JP2714572B2 - Incubation medium containing lactoferrin for solid-phase immunoassay assays - Google Patents

Incubation medium containing lactoferrin for solid-phase immunoassay assays

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JP2714572B2 JP62284411A JP28441187A JP2714572B2 JP 2714572 B2 JP2714572 B2 JP 2714572B2 JP 62284411 A JP62284411 A JP 62284411A JP 28441187 A JP28441187 A JP 28441187A JP 2714572 B2 JP2714572 B2 JP 2714572B2
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Description

【発明の詳細な説明】 本発明は固相免疫測定アツセイ用のラクトフエリン含
有インキユベーシヨン媒質およびこの媒質の使用に関す
る。 固相免疫測定アツセイ、例えばELISAに必要なインキ
ユベーシヨン媒質(「緩衝溶液」、「インキユベーシヨ
ン・環境」)の組成は、検体中の随伴物質の固相への非
特異的結合が防止されるようなものとしなければならな
い。この目的に知られる添加剤は、タンパク、例えばア
ルブミン、カゼイン、タンパク混合物、例えば動物血
清、加水分解ゼンチンまたはその誘導体および界面活性
剤などである。 かかる添加剤を含有するインキユベーシヨン媒質は、
特に検体を加熱した場合に生ずる測定過誤を防止できな
い。例えばHIV(ヒト免疫不全ウイルス)などに由来す
ることにある検体の感染力を減じるには加熱が得策であ
る。 そこで本発明の目的は、使用に際し検体の加熱によっ
て測定値に誤りが生じることのないインキユベーシヨン
媒質を見出すことにある。 驚くべきことにラクトフエリンを含有するインキユベ
ーシヨン媒質によりこの目的が達成されることを見出し
た。 本発明は、検体中の随伴物質の固相への非特異的結合
防止剤としてラクトフエリンを含有する固相免疫測定ア
ツセイ用インキユベーシヨン媒質に関する。 本発明においていうところのインキユベーシヨン媒質
とは、免疫化学的反応が行われる固相免疫測定アツセイ
の液相である。 ラクトフエリンは0.05〜20g/の濃度で添加される。
0.15〜0.25、特に0.2g/の濃度が好ましい。 ラクトフエリンは固相免疫測定アツセイのための自体
知られたインキユベーシヨン媒質または緩衝溶液に添加
することができる。これらのうちの一例は、西独特許A
−27 448 36の第24頁に記載された溶液であるが、これ
は緩衝物質のほかに5g/の牛血清アルブミン、5g/の
ポリオキシエチレン(20)ソルビタンモノラウレート(
(R)Tweeen 20)を燐酸塩緩衝生理食塩溶液(PBS)中に
含有する。もう一つの例としては、西独特許A−31 15
115号の第10頁に記載された溶液が挙げられるが、これ
は0.2モル/ NaH2PO4/Na2HPO4緩衝液(pH6.5)中に2g
/の牛血清アルブミンおよび200ml/の正常ヤギ血清
を含有するものである。好ましい緩衝溶液の一例は、実
施例1に用いられている。 この種の媒質は、好都合には自体知られたタンパク、
好ましくはカゼインおよび/またはゼラチンの加水分解
生成物、または加水分解および化学処理されたゼラチン
を含有することもできる。 本発明により用いられるラクトフエリンは、哺乳動物
の乳汁からクリームを除去し、クリームを除去した乳汁
のpHを3.5〜4.5に調整し、生じたタンパク沈澱を除去し
そしてその上清からイオン交換体でのクロマトグラフイ
によりラクトフエリンをとり出して単離することによ
り、前記乳汁から採取することができる。 ラクトフエリンは乳汁、好ましくは牛乳から単離され
る。本発明の目的に適したラクトフエリンを採取するた
めの好ましい方法においては、その乳汁から例えば遠心
分離することにより脂肪を除去する。生じる二相のうち
上相をとり出して捨てる。下相を酸でpH3.5〜4.5に調整
する。これによって生じる沈澱を例えば遠心分離によつ
て沈降させそして捨てる。上清を水で希釈することによ
り6〜7mS/cmの伝導度に調整する。次に陽イオン交換
体、例えばpH4〜5.5および好ましくは6〜7mS/cmの伝導
度の緩衝液を用いて膨潤および平衡化させたCM−セルロ
ースまたはSP−Sephadex(商標名)を導入する。その懸
濁液を過し、残渣を数回にわたり同じ緩衝液で洗浄
し、次にその中に懸濁させ、そしてカラムに充填する。
それを好ましくは0〜1モル/ NaClの濃度勾配を用
いてpH5で溶離する。500〜650ミリモル/の範囲のNaC
lにおいて280nmで測定される均質なピークとして溶出さ
れる画分がインキユベーシヨン媒質に特に適したラクト
フエリンを含有する。SDS−PAGE電気泳動では、このラ
クトフエリンは80,000±3,000の分子量を有するバンド
として現れる。 陰イオン交換体、例えばDEAE−またはQAE−Sephadex
(商標名)での、あるいはDEAE−セルロースでのクロマ
トグラフイでは前述のpH3.5〜4.5での沈澱で得られた上
