JP3523293B2 - Method for enhancing interferon production - Google Patents

Method for enhancing interferon production

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Description

【発明の詳細な説明】Detailed Description of the Invention

【0001】[0001]

【産業上の利用分野】本発明は制癌剤や抗ウィルス剤と
して有用なインターフェロンの産生を増強する製法に関
する。
BACKGROUND OF THE INVENTION 1. Field of the Invention The present invention relates to a method for enhancing the production of interferon which is useful as an anticancer agent or antiviral agent.

【0002】[0002]

【従来の技術】インターフェロンは動物細胞が作り出す
抗ウィルス作用をもったタンパク質として定義される一
連の物質であり、α,β,γの3種類のインターフェロ
ンが見出されている。インターフェロン−αは白血球や
リンパ芽球様細胞が分泌するインターフェロンとして見
出されるもので、インターフェロン−αには多くのサブ
タイプが存在し165,166,172個のアミノ酸か
らなることが知られている(Biomedica, 6(14), 43-49
頁( 通巻1379-1385 頁)(1991) )。またインターフェロ
ンには、抗ウィルス作用の他に抗腫瘍作用、免疫系細胞
に対する作用等の多面的作用が知られている(小林茂保
編 インターフェロンの科学 講談社サイエンティフィ
ク 1985, 44 頁)。
2. Description of the Related Art Interferons are a series of substances defined by animal cells as proteins having an antiviral action, and three types of interferons, α, β and γ, have been found. Interferon-α is found as an interferon secreted by leukocytes and lymphoblastoid cells, and it is known that interferon-α has many subtypes and consists of 165, 166, 172 amino acids ( Biomedica, 6 (14), 43-49
Pages (Vol. 1379-1385) (1991)). In addition to antiviral effects, interferon is known to have multiple effects such as antitumor effect and effect on immune system cells (Shigeru Kobayashi, Interferon Science Kodansha Scientific 1985, p. 44).

【0003】インターフェロン−αの製造法には白血球
やリンパ芽球様細胞をセンダイウィルスやニューキャッ
スル病ウィルスなどのウィルスで誘発する方法、遺伝子
組換え微生物による生産、遺伝子組換え動物細胞による
生産等が知られているが、リンパ芽球様細胞等の株化細
胞による産生は多くのサブタイプ成分を含み、天然に存
在するインターフェロン−α(以下天然型と記載する)
に最も近く、かつ安全性が高いと考えられている。
The method for producing interferon-α includes a method of inducing leukocytes and lymphoblastoid cells with viruses such as Sendai virus and Newcastle disease virus, production by genetically modified microorganisms, production by genetically modified animal cells and the like. Although known, production by cell lines such as lymphoblastoid cells contains many subtype components, and naturally-occurring interferon-α (hereinafter referred to as natural type)
It is considered to be the closest and safer to.

【0004】動物細胞培養法の産生細胞としては、産生
能の観点から、リンパ芽球様細胞が挙げられる。リンパ
芽球様細胞としては、特にナマルバ細胞株が好ましい。
ナマルバ細胞株は、バーキットリンパ腫由来の株化細胞
でインターフェロン高産生の細胞株である(S. Karger,
Basel, Develop. Biol. Standard., 38, 343-348(197
8) )。この細胞株を培養しセンダイウィルスを誘発剤
として用いる方法が効率的なインターフェロン製造法と
して大量生産に用いられている(Methods in Enzymolog
y, 119, 35-38 )。さらに、センダイウィルス等の誘発
剤でインターフェロン−αを誘発する前に酪酸、ジメチ
ルスルホキシド、5−ブロモデオキシウリジン、等の産
生増強剤であらかじめ細胞を処理することで、インター
フェロン産生を増強する方法が知られている(Journal
of Interferon Research, 2(2), 261-270(1982))。
From the viewpoint of productivity, lymphoblastoid cells can be mentioned as the production cells of the animal cell culture method. As the lymphoblastoid cells, Namalwa cell line is particularly preferable.
The Namalwa cell line is a cell line derived from Burkitt lymphoma and is a cell line with high interferon production (S. Karger,
Basel, Develop. Biol. Standard., 38 , 343-348 (197
8)). A method of culturing this cell line and using Sendai virus as an inducer is used for mass production as an efficient interferon production method (Methods in Enzymolog
y, 119 , 35-38). Furthermore, a method for enhancing interferon production is known by treating cells in advance with a production enhancer such as butyric acid, dimethyl sulfoxide, 5-bromodeoxyuridine, etc. before inducing interferon-α with an inducer such as Sendai virus. (Journal
of Interferon Research, 2 ( 2), 261-270 (1982)).

