JP3072919B2 - Monoclonal antibody and diagnostic method using the same - Google Patents

Monoclonal antibody and diagnostic method using the same

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Description

【発明の詳細な説明】DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION

【0001】[0001]

【産業上の利用分野】本発明はスーパーオキシド産生機
構の異常をきたしていると思われる種々の疾患、とりわ
け先天性慢性肉芽腫症の診断に有用な、並びに前記疾患
の生化学及び組織学的研究に有用な新規物質に関する。
より詳しくは、ヒト多核球細胞質因子-47KD蛋白(以下、
NCF-47KD)及び-67KD蛋白(以下、NCF-67KD)に対す
る単クローン性抗体、該抗体を分泌するハイブリドーマ
及び該抗体を利用するヒト常染色体劣性慢性肉芽腫症の
診断方法に関する。
The present invention is useful for the diagnosis of various diseases which are thought to cause abnormalities in the superoxide production mechanism, especially for the diagnosis of congenital chronic granulomatosis, and the biochemistry and histological analysis of said diseases. New substances useful for research.
More specifically, human polynuclear cell cytoplasmic factor-47KD protein (hereinafter, referred to as
The present invention relates to a monoclonal antibody against NCF-47KD) and -67KD protein (hereinafter, NCF-67KD), a hybridoma secreting the antibody, and a method for diagnosing human autosomal recessive chronic granulomatosis using the antibody.

【0002】[0002]

【従来の技術】慢性肉芽腫症(Chronic GranulomatousDi
sease:以下、CGD)は、スーパーオキシド産生能が多
核球、単球等で欠如している最も頻度の高い遺伝性食細
胞機能異常症である。本疾患では多核球やマクロファー
ジの殺菌能が欠失し、患者は反復重症細菌感染に悩まさ
れ、特にカタラーゼ陽性でH22非産生性の細菌や真菌
に対する殺菌能の低下が顕著である。抗生物質の進歩や
ST(Sulfamethoxazole-trimethoprim: サルファメトキ
サゾールトリメトプリム)合剤の予防投与により、細菌
感染はよくコントロールできるようになってきてはいる
が、なお、抗生物質耐性細菌感染や真菌感染により患者
が思春期後半に死亡する例が多い。従って、CGDの早
期診断とST合剤や抗真菌剤の予防投薬の重要性が高ま
っている。さらに、近年、インターフェロン-γ療法が
CGDのある病型においては有効と考えられるようにな
ってきており、その病型分類も予防的治療の観点からさ
らに重要となりつつある。
2. Description of the Related Art Chronic Granulomatous Diet
sease (hereinafter, CGD) is the most frequent hereditary phagocytic dysfunction in which superoxide-producing ability is lacking in polynuclear cells, monocytes, and the like. In this disease, the bactericidal activity of polynuclear cells and macrophages is lost, and patients suffer from repeated severe bacterial infections. In particular, the bactericidal activity of catalase-positive bacteria and fungi that do not produce H 2 O 2 is significantly reduced. Advances in antibiotics and prophylactic administration of Sulfamethoxazole-trimethoprim (ST) combination drugs have made it possible to control bacterial infections well, but antibiotic-resistant bacterial infections and fungal infections have Patients often die in late puberty. Therefore, the importance of early diagnosis of CGD and prophylactic administration of ST combinations and antifungal agents is increasing. Furthermore, in recent years, interferon-γ therapy has been considered to be effective in certain types of CGD, and its classification is becoming more important from the viewpoint of preventive treatment.

【0003】ヒト多核球のスーパーオキシド産生機構に
は3つの細胞膜因子と少なくとも3つの細胞質因子から
なるスーパーオキシド産生酵素複合体が大きく関与して
いる。スーパーオキシドを産生し好適に食細胞機能(殺
菌能)を発揮するためには、この酵素複合体が前述の各
因子の作用により活性化されることが必須の要件と考え
られ、各因子の欠失あるいは変異によりCGD等の疾患
がもたらされるものと推測される。
[0003] The superoxide-producing enzyme complex composed of three cell membrane factors and at least three cytoplasmic factors is greatly involved in the superoxide production mechanism of human polynuclear cells. In order to produce superoxide and to properly exert the phagocytic function (bactericidal activity), it is considered essential that this enzyme complex be activated by the action of each of the above-mentioned factors. It is presumed that loss or mutation leads to diseases such as CGD.

【0004】CGDの遺伝型式には伴性劣性遺伝型(チ
トクロームb558膜蛋白重鎖欠損)と常染色体劣性遺
伝型(チトクロームb558膜蛋白軽鎖欠損、NCF-47
KD及びNCF-67KD欠損)の2つの型式が知られており、
診断は従来、ヒト多核球NBT(ニトロブルーテトラゾ
リウム)還元能試験、チトクロームC還元能試験等によ
ってなされている。
The genotypes of CGD include sex-linked recessive genotypes (cytochrome b558 membrane protein heavy chain deficiency) and autosomal recessive genotypes (cytochrome b558 membrane protein light chain deficiency, NCF-47
KD and NCF-67KD deficiency) are known,
Conventionally, diagnosis has been made by a human polynuclear cell NBT (nitroblue tetrazolium) reducing ability test, a cytochrome C reducing ability test, and the like.

