JP3548134B2 - Separation and separation equipment - Google Patents

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Description

【0001】
【産業上の利用分野】
本発明はDNA、蛋白などの生体物質の分離・分取装置に関するものである。
【0002】
【従来の技術】
DNAあるいは蛋白質の分離にはゲル電気泳動が用いられていた。そして分離成分の分取には目的物の含まれるゲル部分を切り取り、そこからDNAを抽出する方法などが用いられている。最近、Applied Biosystems Inc.他からゲルから溶出してくる試料を液流を用いて運搬し、液体クロマトグラフのフラクションコレクターと類似の方法を用いて分取する装置が市販されはじめている。
【0003】
【発明が解決しようとする課題】
しかし、これらは比較的多量の試料の分画に適しているが、微量試料の分画には不向きである。すなわち、多量の溶液で稀釈されてサンプリングされるので濃縮などの手間が必要であること、ゲル溶出からサンプリング部までの距離が長く、吸着による損失あるいは吸着物の脱離による汚染などの問題が生じやすい難点があった。
【0004】
【課題を解決するための手段】
上記課題を解決するために、本発明では泳動路の途中に試料分画セルを挿入する。試料分画セルは泳動電流路を閉塞しないように底部が解放されている。また、試料分画セルは、分離試料を分画分取できるように複数のセルでアレーを構成し、泳動路を横切る方向に移動できるようになっている。分離された試料の分取タイミングは試料の通過をモニターする検出器からの信号に基づいて、あるいは泳動時間に基づいて決定される。
【0005】
本発明の別の解決手段によると、分離された試料、例えばゲル分離部から溶出した試料を微量の溶媒と共に試料分画セル中に噴霧することによってサンプリングする。
【0006】
【作用】
電気泳動路中にセルアレーを挿入し、それを電気泳動路中に一時に1個のセルが位置するように位置づけて泳動路を横切る方向に動かすことにより泳動分離試料を実時間で分画分取できる。分画用セルアレーが分離部に直結しているため、吸着による損失および分離能の低下を防止することができる。
【0007】
また、ゲルから溶出する試料を溶媒液をゲルキャピラリー管を中心にシースフロー状に流して噴霧器に導入し、霧化させることにより、管壁への吸着損失を防ぎ、あまり大きく稀釈することなくサンプリングできる。
【0008】
【実施例】
〔実施例1〕
図1は本発明による分画装置の1例である。分画しようとするDNA断片試料を通常のバッファー液6が入った上部バッファー槽中のキャピラリーゲル上部11に注入する。DNA断片は末端に蛍光標識オリゴマーなどをライゲーションにより付加し、蛍光標識しておく。電極9および10の間に電圧をかけ、DNA試料を電気泳動させる。電気泳動部はキャピラリー管でできていて内部はアガロースあるいはポリアクリルアミドゲルが充填されており、内径0.2〜1mmのものを目的に応じて選択使用できる。内径0.2mm、長さ15cmのポリアクリルアミドゲルを充填したキャピラリー管を使用するときには電極間に500V〜1kV程度の電圧をかけ、内径1mm、長さ10cmのアガロースゲルを充填したキャピラリー管を使用するときは電極間に100V程度の電圧をかける。ゲル中で試料はそのサイズに応じて分離されるが、その様子は蛍光検出器14を用いてモニターできる。
【0009】
分離された試料は上部セル保持板4の細孔13を通って分画セル3内に入る。分画セルの直径は1〜5mmでゲル管の5倍程度の大きさであり、容積は40〜100μlである。分画セル3に流入したDNA断片は、拡散により広がると同時に受ける電界は面積比分だけ小さくなり(1/25)、DNA断片はこの領域に長時間滞留する。蛍光モニターでDNA断片の通過を知り、検出部から分画部までの泳動時間を考慮した時間遅らせて分画セルカートリッジ2をモーター15により移動させる。分画セルは上部セル保持板4及び下部セル保持板5で挟まれており、これによりDNA断片は分画セル内に保持されることになる。分画セルの形状は直線状アレー、円盤状アレーなど任意の形状を取り得る。各分画セルの下部には0.1mm径の細孔があり、更に分画セルカートリッジを支えるセル保持板5にも細孔12が空いており、泳動電流路を形成している。分画セルはプラスチック、例えばポリプロピレンで作られ、上下のセル保持板4、5はテフロン、ポリイミド樹脂などで作られる。
【0010】
分画セルの底部に細孔を設けただけでDNAの流失はほとんど無視できる程度であるが、細孔の代わりに底部にゲルや分子ふるい膜分画フィルターを設けてDNAの流失を防いでも良く、特に細孔を設けた上で更にゲルや分子ふるい膜分画フィルターを設けるようにすると、ゲルや分子ふるい膜分画フィルターの微小領域にDNAを濃縮してトラップすることが可能になるので有利である。
【0011】
分画セルカートリッジの移動は蛍光モニターの信号に基づいて行っても良いし、一定時間毎に移動して分画することもできる。これらの動作はコントローラー16によって制御される。通常分画セルの径は2mmなので、50ケ程度のセルを並べることができる。更に多くのセルが必要なときには2次元的にセルを並べて前後左右方向に移動させながら分画することもできる。
【0012】
