JP2841592B2 - Virus particle disruption method - Google Patents
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Description
【発明の詳細な説明】 産業上の利用分野 本発明は、ウイルス粒子の破砕法に関する。Description: TECHNICAL FIELD The present invention relates to a method for disrupting virus particles.
従来の技術および発明が解決しようとする課題 ウイルス粒子と破砕法としては、エーテル処理などに
よる化学的破砕法,超音波処理などによる物理的破砕法
などが従来用いられてきたが、これらの方法ではウイル
ス粒子のエンベロープの部分構造を保持したままウイル
ス粒子を破砕することが不可能であった。Conventional Techniques and Problems to be Solved by the Invention As virus particles and crushing methods, chemical crushing methods such as ether treatment and physical crushing methods such as ultrasonic treatment have been conventionally used. It was not possible to disrupt virus particles while retaining the partial structure of the virus particle envelope.
このことをインフルエンザワクチンの製造工程におけ
るウイルス破砕法を例にとって説明すると、発熱等の副
反応が問題となった全粒子ワクチン(第1図参照)にか
わって開発された現行のインフルエンザHAワクチン(第
2図参照)の製造においては、インフルエンザウイルス
粒子をエーテル処理することによりウイルス粒子を破砕
し、インフルエンザウイルスがもつ感染防御抗原である
ヘモアグルチニン(HA)およびノイラミニダーゼ(NA)
を免疫原とする方法が用いられている。この方法では、
インフルエンザウイルス粒子の表層すなわち脂質二重層
の外層とされに接するマトリックス蛋白質の内層に外部
からHAとNAが結合して構成しているエンベロープの構造
が破壊されており、この方法を用いて製造される現行の
インフルエンザHAワクチンでは、発熱性が消失するもの
の、HAおよびNAの免疫原性(力価)の低下が、脂質二重
層およびマトリックス蛋白質との結合の解体によって生
じることが知られており、免疫原性(力価)の増強が望
まれている現状にある。また、超音波処理によりインフ
ルエンザウイルス粒子を物理的に破砕する方法も試みら
れているが、上記エーテル処理と同様、HAおよびNAの採
取には適していても、インフルエンザウイルス粒子のエ
ンベロープの部分の構造を損うことなく破砕することは
不可能である。This can be explained by taking the virus disruption method in the manufacturing process of influenza vaccine as an example. The current influenza HA vaccine (see Fig. 1) developed instead of the whole particle vaccine (see Fig. 1), which had side effects such as fever. In the production of (see FIG. 2), influenza virus particles are treated with ether to crush the virus particles, and the protective antigens of influenza virus, haemoglutinin (HA) and neuraminidase (NA), are used.
Has been used as an immunogen. in this way,
The outer layer of the influenza virus particles, that is, the outer layer of the lipid bilayer, and the inner layer of the matrix protein that is in contact with the outer layer, have the structure of the envelope composed of HA and NA bound from the outside destroyed, and are manufactured using this method With the current influenza HA vaccine, although the pyrogenicity disappears, it is known that the reduction of the immunogenicity (titer) of HA and NA is caused by the dissociation of the lipid bilayer and the binding to the matrix protein. At present, enhancement of the originality (titer) is desired. In addition, a method of physically crushing influenza virus particles by sonication has also been attempted, but, similarly to the above ether treatment, even if it is suitable for collecting HA and NA, the structure of the envelope portion of influenza virus particles is It is impossible to crush without damaging.
さらに、現行のインフルエンザHAワクチンの免疫原性
(力価)を増強させる方策として、エーテル処理してば
らばらにしたHAおよびNAにアジュバンド(免疫賦活剤)
を加える研究,エーテル処理してばらばらにしたHAおよ
びNAを脂質成分で作製した人工膜に係合させて全粒子ワ
クチン型に再構築する研究などの種々の試みがなされて
いるが、いずれの方法でも実用上満足できる域には至っ
ていない。In addition, as a measure to enhance the immunogenicity (titer) of current influenza HA vaccines, adjuvants (immunostimulants) are added to HA and NA that have been separated by ether treatment.
There have been various attempts, such as research on the addition of HA and NA, and the reconstitution of a whole-particle vaccine type by engaging HA and NA separated by ether treatment with an artificial membrane made of lipid components. However, it has not reached a practically satisfactory range.
一方、高速衝突処理の原理は、従来直径約10〜30μの
細胞の破砕には適用されていたが、装置のプロセス中に
おける圧力,流量,速度等に限界があり、直径約18〜60
0nmのウイルス粒子の破砕に用いることは全く考えられ
ていなかった。On the other hand, the principle of high-speed collision treatment has been applied to the crushing of cells having a diameter of about 10 to 30 μm, but the pressure, flow rate, speed, etc. during the process of the apparatus are limited, and the diameter is about
It was never considered for use in disrupting 0 nm virus particles.