【0005】その病型分類については、伴性劣性遺伝型
診断は抗チトクロームb膜蛋白重鎖単クローン抗体によ
るフローサイトメーター診断が行なわれているが、常染
色体劣性型診断は、NCF-47KD及びNCF-67KDを同時
に認識するB1ポリクローナル抗体(Volpp, B.D.等, Sc
ience, 242:1295,1988)によるウェスタン・ブロット法し
か存在せず、末梢血より多核球分離後、細胞質を超遠心
分離し、さらに電気泳動を施して前記B1抗体でウェス
タン・ブロッティングする必要があり、非常に煩雑な手
技を要するものであった。また、B1抗体を用いる診断
方法ではNCF-47KD及びNCF-67KDの各々についての
欠損を的確に捕らえることは不可能で、病型分類の診断
法としては不十分である。前述の各種因子と疾患の病態
との関係はなお、不明な点が多々あり、それらの動向を
把握することができれば、それは基礎医学、臨床医学の
領域において非常に重要な意味を持つものと考えられ
る。
[0005] Regarding the pathologic classification, sex-linked recessive genotype diagnosis is performed by flow cytometry using an anti-cytochrome b membrane protein heavy chain monoclonal antibody, while autosomal recessive diagnosis is performed by NCF-47KD and NCF-47KD. B1 polyclonal antibody that simultaneously recognizes NCF-67KD (Volpp, BD, Sc
ience, 242: 1295, 1988) .It is necessary to separate the polynuclear cells from peripheral blood, ultracentrifuge the cytoplasm, further perform electrophoresis, and perform Western blotting with the B1 antibody. , A very complicated procedure was required. Further, the diagnostic method using the B1 antibody cannot accurately detect defects of each of NCF-47KD and NCF-67KD, and is insufficient as a diagnostic method for classification of disease types. There are still many unclear points about the relationship between the various factors mentioned above and the pathology of the disease, and if we can grasp their trends, it is considered to be very important in the fields of basic medicine and clinical medicine. Can be

【0006】単クローン性抗体は単一の抗原決定基に対
して特異的であり、かつこれを産生するハイブリドーマ
により安定的供給が可能なことから、抗原蛋白の機能及
び構造の解析、あるいは免疫測定(EIA、RIA)等に
近時、一般的に広く利用されるようになってきた。
[0006] Monoclonal antibodies are specific for a single antigenic determinant and can be stably supplied by a hybridoma producing the same. Therefore, analysis of the function and structure of the antigen protein, or immunoassay. (EIA, RIA) and the like have recently come into wide use.

【0007】[0007]

【発明が解決しようとする課題】常染色体劣性慢性肉芽
腫症の診断に利用でき、さらにスーパーオキシド産生機
構の異常がその病因と考えられる他の種々の疾患でも、
簡便に測定できるような特異性の高い単クローン性抗体
及び簡便な測定法の開発が切望された。ところが、従
来、上記のNCF-47KD及びNCF-67KDに反応する単ク
ローン性抗体に関する報告は全く行なわれていない。こ
れは所望のNCF-47KD及びNCF-67KDに反応する単ク
ローン性抗体を作製する際のNCF-47KD及びNCF-67
KD抗原の調製の困難性に起因するものと考えられた。
The present invention can be used for the diagnosis of autosomal recessive chronic granulomatosis, and is also used for various other diseases in which an abnormality in the superoxide production mechanism is considered to be the etiology.
The development of a highly specific monoclonal antibody that can be easily measured and a simple measurement method has been eagerly desired. However, no report has been made on the monoclonal antibodies reactive with NCF-47KD and NCF-67KD. This is because NCF-47KD and NCF-67 are used to produce monoclonal antibodies that react with the desired NCF-47KD and NCF-67KD.
This was thought to be due to the difficulty in preparing the KD antigen.

【0008】[0008]

【課題を解決するための手段】本発明者等は常染色体劣
性型慢性肉芽腫症で欠損するNCF-47KD及びNCF-67
KDを認識する単クローン性抗体について鋭意研究を重ね
た結果、所望の単クローン性抗体を提供し得る本発明に
到達した。NCF-47KD及びNCF-67KDを特異的に認識
する本発明の単クローン性抗体はIgGクラスに属し、
それらの具体例としてC-47/-1,2,3及びC-67/1,2,3と
名付けられたものが挙げられる。本発明によって得られ
た単クローン性抗体はFITCラベルにより、フローサ
イトメーター法によるCGDのより簡便な診断を可能に
すると同時に、ビオチン化による組織染色をも可能にし
た。
SUMMARY OF THE INVENTION The present inventors have determined that NCF-47KD and NCF-67 are defective in autosomal recessive chronic granulomatosis.
As a result of intensive studies on monoclonal antibodies recognizing KD, the present inventors have reached the present invention which can provide a desired monoclonal antibody. The monoclonal antibody of the present invention that specifically recognizes NCF-47KD and NCF-67KD belongs to the IgG class,
Specific examples thereof include those named C-47 / -1,2,3 and C-67 / 1,2,3. The monoclonal antibody obtained according to the present invention, by using the FITC label, allows a simpler diagnosis of CGD by a flow cytometer method, and also enables tissue staining by biotinylation.