【0005】また、インターフェロン−αの産生増強に
用いられている薬剤による細胞の処理温度は、36〜3
7℃である(特開昭54−20119号公報,同57−
74093号公報,特公昭60−18398号公報)。
しかしながら、上記方法をもってしても動物細胞培養法
では遺伝子組換え微生物法より産生量が低いため、単位
細胞あたりより高力価のインターフェロン−αを分泌さ
せる産生方法の開発が望まれていた。
[0005] The treatment temperature of cells with a drug used to enhance the production of interferon-α is 36 to 3
7 ° C. (Japanese Patent Laid-Open Nos. 54-20119 and 57-57)
No. 74093, Japanese Patent Publication No. 60-18398).
However, even with the above method, the production amount in the animal cell culture method is lower than that in the gene recombinant microorganism method. Therefore, development of a production method in which a higher titer of interferon-α is secreted per unit cell has been desired.

【0006】[0006]

【発明が解決しようとする課題】本発明はインターフェ
ロン産生量を増加させることを目的とする。
The object of the present invention is to increase the interferon production.

【0007】[0007]

【課題を解決するための手段】本発明はインターフェロ
ン産生増強剤を含む培地で細胞を培養する際、その温度
を35℃以下で行うことにより、インターフェロンの産
生を増強する方法に関する。
The present invention relates to a method for enhancing interferon production by culturing cells in a medium containing an interferon production enhancer at a temperature of 35 ° C. or lower.

【0008】インターフェロンの製造法としては以下に
示す方法を挙げることができる。
The method for producing interferon includes the following methods.

【0009】動物細胞を36〜38℃の温度で培養し、
この細胞を産生増強剤を含む培地で希釈してもよいし、
また遠心分離または限外ろ過により細胞を分離して、分
離した細胞を産生増強剤を含む培地に懸濁してもよい。
これを26〜35℃の温度で24時間以上インキュベー
ションする。インキュベーション時間は24時間から6
0時間がよいが、48時間前後が適している。また、培
地中の産生増強剤の濃度は産生増強剤の種類によって異
なるが、酪酸の場合0.5〜5mMが最適である。さら
に、産生増強剤で動物細胞を処理した後、インターフェ
ロン誘発剤で誘発を行う。インターフェロンの誘発は産
生増強剤を含む動物細胞培養液にインターフェロン誘発
剤を添加するか、または動物細胞培養液を遠心分離また
は限外ろ過により細胞を分離し、分離した細胞を産生増
強剤を含まない培地に懸濁した後、インターフェロン誘
発剤を添加する方法が挙げられる。そして26〜35℃
の温度で8時間以上インキュベーションすることにより
インターフェロンの分泌を行う。産生されたインターフ
ェロンは、遠心分離、または ろ過により細胞と分離
し、上清液、または濾液として回収し、沈澱、有機溶媒
での抽出、カラムクロマトグラフィー等の通常の方法に
より単離できる(例えばMethods in Enzymology, 119,
39-47 、Acta microbiol. Acad. Sci. hung., 28, 263-
270(1981) )。
The animal cells are cultivated at a temperature of 36 to 38 ° C.,
The cells may be diluted with a medium containing a production enhancer,
Alternatively, cells may be separated by centrifugation or ultrafiltration, and the separated cells may be suspended in a medium containing a production enhancer.
This is incubated at a temperature of 26-35 ° C for 24 hours or more. Incubation time is 24 hours to 6
0 hours is good, but around 48 hours is suitable. The concentration of the production enhancer in the medium varies depending on the type of the production enhancer, but in the case of butyric acid, 0.5-5 mM is optimal. Furthermore, after the animal cells are treated with the production enhancer, induction is performed with the interferon inducer. To induce interferon, the interferon inducer is added to the animal cell culture medium containing the production enhancer, or the cells are separated by centrifugation or ultrafiltration of the animal cell culture medium, and the separated cells are free from the production enhancer. A method of adding an interferon-inducing agent after suspending the medium is mentioned. And 26-35 ° C
The interferon is secreted by incubating at the temperature of 8 hours or more. The produced interferon can be separated from cells by centrifugation or filtration, recovered as a supernatant or a filtrate, and isolated by an ordinary method such as precipitation, extraction with an organic solvent, or column chromatography (for example, Methods in Enzymology, 119 ,
39-47, Acta microbiol. Acad. Sci. Hung., 28 , 263-
270 (1981)).

