JP2696092B2 - Method for producing erythritol using a novel microorganism - Google Patents

Method for producing erythritol using a novel microorganism

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JP2696092B2
JP2696092B2 JP23969794A JP23969794A JP2696092B2 JP 2696092 B2 JP2696092 B2 JP 2696092B2 JP 23969794 A JP23969794 A JP 23969794A JP 23969794 A JP23969794 A JP 23969794A JP 2696092 B2 JP2696092 B2 JP 2696092B2
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直哉 久保
隆文 春見
勝雄 若生
恒郎 小田
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農林水産省食品総合研究所長
日研化学株式会社
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【発明の詳細な説明】 【0001】 【産業上の利用分野】本発明は、エリスリトール生産能
の高いオーレオバシディウム(Aureobasidium)sp.S
N−124A菌株(FERM P−8745)を用いて
発酵性糖類をエリスリトールに変換することを特徴とす
る発酵によるエリスリトールの製造方法に関する。 【0002】 【従来の技術および発明が解決しようとする課題】従来
より、エリスリトール生産能を有する微生物としては、
例えばキャンジダ属、デバリオミセス属、トリゴノプシ
ス属、トルロプシス属、ハンゼヌラ属、オーレオバシデ
ィウム属などに属するものが知られている。例えば、特
公昭47−41549号公報にはキャンジダ属、トリゴ
ノプシス属に属する微生物を用いてグリセリンなどの発
酵性糖類をエリスリトールに変換する方法が記載されて
いる。しかしながら、この方法に従えば微生物の耐糖性
の問題から主炭素源としての糖質濃度(基質濃度)に限
界があり、比較的低濃度で発酵を行う必要があり、また
エリスリトールへの変換率も必ずしも十分でないことか
ら、未だ工業的に利用されるに至っていない。 【0003】本発明者等は、先にオーレオバシディウム
属の新規微生物SN−45菌株(FERM P−759
4)を用いてグルコース等の発酵性糖類よりエリスリト
ールを製造する方法(特開昭61−31091)を発明
した。この方法は、比較的高濃度の糖質よりエリスリト
ールを製造することを可能にし、それなりに価値を有す
るものであった。しかしながら、上記方法は菌体生成量
に比べてエリスリトールの収率が充分とはいえない上、
製造時の至適pH、温度等の範囲が狭く、しかもその範
囲から少しでも外れるとエリスリトールの収率が著しく
低下する等の欠点を有し、工業的には必ずしも満足のい
くものではなかった。 【0004】 【課題を解決するための手段】本発明者等は、かねてよ
り生体触媒としての微生物の有用性についてそのポリオ
ール類への変換能の検索を行なってきたが、たまたま、
沖縄県の澱粉工場内の土壌から分離された不完全菌類の
オーレオバシディウム属に属する新規微生物SN−12
4A菌株が、SN−45菌株よりも安定して高いエリス
リトール生産能を有することを見出し、本発明に到達し
たものである。 【0005】即ち、本発明はオーレオバシディウムs
p.SN−124A菌株(FERMP−8745)をグ
ルコースなどの発酵性糖類を主炭素源として含む培地に
接種し、好気的に培養して培養液中にエリスリトールを
生成蓄積せしめ、これを採取することを特徴とする発酵
によるエリスリトールの製造方法に関する。 【0006】以下に本発明を詳細に説明する。本発明に
おいて用いられる微生物オーレオバシディウムsp.S
N−124A菌株は、次のような菌学的性質を有する。 1.培地上の生育状況 1)顕微鏡的所見 栄養細胞の大きさ(*1) 4〜7×4〜15μ 栄養細胞の形状(*1) 菌糸及び酵母様の単胞、卵
形等の形状を示す。 栄養細胞の増殖法(*1) 菌糸及び酵母様細胞の多極
出芽 菌糸体(*2) 真性菌糸を形成し、先端及
び側面に全分芽型分生子を多数生ずる。 (註)*1 YM寒天培地に27℃、5日間培養 *2 ポテトグルコース寒天によるスライド培養 【0007】2)寒天斜面(*3) 生育 良好 光沢 無し 色調 日数の経過に伴い、白色から黒色の