なお、図では詳細を省略してあるが、分画セルカートリッジ2は各分画セルの密閉性を保ったまま、バッファー液7、8の入った槽から取り出せるようになっており、DNA断片の分取が終了して外部に取り出したあと、分画セルカートリッジ2の分画セル3に直接微量のDNAプローブ等を注入して分析に供することができる。
〔実施例2〕
図2は本発明による分画装置の他の実施例の構成図である。この実施例においてはシースフローを併用しており、分取部の構成は実施例1のものとほぼ同じである。実施例1では下部バッファー槽中に電極10を設置したが、本実施例では図のようにシースフロー液槽17中に設置しても良い。
【0013】
ゲル電気泳動分離部1から溶出したDNA断片は、シースフロー液(組成は電気泳動用バッファー液)と共に上部セル保持板4の細孔13を通過し分画セル3に入る。分画セル中にはバッファー液があらかじめ満ちているが、試料を含んだシースフロー液と置換されていく。シースフロー液の流量は、加圧器からシースフロー液槽17に印加する圧力によって制御できるが、通常10μl/分程度である。分画セルの容積は40〜100μlである。シースフロー液は分画セルを通過しバッファー液槽7側へ抜けでるが、出口孔となる細孔12は図示のように流入孔である細孔13とずらした位置にあり、直接流出することはなく、DNA断片は分画セル内に滞留する。さらに、分画セル内にシースフロー液が流入する際には、セル内は乱流状態になるため、DNA断片のセル外への流失が少なく、より効果的な分取ができる。この実施例では蛍光検出器14を分画セルの直前のゲルのない部分に取り付けることができるので、実時間分取には都合が良い。細孔12、13は0.1〜0.2mmの径とし、シースフロー液の線速度を速めている。なお、実施例1と同様に分画セルの出口側細孔部に分子ふるい膜等を取り付け、下部を吸引しても良い。
〔実施例3〕
図3は、本発明の別の実施例の構成図である。内径0.2〜1mmのキャピラリー管にアガロースあるいはポリアクリルアミドゲルを充填したゲル電気泳動分離部1で分離されたDNA断片を、シースフロー液槽17から供給されるシースフロー液(組成は電気泳動用バッファー液)中に溶出させる。そのDNA断片を霧化器18でシースフロー液と共に噴霧し、分画セル20中に分取する。分画セル20は、前述の実施例と同様に直径1〜5mm、容積40〜100μlとし、ポリプロピレン等のプラスチックで作ることができるが、底部に細孔を設ける必要はない。また、この実施例では分画セルアレー中にあらかじめバッファー液を入れておく必要はなく、高濃度のDNA断片を分取することができる。
【0014】
噴霧法としてはシースフローを内径0.1mmのニッケル管等に導き、先端を加熱噴霧する方法、先端に電界をかけて電界噴霧する方法あるいはプリンターのインクジェットのように圧電素子を用いて管の容積を減少させて噴出させる方法等があるが、いずれの方法も使用することができる。ここではインクジェット法を採用し、DNA断片を溶出したシースフローを圧電素子を取り付けた管径0.1mmの細管に流量10μl/分で導き、圧電素子に数百kHzの電気信号を数十〜数百ボルトの電圧で印加してDNA断片を分画セルアレー20中に分取した。
【0015】
図3には図示していないが、前述の実施例と同様に、DNA断片の通過をモニターする検出器を試料流路に設け、その検出器からのモニター信号に基づきコントローラによって分画セルカートリッジを駆動するモータ15を制御するように構成してもよいことはもちろんである。
また、本実施例の分離部は電気泳動を利用するものに限られるものではなく、微量の試料を分離する液体クロマトグラフのようなものであってもよい。その場合にはシースフローは必要なく、液体クロマトグラフからの溶出液をそのまま霧化器18に導入すればよい。
【0016】
【発明の効果】
本発明によれば分離部とサンプリング部が直結しているので、システムがコンパクトになる上、吸着等による試料の損失を少なくすることができる。また、微量の試料を多量の溶液で希釈することなく高濃度の状態で分画することができる。そして、試料を分画セルの中に直接分取するので、その分画セル中に微量の試薬を注入して分析などの次の処理を簡便に行うことができる。
【図面の簡単な説明】
【図1】本発明の分離・分取装置の第1の実施例の構成図。
【図2】本発明の分離・分取装置の第2の実施例の構成図。
【図3】本発明の分離・分取装置の第3の実施例の構成図。
【符号の説明】
1 ゲル電気泳動分離部
2 分画セルカートリッジ
3 分画セル
4 上部セル保持板
5 下部セル保持板
6 上部バッファー液
7 下部バッファー液
8 バッファー液
9,10 電極
11 試料保持部
12 泳動路終端部細孔
13 分画セル入口細孔
14 光検出器
15 モータ駆動部
16 コントローラ
17 シースフロー液槽
18 霧化器
19 保持板
20 開口型分画セル
[0001]
[Industrial applications]
The present invention relates to an apparatus for separating and separating biological substances such as DNA and protein.
[0002]
[Prior art]