【0010】本発明でインターフェロン産生に用いられ
る動物細胞はインターフェロンが産生されるものであれ
ば特に限定はないが、インターフェロン−αが産生され
る細胞が好ましい。このような細胞の例としては白血
球、白血病細胞、リンパ球、リンパ芽球様細胞が挙げら
れるが、とりわけNC−37、BALL−1、ナマルバ
細胞が好ましい。
The animal cells used for interferon production in the present invention are not particularly limited as long as they produce interferon, but cells producing interferon-α are preferred. Examples of such cells include leukocytes, leukemia cells, lymphocytes, and lymphoblastoid cells, but NC-37, BALL-1, and Namalwa cells are particularly preferable.

【0011】動物細胞の培養は、これらの細胞をプラス
ティック、ガラス、ステンレス製容器中で培養する。ま
たホローファイバーのような中空繊維を用いた培養も可
能である。
For culturing animal cells, these cells are cultured in a plastic, glass or stainless steel container. In addition, culture using hollow fibers such as hollow fibers is also possible.

【0012】培地は通常動物培養に用いられるものであ
ればよく、通常用いられるイーグル最小必須培地、Ha
m F12培地、ダルベッコ変法イーグル培地、RPM
I−1640培地が例示でき、またこれらの混合培地で
もよい。培地には通常0.5〜10%の動物血清を添加
する。血清としてはウシ胎児血清、仔牛血清、成牛血
清、馬血清、ヒト血清などを例示しうるが血清添加量を
少なくするためにカゼイン加水分解物や牛肉エキス加水
分解物等のタンパク質加水分解物を添加することもでき
る。また、動物血清の代わりにウシ血清アルブミン、ウ
マ血清アルブミン、ヒト血清アルブミン等のタンパク質
も使用できる。
Any medium can be used as long as it is usually used for culturing animals, and a commonly used Eagle minimum essential medium, Ha
m F12 medium, Dulbecco's modified Eagle medium, RPM
The I-1640 medium can be exemplified, and a mixed medium thereof may be used. The medium is usually supplemented with 0.5 to 10% animal serum. Examples of the serum include fetal bovine serum, fetal bovine serum, adult bovine serum, horse serum, human serum and the like, but protein hydrolysates such as casein hydrolysates and beef extract hydrolysates to reduce the amount of serum added. It can also be added. Further, proteins such as bovine serum albumin, horse serum albumin and human serum albumin can be used instead of animal serum.

【0013】インターフェロン産生増強剤としては酢
酸、プロピオン酸、酪酸、吉草酸、ヘキサン酸等の直鎖
低級脂肪酸が例示できるが酪酸が好ましい。
Examples of the interferon production enhancer include straight chain lower fatty acids such as acetic acid, propionic acid, butyric acid, valeric acid and hexanoic acid, but butyric acid is preferred.

【0014】本発明の最も好ましい態様としてはナマル
バ細胞を酪酸存在下で培養した後センダイウィルス(カ
ンテル株)をインターフェロン誘発剤として用いる方法
を挙げることができる。
The most preferred embodiment of the present invention is a method of culturing Namalwa cells in the presence of butyric acid and then using Sendai virus (Kantel strain) as an interferon inducer.

【0015】[0015]

【発明の効果】本発明の製造法により、動物細胞による
インターフェロンの産生を増強させ、インターフェロン
を工業的に有利に製造できる。特に天然型インターフェ
ロン−αの製造においてはその性質を損なわずにインタ
ーフェロンの産生を増強させることができる。
INDUSTRIAL APPLICABILITY According to the production method of the present invention, interferon production by animal cells can be enhanced, and interferon can be produced industrially advantageously. In particular, in the production of natural interferon-α, the production of interferon can be enhanced without impairing its properties.

【0016】[0016]

【実施例】以下実施例により本発明を具体的に説明する
が、本発明はもとよりこれに限定されるものではない。
EXAMPLES The present invention will be described in detail below with reference to examples, but the present invention is not limited to these examples.