清をpH6.5〜7.5および伝導度6〜8mS/cmに調整し、そし
てpH6.5〜7.5および伝導度6〜8mS/cmの緩衝液で予め平
衡となしたイオン交換体を充填したカラムに適用する。
次いでラクトフエリンはカラムを通過するかまたはNaCl
濃度勾配を用いて溶離した場合に、第一ピークとして溶
出される。 ラクトフエリンは、検体または被分析物質を固相に結
合された反応体とインキユベーシヨンする際に存在しな
ければならない。このものは被分析物質を含有する溶液
に、または被分析物質を希釈する溶液または緩衝液中に
添加することができる。しかしながらこのものはまた、
溶存した状態でこれを被分析物質と接触させるに先立ち
固相に結合されたかおよび/または固相上に乾燥付着さ
れた反応体と接触させることもできる。 固相に結合される適切な反応体は、この種の被分析物
質を結合することのできるバイオアフイニテイ結合系の
成分である。免疫学的結合系の場合には、これらの反応
体は抗原または抗体である。固相免疫測定アツセイは、
拮抗式および両サイド式免疫測定(サンドイツチ)アツ
セイのいずれであってもよく、あるいは間接アツセイで
あってさえもよい。後者の場合、被分析物質は抗体であ
りそして固相反応体は対応する抗原であり、そして固相
に結合した抗体量は第二の標識抗体によって測定され
る。 このアツセイ系は一段階または多段階アツセイとする
ことができる。 ラクトフエリンは、特定のバイオアフイニテイ結合系
に属さない検体成分の結合を妨げる。このようにして、
ラクトフエリンにより被分析物質の検出および測定にお
いて誤った結果が出るのが避けられる。 以下の実施例は、本発明の例示であり、またラクトフ
エリンがインキユベーシヨン媒質の成分として適切であ
ることを実証するものである。 これら実施例は、ラクトフエリンが様々なインキユベ
ーシヨン媒質中に様々な量で導入されて使用できること
を示すためのものである。 実施例 1 1.ラクトフエリンの単離 20の牛乳を3400×gで30分間遠心分離し、そして上
清中の乳汁脂肪を除去した。少量の不溶性成分を沈澱と
して除去しそして同様にして廃棄した。 脂肪の除去された乳汁のpHを、塩酸の添加によりpH4.
0に調整した。これによって生成したタンパク沈澱を340
0×gの遠心分離により除去した。 水酸化ナトリウム溶液でpH5.0に調整した後に20℃で
の伝導度が12mS/cmである上清を、7mS/cmとなるまで水
を希釈し、次いで膨潤したイオン交換体カルボキシメチ
ルセルロースCM 32(Whatmann社より供給)200mlと混合
し、そしてその混合物を室温で4時間撹拌した。そのイ
オン交換体は50ミリモル/酢酸ナトリウム緩衝液(pH
5.0)で予め平衡させておいた。次にそのイオン交換体
を吸引漏斗で別し、酢酸ナトリウム緩衝液中に懸濁さ
せ、そしてクロマトグラフイカラムに移した。次にカラ
ムを前述の酢酸塩緩衝液400mlで洗浄した。陽イオン交
換体に結合したタンパクを1モル/塩化ナトリウム溶
液を用いて溶離した。 溶出液を1N水酸化ナトリウム溶液を用いてpH5.0に調
整し、そして透析により50ミリモル/酢酸ナトリウム
(pH5.0)とした。そのタンパク混合物を再度200mlのカ
ルボキシメチルセルロースCM 32上のクロマトグラフイ
にかけた。それらタンパクを50ミリモル/酢酸ナトリ
ウム(pH5)から50ミリモル/酢酸ナトリウム(pH5)
および1モル/塩化ナトリウムの直線濃度勾配を用い
て溶離した。 溶出ダイアグラムの第四ピーク(その溶液は、18〜20
mS/cmの伝導度を有した)を1画分として集め、限外
過により濃縮し、そして0.5g/アジ化ナトリウム含有P
BSと平衡させたSepharose(商標名)AcA 34でのゲル
過にかけた。このゲル過からの主成分(その量は1.2g
のタンパクであった)はラクトフエリンを含有した。 2.ラクトフエリン含有検体希釈緩衝液とラクトフエリン
が添加されていない検体希釈緩衝液との比較 Behringwerke社のEnzygnost(商標名)抗HSV・ELISA
キツトを固相免疫測定法に用いた。パツク中に挿入され
た説明書に記載の方法に従ってアツセイを行ったが、以
下にその概略を記す。 検体を0.2g/ラクトフエリンを添加していない、ま
たは添加した同じ検体希釈緩衝液(137ミリモル/ Na
Cl、7.247ミリモル/ Na2HPO4・2H2Oおよび2.720ミリ
モル/ KH2PO4、そして2.7ミリモル/ KCl、0.4ミ
リモル/ MgCl2、3ミリモル/ NaN3、10ml/牛胎
児血清および40ml/Tween(商標名)20を添加)を用い
て、推奨された1:44に代えて1:25の割合で希釈し、次い
でマイクロアツセイ・プレートのウエル内に固定された
抗原と共にインキユベートし、未結合抗体を洗浄により
除去し、酵素を接合体溶液を用いて生成した抗体/抗原
複合体に結合し、過剰の接合体溶液を洗浄により除去
し、色素原性基質溶液を用いて酵素を介して発色させ、
次いで停止溶液を用いて反応を止めた。次に、このよう
にして調製されそしてウイルス特異抗体含量に依存して
発色した検体を405nmにおける吸光度(E)を測光的に
測定することにより評価した。 被験者9名の血清の各々の一部を56℃で30分間加熱し
た。他部は未処理のままとした。 特にラクトフエリンが添加されていない希釈緩衝液中
の加熱された検体の場合には、対照ウエル中で測定され
