JP3824619B2 - Measles virus recombinant poxvirus vaccine - Google Patents
Measles virus recombinant poxvirus vaccine Download PDFInfo
- Publication number
- JP3824619B2 JP3824619B2 JP2004170929A JP2004170929A JP3824619B2 JP 3824619 B2 JP3824619 B2 JP 3824619B2 JP 2004170929 A JP2004170929 A JP 2004170929A JP 2004170929 A JP2004170929 A JP 2004170929A JP 3824619 B2 JP3824619 B2 JP 3824619B2
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- virus
- recombinant
- vaccinia
- plasmid
- gene
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Expired - Fee Related
Links
- 241000712079 Measles morbillivirus Species 0.000 title claims description 151
- 229940024231 poxvirus vaccine Drugs 0.000 title description 2
- 241000700618 Vaccinia virus Species 0.000 claims description 89
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 claims description 70
- 101710154606 Hemagglutinin Proteins 0.000 claims description 65
- 101710093908 Outer capsid protein VP4 Proteins 0.000 claims description 65
- 101710135467 Outer capsid protein sigma-1 Proteins 0.000 claims description 65
- 101710176177 Protein A56 Proteins 0.000 claims description 65
- 238000000034 method Methods 0.000 claims description 52
- 230000004927 fusion Effects 0.000 claims description 49
- 108090000288 Glycoproteins Proteins 0.000 claims description 46
- 102000003886 Glycoproteins Human genes 0.000 claims description 46
- 229960005486 vaccine Drugs 0.000 claims description 45
- 239000000185 hemagglutinin Substances 0.000 claims description 44
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 claims description 25
- 101900237959 Measles virus Hemagglutinin glycoprotein Proteins 0.000 claims description 20
- 230000002950 deficient Effects 0.000 claims description 19
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 claims description 17
- 108020004440 Thymidine kinase Proteins 0.000 claims description 11
- 230000002008 hemorrhagic effect Effects 0.000 claims description 11
- 230000028993 immune response Effects 0.000 claims description 10
- 108700026220 vif Genes Proteins 0.000 claims description 10
- 102000000505 Ribonucleotide Reductases Human genes 0.000 claims description 9
- 108010041388 Ribonucleotide Reductases Proteins 0.000 claims description 9
- 208000000655 Distemper Diseases 0.000 claims description 8
- 102000006601 Thymidine Kinase Human genes 0.000 claims description 7
- 208000014058 canine distemper Diseases 0.000 claims description 7
- 210000003000 inclusion body Anatomy 0.000 claims description 6
- 230000001939 inductive effect Effects 0.000 claims description 2
- 150000001720 carbohydrates Chemical class 0.000 claims 1
- 239000013612 plasmid Substances 0.000 description 139
- 206010046865 Vaccinia virus infection Diseases 0.000 description 78
- 208000007089 vaccinia Diseases 0.000 description 78
- 239000012634 fragment Substances 0.000 description 75
- 108020004414 DNA Proteins 0.000 description 71
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 description 57
- 241000700605 Viruses Species 0.000 description 49
- 241000282472 Canis lupus familiaris Species 0.000 description 47
- 241000178270 Canarypox virus Species 0.000 description 41
- 238000011081 inoculation Methods 0.000 description 38
- 241000712083 Canine morbillivirus Species 0.000 description 37
- 210000002966 serum Anatomy 0.000 description 37
- 241000588724 Escherichia coli Species 0.000 description 35
- 201000005505 Measles Diseases 0.000 description 35
- 108091034117 Oligonucleotide Proteins 0.000 description 32
- 239000013598 vector Substances 0.000 description 31
- 101150039660 HA gene Proteins 0.000 description 29
- 230000006798 recombination Effects 0.000 description 27
- 238000005215 recombination Methods 0.000 description 24
- 108010005774 beta-Galactosidase Proteins 0.000 description 22
- 210000003501 vero cell Anatomy 0.000 description 21
- 230000003472 neutralizing effect Effects 0.000 description 20
- 238000012360 testing method Methods 0.000 description 18
- 102000005936 beta-Galactosidase Human genes 0.000 description 17
- 238000001114 immunoprecipitation Methods 0.000 description 17
- 230000001681 protective effect Effects 0.000 description 17
- 108010017826 DNA Polymerase I Proteins 0.000 description 15
- 102000004594 DNA Polymerase I Human genes 0.000 description 15
- 108010059722 Viral Fusion Proteins Proteins 0.000 description 15
- 238000004458 analytical method Methods 0.000 description 15
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 15
- 208000015181 infectious disease Diseases 0.000 description 15
- 239000000047 product Substances 0.000 description 15
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 14
- 241000700198 Cavia Species 0.000 description 13
- 230000002238 attenuated effect Effects 0.000 description 13
- 230000007910 cell fusion Effects 0.000 description 13
- 238000003776 cleavage reaction Methods 0.000 description 13
- 238000003780 insertion Methods 0.000 description 13
- 230000037431 insertion Effects 0.000 description 13
- 230000007017 scission Effects 0.000 description 13
- 241000283977 Oryctolagus Species 0.000 description 12
- 241000283973 Oryctolagus cuniculus Species 0.000 description 12
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 description 12
- 101150060895 I4L gene Proteins 0.000 description 11
- 108091028043 Nucleic acid sequence Proteins 0.000 description 11
- JLCPHMBAVCMARE-UHFFFAOYSA-N [3-[[3-[[3-[[3-[[3-[[3-[[3-[[3-[[3-[[3-[[3-[[5-(2-amino-6-oxo-1H-purin-9-yl)-3-[[3-[[3-[[3-[[3-[[3-[[5-(2-amino-6-oxo-1H-purin-9-yl)-3-[[5-(2-amino-6-oxo-1H-purin-9-yl)-3-hydroxyoxolan-2-yl]methoxy-hydroxyphosphoryl]oxyoxolan-2-yl]methoxy-hydroxyphosphoryl]oxy-5-(5-methyl-2,4-dioxopyrimidin-1-yl)oxolan-2-yl]methoxy-hydroxyphosphoryl]oxy-5-(6-aminopurin-9-yl)oxolan-2-yl]methoxy-hydroxyphosphoryl]oxy-5-(6-aminopurin-9-yl)oxolan-2-yl]methoxy-hydroxyphosphoryl]oxy-5-(6-aminopurin-9-yl)oxolan-2-yl]methoxy-hydroxyphosphoryl]oxy-5-(6-aminopurin-9-yl)oxolan-2-yl]methoxy-hydroxyphosphoryl]oxyoxolan-2-yl]methoxy-hydroxyphosphoryl]oxy-5-(5-methyl-2,4-dioxopyrimidin-1-yl)oxolan-2-yl]methoxy-hydroxyphosphoryl]oxy-5-(4-amino-2-oxopyrimidin-1-yl)oxolan-2-yl]methoxy-hydroxyphosphoryl]oxy-5-(5-methyl-2,4-dioxopyrimidin-1-yl)oxolan-2-yl]methoxy-hydroxyphosphoryl]oxy-5-(5-methyl-2,4-dioxopyrimidin-1-yl)oxolan-2-yl]methoxy-hydroxyphosphoryl]oxy-5-(6-aminopurin-9-yl)oxolan-2-yl]methoxy-hydroxyphosphoryl]oxy-5-(6-aminopurin-9-yl)oxolan-2-yl]methoxy-hydroxyphosphoryl]oxy-5-(4-amino-2-oxopyrimidin-1-yl)oxolan-2-yl]methoxy-hydroxyphosphoryl]oxy-5-(4-amino-2-oxopyrimidin-1-yl)oxolan-2-yl]methoxy-hydroxyphosphoryl]oxy-5-(4-amino-2-oxopyrimidin-1-yl)oxolan-2-yl]methoxy-hydroxyphosphoryl]oxy-5-(6-aminopurin-9-yl)oxolan-2-yl]methoxy-hydroxyphosphoryl]oxy-5-(4-amino-2-oxopyrimidin-1-yl)oxolan-2-yl]methyl [5-(6-aminopurin-9-yl)-2-(hydroxymethyl)oxolan-3-yl] hydrogen phosphate Polymers Cc1cn(C2CC(OP(O)(=O)OCC3OC(CC3OP(O)(=O)OCC3OC(CC3O)n3cnc4c3nc(N)[nH]c4=O)n3cnc4c3nc(N)[nH]c4=O)C(COP(O)(=O)OC3CC(OC3COP(O)(=O)OC3CC(OC3COP(O)(=O)OC3CC(OC3COP(O)(=O)OC3CC(OC3COP(O)(=O)OC3CC(OC3COP(O)(=O)OC3CC(OC3COP(O)(=O)OC3CC(OC3COP(O)(=O)OC3CC(OC3COP(O)(=O)OC3CC(OC3COP(O)(=O)OC3CC(OC3COP(O)(=O)OC3CC(OC3COP(O)(=O)OC3CC(OC3COP(O)(=O)OC3CC(OC3COP(O)(=O)OC3CC(OC3COP(O)(=O)OC3CC(OC3COP(O)(=O)OC3CC(OC3COP(O)(=O)OC3CC(OC3CO)n3cnc4c(N)ncnc34)n3ccc(N)nc3=O)n3cnc4c(N)ncnc34)n3ccc(N)nc3=O)n3ccc(N)nc3=O)n3ccc(N)nc3=O)n3cnc4c(N)ncnc34)n3cnc4c(N)ncnc34)n3cc(C)c(=O)[nH]c3=O)n3cc(C)c(=O)[nH]c3=O)n3ccc(N)nc3=O)n3cc(C)c(=O)[nH]c3=O)n3cnc4c3nc(N)[nH]c4=O)n3cnc4c(N)ncnc34)n3cnc4c(N)ncnc34)n3cnc4c(N)ncnc34)n3cnc4c(N)ncnc34)O2)c(=O)[nH]c1=O JLCPHMBAVCMARE-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 11
- 239000000427 antigen Substances 0.000 description 11
- 108091007433 antigens Proteins 0.000 description 11
- 102000036639 antigens Human genes 0.000 description 11
- 238000010276 construction Methods 0.000 description 11
- 229940023860 canarypox virus HIV vaccine Drugs 0.000 description 10
- 230000004044 response Effects 0.000 description 10
- OPIFSICVWOWJMJ-AEOCFKNESA-N 5-bromo-4-chloro-3-indolyl beta-D-galactoside Chemical compound O[C@@H]1[C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H](CO)O[C@H]1OC1=CNC2=CC=C(Br)C(Cl)=C12 OPIFSICVWOWJMJ-AEOCFKNESA-N 0.000 description 9
- 241000700663 Avipoxvirus Species 0.000 description 9
- 108091026890 Coding region Proteins 0.000 description 9
- 238000012217 deletion Methods 0.000 description 9
- 230000037430 deletion Effects 0.000 description 9
- 230000036961 partial effect Effects 0.000 description 9
- 108010068327 4-hydroxyphenylpyruvate dioxygenase Proteins 0.000 description 8
- 101150034814 F gene Proteins 0.000 description 8
- 239000013553 cell monolayer Substances 0.000 description 8
- 241000282693 Cercopithecidae Species 0.000 description 7
- 230000036039 immunity Effects 0.000 description 7
- 230000003612 virological effect Effects 0.000 description 7
- 101150039990 B13R gene Proteins 0.000 description 6
- 102000016928 DNA-directed DNA polymerase Human genes 0.000 description 6
- 108010014303 DNA-directed DNA polymerase Proteins 0.000 description 6
- 241000699670 Mus sp. Species 0.000 description 6
- 108700026244 Open Reading Frames Proteins 0.000 description 6
- 101150071286 SPI-2 gene Proteins 0.000 description 6
- 238000006243 chemical reaction Methods 0.000 description 6
- 230000029087 digestion Effects 0.000 description 6
- 238000000338 in vitro Methods 0.000 description 6
- 238000002703 mutagenesis Methods 0.000 description 6
- 231100000350 mutagenesis Toxicity 0.000 description 6
- 238000006386 neutralization reaction Methods 0.000 description 6
- 238000002255 vaccination Methods 0.000 description 6
- 108091081024 Start codon Proteins 0.000 description 5
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 5
- 230000007547 defect Effects 0.000 description 5
- 208000037265 diseases, disorders, signs and symptoms Diseases 0.000 description 5
- 108020001507 fusion proteins Proteins 0.000 description 5
- 102000037865 fusion proteins Human genes 0.000 description 5
- 238000011144 upstream manufacturing Methods 0.000 description 5
- 241000282465 Canis Species 0.000 description 4
- 241000700199 Cavia porcellus Species 0.000 description 4
- 102000053602 DNA Human genes 0.000 description 4
- 101710121925 Hemagglutinin glycoprotein Proteins 0.000 description 4
- 206010037742 Rabies Diseases 0.000 description 4
- 101150003725 TK gene Proteins 0.000 description 4
- 230000003141 anti-fusion Effects 0.000 description 4
- 238000003556 assay Methods 0.000 description 4
- 230000008901 benefit Effects 0.000 description 4
- 201000010099 disease Diseases 0.000 description 4
- 238000010166 immunofluorescence Methods 0.000 description 4
- 230000006698 induction Effects 0.000 description 4
- 230000002458 infectious effect Effects 0.000 description 4
- 231100000636 lethal dose Toxicity 0.000 description 4
- 230000035772 mutation Effects 0.000 description 4
- 239000002773 nucleotide Substances 0.000 description 4
- 125000003729 nucleotide group Chemical group 0.000 description 4
- 238000003752 polymerase chain reaction Methods 0.000 description 4
- 230000009467 reduction Effects 0.000 description 4
- 238000007920 subcutaneous administration Methods 0.000 description 4
- 238000013518 transcription Methods 0.000 description 4
- 230000035897 transcription Effects 0.000 description 4
- 108091032973 (ribonucleotides)n+m Proteins 0.000 description 3
- 108060002716 Exonuclease Proteins 0.000 description 3
- 241000700662 Fowlpox virus Species 0.000 description 3
- 101100534084 Vaccinia virus (strain Copenhagen) B14R gene Proteins 0.000 description 3
- 101100004092 Vaccinia virus (strain Western Reserve) VACWR196 gene Proteins 0.000 description 3
- 210000004369 blood Anatomy 0.000 description 3
- 239000008280 blood Substances 0.000 description 3
- 230000036760 body temperature Effects 0.000 description 3
- 239000003153 chemical reaction reagent Substances 0.000 description 3
- 238000010367 cloning Methods 0.000 description 3
- 238000011161 development Methods 0.000 description 3
- 206010014599 encephalitis Diseases 0.000 description 3
- 102000013165 exonuclease Human genes 0.000 description 3
- 230000002068 genetic effect Effects 0.000 description 3
- 230000035931 haemagglutination Effects 0.000 description 3
- 230000002401 inhibitory effect Effects 0.000 description 3
- 239000002054 inoculum Substances 0.000 description 3
- 230000008774 maternal effect Effects 0.000 description 3
- 239000002244 precipitate Substances 0.000 description 3
- 108090000765 processed proteins & peptides Proteins 0.000 description 3
- 239000000758 substrate Substances 0.000 description 3
- 230000029812 viral genome replication Effects 0.000 description 3
- 230000004580 weight loss Effects 0.000 description 3
- 230000004544 DNA amplification Effects 0.000 description 2
- 108091029865 Exogenous DNA Proteins 0.000 description 2
- 208000015220 Febrile disease Diseases 0.000 description 2
- 208000000666 Fowlpox Diseases 0.000 description 2
- 101150082239 G gene Proteins 0.000 description 2
- FFEARJCKVFRZRR-BYPYZUCNSA-N L-methionine Chemical compound CSCC[C@H](N)C(O)=O FFEARJCKVFRZRR-BYPYZUCNSA-N 0.000 description 2
- 206010025327 Lymphopenia Diseases 0.000 description 2
- 241000282695 Saimiri Species 0.000 description 2
- 238000012300 Sequence Analysis Methods 0.000 description 2
- 241000287219 Serinus canaria Species 0.000 description 2
- 108020005038 Terminator Codon Proteins 0.000 description 2
- 230000010530 Virus Neutralization Effects 0.000 description 2
- 238000010521 absorption reaction Methods 0.000 description 2
- 108010058966 bacteriophage T7 induced DNA polymerase Proteins 0.000 description 2
- 230000000740 bleeding effect Effects 0.000 description 2
- 239000013592 cell lysate Substances 0.000 description 2
- 239000002299 complementary DNA Substances 0.000 description 2
- 230000000120 cytopathologic effect Effects 0.000 description 2
- 230000018044 dehydration Effects 0.000 description 2
- 238000006297 dehydration reaction Methods 0.000 description 2
- 108091008053 gene clusters Proteins 0.000 description 2
- 230000012010 growth Effects 0.000 description 2
- 238000009396 hybridization Methods 0.000 description 2
- 238000002649 immunization Methods 0.000 description 2
- 230000003053 immunization Effects 0.000 description 2
- 238000002347 injection Methods 0.000 description 2
- 239000007924 injection Substances 0.000 description 2
- 231100001023 lymphopenia Toxicity 0.000 description 2
- 239000006166 lysate Substances 0.000 description 2
- 239000003550 marker Substances 0.000 description 2
- 229960004452 methionine Drugs 0.000 description 2
- 235000013336 milk Nutrition 0.000 description 2
- 239000008267 milk Substances 0.000 description 2
- 210000004080 milk Anatomy 0.000 description 2
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 2
- 108020004707 nucleic acids Proteins 0.000 description 2
- 102000039446 nucleic acids Human genes 0.000 description 2
- 150000007523 nucleic acids Chemical class 0.000 description 2
- 244000052769 pathogen Species 0.000 description 2
- 239000002243 precursor Substances 0.000 description 2
- 230000010076 replication Effects 0.000 description 2
- 238000012770 revaccination Methods 0.000 description 2
- 239000000523 sample Substances 0.000 description 2
- 238000010186 staining Methods 0.000 description 2
- 208000024891 symptom Diseases 0.000 description 2
- 238000002560 therapeutic procedure Methods 0.000 description 2
- 238000004448 titration Methods 0.000 description 2
- 231100000331 toxic Toxicity 0.000 description 2
- 230000002588 toxic effect Effects 0.000 description 2
- 241000701161 unidentified adenovirus Species 0.000 description 2
- 241000701447 unidentified baculovirus Species 0.000 description 2
- 230000009385 viral infection Effects 0.000 description 2
- 230000007482 viral spreading Effects 0.000 description 2
- 230000003442 weekly effect Effects 0.000 description 2
- 101150069452 z gene Proteins 0.000 description 2
- 102000040650 (ribonucleotides)n+m Human genes 0.000 description 1
- FWMNVWWHGCHHJJ-SKKKGAJSSA-N 4-amino-1-[(2r)-6-amino-2-[[(2r)-2-[[(2r)-2-[[(2r)-2-amino-3-phenylpropanoyl]amino]-3-phenylpropanoyl]amino]-4-methylpentanoyl]amino]hexanoyl]piperidine-4-carboxylic acid Chemical compound C([C@H](C(=O)N[C@H](CC(C)C)C(=O)N[C@H](CCCCN)C(=O)N1CCC(N)(CC1)C(O)=O)NC(=O)[C@H](N)CC=1C=CC=CC=1)C1=CC=CC=C1 FWMNVWWHGCHHJJ-SKKKGAJSSA-N 0.000 description 1
- 241000271566 Aves Species 0.000 description 1
- 241000282421 Canidae Species 0.000 description 1
- 241000701101 Canine adenovirus 1 Species 0.000 description 1
- 241000701114 Canine adenovirus 2 Species 0.000 description 1
- 108010059892 Cellulase Proteins 0.000 description 1
- 108020004705 Codon Proteins 0.000 description 1
- 208000003322 Coinfection Diseases 0.000 description 1
- 102000012410 DNA Ligases Human genes 0.000 description 1
- 108010061982 DNA Ligases Proteins 0.000 description 1
- 238000012286 ELISA Assay Methods 0.000 description 1
- 241000701533 Escherichia virus T4 Species 0.000 description 1
- 208000010201 Exanthema Diseases 0.000 description 1
- 241000282326 Felis catus Species 0.000 description 1
- 102000002464 Galactosidases Human genes 0.000 description 1
- 108010093031 Galactosidases Proteins 0.000 description 1
- 241000287828 Gallus gallus Species 0.000 description 1
- 206010018910 Haemolysis Diseases 0.000 description 1
- 241000238631 Hexapoda Species 0.000 description 1
- 206010062016 Immunosuppression Diseases 0.000 description 1
- 108091029795 Intergenic region Proteins 0.000 description 1
- 108091092195 Intron Proteins 0.000 description 1
- 238000012218 Kunkel's method Methods 0.000 description 1
- 108010090054 Membrane Glycoproteins Proteins 0.000 description 1
- 102000012750 Membrane Glycoproteins Human genes 0.000 description 1
- 108010086093 Mung Bean Nuclease Proteins 0.000 description 1
- 241001529936 Murinae Species 0.000 description 1
- 241000282339 Mustela Species 0.000 description 1
- 239000000020 Nitrocellulose Substances 0.000 description 1
- 208000025174 PANDAS Diseases 0.000 description 1
- 208000021155 Paediatric autoimmune neuropsychiatric disorders associated with streptococcal infection Diseases 0.000 description 1
- 240000000220 Panda oleosa Species 0.000 description 1
- 235000016496 Panda oleosa Nutrition 0.000 description 1
- 206010033733 Papule Diseases 0.000 description 1
- 241000700625 Poxviridae Species 0.000 description 1
- 101100277251 Saccharomyces cerevisiae (strain ATCC 204508 / S288c) HEM12 gene Proteins 0.000 description 1
- 101710172711 Structural protein Proteins 0.000 description 1
- 241000282898 Sus scrofa Species 0.000 description 1
- 108010008038 Synthetic Vaccines Proteins 0.000 description 1
- 241000700622 Vaccinia virus Copenhagen Species 0.000 description 1
- 108700005077 Viral Genes Proteins 0.000 description 1
- 238000000246 agarose gel electrophoresis Methods 0.000 description 1
- 238000000137 annealing Methods 0.000 description 1
- 230000000890 antigenic effect Effects 0.000 description 1
- 101150059062 apln gene Proteins 0.000 description 1
- 229940031567 attenuated vaccine Drugs 0.000 description 1
- 230000005540 biological transmission Effects 0.000 description 1
- 230000017531 blood circulation Effects 0.000 description 1
- 229910000389 calcium phosphate Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000001506 calcium phosphate Substances 0.000 description 1
- 235000011010 calcium phosphates Nutrition 0.000 description 1
- 238000004113 cell culture Methods 0.000 description 1
- 239000012930 cell culture fluid Substances 0.000 description 1
- 210000003169 central nervous system Anatomy 0.000 description 1
- 239000003795 chemical substances by application Substances 0.000 description 1
- 210000003837 chick embryo Anatomy 0.000 description 1
- 235000013330 chicken meat Nutrition 0.000 description 1
- 238000003501 co-culture Methods 0.000 description 1
- 210000003022 colostrum Anatomy 0.000 description 1
- 235000021277 colostrum Nutrition 0.000 description 1
- 230000000295 complement effect Effects 0.000 description 1
- 238000012790 confirmation Methods 0.000 description 1
- 239000013256 coordination polymer Substances 0.000 description 1
- 238000005520 cutting process Methods 0.000 description 1
- 230000007423 decrease Effects 0.000 description 1
- 230000007123 defense Effects 0.000 description 1
- 238000001514 detection method Methods 0.000 description 1
- 238000005516 engineering process Methods 0.000 description 1
- 230000002708 enhancing effect Effects 0.000 description 1
- 238000011156 evaluation Methods 0.000 description 1
- 201000005884 exanthem Diseases 0.000 description 1
- 238000010195 expression analysis Methods 0.000 description 1
- 210000002950 fibroblast Anatomy 0.000 description 1
- 238000007499 fusion processing Methods 0.000 description 1
- 230000003067 hemagglutinative effect Effects 0.000 description 1
- 230000008588 hemolysis Effects 0.000 description 1
- 210000005260 human cell Anatomy 0.000 description 1
- 238000010185 immunofluorescence analysis Methods 0.000 description 1
- 230000001506 immunosuppresive effect Effects 0.000 description 1
- 230000001976 improved effect Effects 0.000 description 1
- 238000007901 in situ hybridization Methods 0.000 description 1
- 238000001727 in vivo Methods 0.000 description 1
- 238000011065 in-situ storage Methods 0.000 description 1
- 229940031551 inactivated vaccine Drugs 0.000 description 1
- 230000002779 inactivation Effects 0.000 description 1
- 238000001802 infusion Methods 0.000 description 1
- 230000000977 initiatory effect Effects 0.000 description 1
- 238000002955 isolation Methods 0.000 description 1
- 229940124590 live attenuated vaccine Drugs 0.000 description 1
- 229940023012 live-attenuated vaccine Drugs 0.000 description 1
- 230000033001 locomotion Effects 0.000 description 1
- 230000003137 locomotive effect Effects 0.000 description 1
- 210000004072 lung Anatomy 0.000 description 1
- 210000004698 lymphocyte Anatomy 0.000 description 1
- 210000002540 macrophage Anatomy 0.000 description 1
- 230000034217 membrane fusion Effects 0.000 description 1
- 231100000219 mutagenic Toxicity 0.000 description 1
- 230000003505 mutagenic effect Effects 0.000 description 1
- 101150061325 mv gene Proteins 0.000 description 1
- 229920001220 nitrocellulos Polymers 0.000 description 1
- 230000005937 nuclear translocation Effects 0.000 description 1
- 229940124276 oligodeoxyribonucleotide Drugs 0.000 description 1
- 230000001717 pathogenic effect Effects 0.000 description 1
- 239000013600 plasmid vector Substances 0.000 description 1
- 229920001184 polypeptide Polymers 0.000 description 1
- 238000001556 precipitation Methods 0.000 description 1
- 125000002924 primary amino group Chemical group [H]N([H])* 0.000 description 1
- 230000008569 process Effects 0.000 description 1
- 102000004196 processed proteins & peptides Human genes 0.000 description 1
- 238000012545 processing Methods 0.000 description 1
- 125000001500 prolyl group Chemical group [H]N1C([H])(C(=O)[*])C([H])([H])C([H])([H])C1([H])[H] 0.000 description 1
- 238000000746 purification Methods 0.000 description 1
- 206010037844 rash Diseases 0.000 description 1
- 230000009257 reactivity Effects 0.000 description 1
- 229940124551 recombinant vaccine Drugs 0.000 description 1
- 230000003362 replicative effect Effects 0.000 description 1
- 238000011160 research Methods 0.000 description 1
- 108091008146 restriction endonucleases Proteins 0.000 description 1
- 230000000630 rising effect Effects 0.000 description 1
- 238000012216 screening Methods 0.000 description 1
- 239000007787 solid Substances 0.000 description 1
- 238000001179 sorption measurement Methods 0.000 description 1
- 241000894007 species Species 0.000 description 1
- 238000010561 standard procedure Methods 0.000 description 1
- 238000003786 synthesis reaction Methods 0.000 description 1
- 230000009885 systemic effect Effects 0.000 description 1
- 206010043554 thrombocytopenia Diseases 0.000 description 1
- 231100000419 toxicity Toxicity 0.000 description 1
- 230000001988 toxicity Effects 0.000 description 1
- 230000005030 transcription termination Effects 0.000 description 1
- 238000001890 transfection Methods 0.000 description 1
- 238000011282 treatment Methods 0.000 description 1
- QORWJWZARLRLPR-UHFFFAOYSA-H tricalcium bis(phosphate) Chemical compound [Ca+2].[Ca+2].[Ca+2].[O-]P([O-])([O-])=O.[O-]P([O-])([O-])=O QORWJWZARLRLPR-UHFFFAOYSA-H 0.000 description 1
- 229940125575 vaccine candidate Drugs 0.000 description 1
- 230000017613 viral reproduction Effects 0.000 description 1
- 239000000304 virulence factor Substances 0.000 description 1
- 230000007923 virulence factor Effects 0.000 description 1
- 230000004584 weight gain Effects 0.000 description 1
- 235000019786 weight gain Nutrition 0.000 description 1
Images
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
- C12N15/09—Recombinant DNA-technology
- C12N15/63—Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
- C12N15/79—Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts
- C12N15/85—Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts for animal cells
- C12N15/86—Viral vectors
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P11/00—Drugs for disorders of the respiratory system
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P31/00—Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
- A61P31/12—Antivirals
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P31/00—Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
- A61P31/12—Antivirals
- A61P31/14—Antivirals for RNA viruses
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K14/00—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
- C07K14/005—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from viruses
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K39/00—Medicinal preparations containing antigens or antibodies
- A61K2039/51—Medicinal preparations containing antigens or antibodies comprising whole cells, viruses or DNA/RNA
- A61K2039/525—Virus
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K39/00—Medicinal preparations containing antigens or antibodies
- A61K2039/51—Medicinal preparations containing antigens or antibodies comprising whole cells, viruses or DNA/RNA
- A61K2039/53—DNA (RNA) vaccination
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K39/00—Medicinal preparations containing antigens or antibodies
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2710/00—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA dsDNA viruses
- C12N2710/00011—Details
- C12N2710/24011—Poxviridae
- C12N2710/24041—Use of virus, viral particle or viral elements as a vector
- C12N2710/24043—Use of virus, viral particle or viral elements as a vector viral genome or elements thereof as genetic vector
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2710/00—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA dsDNA viruses
- C12N2710/00011—Details
- C12N2710/24011—Poxviridae
- C12N2710/24111—Orthopoxvirus, e.g. vaccinia virus, variola
- C12N2710/24141—Use of virus, viral particle or viral elements as a vector
- C12N2710/24143—Use of virus, viral particle or viral elements as a vector viral genome or elements thereof as genetic vector
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2760/00—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA ssRNA viruses negative-sense
- C12N2760/00011—Details
- C12N2760/18011—Paramyxoviridae
- C12N2760/18411—Morbillivirus, e.g. Measles virus, canine distemper
- C12N2760/18422—New viral proteins or individual genes, new structural or functional aspects of known viral proteins or genes
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2760/00—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA ssRNA viruses negative-sense
- C12N2760/00011—Details
- C12N2760/18011—Paramyxoviridae
- C12N2760/18411—Morbillivirus, e.g. Measles virus, canine distemper
- C12N2760/18434—Use of virus or viral component as vaccine, e.g. live-attenuated or inactivated virus, VLP, viral protein
Description
関連出願についての説明
本発明は1990年11月20日に出願した先願同時系属出願第07/621,614号の一部継続出願である。
DESCRIPTION OF RELATED APPLICATIONS The present invention is a continuation-in-part of prior application copending application 07 / 621,614 filed on November 20, 1990.