課題を解決するための手段 本発明者らはかかる背景のもとに、高い圧力を加えて
インフルエンザウイルス粒子相互を高速で衝突させる
と、以外にもウイルス粒子がエンベロープの部分構造を
損うことなく破砕されることを見い出し(第3図参
照)、また得られるウイルス粒子破砕物を用いてインフ
ルエンザワクチンを製造すると、免疫原性(力価)が全
粒子ワクチンと同等でかつ発熱性が消失したワクチンが
製造できることを見い出し、これらの知見に基づいてさ
らに研究を進めた結果、本発明を完成した。Means for Solving the Problems Under such a background, the present inventors apply high pressure to cause influenza virus particles to collide with each other at a high speed, and in addition, the virus particles do not impair the partial structure of the envelope. If the virus is found to be crushed (see Fig. 3) and an influenza vaccine is produced using the obtained crushed virus particles, the vaccine has the same immunogenicity (titer) as the whole particle vaccine and has lost pyrogenicity. Were found to be able to be produced, and further research was conducted based on these findings, and as a result, the present invention was completed.
すなわち、本発明は、ウイルス粒子を高速衝突処理に
付すことを特徴とするウイルス粒子の破砕法である。That is, the present invention is a method for crushing virus particles, which comprises subjecting virus particles to high-speed collision treatment.
本発明において用いられるウイルス粒子としては、例
えば直径約20〜300nmのインフルエンザウイルス,風疹
ウイルス,日本脳炎ウイルス,おたふくかぜウイルス,
麻疹ウイルス、アデノウイルス,単純ヘルペスウイル
ス,狂犬病ウイルス,ワクチニアウイルス,B型肝炎ウイ
ルス,A型肝炎ウイルス,成人T細胞白血病ウイルス,人
免疫不全ウイルスなどが挙げられる。Examples of the virus particles used in the present invention include influenza virus having a diameter of about 20 to 300 nm, rubella virus, Japanese encephalitis virus, mumps virus,
Examples include measles virus, adenovirus, herpes simplex virus, rabies virus, vaccinia virus, hepatitis B virus, hepatitis A virus, adult T-cell leukemia virus, human immunodeficiency virus, and the like.
上記したウイルス粒子は、適宜の媒体望ましくは液体
とともに高速衝突処理に付される材料として調整される
が、ウイルス粒子としてインフルエンザウイルス粒子を
用いる場合を例に挙げて、高速衝突処理に付される材料
の調整法を以下に説明する。The above-mentioned virus particles are prepared as a material to be subjected to high-speed collision processing together with an appropriate medium, preferably a liquid. For example, when influenza virus particles are used as virus particles, a material to be subjected to high-speed collision processing is used. The method for adjusting is described below.
ワクチン製造用インフルエンザウイルス株[例、A/山
形/120/86(H1N1)株,A/山梨/2/77(H3N2)株,A/福岡/C
29/85(H3N2)株,A/四川/2/87(H3N2)株,B/岐阜/2/73
株,B/神奈川/3/76株,B/長崎/1/87株など]を例えば発育
鶏卵の漿尿膜腔内に接種し、ウイルスを培養してウイル
ス浮遊液を得る。得られたウイルス浮遊液をそのまま高
速衝突処理用の材料として用いてもよいが、さらに蔗糖
密度勾配遠心処理などで精製濃縮して採取したウイルス
画分液を用いるものが望ましい。また、上記したウイル
ス浮遊液あるいはウイルス画分液に、ホルマリンを最終
濃度が約0.001〜0.5v/v%好ましくは約0.02v/v%となる
ように添加し、チメロサールを最終濃度が約0.01v/v%
となるように添加して直ちにあるいは約4℃,約1〜14
日間で不活化した不活化ウイルス浮遊液あるいは不活化
ウイルス画分液を高速衝突処理用材料として用いてもよ
い。さらに、上記した高速衝突処理用材料は所望により
界面活性剤(例、ポリソルベート80など)を最終濃度が
約0.01〜1.0v/v%好ましくは約0.1v/v%となるように添
加して直ちにあるいは4℃で約1〜7日間静置後に用い
てもよい。Influenza virus strains for vaccine production [eg, A / Yamagata / 120/86 (H1N1) strain, A / Yamanashi / 2/77 (H3N2) strain, A / Fukuoka / C
29/85 (H3N2) strain, A / Sichuan / 2/87 (H3N2) strain, B / Gifu / 2/73
Strain, B / Kanagawa / 3/76 strain, B / Nagasaki / 1/87 strain, etc.] are inoculated into the chorioallantoic space of embryonated chicken eggs, and the virus is cultured to obtain a virus suspension. The obtained virus suspension may be used as it is as a material for the high-speed collision treatment, but it is preferable to use a virus fraction obtained by purifying and concentrating the solution by sucrose density gradient centrifugation or the like. Further, formalin is added to the above-mentioned virus suspension or virus fraction so that the final concentration is about 0.001 to 0.5 v / v%, preferably about 0.02 v / v%, and thimerosal is added to a final concentration of about 0.01 v / v. / v%
Immediately after addition, or at about 4 ° C, about 1-14.
