JP2997767B2 - Production method of highly functional euglena using ethanol - Google Patents

Production method of highly functional euglena using ethanol

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JP2997767B2
JP2997767B2 JP6927598A JP6927598A JP2997767B2 JP 2997767 B2 JP2997767 B2 JP 2997767B2 JP 6927598 A JP6927598 A JP 6927598A JP 6927598 A JP6927598 A JP 6927598A JP 2997767 B2 JP2997767 B2 JP 2997767B2
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Description

【発明の詳細な説明】DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION

【0001】[0001]

【発明の属する技術分野】本発明は、ビタミン類、ドコ
サヘキサエン酸(DHA)、スクアレン、スーパーオキシド
消去活性物質等で強化されたユーグレナ細胞体及びその
製造方法に関する。
The present invention relates to an Euglena cell body enriched with vitamins, docosahexaenoic acid (DHA), squalene, a superoxide-eliminating active substance and the like, and a method for producing the same.

【0002】[0002]

【従来の技術】従来より、ユーグレナを培養する培地と
して、例えば、コーレン・ハットナー培地(ジャーナル
・オブ・プロトゾオロジー〔Journal of Protozoology
〕14巻、17頁(1967年))あるいはハットナ
ー培地(ジャーナル・オブ・プロトゾオロジー6巻、2
3頁(1959年))等が用いられ、炭素源としてグル
コース、フルクトース、でんぷん加水分解物、酢酸等が
用いられ、窒素源としてはグルタミン酸、アスパラギン
酸、アルギニン、グリシン、各種アンモニウム塩等が用
いられた。
2. Description of the Related Art Conventionally, as a medium for culturing Euglena, for example, Koren-Hattner medium (Journal of Protozoology)
14, p. 17 (1967)) or Hattner's medium (Journal of Protozoology, Vol. 6, 2
3 (1959)), glucose, fructose, starch hydrolyzate, acetic acid and the like are used as carbon sources, and glutamic acid, aspartic acid, arginine, glycine, various ammonium salts and the like are used as nitrogen sources. Was.

【0003】このような培地で増殖させて得た細胞体は
栄養学的に充分とは言えず、例えば、魚類の稚魚生産に
必要なアルチミア、ワムシ等の飼料、あるいは小型の孵
化仔魚用の飼料として用いる場合には、別に調製したEP
A (エイコサペンタエン酸)、DHA あるいはビタミン類
を添加し、ユーグレナに吸着、取り込ませていた。
[0003] Cell bodies obtained by growing in such a medium are not nutritionally sufficient. For example, feeds such as artemia and rotifer necessary for the production of fish fry, or feeds for small hatched larvae are required. When used as EP, separately prepared EP
A (eicosapentaenoic acid), DHA or vitamins were added and absorbed and incorporated into Euglena.

【0004】[0004]

【発明が解決しようとする課題】上述のように、稚魚用
の飼料生産のためにはユーグレナに別途調製した栄養物
を添加することが通例であったが、これは製造工程の複
雑さ、コスト面から不利であった。従って、本発明はユ
ーグレナの培養のみにより、高機能性細胞を取得する方
法、及び該方法により得られる細胞を提供するものであ
る。
As described above, it has been customary to add separately prepared nutrients to Euglena for the production of fry feed, but this is complicated in the production process and cost. It was disadvantageous from the aspect. Accordingly, the present invention provides a method for obtaining highly functional cells only by culturing Euglena, and a cell obtained by the method.

【0005】[0005]

【課題を解決するための手段】本発明者らは、ユーグレ
ナの培養法について鋭意研究してきたところ、驚くべき
ことに、培養中にエタノールを適宜添加使用することに
より、細胞体中に各種高機能性物質が生産・蓄積される
ことを見出した。従って、本発明は、炭素源の一部又は
すべてがエタノールである培地中でユーグレナ(Euglen
a gracilis)を培養することを特徴とする機能強化ユー
グレナ細胞体の製造方法を提供する。
Means for Solving the Problems The present inventors have intensively studied a method of culturing Euglena, and surprisingly, by adding ethanol appropriately during the culture, various highly functional substances can be added to the cell body. It has been found that sexual substances are produced and accumulated. Thus, the present invention relates to Euglen in a medium in which some or all of the carbon source is ethanol.
a gracilis), and a method for producing a functionally enhanced Euglena cell body.