【0017】実施例1 1.細胞および試薬 <細胞> ナマルバ細胞 <培地> 7%または1%牛血清(生後1年6ヶ月以内
の牛)を含むRPMI−1640(牛血清、RPMI−
1640培地:ギブコ) <試薬> 酪酸ナトリウム(和光純薬工業) プロピオン酸ナトリウム(ナカライ)
Embodiment 1 1. Cells and Reagents <Cells> Namalwa cells <Medium> RPMI-1640 (bovine serum, RPMI-) containing 7% or 1% bovine serum (bovine within 1 year and 6 months old)
1640 medium: Gibco) <Reagent> Sodium butyrate (Wako Pure Chemical Industries) Sodium propionate (Nacalai)

【0018】2.インターフェロンの誘導−(実験1) 温度37゜Cの条件下、7%牛血清を含むRPMI−1
640培地で継代培養したナマルバ細胞3.90×10
6 個/mlを1%牛血清を含むRPMI−1640培地
で2倍に希釈しさらに酪酸濃度が2mMになるように酪
酸ナトリウム溶液を添加した細胞液500mlを37゜
Cと31゜Cでそれぞれ47.5時間培養した。次にそ
れぞれの細胞液から100mlずつ、スピンナーフラス
コに移し、これにセンダイウィルスを0.2v/v%濃
度(3.2HA単位(Haemagglutinating unit)/ml)
になるように添加して、いずれの細胞培養液も温度33
℃でインターフェロン誘発を行った。誘発開始から23
時間後、細胞培養液を遠心分離し上清液を回収した。さ
らに上清液中に含まれるセンダイウィルスを塩酸酸性に
して不活化した後、水酸化ナトリウム水溶液で再度中和
した。この不活化、中和した上清液についてインターフ
ェロン−α濃度をラジオイムノアッセイ法(RIA法)
で測定した。
2. Induction of interferon- (Experiment 1) RPMI-1 containing 7% bovine serum under the condition of temperature 37 ° C
Namalwa cells subcultured in 640 medium 3.90 x 10
6 cells / ml was diluted 2-fold with RPMI-1640 medium containing 1% bovine serum, and 500 ml of cell solution added with sodium butyrate solution to a butyric acid concentration of 2 mM was added at 47 ° C and 31 ° C respectively. Cultured for 5 hours. Next, 100 ml of each cell solution was transferred to a spinner flask, and 0.2 v / v% concentration of Sendai virus (3.2 HA unit (Haemagglutinating unit) / ml) was transferred to the spinner flask.
So that the temperature of each cell culture solution is 33
Interferon induction was performed at ° C. 23 from the start of induction
After a lapse of time, the cell culture solution was centrifuged to collect the supernatant. Further, the Sendai virus contained in the supernatant was acidified with hydrochloric acid to inactivate it, and then neutralized again with an aqueous sodium hydroxide solution. Interferon-α concentration of the inactivated and neutralized supernatant was determined by radioimmunoassay (RIA method).
It was measured at.

【0019】2.インターフェロンの誘導−(実験2) 実施例1と同様に継代培養したナマルバ細胞2.93×
106 個/mlを1%牛血清を含むRPMI−1640
培地で2倍に希釈し、さらにプロピオン酸ナトリウム濃
度が10mMになるようにプロピオン酸ナトリウム溶液
を添加した細胞液25mlを37℃と35℃でそれぞれ
46.7時間培養した。次にそれぞれの細胞から10m
lずつプラスティック製組織培養用フラスコに移し、こ
れにセンダイウィルスを0.5v/v%濃度(8HA単
位(Haemagglutinating unit)/ml)になるように添加
していずれの細胞培養液も温度31℃でインターフェロ
ン誘発を行った。誘発開始から23.5時間後細胞培養
液を遠心分離し、上清液を回収した。さらに実施例1記
載の方法にてセンダイウィルスの不活化とサンプルの中
和を行った後、インターフェロン−α濃度をRIA法で
測定した。
2. Induction of interferon- (Experiment 2) Namalwa cells 2.93x subcultured in the same manner as in Example 1
RPMI-1640 containing 10 6 cells / ml in 1% bovine serum
Twenty-five ml of the cell solution, which was diluted 2-fold with the medium and further added with a sodium propionate solution so that the sodium propionate concentration was 10 mM, was cultured at 37 ° C. and 35 ° C. for 46.7 hours respectively. Then 10m from each cell
Transfer 1 liter each to a plastic tissue culture flask and add Sendai virus to this at a concentration of 0.5 v / v% (8 HA units (Haemagglutinating unit) / ml) to prepare a cell culture medium at a temperature of 31 ° C. Interferon induction was performed. 23.5 hours after the initiation of induction, the cell culture medium was centrifuged and the supernatant was collected. After inactivating the Sendai virus and neutralizing the sample by the method described in Example 1, the interferon-α concentration was measured by the RIA method.