コロニーに変化する (註)*3 YM寒天培地 3)液体培養(*4) 表面生育 厚い皮膜形成 濁度 透明 沈査 大 (註)*4 YM液体培地 【0008】2.子のう胞子の形成 ポテトグルコース寒天培地 形成せず コーンミール寒天培地 形成せず YM寒天培地 形成せず ニンジンエキス寒天培地 形成せず V8 寒天培地 形成せず 【0009】3.生理学的性質 酸素要求性 好気的 生育温度 約40℃まで 最適生育温度 35〜37℃ 生育pH 2.5〜9.5 最適生育pH 4〜7 KNO3 資化性(*5) 有り (NH4)2SO4 資化性(*5) 有り 尿素の分解 有り ゼラチンの液化 無し カロチノイドの生成 無し 有機酸の生成 有り アルブミン 無し デンプン様物質の生成 無し ビタミンの要求性(*5) 有り (註)*5 Wickerham の合成培地を用いた J.Lodder
らの方法により判定 *6 寒天培地 *7 液体培地 【0010】4.糖の発酵性(*5) グルコース ++ ラクトース − ガラクトース − メリビオース − シュクロース ++ ラフィノース − マルトース + セロビオース − トレハロース − イヌリン − 【0011】5.糖、有機酸等の資化性 グルコース ++ D−キシロース ± ガラクトース − エリスリトール + D−アラビノース − L−アラビノース − D−リボース + シュクロース + L−ラムノース − マルトース + エタノール − セロビオース + サリシン − L−ソルボース − リビトール − ガラクチトール − グリセリン + トレハロース − ラクトース − メリビオース − D−マンニトール + ラフィノース − メレチトース − α−メチル−D−グルコシド − イヌリン ± イノシトール − 可溶性デンプン − DL−乳酸 − コハク酸 ± クエン酸 + 【0012】上記のごとき菌学的性質を有する本菌株の
分類学上の位置を THE GENERA OF FUNGI SPORULATING I
N PURE CULTURE (J.A.VON ARX; 1974 年) を参照して検
討した結果、本菌株はYM寒天培地上での培養後期にお
いて日数の経過に伴い白色から黒色のコロニーを形成
し、栄養細胞に菌糸を形成し、多くの Blast sporeを生
じ、かつ厚膜胞子を形成しない、などの特徴を有してい
ることからオーレオバシディウムに属する新規な微生物
であると判断し、オーレオバシディウムsp.SN−1
24A菌株と命名した。 【0013】即ち、本発明の微生物は沖縄県の澱粉工場
内の土壌から常法に従って純粋分離されたもので、オー
レオバシディウム属に属し、栄養細胞が4〜7×4〜1
5μの単胞、卵形等の形状で、多極出芽により増殖し、
子のう胞子は見られず、真性菌糸が見られ、YM寒天培
地上での生育も速く3日間で白色から黒色のコロニーと
なり、液体培地では皮膜を形成し、かつ発酵性糖類を主
としてエリスリトールと少量のグリセリンに変換する能
力を有する。本菌株は、工業技術院生命工学工業技術研
究所に「FERM P−8745」として寄託されてい
る。 【0014】以下に、本発明に係るエリスリトールの製
造方法について述べる。本発明における培養は、通常液
体培地を用いて好気的条件下に攪拌培養により実施され
ることが望ましい。当該液体培地の主炭素源としてはグ
ルコース、フルクトース、シュクロース、マルトースな
どの糖質が使用されるが、これらの糖質の培地中におけ
る量的割合としては10〜40%(w/w)、特に好ま
しくは20〜30%(w/w)の範囲で添加使用される
ことが好ましい。窒素源としては微生物により利用可能
な窒素化合物、例えば酵母エキス、ペプトン、麦芽エキ
ス、カザミノ酸、コーンスチープリカーなどが使用され
る。また、培地に加える無機塩類としては、例えば硫酸
第一鉄、塩化カリウム、塩化ナトリウム、リン酸二水素
カリウム、水酸化カルシウムなどの塩類が使用される。
更に、必要に応じて酵母の生育に必要な各種の有機物、
無機物あるいは通常用いられる消泡剤などを添加するこ
とが出来る。 【0015】培養は、前記組成からなる液体培地に微生
物菌体を直接接種するか、又は、別に前培養によって得
られる種培養液を接種して行なわれる。この種培養液の
調製は、例えばグルコース20%(w/w)、コーンス
チープリカー2.0%を含むpH5〜6の液体培地に斜
面培養した菌を1白金耳接種して34〜36℃の温度で
2〜4日間培養することにより行われる。 【0016】培養温度は微生物が生育しうる範囲内、即
ち30〜38℃で行なわれるが、特に好ましくは35〜
37℃の範囲である。また、培地のpHは4〜9、好ま
しくは5〜7の範囲で調節される。培養期間は使用する
培地の種類及び主炭素源である糖質の濃度により異なる
