JP2707273B2 - Thrombolytic agent - Google Patents

Thrombolytic agent

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JP2707273B2
JP2707273B2 JP63090252A JP9025288A JP2707273B2 JP 2707273 B2 JP2707273 B2 JP 2707273B2 JP 63090252 A JP63090252 A JP 63090252A JP 9025288 A JP9025288 A JP 9025288A JP 2707273 B2 JP2707273 B2 JP 2707273B2
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Description

【発明の詳細な説明】 [産業上の利用分野] 本発明は、例えば心筋梗塞、脳梗塞、動脈硬化等の治
療に有効である、フィブリンを選択的に溶解する生体内
で安定なスタフィロキナーゼを有効成分とする血栓溶解
剤に関するものである。
The present invention relates to an in vivo stable staphylokinase that selectively dissolves fibrin, which is effective for treating, for example, myocardial infarction, cerebral infarction, arteriosclerosis, and the like. The present invention relates to a thrombolytic agent containing, as an active ingredient.

[従来の技術] 従来、血栓溶解療法に用いられているウロキナーゼ
(UK)およびストレプトキナーゼ(以下、SK)は循環血
液中(液相)においてプラスミノーゲンを活性化するた
め、本来の目的である血栓中(固相)のフィブリン分解
以外に循環血液内のフィブリノーゲンをも分解するた
め、出血等の副作用が問題となっていた(tPAとPro-UK:
松尾理著、学際企画、1986)。
[Prior art] Urokinase (UK) and streptokinase (hereinafter, SK) conventionally used for thrombolytic therapy are plasminogen in circulating blood (liquid phase), and thus are the original purpose. In addition to fibrin degradation in the thrombus (solid phase), it also degrades fibrinogen in the circulating blood, causing side effects such as bleeding (tPA and Pro-UK:
Matsuo Osamu, Interdisciplinary Project, 1986).

また、これらの物質は、非特異性ゆえに通常はカテー
テル等を用いて血栓部位に直接投与されており、かなり
の医療設備を必要としていた。
In addition, these substances are usually administered directly to a thrombus site using a catheter or the like because of their non-specificity, requiring considerable medical equipment.

そこで、従来の血液中のフィブリノーゲンをも分解す
る血栓溶解剤とは異なり、全く新しい発想に基づいた、
フィブリンを選択的に分解する血栓溶解剤の開発が望ま
れていた。
Therefore, unlike conventional thrombolytic agents that also degrade fibrinogen in blood, based on a completely new idea,
Development of a thrombolytic agent that selectively degrades fibrin has been desired.

また、最近では、組織性プラスミノゲンアクチベータ
ー(以下、tPA)、プロウロキナーゼ(以下、Pro-UK)
が発見され、フィブリンに特異性を持つ血栓溶解剤とし
て注目されていた。
Recently, tissue plasminogen activator (tPA), pro-urokinase (Pro-UK)
Was discovered and attracted attention as a thrombolytic agent having fibrin specificity.

[発明が解決しようとする課題] しかし、tPA、Pro-UK共に、生体内での半減期が短い
こと、プラスミノーゲン・アクチベーター・インヒビタ
ー(以下、PAI)により速やかに阻害されることが問題
点となり(Collen,D.et al.:Trombos.Haemostas.,52;24
-26,'84)、当初に期待されていたほどの成果は得られ
ていない(Sherry,S.:New England J.Med.;313;1014-1
7,'85)。
[Problems to be Solved by the Invention] However, both tPA and Pro-UK have a short half-life in vivo and are rapidly inhibited by plasminogen activator inhibitor (PAI). (Collen, D. et al .: Trombos. Haemostas., 52; 24
-26, '84), with less success than initially expected (Sherry, S .: New England J. Med .; 313; 1014-1).
7, '85).

なお、本願血栓溶解剤の有効成分であるスタフィロキ
ナーゼのフィブリン特異性および血中安定性について
は、全く調べられておらず、単にストレプトキナーゼと
同様な作用を持つ物質と考えられて来たため、血栓溶解
療法の薬剤とはみなされず、利用もされていなかった。
The fibrin specificity and blood stability of staphylokinase, which is the active ingredient of the thrombolytic agent of the present application, have not been investigated at all, and have been considered to be substances having the same action as streptokinase, It was not considered or used for thrombolytic therapy.

そこで本発明は、スタフィロキナーゼの作用機構を明
らかにした上で、前記スタフィロキナーゼを主成分とす
る出血等の副作用が少なく、血中安定性が優れ、PAIに
よる阻害も受け難く、生体内で長期にわたって活性が維
持される血栓溶解剤を得ることを目的とする。
Therefore, the present invention, after elucidating the mechanism of action of staphylokinase, has few side effects such as bleeding containing the staphylokinase as a main component, has excellent blood stability, is hardly susceptible to inhibition by PAI, And to obtain a thrombolytic agent whose activity is maintained over a long period of time.

[課題を解決するための手段] 本発明に係る血栓溶解剤では、スタフィロキナーゼ
と、プラスミノーゲン又はプラスミンと、α2−プラス
ミン・インヒビターとを有効成分とするものである。
The thrombolytic agent according to the present invention [Means for Solving the Problems], and staphylokinase, plasminogen or plasmin, alpha 2 - in which an active ingredient and plasmin inhibitor.

さらに付言するならば、本発明でのスタフィロキナー
ゼ(以下、SAK)はプラスミノーゲンと複合体を形成
し、この複合体がプラスミノーゲン・アクチベーターと
して働く(Kowalska-Loty,B.& Zakrzewski,K.:Acta Bi
ocim.Pol.,22;327-39,'75)。
Furthermore, staphylokinase (SAK) of the present invention forms a complex with plasminogen, and this complex acts as a plasminogen activator (Kowalska-Loty, B. & Zakrzewski). , K.: Acta Bi
ocim. Pol., 22; 327-39, '75).

この点においてSAKの作用機構はストレプトキナーゼ
(以下、SK)と似ているが、いくつかの点で性質が異な
っていることが本願発明者らの研究から示された。すな
わち、 SAKはフィブリン存在下において、酵素作用が強く
増強される。すなわちSAKはフィブリン特異性が高いの
である。しかし、SKにおいては、それらの作用はない。
In this regard, the study of the present inventors has shown that the action mechanism of SAK is similar to that of streptokinase (hereinafter, SK), but the properties are different in some respects. In other words, the enzyme action of SAK is strongly enhanced in the presence of fibrin. That is, SAK has high fibrin specificity. However, in SK, they have no effect.

SAK−プラスミノーゲン複合体は、α2−プラスミン
・インヒビター(以下、α2-PI)によって阻害を受ける
が、フィブリン上ではSAK反応は、α2-PIによる阻害を
受け難く、従って、フィブリン分解(血栓溶解)に選択
的に反応が進むことが予想される。これに対し、SK−プ
ラスミノーゲン複合体の反応はα2-PIによる阻害されな
い。その為、循環血液内のフィブリノーゲンをも分解す
るため、出血等の副作用が生じていた。
SAK- plasminogen complex, alpha 2 - plasmin inhibitor (hereinafter, alpha 2 -PI) is subjected to inhibition by, SAK reaction on fibrin, less susceptible to inhibition by alpha 2 -PI, therefore, fibrin degradation It is expected that the reaction will selectively proceed to (thrombolysis). In contrast, the reaction of the SK-plasminogen complex is not inhibited by α 2 -PI. For this reason, fibrinogen in the circulating blood is also decomposed, and side effects such as bleeding have occurred.