【0020】3.インターフェロン−αの定量 ラジオイムノアッセイ法により行った。抗α−IFNポ
リクローナル抗体(第一抗体)を固定化した抗体ビーズ
を抗原抗体反応により試料中のα−IFNと結合させ
た。さらに125 Iでラベル化した抗IFNモノクローナ
ル抗体(第二抗体)を結合させ、ビーズに結合した125
Iの放射能をγカウンタにて測定した。同時にインター
フェロン−α標準液を用いて同様の操作を行い、得られ
た測定値から検量線を作成し試料中のインターフェロン
−α含量を決定した。第一抗体並びに第二抗体はダイナ
ボット社製IFNαキットを使用した。インターフェロ
ン−α標準液はインターフェロン国際標準品J−501
を基準として作製した自家標準品を使用した。
3. Interferon-α quantitative radioimmunoassay was performed. The antibody beads on which the anti-α-IFN polyclonal antibody (first antibody) was immobilized were bound to α-IFN in the sample by an antigen-antibody reaction. Further 125 I in to bind the labeled anti-IFN monoclonal antibody (secondary antibody) bound to the beads 125
The radioactivity of I was measured with a γ counter. At the same time, the same operation was performed using the interferon-α standard solution, and a calibration curve was prepared from the obtained measured values to determine the interferon-α content in the sample. The IFNα kit manufactured by Dynabot was used for the first antibody and the second antibody. Interferon-α standard solution is Interferon international standard product J-501
An in-house standard product prepared based on the above was used.

【0021】4.結果 インターフェロン産生増強剤処理温度のインターフェロ
ン産生促進効果を表1に記載する。
4. Results Table 1 shows the interferon production promoting effect of the treatment temperature of the interferon production enhancer.

【表1】 *: 産生増強剤処理温度37℃時の産生量に対する比
率。 この表から判るように細胞を産生増強剤(直鎖低級脂肪
酸)で処理する際、温度37℃より35℃以下の温度で
処理する方がインターフェロン−αの産生量は有意に増
加した。
[Table 1] *: Ratio to the production amount at the production enhancer treatment temperature of 37 ° C. As can be seen from this table, when the cells were treated with the production enhancer (linear lower fatty acid), the interferon-α production was significantly increased when the cells were treated at a temperature of 37 ° C or lower than 35 ° C.

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (58)調査した分野(Int.Cl.7,DB名) C12P 21/00 BIOSIS/WPI(DIALOG)─────────────────────────────────────────────────── ─── Continuation of the front page (58) Fields surveyed (Int.Cl. 7 , DB name) C12P 21/00 BIOSIS / WPI (DIALOG)

Claims (6)

(57)【特許請求の範囲】(57) [Claims] 【請求項1】インターフェロン産生能を有する細胞をイ
ンターフェロン産生増強剤の存在下で培養した後、イン
ターフェロン産生誘発剤により誘発してインターフェロ
ンを産生させるインターフェロン製造法において、イン
ターフェロン産生増強剤の存在下での培養を実質的に26
35 ℃の範囲の温度で少なくとも 24 時間以上行うことを
特徴とするインターフェロンの製造法。
1. An interferon production method in which cells having interferon-producing ability are cultured in the presence of an interferon production enhancer, and then induced by an interferon production inducer to produce interferon, in the presence of an interferon production enhancer. Substantially 26
A method for producing interferon, which is performed at a temperature in the range of to 35 ° C for at least 24 hours or more .
【請求項2】産生増強剤の存在下での培養が少なくとも
48 時間である請求項 1 記載のインターフェロンの製造
法。
2. Culturing in the presence of a production enhancer is at least
The manufacture of interferon of claim 1 wherein from about 48 hours
Law.
【請求項3】産生増強剤の存在下での培養と誘発を、実
質的に 26 ℃〜 35 ℃の範囲の温度ですることを特徴とする
請求項 1 若しくは請求項 2 記載のインターフェロンの製造
法。
3. Culturing and induction in the presence of a production enhancer is carried out.
Characterized by a temperature in the range of qualitatively 26 ° C. ~ 35 ° C.
The manufacture of interferon of claim 1 or claim 2, wherein
Law.
【請求項4】産生増強剤が直鎖低級飽和カルボン酸であ
る請求項1、2または3に記載のインターフェロンの製造
法。
4. The method for producing interferon according to claim 1, 2 or 3, wherein the production enhancer is a linear lower saturated carboxylic acid.
【請求項5】産生増強剤が酪酸である請求項4記載のイ
ンターフェロンの製造法。
5. The method for producing interferon according to claim 4, wherein the production enhancer is butyric acid.
【請求項6】インターフェロンがインターフェロンαで
ある請求項1、2、3、4または5に記載のインターフ
ェロンの製造法。
6. The method for producing interferon according to claim 1, 2, 3, 4, or 5, wherein the interferon is interferon α.
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