An inactivated virus suspension or an inactivated virus fraction that has been inactivated for a period of days may be used as a material for high-speed collision treatment. Further, the above-mentioned material for high-speed collision treatment may be added with a surfactant (eg, polysorbate 80 or the like) as needed, so that the final concentration is about 0.01 to 1.0 v / v%, preferably about 0.1 v / v%, and immediately added. Alternatively, it may be used after standing at 4 ° C. for about 1 to 7 days.
高速衝突処理に用いられる装置としては、ウイルス粒
子を高速で物体に衝突させる原理を有するものであれば
いずれでもよく、また装置の衝突区域内では例えばウイ
ルス粒子同志が高速で衝突してもく、ウイルス粒子が装
置の器壁に高速で衝突してもよいが、ウイルス粒子同志
を衝突させる原理を有する装置を用いるのが望ましい。As a device used for high-speed collision processing, any device having a principle of causing virus particles to collide with an object at high speed may be used, and in the collision area of the device, for example, virus particles may collide at high speed, Although virus particles may collide with the wall of the device at high speed, it is desirable to use a device having a principle of causing virus particles to collide with each other.
上記した原理については以下にさらに詳しく説明す
る。The above principle will be described in more detail below.
高速衝突処理用材料を高圧好ましくはエアーポンプに
よる高圧で衝突区域に導き、流路の径を細くすることに
よって圧力を流速に変換させることが可能となる。ま
た、流路は二流路に分岐させた後、対向した型状とする
ことによって、衝突区域内でウイルス粒子同志を衝突さ
せることが可能となる。衝突区域内では、ウイルス粒子
が高速で物体に衝突する衝撃力と高速衝突処理用材料
(流体)が高速で通過する際に発生する真空作用による
キャビテーションとの相互作用により、ウイルス粒子が
破砕されるが、この時高圧で一定の流速を保つことが望
ましく、この目的のためには高圧で連続運転ができる加
圧ポンプを用いるのが好ましい。また、所望により高速
衝突処理用材料を連続循環運転させてウイルス粒子を破
砕させてもよい。The material for high-speed collision treatment is guided to the collision area at a high pressure, preferably by an air pump, and the pressure can be converted to a flow velocity by reducing the diameter of the flow path. Further, after the flow path is branched into two flow paths and then formed into a facing shape, it becomes possible for the virus particles to collide in the collision area. In the collision area, the virus particles are crushed by the interaction between the impact force at which the virus particles collide with the object at high speed and the cavitation due to the vacuum action generated when the high-speed collision processing material (fluid) passes at high speed. However, at this time, it is desirable to maintain a constant flow rate at high pressure, and for this purpose, it is preferable to use a pressure pump capable of continuous operation at high pressure. If desired, the material for high-speed collision treatment may be continuously circulated to crush the virus particles.
上記した原理を有する装置としては、例えば、マイク
ロフルイダイザー (マイクロフルイディクス社製,米
国),ナノマイザー (圧流工業社製,日本)などが挙
げられる。 Devices having the above principle include, for example, microphones
Rofluidizer (Microfluidics, rice
Country), Nanomizer (Manufactured by Pressure Flow Industries, Japan)
I can do it.
高速衝突処理に用いられる装置における加圧およびウ
イルス粒子を含有する高速衝突処理材料の流速は、破砕
に用いるウイルス粒子の種類,目的とするウイルス粒子
の破砕の度合によって異なるが、通常約1500〜3,000kg/
cm2の加圧および約500〜800m/secの流速でウイルス粒子
を破砕することができる。インフルエンザワクチン製造
の目的でインフルエンザウイルス粒子を破砕する場合に
は、例えば約1500〜2500kg/cm2の加圧および500〜700m/
secの流速でインフルエンザウイルス粒子を相互に衝突
させ、約0.5〜5時間装置を連続循環運転させることに
よって目的とする破砕物を得ることができるが、さらに
高い圧力をかけ、あるいは装置内の流路の径を細くする
ことによりさらに高速でインフルエンザウイルス粒子を
相互に衝突させれば、処理時間を短縮することができ
る。The pressure in the apparatus used for high-speed collision treatment and the flow rate of the high-speed collision treatment material containing virus particles vary depending on the type of virus particles used for crushing and the degree of crushing of the target virus particles, but usually about 1500 to 3,000. kg/
Virus particles can be disrupted at a pressure of cm 2 and a flow rate of about 500-800 m / sec. When crushing the influenza virus particles in Influenza vaccine production purposes, for example, pressurization of about 1500~2500kg / cm 2 and 500 to 700 m /
Influenza virus particles collide with each other at a flow rate of sec, and the target crushed product can be obtained by continuously circulating the device for about 0.5 to 5 hours. If the influenza virus particles collide with each other at a higher speed by reducing the diameter of the particles, the processing time can be reduced.
