JP2687239B2 - Method for producing β-galactosidase bacterial enzyme - Google Patents

Method for producing β-galactosidase bacterial enzyme

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Description

【発明の詳細な説明】 〔産業上の利用分野〕 本発明は、β−ガラクトシダーゼ菌体酵素の製造法に
関するものである。
TECHNICAL FIELD The present invention relates to a method for producing a β-galactosidase microbial enzyme.

〔従来の技術〕[Conventional technology]

β−ガラクトシダーゼは乳糖をグルコースとガラクト
ースに加水分解する作用および乳糖にβ−ガラクトシル
転移反応を生じさせる作用があり、乳糖分解乳の製造や
ガラクトオリコ糖の製造に用いられている。
β-Galactosidase has an action of hydrolyzing lactose into glucose and galactose and an action of causing β-galactosyl transfer reaction of lactose, and is used for producing lactose-decomposed milk and galacto-olicosaccharide.

β−ガラクトシダーゼは、アスペルギルス・オリゼ、
ストレプトコッカス・サーモフィルスなど、種々の細
菌、酵母等の菌体内に生産され、従来は、これを菌体外
に取り出したものが酵素反応に利用されている。β−ガ
ラクトシダーゼの活性を菌体内において発現させ、その
まま、いわゆる菌体酵素の形で酵素反応に利用すること
ができれば、酵素の分離・精製が不要になり、利用率も
向上するが、それは、この酵素の場合ほとんど行われて
いない。その主な理由は、この酵素の用途がほとんど食
品製造分野に限れることにあるものと思われる。すなわ
ち、菌体酵素は一般にトルエン、アセトン、メタノー
ル、エタノール等の有機溶媒やSDS(ドデシルベンゼン
スルホン酸ソーダ)等の界面活性剤で菌体を処理する方
法によって製造されているが、有機溶剤も界面活性剤も
有毒なものが多い。特にSDSなど従来使われてきた界面
活性剤は、毒性が強く、しかも処理後に完全に除去する
のが難しいから、食品製造用菌体酵素の製造に用いるこ
とは難しかった。さらに、有機溶媒は引火性であって取
り扱いや回収に注意を必要とし、また蛋白変成剤でもあ
るから処理条件を厳密にコントロールしないと酵素を失
活させる恐れもある。
β-galactosidase is Aspergillus oryzae,
It is produced in the cells of various bacteria such as Streptococcus thermophilus, yeast, etc., and conventionally, it is taken out of the cells and used for the enzymatic reaction. If the activity of β-galactosidase can be expressed in the cells and used as it is for enzyme reaction in the form of so-called cell enzyme, separation / purification of the enzyme becomes unnecessary and the utilization rate is improved. In the case of enzymes, it is hardly done. The main reason seems to be that the use of this enzyme is mostly limited to the food manufacturing field. That is, bacterial enzymes are generally produced by a method of treating bacterial cells with an organic solvent such as toluene, acetone, methanol, ethanol or a surfactant such as SDS (sodium dodecylbenzene sulfonate). Many activators are also toxic. In particular, the conventionally used surfactants such as SDS are highly toxic and it is difficult to completely remove them after the treatment, so that it was difficult to use them for the production of bacterial enzyme for food production. Furthermore, the organic solvent is flammable and requires careful handling and recovery. Since it is also a protein denaturing agent, the enzyme may be inactivated unless the treatment conditions are strictly controlled.

〔発明が解決しようとする課題〕[Problems to be solved by the invention]

そこで本発明の目的は、食品製造に安心して使用でき
るβ−ガラクトシダーゼ菌体酵素を安価にかつ容易に製
造する方法を提供することにある。
Therefore, an object of the present invention is to provide a method for inexpensively and easily producing a β-galactosidase microbial enzyme that can be safely used in food production.