Gel or electrophoresis was used to separate DNA or protein. For the separation of the separated components, a method of cutting out a gel portion containing a target substance and extracting DNA therefrom is used. Recently, Applied Biosystems Inc. An apparatus that transports a sample eluted from a gel from another using a liquid stream and separates the sample using a method similar to a fraction collector of a liquid chromatograph is beginning to be marketed.
[0003]
[Problems to be solved by the invention]
However, they are suitable for fractionating relatively large amounts of samples, but are not suitable for fractionating small amounts of samples. In other words, since the sample is diluted with a large amount of solution and sampled, it requires time and effort for concentration, and the distance from the gel elution to the sampling section is long, causing problems such as loss due to adsorption or contamination due to desorption of the adsorbate. There was an easy difficulty.
[0004]
[Means for Solving the Problems]
In order to solve the above problems, in the present invention, a sample fractionation cell is inserted in the middle of the migration path. The bottom of the sample fractionation cell is opened so as not to block the electrophoresis current path. In the sample fractionation cell, an array is composed of a plurality of cells so as to fractionate and separate a separated sample, and can be moved in a direction crossing the migration path. The separation timing of the separated sample is determined based on a signal from a detector that monitors the passage of the sample, or based on the migration time.
[0005]
According to another solution of the invention, the separated sample, for example the sample eluted from the gel separation part, is sampled by spraying it with a trace amount of solvent into a sample fractionation cell.
[0006]
[Action]
Insert a cell array into the electrophoresis path, position it one cell at a time in the electrophoresis path, and move it across the electrophoresis path to separate fractionated samples in real time. it can. Since the cell array for fractionation is directly connected to the separation section, it is possible to prevent the loss due to adsorption and the decrease in separation ability.
[0007]
In addition, the sample eluted from the gel is flowed in a sheath flow around the gel capillary tube, introduced into the nebulizer, and atomized to prevent adsorption loss on the tube wall and sample without diluting too much. it can.