【0006】本発明はまた、ユーグレナ細胞体の機能強
化物質として、カロチン、ビタミンA 、ビタミンC 、ビ
タミンD 、ビタミンE 、ビタミンK1、ビタミンB12 、パ
ントテン酸、ドコサヘキサエン酸(DHA)、アラキドン
酸、エイコサペンタエン酸、スクアレン及び/又はスー
パーオキシド消去活性物質を含んで成る、上記方法によ
り製造されるユーグレナ細胞体を提供する。本発明によ
れば、ユーグレナを稚魚用飼料、動物飼料あるいは食品
に用いる場合に、別途調製した栄養強化剤を添加せず
に、あるいは添加物を従来技術より大いに減らして、ユ
ーグレナ細胞体を有効に用いることができる。
[0006] The present invention also includes, as functional enhancement material of Euglena cell bodies, carotene, vitamin A, vitamin C, vitamin D, vitamin E, vitamin K 1, vitamin B 12, pantothenic acid, docosahexaenoic acid (DHA), arachidonic acid , Eucosapentaenoic acid, squalene and / or a superoxide scavenging active substance. According to the present invention, when Euglena is used for fry feed, animal feed or food, the Euglena cell body can be effectively used without adding a separately prepared nutrient enhancer or by greatly reducing the additives compared to the prior art. Can be used.

【0007】[0007]

【発明の具体的な態様】本発明に従うユーグレナは上記
のような特徴を有するがさらにその成分を詳述すると次
のとおりである。すなわち、エタノールを添加して培養
し取得したユーグレナ細胞体には、通常のコーレン・ハ
ットナー培地(J. Protozool., 14, Suppl., 17(1967)
)あるいはハットナー培地(Methods Enzymol, 23, 14
3-162(1971))により培養・取得した細胞体に比較し
て、粗蛋白質、ステロール、スクアレン、カロチン、ビ
タミンA 、トコフェロール、ビタミンK1、パントテン酸
及び/又はスーパーオキシド消去活性、特にDHA 含量が
増加していた。
DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION The Euglena according to the present invention has the above-mentioned features, and its components are described in detail below. In other words, Euglena cell bodies obtained by culturing with the addition of ethanol contain normal Koren-Hattner medium (J. Protozool., 14, Suppl., 17 (1967)
) Or Hattner's medium (Methods Enzymol, 23, 14
3-162 (1971)) as compared to culturing and obtained cell bodies by, crude protein, sterols, squalene, carotenes, vitamin A, tocopherol, vitamin K 1, pantothenic acid and / or superoxide scavenging activity, in particular DHA content Was increasing.

【0008】以上のように本発明に従うユーグレナは、
通常の培地によるものに比べて、栄養学的にすぐれた性
質のものであり、魚飼、動物飼料、食品分野に広範に利
用することができるであろう。本発明に従うユーグレナ
は栄養培地にエタノールを初発に添加するか、あるいは
遂次添加しながら培養することによって有効に生産しう
るが、スクアレンについては同時にステロール代謝系の
阻害剤を添加することによって、より有効に生産し得
る。
As described above, the Euglena according to the present invention is:
Compared with the conventional medium, it has excellent nutritional properties and can be widely used in fish farms, animal feeds and foods. Euglena according to the present invention can be effectively produced by culturing with the initial addition or successive addition of ethanol to the nutrient medium, while squalene can be produced more efficiently by simultaneously adding an inhibitor of the sterol metabolism system. It can be produced effectively.

【0009】本発明に用い得るユーグレナは池や沼など
の淡水中に広く分布しており、これらから分離して使用
利用してもよく、また、すでに単離されている任意のユ
ーグレナを使用してもよい。本発明のユーグレナとして
は、ユーグレナ・グラシリス、ユーグレナ・グラシリス
・クレブス、ユーグレナ・グラシリス・バルバチラス等
の種を使用しうるが、特に好ましいユーグレナ株は、ユ
ーグレナ・グラシリス(Euglena gracilis)Z 株あるい
はその変異株SM-ZK 株(葉緑体欠損株)である。このユ
ーグレナ(Euglena gracilis)Z 株(SM-ZK 株)の入手
法については、例えば北岡正三郎著「ユーグレナ、生理
と生化学」((株)学会出版センター発行 239〜241
頁)に記載されている。
The Euglena used in the present invention is widely distributed in fresh water such as ponds and swamps, and may be used separately from these. Alternatively, any Euglena already isolated may be used. You may. As the Euglena of the present invention, species such as Euglena gracilis, Euglena gracilis Krebs, Euglena grasilis barbatilas and the like can be used. Particularly preferred Euglena strain is Euglena gracilis Z strain or a mutant strain thereof. It is SM-ZK strain (chloroplast-deficient strain). The method of obtaining the Euglena gracilis strain Z (SM-ZK strain) is described in, for example, "Euglena, Physiology and Biochemistry" by Shozaburo Kitaoka (published by Gakkai Shuppan Center, 239-241).
P.).