〔課題を解決するための手段〕[Means for solving the problem]

一般に、微生物細胞内の酵素が有機溶媒処理や界面活
性剤処理によって活性を発現するのは細胞壁や細胞膜の
選択的透過性が変化するためと説明されている。すなわ
ち、生細胞においては細胞壁や細胞膜による物質の選択
的透過生が基質の細胞内への透過を妨げているが、細胞
を有機溶媒や界面活性剤で処理すると細胞壁や細胞膜の
表層または間隙にある脂質が抽出されて選択的透過性が
変化し、基質や反応生成物の透過性が増大して細胞内酵
素と細胞外基質との反応が可能になる。
Generally, it is explained that the enzyme in a microbial cell exerts its activity by treatment with an organic solvent or a detergent because the selective permeability of the cell wall or cell membrane is changed. That is, in living cells, selective permeation of substances by cell walls and cell membranes impedes the permeation of substrates into cells, but when cells are treated with an organic solvent or a surfactant, they are present in the surface layer or gaps of cell walls or cell membranes. The lipid is extracted and the selective permeability is changed, and the permeability of the substrate and the reaction product is increased to allow the reaction between the intracellular enzyme and the extracellular substrate.

しかしながら、上述のような機構によって酵素活性を
発現させて実用可能な菌体酵素を製造し得るか否かは、
酵素や基質の種類によって異なり、また、有機溶媒や界
面活性剤のすべてが有効なわけではない。β−ガラクト
シダーゼ生産菌の場合、乳糖を基質として取込み転移オ
リゴ糖を放出し得る選択的透過性を有するβ−ガラクト
シダーゼ菌体酵素を与える界面活性剤はきわめて限ら
れ、特にそのHLB値が重要であって、多くの場合、16以
上でなければならないことが確認された。
However, whether or not it is possible to produce a practical bacterial enzyme by expressing the enzyme activity by the mechanism as described above,
It depends on the type of enzyme and substrate, and not all organic solvents and surfactants are effective. In the case of β-galactosidase-producing bacteria, the surfactants that give β-galactosidase microbial enzyme having selective permeability capable of taking up lactose as a substrate and releasing transfer oligosaccharide are extremely limited, and its HLB value is particularly important. It was confirmed that in most cases, it should be 16 or more.

本発明は上記知見に基づき完成されたものであって、
細胞内にβ−ガラクトシダーゼを生産する微生物を培養
し、得られた菌体を、ショ糖脂肪酸エステルもしくはリ
ゾホスホリピドからなるHLB値16以上の界面活性剤また
はキラサラポニンで処理することを特徴とするものであ
る。
The present invention has been completed based on the above findings,
It is characterized by culturing a microorganism that produces β-galactosidase in the cell, and treating the obtained bacterial cells with a surfactant having an HLB value of 16 or more consisting of sucrose fatty acid ester or lysophospholipid or chirasaraponin. .

本発明のβ−ガラクトシダーゼ菌体酵素製造法におい
て用いる界面活性剤のうち、ショ糖脂肪酸エステル系界
面活性剤は、市販品の中からHLB値16以上のものを選ん
で用いればよい。キラヤサポニンは天然物であって種々
のHLB値のものがあるわけではないので、市販品をその
まま使用することができる。また、HLB値が16以上のリ
ゾホスホリピドは、大豆レシチン、卵黄レシチン等の天
然リン脂質と多価アルコールとからホスファチジル基転
移反応により製造される転移レシチンたとえばホスファ
チジルグリセロール等をリパーゼまたはホスホリパーゼ
A2で処理して部分加水分解することにより製造すること
ができ、下記一般式で表される物質である。
Among the surfactants used in the β-galactosidase microbial enzyme production method of the present invention, as the sucrose fatty acid ester-based surfactant, those having an HLB value of 16 or more may be selected from commercial products and used. Since quillaja saponin is a natural product and does not have various HLB values, commercial products can be used as they are. In addition, HLB value of 16 or more lysophospholipid, soybean lecithin, egg yolk lecithin natural phospholipids and polyhydric alcohol produced by phosphatidyl group transfer reaction lecithin such as phosphatidylglycerol lipase or phospholipase.
It is a substance represented by the following general formula, which can be produced by treatment with A 2 and partial hydrolysis.