[0008]
【Example】
[Example 1]
FIG. 1 shows an example of a fractionating device according to the present invention. The DNA fragment sample to be fractionated is injected into the upper portion 11 of the capillary gel in the upper buffer tank containing the ordinary buffer solution 6. The DNA fragment is fluorescently labeled by adding a fluorescently labeled oligomer or the like to the end by ligation. A voltage is applied between the electrodes 9 and 10, and the DNA sample is electrophoresed. The electrophoresis section is made of a capillary tube, the inside of which is filled with agarose or polyacrylamide gel. An inner diameter of 0.2 to 1 mm can be selected and used according to the purpose. When a capillary tube filled with a polyacrylamide gel having an inner diameter of 0.2 mm and a length of 15 cm is used, a voltage of about 500 V to 1 kV is applied between the electrodes, and a capillary tube filled with an agarose gel having an inner diameter of 1 mm and a length of 10 cm is used. At this time, a voltage of about 100 V is applied between the electrodes. The sample is separated according to its size in the gel, and its state can be monitored using the fluorescence detector 14.
[0009]
The separated sample enters the fractionation cell 3 through the pores 13 of the upper cell holding plate 4. The diameter of the fractionation cell is 1 to 5 mm, about 5 times the size of a gel tube, and the volume is 40 to 100 μl. The DNA fragment that has flowed into the fractionation cell 3 spreads by diffusion, and at the same time, the electric field it receives decreases by the area ratio (1/25), and the DNA fragment stays in this region for a long time. The passage of the DNA fragment is detected by the fluorescence monitor, and the fraction cell cartridge 2 is moved by the motor 15 with a delay in consideration of the migration time from the detection section to the fraction section. The fractionation cell is sandwiched between the upper cell holding plate 4 and the lower cell holding plate 5, whereby the DNA fragment is held in the fractionation cell. The shape of the fractionation cell can take any shape such as a linear array or a disk array. Each fraction cell has pores of 0.1 mm diameter at the lower part, and pores 12 are also formed in the cell holding plate 5 supporting the fraction cell cartridge, thereby forming a migration current path. The fractionation cell is made of plastic, for example, polypropylene, and the upper and lower cell holding plates 4, 5 are made of Teflon, polyimide resin or the like.
[0010]
Although the flow of DNA is almost negligible only by providing pores at the bottom of the fractionation cell, a gel or molecular sieve membrane separation filter may be provided at the bottom instead of the pores to prevent DNA flow. In particular, if a gel or a molecular sieve membrane fractionation filter is further provided after providing pores, it becomes possible to concentrate and trap DNA in a minute region of the gel or molecular sieve membrane fractionation filter. It is.
[0011]
The movement of the fractionation cell cartridge may be performed based on the signal of the fluorescence monitor, or may be performed at regular time intervals for fractionation. These operations are controlled by the controller 16. Since the diameter of the fractionation cell is usually 2 mm, about 50 cells can be arranged. When more cells are needed, the cells can be arranged two-dimensionally and divided while moving in the front, rear, left and right directions.
[0012]
Although not shown in detail in the figure, the fractionation cell cartridge 2 can be removed from the tanks containing the buffer solutions 7 and 8 while keeping the airtightness of each fractionation cell. After the fractionation is completed, the fraction is taken out, and a small amount of a DNA probe or the like can be directly injected into the fractionation cell 3 of the fractionation cell cartridge 2 for analysis.
[Example 2]
FIG. 2 is a block diagram of another embodiment of the fractionating apparatus according to the present invention. In this embodiment, a sheath flow is used together, and the configuration of the sorting section is almost the same as that of the first embodiment. In the first embodiment, the electrode 10 is provided in the lower buffer tank. However, in the present embodiment, the electrode 10 may be provided in the sheath flow liquid tank 17 as shown.