産業上の利用分野
本発明は修飾ポックスウイルスおよびそれの製造方法並びに使用方法に関するものである。さらに詳しくは、本発明は、ウイルスが麻疹ウイルス属遺伝子の遺伝子産生物を発現する組換えポックスウイルス、および麻疹ウイルス属感染に対して防御免疫を提供するワクチンに関するものである。
TECHNICAL FIELD The present invention relates to a modified poxvirus and a method for producing and using the same. More particularly, the present invention relates to a recombinant poxvirus in which the virus expresses a gene product of a measles virus gene and a vaccine that provides protective immunity against measles virus infection.
本出願中において括弧内のアラビア数字によりいくつかの出版物が引用されている。これらの参照文献に関する全ての引用を請求の範囲の直前で明細書の終りに記載する。これらの参照文献は、本発明が属する従来技術を記載している。 In this application several publications are cited by Arabic numerals in parentheses. All citations relating to these references are listed at the end of the specification immediately preceding the claims. These references describe the prior art to which the present invention belongs.
ワクチニアウイルスおよびより最近の他のポックスウイルスは異種遺伝子の挿入と発現に用いられてきた。異種遺伝子を生感染性ポックスウイルス中に挿入する基本技術は、供与体プラスミド中の異種遺伝子要素を側腹に有するポックスDNA配列とレスキューイング(rescuing)ポックスウイルス中に存在する同種配列との間の組換えを含む(ピッチーニら、1987)。 Vaccinia virus and more recently other poxviruses have been used for the insertion and expression of heterologous genes. The basic technique of inserting a heterologous gene into a live infectious poxvirus is to intervene between a pox DNA sequence flanked by a heterologous gene element in the donor plasmid and a homologous sequence present in a rescued poxvirus. Includes recombination (Piccini et al., 1987).
特に、組換えポックスウイルスは、従来技術において知られている2つの工程により構成され、特許文献1に記載されているワクチニアウイルスの合成組換え体を産生する方法と類似しており、その特許の開示をここに参照文献として含む。
In particular, the recombinant poxvirus is composed of two steps known in the prior art and is similar to the method of producing a synthetic recombinant of vaccinia virus described in
第1に、ウイルス中に挿入されるDNA遺伝子配列、特に非ポックス源からの読み取り枠は、ポックスウイルスのDNAの部分と相同なDNAが挿入されるE.coliプラスミド構成物中に配される。それとは別に、挿入されるDNA遺伝子配列はプロモーターに連結される。プロモーター遺伝子結合は、そのプロモーター遺伝子結合が可欠座を含有するポックスDNAの領域を側腹に有するDNA配列と相同なDNAにより両端の側腹にあるようにプラスミド構成物中に位置する。産生したプラスミド構成物は次いでE.coliバクテリア内の成長により増幅され(クレウェル、1972)、単離される(クレウェルら、1969;マニアチスら、1982)。 First, DNA gene sequences that are inserted into the virus, particularly open reading frames from non-pox sources, are those that contain DNA that is homologous to the poxvirus DNA portion. E. coli plasmid construct. Apart from that, the inserted DNA gene sequence is linked to a promoter. Promoter gene binding is located in the plasmid construct so that the promoter gene binding is flanked on both sides by DNA homologous to the DNA sequence flanking the region of pox DNA containing the missing locus. The resulting plasmid construct is then E. coli. Amplified by growth in E. coli bacteria (Clewell, 1972) and isolated (Clewell et al., 1969; Maniatis et al., 1982).
第2に、挿入されるDNA遺伝子配列を含有する単離プラスミドは、ポックスウイルスとともに細胞培養、例えばひな胚胎繊維芽細胞中にトランスフェクションされる。プラスミド中の相同ポックスDNAとウイルスゲノムとの間の組換え体はそれぞれ、そのゲノム中の可欠領域中に異種DNA配列の存在により修飾されるポックスウイルスを与える。「異種」DNAという用語は、外因性DNAが配されるゲノムにより通常産生されない遺伝子産生物をコードする外因性DNA、特に非ポックス源からのDNAを称する。 Second, the isolated plasmid containing the inserted DNA gene sequence is transfected with the poxvirus into a cell culture, such as chick embryo fibroblasts. Each recombinant between the homologous pox DNA in the plasmid and the viral genome gives a poxvirus that is modified by the presence of a heterologous DNA sequence in the essential region of the genome. The term “heterologous” DNA refers to exogenous DNA, particularly DNA from non-pox sources, that encodes a gene product that is not normally produced by the genome in which the exogenous DNA is located.
遺伝子組換えは、一般的にDNAの2本鎖間のDNAの相同部分の交換である。あるウイルスにおいて、RNAはDNAを置換する。核酸の相同部分は、同一のヌクレオチド塩基の配列を有する核酸(DNAまたはRNA)の部分である。 Genetic recombination is generally the exchange of homologous portions of DNA between two strands of DNA. In some viruses, RNA replaces DNA. A homologous portion of a nucleic acid is a portion of a nucleic acid (DNA or RNA) having the same nucleotide base sequence.
遺伝子組換えは、感染宿主細胞内の新たなウイルスゲノムの複製または産生中に自然に生じる。それゆえ、ウイルス遺伝子間の遺伝子組換えは、2つ以上の異なるウイルスまたは他の遺伝子構成物に共感染した宿主細胞中で生じるウイルス複製サイクル中に生じる。第1のゲノムからのDNAの部分は、DNAが第1のウイルスゲノムのDNAと相同である第2の共感染ウイルスのゲノムの部分を構成するのに交換可能に用いられる。 Genetic recombination occurs naturally during the replication or production of new viral genomes in infected host cells. Therefore, genetic recombination between viral genes occurs during the viral replication cycle that occurs in host cells co-infected with two or more different viruses or other genetic constructs. The portion of DNA from the first genome is used interchangeably to constitute the portion of the genome of the second co-infected virus whose DNA is homologous to the DNA of the first viral genome.
しかしながら、組換えはまた、完全には相同ではない異なるゲノム中のDNAの部分間にも生じ得る。そのような1つの部分が、例えば相同なDNAの部分中に挿入される抗原決定基をコードする遺伝子または遺伝子マーカーの第1の部分内の存在を除いた別のゲノムと相同の第1のゲノムからのものである場合、組換えはまだ生じ、その組換えの産生物は次いで、組換えウイルスゲノム中の遺伝子または遺伝子マーカーの存在により検知可能である。 However, recombination can also occur between portions of DNA in different genomes that are not completely homologous. A first genome in which one such part is homologous to another genome except for the presence in a first part of a gene or genetic marker encoding an antigenic determinant inserted into, for example, a part of homologous DNA The recombination still occurs and the product of the recombination can then be detected by the presence of the gene or genetic marker in the recombinant viral genome.
修飾感染ウイルスによる挿入DNA遺伝子配列の発現を成功させるには2つの条件が必要である。第1に、修飾ウイルスが生存し続けるように、ウイルスの可欠領域中に挿入がなされなければならない。挿入DNAの発現の第2の条件は、挿入DNAへの適切な関係にあるプロモーターの存在である。発現されるDNA配列から上流に位置するようにプロモーターを配しなければならない。 Two conditions are required for successful expression of the inserted DNA gene sequence by the modified infectious virus. First, insertions must be made in the essential region of the virus so that the modified virus continues to survive. The second condition for expression of the inserted DNA is the presence of a promoter in appropriate relationship to the inserted DNA. A promoter must be placed so that it is located upstream from the DNA sequence to be expressed.
イヌジステンパーウイルス(CDV)および麻疹ウイルス(MV)は、科パラミクソウイルス属の麻疹ウイルス属亜型の一員である(ジアロ、1990;キングスバリーら、1978)。ウイルスは負の極性の非分節1本鎖RNAゲノムを含有する。イヌジステンパーは非常に感染しやすい犬または他の肉食性動物の熱性病である。死亡率は高い;30から80パーセントの間の範囲に亘る。犬が生存してもしばしば永久の中枢神経系が損傷することがある(フェナーら、1987)。同様に、麻疹ウイルスも全身大丘疹性発疹により特徴付けられるひどく感染しやすい熱性病を生じる。その病気は主に子供を冒す。 Canine distemper virus (CDV) and measles virus (MV) are members of the measles virus subtype of the family Paramyxovirus (Diaro, 1990; Kingsbury et al., 1978). The virus contains a negative polarity non-segmented single-stranded RNA genome. Canine distemper is a febrile disease of dogs or other carnivorous animals that are very susceptible to infection. Mortality is high; it ranges between 30 and 80 percent. Even if a dog survives, the permanent central nervous system can often be damaged (Fenner et al., 1987). Similarly, measles virus produces a severely susceptible febrile disease characterized by a systemic papule rash. The disease mainly affects children.
麻疹ウイルス属の特徴が近年ノービーとオクスマン(1990)並びにジアロ(1990)により報告された。他のパラミクソウイルス属に報告されているように(アベリーおよびニベン、1979;マーツら、1980)、2つの構造タンパク質が防御免疫応答の誘発に重要である。これらのタンパク質は、血球凝集と宿主細胞へのウイルスの吸着の原因である膜糖タンパク質血球凝集素(HA)、およびウイルスと感染細胞との間または感染細胞と隣接した未感染細胞との間の膜融合を生じる融合糖タンパク質(F)である(グレーブスら、1978)。MVゲノム中の遺伝子の順序はリチャードソンら(1985)およびドーリングら(1986)により推測された。MVHA遺伝子およびMVF遺伝子のヌクレオチド配列がアルクハチブとブリーディス(1986)およびリチャードソンら(1986)によりそれぞれ求められた。 The characteristics of the measles virus genus have been recently reported by Nobby and Oxman (1990) and Gialo (1990). As reported in other paramyxovirus genera (Avery and Niben, 1979; Marts et al., 1980), two structural proteins are important in eliciting a protective immune response. These proteins are hemagglutinating and the membrane glycoprotein hemagglutinin (HA) responsible for viral adsorption to host cells, and between virus and infected cells or between infected and adjacent uninfected cells. A fusion glycoprotein (F) that causes membrane fusion (Graves et al., 1978). The order of the genes in the MV genome was speculated by Richardson et al. (1985) and Doring et al. (1986). The nucleotide sequences of the MVHA and MVF genes were determined by Alkachib and Bridis (1986) and Richardson et al. (1986), respectively.
CDVとMVは構造的に類似しており、類似した血清関係を共有している。イムノプレシピテーションの研究により、MVに対する抗血清が全てのCDVタンパク質(P、NP、F、HAおよびM)を沈殿させることが示された。対称的に、CDVに対する抗血清は、HA糖タンパク質以外の全てのMVタンパク質を沈殿せしめる(ホールら、1980;オーベルら、1980;ステフェンソンら、1979)。この類似の血清関係に照らして、MVによるワクチン接種は犬のCDV抗原投与に対する防御を引き出すことが以前から示されている(ギレスピーら、1960;モーラら、1961;ワレンら、1960)。CDVに対する中和抗体がヒト抗MV血清中に報告されているが(アダムスら、1957;イマガワら、1960;カーゾン、1955;カーゾン、1962)、MVに対する中和抗体は犬からの抗CDV血清中には発見されていない(ディレイら、1965;カーゾン、1962;ロバーツ、1965)。 MV HAおよびF遺伝子が、ワクチニアウイルス(ドリリアンら、1988;ウィルドら、1991)、鶏痘ウイルス(スフェナーら、1990;ウィルドら、1990)、アデノウイルス(アルハチブら、1990)およびバキュロウイルス(ブィアラードら、1990)を含むいくつかのウイルスベクター中に発現されている。これらの研究において、血球凝集(ブィアラードら、1990)溶血反応(アルハチブら、1990;ブィアラードら、1990)または細胞融合(アルハチブら、1990;ブィアラードら、1990;ウィルドら、1991)検定において機能した真正のMVタンパク質が発現された。ワクチニアウイルスベクター中に挿入されるときに、HAまたはFタンパク質のいずれかの発現は、MV脳炎に対するネズミ中の防御免疫応答を引き出すことができた(ドリリエンら、1988)。同様に、鶏痘ウイルスベクター中のFタンパク質の発現は、ネズミ中のMV脳炎に対する防御免疫を引き出した(ウィルドら、1990)。どの防御研究も他のベクターについては報告されなかった。 CDV and MV are structurally similar and share similar serum relationships. Immunoprecipitation studies have shown that antisera against MV precipitate all CDV proteins (P, NP, F, HA and M). In contrast, antisera against CDV precipitate all MV proteins except HA glycoproteins (Hole et al., 1980; Ober et al., 1980; Stefenson et al., 1979). In light of this similar serum relationship, MV vaccination has previously been shown to elicit protection against canine CDV challenge (Gillespie et al., 1960; Mora et al., 1961; Wallen et al., 1960). Although neutralizing antibodies against CDV have been reported in human anti-MV sera (Adams et al., 1957; Imagawa et al., 1960; Curzon, 1955; Curzon, 1962), neutralizing antibodies against MV are found in anti-CDV sera from dogs. (Delay et al., 1965; Curzon, 1962; Roberts, 1965). MV HA and F genes are expressed in vaccinia virus (Dorrian et al., 1988; Wilde et al., 1991), fowlpox virus (Sphener et al., 1990; Wilde et al., 1990), adenovirus (Alhachib et al., 1990) and baculovirus (Builarard Et al., 1990). In these studies, the authenticity that functioned in the hemagglutination (Bearard et al., 1990) hemolysis (Alhativ et al., 1990; Beardard et al., 1990) or cell fusion (Alhativ et al., 1990; Beardard et al., 1990; Wilde et al., 1991) assay. Of MV protein was expressed. When inserted into a vaccinia virus vector, expression of either HA or F protein could elicit a protective immune response in mice against MV encephalitis (Dorien et al., 1988). Similarly, expression of F protein in fowlpox virus vector elicited protective immunity against MV encephalitis in mice (Wild et al., 1990). No defense studies were reported for other vectors.
特許文献2は鶏痘中のMV遺伝子の発現に関するものである。
パーカスらは近年(1990)、ワクチニアウイルス中の2つの独特な宿主域遺伝子の定義を記載した。これらの遺伝子は、生体外の様々な細胞基体上のワクチニアウイルスの複製を認める宿主域機能をコードする。その遺伝子は、ヒト細胞並びに家ウサギとブタの源の細胞上のワクチニアウイルス複製の宿主域機能をコードする。これら遺伝子の定義は、一方ではまだ興味のある異種遺伝子を発現し、定義された細胞中で複製する能力において厳しく制限されたワクチニアウイルスベクターの発達を提供する。これによりワクチニアウイルス組換え体の安全特性を大幅に高める。 弱毒化されたベクターは、ワクチニアウイルスのコペンハーゲン菌株からの6つの可欠領域の系列欠損により発達せしめられている。これらの領域はウイルスの毒性における役割を有するタンパク質をコードすることが知られている。欠損した領域は、tk遺伝子、出血性遺伝子、A型含有遺伝子、血球凝集遺伝子、およびリボヌクレオチド還元酵素の大サブユニット並びに以前に定義したC7LからK1Lの配列をコードする遺伝子である(パーカスら、1990)。ワクチニアウイルスのコペンハーゲン菌株中のこれらの遺伝子の配列および遺伝子配置が以前に定義されている(ゲーベルら、1990a、b)。産生した弱毒化ワクチニア菌株はNYVACと称する。 Parkus et al. (1990) recently described the definition of two unique host range genes in vaccinia virus. These genes encode host range functions that allow vaccinia virus replication on various cell substrates in vitro. The gene encodes the host range function of vaccinia virus replication on human cells as well as cells of domestic rabbit and pig sources. These gene definitions, on the other hand, provide for the development of vaccinia virus vectors that are severely limited in their ability to express heterologous genes of interest and replicate in defined cells. This greatly enhances the safety characteristics of vaccinia virus recombinants. Attenuated vectors have been developed due to lineage deletion of six essential regions from the Copenhagen strain of vaccinia virus. These regions are known to encode proteins that have a role in viral toxicity. The missing region is the tk gene, hemorrhagic gene, type A-containing gene, hemagglutination gene, and the large subunit of ribonucleotide reductase and the gene encoding the previously defined C7L to K1L sequence (Percus et al., 1990). The sequence and gene arrangement of these genes in the Copenhagen strain of vaccinia virus has been previously defined (Goebel et al., 1990a, b). The attenuated vaccinia strain produced is referred to as NYVAC.
ワクチニアウイルス組換え体を産生する技術が、より制限された宿主域を有するポックスウイルス科の他のメンバーに最近広がっている。アビポックスウイルス、鶏痘は、狂犬病G遺伝子を発現する組換えウイルスとして設計されている(テイラーら、1988b)。この組換えウイルスはまた特許文献3に記載されている。組換え体の多数の非鶏種への接種により、ネズミ、ネコおよびイヌにおいて致死量の狂犬病抗原投与に対して防御を示す狂犬病に対する免疫反応が引き出される。 The technology for producing vaccinia virus recombinants has recently been extended to other members of the Poxviridae family with a more restricted host range. The avipox virus, fowlpox, is designed as a recombinant virus expressing the rabies G gene (Taylor et al., 1988b). This recombinant virus is also described in US Pat. Inoculation of a large number of recombinant chickens elicits an immune response against rabies that protects against lethal doses of rabies challenge in mice, cats and dogs.
イヌジステンパーと麻疹の両者は弱毒化ワクチンの使用により現在制御されている(フェンナーら、1987;プレブラッドら、1988)。生後8週間と生後12から16週間で生弱毒化ワクチンを使用する免疫化が、CDVの制御に推奨されている。CDVに対する免疫は一生のものであるが、病気の重大さと作用因子の高い感染特性のために、例年のワクチン再接種が通常推奨される。 Both canine distemper and measles are currently controlled by the use of attenuated vaccines (Fenner et al., 1987; Preblood et al., 1988). Immunization using live attenuated vaccines at 8 weeks of age and 12-16 weeks of age is recommended for CDV control. Although immunity against CDV is lifelong, regular revaccination is usually recommended because of the severity of the disease and the high infectious nature of the agent.
継続的なワクチン再接種の現在の方針に関する1つの問題点は、CDV免疫母体が初乳中の子孫に対する中和抗体を通過することである。子犬にワクチン接種を行なう、これらの抗体の水準が衰えるときを確かめることは困難である。これは子犬がCDV感染に対して感染しやすい場合に糸口を残す。麻疹ウイルス糖タンパク質のみを発現する組換えワクチンの使用により、母の抗体の抑制効果を克服し、新生児のワクチン接種を行なう方法が提供される。実際、CDV免疫母体を哺乳した子犬中のCDV特異抗体は、MVワクチンで接種したときにMV特異抗体の発達を妨げなかったことが示されている(ベイカーら、1966)。 One problem with the current policy of continuous revaccination is that the CDV immunized mother passes neutralizing antibodies against colostrum progeny. It is difficult to ascertain when puppy vaccination levels of these antibodies decline. This leaves clues when puppies are susceptible to infection with CDV. The use of a recombinant vaccine that expresses only measles virus glycoprotein provides a method of overcoming the inhibitory effect of maternal antibodies and vaccinating newborns. Indeed, it has been shown that CDV-specific antibodies in pups that have received a CDV immunized mother did not interfere with the development of MV-specific antibodies when vaccinated with MV vaccines (Baker et al., 1966).
通常使用されている修飾生CDVワクチンの他の制限が以前に記載されており(チザード、1990)、ワクチン接種された動物内で複製するこれらのワクチン菌株の能力と関連付けられる。CDVワクチン菌株を、イヌアデノウイルス1および2とともに、免疫抑制、血小板減少、および脳炎となるイヌに接種した場合に、これらの欠損効果が最も著しい(ベステッティら、1987;ハートリー、1974;フィリップスら、1989)。修飾生CDVワクチンはまた、キツネ、キンカジョス(Kinkajous)、フェレットおよびパンダを含む他の動物種にジステンパーを誘発せしめることが示されている(ブッシュら、1976;カーペンターら、1976;カザコスら、1981)。それゆえ、組換えCDVワクチン候補物の使用により、修飾生CDVの環境への継続的な導入と、従来のCDVワクチンの使用により生じる潜在的なワクチン関連とワクチン誘発の併発が除去される。 ポックスウイルスの使用はまた、現在使用されているイヌの弱毒化CDV菌株によるワクチン接種の際に母体抗体が有する文献に記載した抑制効果を克服する手段を提供する。若年にポックスウイル組換え体で免疫化した母体に生まれた子犬は、CDV特異母体抗体の干渉を避ける。加えて、これらの反応および2つのポックスウイルスの間の血清の緊密な反応性の欠如を引き出すMV HA遺伝子とF遺伝子を含有するワクチニアウイルスとカナリヤポックスウイスルベクターの両者の能力は、1つのベクターが子犬の生涯の初期に用いられ、もう一方が後期に用いられてCDV特異免疫を高めるというさらなる利点を提供する。これは、弱毒化DCV菌株の環境への放出と、ワクチン誘発およびワクチン関連の併発の発生に関連付けられるできごととを除去する(チザード、1990)。
Other limitations of commonly used modified live CDV vaccines have been previously described (Chizard, 1990) and are associated with the ability of these vaccine strains to replicate in vaccinated animals. These deficient effects are most pronounced when the CDV vaccine strain is inoculated with
それゆえ、麻疹ウイルス属組換えポックスウイルス、および麻疹ウイルス属感染に対する防御免疫を提供するワクチンを提供することは、技術の現在の状況よりも非常に望ましい利点であることが理解されよう。
それゆえ、本発明の目的は、麻疹ウイルス属の遺伝子産生物を発現する組換えポックスウイルスを提供すること、およびそのような組換えポックスウイルスを産生する方法を提供することにある。 Therefore, it is an object of the present invention to provide a recombinant poxvirus that expresses a gene product of the measles virus genus and to provide a method for producing such a recombinant poxvirus.
