JP2749577B2 - Dye-modified lysozyme-sensitive bacteria and lysozyme activity assay using the same - Google Patents

Dye-modified lysozyme-sensitive bacteria and lysozyme activity assay using the same

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JP2749577B2 JP62313876A JP31387687A JP2749577B2 JP 2749577 B2 JP2749577 B2 JP 2749577B2 JP 62313876 A JP62313876 A JP 62313876A JP 31387687 A JP31387687 A JP 31387687A JP 2749577 B2 JP2749577 B2 JP 2749577B2
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  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Description

【発明の詳細な説明】 この発明は色素で修飾したリゾチーム感受性菌に関す
るものである。 リゾチームは、広く動植物界に分布し、特に人間にお
いては涙、唾液、血清、白血球などに多く含まれてい
る。リゾチームは、細菌細胞壁に存在するN−アセチル
ムラミン酸とN−アセチルグルコサミンのコポリマーを
加水分解し、溶菌をおこさせる酵素として知られてい
る。ヒトリゾチームは、臓器および体液中に広く分布し
ているが、最近、その変動と病態との関連が注目されて
いる。ヒト血清中のリゾチーム濃度は、正常人の場合、
7〜20mg/mlに維持されているが、急性白血病、骨髄性
白血病などではその濃度が顕著に増加する。また、すい
臓の細胞のガン化にともない、すい液に多量のリゾチー
ムが分泌されることが報告されている。さらに腎機能の
低下によってリゾチームの尿中排泄量が増加することが
報告されている。これらのことから、リゾチームの血中
レベルを測定することは病気の診断の助けとなる。 これまで種々のリゾチームの活性測定法が開発されて
いるが、十分に感度を有し、実際に臨床において使用さ
れている方法は溶菌法である。しかしながら、この方法
は、操作が極めて難しく、専門の生化学者でなければ、
再現性の高い結果を得ることができないという大きな欠
点がある。また、測定法の性質上、一度に多量のサンプ
ルを測定することができず実用上極めて非能率的である
という欠点がある。 したがって、リゾチームの活性を簡便でかつ感度高く
測定する方法の開発が強く望まれている。 そこで、本発明者らは、リゾチームの簡便でかつ感度
の高い活性測定法を開発すべく鋭意研究した結果、色素
で修飾したリゾチーム感受性菌を使用すると極めて簡便
にして、再現性が高く、かつ感度も高いリゾチームの活
性を測定することができることを見出したので、この発
明を完成した。 つまり、この発明は、リゾチーム感受性菌を色素で修
飾することによって得られた色素修飾リゾチーム感受性
菌を提供することを主な目的としている。 この発明に係る色素修飾リゾチーム感受性菌は、リゾ
チーム感受性菌を色素で修飾することによって得ること
ができる。 この発明において使用できるリゾチーム感受性菌は、
特定のものに何ら限定されるものではなく、リゾチーム
に感受性を有していればいかなるものでも使用すること
ができる。かかるリゾチーム感受性菌には、例えば、プ
ラノコッカス属、スタフィロコッカス属、エンテロコッ
カス属、ストレプトコッカス属、ミクロコッカス属など
に属するグラム陽性球菌、バチルス属、クロストリジウ
ム属、コリネバクテリウム属、ラクトバチルス属、リス
テリア属、ノカルヂア属、アクチノマイセス属などに属
するグラム陽性桿菌などのグラム陽性菌が含まれる。か
かるリゾチーム感受性菌のうち、特に好ましいものは、
ミクロコッカス属に属する細菌であり、そのうちでも特
にミクロコッカス・リソデイクチクス(Micrococcus ly
sodeikticus)やミクロコッカス・ルテウス(Micrococc
us luteus)などが挙げられるが、これらに何ら限定さ
れるものではないことをここに再度強調しておく。 またこの発明において使用する色素としてはブリリア
ントブルーであり、リマゾールブリリアントブルーを用
いるのが好ましい。 更にリゾチーム感受性菌を色素で修飾する方法にして
も、常法に従って、混合するだけでよく、製造方法も極
めて簡単である。 このようにして得られた菌体をリゾチームの定量のた
めの基質として使用すれば、その修飾された色素が、例
えば酸性、中性もしくは塩基性領域で容易に遊離され、
それによりリゾチームを定性的ならびに定量的に簡単に
測定できるので極めて実用的なリゾチーム活性測定法が
得られることになる。 以下、この発明を実施例によってより詳細に説明す
る。 実施例1 ミクロコッカス・リソデイクチクス(Micrococcus ly
sodeikticus)の凍結乾燥菌体300mgを蒸留水20mlに懸濁
し、この懸濁液に、リマゾールブリリアントブルーR200
mgを蒸留水20mlに溶解して加えた。次いで、この混合液
に硫酸ナトリウム4gを少しづつ30分間掛けて添加した。
その後、リン酸3ナトリウム200mgを蒸留水2mlに溶解し
た溶液を添加し、得られた反応液を更に30分間撹拌し
た。反応終了後、この反応液を2600rpmで10分間遠心分
離して上清を除去した。得られた沈殿物を蒸留水20mlを
加えてミキサーで分散させた後、更に遠心分離して上清
を除去した。この操作を数回繰り返して洗浄した後、得
られた沈殿を蒸留水5mlに分散して凍結乾燥した。 この凍結乾燥したリマゾールブリリアントブルーで修
飾したミクロコッカス・リソデイクチクス菌体32mgを所
定の緩衝液20mlに分散し、2600rpmで10分間遠心分離し
て上清を除去した。得られた沈殿物に再び緩衝液20mlを
添加してミキサーで分散した。この溶液1mlとウシ血清
アルブミン(5mg/ml)200mlとを試験管に取り、30分間
プレインキュベートした。次に、01.2μg/mlのリゾチー
ム溶液1mlを添加して40分間または90分間インキュベー
トした後、反応を停止するために6N塩酸100mlを添加し
た。得られた反応液を15000rpmで2分間遠心分離した
後、上澄液を600nmの吸光度を分光光度計で測定した。 そこで、ウシ血清アルブミン(BSA)を用いてニワト
リリゾチームをインキュベーションした後、ウシ血清ア
ルブミンの影響をpH7、37℃で調べた結果、BSA濃度が0.
083mg/ml以上であっても、上清の600nmの吸光度は反応
液中のBSA濃度の影響を受けずに一定であることが判明
した。 上記のようにして得られた菌体を血清中のリゾチーム
定量に使用するための条件を以下のように設定した。1.
6mg/mlの菌体溶液(0.2M食塩を含む0.05Mリン酸緩衝
液、pH7、イオン強度0.3)1mlと、5mg/mlのBSA溶液(0.
2M食塩を含む0.05Mリン酸緩衝液、pH7、イオン強度0.
3)200mlを試験管に取り、48℃で30分間プレインキュベ
ーションを行なった。次に、0.6M食塩水で2倍に希釈し
たヒト血清1mlを加え、50分間または90分間インキュベ
ーションを行なった。6N塩酸100mlを加えて反応を停止
した後、15,000rpmで2分間遠心分離して、得られた上
清を600nmの吸光度を測定した。 このような方法で5人の成人男子の血清中のリゾチー
ム量を測定したところ、血清中のリゾチーム濃度が0.9
〜1.3μg/mlの範囲で測定された。なお、この結果は比
較のために従来使用されている溶菌法(pH7,30℃)で測
定した結果と同等であることが判明した。 実施例2 ミクロコッカス・リソデイクチクスの代りにミクロコ
ッカス・ルテウス(Micrococcus luteus)を用いて、実
施例1と同様にして凍結乾燥したリマゾールブリリアン
トブルーで修飾したミクロコッカス・ルテウスを得た。 この乾燥菌体も、実施例1で得たものと、血清中のリ
ゾチームに対し同様な感度を示した。
DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION The present invention relates to a lysozyme-sensitive bacterium modified with a dye. Lysozyme is widely distributed in the animal and plant kingdoms, and particularly in humans, is abundantly contained in tears, saliva, serum, leukocytes, and the like. Lysozyme is known as an enzyme that hydrolyzes a copolymer of N-acetylmuramic acid and N-acetylglucosamine present in a bacterial cell wall to cause lysis. BACKGROUND ART Human lysozyme is widely distributed in organs and body fluids, and recently, attention has been paid to the relationship between its fluctuation and pathological conditions. Lysozyme concentration in human serum is
It is maintained at 7 to 20 mg / ml, but its concentration is significantly increased in acute leukemia, myeloid leukemia and the like. In addition, it has been reported that a large amount of lysozyme is secreted into pancreatic juice with canceration of pancreatic cells. Furthermore, it has been reported that urinary excretion of lysozyme increases due to decreased renal function. For these reasons, measuring blood levels of lysozyme will aid in the diagnosis of the disease. Various methods for measuring the activity of lysozyme have been developed so far, but the method that has sufficient sensitivity and is actually used in clinical practice is the lysis method. However, this method is extremely difficult to operate, and unless a professional biochemist
There is a major drawback that high reproducible results cannot be obtained. In addition, due to the nature of the measurement method, a large amount of sample cannot be measured at a time, which is extremely inefficient in practical use. Therefore, development of a simple and sensitive method for measuring the activity of lysozyme is strongly desired. Thus, the present inventors have conducted intensive studies to develop a simple and highly sensitive method for measuring the activity of lysozyme, and as a result, the use of a lysozyme-sensitive bacterium modified with a dye makes it extremely simple, reproducible, and sensitive. As a result, it has been found that the lysozyme activity can be measured as high as possible. That is, an object of the present invention is to provide a dye-modified lysozyme-sensitive bacterium obtained by modifying a lysozyme-sensitive bacterium with a dye. The dye-modified lysozyme-sensitive bacterium according to the present invention can be obtained by modifying a lysozyme-sensitive bacterium with a dye. Lysozyme-sensitive bacteria that can be used in the present invention include:
It is not limited to any particular substance, and any substance having sensitivity to lysozyme can be used. Such lysozyme-sensitive bacteria include, for example, genus Planococcus, Staphylococcus, Enterococcus, Streptococcus, Gram-positive cocci belonging to Micrococcus, etc., Bacillus, Clostridium, Corynebacterium, Lactobacillus, Listeria. Gram-positive bacteria such as Gram-positive bacilli belonging to the genus, Nocardia, Actinomyces and the like are included. Among such lysozyme-sensitive bacteria, particularly preferred are:
It is a bacterium belonging to the genus Micrococcus, and among them, in particular, Micrococcus lysodicus
sodeikticus) and Micrococcus luteus (Micrococc
us luteus) and the like, but it should be emphasized again that the present invention is not limited to these. The dye used in the present invention is brilliant blue, and rimazole brilliant blue is preferably used. Furthermore, the method of modifying lysozyme-sensitive bacteria with a dye can be achieved only by mixing according to a conventional method, and the production method is extremely simple. If the cells thus obtained are used as a substrate for lysozyme quantification, the modified dye is easily released in, for example, an acidic, neutral or basic region,