SAKはプラスミンにより分解され難く、血漿中での
安定性も良い。
SAK is not easily degraded by plasmin and has good stability in plasma.

SAKの分子量は約15,000(Nucleic Acids Reserch,1
1,p.7679〜93,'83)でSKの約1/3であるため、血栓中へ
の浸透性は良いと考えられる。
The molecular weight of SAK is about 15,000 (Nucleic Acids Research, 1
1, p.7679-93, '83), which is about 1/3 of SK, it is considered to have good penetration into thrombus.

これらの性質が相互に作用した結果として、フィブリ
ン特異性を発現しているものと考えられる。
It is considered that as a result of these properties interacting, fibrin specificity is expressed.

[発明の効果] 本発明は以下の実施例で詳細に説明するように、SAK
はSKに比べフィブリン特異性が高く、血流中で生じたSA
K−プラスミノーゲン(あるいはプラスミン)複合体は
α2-PIにより速やかに阻害され、プラスミノーゲンは活
性化されないが、フィブリンに結合したプラスミノーゲ
ン(あるいはプラスミン)とSAKの複合体は阻害をうけ
ず、プラスミノーゲンが活性化されプラスミンとなり、
血栓が溶解すると言う作用機構のため、出血等の副作用
の少ない血栓溶解剤として利用できることが明らかにな
った。
[Effects of the Invention] As will be described in detail in the following examples, the present invention
Is higher in fibrin specificity than SK, and SA generated in the bloodstream
K- plasminogen (or plasmin) complex is rapidly inhibited by alpha 2 -PI, but plasminogen is not activated, the plasminogen (or plasmin) complexes inhibition of SAK bound to fibrin Plasminogen is activated and becomes plasmin,
Because of the action mechanism that thrombus dissolves, it has been clarified that it can be used as a thrombolytic agent with less side effects such as bleeding.

また、SAKは血中安定性がSK等のプラスミノーゲン・
アクチベーターよりも優れ、上記α2-PIでの作用機構か
ら類推して、その他のPAIによる血栓部分での阻害も受
けにくく、生体内で長期にわたって活性が維持されると
考えられる。
In addition, SAK has a blood stability of plasminogen such as SK.
It is superior to the activator, and by analogy with the mechanism of action at α 2 -PI, it is unlikely to be inhibited by the other PAI in the thrombus portion, and its activity is maintained in vivo for a long period of time.

従って、血中の線溶活性を常に高めることが可能とな
り、慢性的な血栓性疾患にも有効であると考えられる。
Therefore, it is possible to always increase the fibrinolytic activity in blood, and it is considered that it is also effective for chronic thrombotic diseases.

さらにSAKは、従来用いられてきた他の血栓溶解剤に
比べ分子量が小さく、血栓内への浸透性の点からも有利
である。
Furthermore, SAK has a smaller molecular weight than other conventionally used thrombolytic agents, and is advantageous in terms of permeability into thrombus.

以上のような理由から、SAKを血栓溶解療法に用いる
ことにより、従来の血栓溶解剤には見られない効果があ
る。
For the above reasons, using SAK for thrombolytic therapy has an effect not seen with conventional thrombolytic agents.

[実施例] 1. SAKの反応機構の解析 第1図は、本願発明者らが解析したSAKとSKの作用機
構の相違を模式的に示した説明図である。なお、図にお
いて、SAKはスタフィロキナーゼ、SKはストレプトキナ
ーゼ、α2-PIはα2−プラスミン・インヒビター、Fnは
フィブリン、Plgはプラスミノーゲン、Plmはプラスミン
を示す。
[Examples] 1. Analysis of reaction mechanism of SAK FIG. 1 is an explanatory diagram schematically showing the difference in the action mechanism of SAK and SK analyzed by the present inventors. In the figure, SAK indicates staphylokinase, SK indicates streptokinase, α 2 -PI indicates α 2 -plasmin inhibitor, Fn indicates fibrin, Plg indicates plasminogen, and Plm indicates plasmin.

すなわち、血流中で生じたSAK−プラスミノーゲン
(あるいはプラスミン)複合体はα2-PIにより速やかに
阻害され、プラスミノーゲンは活性化されないが、フィ
ブリンに結合したプラスミノーゲン(あるいはプラスミ
ン)とSAKの複合体は阻害をうけず、プラスミノーゲン
が活性化されプラスミンとなり、血栓が溶解する。一
方、SKの場合は血流中に生じたSK−プラスミノーゲン
(あるいはプラスミン)複合体はα2-PIによる阻害を受
けず、結果として、多量のプラスミンが血流中で生じ、
そのためフィブリノーゲン(図示せず)が分解される。
この時、循環系の一部に血栓が存在していると、プラス
ミンの一部が血栓(フィブリン)を溶解する。しかし、
血栓溶解度よりもフィブイリノーゲン分解度の方がはる
かに高く、そのため出血傾向が高頻度にみられる。
That is, the SAK-plasminogen (or plasmin) complex formed in the bloodstream is rapidly inhibited by α 2 -PI and plasminogen is not activated, but plasminogen (or plasmin) bound to fibrin The complex of SAK and SAK is not inhibited, plasminogen is activated to plasmin, and the thrombus dissolves. On the other hand, in the case of SK, the SK-plasminogen (or plasmin) complex formed in the bloodstream is not inhibited by α 2 -PI, and as a result, a large amount of plasmin is generated in the bloodstream,
Therefore, fibrinogen (not shown) is decomposed.
At this time, if there is a thrombus in a part of the circulatory system, a part of plasmin dissolves the thrombus (fibrin). But,
Fibrinogen degradation is much higher than thrombus solubility, and bleeding tendencies are more frequent.

以下に、このSAKの作用機構の解析を順に説明する。 Hereinafter, the analysis of the mechanism of action of SAK will be described in order.

1−1. 閉鎖循環モデルによるフィブリン特異性の検討 血栓溶解剤(プラスミノーゲン・アクチベーター)の
フィブリン特異性を調べる方法として、最も生体に近い
モデルとして、松尾らにより開発された閉鎖循環システ
ム(Matsuo,O.et al.:Thrombos.Res.,24;347-58,'81)
がある。
1-1. Examination of fibrin specificity by closed circulation model As a method of examining the fibrin specificity of a thrombolytic agent (plasminogen activator), a closed circulation system developed by Matsuo et al. Matsuo, O.et al.:Thrombos.Res.,24;347-58,'81)
There is.

そこで、閉鎖循環モデル(生体に近いモデル)により
SAKのフィブリン特異性について検討した。
Therefore, the closed circulation model (model close to the living body)
The fibrin specificity of SAK was examined.

[方法] (1) フィブリノーゲンの125I−ラベル 脱プラミノーゲン処理を施したヒト−フィブリノーゲ
ン(Plasminogen Free,シグマ社製)をクロラミンT法
により125Iラベルし、ラベル化されたフィブリノーゲ
ンをゲル濾過法により精製した。その結果、約3.5×106
cpm/mlの125I−フィブリノーゲンが1.5ml得られた。
[Method] (1) 125 I-labeling of fibrinogen Human-fibrinogen (Plasminogen Free, manufactured by Sigma) subjected to depraminogen treatment is labeled with 125 I by chloramine T method, and the labeled fibrinogen is purified by gel filtration. did. As a result, about 3.5 × 10 6
1.5 ml of 125 I-fibrinogen at cpm / ml were obtained.