本発明のウイルス粒子の破砕法によれば、ウイルス粒
子のエンベロープの部分構造を保持したままウイルス粒
子を破砕することが可能である。インフルエンザウイル
ス粒子の場合を例にとると、ヘモアグルチニン(HA),
ノイラミニダーゼ(NA),脂質二重層およびマトリック
ス蛋白質からなるエンベロープの部分構造を損うことな
くインフルエンザウイルス粒子を破砕することが可能で
あり、得られる破砕物を用いてインフルエンザワクチン
を製造することにより、副反応である発熱性が消失し、
脂質二重層およびマトリックス蛋白質との結合保持によ
るアジュバンド作用によってHAおよびNAの免疫原性(力
価)が全粒子ワクチンと同等であるインフルエンザワク
チンを製造することが可能である。According to the method for crushing virus particles of the present invention, it is possible to crush virus particles while maintaining the partial structure of the envelope of virus particles. In the case of influenza virus particles, for example, hemoaglutinin (HA),
It is possible to disrupt influenza virus particles without impairing the partial structure of the envelope consisting of neuraminidase (NA), lipid bilayer and matrix protein. By using the resulting disrupted product to produce an influenza vaccine, The exothermicity of the reaction disappears,
The adjuvant effect of retaining the lipid bilayer and binding to the matrix protein makes it possible to produce an influenza vaccine in which the immunogenicity (titer) of HA and NA is equivalent to that of a whole particle vaccine.
実施例 以下に実施例および実施例を挙げて、本発明をさらに
具体的に説明するが、本発明はこれらに限定されるもの
ではない。Examples Hereinafter, the present invention will be described more specifically with reference to Examples and Examples, but the present invention is not limited thereto.
実施例1 A/山形/120/86(H1N1)株[ワクチン製造用インフル
エンザウイルス株]を発育鶏卵の漿尿膜腔内に接種し、
培養して得た感染漿尿膜腔液をとり、精製白糖による密
度勾配遠心法で精製濃縮し、ウイルス画分を採取した。Example 1 A / Yamagata / 120/86 (H1N1) strain [influenza virus strain for vaccine production] was inoculated into the chorioallantoic space of embryonated chicken eggs.
The infected chorioallantoic fluid obtained by culturing was collected, purified and concentrated by density gradient centrifugation using purified sucrose, and the virus fraction was collected.
そのウイルス画分液にホルマリンを最終濃度が0.02v/
v%となるように添加し、4℃の冷蔵室に1週間(7日
間)放置し、ウイルスを不活化した。この不活化インタ
クト(全粒子)ウイルス画分液の75ml(ウイルス価:7,7
12CCA/ml)について、マイクロフルダイザー 器により
ウイルス粒子の破砕処理を行った。 Formalin was added to the virus fraction at a final concentration of 0.02 v /
v% and stored in a refrigerator at 4 ° C for 1 week (7 days
(Pauses) Leave to inactivate virus. This inactivation interface
75 ml of the virus fraction of virus (all particles) (virus titer: 7,7
About 12CCA / ml) By vessel
The virus particles were crushed.
マイクロフルイダイザー 器の処理条件は、サンプル
をマイクロフルダイザー 装置の容器に移し、コンプレ
ッサーの圧力を7.5〜8.90kg/cm2の調整し、加圧ポンプ
の圧力を1,800kg/cm2で作動させ、ウイルス画分液のサ
ンプルをインターアクションチェンバーへ送り込み、約
600m/secの流速でウイルス粒子同志を衝突させ、ウイル
スの破砕を起こさせた。チェンバー後のサンプルは再び
もとの容器に戻し、加圧ポンプの連続作動により、サン
プルを循環させ、ウイルスの破砕処理を行った。このウ
イルス破砕に要した処理時間は120分であった。 Microfluidizer The processing conditions of the vessel are sample
The micro full diizer Transfer to the container of the device and
Pressure of 7.5 ~ 8.90kg / cmTwoAdjusting and pressurizing pump
Pressure of 1,800kg / cmTwoAnd the virus fraction
Sample into the interaction chamber,
Virus particles collide with each other at a flow rate of 600 m / sec, and
Crushing of the ground. Sample after chamber is again
Return to the original container,
The pull was circulated, and the virus was crushed. This c
The processing time required for crushing the ils was 120 minutes.