た吸光度が極めて高いが、抗原被覆ウエル中での吸光度
も高くなることが認められた。この結果、5例は偽陰性
の結果であった。対照ウエルは、ウイルス採取に用いら
れる非ウイルス感染細胞の調製物で処理(「被覆」)さ
れている。9個の加熱された検体をラクトフエリン含有
希釈緩衝液を用いてアツセイしたところ、偽陰性の結果
は全く認められなかつた。加熱されていない検体をラク
トフエリンを含有していない希釈緩衝液を用いてテスト
した。その結果は加熱された血清を用いた結果のチエツ
クに役立った。 実施例 2 ラクトフエリンの添加効果を一段階サンドイツチアツ
セイでテストした。この種のHBsAgアツセイにおいて、
7.5g/ラクトフエリンを添加したところ、14個の未加
熱の臨界的検体はすべて間違いなく陰性であることが認
められ、これに対し、ラクトフエリンを添加しない場合
にはすべてが偽陽性測定値であった。 実施例 3 ラクトフエリンの添加効果をインフルエンザA抗原を
検出するための三段階サンドイツチアツセイでテストし
た。この固相免疫化学的方法の第二および第三段階にラ
クトフエリンを用いた。 これら2つの段階において、最初にラクトフエリンを
(0.05g/以上)含有し使用のために希釈された抗体/
ビオチン接合体を、次にラクトフエリンを(0.05g/以
上)含有し使用のために希釈されたストレプトアビジン
/POD接合体をインキユベートした場合には、バツクグラ
ウンドおよびインフルエンザB異物抗原を指標にして、
非特異的反応を80%以上減少させることができた。450n
mで測定したELISA結果を代表例としてここに示す: ラクトフエリンを添加しなかった場合の非特異的結合=2.892U ラクトフエリンを添加した場合の非特異的結合=0.231U
DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION The present invention relates to a lactoferrin-containing ink medium for use in solid-phase immunoassay assays and the use of this medium. The composition of the incubation medium (“buffer solution”, “incubation / environment”) required for solid-phase immunoassay assays, for example, ELISA, requires non-specific binding of accompanying substances in the sample to the solid phase. Must be prevented. Additives known for this purpose are proteins such as albumin, casein, protein mixtures such as animal serum, hydrolyzed gentin or its derivatives and surfactants. Incubation medium containing such additives,
In particular, measurement errors that occur when the sample is heated cannot be prevented. For example, heating is a good measure to reduce the infectivity of specimens that originate from HIV (human immunodeficiency virus). Accordingly, an object of the present invention is to find an incubation medium that does not cause errors in measured values due to heating of a specimen during use. Surprisingly, it has been found that this objective is achieved by an incubation medium containing lactoferrin. The present invention relates to an incubation medium for solid-phase immunoassay assay, which contains lactoferrin as an agent for preventing non-specific binding of accompanying substances in a sample to a solid phase. The incubation medium referred to in the present invention is a liquid phase of a solid-phase immunoassay assay in which an immunochemical reaction is performed. Lactoferrin is added at a concentration of 0.05-20 g /.