(2) 125I−ラベル化血栓の作製 ヒト−血漿1mlに125I−フィブリノーゲン溶液を20μ
l加え、25mM塩化カリウム(CaCl2)溶液100μlを混合
した後、フィブリノーゲンをフィブリンに変換する酵素
であるトロンビン溶液(100U/ml;シグマ社製)50μlを
加え、125I−ラベル化血栓を作製した。
(2) Preparation of 125 I-labeled thrombus A solution of 20 μl of 125 I-fibrinogen solution was added to 1 ml of human plasma.
After adding 100 μl of a 25 mM potassium chloride (CaCl 2 ) solution, 50 μl of a thrombin solution (100 U / ml; Sigma), which is an enzyme for converting fibrinogen into fibrin, was added to prepare a 125 I-labeled thrombus. .

(3) 閉鎖循環モデルによる血栓溶解実験 第2A図は閉鎖循環実験装置の構成を示す説明図、第2B
図は第2A図の要部の構成を示す説明図である。なお、図
中、同一符号は同一であることを示す。
(3) Thrombus dissolution experiment using closed circulation model Fig. 2A is an explanatory diagram showing the configuration of the closed circulation experiment device, Fig. 2B
The figure is an explanatory view showing the configuration of the main part of FIG. 2A. In the drawings, the same reference numerals indicate the same.

図において、ヒト−血漿1(全量21ml)を1.95ml/min
の流速でシリコンチューブ2によって各々接続された下
部チャンバー3、ペリスタポンプ4、上部チャンバー5
を循環させ、上部チャンバー5にはラベル化血栓6を置
いた。被検試料7(SAKあるいはSK)は1mlを下部チャン
バー3に滴下し、残りの5mlはペリスタポンプ8(流速
0.04ml/min)で連続的に添加した。反応系は37℃に保温
し、1時間ごとに下部チャンバー3より循環血漿を採取
し、放射活性および血漿成分の測定に供した。
In the figure, human-plasma 1 (total volume 21 ml) was added at 1.95 ml / min.
Lower chamber 3, peristaltic pump 4, upper chamber 5 connected by silicon tube 2 at a flow rate of
The labeled thrombus 6 was placed in the upper chamber 5. 1 ml of the test sample 7 (SAK or SK) is dropped into the lower chamber 3, and the remaining 5 ml is a peristaltic pump 8 (flow rate).
0.04 ml / min). The reaction system was kept at 37 ° C., and circulating plasma was collected from the lower chamber 3 every hour, and used for measurement of radioactivity and plasma components.

(4) フィブリン分解度の測定 血漿中の放射活性をガンマカウンターにて測定し、そ
の値から全循環血漿中の放射活性を計算し、用いたラベ
ル化血栓の放射活性に対する百分率としてフィブリン分
解度(%)を表した。
(4) Measurement of the degree of fibrin degradation The radioactivity in plasma was measured with a gamma counter, the radioactivity in the whole circulating plasma was calculated from the value, and the degree of fibrin degradation was calculated as a percentage of the radioactivity of the labeled thrombus used. %).

第3図は、SAKとSKの各濃度におけるフィブリンの分
解度の経時変化を示す線図であり、縦軸はフィブリン分
解度、横軸は時間を示し、●は0.625μg/ml、◆は1.25
μg/ml、■は2.5μg/ml、▲は5.0μg/ml、▼は10μg/m
l、★は20μg/ml、×は40μg/ml、*は50μg/mlのSAKま
たはSKの濃度を示す。
FIG. 3 is a diagram showing the time-dependent change in the degree of fibrin degradation at each concentration of SAK and SK, in which the ordinate represents the degree of fibrin degradation, the abscissa represents time, ● represents 0.625 μg / ml, and Δ represents 1.25.
μg / ml, △: 2.5 μg / ml, ▲: 5.0 μg / ml, ▼: 10 μg / m
l, ★, 20 μg / ml, ×, 40 μg / ml, *, 50 μg / ml SAK or SK concentration.

第4図はフィブリン分解度の濃度依存性を示す線図で
あり、50%のフィブリン分解度が観察される時間(縦
軸)を濃度(横軸)に対してプロットした。図におい
て、●はSAK、○はSKを示す。
FIG. 4 is a diagram showing the concentration dependence of the fibrin degradation degree, in which the time (vertical axis) at which fibrin degradation of 50% is observed is plotted against the concentration (horizontal axis). In the figure, ● indicates SAK and ○ indicates SK.

(5) 血漿フィブリノーゲンの定量 被検血漿50μlに50mM塩化カルシウム(CaCl2)を含
むバルビタール緩衝液(pH7.75)200μlを加えた後、
そのうちの50μlを96穴タイタープレートに分取した。
トロンビン溶液(100U/ml;シグマ社製)を50μl加え、
37℃で10分間反応させた後、波長405nmにおける吸光度
を測定した。なお、フィブリノーゲン濃度(%)はトロ
ンビンの代わりに水を加えたもの(凝固させない)の吸
光度を0%、正常血漿を凝固させたものを100%とし、
比例計算より求めた。
(5) Quantification of plasma fibrinogen After adding 200 μl of barbital buffer (pH 7.75) containing 50 mM calcium chloride (CaCl 2 ) to 50 μl of test plasma,
50 μl of the mixture was dispensed into a 96-well titer plate.
50 μl of a thrombin solution (100 U / ml; Sigma) was added,
After reacting at 37 ° C. for 10 minutes, the absorbance at a wavelength of 405 nm was measured. In addition, the fibrinogen concentration (%) is the absorbance of water (not coagulated) added with water instead of thrombin as 0%, and the coagulated normal plasma is 100%,
It was determined by proportional calculation.

第5図はSAKとSKの各濃度におけるフィブリノーゲン
量の経時変化を示す線図であり、縦軸は血漿中のフィブ
リノーゲン量(%)、横軸は時間を示し、●は0.625μg
/ml、◆は1.25μg/ml、■は2.5μg/ml、▲は5.0μg/m
l、▼は10μg/ml、★は20μg/mlのSAKまたはSKの濃度を
示す。
FIG. 5 is a diagram showing the time-dependent change in the amount of fibrinogen at each concentration of SAK and SK, the ordinate indicates the amount of fibrinogen in plasma (%), the abscissa indicates time, and ● indicates 0.625 μg.
/ ml, △ is 1.25μg / ml, △ is 2.5μg / ml, ▲ is 5.0μg / m
l, ▼, 10 μg / ml, ★, 20 μg / ml SAK or SK concentration.

第6図はSAK2.5μg/mlとSK10μg/mlのフィブリン特異
性の比較を示す線図であり、縦軸はフィブリン分解度
(%)(左軸)、(○)とフィブリノーゲン量(%)
(右軸)(△)、横軸は時間を示す。
FIG. 6 is a diagram showing a comparison of fibrin specificity between 2.5 μg / ml SAK and 10 μg / ml SK, in which the vertical axis represents the degree of fibrin degradation (%) (left axis), (○) and the amount of fibrinogen (%).
(Right axis) (△), horizontal axis shows time.

第7図は血栓溶解特性の濃度依存性を示す線図であ
り、縦軸は6時間後における血栓溶解特性、横軸はSAK
(●)及びSK(○)の濃度を示す。
FIG. 7 is a graph showing the concentration dependence of the thrombolytic properties, the vertical axis represents the thrombolytic properties after 6 hours, and the horizontal axis represents SAK.
(●) and SK (○) are shown.