が、通常4〜10日間程度である。本発明における培養
は、培地の栄養源が最大限に利用され、かつ培養液中の
エリスリトールの生成量が最高に達した時点で培養を終
了させることが望ましい。 【0017】尚、培養液中のエリスリトールの生成量は
ガスクロマトグラフィー、高速液体クロマトグラフィー
などの周知の方法を用いて速やかに測定することが出来
る。かくして、培養液中に蓄積されたエリスリトール
は、常法に従って培養液中から分離される。即ち、かか
る場合に当該分野において通常使用されている周知の手
段、例えばろ過、遠心分離、イオン交換又は吸着クロマ
トグラフィー、溶媒抽出、蒸留、結晶化などの操作が必
要に応じて適宜組み合わせて用いられる。一例を挙げれ
ば、培養液からろ過、遠心分離などによって菌体を除去
し、次いでこの液を活性炭で処理して着色物質などを除
き、更にイオン交換樹脂により脱イオンした後、液を濃
縮してシロップとする。次に、このシロップからエリス
リトールを結晶化して分離する。エリスリトールを分離
した後の母液中にグリセリンが含まれている場合には、
これを更に減圧蒸留により精製してグリセリンを得るこ
とができる。 【0018】 【実施例】次に、実施例を示し、本発明の態様を更に具
体的に説明する。 実施例1 グルコース20%(w/w)、予めpH6.0に調整し
たコーンスチープリカー2.0%、ソルビタン脂肪酸エ
ステル0.1%及びシリコン系消泡剤0.03%を含む
培地5kgを7リットル容の発酵槽に入れ、120℃、
20分間滅菌した。放冷後、無菌的に培地pHを5.5
に調整した。これに上記と同様の培地で3日間培養を行
なったオーレオバシディウムsp.SN−124A菌株
(FERM P−8745)の種培養液 200mlを
加え、35℃、400rpm、通気量1リットル/mi
nで7日間培養を行なった。その結果、この培養液中に
467gのエリスリトール及び痕跡程度のグリセリンが
蓄積された。 【0019】この培養液から菌体を遠心分離して除去
し、活性炭による脱色及びイオン交換樹脂(IRA−4
10:IR−120B=2:1)による脱塩を行なっ
た。次いで、濃縮し、5℃に保存することにより結晶を
得た。この結晶を溶解し、同様の方法により再結晶し
た。得られた多面体様の白色結晶は爽やかな甘味を有
し、その融点は121℃であった。NMR、旋光度、液
体クロマトグラフィー及びガスクロマトグラフィー等の
測定結果からこの白色結晶はエリスリトールと同定され
た。 【0020】実施例2 グルコース30%(w/w)、コーンスチープリカー
(pH6.0調整液)3.2%を含む培地50gを50
0mlの三角フラスコに入れ、滅菌、冷却後培地pHを
6.0に調整した。これに実施例1と同様の種培養液2
mlを接種し、35℃、180rpmで10日間振とう
培養を行なった。その結果、この培養液中に5.9gの
エリスリトール及び1.4gのグリセリンが蓄積され
た。 【0021】実施例3 シュクロース20%(w/w)、酵母エキス0.5%を
含む培地50gを500mlの三角フラスコに入れ、1
20℃、15分間滅菌した。冷後培地pHを6.0に調
整し、これにオーレオバシディウムsp.SN−124
A菌株(FERM P−8745)を接種し、35℃、
180rpmで7日間振とう培養を行なった。その結
果、培養液中に4.2gのエリスリトールが蓄積され、
グリセリンの蓄積は認められなかった。 【0022】実施例4 酵母エキス0.5%、グルコース10〜30%(w/
w)を含む培地50gを500mlの三角フラスコに入
れ、120℃、15分間滅菌を行なった。冷後、培地p
Hを5.5に調整し、これに種培養液(オーレオバシデ
ィウムsp.SN−124A菌株(FERM P−87
45)をグルコース20%、酵母エキス0.5%から成
る培地を用い、35℃、3日間培養した培養液)2ml
を接種し、35℃、180rpmで4〜11日間振とう
培養を行なった。その結果は第1表に示す通りであっ
た。 【0023】 【表1】 【0024】実施例5 グルコース20%(w/w)、酵母エキス0.5%から
成る培地50gずつを8本の500ml三角フラスコに
入れ、滅菌を行なった。冷後、1N塩酸又は1N水酸化
ナトリウムで培地pHを2.9〜10.1の間になるよ
うに調整した。次いで、得られたそれぞれの培地に種
菌、オーレオバシディウムsp.SN−124A菌株
(FERM P−8745号)を接種し、35℃、18
0rpmで7日間振とう培養を行なった。その結果、第
2表に示すような収率でエリスリトールが得られた。 【0025】 【表2】【0026】 【発明の効果】本発明によれば、オーレオバシディウム
属に属する菌株を用いる発酵法によってエリスリトール
を極めて効率よく製造することができる。