【0009】本発明の単クローン性抗体を産生するハイ
ブリドーマはケラーとミルシュタインの方法(Kohler an
d Milstein, Nature: 256 p.495-497(1975))としてよく
知られた方法によって得られる。すなわち、好適な方法
で調製された抗原、NCF-47KD及びNCF-67KDでマウ
スを免疫した後、このマウスの脾臓細胞をマウス・ミエ
ローマ細胞と融合させ、得られたハイブリドーマから目
的とする抗体を産生し分泌するハイブリドーマを選別
し、単離することができる。
The hybridoma producing the monoclonal antibody of the present invention is obtained by the method of Keller and Milstein (Kohler an
d Milstein, Nature: 256 p. 495-497 (1975)). That is, after immunizing a mouse with an antigen prepared by a suitable method, NCF-47KD and NCF-67KD, spleen cells of this mouse are fused with mouse myeloma cells, and a target antibody is produced from the obtained hybridoma. The secreting hybridomas can be selected and isolated.

【0010】以下、本発明における単クローン性抗体の
調製方法及びその利用方法に関して概説する。
Hereinafter, a method for preparing a monoclonal antibody and a method for using the same in the present invention will be outlined.

【0011】(1) 抗原の単離・精製; 抗原として用いるNCF-47KD及びNCF-67KDは、ヒト
多核球細胞を原料として生化学的技法を組み合わせた方
法により調製することも可能であるが、本発明者は遺伝
子工学の技法を用いて大腸菌に発現させ、すなわち、N
CF-47KD及びNCF-67KDのcDNAを好適なベクター
を用いて大腸菌へ組み込み、IPTG(isopropyl-thiog
alactoside:イソプロピルチオガラクトシド)にて処理
後、各々の発現蛋白をSDS電気泳動し、各々の蛋白バ
ンドから泳動後溶出する方法で抗原調製の困難性を克服
した。こうして得られた組換えNCF-47KD及びNCF-
67KDを免疫抗原として使用した。
(1) Isolation and purification of antigen; NCF-47KD and NCF-67KD used as antigens can be prepared from human polynuclear cells as a raw material by a method combining biochemical techniques. The present inventors used genetic engineering techniques to express E. coli,
The CF-47KD and NCF-67KD cDNAs were incorporated into E. coli using a suitable vector, and IPTG (isopropyl-thiog
After treatment with alactoside (isopropyl thiogalactoside), each expressed protein was subjected to SDS electrophoresis, and elution was performed after electrophoresis from each protein band to overcome the difficulty of antigen preparation. The recombinant NCF-47KD and NCF-
67KD was used as the immunizing antigen.

【0012】(2) マウスの免疫; 免疫動物として、好適には4〜8週齢のBALB/cマウスを
用いることができるが、他の系のマウスも使用されう
る。免疫の際には、免疫スケジュール、及び抗原濃度は
十分な量の抗原刺激を受けたリンパ球が形成されるよう
選ばれるべきである。例えば、マウスの腹腔内に好適な
アジュバントと共に前記の組換えNCF-47KD/-67KDを
50μg/匹投与する。以後2週間おきに、初回免疫に使
用したものと同じ抗原を同量2〜5回投与する。3回目
の免疫以後、4〜7日目に眼底静脈より採血し、血液中
のNCF-47KD/-67KD各々に反応する抗体について検討
する。抗体の測定はウェスタン・ブロット法により好適
に行ない得る。
(2) Immunization of mice; BALB / c mice of 4 to 8 weeks of age can be preferably used as immunized animals, but mice of other strains can also be used. During immunization, the immunization schedule and antigen concentration should be chosen so that a sufficient amount of antigen-stimulated lymphocytes is formed. For example, the above recombinant NCF-47KD / -67KD together with a suitable adjuvant is injected intraperitoneally into mice.
50 μg / animal is administered. Thereafter, every two weeks, the same antigen as that used for the first immunization is administered 2 to 5 times in the same amount. On the 4th to 7th days after the third immunization, blood is collected from the fundus vein to examine antibodies in the blood that react with NCF-47KD / -67KD. Antibody measurement can be suitably performed by Western blotting.

【0013】細胞融合に供するため、融合処理の4〜8
日前に免疫したマウスにNCF-47KD/-67KD蛋白を50μ
g/匹を腹腔内に投与し、この追加免疫後、脾臓を無菌
的に摘出しこれより脾細胞を調製する。
In order to provide for cell fusion, 4 to 8
50μ of NCF-47KD / -67KD protein was added to mice immunized the day before.
g / animal is intraperitoneally administered, and after this booster, the spleen is aseptically removed and spleen cells are prepared therefrom.

【0014】(3) 細胞融合; 上記のごとく調製した脾臓単細胞懸濁液を、適当な細胞
株に由来するマウス骨髄腫細胞と適当な融合促進剤を使
用して細胞融合させる。脾臓細胞と骨髄腫細胞の好まし
い比率は約20:1〜約2:1の範囲である。
(3) Cell fusion; The spleen single cell suspension prepared as described above is subjected to cell fusion with mouse myeloma cells derived from a suitable cell line using a suitable fusion promoter. The preferred ratio of spleen cells to myeloma cells ranges from about 20: 1 to about 2: 1.