なお、血栓溶解特性は次式で表わされる。 In addition, the thrombolytic property is represented by the following equation.

血栓溶解特性 =フィブリン溶解量/フィブリノーゲン量 (6) 血漿プラスミノーゲンの定量 50mMトリス−塩酸緩衝液(pH7.4)にて40倍希釈した
被検血漿を96穴タイタープレートに36μl取り、ウロキ
ナーゼ(5000IU/ml)を14μl加え、37℃で15分間イン
キュベートしプラスミンを生成させた。さらに合成発色
基質CBS33.08(7.5mM;スタゴ社製)を10μl加え、37℃
で15分間インキュベートした後、2%クエン酸溶液を20
0μl加え反応を停止し、波長405nmにおける吸光度を測
定した。
Thrombolytic property = Fibrin lysis amount / Fibrinogen amount (6) Determination of plasma plasminogen 36 μl of test plasma diluted 40-fold with 50 mM Tris-HCl buffer (pH 7.4) was placed in a 96-well titer plate, and urokinase ( (5000 IU / ml) was added and incubated at 37 ° C for 15 minutes to generate plasmin. Further, 10 μl of synthetic chromogenic substrate CBS33.08 (7.5 mM; manufactured by Stago) was added, and
And then incubate for 15 minutes with 2% citric acid solution for 20 minutes.
The reaction was stopped by adding 0 μl, and the absorbance at a wavelength of 405 nm was measured.

なお、プラスミノーゲン濃度(%)は正常血漿(100
%)および4倍希釈血漿(25%)を同様の方法にて測定
し、比例計算より求めた。
In addition, plasminogen concentration (%) is normal plasma (100
%) And 4-fold diluted plasma (25%) were measured in the same manner, and determined by proportional calculation.

第8図はSAKとSKの各濃度におけるプラスミノーゲン
量の経時変化を示す線図であり、縦軸は血漿中のプラス
ミノーゲンパーセント量、横軸は時間を示す。
FIG. 8 is a diagram showing the time-dependent changes in the amount of plasminogen at each concentration of SAK and SK. The ordinate shows the percentage of plasminogen in plasma, and the abscissa shows time.

(7) 血漿α2−プラスミンインヒビター(α2-PI)
の定量 120mMモノメチルアミン塩酸を含む50mMトリス−塩酸
緩衝液(pH7.4)にて50倍希釈した被検血漿を96穴タイ
タープレートに28μl取り、プラスミン(16.7μg/ml)
を22μl加え37℃で15分間インキュベートし、血漿α2-
PIとの複合体を形成させた。さらに合成発色基質CBS33.
08(7.5mM;スタゴ社製)を10μl加え、37℃で15分間イ
ンキュベートした後、2%クエン酸溶液を180μl加え
反応を停止し、波長405nmにおける吸光度を測定した。
(7) plasma α 2 - plasmin inhibitor (α 2 -PI)
28 μl of test plasma diluted 50-fold with 50 mM Tris-HCl buffer (pH 7.4) containing 120 mM monomethylamine hydrochloride was placed in a 96-well titer plate, and plasmin (16.7 μg / ml)
Incubating 22μl added 37 ° C. for 15 minutes, plasma alpha 2 -
A complex with PI was formed. Furthermore, synthetic chromogenic substrate CBS33.
After adding 10 μl of 08 (7.5 mM; manufactured by Stago) and incubating at 37 ° C. for 15 minutes, 180 μl of 2% citric acid solution was added to stop the reaction, and the absorbance at a wavelength of 405 nm was measured.

α2-PI量(%)はプラスミノーゲンの場合と同様に25
%と100%の値を測定し、比例計算により求めた。
The amount (%) of α 2 -PI is 25 as in the case of plasminogen.
The values of% and 100% were measured and determined by proportional calculation.

第9図はSAKとSKの各濃度における血漿α2-PI量の経
時変化を示す線図であり、縦軸は血漿中のα2-PI量
(%)、横軸は時間を示す。
FIG. 9 is a diagram showing the time course of the plasma α 2 -PI amount at each concentration of SAK and SK, the vertical axis shows the α 2 -PI amount (%) in plasma, and the horizontal axis shows time.

[結果・考察] 第3図に示すようにSAKは0.625μg/mlではほとんどフ
ィブリンを分解しないが、1.25μg/ml以上の濃度では濃
度に依存した分解が見られ、10μg/mlでほぼ最大のフィ
ブリン分解活性を示した。一方、SKは1.25μg/ml以上の
濃度でフィブリンの分解が見られ、20μg/mlで最大のフ
ィブリン分解活性があった。このように両者ともに濃度
依存性のフィブリン分解が見られたが、比活性はSAKで
強く、例えばSAK5μg/mlとSK20μg/mlとで同等であっ
た。
[Results and Discussion] As shown in FIG. 3, SAK hardly decomposed fibrin at 0.625 μg / ml, but showed concentration-dependent degradation at a concentration of 1.25 μg / ml or more, and showed almost the maximum at 10 μg / ml. It exhibited fibrinolytic activity. On the other hand, SK showed fibrin degradation at a concentration of 1.25 μg / ml or more, and had the highest fibrin degradation activity at 20 μg / ml. As described above, in both cases, fibrin degradation was observed in a concentration-dependent manner, but the specific activity was strong in SAK, for example, SAK5 μg / ml and SK20 μg / ml were equivalent.

第4図ではSAKはSKに比べ少ない量短い時間でフィブ
リンを分解することを示し、SAKの有効性が確認され
た。
FIG. 4 shows that SAK degrades fibrin in a shorter amount and in a shorter time than SK, confirming the effectiveness of SAK.

また、両者の反応曲線には明らかな相違が認められ
た。すなわち、SKでは経時変化が直線的であるのに対
し、SAKでは反応初期にはほとんどフィブリン分解が見
られないが一度分解が起きるとその後は急激に反応が進
むことがわかった。
In addition, a clear difference was observed between the two reaction curves. In other words, it was found that, with SK, the change with time was linear, whereas with SAK, fibrin degradation was hardly observed at the beginning of the reaction, but once the degradation occurred, the reaction proceeded rapidly thereafter.

次に循環血漿中のフィブリノーゲンの動きについて述
べる。第5図に示すようにSKではフィブリノーゲンの分
解が顕著であるのに対し、SAKでは軽度であり、特に2.5
μg/mlの場合を見ると、6時間後にフィブリンは100%
分解しているがフィブリノーゲンは85%残存しており、
SAKに強いフィブリン特異性が示された。
Next, the movement of fibrinogen in circulating plasma will be described. As shown in FIG. 5, fibrinogen degradation was remarkable in SK, while it was mild in SAK, especially 2.5%.
In the case of μg / ml, fibrin is 100% after 6 hours.
Degraded but fibrinogen remains 85%,
Strong fibrin specificity was shown for SAK.

第6図では、明らかにSAKはSKに比べ、フィブリン分
解が強く、しかもフィブリノーゲンの分解は弱いことが
示された。
FIG. 6 clearly shows that SAK has stronger fibrin degradation and weaker fibrinogen degradation than SK.

