthermore, the present invention provides an artificial liver using a spheroid formation promoter. According to the present invention, hepatocyte spheroids that are the basis of an artificial liver can be efficiently produced in a short period of time.
[Brief description of the drawings]
FIG. 1 shows the state of spheroid formation after 1.19 days when rat primary hepatocytes were cultured in polyurethane foam with only EGF 50 ng / ml added in Example 3.
FIG. 2 shows the state of spheroid formation after 1.19 days when rat primary hepatocytes were cultured in polyurethane foam in Example 3 with addition of TCF-II 100 ng / ml and EGF 50 ng / ml.
FIG. 3 shows the state of spheroid formation after 2.66 days when rat primary hepatocytes were cultured in polyurethane foam with only EGF 50 ng / ml added in Example 3.
FIG. 4 shows the state of spheroid formation after 2.66 days when rat primary hepatocytes were cultured in polyurethane foam with the addition of TCF-II 100 ng / ml and EGF 50 ng / ml in Example 3.
FIG. 5 shows the albumin synthesis secretion activity of hepatocytes when cultured in Example 4.
(A) When TCF-II and EGF are used together (B) When TCF-II and EGF are used together or TCF-II is added alone

Claims

A spheroid formation promoter containing tumor cell injury factor (TCF-II) and epidermal growth factor (EGF) as active ingredients.

Tumor cytotoxic factor (TCF-II) and EGF as active ingredients, characterized in that tumor cytotoxic factor (TCF-II) is 100 to 10,000 weight concentration with respect to 50 weight concentration of epidermal growth factor (EGF) Containing spheroid formation promoter.

A step of seeding hepatocytes in polyurethane foam (PUF), and a step of forming spheroids using a spheroid formation promoter containing tumor cell injury factor (TCF-II) and epidermal growth factor (EGF) as active ingredients A method for producing an artificial liver.

Artificial material created by seeding hepatocytes in polyurethane foam (PUF) and forming spheroids using a spheroid formation promoter containing tumor cell injury factor (TCF-II) and epidermal growth factor (EGF) as active ingredients liver.