Description: BACKGROUND OF THE INVENTION The present invention relates to Aureobasidium sp. Having a high erythritol-producing ability. S
The present invention relates to a method for producing erythritol by fermentation, comprising converting a fermentable saccharide to erythritol using an N-124A strain (FERM P-8745). 2. Description of the Related Art Conventionally, microorganisms having erythritol-producing ability include:
For example, those belonging to the genus Candida, the genus Debaryomyces, the genus Trigonopsis, the genus Torulopsis, the genus Hansenula, the genus Aureobasidium and the like are known. For example, Japanese Patent Publication No. 47-41549 describes a method for converting fermentable sugars such as glycerin to erythritol using a microorganism belonging to the genus Candida or Trigonopsis. However, according to this method, the sugar concentration (substrate concentration) as a main carbon source is limited due to the problem of glucose tolerance of microorganisms, and it is necessary to perform fermentation at a relatively low concentration, and the conversion rate to erythritol is also low. Since it is not always sufficient, it has not yet been used industrially. The present inventors have previously proposed a novel microorganism SN-45 strain of the genus Aureobasidium (FERM P-759).
A method for producing erythritol from fermentable sugars such as glucose using 4) (JP-A-61-31091) was invented. This method made it possible to produce erythritol from a relatively high concentration of carbohydrate, and was of some value. However, in the above method, the yield of erythritol is not sufficient compared to the amount of bacterial cells,
Optimum pH and temperature ranges during production are narrow, and if they deviate slightly from these ranges, the yield of erythritol is remarkably reduced, which is not always industrially satisfactory. Means for Solving the Problems The inventors of the present invention have long searched for the usefulness of a microorganism as a biocatalyst for its ability to convert into a polyol.