A concentration of 0.15 to 0.25, especially 0.2 g / is preferred. Lactoferrin can be added to an incubation medium or buffer known per se for solid-phase immunoassay assays. An example of these is the West German Patent A
-27 448 36, page 24, which contains, besides buffer substances, 5 g / bovine serum albumin, 5 g / polyoxyethylene (20) sorbitan monolaurate (
(R) Tweeen 20) in phosphate buffered saline (PBS). Another example is the German patent A-31 15
No. 115, page 10, which is 2 g in 0.2 mol / NaH 2 PO 4 / Na 2 HPO 4 buffer (pH 6.5).
/ Bovine serum albumin and 200 ml / normal goat serum. One example of a preferred buffer solution is used in Example 1. Such a medium is conveniently a protein known per se,
It may also preferably contain hydrolysis products of casein and / or gelatin, or hydrolyzed and chemically treated gelatin. The lactoferrin used according to the present invention removes cream from mammalian milk, adjusts the pH of the cream-free milk to 3.5-4.5, removes the resulting protein precipitate and removes the supernatant with an ion exchanger. By extracting and isolating lactoferrin by chromatography, it can be collected from the milk. Lactoferrin is isolated from milk, preferably from milk. In a preferred method for collecting lactoferrin suitable for the purpose of the present invention, fat is removed from the milk, for example by centrifugation. Take out and discard the upper phase of the resulting two phases. The lower phase is adjusted to pH 3.5-4.5 with acid. The resulting precipitate is settled out, for example, by centrifugation and discarded. Adjust the conductivity to 6-7 mS / cm by diluting the supernatant with water. A cation exchanger is then introduced, for example CM-cellulose or SP-Sephadex (TM) which has been swollen and equilibrated with a buffer having a conductivity of pH 4 to 5.5 and preferably of 6 to 7 mS / cm. The suspension is filtered and the residue is washed several times with the same buffer, then suspended therein and packed into a column.
It is preferably eluted at pH 5 with a gradient of 0-1 mol / NaCl. NaC in the range of 500-650 mmol /
The fraction eluted as a homogeneous peak measured at 280 nm in l contains lactoferrin which is particularly suitable for the incubation medium. In SDS-PAGE electrophoresis, the lactoferrin appears as a band with a molecular weight of 80,000 ± 3,000. Anion exchangers such as DEAE- or QAE-Sephadex
Chromatography with (trade name) or with DEAE-cellulose adjusts the supernatant obtained from the above precipitation at pH 3.5-4.5 to pH 6.5-7.5 and conductivity 6-8 mS / cm. And applied to a column packed with an ion exchanger pre-equilibrated with a buffer of pH 6.5-7.5 and a conductivity of 6-8 mS / cm.
Lactoferrin then passes through the column or NaCl
When eluted with a concentration gradient, it is eluted as the first peak. Lactoferrin must be present when incubating the analyte or analyte with the reactants bound to the solid phase. It can be added to the solution containing the analyte or in a solution or buffer that dilutes the analyte. However, this one also
Prior to contacting with the analyte in the dissolved state, it may be contacted with a reactant bound to and / or dried on the solid phase. Suitable reactants that are bound to the solid phase are components of a bioaffinity binding system capable of binding such analytes. In the case of an immunological binding system, these reactants are antigens or antibodies. Solid-phase immunoassay assays
It can be either an antagonistic or a two-sided immunoassay (San Deutsch) assay, or even an indirect assay. In the latter case, the analyte is an antibody and the solid phase reactant is the corresponding antigen, and the amount of antibody bound to the solid phase is measured by a second labeled antibody. The assay system can be a single-stage or a multi-stage assay. Lactoferrin prevents binding of analyte components that do not belong to a particular bioaffinity binding system. In this way,
Lactoferrin avoids incorrect results in the detection and measurement of the analyte. The following examples are illustrative of the present invention and demonstrate that lactoferrin is suitable as a component of an incubation medium. These examples are intended to show that lactoferrin can be introduced and used in various amounts in various incubation media. Example 1 1. Isolation of lactoferrin Twenty milks were centrifuged at 3400 × g for 30 minutes and the milk fat in the supernatant was removed. A small amount of insoluble components was removed as a precipitate and discarded similarly. The pH of the milk from which fat has been removed is adjusted to pH 4.