【0015】細胞融合に用いられるマウス骨髄腫細胞に
ついては特別な制約はないが、本発明においては8-ア
ザグアニン耐性マウス骨髄腫細胞P3-U1(Yelton, D.
E.et al. Current Topics in Microbiology and Immuno
logy, 81 p.1(1978)参照)を使用した。
There are no particular restrictions on the mouse myeloma cells used for cell fusion, but in the present invention, 8-azaguanine-resistant mouse myeloma cells P3-U1 (Yelton, D .;
E. et al. Current Topics in Microbiology and Immuno
logy, 81 p.1 (1978)).

【0016】好ましい融合促進剤としては、例えば、平
均分子量1,000〜4,000のポリエチレングリコールが好適
に使用されうる。また、当該分野で知られている他の融
合促進剤を使用することもできる。
As a preferred fusion promoter, for example, polyethylene glycol having an average molecular weight of 1,000 to 4,000 can be suitably used. Other fusion promoters known in the art can also be used.

【0017】(4) 融合した細胞の選択; 別の容器内で未融合の脾臓細胞、未融合のマウス骨髄腫
細胞及び融合したハイブリドーマの混合物を、未融合の
マウス骨髄腫細胞を支持しない選択培地、例えばHAT
培地で希釈し、未融合の細胞を死滅させるのに充分な時
間培養する。この選択培地中では、未融合のマウス骨髄
腫細胞は死滅し、また未融合の脾臓細胞もある一定期間
後、死滅する。これに対し、融合した細胞は骨髄腫の親
細胞の腫瘍性と脾臓細胞の性質を合わせ持つため、選択
培地中で生存できる。
(4) Selection of fused cells; a mixture of unfused spleen cells, unfused mouse myeloma cells and fused hybridomas in a separate container, and selection medium not supporting unfused mouse myeloma cells , For example, HAT
Dilute with medium and incubate for a time sufficient to kill unfused cells. In this selective medium, unfused mouse myeloma cells die, and unfused spleen cells die after a certain period of time. On the other hand, the fused cells can survive in the selective medium because they have the properties of the spleen cells and the tumor properties of the parental cells of myeloma.

【0018】(5) ハイブリドーマの産生する抗体の確認
(スクリーニング); 上記の操作によってハイブリドーマが検出された後、そ
の培養上清を採取し、NCF-47KD及びNCF-67KDに対
する抗体についてスクリーニングする。このスクリーニ
ングは例えば、ウェスタン・ブロット法により好適に行
ない得る。
(5) Confirmation of antibody produced by hybridoma
(Screening); After the hybridoma is detected by the above operation, the culture supernatant is collected and screened for antibodies against NCF-47KD and NCF-67KD. This screening can be suitably performed, for example, by Western blotting.

【0019】(6) 目的の抗体を産生するハイブリドーマ
のクローン化と抗体の産生; 目的の抗体を産生するハイブリドーマを適当な方法(例
えば、限界希釈法)でクローン化した後、所望の抗体は
2つの異なった方法で産生され得る。1つはハイブリド
ーマを一定時間、適当な培地で培養する方法であり、そ
の培養上清からハイブリドーマの産生する単クローン性
抗体を得ることができる。第2の方法は、ハイブリドー
マを同質遺伝子、または半同質遺伝子を持つマウスの腹
腔に接種することである。一定時間後の接種されたマウ
スの血液中及び腹水中より、ハイブリドーマの産生する
所望の単クローン性抗体を得ることができる。
(6) Cloning of hybridoma producing the desired antibody and production of the antibody; After cloning the hybridoma producing the desired antibody by an appropriate method (for example, limiting dilution method), It can be produced in two different ways. One is a method in which the hybridoma is cultured for a certain period of time in an appropriate medium, and a monoclonal antibody produced by the hybridoma can be obtained from the culture supernatant. A second method is to inoculate the hybridoma into the peritoneal cavity of a mouse that has an isogenic or semi-isogenic gene. A desired monoclonal antibody produced by the hybridoma can be obtained from the blood and ascites of the inoculated mouse after a certain period of time.

【0020】(7) 単クローン性抗体の精製; ハイブリドーマ培養上清、あるいはマウスの血液中及び
腹水中より、広く用いられている生化学的精製法によっ
て、目的の単クローン性抗体を精製する。例えば、硫安
塩析、イオン交換クロマト、あるいはアフィニティーク
ロマト等の組み合せが考えられる。
(7) Purification of Monoclonal Antibody The objective monoclonal antibody is purified from the culture supernatant of the hybridoma or from the blood and ascites of the mouse by a widely used biochemical purification method. For example, a combination of ammonium sulfate salting out, ion exchange chromatography, affinity chromatography, or the like can be considered.