A novel microorganism SN-12 belonging to the genus Aureobasidium, an imperfect fungus isolated from soil in a starch factory in Okinawa Prefecture
The present inventors have found that the 4A strain has a higher and higher erythritol-producing ability than the SN-45 strain, and have reached the present invention. That is, the present invention relates to Aureobasidium s
p. SN-124A strain (FERMP-8745) was inoculated into a medium containing fermentable saccharides such as glucose as a main carbon source, aerobically cultured, and allowed to produce and accumulate erythritol in the culture solution. The present invention relates to a method for producing erythritol by a characteristic fermentation. Hereinafter, the present invention will be described in detail. The microorganism Aureobasidium sp. S
The N-124A strain has the following mycological properties. 1. Growth condition on culture medium 1) Microscopic findings Size of vegetative cells (* 1) 4-7 × 4-15 μ Shape of vegetative cells (* 1) Hyphal and yeast-like solitary cells, oval, etc. Vegetative cell multiplication method (* 1) Multipolar budding mycelium of mycelium and yeast-like cells (* 2) Intrinsic hypha is formed, and a large number of all-budding conidia are formed on the tip and side. (Note) * 1 Cultured on YM agar medium at 27 ° C for 5 days * 2 Slide culture on potato glucose agar 2) Agar slant (* 3) Growth Good gloss No color tone White to black colonies with the passage of days * 3 YM agar medium 3) Liquid culture (* 4) Surface growth Thick film formation turbidity Transparent sedimentation Large (*) * 4 YM liquid medium [0008] Without V 8 agar medium formed without carrot extract agar medium formed without YM agar medium formed without corn meal agar formed without forming formation potato glucose agar medium of ascospores [0009] 3. Physiological properties Oxygen demand Aerobic growth temperature Optimum growth temperature up to about 40 ° C 35-37 ° C Growth pH 2.5-9.5 Optimum growth pH 4-7 KNO 3 assimilation (* 5) Yes (NH 4 ) ) 2 SO 4 assimilation (* 5) Yes Decomposition of urea Yes Liquefaction of gelatin No Formation of carotenoids No formation of organic acids Yes Albumin No Formation of starch-like substances None Requirement of vitamins (* 5) Yes (Note) * 5 J. Lodder using Wickerham's synthetic medium
Judgment by these methods * 6 Agar medium * 7 Liquid medium 4. Fermentability of sugar (* 5) Glucose ++ Lactose-Galactose-Melibiose-Sucrose ++ Raffinose-Maltose + Cellobiose-Trehalose-Inulin- Glucose assimilating sugar, organic acid, etc. ++ D-xylose ± galactose-erythritol + D-arabinose-L-arabinose-D-ribose + sucrose + L-rhamnose-maltose + ethanol-cellobiose + salicin-L-sorbose- Ribitol-galactitol-glycerin + trehalose-lactose-melibiose-D-mannitol + raffinose-meletitose-α-methyl-D-glucoside-inulin ± inositol-soluble starch-DL-lactic acid-succinic acid ± citric acid + THE GENERA OF FUNGI SPORULATING I
As a result of studying with reference to N PURE CULTURE (JAVON ARX; 1974), this strain formed white to black colonies with the passage of days in the late stage of culture on YM agar medium and formed hyphae on vegetative cells. And produced many Blast spores and did not form chlamydospores. Therefore, it was determined to be a novel microorganism belonging to Aureobasidium sp., And Aureobasidium sp. SN-1
The strain was named 24A strain. That is, the microorganism of the present invention is purely isolated from soil in a starch factory in Okinawa according to a conventional method, belongs to the genus Aureobasidium, and has vegetative cells of 4 to 7 × 4 to 1
Proliferate by multipolar budding in the form of 5μ single cell, oval, etc.