【0010】本ユーグレナの培養栄養培地としては、一
般の微細藻類、原生動物を増殖させることのできる炭素
源、窒素源、酵母エキス、無機塩類、ビタミンを含むい
かなる培地も用いることができる。例えば、クレーマー
−マイヤーズ(Cramer-Myers)培地(Arch, Mikrobio
l., 17, 384-402(1952) )やハットナー(Hutner)培地
(Methods Enzymol., 23, 143-162(1971) )、コーレン
−ハットナー(Koren -Hutner )培地(J. Protozool.,
14, Suppl., 17(1967) )等の公知の培地を使用するこ
とができる。通常、炭素源として糖蜜加水分解物、酢
酸、エタノール、脂肪酸(C3〜C18 )を用いることがで
きるが、炭素源の全部又は少なくとも一部分としてエタ
ノールを含有することを特徴とする。
As a culture nutrient medium for the present euglena, any medium containing a carbon source, a nitrogen source, a yeast extract, inorganic salts, and vitamins capable of growing general microalgae and protozoa can be used. For example, Kramer-Myers medium (Arch, Mikrobio)
l., 17, 384-402 (1952)), Hutner medium (Methods Enzymol., 23, 143-162 (1971)), Koren-Hutner medium (J. Protozool.,
14, Suppl., 17 (1967)). Normally, molasses hydrolyzate, acetic acid, ethanol, and fatty acids (C3 to C18) can be used as a carbon source, but is characterized by containing ethanol as all or at least a part of the carbon source.

【0011】エタノールは、培養の初発培地に1回のみ
添加することもでき、あるいは培養中に間欠的に、又は
連続的に添加することができる。初発培地に1回のみ添
加する場合、エタノールの添加量は培地当り0.1〜2
%が好ましい。培養中に添加する場合には、初発培地に
エタノールを添加しており、その消費と共に培養中に添
加することもでき、あるいは、培養の途中からエタノー
ルの添加を開始することもできる。初発培地のエタノー
ル添加量は0.1〜2%であり、培養中には、例えば培
地中のエタノール濃度を常法に従って、例えばガスクロ
マトグラフィーにより測定しながら消費されたエタノー
ルを間欠的に又は連続的に添加することにより補うこと
ができる。こうして培地当り合計1〜5%のエタノール
を添加することができる。
[0011] Ethanol can be added to the initial culture medium only once, or can be added intermittently or continuously during the culture. When added to the initial medium only once, the amount of ethanol added is 0.1 to 2 per medium.
% Is preferred. In the case of adding during the culture, ethanol is added to the initial medium, and it can be added during the culture with the consumption thereof, or the addition of the ethanol can be started in the middle of the culture. The amount of ethanol added to the initial medium is 0.1 to 2%. During the culture, the consumed ethanol is intermittently or continuously measured while measuring the ethanol concentration in the medium according to a conventional method, for example, by gas chromatography. It can be compensated for by adding it. Thus, a total of 1 to 5% of ethanol can be added per medium.

【0012】窒素源としては各種アンモニウム塩、グル
タミン酸、アスパラギン酸、アルギニン、グリシン等の
アミノ酸、又は酵母エキス、ペプトン、コーン・スチー
プ・リカー(C.S.L.)等の有機窒素源が使用可能であ
る。さらに金属塩(鉄、マンガン、亜鉛、コバルト、ニ
ッケル、銅、ナトリウム)、ビタミン類(B1、B12 )等
の微量栄養素を加えることが適当である。特に、エタノ
ールを好ましい態様で添加することが有効である。グル
コースは1〜3%、アミノ酸類は0.05〜0.4%、
アンモニウム塩は0.025〜0.05%、金属塩は
0.5〜50ppm で用いることができる。ビタミン等微
量要素を0.005〜2.5ppm で添加することもでき
る。
As the nitrogen source, various ammonium salts, amino acids such as glutamic acid, aspartic acid, arginine and glycine, or organic nitrogen sources such as yeast extract, peptone and corn steep liquor (CSL) can be used. Further, it is appropriate to add trace nutrients such as metal salts (iron, manganese, zinc, cobalt, nickel, copper, sodium) and vitamins (B 1 , B 12 ). In particular, it is effective to add ethanol in a preferred embodiment. Glucose is 1-3%, amino acids are 0.05-0.4%,
The ammonium salt can be used at 0.025 to 0.05%, and the metal salt can be used at 0.5 to 50 ppm. Trace elements such as vitamins can be added at 0.005 to 2.5 ppm.