[0013]
The DNA fragments eluted from the gel electrophoresis separation unit 1 pass through the pores 13 of the upper cell holding plate 4 and enter the fractionation cell 3 together with the sheath flow liquid (the composition is a buffer solution for electrophoresis). Although the fractionation cell is previously filled with the buffer solution, it is replaced with the sheath flow solution containing the sample. The flow rate of the sheath flow liquid can be controlled by the pressure applied from the pressurizer to the sheath flow liquid tank 17, and is usually about 10 μl / min. The volume of the fractionation cell is 40-100 μl. Although the sheath flow liquid passes through the fractionation cell and escapes to the buffer liquid tank 7 side, the pores 12 serving as outlet holes are shifted from the pores 13 serving as inflow holes as shown in FIG. However, the DNA fragment stays in the fractionation cell. Furthermore, when the sheath flow liquid flows into the fractionation cell, the inside of the cell is in a turbulent state, so that the DNA fragments are less likely to flow out of the cell and more effective fractionation can be performed. In this embodiment, the fluorescence detector 14 can be attached to the gel-free portion immediately before the fractionation cell, which is convenient for real-time fractionation. The pores 12 and 13 have a diameter of 0.1 to 0.2 mm to increase the linear velocity of the sheath flow liquid. As in the first embodiment, a molecular sieve membrane or the like may be attached to the outlet side pore of the fractionation cell, and the lower part may be sucked.
[Example 3]
FIG. 3 is a configuration diagram of another embodiment of the present invention. The DNA fragment separated by the gel electrophoresis separation unit 1 in which a capillary tube having an inner diameter of 0.2 to 1 mm is filled with agarose or polyacrylamide gel is supplied to a sheath flow liquid tank 17 (composition: electrophoresis). Buffer solution). The DNA fragment is sprayed together with the sheath flow liquid by the atomizer 18 and collected in the fractionation cell 20. The fractionation cell 20 has a diameter of 1 to 5 mm and a volume of 40 to 100 μl as in the above-described embodiment, and can be made of plastic such as polypropylene, but it is not necessary to provide pores at the bottom. Further, in this example, it is not necessary to put a buffer solution in the fractionation cell array in advance, and a high-concentration DNA fragment can be fractionated.
[0014]
As the spraying method, the sheath flow is introduced into a nickel tube with an inner diameter of 0.1 mm and the tip is heated and sprayed, the electric field is sprayed by applying an electric field to the tip, or the volume of the tube using a piezoelectric element such as an ink jet printer. There is a method of jetting while reducing the pressure, but any method can be used. Here, an ink jet method is adopted, and a sheath flow eluted with DNA fragments is guided at a flow rate of 10 μl / min to a thin tube having a diameter of 0.1 mm to which a piezoelectric element is attached, and an electric signal of several hundred kHz is supplied to the piezoelectric element for several tens to several times. A DNA fragment was fractionated into the fractionation cell array 20 by applying a voltage of 100 volts.
[0015]
Although not shown in FIG. 3, a detector for monitoring the passage of the DNA fragment is provided in the sample flow channel, and the fractionation cell cartridge is controlled by the controller based on a monitor signal from the detector, as in the above-described embodiment. It goes without saying that the motor 15 to be driven may be controlled.
Further, the separation unit of the present embodiment is not limited to a unit using electrophoresis, and may be a liquid chromatograph for separating a small amount of sample. In that case, the sheath flow is not necessary, and the eluate from the liquid chromatograph may be introduced into the atomizer 18 as it is.
[0016]
【The invention's effect】
According to the present invention, the separation unit and the sampling unit are directly connected, so that the system is compact and loss of the sample due to adsorption or the like can be reduced. Further, a small amount of a sample can be fractionated in a high concentration state without being diluted with a large amount of a solution. Then, since the sample is directly collected in the fractionation cell, the next process such as analysis can be easily performed by injecting a small amount of reagent into the fractionation cell.
[Brief description of the drawings]
FIG. 1 is a configuration diagram of a first embodiment of a separation / fractionation apparatus according to the present invention.
FIG. 2 is a configuration diagram of a second embodiment of the separation / fractionation apparatus of the present invention.
FIG. 3 is a configuration diagram of a third embodiment of the separation / fractionation apparatus of the present invention.