(式中、R1およびR2は水素原子または脂肪酸のアシル残
基を示す。ただし、R1、R2のいずれか一方は水素原子で
あり、他方はアシル基である。Xは多価アルコールから
その任意の水酸基の水素原子1個を除いた後に残る有機
基を示す。) このリゾホスホリピドにおいて特に好ましいのは、上
記一般式における有機基Xに相当する多価アルコールが
エチレングリコール、グリセロール、ソルビトール、マ
ンニトール、グルコース、ガラクトース、フラクトー
ス、ショ糖、または乳糖であるものである。
(In the formula, R 1 and R 2 represent a hydrogen atom or an acyl residue of a fatty acid. However, one of R 1 and R 2 is a hydrogen atom and the other is an acyl group. X is a polyhydric alcohol. From the above, an organic group remaining after removing one hydrogen atom of the arbitrary hydroxyl group is shown.) Particularly preferred in this lysophospholipid is a polyhydric alcohol corresponding to the organic group X in the above general formula, ethylene glycol, glycerol, sorbitol, Mannitol, glucose, galactose, fructose, sucrose, or lactose.

ショ糖脂肪酸エステルもリゾホスホリピドも、HLB値
が16未満のものは、本発明の目的達成に必要な選択的透
過性を細胞膜に与えないので使用することができない。
リン脂質系界面活性剤としては大豆レシチン、リゾ型レ
シチン、転移レシチン(たとえばホスファチジルグリセ
ロール)などが一般的であるが、これらはHLB値が12〜1
5程度のものしかないためか、いずれも酵素活性を発現
させることができない。
Neither sucrose fatty acid ester nor lysophospholipid having an HLB value of less than 16 can be used because they do not provide the cell membrane with the selective permeability necessary for achieving the object of the present invention.
Soybean lecithin, lyso-type lecithin, and transfer lecithin (eg, phosphatidylglycerol) are commonly used as phospholipid-based surfactants, but these have HLB values of 12 to 1
Probably because there are only about 5 of them, the enzyme activity cannot be expressed in any of them.

本発明の製造法によりβ−ガラクトシダーゼ菌体酵素
を製造する場合、微生物としてはβ−ガラクトシダーゼ
を菌体内に生産するものであって菌体酵素として利用す
るのに適したもの、たとえばストレプトコッカス・サー
モフィルス、ラクトバチルス・ブルガリクス、ストレプ
トコッカス・ラクチス、ラクトバチルス・サリバリウ
ス、ラクトバチルス・ライヒマニー、ラクトバチルス・
ヘルベティクス、バチルス・ブレビス、バチルス・ステ
アロサーモフィルス、ビフィドバクテリウム・ビフィダ
ム、ビフィドバクテリウム・ブレーベ、ビフィドバクテ
リウム・ロンガム、ビフィドバクテリウム・アドレスセ
ンティス、クルイベロマイセス・フラジリス、クルイベ
ロマイセス・ラクチス、カンジダ・シュードトロピカリ
ス、ブレラ・シンギュラリス等を常法により培養する。
得られた培養液は、そのまま界面活性剤処理に付しても
よいが、遠心分離、洗浄等の操作で培地成分を除いた濃
縮細胞懸濁液にしたのち酵素処理を行うことが望まし
い。
When the β-galactosidase bacterial enzyme is produced by the production method of the present invention, a microorganism that produces β-galactosidase in the bacterial cell and is suitable for use as the bacterial enzyme, for example, Streptococcus thermophilus. , Lactobacillus bulgaricus, Streptococcus lactis, Lactobacillus salivarius, Lactobacillus reichmannii, Lactobacillus
Helvetics, Bacillus brevis, Bacillus stearothermophilus, Bifidobacterium bifidum, Bifidobacterium breve, Bifidobacterium longum, Bifidobacterium addressacetis, Kluyveromyces fragilis, Kluyveromyces lactis, Candida pseudotropicalis, Brera singularis and the like are cultured by a conventional method.
The obtained culture broth may be subjected to a detergent treatment as it is, but it is desirable to carry out an enzyme treatment after making a concentrated cell suspension from which medium components have been removed by operations such as centrifugation and washing.