【0013】培養はフラスコでは振とう培養、ジャーフ
ァーメンター、タンクでは深部通気撹拌等の好気条件に
より、通常1〜8日間行う。培養温度は、20〜30
℃、好ましくは25〜30℃がよく、pHは2〜8、好ま
しくは2〜5が良好である。
The cultivation is usually carried out for 1 to 8 days under aerobic conditions such as shaking culturing in a flask and deep aeration and stirring in a jar fermenter and tank. The culture temperature is 20-30
C., preferably 25-30 ° C., and the pH is preferably 2-8, preferably 2-5.

【0014】スクアレン自体の収率を高めるためには、
好気条件とし、エタノール等炭素源を追加すると同時に
スクアレンエポキシダーゼ阻害剤であるタルナフテート
(Talnaftate)、コレステロール合成阻害剤であるN-ラ
ウリル- ジメチルアミノ-N-オキシドおよびエルゴステ
ロール合成阻害剤であるミコナゾール(Miconazole)等
およびシュークロースエステル、モノグリセリド・オレ
イン酸ナトリウム、デオキシコール酸等の食品に用いら
れる界面活性剤等を添加してスクアレンがステロール類
へ変換されるのを抑制すればよい。培養終了後は、遠心
分離、膜炉過等により集菌、洗浄後、真空凍結乾燥、噴
霧感想、加熱真空乾燥等を行い、本発明に従うユーグレ
ナ細胞体を提供できる。
In order to increase the yield of squalene itself,
Under aerobic conditions, a carbon source such as ethanol is added, and at the same time, squalene epoxidase inhibitor Talnaftate, cholesterol synthesis inhibitor N-lauryl-dimethylamino-N-oxide and ergosterol synthesis inhibitor miconazole (Miconazole) and the like, and surfactants used in foods such as sucrose ester, monoglyceride / sodium oleate, and deoxycholic acid may be added to suppress the conversion of squalene to sterols. After completion of the culture, the cells are collected by centrifugation, membrane filtration, etc., washed, and then subjected to vacuum freeze-drying, spray impression, heating and vacuum drying, etc., to provide the Euglena cell body according to the present invention.

【0015】[0015]

【実施例】本発明を実施例により、さらに詳細に説明す
る。実施例1:炭素源の影響 第1表に示すKH培地100mlを500ml容の坂口フラス
コに入れ、ユーグレナ・グラシリスSK-ZK 株を接種し、
30℃で2日間振とう培養し、種母培養液とした。この
培養液1mlをKH培地およびKH培地に0.2%エタノール
を添加した培地に植菌し、30℃、100rpm (往復振
とう)において120時間培養した。培養液を遠心分離
し(5,000rpm 、15分間)、沈殿した細胞体をク
ロロホルム:メタノール=2:1で振とう抽出し、ケン
化を行った。
EXAMPLES The present invention will be described in more detail with reference to Examples. Example 1: Influence of carbon source 100 ml of KH medium shown in Table 1 was placed in a 500 ml Sakaguchi flask, and Euglena Grasilis SK-ZK strain was inoculated.
After shaking culture at 30 ° C. for 2 days, a seed culture was prepared. 1 ml of this culture was inoculated into a KH medium or a medium obtained by adding 0.2% ethanol to the KH medium, and cultured at 30 ° C. and 100 rpm (reciprocal shaking) for 120 hours. The culture was centrifuged (5,000 rpm, 15 minutes), and the precipitated cell bodies were shaken and extracted with chloroform: methanol = 2: 1 to perform saponification.