【0021】(8) 単クローン性抗体を使用したヒト常染
色体劣性慢性肉芽腫症の診断方法; 免疫測定法に基づく種々の方法が検討され得るが、フロ
ーサイトメーター法、ウェスタン・ブロット法、EIA
法等が好適に適用される。
(8) Method for diagnosing human autosomal recessive chronic granulomatosis using monoclonal antibodies; various methods based on immunoassays can be considered, including flow cytometry, Western blotting, and EIA.
The law and the like are suitably applied.

【0022】なお、本発明の単クローン性抗体を産生す
るハイブリドーマの代表例は工業技術院微生物工業技術
研究所(微工研)に、受託番号第11953号(FERM P-11953)
及び受託番号第11954号(FERM P-11954)として寄託され
ている。
A typical example of the hybridoma producing the monoclonal antibody of the present invention is the microorganism No. 11953 (FERM P-11953) of the Institute of Microbial Industry and Technology (MIC).
And accession number 11954 (FERM P-11954).

【0023】以下、本発明の理解を深めるために実施例
に沿って説明するが、本発明はこれらの実施例に限定さ
れるものではない。
Hereinafter, the present invention will be described with reference to examples for better understanding of the present invention, but the present invention is not limited to these examples.

【0024】実施例 1 (1) 免疫用抗原の調製 NCF-47KD及びNCF-67KDを遺伝子組換え技術を用い
て大腸菌に発現させた。NCF-47KD及びNCF-67KDに
相当するcDNAを、分化させたHL-60細胞からBlue
ScriptVectorへ組み込んだcDNAライブラリーよりク
ローニングした。次に、各々のプラスミドで大腸菌(X
L-1)をトランスフォーメイションさせ、IPTG刺激
後、所望の蛋白質、NCF-47KD及びNCF-67KDを発現
させた。各々の大腸菌をSDSにて可溶化後、アクリド
アミドゲル電気泳動し、NCF-47KD及びNCF-67KDに
相当するバンドを泳動後溶出することによって、抗原の
調製を行なった。
Example 1 (1) Preparation of antigen for immunization NCF-47KD and NCF-67KD were expressed in Escherichia coli using a gene recombination technique. CDNAs corresponding to NCF-47KD and NCF-67KD were isolated from differentiated HL-60 cells by Blue
It was cloned from the cDNA library incorporated into ScriptVector. Next, E. coli (X
L-1) was transformed, and after stimulation with IPTG, desired proteins, NCF-47KD and NCF-67KD were expressed. After solubilizing each Escherichia coli with SDS, it was subjected to acrylamide gel electrophoresis, and bands corresponding to NCF-47KD and NCF-67KD were electrophoresed and eluted to prepare an antigen.

【0025】(2) 免疫マウス脾臓細胞の調製 8週齢のBALB/c雄マウスにフロイント不完全アジュバ
ント50μl(DIFCO社製)及び上述の方法で調製された抗原
蛋白、組換えNCF-47KD及びNCF-67KD各々50μg/
匹を腹腔内に投与し免疫した。以後、1ないし2週間お
きに同様の抗原を腹腔に投与し、2回以降の免疫とし
た。3回目の免疫以後、免疫の4〜5日後に眼底静脈よ
り採血し、血清中の抗NCF-47KD/-67KD抗体を下記の
ウエスタン・ブロット法にて確認した。
(2) Preparation of spleen cells from immunized mice Eight-week-old BALB / c male mice were treated with 50 μl of Freund's incomplete adjuvant (manufactured by DIFCO), the antigen protein prepared by the above method, recombinant NCF-47KD and NCF -67KD each 50μg /
The animals were immunized by intraperitoneal administration. Thereafter, the same antigen was administered to the peritoneal cavity every one to two weeks, and immunization was performed twice or more. After the third immunization, blood was collected from the fundus vein 4 to 5 days after the immunization, and anti-NCF-47KD / -67KD antibodies in the serum were confirmed by the following Western blotting method.

【0026】ヒト多核球細胞質を10%SDS電気泳動
し、ニトロセルロース膜にトランスファーした。ファー
スト・グリーン染色し、目的の蛋白バンドを含む束ざく
を準備した。ハイブリドーマの培養上清を第1抗体とし
て96穴のELISA用プレートに添加し、この中に上記
の束ざく状のニトロセルロース膜を入れ、室温にて3〜
4時間、場合によっては一晩静置した。Tris/NaCl緩衝
液(pH 7.0)で3回洗浄した後に、第2抗体として、ウサ
ギ抗マウスIgG・ペルオキシダーゼラベル抗体(Immuno Re
search Laboratory社製)の3,000倍希釈液を各穴に充分
分注し、室温で2時間反応させた。Tris/NaCl緩衝液で
3回洗浄後、ペルオキシダーゼ基質液(4-Methoxyl-l-na
phtol naphtalをエタノールで溶解し、Tris 緩衝液を加
え、使用直前に過酸化水素を加えた溶液)を添加して発
色させ、しかるべきバンドを確認した。
Human multinuclear cell cytoplasm was subjected to 10% SDS electrophoresis and transferred to a nitrocellulose membrane. First green staining was performed to prepare a bundle containing the protein band of interest. The culture supernatant of the hybridoma was added as a first antibody to a 96-well ELISA plate, and the above-mentioned bunched nitrocellulose membrane was placed therein.
It was left for 4 hours, possibly overnight. After washing three times with a Tris / NaCl buffer (pH 7.0), a rabbit anti-mouse IgG / peroxidase-labeled antibody (Immuno Re
search Laboratory) was sufficiently dispensed into each well and allowed to react at room temperature for 2 hours. After washing three times with a Tris / NaCl buffer, a peroxidase substrate solution (4-Methoxyl-l-na
Phthol naphtal was dissolved in ethanol, Tris buffer was added, and a solution was added immediately before use with hydrogen peroxide) to add color, and an appropriate band was confirmed.