本発明のさらなる目的は、ポックスベクター、特にワクチニアウイルスベクターまたはカナリヤポックスウイルスベクター中の麻疹ウイルス属暗号配列、特に麻疹ウイルス暗号配列のクローニングおよび発現を提供することにある。 It is a further object of the present invention to provide cloning and expression of measles virus genus coding sequences, particularly measles virus coding sequences, in pox vectors, particularly vaccinia virus vectors or canary pox virus vectors.
本発明の別の目的は、麻疹ウイルス属中和抗体、血球凝集抑制抗体および麻疹ウイルス属感染と致死量の麻疹ウイルス属抗原投与に対する防御免疫を引き出すことのできるワクチンを提供することにあり、特に麻疹ウイルス組換えポックスウイルスワクチンを用いてイヌジステンパーに対するイヌの緊密な防御を提供することにある。 Another object of the present invention is to provide a measles virus genus neutralizing antibody, a hemagglutination-inhibiting antibody, and a vaccine capable of eliciting protective immunity against measles virus genus infection and administration of a lethal dose of measles virus genus. It is to provide a dog's close protection against canine distemper using a measles virus recombinant poxvirus vaccine.
本発明のこれらと他の目的および利点は、以下の検討の後に容易に明確となる。 These and other objects and advantages of the present invention will be readily apparent after the following discussion.
一面において、本発明はポックスウイルスゲノムの可欠領域の麻疹ウイルス属からのDNA配列を含有する組換えポックスウイルスに関するものである。ポックスウイルスは好ましくは、カナリヤポックスウイルスのようなアビポックスウイルスまたはワクチニアウイルスである。麻疹ウイルス属は好ましくは麻疹ウイルスである。 In one aspect, the present invention relates to a recombinant poxvirus containing a DNA sequence from the measles virus genus in an integral region of the poxvirus genome. The poxvirus is preferably an avipox virus such as a canary pox virus or a vaccinia virus. The measles virus genus is preferably measles virus.
本発明によると、組換えポックスウイルスは異種の麻疹ウイルス属遺伝子の遺伝子産生物を発現する。特に、異種DNAは、麻疹ウイルス糖タンパク質、好ましくは麻疹ウイルス血球凝集素糖タンパク質および麻疹ウイルス融合糖タンパク質をコードする。好ましくは、複数の麻疹ウイルス糖タンパク質が組換えポックスウイルスにより宿主中にともに発現される。 According to the present invention, the recombinant poxvirus expresses a gene product of a heterologous measles virus gene. In particular, the heterologous DNA encodes a measles virus glycoprotein, preferably a measles virus hemagglutinin glycoprotein and a measles virus fusion glycoprotein. Preferably, multiple measles virus glycoproteins are expressed together in a host by a recombinant poxvirus.
別の面において、本発明は、ワクチン接種した宿主動物中の免疫応答を誘発するワクチンに関し、ここでそのワクチンは、可欠領域中に麻疹ウイルス属からのDNA、特に麻疹ウイルスを含有する組換えポックスウイルスおよび担体を含む。好ましくは、DNAは、麻疹ウイルス糖タンパク質、特に麻疹ウイルス血球凝集素糖タンパク質および麻疹ウイルス融合糖タンパク質をコードして発現する。複数の麻疹ウイルス糖タンパク質は好ましくは宿主中でともに発現される。本発明によるワクチン中に用いられるポックスウイルスは、好ましくはワクチニアウイルスまたはカナリヤポックスウイルスのようなアビポックスウイルスである。 In another aspect, the invention relates to a vaccine that elicits an immune response in a vaccinated host animal, wherein the vaccine contains recombinant from measles virus genus, particularly measles virus, in the integral region. Includes poxvirus and carrier. Preferably, the DNA encodes and expresses a measles virus glycoprotein, particularly a measles virus hemagglutinin glycoprotein and a measles virus fusion glycoprotein. Multiple measles virus glycoproteins are preferably expressed together in the host. The poxvirus used in the vaccine according to the invention is preferably an avipox virus such as vaccinia virus or canarypox virus.
本発明をより深く理解するために添付した図面を参照して説明する。 For a better understanding of the present invention, reference is made to the accompanying drawings.
説明のために示した以下の実施例を参照して、本発明と本発明の多くの利点を詳細に説明する。 The invention and its many advantages will be described in detail with reference to the following examples, which are given for illustration.
実施例1−麻疹血球凝集素遺伝子を含有するワクチニアウイルス組換え体の産生
両者の組換え体の産生に用いたレスキューイング(rescuing)ウイルスは、チミジンキナーゼ遺伝子が欠損せしめられたワクチニアウイルスのコペンハーゲン菌株であった。全てのウイルスが成長せしめられ、ベロ細胞単層上に滴定した。
Example 1 Production of Vaccinia Virus Recombinant Containing Measles Hemagglutinin Gene The rescue virus used for the production of both recombinants is a vaccinia virus deficient in the thymidine kinase gene. Copenhagen strain. All viruses were grown and titrated on Vero cell monolayers.
初期/後期ワクチニアウイルスH6プロモーター(ロセルら、1986;テイラーら、1988a、b)を、4つの重複オリゴヌクレオチド、H6SYN A−Dをアニールすることにより構成した。生成したH6配列は以下のとおりである。 The early / late vaccinia virus H6 promoter (Rocell et al., 1986; Taylor et al., 1988a, b) was constructed by annealing four overlapping oligonucleotides, H6SYN AD. The generated H6 sequence is as follows.
ワクチニアウイルスH6プロモーター(配列番号1/配列番号2):
HindIII
5′AGCTTCTTTATTCTATACTTAAAAAGTGAAAATAAATACAAAGGTTCTTGAGGGTTGT
AGAAATAAGATATGAATTTTTCACTTTTATTTATGTTTCCAAGAACTCCCAACA
GTTAAATTGAAAGCGAGAAATAATCATAAATTATTTCATTATCGCGATATCCGTTAAGTT
CAATTTAACTTTCGCTCTTTATTAGTATTTAATAAAGTAATAGCGCTATAGGCAATTCAA
TGTATCGTAC−3′
ACATAGCATGAGCT−5′
XhoI
ここで第1図を参照する。アニールしたH6SYNオリゴヌクレオチドを、XhoI/HindIIIで切断されたpMP2LVC中に連結してプラスミドpSP131を産生した。プラスミドpMP2LVCは、pUC8内のワクチニアウイルス(コペンハーゲン菌株)HindIII K領域の一番左の0.4kbpを含有する。pMP2LVCの構成は以下のようにして行なった:HindIII K領域からの0.4kbpのHindIII/SalI断片を単離して、2mMのdNTPの存在下でE.coli DNAポリメラーゼのクレノー断片で鈍端とした。この断片を、PvuIIで切断したpUC18中に挿入した。産生したプラスミドをpMP2VCと称した。プラスミドpMP2VCをSspIで線状にした。合成オリゴヌクレオチドMPSYN52(配列番号3)(5′−ATTATTTTTATAAGCTTGGATCCCTCGAGGGTACCCCCGGGGAGCTCGAATTCT−3′)およびMPSYN53(配列番号4)(5′−AGAATTCGAGCTCCCCGGGGGTACCCTCGAGGGATCCAAGCTTATAAAAATAAT−3′)をアニールしてワクチニアウイルス配列内に位置する2つのSspI部位の一番左に挿入した。生成したプラスミドpMP2LVCは、K1LおよびK2L読み取り枠の間の遺伝子間領域中に多重クローニング領域を含む。
Vaccinia virus H6 promoter (SEQ ID NO: 1 / SEQ ID NO: 2):
HindIII
5'AGCTTCTTTATTCTATAACTTAAAAAGTGAAAATAAAATACAAAGGTTCTTGAGGGTTGT
AGAATAAGATATAGGAATTTTTCACTTTTTATTTAGTTTCCAAGAACTCCCAACA
GTTAAATTGAAAGCGAGAAATAATCATAAATTATTTTCATTATCGCATACATCCGTTAAGTT
CAATTTAACTTTCGCTCTTTATTTAGTATTTAATAAAGTAATAGCCGCTATAGGCAATTCAA
TGTATCCGTAC-3 '
ACATAGCATGAGCT-5 '
XhoI
Reference is now made to FIG. The annealed H6SYN oligonucleotide was ligated into pMP2LVC cut with XhoI / HindIII to produce plasmid pSP131. Plasmid pMP2LVC contains the leftmost 0.4 kbp of the vaccinia virus (Copenhagen strain) HindIII K region in pUC8. The construction of pMP2LVC was performed as follows: a 0.4 kbp HindIII / SalI fragment from the HindIII K region was isolated and E. coli in the presence of 2 mM dNTPs. The DNA was blunted with a Klenow fragment of E. coli DNA polymerase. This fragment was inserted into pUC18 cut with PvuII. The resulting plasmid was called pMP2VC. Plasmid pMP2VC was linearized with SspI. Synthetic oligonucleotides MPSYN52 (SEQ ID NO: 3) (5′-ATTATTTTTATAAGCTTGGATCCCCTGAGGGGTACCCCCGGGGAGCTCCGAATTCT-3 ′) and MPSYN53 (SEQ ID NO: 4) (5′-AGAATTCGAGCTCCCCGGGGTACCC Inserted at the far left. The resulting plasmid pMP2LVC contains a multiple cloning region in the intergenic region between the K1L and K2L reading frames.
アニールしたオリゴヌクレオチド3P1(配列番号5)(5′−GGGAAG−ATGGAACCAATCGCAGATAG−3′)およびHA遺伝子の先端の3′配列と粘着末端EcoRIを含有する3P2(配列番号6)(5′−AATTCTATCTG−CGATTGGGGTTCCATCTTCCC−3′)を、HA遺伝子の残留基とXhoIおよびEcoRIで切断したpSP131とを含有するpMH22からの1.8kbpのXhoI/SmaI断片に連結した。生成したプラスミドをpSPMHA11と称した。プラスミドpMH22は、ATG開始コードンにXhoI部位を生成することにより麻疹HA遺伝子の全長のcDNAクローンから誘導した(アルハチブら、1986)。 Annealed oligonucleotide 3P1 (SEQ ID NO: 5) (5'-GGGAAG-ATGGGAACCCAATCGCAGATAGAG-3 ') and 3P2 (SEQ ID NO: 6) (5'-AATTCTATTCTG-GATTTGGGGTTCCATCTTCTCCC containing the 3' sequence at the tip of the HA gene and the sticky end EcoRI -3 ') was ligated to a 1.8 kbp XhoI / SmaI fragment from pMH22 containing the residual group of the HA gene and pSP131 cut with XhoI and EcoRI. The resulting plasmid was called pSPMHA11. Plasmid pMH22 was derived from a full length cDNA clone of the measles HA gene by creating an XhoI site in the ATG initiation codon (Alhachib et al., 1986).
麻疹HA遺伝子を含有する、pSPMHA11からの1.9kbpのHindIII/EcoRI断片を単離して、2mMのdntpの存在下でE.coli DNAポリメラーゼのクレノー断片で鈍端とした。単離した断片をBglIIで切断したpMP409DVC(グオら、1989)中に挿入して、ムンビーン(mung bean)ヌクレアーゼの処理により鈍端とした。このベクター中への挿入によりプラスミドpSPMHA41を産生した。H6プロモーターとHA遺伝子の開始コードンとの間のXhoI部位を、オリゴヌクレオチドHAXHOD(配列番号7)(5′−ATATCCGTTAAGTTTGTATCGTAATGTCACCACAACGAGACCGGAT−3′)を用いたオリゴヌクレオチド定方向2本鎖開裂突然変異(マンデック、1982)により除去した。プラスミドpSPM2LHAVCをこの方法により産生した。レスキューイングウイルスとしてのワクチニアウイルスvP458による生体外組換え実験において、プラスミドpSPM2LHAVCの挿入を用いて組換え体vP557を産生した。vP458はvP410のM2L挿入部位にE.coli乳Z遺伝子を含有する。このワクチニアウイルス組換え体は、乳Z遺伝子を置換する、ゲノムのM2L座中に麻疹HA遺伝子を含有する。 A 1.9 kbp HindIII / EcoRI fragment from pSPMHA11 containing the measles HA gene was isolated and E. coli in the presence of 2 mM dntp. The DNA was blunted with a Klenow fragment of E. coli DNA polymerase. The isolated fragment was inserted into pMP409DVC cut with BglII (Guo et al., 1989) and blunted by treatment with a mung bean nuclease. Plasmid pSPMHA41 was produced by insertion into this vector. An XhoI site between the H6 promoter and the start codon of the HA gene was inserted into the oligonucleotide-directed double-strand cleavage mutation (Mandeck, 1982) using the oligonucleotide HAXHOD (SEQ ID NO: 7) (5'-ATATCCCGTTAAGTTTGTATCGTATGTTCACCACAACGAGACCGGAT-3 '). ). The plasmid pSPM2LHAVC was produced by this method. In an in vitro recombination experiment with vaccinia virus vP458 as a rescue virus, recombinant vP557 was produced using insertion of plasmid pSPM2LHAVC. vP458 is E. coli at the M2L insertion site of vP410. contains the E. coli milk Z gene. This vaccinia virus recombinant contains the measles HA gene in the M2L locus of the genome, replacing the milk Z gene.
実施例2−麻疹融合遺伝子を含有するワクチニアウイルス組換え体の産生
第2図を参照する。アニールしたオリゴヌクレオチド3PA(配列番号8)(5′−CCTAAAGTTTGATCTTACGGGAACATCAAAATCCTATGTAAGGTCGCTCTGATTTTTATCGGCCGA−3′)および麻疹融合遺伝子の3′末端、ワクチニアウイルス初期転写終止信号(ユエンら、1987)およびEagI末端並びにHindIII末端を含有する3PB(配列番号9)(5′−AGCTTCGGCCGATAAAAATCAGAGCGACCTTACATAGGATTTTGATGTTCCCGTAAGATCAGGCTTTAGG−3′)を、SalIとHindIIIで切断したpUC8およびpCRF2からの1kbpのSalI/HaeIII断片(カナダH3A 1A1、モントリオール、C.リチャードソン、カナダの国立研究議会(生物工学研究所)から得られる)に連結した。生成したプラスミドpMF3PR14は麻疹融合遺伝子の1kbpの断片の3′末端を含有した。
Example 2 Production of Recombinant Vaccinia Virus Containing Measles Fusion Gene Reference is made to FIG. Annealed oligonucleotide 3PA (SEQ ID NO: 8) (5'-CCTAAAGTTGATCTTACGGGAACATCAAAATCCTATGTAAGGTCGCTCTGATTTTTATCGGCCGA-3 ') and measles fusion gene containing 3' end, vaccinia virus early transcription termination signal (Yuen et al., 1987) and EagI end 3PB (SEQ ID NO: 9) (5'-AGCTTCGGCCGATAAAAAATCAGAGGCGACCCTATACATGAGTTTGATGTTCCCGTAAGATCAGGCTTTAGG-3 ') from pUC8 and pCRF2 cleaved with SalI and HindIII. Down, it was linked to the National Research Council Canada obtained from (Biological Engineering Institute)). The resulting plasmid pMF3PR14 contained the 3 'end of the 1 kbp fragment of the measles fusion gene.
5′SmaI部位と3′BstXI部位を含有する、アニールしたオリゴヌクレオチド5PA(配列番号10)(5′−GGGATGGGTCTCAAGGTGAACGTCTCTGCCATATTC−3′)および5PB(配列番号11)(5′−ATGGCAGAGACGTTCACCTTGAGACCCATCCC−3′)を、pCRF2からの820bpのBstXI/SalI断片およびSmaIとSalIで切断したpUP8に連結した。生成したプラスミドpSPMF5P16は麻疹融合遺伝子の5′部分を含有した。pSPMF5P16からの820bpのSmaI/SalI断片およびpMF3PR14からの1kbpのSalI/EagI断片を、SmaIとEagIで切断したpTP15中に連結した。プラスミドpTP15(グオら、1989)は、ワクチニアウイルス(コペンハーゲン菌株)ゲノムのHA座からの配列により側腹に連結したワクチニアウイルス初期/後期H6プロモーターを含有する。HA挿入プラスミド内のH6プロモーターに並列した3′の麻疹融合遺伝子を含有する生成プラスミドをpSPHMF7と称した。 Annealed oligonucleotide 5PA (SEQ ID NO: 10) (5'-GGGATGGGTCTCAAGGTGAACGTCTCTGCCATATTC-3 ') and 5PB (SEQ ID NO: 11) (5'-ATGGCAGAGAGTTCACCCT-3GASTCAT-3) containing 5' SmaI and 3'BstXI sites It was ligated to the 820 bp BstXI / SalI fragment from pCRF2 and pUP8 cut with SmaI and SalI. The resulting plasmid pSPMF5P16 contained the 5 'portion of the measles fusion gene. The 820 bp SmaI / SalI fragment from pSPMF5P16 and the 1 kbp SalI / EagI fragment from pMF3PR14 were ligated into pTP15 cut with SmaI and EagI. Plasmid pTP15 (Guo et al., 1989) contains the vaccinia virus early / late H6 promoter linked flanked by sequences from the HA locus of the vaccinia virus (Copenhagen strain) genome. The resulting plasmid containing the 3 'measles fusion gene in parallel with the H6 promoter in the HA insertion plasmid was designated pSPHMF7.
オリゴヌクレオチド定方向突然変異をpSPHMF7に行なった。最初に生体外突然変異反応(マンデック、1982)を行なって、オリゴヌクレオチドPSMAD(配列番号12)(5′−TATCCGTTAAGT−TTGTATGGTAATGGGTCTCAAGGTGAACGTCT−3′)を用いたSmaI部位の除去によりH6プロモーターと麻疹融合遺伝子との正確なATG:ATG連結を生成した。これによりpSPMF75M20が生成した。続いて、既知の方法(マンデック、1982)にしたがってオリゴヌクレオチドSPBGLD(配列番号13)(5′−AATAAATCACTTTTTATACTAATTCTTTATTCTATACTTAAAAAGT−3′)を用いてH6プロモーターの5′末端のBglII部位を除去した。生成したプラスミドをpSPMFVCと称した。レスキューイングウイルスとしてのワクチニアウイルスvP410により生体外組換え実験においてこのプラスミドを用いてvP455を産生した。 Oligonucleotide directed mutations were made in pSPHMF7. First, an in vitro mutation reaction (Mandeck, 1982) was performed, and the SmaI site was removed using oligonucleotide PSMAD (SEQ ID NO: 12) (5'-TATCCGTTAAGT-TTGTATGGTAATGGGTCTCAAGGTGAACGTCT-3 '). The correct ATG: ATG linkage was generated. This produced pSPMF75M20. Subsequently, the BglII site at the 5 'end of the H6 promoter was removed using the oligonucleotide SPBGLD (SEQ ID NO: 13) (5'-AATAAACACTTTTTATATACTATTCTTTATTCTATATACTAAAAAGT-3') according to known methods (Mandeck, 1982). The resulting plasmid was called pSPMFVC. VP455 was produced using this plasmid in ex vivo recombination experiments with vaccinia virus vP410 as a rescue virus.
実施例3−イムノプレシピテーション分析
組換え体vP455およびvP557が真正のタンパク質を発現したことを確認するために、記載した方法(テイラーら、1990)にしたがってイムノプレシピテーション実験を行なった。手短に言うと、ベロ細胞単層を35S−メチオニンの存在下で細胞当り10pfuで親ウイルスまたは組換えウイルスのいずれかで感染せしめた。カルボキシ末端融合ペプチドに対して直列した家ウサギ抗血清を用いて感染細胞溶解産物から融合タンパク質を特異的に沈殿せしめた。多クローン性単特異生抗血清を用いて感染細胞溶解産物から血球凝集素タンパク質を特異的に沈殿せしめた。融合特異血清を用いたイムノプレシピテーションに関して、未感染ベロ細胞、親感染ベロ細胞、またはHA組換え体vP557に感染した細胞中には全く放射線標識産生物は検出されなかった。融合組換え体vP455に感染した細胞において、約60kdの分子量を有する融合前駆体F0および44kdと23kdの分子量を有する2つの開裂産生物F1とF2が検出された。同様に、約75から77kdの分子量を有するHAタンパク質のグリコシル化形状のイムノプレシピテーションに関して、未感染ベロ細胞、親感染細胞、またはvP455に感染したベロ細胞中には産生物は全く検出されなかった。
Example 3-Immunoprecipitation analysis To confirm that recombinants vP455 and vP557 expressed authentic proteins, immunoprecipitation experiments were performed according to the method described (Taylor et al., 1990). Briefly, Vero cell monolayers were infected with either parental or recombinant virus at 10 pfu per cell in the presence of 35 S-methionine. The fusion protein was specifically precipitated from infected cell lysates using a home rabbit antiserum in series against the carboxy-terminal fusion peptide. Hemagglutinin protein was specifically precipitated from infected cell lysates using polyclonal monospecific live antisera. For immunoprecipitation using fusion specific serum, no radiolabeled product was detected in uninfected Vero cells, parent infected Vero cells, or cells infected with HA recombinant vP557. In cells infected with the fusion recombinant vP455, the fusion precursors F 0 with a molecular weight of approximately 60 kd and two cleavage products F 1 and F 2 with a molecular weight of 44 kd and 23 kd were detected. Similarly, no product is detected in uninfected Vero cells, parent infected cells, or Vero cells infected with vP455 for immunoprecipitation of glycosylated forms of HA protein having a molecular weight of about 75 to 77 kd It was.
加えて、イムノフルオレセンス研究は、両者のタンパク質が感染細胞表面上に発現されたことを示した。 In addition, immunofluorescence studies showed that both proteins were expressed on the infected cell surface.
実施例4−細胞融合実験
麻疹ウイルス属細胞変性性の特徴は、感染細胞と周囲の未感染細胞との融合により生じる融合細胞の形成であり、続いてその融合細胞の中心に向かって核が移動する(ノービーら、1982)。これはウイルス拡散の重要な方法であることが示されており、その拡散はパラミクソウイルス属に関して、血球凝集素特異抗体の存在下で生じ得る(マーツら、1980)。この能力は、他のパラミクソウイルス属との相似によりF1ペプチドのアミノ末端にあるとされている(ショパンら、1981;ノビックら、1988;パターソンら、1987)。
Example 4-Cell fusion experiments A characteristic of measles virus genus cytopathic properties is the formation of fused cells resulting from the fusion of infected cells with surrounding uninfected cells, followed by the movement of the nucleus towards the center of the fused cells. (Noby et al., 1982). This has been shown to be an important method of viral spreading, which can occur in the presence of hemagglutinin specific antibodies for the Paramyxovirus genus (Marts et al., 1980). This ability has been attributed to the amino terminus of the F1 peptide by analogy with other genera of Paramyxovirus (Chopin et al., 1981; Novic et al., 1988; Patterson et al., 1987).
ワクチニアウイルス中で発現された麻疹ウイルスタンパク質が機能的に活性であることを確認するために、ベロ細胞単層に、それぞれ細胞当り1pfuの、親のまたは組換えウイルスvP455およびvP557を接種した。37℃での1時間の吸収後、接種物を取り出し、オーバーレイ媒質を置き換えて、接種物の入ったプレートを37℃で一晩培養した。感染の18時間後、プレートを顕微鏡で観察し、写真を写した。親ウイルスであるvP455またはvP557を接種したベロ細胞には全く細胞融合活性が見られなかった。しかしながら、vP455およびvP557をともに接種した場合に、十分な細胞融合活性が観察された。 To confirm that the measles virus protein expressed in vaccinia virus is functionally active, Vero cell monolayers were inoculated with 1 pfu per cell of parental or recombinant viruses vP455 and vP557, respectively. After 1 hour of absorption at 37 ° C., the inoculum was removed, the overlay medium was replaced, and the plate with the inoculum was incubated overnight at 37 ° C. 18 hours after infection, the plates were observed under a microscope and photographed. No cell fusion activity was seen in Vero cells inoculated with the parental virus vP455 or vP557. However, sufficient cell fusion activity was observed when both vP455 and vP557 were inoculated.