【0016】得られた不ケン化物にアセトンを加え極性
脂質を除き、炭化水素を含む非極性脂質をシリカゲルカ
ラムに充填し、ヘプタン、ベンゼン、クロロホルム、メ
タノールの順で溶出した。各々の画分を蒸発乾固したも
のを試料とし、ガスクロマトグラフィー(検出:FID 、
重点剤:SE-30 、初発温度:240℃、最終温度:27
0℃、昇温速度:2℃/ 分、注入温度:280℃)で分
析した結果、スクアレンはヘプタレ溶出画分にあり、ス
クアレン生産量はエタノール添加KH培地では約600μ
g/l 、対照のKH培地では270μg/l であった。また、
上記エタノールの代わりに他のアルコール類を添加した
場合のスクアレンの生産量を次の各アルコールの括弧内
に示した。ミリスチルアルコール(365μg/l )、パ
ルミチルアルコール(310μg/l )、オレイルアルコ
ール(315μg/l )
Acetone was added to the obtained unsaponifiable substance to remove polar lipids, and nonpolar lipids containing hydrocarbons were packed in a silica gel column and eluted in the order of heptane, benzene, chloroform and methanol. Each fraction was evaporated to dryness to obtain a sample, which was then subjected to gas chromatography (detection: FID,
Key agent: SE-30, Initial temperature: 240 ° C, Final temperature: 27
(0 ° C., heating rate: 2 ° C./min, injection temperature: 280 ° C.).
g / l and 270 μg / l in the control KH medium. Also,
The amount of squalene produced when other alcohols were added instead of the above ethanol is shown in parentheses for each of the following alcohols. Myristyl alcohol (365 μg / l), palmityl alcohol (310 μg / l), oleyl alcohol (315 μg / l)

【0017】[0017]

【表1】 [Table 1]

【0018】実施例2:培養培地による細胞成分の比較 第1表に示した液体培地100mlを500ml容の坂口フ
ラスコに入れ、ユーグレナ・グラシリスSM-ZK 株を接種
し、2日間培養し種母培養液とした。この培養液5mlを
次の第1表の培地1L を入れた3L 容ミニジャーファー
メンターで30℃、144時間(通気培養0.5vvm )
で培養した。培養終了後、遠心分離により細胞体を集め
真空凍結乾燥を行った。この乾燥物について、粗蛋白
質、脂質成分、ビタミンおよびスーパーオキシド消去活
性の測定を行った。
Example 2: Comparison of cell components with culture medium 100 ml of the liquid medium shown in Table 1 was placed in a 500 ml Sakaguchi flask, inoculated with Euglena gracilis SM-ZK strain, cultured for 2 days, and cultivated in seed culture. Liquid. 5 ml of this culture was placed in a 3 L mini-jar fermenter containing 1 L of the medium shown in Table 1 at 30 ° C. for 144 hours (aeration culture 0.5 vvm).
And cultured. After the completion of the culture, the cell bodies were collected by centrifugation and freeze-dried in a vacuum. The dried protein was measured for crude protein, lipid components, vitamin and superoxide elimination activity.

【0019】粗蛋白質はケールダール法を用い、窒素・
蛋白質換算係数は6.25を用いた。ドコサヘキサエン
酸、ステロール組成およびスクアレンは、ガスクロマト
グラフ法で求めた。ビタミンB12 は、Lactobacillus de
lbrueckii subsp.lactis(L.leichmannii )ATCC783
0による微生物定量法、パントテン酸はLactobacillus
plantarum ATCC8014による微生物定量法で行った。
総アスコルビン酸はヒドラジンで誘導体化後、高速液体
クロマトグラフ法で定量した。他のビタミンは、高速液
体クロマトグラフ法で定量した。スーパーオキシド消去
活性は電子スピン共鳴(ESR )法で決めた。J. M. McCo
rdおよびI. Fridovichが定義した単位(ジャーナル オ
ブ バイオロジカルケミストリー 224巻、6049
頁(1969))に相当する消去能として示した。これ
らの分析結果を第2表に示した。
The crude protein is prepared by the Kjeldahl method using nitrogen
The protein conversion coefficient used was 6.25. Docosahexaenoic acid, sterol composition and squalene were determined by gas chromatography. Vitamin B 12 is, Lactobacillus de
lbrueckii subsp.lactis (L. leichmannii) ATCC 783
0 microbial quantification method, pantothenic acid is Lactobacillus
It was performed by a microorganism quantification method using plantarum ATCC8014.
Total ascorbic acid was quantified by high performance liquid chromatography after derivatization with hydrazine. Other vitamins were quantified by high performance liquid chromatography. Superoxide scavenging activity was determined by electron spin resonance (ESR). JM McCo
Units defined by rd and I. Fridovich (Journal of Biological Chemistry 224, 6049
Page (1969)). The results of these analyzes are shown in Table 2.