Adjusted to 0. The resulting protein precipitate is reduced to 340
Removed by centrifugation at 0xg. After adjusting the pH to 5.0 with a sodium hydroxide solution, the supernatant having a conductivity of 12 mS / cm at 20 ° C. is diluted with water to 7 mS / cm, and then the swollen ion exchanger carboxymethylcellulose CM32 ( 200 ml (supplied by Whatmann) and the mixture was stirred at room temperature for 4 hours. The ion exchanger is 50 mmol / sodium acetate buffer (pH
5.0). The ion exchanger was then separated on a suction funnel, suspended in sodium acetate buffer and transferred to a chromatographic column. The column was then washed with 400 ml of the acetate buffer described above. The protein bound to the cation exchanger was eluted using a 1 mol / sodium chloride solution. The eluate was adjusted to pH 5.0 using 1N sodium hydroxide solution and dialyzed to 50 mmol / sodium acetate (pH 5.0). The protein mixture was chromatographed again on 200 ml of carboxymethylcellulose CM32. From 50 mmol / sodium acetate (pH 5) to 50 mmol / sodium acetate (pH 5)
And a 1 mol / sodium chloride linear gradient. The fourth peak of the elution diagram (the solution is 18-20
(having a conductivity of mS / cm) were collected as one fraction, concentrated by ultrafiltration and 0.5 g / P
Gels were run on Sepharose ™ AcA 34 equilibrated with BS. The main ingredient from this gel (the amount is 1.2g
Contained lactoferrin. 2. Comparison of lactoferrin-containing sample dilution buffer with lactoferrin-free sample dilution buffer Enzygnost (trade name) anti-HSV / ELISA from Behringwerke
The kit was used for solid-phase immunoassay. The assay was performed according to the method described in the manual inserted into the pack, and the outline is described below. The sample was diluted with 0.2 g / lactoferrin or the same sample dilution buffer (137 mmol / Na
Cl, 7.247 mmol / Na 2 HPO 4 · 2H 2 O and 2.720 mmol / KH 2 PO 4, and 2.7 mmol / KCl, 0.4 mmol / MgCl 2, 3 mmol / NaN 3, 10ml / fetal calf serum and 40 ml / Tween ( Diluted with 1:25 instead of the recommended 1:44, and then incubated with the antigen immobilized in the wells of the microassay plate to remove unbound antibody Are removed by washing, the enzyme is bound to the antibody / antigen complex formed using the conjugate solution, excess conjugate solution is removed by washing, and the color is developed via the enzyme using the chromogenic substrate solution. ,
The reaction was then stopped using a stop solution. The specimens thus prepared and colored depending on the content of the virus-specific antibody were evaluated by measuring the absorbance (E) at 405 nm photometrically. A portion of each of the sera of the nine subjects was heated at 56 ° C. for 30 minutes. Other parts were left untreated. In particular, in the case of a heated sample in a dilution buffer to which lactoferrin was not added, it was found that the absorbance measured in the control well was extremely high, but the absorbance in the antigen-coated well was also high. As a result, five cases were false negative results. Control wells have been treated ("coated") with a preparation of non-viral infected cells used for virus harvesting. When nine heated specimens were assayed using a lactoferrin-containing dilution buffer, no false negative results were observed. Unheated specimens were tested using dilution buffer without lactoferrin. The results helped check the results with the heated serum. Example 2 The effect of the addition of lactoferrin was tested in a one-step San Deutschland. In this type of HBsAg assay,
When 7.5 g / lactoferrin was added, all 14 unheated critical samples were definitely found to be negative, whereas without lactoferrin all were false positive measurements . Example 3 The effect of the addition of lactoferrin was tested in a three-step San Deutschland to detect influenza A antigen. Lactoferrin was used in the second and third steps of this solid-phase immunochemical method. In these two steps, antibody / lactoferrin initially containing (> 0.05 g /) and diluted for use /
Biotin conjugate, then streptavidin containing lactoferrin (0.05 g / min) and diluted for use
When the / POD conjugate was incubated, the background and influenza B foreign antigen were used as indices.