この結果は、麻疹/ワクチニアウイルス組換え体に感染した様々な細胞系における融合細胞の形成には、融合および血球凝集素遺伝子の両者の発現が必要であることを確認したウィルドら(1991)により最近確認された。しかしながら、その結果は、麻疹融合タンパク質を発現する非常に多重なアデノウイルス組換え体に感染した293 の細胞中の細胞融合を記載した先の報告(アルハチブ、1990)とは著しく異なる。同様に、麻疹融合タンパク質を発現するバキュロウイルス組換え体に感染した昆虫細胞中で、pH5.8で培養したときにのみに細胞融合が観察されたことが報告されている(ブィアラードら、1990)。いずれの場合においても、融合活性は、麻疹血球凝集素タンパク質を発現する適切な組換え体による共感染(co−infection)により高められなかった。融合工程に含まれる変化要因は、細胞の種類(ギロードンら、1984)、媒質のpH(ブィアラードら、1990)および融合タンパク質の発現水準(ノービーら、1982)である。 The results confirmed that the formation of fused cells in various cell lines infected with measles / vaccinia virus recombinants required the expression of both fusion and hemagglutinin genes (1991). Recently confirmed. However, the results are markedly different from previous reports (Alhachib, 1990) that described cell fusion in 293 cells infected with highly multiplexed adenovirus recombinants expressing measles fusion proteins. Similarly, in insect cells infected with baculovirus recombinants expressing measles fusion proteins, it has been reported that cell fusion was observed only when cultured at pH 5.8 (Bearard et al., 1990). . In either case, the fusion activity was not enhanced by co-infection with an appropriate recombinant expressing the measles hemagglutinin protein. Factors involved in the fusion process are the cell type (Gilaudon et al., 1984), the pH of the medium (Builard et al., 1990) and the expression level of the fusion protein (Noby et al., 1982).
実施例5−血清試験
ウイルス中和(VN)抗体試験の技術は先に詳細に記載している(アペルら、1973)。CDV−VN抗体滴定試験を、CDVの適応オンダーステポート(Onderstepoort)菌株によりベロ細胞中で行なった。MV−VN抗体滴定の試験は、MVの適応エドモンストン(Edmonston)菌株によりベロ細胞中で行なった。血清試験の結果を表1に示す。
Example 5 Serum Testing The technique of virus neutralization (VN) antibody testing has been described in detail previously (Apel et al., 1973). CDV-VN antibody titration studies were performed in Vero cells with an adapted Onderstepport strain of CDV. Tests of MV-VN antibody titration were performed in Vero cells with an adapted Edmonston strain of MV. The results of the serum test are shown in Table 1.
実施例6に記載したように、麻疹融合タンパク質を発現するvP455またはワクチニア親ウイルスのいずれかで免疫化したイヌは、MVに対する中和抗体を発生させなかった。HAタンパク質を発現するvP577で免疫化したか、または組換え体vP455およびvP557の両者で共接種したイヌは、1回の接種後に中和抗体を発生された。抗体の水準は、MVの弱毒化エドモンストン菌株の接種により誘発された水準と等しかった。
実施例6−動物防御研究
組換え体を接種したイヌ中の麻疹ウイルスタンパク質の発現がCDV抗原投与に対する防御免疫反応を誘発するのに十分であるかどうかを確認するために、14匹の生後10週間の、特定の病原体のないビーグル犬について研究した。血液試料を実験の最初と、その後に繰り返し集積した。各群2匹ずつの4つの群を、3週間間隔で2回の注射で免疫化した。第1の群にはワクチニアウイルスのみを注射した。第2の群には、麻疹ウイルスのFタンパク質(vP455)の挿入物を有するワクチニアウイルスを注射した。第3の群には、MVのHA抗原(vP557)の注入物を有するワクチニアウイルスを注射し、第4の群には第2と第3の組合せを注射した。各イヌに、1mlの量中約4×108pfu(皮下で0.6 ml、筋肉内で0.4 ml)のワクチニアウイルスを接種した。2匹の対照イヌには105 50%組織培養感染量(TCID50)のMVの弱毒化エドモンストン菌株を筋肉内に注射し(1mlの量)、2匹の対照イヌには、毒性CDVの抗原投与の前に104 TCID50のCDVの弱毒化ロックボーン菌株を皮下に注射した。2匹のイヌは、抗原投与の前には接種されない状態であった。
Example 6 Animal Protection Studies To determine whether the expression of measles virus protein in dogs inoculated with recombinants is sufficient to elicit a protective immune response to CDV challenge, 14 10 Weekly beagle dogs without specific pathogens were studied. Blood samples were collected repeatedly at the beginning of the experiment and thereafter. Four groups of 2 animals each were immunized with 2 injections at 3 week intervals. The first group was injected with vaccinia virus only. The second group was injected with vaccinia virus with an insert of the measles virus F protein (vP455). The third group was injected with vaccinia virus with an infusion of MV HA antigen (vP557), and the fourth group was injected with the second and third combination. Each dog was inoculated with about 4 × 10 8 pfu (0.6 ml subcutaneously, 0.4 ml intramuscularly) of vaccinia virus in a volume of 1 ml. Two control dogs were injected intramuscularly with 10 5 50% tissue culture infectious dose (TCID 50 ) of MV attenuated Edmonston strain (1 ml volume), and two control dogs had toxic CDV Prior to challenge, an attenuated rockbone strain of 10 4 TCID 50 CDV was injected subcutaneously. Two dogs were not vaccinated prior to challenge.
最後の接種の2週間後に、全てのイヌを、104 TCID50の毒性CDVのスナイダーヒル菌株を含有する1mlの細胞培養液体を鼻内接種することにより抗原投与した。イヌの臨床反応を、毎日の観察および体温の記録により、そして2週間に1回体重の増加または減少の記録により監視した。循環血液リンパ球を、抗原投与の前および抗原投与後の日数(dpc)3、5、7および10で数えた。イヌの肺のマクロファージによる共培養(co−cultivation)による被膜形成細胞からのウイルスの単離(アペルら、1967)をdpc3、5、7および10で行なった。血清試験の血液試料は、ワクチン接種の前、抗原投与の時期までの1週間ごと、およびdpc7、10および20で集積した。
Two weeks after the last inoculation, all dogs were challenged by intranasal inoculation with 1 ml of cell culture fluid containing 10 4 TCID 50 of virulent CDV Snyderhill strain. The dog's clinical response was monitored by daily observation and recording of body temperature and by recording weight gain or loss once every two weeks. Circulating blood lymphocytes were counted on days before and after challenge (dpc) 3, 5, 7, and 10. Isolation of virus from capsule-forming cells by co-culture with macrophages from canine lung (Apel et al., 1967) was performed at
抗原投与の結果を表2に示す。
免疫化していない対照イヌおよび親ワクチニアウイルスでワクチン接種したイヌは重い病気の臨床的徴候を示し、脱水症状が明確になったときに安楽死させた。vP455で免疫化した療法のイヌは、対照のイヌに見られたのよりも短い期間であるけれども、体重損失、体温の上昇、およびリンパ球減少を含むCDVに感染した徴候を示した。言うまでもなく、両方のイヌが致死量のCDVの抗原投与にもかかわらず生き残った。vP557を接種したイヌまたは療法の組換え体を共接種したイヌは、感染の最小限の徴候を示し、抗原投与にも生き残った。MVの弱毒化エドモンストン菌株またはCDVの弱毒化ロックボーン菌株のいずれかで接種したイヌはまた、最小限の病気の徴候を示して抗原投与にも生き残った。 Non-immunized control dogs and dogs vaccinated with parental vaccinia virus showed clinical signs of severe illness and were euthanized when dehydration became apparent. Therapy dogs immunized with vP455 showed signs of CDV infection, including weight loss, increased body temperature, and lymphopenia, albeit for a shorter period than that seen in control dogs. Needless to say, both dogs survived despite challenge with a lethal dose of CDV. Dogs vaccinated with vP557 or co-inoculated with therapy recombinants showed minimal signs of infection and survived challenge. Dogs inoculated with either the MV attenuated Edmonstone strain or the CDV attenuated Rockbone strain also survived the challenge with minimal signs of disease.
実施例7−追加のワクチニア/麻疹構成物
ここで第3図を参照する。プラスミドpRW843の挿入により、tk座内に麻疹HA遺伝子を含有する第2のワクチニアウイルス組換え体を産生した(vP756)。pRW843を以下の方法に従って構成した。正確なATG:ATG配列中に3′−末端側の26bpを欠損したHA遺伝子と融合したH6プロモーターの3′−末端側の24bpを含有する1.8kbpのEcoRV/SmaI断片をpSPM2LHAVCから単離した。この断片を用いてpSPMHA11の1.8kbpのEcoRV/SmaI断片を置き換えてpRW803を産生した。プラスミドpRW803は、正確に完全な麻疹HA遺伝子と連結した完全なH6プロモーターを含有する。
Example 7-Additional Vaccinia / Measles Composition Reference is now made to FIG. Insertion of plasmid pRW843 produced a second vaccinia virus recombinant containing the measles HA gene in the tk locus (vP756). pRW843 was constructed according to the following method. Exact ATG: A 1.8 kbp EcoRV / SmaI fragment containing 24
麻疹HA遺伝子を有する先の構成物を確認すると、公表された配列と比較してコードン18(CCC)の配列が欠損したことに気付いた(アルハチブら、1986)。オリゴヌクレオチドRW117(配列番号14)(5′−GACTATCCTACTT−CCCTTGGGATGGGGGTTATCTTTGTA−3′)
Pro 18
を使用するクンケル法(クンケル、1985)を用いてオリゴヌクレオチド突然変異誘発によりCCC配列を置き換えた。pIBI25中のpRW803からのH6/HAカセッテを含有するプラスミドpRW819から1本鎖のテンプレートを誘導した(IBI、ニューハブン、CT.)。コードン18でプロリン残基をコードする挿入物(CCC)を含有する突然変異誘発プラスミドをpRW820と称した。pRW820のHindIIIとXbaI部位の間の配列を、ヌクレオチド配列分析により確認した。HindIII部位はH6プロモーターの5′縁に位置し、一方XbaI部位はHA遺伝子の開始コードンから230bp下流に位置する。XbaIから下流のHA暗号配列を含有し、終止コードンを含有する、pRW803からの1.6kbpのXbaI/EcoRI断片を用いてpRW820の等量の断片を置き換え、pRW837を産生した。pRW837内に含有される突然変異誘発の発現カセッテは、HindIIIとEcoRIでの切断により誘導し、2mMのdNTPの存在下でのE.coliDNAポリメラーゼのクレノー断片を用いて鈍端としてpSD573VCQのSmaI部位に挿入してpRW843を産生した。レスキューイングウイルスとしてのvP618による生体外組換え実験においてプラスミドpRW843を用いてvP756を産生した。親ウイルスvP618は、チミジンキナーゼ、出血性およびA型含有遺伝子が欠損せしめられたコペンハーゲン菌株ウイルスである。約75kdの血球凝集素糖タンパク質を正確に発現するイムノプレシピテーション分析により組換え体vP756が示されている。
Upon confirmation of the previous construct with the measles HA gene, it was found that the sequence of coden 18 (CCC) was deleted compared to the published sequence (Alhachib et al., 1986). Oligonucleotide RW117 (SEQ ID NO: 14) (5′-GACTATCCTACTT-CCCTTGGGATGGGGGTTATCTTTGTA-3 ′)
Pro 18
The CCC sequence was replaced by oligonucleotide mutagenesis using the Kunkel method (Kunkel, 1985). A single-stranded template was derived from plasmid pRW819 containing the H6 / HA cassette from pRW803 in pIBI25 (IBI, New Haven, CT.). The mutagenesis plasmid containing an insert (CCC) encoding a proline residue at codon 18 was designated pRW820. The sequence between the HindIII and XbaI sites of pRW820 was confirmed by nucleotide sequence analysis. The HindIII site is located at the 5 'edge of the H6 promoter, while the XbaI site is located 230 bp downstream from the start codon of the HA gene. A 1.6 kbp XbaI / EcoRI fragment from pRW803, containing the HA coding sequence downstream from XbaI and containing the termination codon, was used to replace an equal fragment of pRW820 to produce pRW837. The mutagenic expression cassette contained within pRW837 is induced by cleavage with HindIII and EcoRI and E. coli in the presence of 2 mM dNTPs. A blunt end was inserted into the SmaI site of pSD573VCQ using the Klenow fragment of E. coli DNA polymerase to produce pRW843. VP756 was produced using plasmid pRW843 in an in vitro recombination experiment with vP618 as a rescue virus. The parental virus vP618 is a Copenhagen strain virus that is deficient in thymidine kinase, hemorrhagic and type A containing genes. Recombinant vP756 is shown by immunoprecipitation analysis that accurately expresses the hemagglutinin glycoprotein of about 75 kd.
ここで第4図を参照する。ゲノムのATI座に麻疹融合遺伝子を含有する第2のワクチニアウイルス組換え体(vP800)を、プラスミドpRW850の挿入により産生した。pRW850を構成するために、以下の操作を行なった。正確にATG:ATG配列中にH6プロモーターと連結した麻疹融合遺伝子を含有するプラスミドpSPMF75M20をNruIとEagIで切断した。H6プロモターターの3′−末端側の28bpおよび完全な融合遺伝子を含有する1.7kbpの鈍端の断片を単離して、NruIとXbaIで切断し鈍端としたpRW823に挿入した。生成したプラスミドpRW841は、pIBI25プラスミドベクター中に麻疹融合遺伝子に連結したH6プロモーターを含有する(IBI、ニューハブン、CT.)。SmaIでの切断によりpRW841からH6/麻疹融合発現カセッテを誘導し、生成した1.8kbp断片を、SmaIで切断したpSD494VCに挿入してpRW850を産生した。レスキューイングウイルスとしてのvP618により生体外組換え実験においてプラスミドpRW850を用いてvP800を産生した。確実に処理した融合糖タンパク質を発現するイムノプレシピテーション分析により組換え体vP800が示された。 Reference is now made to FIG. A second vaccinia virus recombinant (vP800) containing the measles fusion gene at the ATI locus of the genome was produced by insertion of plasmid pRW850. In order to construct pRW850, the following operations were performed. The plasmid pSPMF75M20 containing the measles fusion gene linked to the H6 promoter exactly in the ATG: ATG sequence was cut with NruI and EagI. A 1.7 kbp blunt fragment containing 28 bp 3'-terminal of the H6 promoter and the complete fusion gene was isolated and inserted into pRW823 which had been cut with NruI and XbaI and blunt-ended. The resulting plasmid pRW841 contains the H6 promoter linked to the measles fusion gene in the pIBI25 plasmid vector (IBI, New Haven, CT.). A cassette expressing H6 / measles fusion was induced from pRW841 by digestion with SmaI, and the resulting 1.8 kbp fragment was inserted into pSD494VC digested with SmaI to produce pRW850. VP800 was produced using plasmid pRW850 in in vitro recombination experiments with vP618 as a rescue virus. Recombinant vP800 was shown by immunoprecipitation analysis expressing a reliably processed fusion glycoprotein.
実施例8−vP455を接種した家ウサギとモルモット中の麻疹中和抗体の評価
2匹の家ウサギを、麻疹融合タンパク質を発現する合計1×108pfuの組換え体vP455により5つの部位に皮内に接種した。両方の家ウサギに12週間後それぞれ接種により追加抗原投与した。追加抗原投与後2週間、すなわち14週間後に連続的な流血を集積し、家ウサギを血清中和抗体の存在について試験した。
Example 8 Evaluation of Measles Neutralizing Antibody in Rabbits Inoculated with vP455 and Guinea Pigs Two rabbits were skinned at 5 sites with a total of 1 × 10 8 pfu of recombinant vP455 expressing measles fusion protein. Inoculated inside. Both rabbits were boosted by inoculation 12 weeks later. Consecutive blood bleeds were collected 2 weeks after boosting, i.e. 14 weeks, and rabbits were tested for the presence of serum neutralizing antibodies.
4匹のモルモットをそれぞれ1×108pfuの組換え体vP455で皮下に接種した。それぞれの抗原投与接種は21日後に行なった。連続的な出血を集積した。 Four guinea pigs were inoculated subcutaneously with 1 × 10 8 pfu of recombinant vP455 each. Each challenge was given 21 days later. Continuous bleeding accumulated.
麻疹ウイルス血清中和抗体の存在を、マイクロタイタウェル(well)当り10TCID50のウイルスを用いたマイクロタイタ試験(アペルら、1973)により評価した。その結果を表3に示す。
実施例9−麻疹ウイルス組換えカナリヤポックスウイルスの産生
鶏痘ウイルスについて先に記載したものと同様な方法を用いて、麻疹/カナリヤポックスウイルス組換え体を産生した(テイラーら、1988a、b)。
Example 9 Production of Measles Virus Recombinant Canary Pox Virus A measles / canary pox virus recombinant was produced using a method similar to that previously described for fowlpox virus (Taylor et al., 1988a, b).
麻疹FおよびHA遺伝子をカナリヤポックスウイルス中に挿入するプラスミドを以下のようにして産生した。 A plasmid for inserting the measles F and HA genes into the canarypox virus was produced as follows.
ここで第5図を参照する。H6プロモートした麻疹F遺伝子を含有するpSPMF75M20からの1.8kbpの鈍端BglII/EagI断片をpRW764.2の鈍端EcoRI部位に挿入した。プラスミドpRW764.2は、ウイルス複製に可欠であると確認された独特なEcoRI部位を有するカナリヤポックスゲノムからの3.4kbpのPvuII断片を含有する。麻疹F遺伝子を含有する生成したプラスミドはpRW800と称し、レスキューイングウイルスとしてのカナリヤポックスによる組換え実験に用いてvCP40を産生した。 Reference is now made to FIG. A 1.8 kbp blunt BglII / EagI fragment from pSPMF75M20 containing the H6 promoted measles F gene was inserted into the blunt EcoRI site of pRW764.2. Plasmid pRW764.2 contains a 3.4 kbp PvuII fragment from the canarypox genome with a unique EcoRI site that has been confirmed to be essential for viral replication. The resulting plasmid containing the measles F gene was called pRW800 and was used in a recombination experiment with canarypox as a rescue virus to produce vCP40.
ここで第6図を参照する。正確なATG:ATG配列でHAと融合したH6プロモーターの3′−末端側の28bpを含有するpSPM2LHAからの1.8kbpのEcoRV/SmaI断片を、pSPMHA11のEcoRVおよびSmaI部位の間に挿入した。生成したプラスミドをpRW803と称した。H6プロモートした麻疹HA遺伝子を含有するpRW803の2kbpのHindIII/EcoRI断片を鈍端として、プラスミドpRW764.5の鈍端BglII部位に挿入した。プラスミドpRW764.5は、ウイルスの成長に可欠であると先に確認された独特なBglII部位を有するカナリヤポックスゲノムの800bp PvuII断片を含有する。この挿入により、組換え試験に用いたプラスミドpRW810を生成してvCP50を産生した。 Reference is now made to FIG. A 1.8 kbp EcoRV / SmaI fragment from pSPM2LHA containing 28 bp 3'-end of the H6 promoter fused to HA with the correct ATG: ATG sequence was inserted between the EcoRV and SmaI sites of pSPMHA11. The resulting plasmid was called pRW803. The 2 kbp HindIII / EcoRI fragment of pRW803 containing the H6 promoted measles HA gene was inserted as a blunt end into the blunt end BglII site of plasmid pRW764.5. Plasmid pRW764.5 contains an 800 bp PvuII fragment of the canarypox genome with a unique BglII site previously identified as essential for viral growth. By this insertion, plasmid pRW810 used for the recombination test was generated to produce vCP50.
麻疹FおよびHA配列の挿入により個別に、それぞれ組換え体vCP40およびvCP50を発生せしめた。二重の組換え体を生成するために、pRW810に含まれるHA遺伝子を挿入するレスキューイングウイルスとして単一F組換えvCP40を用いた。これにより二重の組換え体vCP57が発生した。 Recombinant vCP40 and vCP50 were generated separately by insertion of measles F and HA sequences, respectively. In order to generate a double recombinant, single F recombinant vCP40 was used as a rescue virus to insert the HA gene contained in pRW810. This generated a double recombinant vCP57.
実施例10−イムノプレシピテーション分析
組換え体vCP40、vCP50およびvCP57が真正のタンパク質を発現したことを確認するために、HAまたはFタンパク質にいずれかに対して指向性のある単一特異性血清を用いたイムノプレシピテーション分析を行なった。vCP40とvCP57に感染した細胞の溶解産物から、正確に処理した融合ポリペプチドを特異的に沈殿せしめた。約60kdの分子量を有する融合前駆体F0およびそれぞれ約44kdおよび23kdの分子量を有する2つの開裂産物F1およびF2を検出した。未感染CEF細胞、親感染CEF細胞またはHA組換え体vCP50に感染したCEF細胞中にはどの融合特異産生物も検出不可能であった。同様に、単一HA組換え体vCP50および二重組換え体vCP57に感染したCEF細胞から、約75kdの糖タンパク質が特異的に沈殿せしめた。未感染細胞、親感染細胞または融合組換え体vCP40に感染した細胞中にはどのHA特異産生物も検出されなかった。
Example 10-Immunoprecipitation analysis Monospecific serum directed against either HA or F protein to confirm that recombinants vCP40, vCP50 and vCP57 expressed authentic proteins The immunoprecipitation analysis using was performed. Correctly treated fusion polypeptides were specifically precipitated from the lysates of cells infected with vCP40 and vCP57. A fusion precursor F 0 having a molecular weight of about 60 kd and two cleavage products F 1 and F 2 having a molecular weight of about 44 kd and 23 kd, respectively, were detected. No fusion-specific product was detectable in uninfected CEF cells, parent infected CEF cells or CEF cells infected with HA recombinant vCP50. Similarly, about 75 kd glycoprotein was specifically precipitated from CEF cells infected with single HA recombinant vCP50 and double recombinant vCP57. No HA specific product was detected in uninfected cells, parent infected cells or cells infected with fusion recombinant vCP40.
実施例11−細胞融合実験
麻疹ウイルス組換え体が機能的に活性であることを確認するために、細胞融合検定を行なった。ベロ細胞単層を、細胞当り1pfuのCP親または組換えウイルスで感染せしめ、感染から18時間後に細胞変性効果を試験した。親、vCP40またはvCP50ウイルスを接種したベロ細胞中には全く細胞融合活性は明確にはならなかった。しかしながら、ベロ細胞に二重組換え体vCP57を接種したときまたは細胞をvCP40とvCP50の両方で共接種したときに、十分な細胞融合活性が示された。
Example 11-Cell fusion experiment To confirm that the measles virus recombinant is functionally active, a cell fusion assay was performed. Vero cell monolayers were infected with 1 pfu CP parent or recombinant virus per cell and tested for cytopathic effect 18 hours after infection. No cell fusion activity was evident in Vero cells inoculated with the parent, vCP40 or vCP50 virus. However, sufficient cell fusion activity was shown when Vero cells were inoculated with double recombinant vCP57 or when cells were co-inoculated with both vCP40 and vCP50.
実施例12−血清試験
実施例13に記載するように、カナリヤポックス/HA組換え体vCP50、ワクチニア/HA組換え体vP557、カナリヤポックス/HA/F二重組換え体vCP57を接種したイヌまたはvP455とvP557で共接種したイヌは、1回の接種の後に麻疹ウイルスに対して著しい血清中和抗体を発生せしめた。カナリヤポックス/F組換え体vCP40を接種した2匹のイヌのいずれも、1または2回の接種の後に中和抗体を発生せしめなかった。血清試験の結果を表4に示す。
Example 12-Serum test As described in Example 13, canine pox / HA recombinant vCP50, vaccinia / HA recombinant vP557, canarypox / HA / F double recombinant vCP57 inoculated dogs or vP455 and Dogs co-inoculated with vP557 developed significant serum neutralizing antibodies against measles virus after a single inoculation. Neither of the two dogs inoculated with the canarypox / F recombinant vCP40 developed neutralizing antibodies after one or two inoculations. The results of the serum test are shown in Table 4.
加えて、vCP40を接種したモルモットは再現できるが低い水準の血清中和抗体を発生した。
実施例13−動物防御研究
麻疹ウイルスタンパク質を発現する非複製カナリヤポックスベクターがCDV抗原投与に対する防御免疫反応を誘発するかどうかを確認するために、生後10週間の特定の病原を有さないビーグル犬にカナリヤポックス親および組換えウイルスを接種した。2匹のイヌに1×108pfuの各組換え体の皮下注射を3週間の間隔で2回、同時に接種した。比較するために、あるイヌは同一の摂生で、単一のワクチニアウイルス組換え体vP455およびvP557並びにその両方の組合せのそれぞれを接種した。あるイヌはまた、MVの弱毒化エドモンストンの105 TCID50の1回の投与量を筋肉内に接種した。あるイヌは、CDVの弱毒化ロックボーン菌株の104 TCID50の1回の投与量を皮下に接種した。それぞれのイヌに、鼻内の最終接種の2週間後、致死量のCDVの毒性スナイダーヒル菌株の104 TCID50を抗原投与した。イヌの臨床反応を毎日監視した。結果を表5に示す。
実験の過程中にどのイヌにもワクチン接種に反する反応は見られなかった。親カナリヤポックスウイルスで免疫化した2匹のイヌおよび2匹の非免疫化対照イヌは毒性CDVの抗原投与後重大な病気を示した。4匹のイヌ全てが上昇した体温、体重損失、リンパ球減少症およびひどい脱水症状を示した。CDVロックボーンで免疫化したイヌは、抗原投与の前にMVに対してではなくCDVに対する血清中和抗体を発生し、抗原投与にも生き残り、症状は示さなかった。弱毒化MVで免疫化したイヌは、抗原投与の前にCDVではなくMVに対する血清中和抗体を発生し、穏やかな感染の徴候を見せたが抗原投与に生き残った。vCP50、vCP57、vP557を接種したイヌまたはvP445およびvP557を共接種したイヌは、1回の接種の後にMVに対する著しい血清中和抗体を発生し、ほとんど症状を示さず抗原投与に生き残った。 None of the dogs responded to vaccination during the course of the experiment. Two dogs immunized with parental canarypox virus and two non-immunized control dogs showed serious illness after challenge with virulent CDV. All four dogs showed elevated body temperature, weight loss, lymphopenia and severe dehydration. Dogs immunized with CDV rockbone developed serum neutralizing antibodies against CDV but not against MV prior to challenge, survived challenge and showed no symptoms. Dogs immunized with attenuated MVs developed serum neutralizing antibodies to MV but not CDV prior to challenge and showed mild signs of infection but survived challenge. Dogs vaccinated with vCP50, vCP57, vP557 or dogs co-inoculated with vP445 and vP557 developed significant serum neutralizing antibodies to MV after a single inoculation and survived the challenge with few symptoms.