【0027】NCF-47KD及びNCF-67KDに対する抗体
の確認されたマウスより脾臓細胞を調製して、細胞融合
に用いた。
Spleen cells were prepared from mice in which antibodies against NCF-47KD and NCF-67KD were confirmed, and used for cell fusion.

【0028】(3) マウス骨髄腫細胞の調製 8-アザグアニン耐性マウス骨髄腫細胞P3-U1を正常
培地(RPMI-1640にグルタミン1.5mM, 2-メルカプトエタ
ノール5×10-5M, ゲンタマイシン10μg/ml及び牛胎児
血清10%を加えた培地)を用いて37℃ CO2インキュベ
ーター中で培養し、4日後に2×107個以上の細胞を得
た。
(3) Preparation of mouse myeloma cells 8-azaguanine-resistant mouse myeloma cells P3-U1 were cultured in a normal medium (glutamine 1.5 mM in RPMI-1640, 2-mercaptoethanol 5 × 10 −5 M, gentamicin 10 μg / ml). And a medium supplemented with 10% fetal calf serum) at 37 ° C. in a CO 2 incubator to obtain 2 × 10 7 or more cells after 4 days.

【0029】(4) 細胞融合及びハイブリドーマの培養 脾臓細胞をマウス骨髄腫細胞P3-U1と細胞数1対5
の割合で混合して、遠心処理(1,200r.p.m./5分)によ
って上清を除去し、沈澱した細胞塊を充分ほぐした後、
攪はんしながら1mlの混合液(ポリエチレングリコール-
4,000(2g),MEM(Modified Essential Medium:2ml),
ジメチルスルホキシド)に加えた。37℃で5分間インキ
ュベートした後、液の全量が50mlになるようにゆっくり
とMEMを加えた。遠心分離後(900r.p.m./5分)、上
清を除きゆるやかに細胞をほぐした。これに正常培地(R
PMI-1640培地に牛胎児血清10%を加えたもの)100mlを加
え、メスピペットを用いてゆるやかに細胞を懸濁した。
(4) Cell fusion and culturing of hybridoma The spleen cells were cultured with mouse myeloma cells P3-U1 at a cell number of 1: 5.
, The supernatant was removed by centrifugation (1,200 rpm / 5 minutes), and the precipitated cell mass was sufficiently loosened.
1 ml of the mixed solution (polyethylene glycol-
4,000 (2g), MEM (Modified Essential Medium: 2ml),
Dimethylsulfoxide). After incubation at 37 ° C. for 5 minutes, MEM was slowly added so that the total volume of the solution was 50 ml. After centrifugation (900 rpm / 5 min), the supernatant was removed and the cells were loosened gently. Add normal medium (R
100 ml of PMI-1640 medium supplemented with 10% fetal calf serum) was added thereto, and the cells were gently suspended using a female pipette.

【0030】懸濁液を24穴の培養プレートに分注し(1m
l/穴)5%の炭酸ガスを含む培養器中で、37℃24時間培
養した。次に、1ml/穴のHAT培地(正常培地にヒポ
キサンチン(1×10-4M),チミジン(1.5×10-3M)及びア
ミノプテリン(4×10-7M))を加え、さらに24時間培養
した。その後、2日間、24時間毎に、1mlの培養上清を
同量のHT培地(HAT培地からアミノプテリンを除く)
と交換し、前記と同様ににして10〜14日間培養した。
The suspension was dispensed into a 24-well culture plate (1 m).
(l / well) The cells were cultured in an incubator containing 5% carbon dioxide at 37 ° C. for 24 hours. Next, 1 ml / well of HAT medium (hypoxanthine (1 × 10 −4 M), thymidine (1.5 × 10 −3 M) and aminopterin (4 × 10 −7 M) in a normal medium) was added, and an additional 24 ml / well was added. Cultured for hours. Thereafter, every 24 hours for 2 days, 1 ml of the culture supernatant was added to the same amount of HT medium (aminopterin was removed from HAT medium).
And cultured for 10 to 14 days in the same manner as described above.

【0031】コロニー状に生育した融合細胞(約300個)
の認められたそれぞれの穴について1mlの培養上清を同
量のHT培地と交換し、1日培養後、徐々に正常培地に
交換した。
Colony-grown fused cells (about 300 cells)
1 ml of the culture supernatant was replaced with the same amount of the HT medium in each well in which was observed, and after culturing for 1 day, the medium was gradually replaced with a normal medium.