As a result, lysozyme can be easily measured qualitatively and quantitatively, so that a very practical method for measuring lysozyme activity can be obtained. Hereinafter, the present invention will be described in more detail with reference to examples. Example 1 Micrococcus lysodetics (Micrococcus ly
300 mg of freeze-dried cells of sodeikticus) are suspended in 20 ml of distilled water, and the suspension is added with Limazole Brilliant Blue R200.
mg was dissolved in 20 ml of distilled water and added. Then, 4 g of sodium sulfate was added little by little to the mixture over 30 minutes.
Thereafter, a solution obtained by dissolving 200 mg of trisodium phosphate in 2 ml of distilled water was added, and the resulting reaction solution was further stirred for 30 minutes. After completion of the reaction, the reaction solution was centrifuged at 2600 rpm for 10 minutes to remove the supernatant. After adding 20 ml of distilled water to the obtained precipitate and dispersing it with a mixer, it was further centrifuged to remove the supernatant. After repeating this operation several times and washing, the obtained precipitate was dispersed in 5 ml of distilled water and freeze-dried. 32 mg of the lyophilized Micrococcus lysoditicus cells modified with rimazole brilliant blue were dispersed in 20 ml of a predetermined buffer, and centrifuged at 2600 rpm for 10 minutes to remove the supernatant. 20 ml of the buffer solution was added again to the obtained precipitate, and the mixture was dispersed with a mixer. 1 ml of this solution and 200 ml of bovine serum albumin (5 mg / ml) were placed in a test tube and pre-incubated for 30 minutes. Next, 1 ml of a lysozyme solution at 01.2 μg / ml was added and incubated for 40 or 90 minutes, and then 100 ml of 6N hydrochloric acid was added to stop the reaction. After centrifuging the obtained reaction solution at 15000 rpm for 2 minutes, the supernatant was measured for absorbance at 600 nm with a spectrophotometer. Therefore, after incubating chicken lysozyme with bovine serum albumin (BSA), the effect of bovine serum albumin was examined at pH 7 and 37 ° C.
Even at 083 mg / ml or more, it was found that the absorbance at 600 nm of the supernatant was constant without being affected by the BSA concentration in the reaction solution. The conditions for using the cells obtained as described above for quantifying lysozyme in serum were set as follows. 1.
1 ml of a 6 mg / ml bacterial cell solution (0.05 M phosphate buffer containing 0.2 M salt, pH 7, ionic strength 0.3) and a 5 mg / ml BSA solution (0.
0.05 M phosphate buffer containing 2 M salt, pH 7, ionic strength 0.
3) 200 ml was taken into a test tube and pre-incubated at 48 ° C for 30 minutes. Next, 1 ml of human serum diluted twice with 0.6 M saline was added, and incubation was performed for 50 minutes or 90 minutes. After stopping the reaction by adding 100 ml of 6N hydrochloric acid, the mixture was centrifuged at 15,000 rpm for 2 minutes, and the resulting supernatant was measured for absorbance at 600 nm. When the amount of lysozyme in the serum of 5 adult males was measured by such a method, the lysozyme concentration in the serum was 0.9%.
It was measured in the range of 1.31.3 μg / ml. In addition, it turned out that this result was equivalent to the result measured by the lysis method (pH7, 30 degreeC) conventionally used for comparison. Example 2 Micrococcus luteus modified by Limazol brilliant blue lyophilized in the same manner as in Example 1 was obtained using Micrococcus luteus instead of Micrococcus lysodetics. The dried cells also showed the same sensitivity to lysozyme in serum as that obtained in Example 1.