【0020】[0020]

【表2】 [Table 2]

【0021】この結果により、炭素源としてエタノール
を添加することにより、粗蛋白質、ドコサヘキサエン
酸、エルゴステロール、スクアレン、カロチン、ビタミ
ンA 、ビタミンD 、α- トコフェロール、ビタミンK1、
パントテン酸、スーパーオキシド消去活性が顕著に増加
していることが明らかである。
According to the results, by adding ethanol as a carbon source, crude protein, docosahexaenoic acid, ergosterol, squalene, carotene, vitamin A, vitamin D, α-tocopherol, vitamin K1,
It is clear that the activity of scavenging pantothenic acid and superoxide is significantly increased.

【0022】実施例3:グルコース培地とエタノール培
地での細胞体成分の相違 保存培地(KH培地に1.5%寒天を加えたもの)に増殖
したユーグレナ・グラシリスSK-ZK を前培養培地(KH培
地)150mlを入れた500ml坂口フラスコに接種
し、25℃、100rpm で2日間振とう培養した。この
培養液10mlを、800mlのKH培地を入れた3L容ミニ
ジャーに添加し、25℃、撹拌70rpm 、通気量0.5
vvm で培養した。エタノール添加の場合は、72時間培
養後(細胞数約8×106 個/ml )にLDAO240mgを8
mlのエタノールに溶解し、全量をミニジャーに添加し、
さらに24時間培養を続行した。培養終了後、遠心分離
によって細胞体を集め、真空乾燥を行った。
Example 3 Glucose medium and ethanol medium
Inoculating the cell body different storage medium (KH medium plus 1.5% agar) to grown Euglena gracilis SK-ZK pre-culture medium (KH medium) 150 ml of 500ml Sakaguchi flask containing ingredients in the land After shaking at 25 ° C and 100 rpm for 2 days. 10 ml of this culture solution was added to a 3 L mini jar containing 800 ml of KH medium, and stirred at 25 ° C., 70 rpm, and aeration rate of 0.5.
Cultured in vvm. In the case of adding ethanol, 240 mg of LDAO was added after culturing for 72 hours (about 8 × 10 6 cells / ml).
Dissolve in ml of ethanol, add the whole amount to a mini jar,
Culture was continued for another 24 hours. After completion of the culture, the cell bodies were collected by centrifugation and vacuum-dried.

【0023】この乾燥細胞体中のβ- カロチン、ビタミ
ンE をビタミン分析法(日本ビタミン学会編〔化学同
人〕、10-11 頁および32-34 頁)に従って分析した。そ
の結果を下記の表3に示した。
Β-carotene and vitamin E in the dried cell body were analyzed according to a vitamin analysis method (edited by The Vitamin Society of Japan [Chemical Doujinshi], pp. 10-11 and 32-34). The results are shown in Table 3 below.

【0024】[0024]

【表3】 [Table 3]

【0025】[0025]

【発明の効果】本発明によれば、ユーグレナの培養にお
いて培地中にエタノールあるいはエタノールとコレステ
ロール阻害剤を添加することにより、ユーグレナ細胞体
内に蛋白質、ビタミン類、脂質、脂肪酸、スーパーオキ
シド消去活性物質等の蓄積量を増すことができ、稚魚飼
料、魚飼、動物飼料、健康食品等への有効な対応が計れ
る。
According to the present invention, by adding ethanol or ethanol and a cholesterol inhibitor to the medium in the culture of Euglena, proteins, vitamins, lipids, fatty acids, superoxide-eliminating active substances, etc. are added to the Euglena cell body. Can be increased, and an effective response to fry feed, fish feed, animal feed, health food, etc. can be achieved.

Claims (3)

(57)【特許請求の範囲】(57) [Claims] 【請求項1】 炭素源の一部又は全てがエタノールであ
るステロール代謝系阻害剤添加培養培地中でユーグレナ
(Euglena gracilis)を培養すること
を特徴とするユーグレナ細胞体の製造方法。
1. A method for producing an Euglena cell body, comprising culturing Euglena gracilis in a culture medium containing a sterol metabolic system inhibitor in which part or all of a carbon source is ethanol.
【請求項2】 ユーグレナ培養の栄養培地が炭素源、窒
素源、金属塩類及びビタミン類を含んでなる請求項1に
記載のユーグレナ細胞体の製造方法。
2. The method for producing Euglena cell bodies according to claim 1, wherein the nutrient medium for Euglena culture comprises a carbon source, a nitrogen source, metal salts and vitamins.
【請求項3】 請求項1又は2に記載の方法により製造
されるユーグレナ細胞体。
3. An Euglena cell body produced by the method according to claim 1 or 2.
JP6927598A 1998-03-05 1998-03-05 Production method of highly functional euglena using ethanol Expired - Lifetime JP2997767B2 (en)

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