実施例14−追加のカナリヤポックス/麻疹構成物
ここで第7図を参照する。MV HA遺伝子を発現するカナリヤポックスウルイス組換え体を産生するために、以下の挿入プラスミドを生成した。正確に麻疹HAに連結されたH6プロモーターの3′末端側の26bpを含有するpRW837から1.8kbpのEcoRV/EcoRI断片を、pRW838からの3.2kbpのEcoRV/EcoRI断片に連結した。pRW838誘導断片は、H6プロモーターの5′部分およびC5座側腹アームを含有する。プラスミドpRW838およびpRW831(下記以下参照)を以下に従って誘導した。
Example 14-Additional Canary Pox / Measles Composition Reference is now made to FIG. In order to produce a canarypox Lewis recombinant that expresses the MV HA gene, the following insertion plasmid was generated. The pRW837 to 1.8 kbp EcoRV / EcoRI fragment containing 26 bp 3 'of the H6 promoter exactly linked to measles HA was ligated to the 3.2 kbp EcoRV / EcoRI fragment from pRW838. The pRW838 derived fragment contains the 5 'portion of the H6 promoter and the C5 locomotor arm. Plasmids pRW838 and pRW831 (see below) were derived as follows.
880bp PvuIIカナリヤポックス遺伝子断片をpUC9のPvuII部位の間に挿入した。生成したプラスミドはpRW764.5と称した。製造者の仕様書に従って改良T7酵素シーケナーゼTMキット(米国、バイオケミカル、クレブランド、OH)を用いて、880bpカナリヤポックス断片のヌクレオチド配列を求めた。配列反応は、バイオサーチ8700(サンラファエル、CA)またはアプライドバイオシステムス3800(フォスターシティー、CA)により調製された注文合成プライマー(17−18mers)を用いた。これによりC5読み取り枠の規定が可能になった。 An 880 bp PvuII canarypox gene fragment was inserted between the PvuII sites of pUC9. The resulting plasmid was called pRW764.5. The nucleotide sequence of the 880 bp canarypox fragment was determined using an improved T7 enzyme Sequenase ™ kit (USA, Biochemical, Cleveland, OH) according to manufacturer's specifications. The sequence reaction used custom synthetic primers (17-18mers) prepared by Biosearch 8700 (Saint-Raphael, CA) or Applied Biosystems 3800 (Foster City, CA). This made it possible to define the C5 reading frame.
特異的にC5読み取り枠を欠損せしめるために、RsaIでpRW764.5を部分的に切断し、線状産生物を単離した。RsaI線状断片をBglIIで再度切断し、位置156から位置462が欠損したRsaI−BglIIを有するpRW764.5断片を単離して、以下の合成オリゴヌクレオチドのベクターとして用いた:RW145(配列番号15):(5′−ACTCTCAAAAGCTTCCCGGGAATTCTAGCTAGCTAGTTTTTATAAA−3′)RW146(配列番号16):(5′−GATCTTTATAAAAACTAGCTAGCTAGAATTCCCGGGAAGCTTTTGAGAGT−3′)。オリゴヌクレオチドRW145およびRW146をアニールし、上述したpRW764.5RsaI−BglIIベクター中に挿入した。生成したプラスミドはpRW831である。 In order to specifically lack the C5 open reading frame, pRW764.5 was partially cut with RsaI and the linear product was isolated. The RsaI linear fragment was cut again with BglII and a pRW764.5 fragment with RsaI-BglII lacking position 462 from position 156 was isolated and used as a vector for the following synthetic oligonucleotide: RW145 (SEQ ID NO: 15) : (5'-ACTCTCAAAAGCTTCCCGGGAATTCTAGCTAGCTAGTTTTTATAAA-3 ') RW146 (SEQ ID NO: 16): (5'-GATCTTTAAAAAACTAGCTAGCTAGAAATTCCCCGGGAAGCTTTGAGAGT-3'). Oligonucleotides RW145 and RW146 were annealed and inserted into the pRW764.5RsaI-BglII vector described above. The resulting plasmid is pRW831.
このC5欠損プラスミドは、他のカナリヤポックスウイルス読み取り枠の妨害なく形成された。C5暗号配列を、HindIII、SmaI、およびEcoRIの制限部位を含む上述アニールしたオリゴヌクレオチド(RW145およびRW146)で置き換えた。 This C5-deficient plasmid was formed without interference with other canarypox virus reading frames. The C5 coding sequence was replaced with the above annealed oligonucleotides (RW145 and RW146) containing HindIII, SmaI, and EcoRI restriction sites.
狂犬病G遺伝子(テイラーら、1988b)並列3′を含有するSmaI断片をワクチニアウイルスH6プロモーターに挿入することによりpRW831からプラスミドpRW838を誘導した。pRW837からの1.8kbpのEcoRV/EcoRI断片をpRW838からの3.2kbpのEcoRV/EcoRI断片に連結することによりプラスミドpRW852を構成した。プラスミドpRW852を、ALVACと称するカナリヤポックス単離体による組換え実施例に用いてvCP85を産生した。ALVACは、カナリヤのワクチン接種に用いられるカナリヤポックスウイルス(CPV)の非常に弱毒化した菌株である、レントシュラー菌株から誘導したCPVのプラーククローン単離体である。ALVACおよび誘導組換え体の複製は、鳥類種に制限されている。家ウサギ抗HA血清により認識される約75kdのタンパク質が組換え体vCP85に感染したCEF細胞中に発現されることがイムノプレシピテーション分析により確認された。 Plasmid pRW838 was derived from pRW831 by inserting a SmaI fragment containing the rabies G gene (Taylor et al., 1988b) side-by-side 3 'into the vaccinia virus H6 promoter. Plasmid pRW852 was constructed by ligating the 1.8 kbp EcoRV / EcoRI fragment from pRW837 to the 3.2 kbp EcoRV / EcoRI fragment from pRW838. Plasmid pRW852 was used in a recombinant example with a canarypox isolate designated ALVAC to produce vCP85. ALVAC is a plaque clone isolate of CPV derived from the Rentschler strain, which is a highly attenuated strain of canarypox virus (CPV) used for vaccination of canary. The replication of ALVAC and induced recombinants is restricted to avian species. Immunoprecipitation analysis confirmed that an approximately 75 kd protein recognized by home rabbit anti-HA serum was expressed in CEF cells infected with recombinant vCP85.
ここで第8図を参照する。MV HAおよびF遺伝子の両方を含有するカナリヤポックスウイルス組換え体を産生するために、以下の構成物を生成した。SmaI制限部位をH6プローモートした麻疹融合遺伝子の末端に加えた。これを行なうために、ワクチニアウイルスH6プロモーターを含有するpIBI25であるpRW823をXbaI部位のプロモーター配列の下流で切断した。その末端を、2mMのdNTPの存在下でE.coli DNAポリメラーゼのクレノー断片で鈍端とした。鈍端DNAを続いてNruIで切断して、H6プロモーターの5′末端側の100bpを含有する3.0kbp断片を離生した。この断片を単離して、pSPMF75からの1.7kbpの鈍端EagI/NruI断片に連結した。生成したプラスミドをpRW841と称した。 Reference is now made to FIG. In order to produce canarypox virus recombinants containing both MV HA and F genes, the following constructs were generated. A SmaI restriction site was added to the end of the H6 promoted measles fusion gene. To do this, pRW823, pIBI25 containing the vaccinia virus H6 promoter, was cut downstream of the promoter sequence at the XbaI site. The ends were E. coli in the presence of 2 mM dNTPs. The DNA was blunted with a Klenow fragment of E. coli DNA polymerase. The blunt end DNA was subsequently cut with NruI to regenerate a 3.0 kbp fragment containing 100 bp at the 5 'end of the H6 promoter. This fragment was isolated and ligated to the 1.7 kbp blunt EagI / NruI fragment from pSPMF75. The resulting plasmid was called pRW841.
pRW841の切断により誘導された1.8kbpのSmaI断片をC5欠損ベクター、pRW831中に挿入した。プラスミドpRW851を、3′末端を融合遺伝子に位置させたEcoRI部位で線状にして、2mMのdNTPの存在下でE.coli DNAポリメラーゼのクレノー断片で鈍端とした。H6プロモーター配列に対して麻疹HA遺伝子並列3′末端を含有するプラスミドpRW837をHindIIIおよびEcoRIで切断して、クレノー断片で鈍端とした。生成した1.8kbp断片を単離して、EcoRIで線状にされ鈍端となったpRW851中に挿入した。生成したプラスミドは尾から尾の配置に両方の遺伝子を含有し、これをpRW853Aと称し、レスキューイングウイルスとしてのカナリヤポックス(ALVAC)による生体外組換え実験において用い、vCP82を産生し、これをALVAC−MVと称した。イムノプレシピテーションおよびイムノフルオレセンスを用いた発現分析により、組換え体vCP82に感染した細胞中において、真正に処理したHAおよびFタンパク質が発現されたことが確認された。組換え体は細胞融合活性について機能的であった。 The 1.8 kbp SmaI fragment derived by cleavage of pRW841 was inserted into the C5-deficient vector, pRW831. Plasmid pRW851 was linearized at the EcoRI site with the 3 'end located in the fusion gene and E. coli in the presence of 2 mM dNTPs. The DNA was blunted with a Klenow fragment of E. coli DNA polymerase. Plasmid pRW837 containing the measles HA gene juxtaposed 3 'end to the H6 promoter sequence was cut with HindIII and EcoRI and blunted with Klenow fragment. The resulting 1.8 kbp fragment was isolated and inserted into pRW851, which was linearized with EcoRI and blunted. The resulting plasmid contains both genes in a tail-to-tail configuration, referred to as pRW853A, and used in in vitro recombination experiments with canarypox (ALVAC) as a rescue virus to produce vCP82, which is used as ALVAC. -It was called MV. Expression analysis using immunoprecipitation and immunofluorescence confirmed that authentic treated HA and F proteins were expressed in cells infected with recombinant vCP82. The recombinant was functional for cell fusion activity.
ALVAC−MV(vCP82)を接種したモルモットと家ウサギの血清の血清分析結果
4匹のモルモットにALVAC−MV(vCP82)を皮下経路で接種した。2匹のモルモット(026および027)にそれぞれ1×108pfuを接種し、もう2匹のモルモット(028および029)にはそれぞれ1×107pfuを接種した。28日後に、モルモットに同一量を再接種した。2匹の家ウサギに、皮下経路で1×108のALVAC−MV(vCP82)を接種した。28日後に、家ウサギに同一量を再接種した。アペルとロビンソン(1973)により記載されたマイクロタイタ中和試験またはアルブレフトら(1981)により記載されたプラーク低減中和試験のいずれかを用いて、これらの動物の連続的な流血を、麻疹ウイルス中和活性について分析した。加えて、マーツら(1980)に記載されたように行なった抗融合検定において麻疹ウイルス誘導細胞−細胞融合を阻害できる抗体の存在について、血清を分析した。
Serum analysis results of sera from guinea pigs and domestic rabbits inoculated with ALVAC-MV (vCP82) Four guinea pigs were inoculated with ALVAC-MV (vCP82) by the subcutaneous route. Two guinea pigs (026 and 027) were each inoculated with 1 × 10 8 pfu, and the other two guinea pigs (028 and 029) were inoculated with 1 × 10 7 pfu, respectively. After 28 days, guinea pigs were re-inoculated with the same amount. Two domestic rabbits were inoculated with 1 × 10 8 ALVAC-MV (vCP82) by the subcutaneous route. After 28 days, the rabbits were re-inoculated with the same amount. Using either the microtiter neutralization test described by Apel and Robinson (1973) or the plaque reduction neutralization test described by Albrevt et al. (1981), the continuous blood flow of these animals was measured in measles virus. The sum activity was analyzed. In addition, sera were analyzed for the presence of antibodies capable of inhibiting measles virus-induced cell-cell fusion in an anti-fusion assay performed as described by Marz et al. (1980).
麻疹ウイルス血清中和抗体の存在についての分析結果を表6および7に示す。1×108のALVAC−MVを接種されたモルモット(026および027)の両方は1回の接種後に血清転化して、血清は追加抗原投与の接種後に抗体の上昇を示した。1×107pfuを接種された1匹のモルモット(029)はまた、1回の接種後に血清転化した。4匹めのモルモットは、1回の接種後に検知可能な応答を示さなかったが、2回の接種後に等量の力価を達成した。 The analysis results for the presence of measles virus serum neutralizing antibodies are shown in Tables 6 and 7. Both guinea pigs (026 and 027) inoculated with 1 × 10 8 ALVAC-MV seroconverted after one inoculation and the sera showed an increase in antibody after the booster inoculation. One guinea pig (029) inoculated with 1 × 10 7 pfu also seroconverted after one inoculation. The fourth guinea pig showed no appreciable response after the first inoculation but achieved an equivalent titer after the second inoculation.
プラーク低減中和法を用いて家ウサギの血清もまた分析した。結果を表7に示す。両方の動物は1回の接種後に血清転化した。家ウサギ063の血清を、マイクロタイタ中和試験およびプラーク低減中和試験の両方により試験した。両方の方法を用いて得られた力価は同じであった。病気からの防御には、ワクチン接種した子供に1.2 から1.9 の最小限の血清中和力価が必要であることが報告されている(レノンおよびブラック、1986;ブラックら、1984)。この分類基準を用いて、2回の接種まで血清転化を示さなかった1匹のモルモットを除いて全ての動物が、1回の接種後に防御水準の抗体を示した。
不活性化したワクチンは、乏しい防御効能およびウイルスへの再露出で高められた麻疹病に関連することが以前に研究により示されている。不活性ワクチンの宿主は融合タンパク質に対する抗体がないことを示し、不活性化工程がタンパク質を非免疫遺伝にすることが提議されている(ノービーおよびゴルマー、1975;ノービーら、1975)。加えて、他のパラミクソウイルスに関して、Fタンパク質に対する抗体が組織培養中のウイルスの細胞から細胞への拡散を促成でき、一方血球凝集素成分に対する抗体はそのようにはできないことが示されている(マーツら、1980)。 Previous studies have shown that inactivated vaccines are associated with measles disease that is enhanced by poor protective efficacy and re-exposure to the virus. Inactive vaccine hosts show no antibodies to the fusion protein and it has been proposed that the inactivation process renders the protein non-immune inherited (Noby and Golmer, 1975; Noby et al., 1975). In addition, with respect to other paramyxoviruses, it has been shown that antibodies against F protein can promote cell-to-cell spread of viruses in tissue culture, whereas antibodies against hemagglutinin components cannot. (Marts et al., 1980).
それゆえ、ALVAC−MV(vCP82)を接種した動物が、麻疹ウイルスの細胞から細胞への伝染を阻害できるFタンパク質に対する抗体を誘発できたことを示すことは重大であった。この抗融合検定の結果を表8に示す。抗融合活性は、ALVAC−MV(vCP82)を接種したモルモットと家ウサギの両方の血清において明白であった。分析した血清は、追加抗原投与の接種後2または3週間で採取した。ALVAC親ウイルスを接種した家ウサギの血清中には、どの抗融合活性も検出できなかった。
ALVAC−MVを接種した動物の血清中のMV血球凝集素およびMV融合タンパク質の両方に対する抗体の存在を示すさらなる試験において、イムノプレシピテーション実験を行なった。ALVAC−MVを接種した家ウサギの血清は、エドモンストン菌株MVを接種したベロ細胞の放射線標識した溶解産物からの血球凝集素および融合タンパク質の両方を特異的に沈殿せしめることが示された。 In a further study showing the presence of antibodies against both MV hemagglutinin and MV fusion protein in the serum of animals inoculated with ALVAC-MV, immunoprecipitation experiments were performed. Sera from home rabbits inoculated with ALVAC-MV were shown to specifically precipitate both hemagglutinin and fusion proteins from radiolabeled lysates of Vero cells inoculated with Edmonstone strain MV.
同様の研究において、モルモット、家ウサギおよびネズミの群を、筋肉内にALVAC−MVを接種し、麻疹ウイルスに対するそれらの血清反応について、血球凝集−阻害(HI)試験を用いてモニターした。カナリヤポックスウイルスに対する血清反応はELISA検定によりモニターした。この研究において、5匹のモルモットに5.5 log10TCID50を接種し、30匹のネズミに4.8 log10TCID50を接種し、5匹の家ウサギに5.8 log10TCID50を接種した。全ての動物に、28日後に等量を再接種した。動物を規則的な間隔で出血させ、麻疹ウイルスに対するそれらの反応をHI検定で評価した。HI検定における検出限界は、1のlog10力価に対応し、血清陽性(防御)の子供は1.6 から2.8 の範囲の血清力価を有すると考えられる。分析結果を表9、10および11に示す。 In a similar study, groups of guinea pigs, domestic rabbits and mice were inoculated intramuscularly with ALVAC-MV and their serum response to measles virus was monitored using a hemagglutination-inhibition (HI) test. Serum response to canarypox virus was monitored by ELISA assay. In this study, 5 guinea pigs were inoculated with 5.5 log 10 TCID 50 , 30 mice were inoculated with 4.8 log 10 TCID 50 , and 5 domestic rabbits were inoculated with 5.8 log 10 TCID 50 . All animals were re-inoculated with an equal volume after 28 days. The animals were bled at regular intervals and their response to measles virus was assessed by HI test. The limit of detection in the HI test corresponds to a log 10 titer of 1 and seropositive (protective) children are considered to have a serum titer ranging from 1.6 to 2.8. The analysis results are shown in Tables 9, 10 and 11.
ネズミの血清を5つの動物の群に別けて分析した(表9)。全ての動物は、2回目の接種後に追加抗原投与したカナリヤポックスウイルスに対して初期の応答を示した。ネズミは1回の接種後にはMVに対する応答を示さなかった。6つの群のうち3つの群が、接種後8週間で防御範囲内の力価を示した。同様に、全てのモルモット(表10)が、2回目の接種後に追加抗原投与した1回目の接種後のカナリヤポックスウイルスに対して応答を示した。5匹の動物のうち4匹が1回の接種後に抗HI力価を発生させ、これらのうち1つが防御範囲内にあった。2回目の接種の1週間後、全ての動物の力価が防御範囲内にあった。これらの力価は、実験を終了した接種後8週間まで保持された。ALVAC−MV(vCP82)を接種した全ての家ウサギ(表11)は、カナリヤポックス接種に対して血清学的に反応した。5匹の動物のうち4匹が1回の接種後に麻疹ウイルスに対して血清転化した(そのうち1つが防御範囲内にあった)。全ての動物の血清力価は、2回目の接種後1週間で防御範囲内にあった。
ALVAC−MV(vCP82)を接種したリスサル(squirrel monkey)の血清の血清分析の結果:麻疹ウイルス特異免疫反応の誘発におけるポックスウイルスへの露出前の感染
9匹のリスサル(Saimiri sciureus)にALVAC−MV(vCP82)を接種した。全てのサルは麻疹ウイルスに対する経験がなかった。7匹のサルをワクチニアウイルスおよび/またはカナリヤポックスウイルスに先に露出した。先の免疫の経歴を表12に示す。皮下経路により5.8 log10pfuの量を全てのサルに接種した。4匹のサル(39、42、53および58)に、最初の接種から15週間後に等量を再接種した。HI試験により抗麻疹抗体を測定した。その結果を表12に示す。
Results of sera analysis of squirrel monkey sera inoculated with ALVAC-MV (vCP82): infection before exposure to poxvirus in the induction of measles virus specific immune response Nine squirrel monkeys (ALVAC-MV) (VCP82) was inoculated. All monkeys had no experience with measles virus. Seven monkeys were previously exposed to vaccinia virus and / or canarypox virus. The previous immunization history is shown in Table 12. All monkeys were inoculated with an amount of 5.8 log 10 pfu by the subcutaneous route. Four monkeys (39, 42, 53 and 58) were re-inoculated with an equal volume 15 weeks after the first inoculation. Anti-measles antibody was measured by HI test. The results are shown in Table 12.
最初の接種後、9匹のうち2匹のサルはALVAC−MVの接種に対して低い反応を示した。2回目の接種後、再接種した4匹のサルを防御免疫に必要な範囲の著しい抗体力価で血清転化した。達成された力価は、サルがワクチニウウイルスおよびALVACへの先に露出されたかまたは全くポックスウイルスに露出しなかったかに対応する。
実施例15−弱毒化ワクチニアワクチン菌株NYVAC
新たなワクチニアワクチン菌株を発生させるために、既知のまたは潜在的な毒性要因をコードするゲノムの6つの可欠領域を欠損せしめることによりワクチニアウルイスのコペンハーゲンワクチン菌株を変性した。配列欠損を以下詳細に示す。ワクチニア制限断片、読み取り枠およびヌクレオチド位置の全ての名称は、ゲーベルら(1990a、b)に報告されている用語に基づく。
Example 15-Attenuated Vaccinia Vaccine Strain NYVAC
In order to generate a new vaccinia vaccine strain, the Copenhagen vaccine strain of vaccinia lewis was denatured by deleting six essential regions of the genome encoding known or potential virulence factors. The sequence defects are shown in detail below. All names of vaccinia restriction fragments, open reading frames and nucleotide positions are based on the terms reported in Goebel et al. (1990a, b).
異種遺伝子の挿入の受容座として欠損座も生成した。 A defective locus was also generated as a receptor for insertion of heterologous genes.
NYVAC中に配列欠損した領域を以下に列記する。欠損領域の短縮形および読み取り枠の名称(ゲーベルら、1990a、b)並びに以下に特定した欠損の全ての欠損を含有するワクチニア組換え体(vP)の名称もまた列記する:
(1) チミジンキナーゼ(TK;J2R)vP410;
(2) 出血性領域(u;B13R+B14R)vP553;
(3) 型封入体領域(ATI;A26L)vP618;
(4) 血球凝集素遺伝子(HA;A56R)vP723;
(5) 宿主域遺伝子領域(C7L−K1L)vP804; および
(6) 大サブユニット、リボヌクレオチド還元酵素(I4L)
vP866(NYVAC)。
The regions lacking sequence in NYVAC are listed below. The abbreviation of the defect region and the name of the open reading frame (Gobel et al., 1990a, b) and the name of the vaccinia recombinant (vP) containing all the defects of the defect identified below are also listed:
(1) Thymidine kinase (TK; J2R) vP410;
(2) Hemorrhagic region (u; B13R + B14R) vP553;
(3) type inclusion body region (ATI; A26L) vP618;
(4) hemagglutinin gene (HA; A56R) vP723;
(5) a host range gene region (C7L-K1L) vP804; and
(6) Large subunit, ribonucleotide reductase (I4L)
vP866 (NYVAC).
DNAクローニングおよび合成
標準的な方法によりプラスミドを構成し、スクリーニングし、成長せしめた(マニアチスら、1986;パーカスら、1985;ピッチーニら、1987)。制限エンドグルカナーゼを、メリーランド州、ゲイサースブルク、GIBCO/BRL;マサチューセッツ州、ビバーリー、ニューイングランドバイオラボ;およびインディアナ州、インディアナポリス、ベーリンガーマンハイムバイオケミカルスから得た。BAL−31エキソヌクレアーゼおよびファージT4 DNAリガーゼはニューイングランドバイオラボから得た。試薬は様々な供給者により明示されたものとして用いた。合成オリゴデオキシリボヌクレオチドを、前述したようにバイオサーチ8750またはアプライドバイオシステムス380B DNAシンセサイザーにより調製した(パーカスら、1989)。DNAの塩基配列決定は、前述したように(グオら、1989)、シーケナーゼ(タバーら、1987)を用いたジデオキシ鎖終止法(サンガーら、1977)により行なった。配列を証明する(エンゲルケら、1988)ポリメラーゼ鎖反応(PCR)によるDNA増幅は、自動化パーキンエルマーセタスDNAサーマルサイクラー中の注文合成オリゴヌクレオチドプライマーおよびジェネアンプDNA増幅試薬キット(パーキンエルマーセタス、ノルウォーク、CT)を用いて行なった。過剰のDNA配列は、制限エンドヌクレアーゼ切断によりプラスミドから欠損せしめ、それに続いてBAL−31エキソヌクレアーゼによる制限切断並びに合成オリゴヌクレオチドを用いた突然変異誘発(マンデックら、1986)を行なった。
DNA cloning and synthesis Plasmids were constructed, screened, and grown by standard methods (Maniatis et al., 1986; Percus et al., 1985; Pitchini et al., 1987). Restricted endoglucanases were obtained from Maryland, Gaithersburg, GIBCO / BRL; Massachusetts, Beverly, New England Biolabs; and Indiana, Indianapolis, Boehringer Mannheim Biochemicals. BAL-31 exonuclease and phage T4 DNA ligase were obtained from New England Biolabs. Reagents were used as specified by various suppliers. Synthetic oligodeoxyribonucleotides were prepared on a Biosearch 8750 or Applied Biosystems 380B DNA synthesizer as previously described (Percus et al., 1989). As described above (Guo et al., 1989), the DNA base sequence was determined by the dideoxy chain termination method (Sanger et al., 1977) using Sequenase (Tabar et al., 1987). Proof of sequence (Engelke et al., 1988) DNA amplification by polymerase chain reaction (PCR) was performed using a custom synthesized oligonucleotide primer and gene amp DNA amplification reagent kit (Perkin Elmer Cetus, Norwalk, in an automated Perkin Elmer Cetus DNA thermal cycler. CT). Excess DNA sequence was deleted from the plasmid by restriction endonuclease digestion, followed by restriction digestion with BAL-31 exonuclease and mutagenesis using synthetic oligonucleotides (Mandec et al., 1986).