また、第7図ではSKでは全ての濃度において1以下の
低い値であったのに対し、SAKでは1.25〜5μg/mlの範
囲で高い血栓溶解特性が認められ、特に2.5μg/mlでは
6.6と言う高い値であることが示された。
Also, in FIG. 7, SK showed a low value of 1 or less at all concentrations, whereas SAK showed a high thrombolytic property in the range of 1.25 to 5 μg / ml, and in particular, 2.5 μg / ml
It was shown to be a high value of 6.6.

t−PAやpro-UKなどの血栓溶解剤でも血栓溶解特性が
3を越えることは珍しく、SAKは特にフィブリン特異性
に優れた物質であることが解った。
Even with thrombolytic agents such as t-PA and pro-UK, thrombolytic properties rarely exceed 3, indicating that SAK is a substance with particularly excellent fibrin specificity.

第8、9図では、プラスミノーゲンおよびα2-PIの減
少はSKに比べSAKで弱く、循環血漿中でのプラスミノー
ゲンの活性化が軽度であることが示された。
FIGS. 8 and 9 show that the decrease in plasminogen and α 2 -PI is weaker in SAK than in SK, and the activation of plasminogen in circulating plasma is mild.

以上のように、閉鎖循環モデル(生体に近いモデル)
では、SAKはSKに比べ低濃度で血漿魂(人工血栓)を溶
解し、かつ循環血漿中のフィブリノーゲンの分解も少な
く血栓溶解特性が高いことが示された。また、血漿中の
プラスミノーゲンおよびα2-PIの減少もSAKで弱く、血
漿におけるプラスミノーゲン活性化反応が軽度であるこ
とが裏付けられた。
As described above, closed circulation model (model close to living body)
Showed that SAK dissolves plasma soul (artificial thrombus) at a lower concentration than SK, and also showed less degradation of fibrinogen in circulating plasma and higher thrombolytic properties. The decrease in plasma plasminogen and α 2 -PI was also weak with SAK, confirming that the plasminogen activation reaction in plasma was mild.

1−2. ヒト血漿に対するトロンビン添加によるフィブ
リン特異性の検討 ヒト血漿にトロンビンを加え、フィブリノーゲンをフ
ィブリンに変換し、プラスミノーゲン活性化反応を解析
した。
1-2. Investigation of fibrin specificity by adding thrombin to human plasma Thrombin was added to human plasma to convert fibrinogen into fibrin, and the plasminogen activation reaction was analyzed.

[方法] 96穴タイタープレートに0.1Mトリス−塩酸緩衝液(pH
7.5)150μlを取り、ヒト血漿(Ci-Trol、ミドリ十字
社製)20μlおよびプラスミンの基質である合成発色基
質S−2251(5mg/ml;カビ・ヴィトラム社製)10μlを
加えた後、ヒト−トロンビン溶液(1U/ml;シグマ社製)
あるいは対照として水10μlを加え、所定の濃度のSAK
あるいはSK溶液10μlにより反応を開始した。反応は37
℃で行い、波長405nmにおける吸光度変化を測定した。
[Method] 0.1M Tris-HCl buffer (pH
7.5) Take 150 µl, add 20 µl of human plasma (Ci-Trol, manufactured by Midori Cross) and 10 µl of synthetic chromogenic substrate S-2251 (5 mg / ml; mold Vitram), which is a substrate of plasmin, and add human- Thrombin solution (1U / ml; Sigma)
Alternatively, add 10 μl of water as a control,
Alternatively, the reaction was started with 10 μl of the SK solution. Reaction is 37
C., and the change in absorbance at a wavelength of 405 nm was measured.

第10図はSAK(10,20,40μg/ml)及びSK(2.5,5,10μg
/ml)のトロンビン存在、非存在下におけるプラスミノ
ーゲン活性化反応を示す線図であり、図において縦軸は
波長405nmにおける吸光度変化、横軸は時間(min)、SA
K図において、○,●はSAK濃度10μg/ml、△,▲は20μ
g/ml、□,■は40μg/ml、SK図において、○,●はSK濃
度2.5μg/ml、△,▲は5μg/ml、□,■は10μg/ml、
○,△,□はトロンビン非存在下、●,▲,■はトロン
ビン存在下を示す。
FIG. 10 shows SAK (10, 20, 40 μg / ml) and SK (2.5, 5, 10 μg / ml).
/ ml) is a diagram showing the plasminogen activation reaction in the presence and absence of thrombin, wherein the vertical axis represents the change in absorbance at a wavelength of 405 nm, the horizontal axis represents time (min), SA
In the K diagram, ○ and ● indicate SAK concentration of 10 μg / ml, △ and ▲ indicate 20 μg
g / ml, □ and △ are 40 μg / ml, in the SK diagram, ○ and ● are SK concentrations of 2.5 μg / ml, Δ and ▲ are 5 μg / ml, □ and Δ are 10 μg / ml,
△, △, □ indicate the absence of thrombin, and ●, ▲, ■ indicate the presence of thrombin.

第11図は反応40分後におけるSAK及びSK各濃度のトロ
ンビン存在、非存在下におけるプラスミノーゲン活性化
反応を示す線図であり、図において縦軸は反応40分後の
波長405nmにおける吸光度変化、横軸はSAK及びSK濃度
(μg/ml)、○,●はSAK、□,■はSK、○,□はトロ
ンビン非存在下、●,■はトロンビン存在下を示す。
FIG. 11 is a diagram showing the plasminogen activation reaction in the presence and absence of thrombin at each concentration of SAK and SK after 40 minutes of the reaction, where the vertical axis indicates the change in absorbance at a wavelength of 405 nm after 40 minutes of the reaction. , The horizontal axis represents SAK and SK concentrations (μg / ml), ○ and ● represent SAK, □ and Δ represent SK, ○ and □ represent the absence of thrombin, and ● and Δ represent the presence of thrombin.

[結果・考察] 第10、11図に示すように、トロンビンの添加によりSA
Kによるプラスミノーゲン活性化反応は著しく増強され
た。一方、SKの反応もトロンビンにより増強されるがSA
Kに比べ弱く、例えば、SAK40μg/mlとSK10μg/mlの場合
を比較した場合、トロンビン存在下での活性はほぼ等し
いが、非存在下でのSK活性はSAKの10倍程度であった。
[Results and discussion] As shown in Figs.
The plasminogen activation reaction by K was significantly enhanced. On the other hand, the SK reaction is also enhanced by thrombin, but SA
It is weaker than K. For example, when comparing SAK40 μg / ml and SK10 μg / ml, the activity in the presence of thrombin is almost the same, but the SK activity in the absence is about 10 times that of SAK.

以上のように、SAK活性はSKに比べトロンビンにより
(つまりフィブリン存在下)著しく増強され、高いフィ
ブリン特異性が示された。
As described above, SAK activity was significantly enhanced by thrombin (that is, in the presence of fibrin) as compared with SK, indicating high fibrin specificity.

1−3. α2-PI存在下におけるSAK反応のフィブリンに
よる増強 α2-PIおよびフィブリノーゲンの存在下にSAKおよびS
Kの作用を測定し、トロンビンによるフィブリン形成の
影響を調べた。
1-3. Alpha 2 SAK in the presence of fibrin by enhancing alpha 2 -PI and fibrinogen SAK reaction in -PI presence and S
The effect of K was measured to determine the effect of fibrin formation by thrombin.