このサンプルをマイクロフルイダイザー処理ワクチン
原液とした。インフルエンザワクチンとしての品質調査
のために、対照として(1)現行のエーテル処理ワクチ
ン(HAワクチン)のワクチン原液と(2)エーテル処理
前のウイルスをホルマリンで不活化した不活化インタク
トワクチン(全粒子ワクチン)のワクチン原液とを上記
ウイルス画分液より作製した。This sample was used as a microfluidizer-treated vaccine stock solution. In order to investigate the quality as an influenza vaccine, as controls, (1) a stock solution of the current ether-treated vaccine (HA vaccine) and (2) an inactivated intact vaccine (whole-particle vaccine) in which the virus before ether treatment was inactivated with formalin ) Was prepared from the above virus fraction.
実施例2 A/山梨/2/77(H3N2)株[ワクチン製造用インフルエ
ンザウイルス株]を発育鶏卵の漿尿膜腔内に接種し、培
養して得た感染漿尿膜腔液をとり、精製白糖による密度
勾配遠心法で精製濃縮し、ウイルス画分を採取した。Example 2 A / Yamanashi / 2/77 (H3N2) strain [influenza virus strain for vaccine production] was inoculated into the chorioallantoic space of embryonated chicken eggs, and the infected chorioallantoic fluid obtained by culturing was collected and purified. Purification and concentration were performed by density gradient centrifugation using sucrose, and a virus fraction was collected.
そのウイルス画分液にホルマリンを最終濃度が0.02v/
v%となるように添加し、4℃の冷蔵室に1週間(7
日)放置し、ウイルスを不活化した。この不活化インタ
クト(全粒子)ウイルス画分液の105ml(ウイルス価:1
6,372CCA/ml)について、マイクロフルイダイザー 器
によりウイルス粒子の破砕処理を行った。 Formalin was added to the virus fraction at a final concentration of 0.02 v /
v% and stored in a refrigerator at 4 ° C for 1 week (7
Day) and left to inactivate the virus. This inactivation interface
105 ml of virus fraction (whole particle) (virus titer: 1
6,372 CCA / ml) for microfluidizer vessel
To crush the virus particles.
ウイルス粒子の破砕の処理条件は、サンプルをマイク
ロフルイダイザー 装置の容器に移し、コンプレッサー
の圧力を7.5〜8.0kg/cm2に調整し、加圧ポンプの圧力を
1,704kg/cm2で作動させ、ウイルス画分液のサンプルを
インターアクションチェンバーへ送り込み、約600m/sec
の流速でウイルス粒子同志を衝突させ、ウイルスの破砕
を起こさせた。チェンバー後のサンプルは再びもとの容
器に戻し、加圧ポンプの連続作動により、サンプルを循
環させ、ウイルスの破砕処理を行った。このウイルス破
砕に要した処理時間は60分であった。 The processing conditions for disruption of virus particles are as follows:
Rofluidizer Transfer to equipment container
The pressure of 7.5-8.0kg / cmTwoAnd adjust the pressure of the pressure pump to
1,704kg / cmTwoAnd run a sample of the virus fraction
Send to Interaction Chamber, about 600m / sec
Virus particles collide with each other at the flow rate of
Awakened. The sample after the chamber is again
The sample is circulated by the continuous operation of the pressure pump.
The cells were ligated and the virus was disrupted. This virus breaks
The processing time required for crushing was 60 minutes.
このサンプルをマイクロフルイダイザー処理ワクチン
原液とした。インフルエンザワクチンとしての品質調査
のために、対照として(1)現行のエーテル処理ワクチ
ン(HAワクチン)と(2)エーテル処理前にウイルスを
ホルマリンで不活化した不活化インタクトワクチン(全
粒子ワクチン)とを上記ウイルス画分液よりワクチン原
液として作製した。This sample was used as a microfluidizer-treated vaccine stock solution. In order to investigate the quality of the influenza vaccine, (1) the current ether-treated vaccine (HA vaccine) and (2) the inactivated intact vaccine (whole-particle vaccine) in which the virus was inactivated with formalin before ether treatment were used as controls. A vaccine stock solution was prepared from the virus fraction.