【0032】正常培地で3〜4日培養した後、培養上清
の一部を採り、実施例1の(2)に記載のウエスタン・ ブ
ロット法によってスクリーニングを行ない、目的のハイ
ブリドーマを選別した。
After culturing for 3 to 4 days in a normal medium, a part of the culture supernatant was collected and subjected to screening by the Western blot method described in Example 1 (2) to select the desired hybridoma.

【0033】抗体価の認められた穴については限界希釈
法によりクローニングを2回繰り返し、安定して抗体価
の認められたクローンを抗NCF-47KD/-67KD単クロー
ン性抗体産生ハイブリドーマ株(P5-13-6、P4-90-3)とし
て選択した。
Cloning was repeated twice in the wells in which the antibody titer was recognized by the limiting dilution method, and the clone in which the antibody titer was stably recognized was replaced with the anti-NCF-47KD / -67KD monoclonal antibody-producing hybridoma strain (P5- 13-6, P4-90-3).

【0034】(5) 単クローン性抗体の精製 プリスタン処理(2,6,10,14-テトラメチルペンタデカン
0.5ml/匹を腹腔内投与し、1〜2週間飼育する)した雄
マウスに上述のハイブリドーマ株 各4×108 個細胞/
匹を腹腔内に接種した。10〜21日後にハイブリドーマ株
は腹水癌化したマウスから腹水(4〜10ml/匹)を採取
し、遠心分離によって固形物を除去した。上清を40%硫
安塩析し、PBS(pH7.2)で溶解し、2日間透析後、こ
れを粗精製単クローン性抗体とした。
(5) Purification of monoclonal antibody Pristane treatment (2,6,10,14-tetramethylpentadecane
0.5 ml / animal was intraperitoneally administered and bred for 1 to 2 weeks) and 4 × 10 8 cells /
The animals were inoculated intraperitoneally. After 10 to 21 days, the ascitic fluid (4 to 10 ml / animal) was collected from the mouse with ascitic carcinoma of the hybridoma strain, and the solid matter was removed by centrifugation. The supernatant was salted out with 40% ammonium sulfate, dissolved in PBS (pH 7.2), dialyzed for 2 days, and used as a crude purified monoclonal antibody.

【0035】実施例 2 単クローン性抗体の抗原特異性 1)ウェスタン・ブロット法による抗原特異性の確認 NCF-47KD/-67KD欠損患者多核球細胞質とNCF-91K
D欠損患者多核球細胞質並びに正常多核球細胞質をSD
S電気泳動し、実施例 1の(2)に記載の方法と同様のウ
ェスタン・ブロット法にて、得られた単クローン性抗体
の抗原特異性を確認した。第1図にそれらの結果を示
す。即ち、抗NCF-47KD単クローン性抗体はNCF-47
KDに、また抗NCF-67KD単クローン性抗体はNCF-67
KDに特異的に反応することが明らかとなった。
Example 2 Antigen Specificity of Monoclonal Antibody 1) Confirmation of Antigen Specificity by Western Blot Method NCF-47KD / -67KD Deficiency Patient Multinuclear Cell Cytoplasm and NCF-91K
SD deficient patient multinuclear cell cytoplasm and normal multinuclear cell cytoplasm
After S electrophoresis, the antigen specificity of the obtained monoclonal antibody was confirmed by Western blotting in the same manner as described in Example 1, (2). FIG. 1 shows the results. That is, the anti-NCF-47KD monoclonal antibody is NCF-47
KD and anti-NCF-67KD monoclonal antibody is NCF-67
It was found that it reacts specifically with KD.

【0036】2)フローサイトメータによる抗原特異性の
確認 ヒト正常多核球とNCF-47KD/-67KD欠損患者多核球を
1%パラホルムアルデヒド/生理食塩水にて充分固定し
た。PBS洗浄後、抗NCF-47KD/-67KD単クローン性
抗体と1時間反応させた。PBSで3回洗浄後FITC
標識抗マウスIgG抗体とさらに1時間反応させた後、
EPICS-V(Coulter Corp.)にてFITCの蛍光を検
出した。第2図にそれらの結果を示した。
2) Confirmation of antigen specificity by flow cytometer Normal human multinucleated cells and NCF-47KD / -67KD deficient patient multinuclear cells were sufficiently fixed with 1% paraformaldehyde / saline. After washing with PBS, the cells were reacted with an anti-NCF-47KD / -67KD monoclonal antibody for 1 hour. FITC after washing 3 times with PBS
After further reacting with a labeled anti-mouse IgG antibody for 1 hour,
FITC fluorescence was detected using EPICS-V (Coulter Corp.). FIG. 2 shows the results.

【0037】[0037]

【発明の効果】本発明によれば、常染色体劣性遺伝性慢
性肉芽腫症のうち、NCF−47KD/−67KD欠損
患者の検出に有効な単クローン性抗体が提供される。同
時に、本発明の単クローン性抗体はスーパーオキシド産
生機構の異常をきたしていると思われる種々の疾患、例
えば種々の感染症、膠原病、メザンジウム増殖性腎疾
患、肺疾患、組織球増殖性疾患等の病態診断にも有用だ
と考えられる。
Industrial Applicability According to the present invention, there is provided a monoclonal antibody effective for detecting NCF-47KD / -67KD deficient patients among autosomal recessive chronic granulomatosis. At the same time, the monoclonal antibody of the present invention is used for various diseases that are thought to cause abnormalities in the mechanism of superoxide production, such as various infectious diseases, collagen diseases, mesangial proliferative renal diseases, lung diseases, and histioproliferative diseases. It is considered to be useful for diagnosis of pathological conditions such as.