[方法] 小試験管にSAKあるいはSKの溶液10μlを取り、ヒト−
トロンビン溶液(20units/ml;シグマ社製)10μlを加
えた後、50mMトリス−塩酸緩衝液(pH7.4,0.01%ツィー
ン80添加)140μl、ヒト−フィブリノーゲン溶液(3.0
mg/ml;Plasminogen Free,シグマ社製)10μl、ヒト−
プラスミノーゲン溶液(0.15mg/ml;Glutamyl-type,カビ
・ヴィトラム社製)10μl、ヒト−α2-PI溶液(0.06mg
/ml;プトローゲン社製)および合成発色基質S−2251
(10mM;カビ・ヴイトラム社製)10μlの混液180μlを
加え、反応を開始した。37℃で30分間インキュベートし
た後、8%クエン酸溶液50μlを加え、反応を停止し、
そのうちの200μlを96穴タイタープレートに取り、波
長405nmにおける吸光度変化をタイタープレート用分光
光度計にて測定した。
[Method] Take 10 μl of SAK or SK solution in a small test tube and
After adding 10 μl of a thrombin solution (20 units / ml; manufactured by Sigma), 140 μl of 50 mM Tris-HCl buffer (pH 7.4, 0.01% Tween 80 added), human-fibrinogen solution (3.0
mg / ml; Plasminogen Free, Sigma) 10 μl, human
10 μl of plasminogen solution (0.15 mg / ml; Glutamyl-type, manufactured by Mold Vitram) and human-α 2 -PI solution (0.06 mg
/ ml; manufactured by Plotogen) and synthetic chromogenic substrate S-2251
180 μl of a mixed solution (10 μm; manufactured by Mold Vitram) was added, and the reaction was started. After incubation at 37 ° C. for 30 minutes, the reaction was stopped by adding 50 μl of 8% citric acid solution,
200 μl of the mixture was placed in a 96-well titer plate, and the change in absorbance at a wavelength of 405 nm was measured with a titer plate spectrophotometer.

なお、トロンビン添加により反応液がゲル化するが、
クエン酸溶液を加え振盪することにより溶解させた。
The reaction solution gels by adding thrombin,
The citric acid solution was added and dissolved by shaking.

第12図はα2-PI非存在下でのSAK及びSK各濃度のトロ
ンビン存在、非存在下におけるプラスミノーゲン活性化
反応を示す線図であり、第13図はα2-PI存在下でのSAK
及びSK各濃度のトロンビン存在、非存在下におけるプラ
スミノーゲン活性化反応を示す線図である。図におい
て、縦軸は反応30分後の波長405nmにおける吸光度変
化、横軸はSAKとSK各濃度(μg/ml)、○,□はトロン
ビン非存在下、●,■はトロンビン存在下を示す。
Figure 12 is alpha 2 -PI thrombin presence of SAK and SK each concentration of the absence is a diagram showing the plasminogen activation reaction in the absence, Fig. 13 in the presence of alpha 2 -PI SAK
FIG. 3 is a diagram showing a plasminogen activation reaction in the presence and absence of thrombin at various concentrations of SK and SK. In the figure, the vertical axis indicates the change in absorbance at a wavelength of 405 nm after 30 minutes of the reaction, the horizontal axis indicates the concentration of each of SAK and SK (μg / ml), ○ and □ indicate the absence of thrombin, and ● and Δ indicate the presence of thrombin.

[結果・考察] 第12図に示すように、α2-PIの非存在下において、SA
K、SKの活性はトロンビン添加によりほとんど影響を受
けず、この反応条件では両者ともフィブリンに対し特異
性を持たないことがわかった。
[Results and Discussion] As shown in FIG. 12, in the absence of α 2 -PI, SA
The activities of K and SK were hardly affected by the addition of thrombin, and it was found that under these reaction conditions, both had no specificity for fibrin.

ところが、第13図に示すようにα2-PIの存在下では事
情は一変し、SKではα2-PI非存在下に比べやや弱いもの
の、同程度の活性が観察され、トロンビン添加により2
〜3倍程度の活性の回復が見られた。これに対し、SAK
はトロンビン非添加の条件では5.0μg/mlの濃度でも活
性は発現せず、α2-PI非存在下では0.5μg/mlでも十分
な活性が認められた。
However, in the circumstances the presence of alpha 2 -PI as shown in FIG. 13 changes completely, although somewhat weaker than in the absence of SK in alpha 2 -PI, the same order of activity was observed, by thrombin added 2
A recovery of about 3 times the activity was observed. In contrast, SAK
Showed no activity even at a concentration of 5.0 μg / ml in the absence of thrombin, and sufficient activity was observed at 0.5 μg / ml in the absence of α 2 -PI.

また、さらに重要な変化として、この条件でSAK活性
はトロンビン添加によりSKに比べて著しく増強されてお
り、例えば、5.0μg/mlの場合を見るとトロンビン非添
加における吸光度変化は0であるのに対し、トロンビン
添加では0.93という高い値を示した。
Further, as a more important change, under these conditions, the SAK activity was significantly enhanced by the addition of thrombin as compared to SK.For example, in the case of 5.0 μg / ml, the change in absorbance without thrombin was zero. On the other hand, the addition of thrombin showed a high value of 0.93.

このようにSAKはα2-PI非存在下ではフィブリン特異
性を持たず、α2-PI存在下において初めてフィブリン特
異性を発現するという事実は、SAKフィブリン特異性発
現にα2-PIが強く関与していることを示している。
Thus SAK has no fibrin specificity in the presence non-alpha 2 -PI, alpha 2 is the first time the fact that express fibrin specificity in -PI presence, strong alpha 2 -PI the SAK fibrin-specific expression Indicates that they are involved.

1−4. α2-PIのプラスミン阻害反応におよぼすSAK及
びSKの影響 1−3.章で見られたSAKのフィブリン特異性発現への
α2-PIの関与をさらに詳しく解析する目的でα2-PIのプ
ラスミン阻害反応におよぼすSAK及びSKの影響について
調べた。
1-4. Alpha 2 -PI influence of SAK and SK on plasmin inhibition reactions 1-3. Chapter to SAK fibrin-specific expression observed in alpha 2 -PI involve more detail analysis for purposes of the alpha The effects of SAK and SK on plasmin inhibition of 2- PI were investigated.

[方法] 96穴アッセイプレートにヒト−プラスミン溶液(0.05
C.U./ml;シグマ社製)50μlを取り、SAKあるいはSKの
溶液(各々0〜50μg/ml)を10μlを加え室温で5分間
放置した後、α2-PI(0〜5I.U./ml;プロトーゲン社
製)10μlを加え、50mMトリス−塩酸緩衝液(pH7.4)1
20μlと合成発色基質S−2251(10mM;カビ・ヴィトラ
ム社製)10μlの混液(計130μl)を加え反応を開始
した。反応は37℃にて行い、30分後の波長405nmにおけ
る吸光度変化をアッセイプレート用分光光度計にて測定
した。
[Method] In a 96-well assay plate, a human-plasmin solution (0.05
CU / ml; Sigma) (50 μl), add 10 μl of a SAK or SK solution (0 to 50 μg / ml each), leave the mixture at room temperature for 5 minutes, and then use α 2 -PI (0 to 5 I.U./ml). ; Protogen) (10 μl) and 50 mM Tris-HCl buffer (pH 7.4) 1
A mixed solution (total 130 μl) of 20 μl and 10 μl of a synthetic chromogenic substrate S-2251 (10 mM; manufactured by Mold Vitram) was added to start the reaction. The reaction was carried out at 37 ° C., and the change in absorbance at a wavelength of 405 nm after 30 minutes was measured with a spectrophotometer for an assay plate.

阻害率はα2-PI非添加時のプラスミン活性をA、添加
時の活性をBとし、以下の式に従い計算した。
Percent inhibition of alpha 2 -PI not added when the plasmin activity A, activity and B upon addition, was calculated according to the formula shown below.