実施例3 B/岐阜/2/73株[ワクチン製造用インフルエンザウイ
ルス株]を発育鶏卵の漿尿膜腔内に接種し、培養して得
た感染漿尿膜腔液をとり、精製白糖による密度勾配遠心
法で精製濃縮し、ウイルス画分を採取した。Example 3 B / Gifu / 2/73 strain [influenza virus strain for vaccine production] was inoculated into the chorioallantoic cavity of embryonated chicken eggs, and the infected chorioallantoic fluid obtained by culturing was taken and the density was determined by purified sucrose. Purification and concentration were performed by gradient centrifugation, and the virus fraction was collected.
そのウイルス画分液にホルマリンを最終濃度が0.02v/
v%となるように添加し、4℃の冷蔵室に1週間(7
日)放置し、ウイルスを不活化した。この不活化インタ
クト(全粒子)ウイルス画分液の60ml(ウイルス価:13,
080CCA/ml)について、マイクロフルイダイザー 器に
よりウイルス粒子の破砕処理を行った。 Formalin was added to the virus fraction at a final concentration of 0.02 v /
v% and stored in a refrigerator at 4 ° C for 1 week (7
Day) and left to inactivate the virus. This inactivation interface
60 ml of the virus fraction (whole particle) (virus titer: 13,
080CCA / ml), microfluidizer In a bowl
The virus particles were crushed.
ウイルス粒子の破砕の処理条件は、サンプルをマイク
ロフルイダイザー 装置の容器に移し、コンプレッサー
の圧力を7.5〜8.0kg/cm2に調整し、加圧ポンプの圧力を
1,800kg/cm2で作動させ、ウイルス画分液のサンプルの
インターアクションチェンバーへ送り込み、約600m/sec
の流速でウイルス粒子同志を衝突させ、ウイルスの破砕
を起こさせた。チェンバー後のサンプルは再びもとの容
器に戻し、加圧サンプルの連続作動により、サンプルを
循環させ、ウイルスの破砕処理を行った。このウイルス
破砕に要した処理時間は80分であった。 The processing conditions for disruption of virus particles are as follows:
Rofluidizer Transfer to equipment container
The pressure of 7.5-8.0kg / cmTwoAnd adjust the pressure of the pressure pump to
1,800kg / cmTwoAnd run the virus fraction sample
Send to Interaction Chamber, about 600m / sec
Virus particles collide with each other at the flow rate of
Awakened. The sample after the chamber is again
The sample is returned by the continuous operation of the pressurized sample.
Circulation was performed to crush the virus. This virus
The processing time required for crushing was 80 minutes.
このサンプルをマイクロフルイダイザー処理ワクチン
原液とした。インフルエンザワクチンとしての品質調査
のために、対照として(1)現行のエーテル処理ワクチ
ン(HAワクチン)と(2)エーテル処理前のウイルスを
ホルマリンで不活化した不活化インタクトワクチン(全
粒子ワクチン)とを上記ウイルス画分液よりワクチン原
液として作製した。This sample was used as a microfluidizer-treated vaccine stock solution. In order to investigate the quality of influenza vaccine, (1) the current ether-treated vaccine (HA vaccine) and (2) the inactivated intact vaccine (whole-particle vaccine) in which the virus before ether treatment was inactivated with formalin were used as controls. A vaccine stock solution was prepared from the virus fraction.
実施例4 A/福岡/C29/85(H3N2)株[ワクチン製造要インフル
エンザウイルス株]を用いて、実施例2と同様に処理し
てマイクロフルイダイザー処理ワクチン原液,エーテル
処理ワクチン(HAワクチン)原液および不活化インタク
トワクチン(全粒子ワクチン)原液をそれぞれ作製し
た。Example 4 A / Fukuoka / C29 / 85 (H3N2) strain [an influenza virus strain requiring vaccine production] was treated in the same manner as in Example 2 to obtain a microfluidizer-treated vaccine stock solution and an ether-treated vaccine (HA vaccine) stock solution. And an inactivated intact vaccine (whole particle vaccine) stock solution was prepared.
実施例5 インフルエンザワクチン(最終バルク)の調製 実施例1〜3で得られた各ウイルス株(A/山形/120/8
6(H1N1)株,A/山梨/2/77(H3N2)株及びB/岐阜/2/73
株)ワクチン原液をリン酸緩衝塩化ナトリウム液で表1
に示すCCA含量になるように混合希釈し、表1に示す処
方で3株混合のインフルエンザワクチン(最終バルク)
(300ml)の調製を行った。Example 5 Preparation of influenza vaccine (final bulk) Each virus strain obtained in Examples 1 to 3 (A / Yamagata / 120/8)
6 (H1N1), A / Yamanashi / 2/77 (H3N2) and B / Gifu / 2/73
The stock vaccine solution was treated with phosphate buffered sodium chloride solution in Table 1.
Influenza vaccine (final bulk) of 3 strains mixed according to the formulation shown in Table 1
(300 ml) was prepared.