細胞、ウイルス、およびトランスフェクション
ワクチニアウイルスのコペンハーゲン菌株の培養の条件と起源が以前に記載されている(グオら、1989)。組換えによる組換え体ウイルスの産生、ニトロセルロースフィルターの現場での雑種形成およびベータガラクトシダーゼ活性のスクリーニングは以前に記載している(パニカリら、1982;パーカスら、1989)。
Cells, Viruses, and Transfection Culture conditions and origin of the Copenhagen strain of vaccinia virus have been previously described (Guo et al., 1989). Production of recombinant virus by recombination, in situ hybridization of nitrocellulose filters and screening for beta-galactosidase activity has been described previously (Panikari et al., 1982; Percuss et al., 1989).
チミジンキナーゼ遺伝子(J2R)の欠損したプラスミドpSD460の構成
ここで第9図を参照する。プラスミドpSD406はpUC8中にクローンされたワクチニアHindIII J(位置83359−88377)を含有する。pSD406まをHindIIIおよびPvuIIで切断し、HindIII Jの左側から1.7kbの断片をHindIII/SmaIで切断したpCU8中にクローンして、pSD447を形成した。pSD447はJ2Rの完全な遺伝子(位置83855−84385)を含有する。開始コードンはNlaIII部位内に含有され、終止コードンはSspI部位内に含有される。転写の方向は第9図中の矢印により示される。
Construction of plasmid pSD460 lacking thymidine kinase gene (J2R) Reference is now made to FIG. Plasmid pSD406 contains vaccinia HindIII J (position 83359-88377) cloned into pUC8. pSD406 was cut with HindIII and PvuII, and a 1.7 kb fragment from the left side of HindIII J was cloned into pCU8 cut with HindIII / SmaI to form pSD447. pSD447 contains the complete gene for J2R (position 83855-84385). The initiation coden is contained within the NlaIII site and the termination coden is contained within the SspI site. The direction of transcription is indicated by the arrow in FIG.
左の側腹アームを得るために、0.8kbのHindIII/EcoRI断片をpSD447を単離し、次いでNlaIIIで切断し、0.5kbのHindIII/NlaIII断片を単離した。アニールした合成オリゴヌクレオチドNPSYN43/MPSYN44(配列番号17/配列番号18)
を0.5kbのHindIII/NlaIII断片と連結せしめ、HindIII/EcoRIで切断したpUC18ベクタープラスミド中に挿入し、プラスミドpSD449を産生した。 Was ligated with a 0.5 kb HindIII / NlaIII fragment and inserted into a pUC18 vector plasmid cut with HindIII / EcoRI to produce plasmid pSD449.
ワクチニア右側腹アームおよびpUCベクター配列を含有する制限断片を得るために、pSD447を、ワクチニア配列内のSspI(部分的)およびpUC/ワクチニア接合でのHindIIIで切断し、2.9kbのベクター断片を単離した。このベクター断片をアニールした合成オリゴヌクレオチドNPSYN45/MPSYN46(配列番号19/配列番号20)
と連結し、pSD459を産生した。 And produced pSD459.
左と右の側腹アームを1つのプラスミド中に結合せしめるために、0.5kbのHindIII/SmaI断片をpSD449から単離し、HindIII/SmaIで切断したpSD459ベクタープラスミドと連結し、プラスミドpSD460を産生した。野生型親ワクチニアウイルスコペンハーゲン菌株VC−2との組換えの供与体プラスミドとしてpSD460は用いられた。テンプレートとしてのMPSYN45(配列番号19)およびプライマーとしての相補的20merオリゴヌクレオチドMPSYN47(配列番号21)(5′−TTAGTTAATTAGGCGGCCGC−3′)を用いたプライマー・エクステンションにより32P標識プローブを合成した。組換えウイルスvP410を、プラーク雑種形成により同定した。 To join the left and right flank arms into one plasmid, a 0.5 kb HindIII / SmaI fragment was isolated from pSD449 and ligated with the HindIII / SmaI digested pSD459 vector plasmid to produce plasmid pSD460. . PSD460 was used as a donor plasmid for recombination with the wild-type parent vaccinia virus Copenhagen strain VC-2. A 32P-labeled probe was synthesized by primer extension using MPSYN45 (SEQ ID NO: 19) as a template and complementary 20-mer oligonucleotide MPSYN47 (SEQ ID NO: 21) (5'-TTAGTAATTTAGGCGGCCGC-3 ') as a primer. Recombinant virus vP410 was identified by plaque hybridization.
出血性領域(B13R+B14R)が欠損したプラスミドpSD486の構成
ここで第10図を参照する。プラスミドpSD419はpUC8中にクローンされたワクチニアSalI G(位置160,744−173,351)を含有する。pSD422は、その右側に隣接ワクチニアSalI断片、pUC8中にクローンされたSalI J(位置173,351−182,746)を含有する。出血性領域、u、B13R−B14R(位置172,549−173,552)が欠損したプラスミドを構成するために、左側腹アームの供給源としてpSD419を用い、右側腹アームの供給源としてpSD422を用いた。u領域の転写方向は第10図中の矢印で示した。
Construction of plasmid pSD486 lacking the hemorrhagic region (B13R + B14R) Reference is now made to FIG. Plasmid pSD419 contains vaccinia SalI G (position 160, 744-173, 351) cloned into pUC8. pSD422 contains a flanking vaccinia SalI fragment on its right, SalI J (positions 173, 351-182, 746) cloned into pUC8. In order to construct a plasmid lacking the hemorrhagic region, u, B13R-B14R (positions 172, 549-173, 552), pSD419 is used as the source of the left flank arm and pSD422 is used as the source of the right flank arm It was. The transcription direction of the u region is indicated by an arrow in FIG.
不必要な配列をpSD419から除去するために、pSD419をNcoI/SmaIでの切断により、NcoI部位(位置172,253)の左側の配列を除去し、続いてE.coliポリメラーゼのクレノー断片で鈍端とし、連結してプラスミドpSD476を産生した。B14Rの終止コードンでのpSD422のHpaIによる切断および右側の0.3kbのNruIによる切断によってワクチニア右側腹アームを得た。この0.3kbの断片を単離して、pSD476から単離した3.4kbのHincIIベクター断片と連結し、プラスミドpSD477を産生した。pSD477におけるワクチニアu領域の部分的な欠損の位置を三角形により示す。pSD477中の残りのB13R暗号配列は、ClaI/HpaIによる切断により除去し、生成したベクター断片を、アニールした合成オリゴヌクレオチドSD22mer/SD20mer(配列番号22/配列番号23)
と連結し、pSD479を産生した。pSD479はBmaHI部位により示された開始コードン(下線部)を含有する。uプロモーターの制御下でE.coliベータガラクトシダーゼをB13−B14(u)欠損座に配するために、ベータガラクトシダーゼ遺伝子を含有する3.2kbのBamHI断片(シャピラら、1983)をpSD479のBamHI部位中に挿入し、pSD479BGを産生した。pSD479BGは、ワクチニアウルイスvP410による組換えの供与体プラスミドとして用いた。色素基体Xギャルの存在下でブループラークとして組換えワクチニアウイルスvP533を単離した。vP533において、B13R−B14R領域は欠損され、ベータガラクトシダーゼにより置き換えられている。 And produced pSD479. pSD479 contains the initiation codon (underlined) indicated by the BmaHI site. under the control of the u promoter. To place the E. coli beta galactosidase at the B13-B14 (u) deletion locus, a 3.2 kb BamHI fragment containing the beta galactosidase gene (Shapira et al., 1983) was inserted into the BamHI site of pSD479, producing pSD479BG. . pSD479BG was used as a donor plasmid for recombination with vaccinia lewis vP410. Recombinant vaccinia virus vP533 was isolated as a blue plaque in the presence of dye substrate X gal. In vP533, the B13R-B14R region is deleted and replaced by beta-galactosidase.
vP533からベータガラクトシダーゼ配列を除去するために、ポリリンカー領域を含有するがu欠損接合部には開始コードンを含有しないpSD477の誘導体であるプラスミドpSD486を用いた。最初に上述したpSD477からのClaI/HpaIベクター断片をアニールした合成オリゴヌクレオチドSD42mer/SD40mer(配列番号24/配列番号25)
と連結し、プラスミドpSD478を産生した。次に、pUC/ワクチニア接合部でのEcoRI部位をpSD478のEcoRIによる切断により分断してE.coliポリメラーゼのクレノー断片により鈍端とし、連結してプラスミドpSD478E− を産生した。pSD478E− をBamHIとHpaIで切断し、アニールした合成オリゴヌクレオチドHEM5/HEM6(配列番号26/配列番号27)
と連結し、プラスミドpSD486を産生した。組換えワクチニアウイルスvP533の組換えの供与体プラスミドとしてpSD486を用いてvP553を産生し、このvP533をX−ギャルの存在下で透明プラークとして単離した。 To produce plasmid pSD486. PSD486 was used as a recombinant donor plasmid for recombinant vaccinia virus vP533 to produce vP553, which was isolated as a clear plaque in the presence of X-gal.
ATI領域(A26L)の欠損したプラスミドpMP494Δの構成
ここで第11図を参照する。pSD414はpUC8中にクローンされたSalI Bを含有している。A26L領域の左側の不必要なDNA配列を除去するために、pSD414を、ワクチニア配列内のXbaI(位置137,079)およびpUC/ワクチニア接合部でのHindIIIで切断し、E.coliポリメラーゼのクレノー断片により鈍端とし、連結してプラスミドpSD483を産生した。A26L領域の右側の不必要なDNA配列を除去するために、pSD483をEcoRI(位置140,665およびpUC/ワクチニア接合部)で切断して連結し、プラスミドpSD484を産生した。A26L暗号領域を除去するために、pSD484を、A26L ORFのやや上流のNdeI(位置139,004)(部分的)およびA26L ORFのやや下流のHpaI(位置137,889)で切断した。5.2kbのベクター断片を単離して、アニールした合成オリゴヌクレオチドATI3/ATI4(配列番号28/配列番号29)
と連結し、A26Lから上流の領域を再構成して上述したように制限部位BglII、EcoRIおよびHpaIを含有する短いポリリンカー領域でA26L ORFで置換した。生成したプラスミドをpSD485と称した。pSD485のポリリンカー領域におけるBglIIおよびEcoRI部位は特異ではないので、BglII(位置140,136)およびpUC/ワクチニア接合部でのEcoRIでの切断によって不必要なBglIIおよびEcoRI部位をプラスミドpSD483から除去し、続いてE.coliポリメラーゼのクレノー断片により鈍端とし、連結した。生成したプラスミドをpSD489と称した。A26L ORFを含有するpSD489からの1.8kbのClaI(位置137,198)/EcoRV(位置139,048)断片を、pSD485からの対応する0.7kbのポリリンカー含有ClaI/EcoRV断片と置換して、pSD492を産生した。pSD492のポリリンカー領域のBglIIおよびEcoRI部位は特異である。 And the region upstream from A26L was reconstituted and replaced with the A26L ORF with a short polylinker region containing the restriction sites BglII, EcoRI and HpaI as described above. The resulting plasmid was called pSD485. Since the BglII and EcoRI sites in the polylinker region of pSD485 are not unique, the unnecessary BglII and EcoRI sites were removed from plasmid pSD483 by cleavage with BglII (positions 140, 136) and EcoRI at the pUC / vaccinia junction; Subsequently, E.E. The blunt ends were ligated with the Klenow fragment of E. coli polymerase. The resulting plasmid was called pSD489. The 1.8 kb ClaI (position 137,198) / EcoRV (position 139,048) fragment from pSD489 containing the A26L ORF was replaced with the corresponding 0.7 kb polylinker-containing ClaI / EcoRV fragment from pSD485. PSD492 was produced. The BglII and EcoRI sites of the polylinker region of pSD492 are unique.
ワクチニア11 kDaプロモーター(バートレットら、1985;パーカスら、1990)の制御下でEcoliベータガラクトシダーゼ遺伝子を含有する3.3kbのBglIIカセッテ(シャピラら、1983)をpSD492のBglII部位に挿入して、pSD493KBGを産生した。レスキューイングウイルスvP553による組換えにプラスミドpSD493KBGを用いた。A26L欠損領域にベータガラクトシダーゼを含有する組換えワクチニアウイルスvP581をX−ギャルの存在下でブループラークとして単離した。
A 3.3 kb BglII cassette (Shapira et al., 1983) containing the Ecoli beta galactosidase gene under the control of the
ワクチニア組換えウイルスvP581からベータガラクトシダーゼ配列が除去されたプラスミドを産生するために、合成オリゴヌクレオチドMPSYN177(配列番号30)(5′−AAAATGGGCGTGGATTGTTAACTTTATATA−ACTTATTTTTTGAATATAC−3′)を用いた突然変異誘発(マンデック、1986)により、プラスミドpSD492のポリリンカー領域を欠損せしめた。生成したプラスミドであるpMP494Δにおいて、完全なA26L ORFを含有するワクチニアDNA包含位置[137,889−138,937]は欠損せしめられる。pMP494Δと、ワクチニア組換え体であるvP581を含有するベータガラクトシダーゼとの間の組換えによりワクチニア欠損突然変異体vP618が産生され、このvP618はX−ギャルの存在下で透明プラークとして単離される。 Mutagenesis (Mandeck, 1986) using synthetic oligonucleotide MPSYN177 (SEQ ID NO: 30) (5'-AAAAGGGGCGGTGTTAACTTTATATA-ACTTTTTTTTTGAATATAC-3 ') to produce a plasmid in which the beta-galactosidase sequence has been removed from vaccinia recombinant virus vP581 ), The polylinker region of plasmid pSD492 was deleted. In the resulting plasmid, pMP494Δ, the vaccinia DNA inclusion position [137, 889-138, 937] containing the complete A26L ORF is deleted. Recombination between pMP494Δ and beta-galactosidase containing the vaccinia recombinant vP581 produces a vaccinia-deficient mutant vP618, which is isolated as a clear plaque in the presence of X-gal.
血球凝集素遺伝子(A56R)が欠損したプラスミドpSD467の構成
ここで第12図を参照する。ワクチニアSalI G制限断片(位置160,744−173,351)はHindIII A/B接合部(位置162,539)を交雑する。pSD419はpUC8中にクローンされたワクチニアSalI Gを含有している。血球凝集素(HA)遺伝子の転写方向は、第12図中の矢印により示されている。ワクチニア配列内のおよびpUC/ワクチニア接合部でのHindIIIによりpSD419の切断によりHindIII Bから誘導されたワクチニア配列を除去し、次いで連結した。生成したプラスミドであるpSD456は、HA遺伝子、A56Rを含有し、左側に0.4kbのワクチニア配列並びに右側に0.4kbのワクチニア配列をその側腹に有する。A56R暗号配列から上流のRsaI(部分的;位置161,090)、および遺伝子の近傍のEagI(位置162,054)でpSD456を切断することによりA56R暗号配列を除去した。pSD456からの3.6kbのRsaI/EagIベクター断片を単離し、アニールした合成オリゴヌクレオチドMPSYN59(配列番号31)、MPSY62(配列番号32)、MPSYN60(配列番号33)、およびMPSYN61(配列番号34)
と連結し、A56R ORFから上流のDNA配列を再構成し、上述したようにA56R ORFをポリリンカー領域で置換した。生成したプラスミドはpSD466である。pSD466の欠損したワクチニアは、位置[161,185−162,053]を包含する。pSD466の欠損
した部位は第12図中の三角形により示されている。
And reconstructed the DNA sequence upstream from the A56R ORF, replacing the A56R ORF with the polylinker region as described above. The resulting plasmid is pSD466. A vaccinia deficient in pSD466 encompasses positions [161, 185-162, 053]. The site lacking pSD466 is indicated by the triangle in FIG.
ワクチニア11 kDaプロモーター(バートレットら、1985;グオら、1989)の制御下でE.coliベータガラクトシダーゼ遺伝子を含有する3.2kbのBglII/BamHIカセッテ(部分的)(シャピラら、1983)をpSD466のBglII部位に挿入して、pSD466KBGを産生した。プラスミドpSD466KBGをレスキューイングウイルスvP618による組換えに用いた。A56R欠損部にベータガラクトシダーゼを含有する組換えワクチニアウイルスであるvP708をX−ギャルの存在下でブループラークとして単離した。
E. coli under the control of the
供与体プラスミドpSD467を用いてベータガラクトシダーゼ配列をvP708から欠損せしめた。pSD466のEcoRI/BamHIによる切断によりpUC/ワクチニア接合部からEcoRI、SmaIおよびBamHI部位が除去されて、続いてE.coliポリメラーゼのクルノー断片で鈍端とされて連結されたことを除いては、pSD467はpSD466と等しい。vP708とpSD467との間の組換えにより、組換えワクチニア欠損変異体、vP723が産生され、そのvP723はX−ギャルの存在下で透明プラークとして単離された。 The donor galactosidase sequence was deleted from vP708 using the donor plasmid pSD467. Cleavage of pSD466 with EcoRI / BamHI removed the EcoRI, SmaI and BamHI sites from the pUC / vaccinia junction, followed by E. coli. pSD467 is equal to pSD466 except that it is blunted and ligated with a Klenow fragment of E. coli polymerase. Recombination between vP708 and pSD467 produced a recombinant vaccinia-deficient mutant, vP723, which was isolated as a clear plaque in the presence of X-gal.
読み取り枠[C7L−K1L]が欠損したプラスミドpMPCSK1Δの構成
ここで第13図を参照する。pMPCSK1Δの構成に以下のワクチニアクローンを用いた。pSD420はpUC8中にクローンされたSalI Hである。pSD435はpUC18中にクローンされたKpnI Fである。pSD435をSphIで切断して再連結し、pSD451を産生した。pSD451において、HindIII M中のSphI部位(位置27,416)の左側のDNA配列は除去される(パーカスら、1990)。pSD409はpUC8中にクローンされたHindIII Mである。 ワクチニアからの[C7L−K1L]遺伝子クラスターの欠損した基質を提供するために、E.coliベータガラクトシダーゼを以下のようにワクチニアM2L欠損座中に挿入した(グオら、1990)。pSD409中のBglII部位を除去するために、ワクチニア配列中のBglII(位置28,212)およびpUC/ワクチニア接合部でのBamHIでプラスミドを切断し、次いで連結してプラスミドpMP409Bを産生した。pMP409Bを特異SphI部位で切断した(位置27,416)。合成オリゴヌクレオチド
を用いた突然変異誘発(グオら、1990;マンデック、1986)によりM2L暗号配列を除去した。 The M2L coding sequence was removed by mutagenesis using (Guo et al., 1990; Mandeck, 1986).
生成したプラスミド、pMP409Dは、上述したようにM2L欠損座に挿入された特異BglII部位を含有する。11 kDaプロモーターの制御下(バートレットら、1985)でE.coliベータガラクトシダーゼ遺伝子を含有する3.2kbのBamHI(部分的)/BglIIカセッテ(シャピラら、1985)を、BglIIで切断したpMP409D中に挿入した。生成したプラスミドpMP409DBG(グオら、1990)は、レスキューイングワクチニアウイルスvP723による組換えの供与体プラスミドとして用いた。M2L欠損座中に挿入されたベータガラクトシダーゼを含有する組換えワクチニアウイルス、vP784を、X−ギャルの存在下でブループラークとして単離した。 The resulting plasmid, pMP409D, contains a unique BglII site inserted at the M2L deletion locus as described above. Under the control of the 11 kDa promoter (Bartlett et al., 1985). A 3.2 kb BamHI (partial) / BglII cassette (Shapil et al., 1985) containing the E. coli beta galactosidase gene was inserted into pMP409D cut with BglII. The resulting plasmid pMP409DBG (Guo et al., 1990) was used as a donor plasmid for recombination with rescue vaccinia virus vP723. A recombinant vaccinia virus, vP784, containing beta galactosidase inserted into the M2L deletion locus, was isolated as a blue plaque in the presence of X-gal.
ワクチニア遺伝子[C7L−K1L]が欠損したプラスミドをSmaI、HindIIIで切断したpUC8中に組み立て、E.coliポリメラーゼのクレノー断片で鈍端とした。ワクチニアHindIII C配列からなる左側腹アームは、pSD420のXbaI(位置18,628)での切断により得て、次いでE.coliポリメラーゼのクレノー断片で鈍端とし、BglII(位置19,706)で切断した。ワクチニアHindIII K配列からなる右側腹アームをBglII(位置29,062)およびEcoRV(位置29,778)でのpSD451の切断により得た。生成したpMP581CKは、HindIII C中のBglII部位(位置19,706)とHindIII K中のBglII部位(位置29,062)との間のワクチニア配列が欠損している。プラスミドpMP581CK中のワクチニア配列の欠損した部位を、第13図中に三角形で示す。 A plasmid lacking the vaccinia gene [C7L-K1L] was assembled into pUC8 cut with SmaI and HindIII. It was blunted with a Klenow fragment of E. coli polymerase. The left flank arm consisting of the vaccinia HindIII C sequence was obtained by cleavage of pSD420 at XbaI (position 18, 628) and then E. coli. It was blunted with Klenow fragment of E. coli polymerase and cut with BglII (position 19,706). The right flank arm consisting of the vaccinia HindIII K sequence was obtained by cleavage of pSD451 with BglII (position 29,062) and EcoRV (position 29,778). The generated pMP581CK lacks the vaccinia sequence between the BglII site in HindIII C (position 19,706) and the BglII site in HindIII K (position 29062). The site lacking the vaccinia sequence in the plasmid pMP581CK is indicated by a triangle in FIG.
ワクチニア欠損接合部での過剰のDNAを除去するために、プラスミドpMP581CKをワクチニア配列内のNcoI部位(位置18,811;19,655)で切断し、Bal31エキソヌクレアーゼで処理し、合成オリゴヌクレオチドMPSYN233(配列番号36)5′−TGTCATTTAACACTA−TACTCATATTAATAAAAATAATATTTATT−3′を用いた突然変異誘発(マンデック、1986)を施した。生成したプラスミドpMPCSK1Δは、12ワクチニア読み取り枠[C7L−K1L]を包含するワクチニア配列位置18,805−29,108が欠損している。pMPCSK1Δと、ワクチニア組換え体vP784を含有するベータガラクトシダーゼとの間の組換えにより、ワクチニア欠損変異体vP804が産生され、そのvP804は、X−ギャルの存在下で透明プラークとして単離された。 To remove excess DNA at the vaccinia-deficient junction, plasmid pMP581CK was cut at the NcoI site within the vaccinia sequence (positions 18, 811; 19,655), treated with Bal31 exonuclease, and the synthetic oligonucleotide MPSYN233 ( SEQ ID NO: 36) Mutagenesis (Mandeck, 1986) was performed using 5'-TGTCATTTAACACTA-TACTCATATTAATAAAAAATAATTTTATT-3 '. The resulting plasmid pMPCSK1Δ lacks vaccinia sequence positions 18,805-29,108, which includes 12 vaccinia open reading frames [C7L-K1L]. Recombination between pMPCSK1Δ and beta-galactosidase containing vaccinia recombinant vP784 produced vaccinia-deficient mutant vP804, which was isolated as a clear plaque in the presence of X-gal.
大ユニットのリボヌクレオチド還元酵素(I4L)が欠損したプラスミドpSD548の構成
ここで第14図を参照する。プラスミドpSD405はpUC8内にクローンされたワクチニアHindIIII(位置63,875−70,367)を含有している。pSD405をワクチニア配列内のEcoRV(位置67,933)およびpUC/ワクチニア接合部でのSmaIで切断して連結し、プラスミドpSD518を産生した。pSD548の構成に用いた全てのワクチニア制限断片の供給源としてpSD518を用いた。
Construction of plasmid pSD548 lacking a large unit of ribonucleotide reductase (I4L) Reference is now made to FIG. Plasmid pSD405 contains vaccinia HindIII (positions 63, 875-70, 367) cloned into pUC8. pSD405 was ligated by cutting with EcoRV (position 67,933) within the vaccinia sequence and SmaI at the pUC / vaccinia junction to produce plasmid pSD518. pSD518 was used as the source of all vaccinia restriction fragments used in the construction of pSD548.
ワクチニアI4L遺伝子は位置67,371−65,059に亘る。I4Lの転写方向を第14図中の矢印により示す。I4L暗号配列の部分が欠損したベクタープラスミド断片を得るために、pSD518をBamHI(位置65,381)およびHpaI(位置67,001)で切断し、E.coliポリメラーゼのクレノー断片を用いて鈍端とした。この4.8kbのベクター断片を、ワクチニア11kDaプロモーター(バートレットら、1985;パーカスら、1990)の制御下でE.coliベータガラクトシダーゼ遺伝子(シャピラら、1983)を含有する3.2kbのSmaIカセッテに連結して、プラスミドpSD524KBGを産生した。pSD524KBGは、ワクチニアウイルスvP804による組換えの供与体プラスミドとして用いた。I4L遺伝子が部分的に欠損したベータガラクトシダーゼを含有する組換えワクチニアウイルス、vP855を、X−ギャルの存在下でブループラークとして単離した。
The vaccinia I4L gene spans positions 67,371-65,059. The direction of I4L transcription is indicated by the arrow in FIG. To obtain a vector plasmid fragment lacking the I4L coding sequence, pSD518 was digested with BamHI (position 65,381) and HpaI (position 67,001). The blunt end was obtained using the Klenow fragment of E. coli polymerase. This 4.8 kb vector fragment was transformed into E. coli under the control of the
ベータガラクトシダーゼおよびvP855からのI4L ORFの残留物を除去するために、欠損プラスミドpSD548を構成した。左右のワクチニア側腹アームを、前述したようにpUC8中に別々に組み立て、第14図中に模式的に示した。 In order to remove the residues of I4L ORF from beta galactosidase and vP855, the defective plasmid pSD548 was constructed. The left and right vaccinia flank arms were assembled separately in pUC8 as described above and are shown schematically in FIG.