阻害率(%)=(A−B)/A×100 第14図はα2-PI濃度を一定(5I.U./ml)とした時のSA
K及びSKの濃度を変化させた場合のプラスミン活性の阻
害率を示す線図である。図において、縦軸は阻害率
(%)、横軸はSAK及びSKの濃度(μg/ml)、○はSAK、
●はSKを示す。
Inhibition rate (%) = (AB) / A × 100 FIG. 14 shows SA when α 2 -PI concentration was fixed (5 IU / ml).
FIG. 2 is a diagram showing the inhibition rate of plasmin activity when the concentrations of K and SK are changed. In the figure, the ordinate represents the inhibition rate (%), the abscissa represents the concentration of SAK and SK (μg / ml), ○ represents SAK,
● indicates SK.

第15図はα2-PI濃度を変化させた場合のプラスミン活
性の阻害率を示す線図である。図において、縦軸は阻害
率(%)、横軸はα2-PI濃度(I.U./ml)、○はコント
ロール、■はSAK(濃度50μg/ml)、△はSK(濃度50μg
/ml)を示す。
FIG. 15 is a diagram showing the inhibition rate of plasmin activity when the concentration of α 2 -PI is changed. In the figure, the ordinate indicates the inhibition rate (%), the abscissa indicates the α 2 -PI concentration (IU / ml), は indicates control, ■ indicates SAK (concentration 50 μg / ml), △ indicates SK (concentration 50 μg)
/ ml).

[結果・考察] 第14図で解るように、α2-PIを添加(5I.U./ml)した
時点で80%の阻害があるが、SAK、SK濃度を上昇させる
とプラスミン活性の阻害率が下がりプラスミン活性の回
復が現われる。SK50μg/mlの添加ではほとんど阻害され
ないのに対し、SAKではプラスミン活性の回復が弱いこ
とがわかる。
[Results and Discussion] As can be seen in FIG. 14, there is a 80% inhibition at the time of the addition of α 2 -PI (5I.U./ml), SAK , inhibition of Increasing the SK concentration plasmin activity The rate decreases and plasmin activity recovers. It can be seen that the addition of 50 μg / ml of SK hardly inhibits the recovery, whereas the recovery of plasmin activity is weak in SAK.

また、第15図は逆のSAKおよびSKの濃度を一定(50μg
/ml)とし、α2-PI濃度を変化させた場合のプラスミン
活性の阻害率を示すが、SK添加ではα2-PIによる阻害は
全く見られないのに対し、SAKではα2-PI濃度に応じた
阻害か認められ、第14図の結果が確認された。
FIG. 15 shows that the opposite concentrations of SAK and SK are constant (50 μg).
/ ml), and shows the inhibition rate of plasmin activity when α 2 -PI concentration is changed. When SK was added, no inhibition by α 2 -PI was observed, whereas SAK showed α 2 -PI concentration Was confirmed, and the results in FIG. 14 were confirmed.

SKにより、α2-PIのプラスミン活性阻害反応が抑制さ
れることについては、いくつかの報告があるが(S.A.Ce
derholm-williams et al,Eur.J.Biochem.100,P.125-13
2,'79)、SAKとα2-PIの関連を調べた研究報告はない。
There are some reports that SK suppresses the α 2 -PI plasmin activity inhibition reaction (SACe
derholm-williams et al, Eur.J.Biochem.100, P.125-13
2, '79), there is no research report examining the relationship between SAK and α 2 -PI.

SKによるプラスミン活性回復のメカニズムに関して明
らかでないが、プラスミンのL(B)鎖に結合し、立体
障害的にα2-PIの活性中心への結合を阻害している可能
性が強い。その点、SAKでは分子量がSKの約1/3であり、
SKと同様にL(B)鎖に結合するものの、立体障害は少
ないと思われる。
Although the mechanism of the recovery of plasmin activity by SK is not clear, it is likely that SK binds to the L (B) chain of plasmin and sterically hinders the binding of α 2 -PI to the active center. In that respect, the molecular weight of SAK is about 1/3 of SK,
Like SK, it binds to the L (B) chain, but appears to have less steric hindrance.

α2-PIは、プラスミンに特異性を持つタンパク性の阻
害因子であり、血流中に生じたプラスミンを速やかに阻
害するが、フィブリンに結合したプラスミンはリジン結
合部位(以下、LBS)が飽和しており、LBSを介したα2-
PIとの結合ができず、結果として阻害を受けない(B.Wi
man et al,Biocim.Biophys.Acta,579,142-154,'79
他)。
alpha 2 -PI is plasmin are inhibitors of proteinaceous with specificity, but rapidly inhibits plasmin generated in the bloodstream, plasmin bound to fibrin lysine binding site (hereinafter, LBS) is saturated Α 2- via LBS
Unable to bind to PI, resulting in no inhibition (B.Wi
man et al, Biocim. Biophys. Acta, 579, 142-154, '79
other).

このような性質のため、α2-PIの役割の一つとして、
血栓上に生じたプラスミンは阻害せずに、血流中で生じ
たプラスミンを阻害し、結果として、フィブリンを選択
的に分解するという制御機能がある。
Because of this property, one of the roles of α 2 -PI is
There is a control function of inhibiting plasmin generated in the bloodstream without inhibiting plasmin generated on the thrombus, and as a result, selectively degrading fibrin.

従って、第1図に示した作用機構で説明したように、
SAKはα2-PIの制御機能に合致したフィブリン特異性を
獲得していることが解った。
Therefore, as described in the action mechanism shown in FIG.
It was found that SAK acquired fibrin specificity consistent with the control function of α 2 -PI.

すなわち、血流中で生じたSAK−プラスミノーゲン
(あるいはプラスミン)複合体はα2-PIにより速やかに
阻害され、プラスミノーゲンは活性化されないが、フィ
ブリンに結合したプラスミノーゲン(あるいはプラスミ
ン)とSAKの複合体は阻害をうけず、プラスミノーゲン
が活性化されプラスミンとなり、血栓を溶解する。一
方、SKの場合は血流中に生じたSK−プラスミノーゲン
(あるいはプラスミン)複合体はα2-PIによる阻害を受
けず、結果として、多量のプラスミンが生じフィブリノ
ーゲン(図示せず)をも分解すると考えられる。
That is, the SAK-plasminogen (or plasmin) complex formed in the bloodstream is rapidly inhibited by α 2 -PI and plasminogen is not activated, but plasminogen (or plasmin) bound to fibrin The complex of SAK and SAK is not inhibited, plasminogen is activated and becomes plasmin, which dissolves thrombus. On the other hand, in the case of SK, the SK-plasminogen (or plasmin) complex formed in the bloodstream is not inhibited by α 2 -PI, and as a result, a large amount of plasmin is generated and fibrinogen (not shown) is generated. It is thought to decompose.

従って、この作用機構(第1図)によって、SAK反応
は血流中ではα2-PIにより阻害されるが、フィブリン上
ではα2-PIが作用しにくいため、作用が選択的に進行す
ると言うことが解り、SAKはSKに比べて、より高いフィ
ブリン特異性を獲得していることが解った。
Therefore, according to this mechanism of action (FIG. 1), the SAK reaction is inhibited by α 2 -PI in the bloodstream, but the action is selectively advanced because α 2 -PI does not easily act on fibrin. It was found that SAK had higher fibrin specificity than SK.