[Explanation of symbols]
DESCRIPTION OF SYMBOLS 1 Gel electrophoresis separation part 2 Fractionation cell cartridge 3 Fractionation cell 4 Upper cell holding plate 5 Lower cell holding plate 6 Upper buffer solution 7 Lower buffer solution 8 Buffer solution 9,10 Electrode 11 Sample holding unit 12 Hole 13 Fraction cell entrance pore 14 Photodetector 15 Motor drive unit 16 Controller 17 Sheath flow liquid tank 18 Atomizer 19 Holding plate 20 Open type fractionation cell

Claims (6)

試料を分離する分離部と、
分離された前記試料を収めるための複数の分画セルを有する分取部と、
分離された前記試料を、前記分取部に移動させる手段と、
前記分離部を通過する前記試料を検出する検出部と、
前記分画セルを前記分離する方向を横切る方向に移動させる移動手段と、
前記分離部と前記分取部との間に設けられる分画セル保持板とを具備し、
前記分画セル保持板は、前記分離部の内径及び前記分画セルの径よりも小さい径を有する流入孔を具備することを特徴とする分離分取装置。
A separation unit for separating the sample,
A fractionation unit having a plurality of fractionation cells for storing the separated sample,
Means for moving the separated sample to the sorting section,
A detection unit that detects the sample that passes through the separation unit,
Moving means for moving the fractionation cell in a direction transverse to the direction of separation,
Comprising a fractionation cell holding plate provided between the separation unit and the fractionation unit,
The separation / fractionation apparatus, wherein the fractionation cell holding plate includes an inflow hole having a diameter smaller than an inner diameter of the separation unit and a diameter of the fractionation cell.
前記分離部は、キャピラリーゲル電気泳動部であり、内径が前記分画セルの径よりも小さいものであることを特徴とする請求項1に記載の分離分取装置。The separation and separation device according to claim 1, wherein the separation unit is a capillary gel electrophoresis unit, and has an inner diameter smaller than a diameter of the fractionation cell. 試料を電気泳動により分離する電気泳動部と、
前記電気泳動部の試料溶出端を囲むように設けられたシースフローセルと、
分離された前記試料を収めるための複数の分画セルを有する分取部と、
分離された前記試料を、前記分取部に移動させる手段と、
前記シースフローセルを通過する前記試料を検出する検出部と、
前記分画セルを前記電気泳動の方向を横切る方向に移動させる移動手段と、
前記シースフローセルと前記分取部との間に設けられる分画セル保持板とを具備し、
前記分画セル保持板は、前記シースフローセルの出口端の内径及び前記分画セルの径よりも小さい径を有する流入孔を具備することを特徴とする分離分取装置。
An electrophoresis section for separating the sample by electrophoresis,
A sheath flow cell provided so as to surround the sample elution end of the electrophoresis unit,
A fractionation unit having a plurality of fractionation cells for storing the separated sample,
Means for moving the separated sample to the sorting section,
A detection unit that detects the sample passing through the sheath flow cell,
Moving means for moving the fractionation cell in a direction transverse to the direction of the electrophoresis,
A fractionation cell holding plate provided between the sheath flow cell and the fractionation unit,
The separation / fractionation apparatus, wherein the fraction cell holding plate includes an inflow hole having an inner diameter at an outlet end of the sheath flow cell and a diameter smaller than the diameter of the fraction cell.
前記分取部は、底部に流出孔を有し、前記流出孔は前記流入孔と前記電気泳動の方向においてずらした位置に設けられたものであることを特徴とする請求項3に記載の分離分取装置。4. The separation according to claim 3, wherein the sorting unit has an outflow hole at a bottom, and the outflow hole is provided at a position shifted from the inflow hole in the direction of the electrophoresis. 5. Sorting device. 前記シースフローセルは、出口端の内径が前記分画セルの径よりも小さいことを特徴とする請求項3に記載の分離分取装置。The separation / fractionation apparatus according to claim 3, wherein the sheath flow cell has an inner diameter at an outlet end smaller than a diameter of the fractionation cell. 前記分画セルの底部に細孔と、分子ふるい膜のいずれかを有することを特徴とする請求項1又は請求項3に記載の分離分取装置。The separation / fractionation apparatus according to claim 1 or 3, wherein the fractionation cell has one of a pore and a molecular sieve membrane at the bottom.
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