Ascospores are not seen, true mycelia are seen, growth on YM agar medium is fast, and white to black colonies are formed in 3 days. In liquid medium, a film is formed, and fermentable sugars are mainly contained in erythritol and small Glycerin. This strain has been deposited with the National Institute of Bioscience and Biotechnology at the National Institute of Advanced Industrial Science and Technology as "FERM P-8745". Hereinafter, a method for producing erythritol according to the present invention will be described. The culture in the present invention is desirably usually performed by stirring culture under aerobic conditions using a liquid medium. Carbohydrates such as glucose, fructose, sucrose, and maltose are used as the main carbon source of the liquid medium, and the quantitative ratio of these sugars in the medium is 10 to 40% (w / w). It is particularly preferable to add and use in the range of 20 to 30% (w / w). As the nitrogen source, nitrogen compounds usable by microorganisms such as yeast extract, peptone, malt extract, casamino acid, corn steep liquor and the like are used. As the inorganic salts to be added to the medium, for example, salts such as ferrous sulfate, potassium chloride, sodium chloride, potassium dihydrogen phosphate, and calcium hydroxide are used.
Furthermore, if necessary, various organic substances necessary for the growth of yeast,
An inorganic substance or a commonly used antifoaming agent can be added. The cultivation is carried out by directly inoculating the microbial cells into a liquid medium having the above composition, or by inoculating a seed culture obtained by pre-culture. The seed culture is prepared by, for example, inoculating one loopful of bacteria cultured on a slope in a liquid medium of pH 5 to 6 containing 20% (w / w) of glucose and 2.0% of corn steep liquor at 34 to 36 ° C. It is performed by culturing at a temperature for 2 to 4 days. The cultivation temperature is within the range in which microorganisms can grow, that is, 30 to 38 ° C., and particularly preferably 35 to 38 ° C.
The range is 37 ° C. The pH of the medium is adjusted in the range of 4 to 9, preferably 5 to 7. The culture period varies depending on the type of medium used and the concentration of carbohydrate as a main carbon source, but is usually about 4 to 10 days. In the culturing in the present invention, it is desirable to terminate the culturing when the nutrient source of the medium is used to the maximum and the amount of erythritol produced in the culture solution reaches the maximum. [0017] The amount of erythritol produced in the culture solution can be quickly measured by a known method such as gas chromatography or high performance liquid chromatography. Thus, the erythritol accumulated in the culture solution is separated from the culture solution according to a conventional method. That is, in such a case, well-known means commonly used in the art, for example, filtration, centrifugation, ion exchange or adsorption chromatography, solvent extraction, distillation, crystallization and the like are used in combination as needed as appropriate. . For example, the culture solution is filtered to remove bacterial cells by centrifugation, and then the solution is treated with activated carbon to remove coloring substances, and further deionized with an ion exchange resin. Syrup. Next, erythritol is crystallized and separated from the syrup. If glycerin is contained in the mother liquor after separation of erythritol,
This can be further purified by distillation under reduced pressure to obtain glycerin. Next, the present invention will be described in more detail with reference to Examples. Example 1 5 kg of a medium containing 20% of glucose (w / w), 2.0% of corn steep liquor previously adjusted to pH 6.0, 0.1% of sorbitan fatty acid ester and 0.03% of a silicon-based antifoaming agent were prepared. Into a liter fermenter, 120 ° C,
Sterilized for 20 minutes. After cooling, the medium pH was aseptically adjusted to 5.5.
Was adjusted. Aureobasidium sp. Cultured for 3 days in the same medium as above was added thereto. 200 ml of a seed culture of the SN-124A strain (FERM P-8745) was added, and the mixture was heated at 35 ° C., 400 rpm, and aerated at 1 liter / mi.
n for 7 days. As a result, 467 g of erythritol and trace amounts of glycerin were accumulated in this culture solution. The cells are removed from this culture by centrifugation, decolorized with activated carbon and ion-exchange resin (IRA-4).