従って、SAK反応はプラスミノーゲンが遊離状態の場
合には阻害されるが、フィブリンに結合したプラスミノ
ーゲンではリジン結合部位が飽和しておりα2-PIが作用
できないため(Wiman,B.et al.:Biochem.Biophys.Acta,
579;142-54,'79)、SAK反応が選択的に進行するものと
解った。
Therefore, since the SAK reaction but plasminogen is inhibited in the case of a free state, in which the lysine binding sites in the plasminogen bound to fibrin is saturated to have alpha 2 -PI can not act (Wiman, B.et al.:Biochem.Biophys.Acta,
579; 142-54, '79), indicating that the SAK reaction proceeds selectively.

以上のことより、SAKはSK比べフィブリン特異性が高
く、循環血液内のフィブリノーゲンの分解は阻害される
ため、出血等の副作用が問題となっていた出血等の副作
用の少ない血栓溶解剤として利用できることが明らかに
なった。
From the above, SAK has a higher fibrin specificity than SK and inhibits the degradation of fibrinogen in the circulating blood, so it can be used as a thrombolytic agent with less side effects such as bleeding, which had a problem with side effects such as bleeding. Was revealed.

2. 血漿中でのSAKの安定性 ヒト血漿にSAKあるいはSKを加え、37℃でインキュベ
ートし、その一部をSDS−ポリアクリルアミドゲル電気
泳動にかけ、フィブリン・オートグラフィーにて線溶活
性を調べた。
2. Stability of SAK in plasma SAK or SK was added to human plasma, incubated at 37 ° C, a part of which was subjected to SDS-polyacrylamide gel electrophoresis, and fibrinolytic activity was examined by fibrin autography. .

その結果、SAKは20時間のインキュベーションによっ
ても活性は低下しなかったが、SKでは完全に消失してい
た。また、血漿の代わりにヒト−プラスミノーゲンを用
いた場合も同様の結果が得られ、SAKの安定性が示され
た。
As a result, the activity of SAK did not decrease even after incubation for 20 hours, but was completely eliminated by SK. Similar results were obtained when human-plasminogen was used instead of plasma, indicating the stability of SAK.

3. 毒性試験 マウス(ICR雄28〜35g 10匹)を用い、各マウスにSAK
1mg/kgを静脈より投与した毒性試験の結果、死に至った
マウスはなかった。
3. Toxicity test Using mice (ICR male 28-35g, 10 mice), SAK
As a result of the toxicity test in which 1 mg / kg was intravenously administered, no mice died.

本発明は以上説明したように、SAKは血中安定性がSK
等のプラスミノゲン・アクチベーターよりも優れ、α2-
PIの作用メカニズムから類推して、その他のPAIによる
阻害も受け難く、生体内で長期にわたって活性が維持さ
れると考えられる。従って、血中の線溶活性を常に高め
ることが可能で、慢性的な血栓性の疾患にも有効であろ
う。
As described above, according to the present invention, SAK has a blood stability of SK.
It is better than plasminogen activator such as α 2-
By analogy with the mechanism of action of PI, it is unlikely to be inhibited by other PAIs, and its activity is expected to be maintained for a long time in vivo. Therefore, the fibrinolytic activity in blood can always be increased, and it will be effective for chronic thrombotic diseases.

さらにSAKは、従来用いられてきた他の血栓溶解剤に
比べ分子量が小さく、血栓内への浸透性の点からも有利
である。
Furthermore, SAK has a smaller molecular weight than other conventionally used thrombolytic agents, and is advantageous in terms of permeability into thrombus.

なお、以前はSAKの生産には黄色ブドウ球菌を用いて
いたため、生産性が悪く、また、夾雑する毒素の問題も
あったが、現在では大腸菌へのクローニングに成功し、
容易に大量生産が可能である(Sako,T.:Eur.J.BIoche
m.,149;557-63,'85)。従って、価格的にも他の血栓溶
解剤と比べ有利である。
Previously, SAK was used for the production of SAK, so the productivity was poor, and there was also a problem with contaminating toxins.
Easy mass production (Sako, T.: Eur.J.BIoche
m., 149; 557-63, '85). Therefore, it is more advantageous in price than other thrombolytic agents.

以上のような理由から、SAKを血栓溶解療法に用いる
ことは、従来の血栓溶解剤には見られない効果がある。
For the above reasons, the use of SAK for thrombolytic therapy has an effect not seen with conventional thrombolytic agents.

【図面の簡単な説明】[Brief description of the drawings]

第1図はSAKとSKの反応機構の相違を模式的に示した説
明図、第2図は閉鎖循環実験装置の構成を示す説明図、
第3図はフィブリン分解度の経時変化を示す線図、第4
図はフィブリン分解度の濃度依存性を示す線図、第5図
はフィブリノーゲン量の経時変化を示す線図、第6図は
フィブリン特異性の比較を示す線図、第7図は血栓溶解
特性の濃度依存性を示す線図、第8図はプラスミノーゲ
ン量の経時変化を示す線図、第9図はα2-PI量の経時変
化を示す線図、第10図はトロンビン存在、非存在下にお
けるプラスミノーゲン活性化反応を示す線図、第11図は
反応40分後におけるトロンビン存在、非存在下における
プラスミノーゲン活性化反応を示す線図、第12図はα2-
PI非存在下でのトロンビン存在、非存在下におけるプラ
スミノーゲン活性化反応を示す線図、第13図はα2-PI存
在下でのトロンビン存在、非存在下におけるプラスミノ
ーゲン活性化反応を示す線図、第14図はSAKおよびSKの
濃度を変化させた場合のプラスミン活性の阻害率を示す
線図、第15図はα2-PI濃度を変化させた場合のプラスミ
ン活性の阻害率を示す線図である。
FIG. 1 is an explanatory view schematically showing the difference between the reaction mechanisms of SAK and SK, FIG. 2 is an explanatory view showing the configuration of a closed circulation experiment apparatus,
FIG. 3 is a diagram showing the time-dependent change in the degree of fibrin degradation, and FIG.
The figure shows a graph showing the concentration dependence of the degree of fibrin degradation, FIG. 5 shows a graph showing the change over time in the amount of fibrinogen, FIG. 6 shows a graph showing a comparison of fibrin specificity, and FIG. A graph showing concentration dependency, FIG. 8 is a graph showing a time-dependent change in the amount of plasminogen, FIG. 9 is a graph showing a time-dependent change in the amount of α 2 -PI, FIG. 10 is the presence or absence of thrombin A diagram showing the plasminogen activation reaction below, FIG. 11 is a diagram showing the plasminogen activation reaction in the presence and absence of thrombin 40 minutes after the reaction, and FIG. 12 is a diagram showing α 2
Diagram showing plasminogen activation reaction in the presence and absence of thrombin in the absence of PI, FIG. 13 shows plasminogen activation reaction in the presence and absence of thrombin in the presence of α 2 -PI diagram showing, Fig. 14 graph showing the inhibition of plasmin activity in the case of changing the concentration of SAK and SK, the inhibition of plasmin activity as FIG. 15 with varying alpha 2 -PI concentration FIG.

Claims (1)

(57)【特許請求の範囲】(57) [Claims] 【請求項1】スタフィロキナーゼと、プラスミノーゲン
又はプラスミンと、α2−プラスミン・インヒビターと
を有効成分とする血栓溶解剤。
1. A thrombolytic agent comprising staphylokinase, plasminogen or plasmin, and α 2 -plasmin inhibitor as active ingredients.
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