Claims (1)

(57)【特許請求の範囲】 1.リゾチーム感受性菌をブリリアントブルーで修飾し
たことを特徴とする色素修飾リゾチーム感受性菌。 2.ブリリアントブルーがリマゾールブリリアントブル
ーであることを特徴とする特許請求の範囲第1項記載の
色素修飾リゾチーム感受性菌。 3.リゾチーム感受性菌をブリリアントブルーで修飾し
てなる色素修飾リゾチーム感受性菌を用い、かつ界面活
性剤及び乳化剤非存在下でリゾチームの活性を測定する
ことを特徴とするリゾチーム活性測定法。 4.色素がリマゾールブリリアントブルーであることを
特徴とする特許請求の範囲第3項記載のリゾチーム活性
測定法。
(57) [Claims] A dye-modified lysozyme-sensitive bacterium, wherein the lysozyme-sensitive bacterium is modified with brilliant blue. 2. The dye-modified lysozyme-sensitive bacterium according to claim 1, wherein the brilliant blue is rimazole brilliant blue. 3. A method for measuring lysozyme activity, which comprises using a dye-modified lysozyme-sensitive bacterium obtained by modifying a lysozyme-sensitive bacterium with brilliant blue, and measuring the activity of lysozyme in the absence of a surfactant and an emulsifier. 4. 4. The method for measuring lysozyme activity according to claim 3, wherein the dye is rimazole brilliant blue.
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* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US3834991A (en) 1972-05-23 1974-09-10 Warner Lambert Co Colorimetric assay for lysozyme

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* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US3834991A (en) 1972-05-23 1974-09-10 Warner Lambert Co Colorimetric assay for lysozyme

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