左ワクチニア側腹アームを受容するベクタープラスミドを構成するために、pUC8をBamHI/EcoRIで切断し、アニールした合成オリゴヌクレオチド518A1/518A2(配列番号37/配列番号38)
と連結し、プラスミドpSD531を産生した。pSD531をRsaI(部分的)およびBamHIで切断し、2.7kbのベクター断片を単離した。pSD518をBglII(位置64,459)/RsaI(位置64,994)で切断し、0.5kbの断片を単離した。2つの断片をともに連結し、pSD537を産生し、このpSD537はI4L暗号配列の左側に完全なワクチニア側腹アーム含有する。 To produce plasmid pSD531. pSD531 was cut with RsaI (partial) and BamHI and a 2.7 kb vector fragment was isolated. pSD518 was cut with BglII (position 64,459) / RsaI (position 64,994) and a 0.5 kb fragment was isolated. The two fragments are ligated together to produce pSD537, which contains the complete vaccinia flank arm to the left of the I4L coding sequence.
右ワクチニア側腹アームを受容するベクタープラスミドを構成するために、pUC8をBamHI/EcoRIで切断し、アニールした合成オリゴヌクレオチド518B1/518B2(配列番号39/配列番号40)
と連結し、プラスミドpSD532を産生した。pSD532をRsaI(部分的)/EcoRIで切断し、2.7kbのベクター断片を単離した。pSD518をワクチニア配列内のRsaI(位置67,436)およびワクチニア/pUC接合部のEcoRIで切断し、0.6kbの断片を単離した。2つの断片をともに連結し、pSD538を産生し、このpSD538はI4L暗号配列の右側に完全なワクチニア側腹アーム含有する。 And ligated to produce plasmid pSD532. pSD532 was cut with RsaI (partial) / EcoRI and a 2.7 kb vector fragment was isolated. pSD518 was cut with RsaI (position 67,436) within the vaccinia sequence and EcoRI at the vaccinia / pUC junction and a 0.6 kb fragment was isolated. The two fragments are ligated together to produce pSD538, which contains the complete vaccinia flank arm to the right of the I4L coding sequence.
右ワクチニア側腹アームをpSD538からの0.6kbのEcoRI/BglII断片として単離し、EcoRI/BglIIで切断したpSD537ベクタープラスミドに連結した。生成したプラスミド、pSD539において、I4L ORF(位置65,047−67,386)はポリリンカー領域と置き換えられ、その領域には、全てpUCを背景として、左側に0.6kbのワクチニアDNAを、右側に0.6kbのワクチニアDNAをその側腹に有する。ワクチニア配列内の欠損部位を第14図中の三角形で示す。pSD539のpUC誘導部分中のベータガラクトシダーゼ配列と組換えワクチニアウイルスvP855中のベータガラクトシダーゼ配列との起こり得る組換えを避けるために、ワクチニアI4L欠損カセッテをpSD539から取り出してpRC11中に組み込み、このpRC11は全てのベータガラクトシダーゼ配列が除去されたpUC誘導体であり、ポリリンカー領域により置き換えられる(コリナスら、1990)。pSD539をEcoRI/PstIで切断し、1.2kbの断片を単離した。この断片をEcoRI/PstIで切断したpRC11(2.35kb)に連結し、pSD548を産生した。pSD548とワクチニア組換え体、vP855を含有するベータガラクトシダーゼとの間の組換え体により、ワクチニア欠損変異体vP866が産生され、このvP866はX−ギャルの存在下で透明プラークとして単離された。 The right vaccinia flank arm was isolated as a 0.6 kb EcoRI / BglII fragment from pSD538 and ligated into the pSD537 vector plasmid cut with EcoRI / BglII. In the resulting plasmid, pSD539, the I4L ORF (positions 65, 047-67, 386) was replaced with a polylinker region, all of which had 0.6 kb vaccinia DNA on the left and pUC in the background, It has 0.6 kb vaccinia DNA on its flank. Deletion sites in the vaccinia sequence are indicated by triangles in FIG. To avoid possible recombination between the beta galactosidase sequence in the pUC-inducing portion of pSD539 and the beta galactosidase sequence in recombinant vaccinia virus vP855, a vaccinia I4L-deficient cassette was removed from pSD539 and incorporated into pRC11. A pUC derivative with all beta-galactosidase sequences removed and replaced by a polylinker region (Colinas et al., 1990). pSD539 was cut with EcoRI / PstI and a 1.2 kb fragment was isolated. This fragment was ligated to pRC11 (2.35 kb) cut with EcoRI / PstI to produce pSD548. A recombinant between pSD548 and a vaccinia recombinant, beta galactosidase containing vP855, produced a vaccinia-deficient mutant vP866, which was isolated as a clear plaque in the presence of X-gal.
組換えワクチニアウイルスvP866からのDNAを、制限切断により分析し、次いでアガロースゲルの電気泳動を行なった。制限模様は予期したものであった。テンプレートとしてvP866を用いたポリメラーゼ鎖反応(PCR)(エンゲルケら、1988)および上述した6つの欠損座を側腹に有するプライマーは、予期したサイズのDNA断片を産生した。欠損接合部の区域の辺りのPCR産生断片の配列分析により、接合部が予期したものであったことが確認された。譲受した6つの生成欠損を含有する組換えワクチニアウイルスvP866をワクチニアワクチン菌株「NYVAC」と称した。 DNA from recombinant vaccinia virus vP866 was analyzed by restriction digestion followed by agarose gel electrophoresis. The restriction pattern was what I expected. Polymerase chain reaction (PCR) using vP866 as a template (Engelke et al., 1988) and primers with the six deletion loci on the flank produced DNA fragments of the expected size. Sequence analysis of the PCR-produced fragments around the area of the defective junction confirmed that the junction was as expected. Recombinant vaccinia virus vP866 containing the 6 production defects transferred was designated vaccinia vaccine strain “NYVAC”.
実施例16−麻疹融合および血球凝集素糖タンパク質を発現するNYVAC−MV組換え体の構成
麻疹ウイルスMVのHAおよびFタンパク質(エドモンストン菌株)をコードする配列のcDNAコピーを、NYVAC中に挿入し、NYVAC−MV(vP913)と称する二重組換え体を産生した。組換え体は真正に、感染細胞の表面上に両方の麻疹糖タンパク質を発現した。イムノプレシピテーション分析は、FおよびHA糖タンパク質の両方の正確な処理方法を示した。組換え体はまた融合細胞形成を誘発することが分かった。
Example 16-Construction of NYVAC-MV Recombinant Expressing Measles Fusion and Hemagglutinin Glycoprotein A cDNA copy of the sequence encoding the measles virus MV HA and F proteins (Edmonston strain) was inserted into NYVAC. Produced a double recombinant designated NYVAC-MV (vP913). The recombinant authentically expressed both measles glycoproteins on the surface of infected cells. Immunoprecipitation analysis showed an accurate method for processing both F and HA glycoproteins. The recombinant was also found to induce fusion cell formation.
細胞およびウイルス
NYVAC−MVの産生に用いたレスキューイングウイルスは、NYVACと称するワクチニアウイルスの修飾コペンハーゲン菌株であった。全てのウイルスが成長し、ベロ細胞単層上で滴定された。
Cells and virus The rescued virus used for the production of NYVAC-MV was a modified Copenhagen strain of vaccinia virus designated NYVAC. All viruses grew and were titrated on Vero cell monolayers.
プラスミドの構成
ここで第15図およびテイラーらの文献(1991)を参照する。プラスミドpSPM2LHAは、正確なATG配列に対するATGの関係に、前述したワクチニアウイルスH6プロモーターと連結した完全麻疹HA遺伝子を含有している(テイラーら、1988a,b;グオら、1989;パーカスら、1989)。1.8kbpのEcoRV/SmaI断片は、正確なATG:ATG配列の関係に、3′末端側の26bpが欠損したHA遺伝子と融合したH6プロモーターの3′末端側の24bpを含有する。この断片を、pSPMHA11の1.8kbpのEcoRV/SmaI断片(テイラーら、1991)を置き換えてpRW803を産生するのに用いた。プラスミドpRW803は、正確に完全な麻疹HA遺伝子に連結した完全なH6プロモーターを含有する。
Plasmid Construction Reference is now made to FIG. 15 and Taylor et al. (1991). The plasmid pSPM2LHA contains the complete measles HA gene linked to the vaccinia virus H6 promoter described above in the relationship of ATG to the correct ATG sequence (Taylor et al., 1988a, b; Guo et al., 1989; Parkas et al., 1989). ). The 1.8 kbp EcoRV / SmaI fragment contains 24 bp at the 3 ′ end of the H6 promoter fused to the HA gene lacking 26 bp at the 3 ′ end in the correct ATG: ATG sequence relationship. This fragment was used to replace pSPMHA11's 1.8 kbp EcoRV / SmaI fragment (Taylor et al., 1991) to produce pRW803. Plasmid pRW803 contains the complete H6 promoter linked to the exact complete measles HA gene.
プラスミドpSD513VCVQを、ポリリンカー配列の転化によりプラスミドpSD460から誘導した。ワクチニアウイルスからのチミジンキナーゼ遺伝子を欠損させるようにプラスミドpSD460を誘導した(図9)。 Plasmid pSD513VCVQ was derived from plasmid pSD460 by conversion of the polylinker sequence. Plasmid pSD460 was induced to delete the thymidine kinase gene from vaccinia virus (FIG. 9).
麻疹ウイルスF遺伝子をHA挿入プラスミド中に挿入するために、pSPHMF7に操作を行なった。プラスミドpSPHM7(テイラーら、1991)は、前述したワクチニアウイルスH6プロモーターを3′の近位に有する麻疹F遺伝子を含有している。完全なATGに対するATG配列を達成し、プロモーターの3′末端と麻疹F遺伝子のATGとの間の介在配列を除去するために、オリゴヌクレオチドSPMAD(配列番号41)を用いてオリゴヌクレオチド定方向突然変異誘発を行なった。 To insert the measles virus F gene into the HA insertion plasmid, pSPHMF7 was manipulated. Plasmid pSPHM7 (Taylor et al., 1991) contains the measles F gene with the vaccinia virus H6 promoter described above 3 'proximal. Oligonucleotide directed mutation using oligonucleotide SPMAD (SEQ ID NO: 41) to achieve ATG sequence for complete ATG and eliminate intervening sequence between 3 'end of promoter and ATG of measles F gene Induction was performed.
SPMAD:5′−TATCCGTTAAGTTTGTATCGTAATGGGTCTCAAGGTGAACGTCT−3′
生成したプラスミドをpSPMF75M20と称した。
SPMAD: 5'-TATCCGTTAAGTTTGTATCGTAATGGGTCTCAAGGTGAACGTCT-3 '
The resulting plasmid was called pSPMF75M20.
正確なATGに対するATGの配列の関係でH6プロモーターと現在連結している麻疹F遺伝子を含有するプラスミドpSPMF75M20を、NruIとEagIで切断した。生成した、H6プロモーターの3′末端側の27bpおよび完全な融合細胞を含有する1.7kbpの鈍端断片を単離し、NruIとXbaIで切断し、鈍端とした中間プラスミドpRW823中に挿入した。SmaIでの切断によりH6/麻疹FカセッテをpRW841から除去し、生成した1.8kb断片をpRW843(麻疹HA遺伝子を含有する)中に挿入した。最初にプラスミドpRW843をNotIで切断し、2mMのdNTPの存在下でE.coli DNAポリメラーゼのクレノー断片で鈍端とした。それゆえ、生成したプラスミドpRW857は、尾対尾の配列で連結した麻疹ウイルスFおよびHA遺伝子を含有する。両方の遺伝子はワクチニアウイルスH6プロモーターに連結される。 Plasmid pSPMF75M20 containing the measles F gene currently linked to the H6 promoter in relation to the exact ATG to ATG was cut with NruI and EagI. The resulting 1.7 kbp blunt fragment containing 27 bp 3 'to the H6 promoter and a complete fusion cell was isolated, cut with NruI and XbaI, and inserted into the blunt-ended intermediate plasmid pRW823. H6 / Measles F cassette was removed from pRW841 by digestion with SmaI and the resulting 1.8 kb fragment was inserted into pRW843 (which contains the measles HA gene). First, plasmid pRW843 was digested with NotI and E. coli in the presence of 2 mM dNTPs. The DNA was blunted with a Klenow fragment of E. coli DNA polymerase. The resulting plasmid pRW857 therefore contains the measles virus F and HA genes linked in a tail-to-tail sequence. Both genes are linked to the vaccinia virus H6 promoter.
NYVAC−MVの開発
前述したリン酸カルシウム沈殿法(パニカリら、1982;ピッチーニら、1987)を用いることにより、プラスミドpRW857をNYVAC(vP866)感染ベロ細胞中にトランスフェクションした。特定のMV FおよびHA放射線標識プローブに対する現場でのプラーク雑種形成に基づいて、陽性のプラークを選択し、選択したプラークについて、純粋な固体群が達成されるまで、6回連続でプラーク精製を行なった。次いで1つの代表のプラークを増幅し、生成した組換え体をNYVAC−MV(vP913)と称した。
Development of NYVAC-MV Plasmid pRW857 was transfected into NYVAC (vP866) infected Vero cells by using the calcium phosphate precipitation method described above (Panikari et al., 1982; Pitchini et al., 1987). Based on in situ plaque hybridization to specific MV F and HA radiolabeled probes, positive plaques are selected and plaque purification is performed six consecutive times for the selected plaques until a pure solid population is achieved. It was. One representative plaque was then amplified and the resulting recombinant was designated NYVAC-MV (vP913).
免疫蛍光法
前述したように間接免疫蛍光法を行なった(テイラーら、1990)。使用した単特異性試薬は、家ウサギに麻疹FまたはHA遺伝子を発現するカナリヤポックス組換え体を接種することにより産生した血清であった。
Immunofluorescence Indirect immunofluorescence was performed as previously described (Taylor et al., 1990). The monospecific reagent used was serum produced by inoculating rabbits with canarypox recombinants expressing measles F or HA genes.
イムノプレシピテーション
前述したようにモルモット抗麻疹血清(ウィタッカーM.A.バイオプロダクツ、ウォーカースビル、MD)を用いてイムノプレシピテーション反応を行なった。
Immunoprecipitation An immunoprecipitation reaction was performed using guinea pig anti-measles serum (Witacker MA Bioproducts, Walkersville, MD) as described above.
細胞融合実験
60mmの皿中のベロ細胞単層を、多数の、細胞当たり1pfuの親または組換えウイルスで接種した。37℃での1時間の吸収後に接種物を除去し、重層媒質を置き換え、皿を37℃で1晩接種した。感染20時間後、皿を検査した。
Cell fusion experiments
Vero cell monolayers in 60 mm dishes were inoculated with multiple, 1 pfu parent or recombinant virus per cell. After 1 hour absorption at 37 ° C, the inoculum was removed, the stratified medium was replaced and the dishes were inoculated overnight at 37 ° C. The dishes were examined 20 hours after infection.
麻疹ウイルスFおよびHA遺伝子の両方の発現産生物が感染細胞表面上に存在することを確認するために、麻疹FまたはHA遺伝子のいずれかを発現するカナリヤポックス組換え体に対する家ウサギ中に産生された単特異性血清を用いて間接免疫蛍光法分析を行なった。その結果、FおよびHA遺伝子産生物が、両単特異性血清での強い表面蛍光により示されるように、感染細胞表面上に発現されたことが示された。親NYVAC菌株を接種した細胞の血清のいずれかに関して明確である背景の染色はなく、単特異性血清がHAまたはF遺伝子のいずれかを発現するワクチニア単組換え体に対して試験された場合、交差反応染色はない。 To confirm that the expression products of both measles virus F and HA genes are present on the infected cell surface, they are produced in domestic rabbits against canarypox recombinants expressing either measles F or HA genes. Indirect immunofluorescence analysis was performed using monospecific serum. The results showed that the F and HA gene products were expressed on the infected cell surface as shown by strong surface fluorescence with both monospecific sera. There is no clear background staining for any of the sera of cells inoculated with the parental NYVAC strain, and when monospecific sera are tested against a vaccinia monorecombinant expressing either the HA or F gene, There is no cross-reactive staining.
NYVAC−MVにより発現されたタンパク質が麻疹ウイルス特異血清で免疫反応性であり、感染細胞中で真正に処理されたことを示すために、イムノプレシピテーション分析を行なった。ベロ細胞単層に、多様な、10pfu/細胞35S−メチオニンの存在下で親または組換え体ウイルスを接種した。イムノプレシピテーション分析は、それぞれ44kDaおよび23kDaの分子量を有する切断融合産生物F1およびF2並びに約76kDaのHA糖タンパク質を示した。未感染ベロ細胞または親細胞NYVACウイルスに感染した細胞中には、麻疹特異産生物が検出されなかった。 Immunoprecipitation analysis was performed to show that the protein expressed by NYVAC-MV was immunoreactive with measles virus-specific serum and was genuinely processed in infected cells. Vero cell monolayers were inoculated with parental or recombinant virus in the presence of various 10 pfu / cell 35 S-methionine. Immunoprecipitation analysis showed cleavage fusion-producing organism F 1 and F 2 and HA glycoproteins of about 76kDa, respectively having a molecular weight of 44kDa and 23 kDa. No measles-specific product was detected in cells infected with uninfected Vero cells or parental cell NYVAC virus.
MV細胞変異性の特性は、感染細胞の周囲の感染または未感染細胞による融合により生じる融合細胞の形成と続いての融合細胞の中心に向かう核の移行である(ノービーら、1982)。これは、パラミクソウイルスにとって、HA特異ウイルス中和抗体中で生じ得る重要なウイルス展着法であることが示されている(マーツら、1980)。ワクチニアウイルス中で発現されたMVタンパク質が機能的に活性であることを確認するために、ベロ細胞単層に、NYVACおよびNYVAC−MVを接種し、細胞変異性効果についてその単層を観察した。感染後約18時間後に、NYVAC−MV感染ベロ細胞中で強い細胞融合活性が明白となった。親細胞NYVACに感染した細胞中では細胞融合活性は全く明白にはならなかった。 A characteristic of MV cell variability is the formation of fused cells resulting from fusion with infected or uninfected cells surrounding infected cells, followed by nuclear translocation toward the center of the fused cells (Noby et al., 1982). This has been shown to be an important virus spreading method for paramyxoviruses that can occur in HA-specific virus neutralizing antibodies (Marts et al., 1980). To confirm that the MV protein expressed in vaccinia virus is functionally active, Vero cell monolayers were inoculated with NYVAC and NYVAC-MV and the monolayers were observed for cell mutating effects. . About 18 hours after infection, strong cell fusion activity was evident in NYVAC-MV infected Vero cells. No cell fusion activity was evident in cells infected with parental cell NYVAC.
NYVAC−MV(vP913)を接種した家ウサギの血清の血清分析の結果
この研究において、2匹の家ウサギを皮下経路により1×108pfuのNYVAC−MV(vP913)を接種した。28日目にその動物に等量を追加抗原投与した。連続の出血を、プラーク還元法を用いてMV中和活性について分析した。結果を表13に示す。その結果は、いずれの家ウサギもNYVAC−MVの最初の接種には反応しなかったことを示している。しかしながら、2回目の接種後の鋭く立ち上がる反応は、動物が感作されたことを示す。両方の動物が防御範囲の中和抗原力価を達成した。
Results of Serum Analysis of Serum of Domestic Rabbits Inoculated with NYVAC-MV (vP913) In this study, two domestic rabbits were inoculated with 1 × 10 8 pfu of NYVAC-MV (vP913) by the subcutaneous route. On day 28, the animals were boosted with an equal volume. Serial bleeding was analyzed for MV neutralizing activity using the plaque reduction method. The results are shown in Table 13. The results indicate that none of the rabbits responded to the initial inoculation of NYVAC-MV. However, a sharp rising reaction after the second inoculation indicates that the animal has been sensitized. Both animals achieved a protective neutralizing antigen titer.
実施例14に示したALVAC−MV(vCP82)の免疫抗原性の体内分析は、ある範囲の種の接種において、組換え体は、標準血清試験で測定可能な血清反応を誘発できることを示している。達成された力価は、病気からの防御に必要とされる範囲内にある。NYVAC−MV(vP913)の家ウサギへの接種は同様に、防御的である麻疹ウイルス中和抗体の水準を誘発する。
以下に、他の参考例を記載する。 Other reference examples are described below.
1. ポックスウイルスゲノムの可欠領域中に麻疹ウイルス属からの少なくとも2つの抗原をコードするDNAを含有する組換えポックスウイルス。 1. A recombinant poxvirus containing DNA encoding at least two antigens from the genus Measles virus in an integral region of the poxvirus genome.
2. 前記麻疹ウイルス属が麻疹ウイルスであることを特徴とする参考例1記載の組換えポックスウイルス。 2. The recombinant poxvirus according to Reference Example 1, wherein the measles virus genus is measles virus.
3. 前記DNAがコードする前記少なくとも2つの抗原のうちの1つが麻疹ウイルス血球凝集素糖タンパク質であることを特徴とする参考例2記載の組換えポックスウイルス。 3. The recombinant poxvirus according to Reference Example 2, wherein one of the at least two antigens encoded by the DNA is a measles virus hemagglutinin glycoprotein.
4. 前記DNAがコードする前記少なくとも2つの抗原のうちの1つが麻疹ウイルス融合糖タンパク質であることを特徴とする参考例2記載の組換えポックスウイルス。 4). The recombinant poxvirus according to Reference Example 2, wherein one of the at least two antigens encoded by the DNA is a measles virus fusion glycoprotein.
5. 前記DNAが2つの麻疹ウイルス糖タンパク質をコードすることを特徴とする参考例2記載の組換えポックスウイルス。 5). The recombinant poxvirus according to Reference Example 2, wherein the DNA encodes two measles virus glycoproteins.
6. 前記麻疹ウイルス糖タンパク質が血球凝集素糖タンパク質および融合糖タンパク質であることを特徴とする参考例5記載の組換えポックスウイルス。 6). The recombinant poxvirus according to Reference Example 5, wherein the measles virus glycoprotein is a hemagglutinin glycoprotein and a fusion glycoprotein.
7. 前記DNAが宿主中で発現され、その発現が麻疹ウイルス糖タンパク質の産生を含むことを特徴とする参考例2記載の組換えポックスウイルス。 7). The recombinant poxvirus according to Reference Example 2, wherein the DNA is expressed in a host, and the expression includes production of measles virus glycoprotein.
8. 前記麻疹ウイルス糖タンパク質が麻疹ウイルス血球凝集素糖タンパク質であることを特徴とする参考例7記載の組換えポックスウイルス。 8). The recombinant poxvirus according to Reference Example 7, wherein the measles virus glycoprotein is a measles virus hemagglutinin glycoprotein.
9. 前記麻疹ウイルス糖タンパク質が麻疹ウイルス融合糖タンパク質であることを特徴とする参考例7記載の組換えポックスウイルス。 9. The recombinant poxvirus according to Reference Example 7, wherein the measles virus glycoprotein is a measles virus fusion glycoprotein.
10. 前記DNAが2つの麻疹ウイルス糖タンパク質の産生により宿主中に発現されることを特徴とする参考例2記載の組換えポックスウイルス。 10. The recombinant poxvirus according to Reference Example 2, wherein the DNA is expressed in a host by the production of two measles virus glycoproteins.
11. 前記麻疹ウイルス糖タンパク質が麻疹ウイルス血球凝集素糖タンパク質および麻疹ウイルス融合糖タンパク質であることを特徴とする参考例10記載の組換えポックスウイルス。 11. The recombinant poxvirus according to Reference Example 10, wherein the measles virus glycoprotein is a measles virus hemagglutinin glycoprotein and a measles virus fusion glycoprotein.
12. 前記ポックスウイルスがワクチニアウイルスであることを特徴とする参考例1記載の組換えポックスウイルス。 12 The recombinant poxvirus according to Reference Example 1, wherein the poxvirus is a vaccinia virus.
13. 前記ポックスウイルスがアビポックスウイルスであることを特徴とする参考例1記載の組換えポックスウイルス。 13. The recombinant poxvirus according to Reference Example 1, wherein the poxvirus is an avipox virus.
14. 前記アビポックスウイルスがカナリヤポックスウイルスであることを特徴とする参考例13記載の組換えポックスウイルス。 14 The recombinant poxvirus according to Reference Example 13, wherein the avipoxvirus is a canarypox virus.
15. 前記DNAが組換えにより前記ポックスウイルス中に導入されることを特徴とする参考例1記載の組換えポックスウイルス。 15. The recombinant poxvirus according to Reference Example 1, wherein the DNA is introduced into the poxvirus by recombination.
16. 麻疹ウイルス属からの少なくとも2つの抗原をコードするDNAおよび該DNAを発現するプロモーターを含有する組換えポックスウイルス。 16. A recombinant poxvirus comprising DNA encoding at least two antigens from the genus Measles virus and a promoter expressing the DNA.