Non-specific reactions could be reduced by more than 80%. 450n
The ELISA results measured in m are shown here as representative examples: Non-specific binding without lactoferrin = 2.892 U Non-specific binding with lactoferrin = 0.231 U

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (56)参考文献 特開 昭62−29533(JP,A) 特開 昭62−34059(JP,A) 特開 昭62−159047(JP,A) 特開 昭56−42142(JP,A) J.Lab.Clin.Med.,88 (1),P.156〜166,(1976) Clin.Chim.Acta,151 (1),P.61〜69,(1985)   ────────────────────────────────────────────────── ─── Continuation of front page    (56) References JP-A-62-29533 (JP, A)                 JP-A-62-34059 (JP, A)                 JP-A-62-159047 (JP, A)                 JP-A-56-42142 (JP, A)                 J. Lab. Clin. Med. , 88               (1), p. 156-166, (1976)                 Clin. Chim. Acta, 151               (1), p. 61-69, (1985)

Claims (1)

(57)【特許請求の範囲】 1.検体中の随伴物質の固相への非特異的結合防止剤と
してラクトフエリンを含有する固相免疫測定アツセイ用
インキユベーシヨン媒質。 2.ラクトフエリンが0.05〜20g/の濃度範囲で存在す
る特許請求の範囲第1項記載のインキユベーシヨン媒
質。 3.a) 哺乳動物の乳汁からクリームを除去し、 b) クリームが除去された乳汁をpH3.5〜4.5に調整
し、 c) 上記(b)で生成したタンパク沈澱を除去し、そ
して d) 上記(c)で生成した上清からイオン交換体での
クロマトグラフイによりラクトフエリンをとり出して単
離する ことによって前記乳汁から採取され得るラクトフエリン
を含有する特許請求の範囲第1項記載のインキユベーシ
ヨン媒質。 4.緩衝塩、ラクトフエリン、および適切な場合にはタ
ンパク、および適切な場合には界面活性剤、および適切
な場合には中性塩を含有する特許請求の範囲第1項記載
のインキユベーシヨン媒質。 5.緩衝塩、ラクトフエリン、牛血清アルブミン、界面
活性剤および適切な場合には中性塩を含有する特許請求
の範囲第1項記載のインキユベーシヨン媒質。 6.緩衝塩、ラクトフエリン、ゼラチン加水分解生成
物、または加水分解され次いで化学処理されたかあるい
は化学処理されてから加水分解されたゼラチン、および
界面活性剤および適切な場合には中性塩を含有する特許
請求の範囲第1項記載のインキユベーシヨン媒質。
(57) [Claims] An incubation medium for solid-phase immunoassay assay containing lactoferrin as an agent for preventing non-specific binding of accompanying substances in a sample to a solid phase. 2. 2. The incubation medium according to claim 1, wherein lactoferrin is present in a concentration range of 0.05 to 20 g /. 3. a) removing the cream from the milk of the mammal; b) adjusting the pH of the cream-free milk to 3.5-4.5; c) removing the protein precipitate formed in (b) above; 2. The ink incubation according to claim 1, comprising lactoferrin which can be collected from said milk by extracting and isolating lactoferrin from the supernatant produced in c) by chromatography on an ion exchanger. medium. 4. 2. An ink medium as claimed in claim 1, comprising a buffer salt, lactoferrin and, if appropriate, protein, and, if appropriate, a surfactant, and, if appropriate, a neutral salt. 5. 2. The incubation medium according to claim 1, comprising a buffer salt, lactoferrin, bovine serum albumin, a surfactant and, if appropriate, a neutral salt. 6. Claims containing buffer salts, lactoferrin, gelatin hydrolysis products, or gelatin that has been hydrolyzed and then chemically treated or chemically treated and then hydrolyzed, and surfactants and, where appropriate, neutral salts 2. The ink medium according to claim 1, wherein
JP62284411A 1986-11-13 1987-11-12 Incubation medium containing lactoferrin for solid-phase immunoassay assays Expired - Fee Related JP2714572B2 (en)

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