対照として現行のエーテル処理ワクチン(HAワクチ
ン)原液と不活化インタクトワクチン(全粒子ワクチ
ン)原液より同様にして、3株混合のインフルエンザワ
クチン(最終バルク)(300ml)を調製した。As a control, a mixture of three strains of influenza vaccine (final bulk) (300 ml) was prepared in the same manner from the current stock solution of ether-treated vaccine (HA vaccine) and stock solution of inactivated intact vaccine (whole particle vaccine).
実験例1 インフルエンザワクチンの品質試験成績 (1)インフルエンザワクチンの発熱性 実施例1〜3で得られた各ウイルス株のワクチン原液
について、ウイルス性の発熱性を調べるため、ウサギ発
熱性試験を行い、各ワクチン原液接種後1.0,1.5,2.0,2.
5,3.0,4.0および5.0時間後に体温を測定した。結果は表
2に示すとおりとなった。 Experimental Example 1 Influenza vaccine quality test results (1) Influenza vaccine pyrogenicity Rabbit pyrogenicity test was performed on the vaccine stock solutions of each virus strain obtained in Examples 1 to 3 to examine viral pyrogenicity. 1.0, 1.5, 2.0, 2.
Body temperature was measured after 5,3.0,4.0 and 5.0 hours. The results were as shown in Table 2.
表2から明らかなように、エーテル処理前の不活化イ
ンタクトワクチン(全粒子ワクチン)は、ウイルス株に
より若干異なるが、30〜300CCA/kgの接種量でウイルス
性の発熱を示し、現行のエーテル処理ワクチン(HAワク
チン)では1000CCA/kgの接種量でいずれのウイルス株で
も陰性であった。これに対し、マイクロフルイダイザー
処理ワクチンでは、1000CCA/kgおよび3000CCA/kgの接種
量においてもウイルス性の発熱は認められず陰性であ
り、不活化インタクトワクチンと比較すると、10〜100
倍以上に発熱性が減少し、インフルエンザワクチンのウ
イルス性の発熱が消失していた。As is clear from Table 2, the inactivated intact vaccine before ether treatment (whole-particle vaccine) slightly differs depending on the virus strain, but shows a viral fever at an inoculation dose of 30 to 300 CCA / kg, and shows the current ether treatment. The vaccine (HA vaccine) was negative for all virus strains at a dose of 1000 CCA / kg. In contrast, in the microfluidizer-treated vaccine, no viral fever was observed even at inoculation doses of 1000 CCA / kg and 3000 CCA / kg, which was negative.
The fever decreased more than two-fold, and the viral fever of the influenza vaccine disappeared.
(2)インフルエンザワクチンの力価 実施例1〜3で得られた各ウイルス株ワクチン原液よ
り、実施例5と同様の組成のインフルエンザワクチン
(最終バルク)を調製した。また、対照として現行のエ
ーテル処理ワクチン(HAワクチン)原液と不活化インタ
クトワクチン(全粒子ワクチン)原液より、同様にして
インフルエンザワクチン(最終バルク)を調製した。各
インフルエンザワクチン(最終バルク)について、マウ
スにおける中和抗体産生能を経時的に測定した。すなわ
ち、マウスに免疫(ワクチン希釈液:M100リン酸塩緩衝
液)後1,2,3,4および5週間後に卵中和試験(中和時間:
30分)を行い、ED50値を求めた。結果は表3−(1)〜
(3)に示すとおりとなった。 (2) Influenza Vaccine Titer An influenza vaccine (final bulk) having the same composition as in Example 5 was prepared from the stock solutions of the respective virus strain vaccines obtained in Examples 1 to 3. As a control, an influenza vaccine (final bulk) was prepared in the same manner from a current stock solution of an ether-treated vaccine (HA vaccine) and a stock solution of an inactivated intact vaccine (whole particle vaccine). For each influenza vaccine (final bulk), the ability to produce neutralizing antibodies in mice was measured over time. That is, after 1, 2, 3, 4 and 5 weeks after immunization of mice (vaccine diluent: M100 phosphate buffer), egg neutralization test (neutralization time:
30 minutes) to determine the ED 50 value. The results are shown in Table 3- (1)-
As shown in (3).
表3−(1)から明らかなように、A/山形/120/86(H
1N1)株のマイクロフルイダイザー処理ワクチンの抗体
産生はほぼ2週間でピークに達し、力価も不活化インタ
クトワクチンと同等以上であった。これに対し、エーテ
ル処理ワクチンの力価はやや低く、抗体産生のピークも
3週間後であった。As is clear from Table 3- (1), A / Yamagata / 120/86 (H
The antibody production of the microfluidizer-treated vaccine of the 1N1) strain peaked in almost two weeks, and the titer was equal to or higher than that of the inactivated intact vaccine. In contrast, the titers of the ether-treated vaccine were somewhat lower, with peak antibody production after three weeks.