17. ワクチンを接種した宿主動物中に免疫応答を誘発するワクチンであって、該ワクチンが、可欠領域中に麻疹ウイルス属からの少なくとも2つの抗原をコードするDNAを含有する組換えポックスウイルスおよび担体からなることを特徴とするワクチン。 17. A vaccine that elicits an immune response in a vaccinated host animal, said vaccine comprising a recombinant poxvirus and a carrier containing DNA encoding at least two antigens from the measles virus genus in an integral region A vaccine characterized by
18. 前記麻疹ウイルス属が麻疹ウイルスであることを特徴とする参考例17記載のワクチン。 18. The vaccine according to Reference Example 17, wherein the measles virus genus is measles virus.
19. 前記DNAがコードし発現する前記少なくとも2つの抗原のうちの1つが麻疹ウイルス血球凝集素糖タンパク質であることを特徴とする参考例18記載のワクチン。 19. The vaccine according to Reference Example 18, wherein one of the at least two antigens encoded and expressed by the DNA is a measles virus hemagglutinin glycoprotein.
20. 前記DNAがコードし発現する前記少なくとも2つの抗原のうちの1つが麻疹ウイルス融合糖タンパク質であることを特徴とする参考例18記載のワクチン。 20. The vaccine according to Reference Example 18, wherein one of the at least two antigens encoded and expressed by the DNA is a measles virus fusion glycoprotein.
21. 前記DNAが2つの麻疹ウイルス糖タンパク質をコードし、発現することを特徴とする参考例18記載のワクチン。 21. The vaccine according to Reference Example 18, wherein the DNA encodes and expresses two measles virus glycoproteins.
22. 前記麻疹ウイルス糖タンパク質が血球凝集素糖タンパク質および融合糖タンパク質であることを特徴とする参考例21記載のワクチン。 22. The vaccine according to Reference Example 21, wherein the measles virus glycoprotein is a hemagglutinin glycoprotein and a fusion glycoprotein.
23. 前記ポックスウイルスがワクチニアウイルスであることを特徴とする参考例17記載のワクチン。 23. The vaccine according to Reference Example 17, wherein the poxvirus is a vaccinia virus.
24. 前記ポックスウイルスがアビポックスウイルスであることを特徴とする参考例17記載のワクチン。 24. The vaccine according to Reference Example 17, wherein the poxvirus is an avipox virus.
25. 前記アビポックスウイルスがカナリヤポックスウイルスであることを特徴とする参考例24記載のワクチン。 25. The vaccine according to Reference Example 24, wherein the avipox virus is a canarypox virus.
26. 前記DNAが組換えにより前記ポックスウイルス中に導入されることを特徴とする参考例17記載のワクチン。 26. The vaccine according to Reference Example 17, wherein the DNA is introduced into the poxvirus by recombination.
27. イヌジステンパーに対してイヌを防御する方法であって、該方法が、ポックスウイルスゲノムの可欠領域中に麻疹ウイルス属からの抗原をコードするDNAを含有する組換えポックスウイルスをイヌに接種することからなることを特徴とする方法。 27. A method of protecting a dog against canine distemper, the method inoculating the dog with a recombinant poxvirus containing DNA encoding an antigen from the genus Measles virus in an indispensable region of the poxvirus genome. A method characterized by comprising:
28. 前記麻疹ウイルス属が麻疹ウイルスであることを特徴とする参考例27記載の方法。 28. The method according to Reference Example 27, wherein the measles virus genus is measles virus.
29. 前記DNAが麻疹ウイルス血球凝集素糖タンパク質をコードすることを特徴とする参考例28記載の方法。 29. 29. The method according to Reference Example 28, wherein the DNA encodes a measles virus hemagglutinin glycoprotein.
30. 前記DNAが麻疹ウイルス融合糖タンパク質をコードすることを特徴とする参考例28記載の方法。 30. The method according to Reference Example 28, wherein the DNA encodes a measles virus fusion glycoprotein.
31. イヌジステンパーに対してイヌを防御する方法であって、該方法が、麻疹ウイルスである麻疹ウイルス属からのDNAを含有する組換えワクチニアまたはアビポックスウイルスをイヌに接種することからなり、前記DNAが麻疹ウイルス血球凝集素糖タンパク質をコードすることを特徴とする方法。 31. A method of protecting a dog against canine distemper, the method comprising inoculating a dog with a recombinant vaccinia or avipox virus containing DNA from the genus Measles virus, which is a measles virus, A method comprising encoding a measles virus hemagglutinin glycoprotein.
32. カナリヤポックスウイルスゲノムの可欠領域中に麻疹ウイルスからのDNAを含有する組換えカナリヤポックスウイルスであって、麻疹ウイルス糖タンパク質をコードする前記DNAが、麻疹ウイルス血球凝集素糖タンパク質、麻疹ウイルス融合糖タンパク質、および麻疹ウイルス血球凝集素糖タンパク質と麻疹ウイルス融合糖タンパク質の組合せからなる群より選択されることを特徴とする組換えカナリヤポックスウイルス。 32. A recombinant canarypox virus containing DNA from measles virus in an essential region of the canarypox virus genome, wherein said DNA encoding measles virus glycoprotein is measles virus hemagglutinin glycoprotein, measles virus fusion sugar A recombinant canarypox virus characterized in that it is selected from the group consisting of a protein and a combination of a measles virus hemagglutinin glycoprotein and a measles virus fusion glycoprotein.
33. 前記DNAが麻疹ウイルス血球凝集素糖タンパク質をコードすることを特徴とする参考例32記載の組換えカナリヤポックスウイルス。 33. The recombinant canarypox virus according to Reference Example 32, wherein the DNA encodes a measles virus hemagglutinin glycoprotein.
34. 前記DNAが麻疹ウイルス融合糖タンパク質をコードすることを特徴とする参考例32記載の組換えカナリヤポックスウイルス。 34. The recombinant canarypox virus according to Reference Example 32, wherein the DNA encodes a measles virus fusion glycoprotein.
35. 前記DNAが麻疹ウイルス血球凝集素糖タンパク質および麻疹ウイルス融合糖タンパク質をコードすることを特徴とする参考例32記載の組換えカナリヤポックスウイルス。 35. The recombinant canarypox virus according to Reference Example 32, wherein the DNA encodes a measles virus hemagglutinin glycoprotein and a measles virus fusion glycoprotein.
36. vCP82であることを特徴とする参考例32記載の組換えカナリヤポックスウイルス。 36. The recombinant canarypox virus according to Reference Example 32, which is vCP82.
37. 麻疹ウイルスからのDNAおよび該DNAを発現するプロモーターを含有する組換えカナリヤポックスウイルスであって、麻疹ウイルス糖タンパク質をコードする前記DNAが、麻疹ウイルス血球凝集素糖タンパク質、麻疹ウイルス融合糖タンパク質、および麻疹ウイルス血球凝集素糖タンパク質と麻疹ウイルス融合糖タンパク質の組合せからなる群より選択されることを特徴とする組換えカナリヤポックスウイルス。 37. A recombinant canarypox virus containing DNA from measles virus and a promoter expressing the DNA, wherein the DNA encoding measles virus glycoprotein is measles virus hemagglutinin glycoprotein, measles virus fusion glycoprotein, and A recombinant canarypox virus selected from the group consisting of a combination of measles virus hemagglutinin glycoprotein and measles virus fusion glycoprotein.
38. ワクチンを接種した宿主動物中に免疫応答誘発するワクチンであって、該ワクチンが、可欠領域中に麻疹ウイルスからのDNAを含有する組換えカナリヤポックスウイルスおよび担体からなり、麻疹ウイルス糖タンパク質をコードする前記DNAが、麻疹ウイルス血球凝集素糖タンパク質、麻疹ウイルス融合糖タンパク質、および麻疹ウイルス血球凝集素糖タンパク質と麻疹ウイルス融合糖タンパク質の組合せからなる群より選択されることを特徴とするワクチン。 38. A vaccine that induces an immune response in a vaccinated host animal, the vaccine comprising a recombinant canarypox virus containing DNA from measles virus in an integral region and a carrier, encoding a measles virus glycoprotein The vaccine is selected from the group consisting of measles virus hemagglutinin glycoprotein, measles virus fusion glycoprotein, and a combination of measles virus hemagglutinin glycoprotein and measles virus fusion glycoprotein.
39. 前記DNAが麻疹ウイルス血球凝集素糖タンパク質をコードすることを特徴とする参考例38記載のワクチン。 39. The vaccine according to Reference Example 38, wherein the DNA encodes a measles virus hemagglutinin glycoprotein.
40. 前記DNAが麻疹ウイルス融合糖タンパク質をコードすることを特徴とする参考例38記載のワクチン。 40. The vaccine according to Reference Example 38, wherein the DNA encodes a measles virus fusion glycoprotein.
41. 前記DNAが麻疹ウイルス血球凝集素糖タンパク質および麻疹ウイルス融合糖タンパク質をコードすることを特徴とする参考例38記載のワクチン。 41. The vaccine according to Reference Example 38, wherein the DNA encodes a measles virus hemagglutinin glycoprotein and a measles virus fusion glycoprotein.
42. 前記組換えカナリヤポックスウイルスがvCP82であることを特徴とする参考例38記載のワクチン。 42. The vaccine according to Reference Example 38, wherein the recombinant canarypox virus is vCP82.
43. イヌジステンパーに対してイヌを防御する方法であって、該方法が、麻疹ウイルス融合糖タンパク質をコードする麻疹ウイルスからのDNAを含有する組換えカナリヤポックスウイルスをイヌに接種することからなることを特徴とする方法。 43. A method of protecting a dog against canine distemper, the method comprising inoculating a dog with a recombinant canarypox virus containing DNA from a measles virus encoding a measles virus fusion glycoprotein And how to.
44. 前記ポックスウイルスが、チミジンキナーゼ遺伝子、出血性領域、A型封入体領域、血球凝集素遺伝子、宿主域遺伝子領域、および大ユニットリボヌクレオチド還元酵素が欠損したワクチニアウイルスであることを特徴とする参考例1から12、15または16いずれか1記載の組換えポックスウイルス。 44. The poxvirus is a vaccinia virus lacking a thymidine kinase gene, a hemorrhagic region, a type A inclusion body region, a hemagglutinin gene, a host region gene region, and a large unit ribonucleotide reductase The recombinant poxvirus according to any one of Examples 1 to 12, 15 or 16.
45. 前記ワクチニアウイルスがNYVACワクチニアウイルスであることを特徴とする参考例44記載の組換えポックスウイルス。 45. 45. The recombinant poxvirus according to Reference Example 44, wherein the vaccinia virus is NYVAC vaccinia virus.
46. 前記ポックスウイルスが、チミジンキナーゼ遺伝子、出血性領域、A型封入体領域、血球凝集素遺伝子、宿主域遺伝子領域、および大ユニットリボヌクレオチド還元酵素が欠損したワクチニアウイルスであることを特徴とする参考例17から23、または26いずれか1記載のワクチン。 46. The poxvirus is a vaccinia virus lacking a thymidine kinase gene, a hemorrhagic region, a type A inclusion body region, a hemagglutinin gene, a host region gene region, and a large unit ribonucleotide reductase 27. A vaccine according to any one of Examples 17 to 23 or 26.
47. 前記ワクチニアウイルスがNYVACワクチニアウイルスであることを特徴とする参考例46記載のワクチン。 47. 47. The vaccine according to Reference Example 46, wherein the vaccinia virus is NYVAC vaccinia virus.
48. 前記ポックスウイルスが、チミジンキナーゼ遺伝子、出血性領域、A型封入体領域、血球凝集素遺伝子、宿主域遺伝子領域、および大ユニットであるリボヌクレオチド還元酵素が欠損したワクチニアウイルスであることを特徴とする参考例27から30いずれか1記載の方法。 48. The poxvirus is a vaccinia virus lacking a thymidine kinase gene, a hemorrhagic region, a type A inclusion body region, a hemagglutinin gene, a host region gene region, and a large unit ribonucleotide reductase. The method according to any one of Reference Examples 27 to 30.
49. 前記ワクチニアウイルスがNYVACワクチニアウイルスであることを特徴とする参考例48記載の方法。 49. 49. The method according to Reference Example 48, wherein the vaccinia virus is NYVAC vaccinia virus.
50. 前記ワクチニアウイルスが、チミジンキナーゼ遺伝子、出血性領域、A型封入体領域、血球凝集素遺伝子、宿主域遺伝子領域、および大ユニットであるリボヌクレオチド還元酵素が欠損したワクチニアウイルスであることを特徴とする参考例31記載の方法。 50. The vaccinia virus is a vaccinia virus lacking a thymidine kinase gene, a hemorrhagic region, a type A inclusion body region, a hemagglutinin gene, a host range gene region, and a large unit ribonucleotide reductase. The method according to Reference Example 31.
51. 前記ワクチニアウイルスがNYVACワクチニアウイルスであることを特徴とする参考例50記載の方法。 51. The method according to Reference Example 50, wherein the vaccinia virus is NYVAC vaccinia virus.
52. 前記ポックスウイルスまたはカナリヤポックスウイルスがALVACカナリヤポックスウイルスであることを特徴とする参考例1から11、13から16、32から35、または37いずれか1記載の組換えポックスウイルスまたはカナリヤポックスウイルス。 52. The recombinant poxvirus or canarypox virus according to any one of Reference Examples 1 to 11, 13 to 16, 32 to 35, or 37, wherein the poxvirus or canarypox virus is an ALVAC canarypox virus.
53. 前記ポックスウイルスまたはカナリヤポックスウイルスがALVACカナリヤポックスウイルスであることを特徴とする参考例17から22、24から26、38から41いずれか1記載のワクチン。 53. The vaccine according to any one of Reference Examples 17 to 22, 24 to 26, and 38 to 41, wherein the poxvirus or canarypox virus is ALVAC canarypox virus.
54. 前記ポックスウイルス、アビポックスウイルスまたはカナリヤポックスウイルスがALVACカナリヤポックスウイルスであることを特徴とする参考例27から31、または43いずれか1記載の方法。 54. 45. The method according to any one of Reference Examples 27 to 31, or 43, wherein the poxvirus, avipoxvirus or canarypox virus is an ALVAC canarypox virus.
55. vP913であることを特徴とする参考例45記載の組換えポックスウイルス。 55. The recombinant poxvirus according to Reference Example 45, which is vP913.
56. 前記NYVACワクチニアウイルスがvP913であることを特徴とする参考例47記載のワクチン。 56. 48. The vaccine according to Reference Example 47, wherein the NYVAC vaccinia virus is vP913.
57. 前記NYVACワクチニアウイルスがvP913であることを特徴とする参考例49または51記載の方法。 57. 52. The method according to Reference Example 49 or 51, wherein the NYVAC vaccinia virus is vP913.
Claims (5)
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
US62161490A | 1990-11-20 | 1990-11-20 | |
US77686791A | 1991-10-22 | 1991-10-22 |
Related Parent Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP50520492A Division JP3617668B2 (en) | 1990-11-20 | 1991-11-20 | Measles virus recombinant poxvirus vaccine |
Publications (3)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JP2005040129A JP2005040129A (en) | 2005-02-17 |
JP2005040129A5 JP2005040129A5 (en) | 2005-09-15 |
JP3824619B2 true JP3824619B2 (en) | 2006-09-20 |
Family
ID=27089007
Family Applications (2)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP50520492A Expired - Fee Related JP3617668B2 (en) | 1990-11-20 | 1991-11-20 | Measles virus recombinant poxvirus vaccine |
JP2004170929A Expired - Fee Related JP3824619B2 (en) | 1990-11-20 | 2004-06-09 | Measles virus recombinant poxvirus vaccine |
Family Applications Before (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP50520492A Expired - Fee Related JP3617668B2 (en) | 1990-11-20 | 1991-11-20 | Measles virus recombinant poxvirus vaccine |
Country Status (12)
Country | Link |
---|---|
JP (2) | JP3617668B2 (en) |
AU (1) | AU1253892A (en) |
BE (1) | BE1005908A5 (en) |
CA (1) | CA2096633A1 (en) |
CH (1) | CH683921A5 (en) |
DE (2) | DE4192786B4 (en) |
FR (1) | FR2669346B1 (en) |
GB (2) | GB2264949B (en) |
IE (2) | IE71643B1 (en) |
IT (1) | IT1252687B (en) |
NL (2) | NL195058C (en) |
WO (1) | WO1992008789A1 (en) |
Families Citing this family (17)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US5833975A (en) * | 1989-03-08 | 1998-11-10 | Virogenetics Corporation | Canarypox virus expressing cytokine and/or tumor-associated antigen DNA sequence |
US5338683A (en) | 1981-12-24 | 1994-08-16 | Health Research Incorporated | Vaccinia virus containing DNA sequences encoding herpesvirus glycoproteins |
US7767449B1 (en) | 1981-12-24 | 2010-08-03 | Health Research Incorporated | Methods using modified vaccinia virus |
US5505941A (en) * | 1981-12-24 | 1996-04-09 | Health Research, Inc. | Recombinant avipox virus and method to induce an immune response |
US6248333B1 (en) | 1990-04-04 | 2001-06-19 | Health Research Inc. | Isolated nucleic acid sequence of equine herpesvirus type 1 glycoprotein D (EHV-1 gD) |
US5756102A (en) * | 1990-11-20 | 1998-05-26 | Virogenetics Corporation | Poxvirus-canine distemper virus (CDV) recombinants and compositions and methods employing the recombinants |
EP0575491B1 (en) * | 1991-03-07 | 2003-08-13 | Virogenetics Corporation | Genetically engineered vaccine strain |
US5989561A (en) * | 1991-03-07 | 1999-11-23 | Virogenetics Corporation | Recombinant poxvirus-calicivirus rabbit hemorrhagic disease virus (RHDV) compositions and uses |
EP0575544A4 (en) * | 1991-03-20 | 1997-05-21 | Virogenetics Corp | Malaria recombinant poxvirus vaccine |
EP0592546B1 (en) * | 1991-06-14 | 2003-05-28 | Virogenetics Corporation | Immunodeficiency virus recombinant poxvirus vaccine |
US5643578A (en) | 1992-03-23 | 1997-07-01 | University Of Massachusetts Medical Center | Immunization by inoculation of DNA transcription unit |
CN1089370C (en) * | 1994-12-08 | 2002-08-21 | 中国预防医学科学研究院病毒学研究所 | Recombination vaccinia virus for expression of measles virus L4 strain hemagglutinin and fusion protein gene |
WO1997028265A1 (en) * | 1996-02-05 | 1997-08-07 | University Of Massachusetts Medical Center | Measles immunization by dna transcription unit inoculation |
WO1998050047A1 (en) | 1997-05-09 | 1998-11-12 | Trustees Of The University Of Pennsylvania | Methods and compositions for reducing ischemic injury of the heart by administering adenosine receptor agonists and antagonists |
EP1095948A1 (en) * | 1999-10-28 | 2001-05-02 | Universitätsklinikum Freiburg | Idiotype vaccines |
WO2002072754A2 (en) * | 2001-03-08 | 2002-09-19 | The Government Of The United States Of America, As Represented By The Secretary, Department Of Health And Human Services | Mva expressing modified hiv envelope, gag, and pol genes |
AR052743A1 (en) * | 2006-04-11 | 2007-03-28 | Inst Nac De Tecnologia Agropec | PLASMIDIC TRANSFER VECTOR AND RECOMBINANT CANARYPOX VIRUS |
Family Cites Families (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
FR2617715B1 (en) * | 1987-07-07 | 1990-08-31 | Transgene Sa | VIRAL VECTOR AND RECOMBINANT DNA ENCODING FOR ONE OR MORE SURFACE PROTEINS (HA AND / OR F) OF A MORBILLIVIRUS, INFECTED CELL CULTURE, PROTEINS OBTAINED, VACCINE AND ANTIBODIES OBTAINED |
DE10399031I1 (en) * | 1987-08-28 | 2004-01-29 | Health Research Inc | Recombinant viruses. |
FR2632863B2 (en) * | 1987-10-29 | 1990-08-31 | Transgene Sa | RECOMBINANT FOWLPOX VIRUS AND VACCINES DERIVED FROM SUCH VIRUSES |
JPH01218590A (en) * | 1988-02-29 | 1989-08-31 | Toa Nenryo Kogyo Kk | Rinderpest virus vaccine using recombinant vaccinia virus |
-
1991
- 1991-11-13 IE IE960091A patent/IE71643B1/en not_active IP Right Cessation
- 1991-11-13 IE IE396091A patent/IE68404B1/en not_active IP Right Cessation
- 1991-11-19 BE BE9101066A patent/BE1005908A5/en not_active IP Right Cessation
- 1991-11-19 FR FR9114256A patent/FR2669346B1/en not_active Expired - Lifetime
- 1991-11-20 JP JP50520492A patent/JP3617668B2/en not_active Expired - Fee Related
- 1991-11-20 GB GB9309414A patent/GB2264949B/en not_active Expired - Lifetime
- 1991-11-20 WO PCT/US1991/008703 patent/WO1992008789A1/en active Application Filing
- 1991-11-20 AU AU12538/92A patent/AU1253892A/en not_active Abandoned
- 1991-11-20 CH CH2364/92A patent/CH683921A5/en not_active IP Right Cessation
- 1991-11-20 DE DE4192786A patent/DE4192786B4/en not_active Expired - Lifetime
- 1991-11-20 IT ITMI913092A patent/IT1252687B/en active IP Right Grant
- 1991-11-20 GB GB9500214A patent/GB2283021B/en not_active Expired - Lifetime
- 1991-11-20 DE DE4192786T patent/DE4192786T1/en active Pending
- 1991-11-20 NL NL9120026A patent/NL195058C/en not_active IP Right Cessation
- 1991-11-20 CA CA002096633A patent/CA2096633A1/en not_active Abandoned
-
2003
- 2003-07-15 NL NL9900036A patent/NL195095C/en not_active IP Right Cessation
-
2004
- 2004-06-09 JP JP2004170929A patent/JP3824619B2/en not_active Expired - Fee Related
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
NL9900036A (en) | 2003-10-01 |
CH683921A5 (en) | 1994-06-15 |
NL195058C (en) | 2003-07-01 |
FR2669346B1 (en) | 1995-07-21 |
GB2264949A (en) | 1993-09-15 |
GB2283021A (en) | 1995-04-26 |
GB2264949B (en) | 1995-07-05 |
DE4192786T1 (en) | 1994-01-13 |
DE4192786B4 (en) | 2006-08-24 |
IE71643B1 (en) | 1997-02-26 |
WO1992008789A1 (en) | 1992-05-29 |
AU1253892A (en) | 1992-06-11 |
GB9309414D0 (en) | 1993-07-14 |
JPH06502996A (en) | 1994-04-07 |
ITMI913092A0 (en) | 1991-11-20 |
NL9120026A (en) | 1993-09-01 |
GB2283021B (en) | 1995-07-05 |
ITMI913092A1 (en) | 1993-05-20 |
GB9500214D0 (en) | 1995-03-01 |
CA2096633A1 (en) | 1992-05-21 |
IT1252687B (en) | 1995-06-23 |
IE68404B1 (en) | 1996-06-12 |
JP3617668B2 (en) | 2005-02-09 |
JP2005040129A (en) | 2005-02-17 |
FR2669346A1 (en) | 1992-05-22 |
BE1005908A5 (en) | 1994-03-08 |
IE913960A1 (en) | 1992-05-20 |
NL195095C (en) | 2004-01-21 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
KR970011149B1 (en) | Recombinant avipox virus | |
CA1341234C (en) | Recombinant fowlpox virus | |
JP4140862B2 (en) | Recombinant poxvirus-rabies composition and combination composition and use | |
JP3824619B2 (en) | Measles virus recombinant poxvirus vaccine | |
JP4108742B2 (en) | Poxvirus-canine distemper virus (CDV) recombinants and compositions and methods using said recombinants | |
JP3624911B2 (en) | Recombinant avipox virus | |
AU2021209228A1 (en) | Recombinant modified vaccinia virus Ankara (MVA) filovirus vaccine | |
JP2007105040A (en) | Recombinant poxvirus-feline infectious peritonitis virus, composition thereof and methods for making and using them | |
JP2007082551A (en) | Recombinant poxvirus-calicivirus [rabbit hemorrhagic disease virus (rhdv)] composition and use thereof | |
JP2007254489A (en) | Immunogenic composition containing recombinant attenuated poxvirus expressing htlv antigen | |
JP5469444B2 (en) | GM-negative EHV-mutant without heterologous elements | |
US5503834A (en) | Measles virus recombinant poxvirus vaccine | |
JP3706130B2 (en) | Marek's disease virus recombinant poxvirus vaccine | |
US5759841A (en) | Immunological composition of measles virus utilizing recombinant poxvirus | |
AU699903B2 (en) | Measles virus recombinant poxvirus vaccine | |
CA1341403C (en) | Recombinant a vipox virus | |
IE60309B1 (en) | Recombinant viruses, vaccines containing them and in vitro cell cultures thereof |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
A131 | Notification of reasons for refusal |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131 Effective date: 20050705 |
|
A601 | Written request for extension of time |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A601 Effective date: 20051005 |
|
A602 | Written permission of extension of time |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A602 Effective date: 20051017 |
|
A521 | Request for written amendment filed |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523 Effective date: 20060105 |
|
A521 | Request for written amendment filed |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A821 Effective date: 20060105 |
|
A131 | Notification of reasons for refusal |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131 Effective date: 20060228 |
|
TRDD | Decision of grant or rejection written | ||
A01 | Written decision to grant a patent or to grant a registration (utility model) |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A01 Effective date: 20060620 |
|
A61 | First payment of annual fees (during grant procedure) |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A61 Effective date: 20060627 |
|
R150 | Certificate of patent or registration of utility model |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R150 |
|
LAPS | Cancellation because of no payment of annual fees |