10: IR-120B = 2: 1). Then, the mixture was concentrated and stored at 5 ° C. to obtain crystals. The crystals were dissolved and recrystallized by the same method. The obtained polyhedral white crystals had a refreshing sweet taste and the melting point was 121 ° C. This white crystal was identified as erythritol from the measurement results of NMR, optical rotation, liquid chromatography, gas chromatography and the like. EXAMPLE 2 50 g of a medium containing 30% (w / w) of glucose and 3.2% of corn steep liquor (pH 6.0 adjusted solution) was added to 50 g of a medium.
After placing in a 0 ml Erlenmeyer flask, sterilizing and cooling, the pH of the medium was adjusted to 6.0. The same seed culture solution 2 as in Example 1
ml, and shaking culture was performed at 35 ° C. and 180 rpm for 10 days. As a result, 5.9 g of erythritol and 1.4 g of glycerin were accumulated in this culture solution. Example 3 50 g of a medium containing 20% (w / w) of sucrose and 0.5% of yeast extract was placed in a 500 ml Erlenmeyer flask, and 1
Sterilized at 20 ° C. for 15 minutes. After cooling, the medium pH was adjusted to 6.0, to which Aureobasidium sp. SN-124
A strain (FERM P-8745) was inoculated at 35 ° C.
Shaking culture was performed at 180 rpm for 7 days. As a result, 4.2 g of erythritol is accumulated in the culture solution,
No glycerin accumulation was observed. Example 4 Yeast extract 0.5%, glucose 10-30% (w /
50 g of the medium containing w) was placed in a 500 ml Erlenmeyer flask, and sterilized at 120 ° C. for 15 minutes. After cooling, medium p
H was adjusted to 5.5, and a seed culture (Aureobasidium sp. SN-124A strain (FERM P-87) was added thereto.
45) was cultured in a medium consisting of 20% glucose and 0.5% yeast extract at 35 ° C for 3 days) 2 ml
, And shaking culture was performed at 35 ° C. and 180 rpm for 4 to 11 days. The results were as shown in Table 1. [Table 1] Example 5 Eight 500 ml Erlenmeyer flasks were charged with 50 g of a medium containing 20% (w / w) of glucose and 0.5% of yeast extract, and sterilized. After cooling, the pH of the medium was adjusted with 1N hydrochloric acid or 1N sodium hydroxide so as to be between 2.9 and 10.1. Next, a seed bacterium, Aureobasidium sp. SN-124A strain (FERM P-8745) was inoculated at 35 ° C., 18
Shaking culture was performed at 0 rpm for 7 days. As a result, erythritol was obtained in a yield as shown in Table 2. [Table 2] According to the present invention, erythritol can be produced very efficiently by a fermentation method using a strain belonging to the genus Aureobasidium.

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.6 識別記号 庁内整理番号 FI 技術表示箇所 C12R 1:645) ──────────────────────────────────────────────────続 き Continued on the front page (51) Int.Cl. 6 Identification code Agency reference number FI Technical display location C12R 1: 645)

Claims (1)

(57)【特許請求の範囲】 1.オーレオバシディウムsp.SN−124A菌株
(FERMP−8745)をグルコースなどの発酵性糖
類を主炭素源として含む培地に接種し、好気的に培養し
て培養液中にエリスリトールを生成蓄積せしめ、これを
採取することを特徴とする発酵によるエリスリトールの
製造方法。
(57) [Claims] Aureobasidium sp. SN-124A strain (FERMP-8745) was inoculated into a medium containing fermentable saccharides such as glucose as a main carbon source, aerobically cultured, and allowed to produce and accumulate erythritol in the culture solution. A method for producing erythritol by fermentation.
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