表3−(2)から明らかなように、A/山梨/2/77(H3N
2)株のマイクロフルイダイザー処理ワクチンの抗体産
生は3週間でピークに達し、力価も不活化インタクトワ
クチンとほぼ同等であった。これに対し、エーテル処理
ワクチンの力価は低く、抗体産生のピークも4週間後で
あった。As is clear from Table 3- (2), A / Yamanashi / 2/77 (H3N
2) The antibody production of the microfluidizer-treated vaccine of the strain peaked in 3 weeks, and the titer was almost the same as that of the inactivated intact vaccine. In contrast, the titers of the ether-treated vaccine were low, with peak antibody production after 4 weeks.
表3−(3)から明らかなように、B/岐阜/2/73株の
マイクロフルイダイザー処理ワクチンの抗体産生は絶対
値が低く、ピークも5週間後であったが、不活化インタ
クトワクチンの力価とほぼ同等であった。これに対し、
エーテル処理ワクチンでは、5週間後においてもED50値
が51・5であり、抗体価は極めて低かった。As is clear from Table 3- (3), the absolute value of the antibody production of the microfluidizer-treated vaccine of the B / Gifu / 2/73 strain was low, and the peak was 5 weeks later. It was almost equivalent to the titer. In contrast,
The ether treatment vaccine 50 value ED even after 5 weeks is 5 1 - 5, the antibody titers were very low.
なお、各マイクロフルイダイザー処理ワクチン(最終
バルク)は、現行のエーテル処理ワクチン(HAワクチ
ン)の生物学的製剤基準の全試験項目に適合した。In addition, each microfluidizer-treated vaccine (final bulk) met all the test items of the current biological standards for ether-treated vaccine (HA vaccine).
発明の効果 本発明のウイルス粒子の破砕法によれば、ウイルス粒
子のエンベロープの部分構造を損うことなくウイルス粒
子を破砕することが可能であり、ウイルス粒子の全粒子
と各構成成分との中間形態に担当し、両者の特性を合わ
せ持つ破砕物が得られる。 Effect of the Invention According to the method for crushing virus particles of the present invention, virus particles can be crushed without impairing the partial structure of the envelope of virus particles, and intermediate between all the particles of virus particles and each component. A crushed material that is in charge of the form and has both characteristics can be obtained.
第1図は、実施例4で作製した不活化インタクトワクチ
ン(全粒子ワクチン)原液におけるウイルス(生物)の
形態を示す電子顕微鏡写真を示す。 第2図は実施例4で作製したエーテル処理ワクチン(HA
ワクチン)原液におけるウイルス(生物)の破砕物の形
態を示す電子顕微鏡写真を示す。 第3図は実施例4で作製したマイクロフルイダイザー処
理ワクチン原液におけるウイルス(生物)の破砕物の形
態を示す電子顕微鏡写真を示す。 なお、第1〜3図中の右下に示した白線は、200nmの長
さであることを示す。FIG. 1 shows an electron micrograph showing the form of a virus (organism) in the stock solution of the inactivated intact vaccine (whole-particle vaccine) prepared in Example 4. FIG. 2 shows the ether-treated vaccine (HA) prepared in Example 4.
(Vaccine) An electron micrograph showing the morphology of a crushed virus (organism) in the stock solution. FIG. 3 is an electron micrograph showing the morphology of a crushed virus (organism) in the microfluidizer-treated vaccine stock solution prepared in Example 4. The white line shown at the lower right of FIGS. 1 to 3 indicates that the length is 200 nm.
フロントページの続き (58)調査した分野(Int.Cl.6,DB名) A61K 39/12 B02C 19/12 A61K 39/145 CA(STN) WPI(STN) BIOTECHABS(STN) MEDLINE(STN)Continued on the front page (58) Fields investigated (Int. Cl. 6 , DB name) A61K 39/12 B02C 19/12 A61K 39/145 CA (STN) WPI (STN) BIOTECHABS (STN) MEDLINE (STN)
Claims (1)
特徴とするウイルス粒子の破砕法。1. A method for crushing virus particles, comprising subjecting the virus particles to high-speed collision treatment.
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---|---|---|---|
JP1331599A JP2841592B2 (en) | 1988-12-21 | 1989-12-20 | Virus particle disruption method |
Applications Claiming Priority (3)
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JP32395188 | 1988-12-21 | ||
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Publications (2)
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JPH02282335A JPH02282335A (en) | 1990-11-19 |
JP2841592B2 true JP2841592B2 (en) | 1998-12-24 |
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