【0038】[0038]

【図面の簡単な説明】[Brief description of the drawings]

第1図は本発明の単クローン性抗体の特異性を確認する
ためのウェスタン・ブロットの結果を示し、第2図は本
発明の単クローン性抗体の特異性を明らかにするフロー
サイトメトリーを示す。第2図においては縦軸に細胞
数、横軸に蛍光強度をプロットした。
FIG. 1 shows the results of a Western blot for confirming the specificity of the monoclonal antibody of the present invention, and FIG. 2 shows the flow cytometry clarifying the specificity of the monoclonal antibody of the present invention. . In FIG. 2, the number of cells is plotted on the vertical axis, and the fluorescence intensity is plotted on the horizontal axis.

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.7 識別記号 FI G01N 33/577 C12N 15/00 C // A61K 39/395 A C12N 5/10 5/00 B (C12P 21/08 C12R 1:91) (56)参考文献 Science,Vol.242, (1988),p.1298−1301 Science,Vol.242, (1988),p.1295−1297 (58)調査した分野(Int.Cl.7,DB名) C07K 14/00 - 16/46 C12N 15/00 - 15/90 C12P 21/00 - 21/08 G01N 33/53 - 33/98 A61K 39/00 - 39/44 C12N 5/00 - 5/28 BIOSIS(DIALOG) WPI(DIALOG)────────────────────────────────────────────────── ─── Continued on the front page (51) Int.Cl. 7 Identification code FI G01N 33/577 C12N 15/00 C // A61K 39/395 A C12N 5/10 5/00 B (C12P 21/08 C12R 1: 91) (56) References Science, Vol. 242, (1988), p. 1298-1301 Science, Vol. 242, (1988), p. 1295-1297 (58) Fields investigated (Int.Cl. 7 , DB name) C07K 14/00-16/46 C12N 15/00-15/90 C12P 21/00-21/08 G01N 33/53-33 / 98 A61K 39/00-39/44 C12N 5/00-5/28 BIOSIS (DIALOG) WPI (DIALOG)

Claims (6)

(57)【特許請求の範囲】(57) [Claims] 【請求項1】ヒト多核球細胞質因子−67KD蛋白質
(以下、NCF−67KDと称することがある)との反
応性を示さず、ヒト多核球細胞質因子−47KD蛋白質
(以下、NCF−47KDと称することがある)を特異
的に認識する単クローン性抗体。
The present invention does not show reactivity with human polynuclear cell cytoplasmic factor-67KD protein (hereinafter sometimes referred to as NCF-67KD), and does not exhibit reactivity with human polynuclear cell cytoplasmic factor-47KD protein (hereinafter referred to as NCF-47KD). Monoclonal antibody that specifically recognizes
【請求項2】工業技術院微生物工業技術研究所(微工
研)に受託番号第11954号(FERM P−119
54)として寄託されたハイブリドーマより調製される
請求項1記載の単クローン性抗体。
2. Accession No. 11954 (FERM P-119) from the Institute of Microbial Industry and Technology (MIC)
The monoclonal antibody according to claim 1, which is prepared from the hybridoma deposited as (54).
【請求項3】NCF−47KDとの反応性を示さず、N
CF−67KDを特異的に認識する単クローン性抗体。
3. It does not show reactivity with NCF-47KD,
A monoclonal antibody that specifically recognizes CF-67KD.
【請求項4】工業技術院微生物工業技術研究所(微工
研)に受託番号第11953号(FERM P−119
53)として寄託されたハイブリドーマより調製される
請求項3記載の単クローン性抗体。
4. An accession number: 11953 (FERM P-119) to the Research Institute of Microbial Industry (MIC) of the National Institute of Advanced Industrial Science and Technology.
The monoclonal antibody according to claim 3, which is prepared from the hybridoma deposited as (53).
【請求項5】多核球または多核球細胞質を被検試料と
し、請求項1から請求項4のいづれかに記載の単クロー
ン性抗体を利用してなる、フローサイトメーター法、ウ
エスタン・ブロット法及びEIA法より選択されるスー
パーオキシド産生機構の異常に起因する疾患に関する免
疫学的測定方法。
5. A flow cytometer method, a Western blot method and an EIA using polynuclear cells or polynuclear cell cytoplasm as a test sample and using the monoclonal antibody according to any one of claims 1 to 4. An immunological measurement method for a disease caused by an abnormality in a superoxide production mechanism selected by the method.
【請求項6】前記スーパーオキシド産生機構の異常に起
因する疾患がヒト常染色体劣性慢性肉芽腫症である請求
項5記載の免疫学的測定方法。
6. The immunoassay according to claim 5, wherein the disease caused by the abnormality of the superoxide production mechanism is human autosomal recessive chronic granulomatosis.
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Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
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Science,Vol.242,(1988),p.1295−1297
Science,Vol.242,(1988),p.1298−1301

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