処理温度は20℃以上、β−ガラクトシダーゼが失活し
ない範囲であればよく、なるべく高い温度で行うほうが
処理効果が高いが、通常は30〜55℃が適当である。処理
液には、グリセリン、糖液など、酵素の熱安定性を向上
させる物質を共存させることができ、その場合は、約70
℃までの昇温処理が可能である。界面活性剤処理後も微
生物が生きていると酵素が不安定で製品の保存安定性が
悪いので、処理温度を高くすることは殺菌による安定性
向上にも役立ち、有利である。
The treatment temperature may be 20 ° C. or higher as long as the β-galactosidase is not inactivated, and the treatment effect is higher at a temperature as high as possible, but usually 30 to 55 ° C. is suitable. In the treatment liquid, substances such as glycerin and sugar liquid that improve the thermal stability of the enzyme can coexist.
A temperature rising process up to ℃ is possible. Since the enzyme is unstable and the storage stability of the product is poor if the microorganisms are alive even after the treatment with the surfactant, it is advantageous to raise the treatment temperature to improve the stability by sterilization.

界面活性剤は、適当な濃度の菌体懸濁液に濃度が約0.
3〜3%になるように加える。必要な処理時間は処理温
度によっても異なるが、50℃前後で処理する場合、約15
分〜2時間である。
Surfactant has a concentration of about 0.
Add 3 to 3%. The required treatment time depends on the treatment temperature, but when treating at around 50 ° C, it takes about 15
Minutes to 2 hours.

本発明で用いる界面活性剤はすべて安全性の高いもの
であるから、処理終了後は菌体を遠心分離して簡単に洗
浄する程度でよく、界面活性剤をそのまま残しても差し
支えない。
Since all the surfactants used in the present invention are highly safe, it is sufficient to centrifuge the cells after the treatment to simply wash them, and the surfactants may be left as they are.

本発明のβ−ガラクトシダーゼ菌体酵素は、乳糖不耐
症対策として牛乳中の乳糖を加水分解する反応、ビフィ
ドバクテリウム菌増殖促進剤としてのガラクトオリゴ糖
を乳糖から生成させる転移反応など、β−ガラクトシダ
ーゼを使用する反応のための酵素として、菌体外酵素と
同様に使用することができる。
The β-galactosidase microbial enzyme of the present invention is a reaction for hydrolyzing lactose in milk as a measure for lactose intolerance, a transfer reaction for producing galactooligosaccharide as a Bifidobacterium growth promoter from lactose, β- As an enzyme for the reaction using galactosidase, it can be used in the same manner as the extracellular enzyme.

〔実施例〕〔Example〕

以下、実施例および比較例を示して本発明を説明す
る。なお、各例において用いた菌体懸濁液は、脱脂粉乳
に酵母エキス0.5%を含む培地で培養して菌体内にβ−
ガラクトシダーゼを蓄積させたストレプトコッカス・サ
ーモフィルスの培養液を遠心分離して菌体を集め、これ
を水に分散させたのち同様にして再度遠心分離を行い、
えられた菌体に0.01Mリン酸カリウム緩衝液を加えて攪
拌することにより調製したものである。また、界面活性
剤処理後の菌体のβ−ガラクトシダーゼ活性は次のよう
にして測定した。
Hereinafter, the present invention will be described with reference to Examples and Comparative Examples. The bacterial cell suspension used in each example was cultured in a medium containing 0.5% yeast extract in skim milk powder to give β-into the bacterial cells.
The culture solution of Streptococcus thermophilus accumulating galactosidase was centrifuged to collect the bacterial cells, which was dispersed in water and then centrifuged again in the same manner,
It was prepared by adding 0.01 M potassium phosphate buffer to the obtained cells and stirring. The β-galactosidase activity of the bacterial cells after the treatment with the surfactant was measured as follows.

β−ガラクトシダーゼ活性測定法:界面活性剤処理後の
菌体を0.01Mリン酸カリウム緩衝液で希釈し、その0.1ml
を2%ラクトース入り0.01Mリン酸カリウム緩衝液(pH
7.0,Mg2+10ppm含有)0.9mlに添加し、正確に40℃で30分
間反応させる。その後、100℃に5分間加熱して酵素を
失活させ、酵素反応により生成したグルコースを比色定
量する。
β-galactosidase activity measurement method: The bacterial cells after the treatment with the surfactant were diluted with 0.01 M potassium phosphate buffer, and 0.1 ml thereof was diluted.
0.01M potassium phosphate buffer containing 2% lactose (pH
7.0, containing Mg 2+ 10ppm) 0.9 ml, and react exactly at 40 ° C for 30 minutes. Then, the enzyme is inactivated by heating at 100 ° C. for 5 minutes, and glucose produced by the enzymatic reaction is colorimetrically determined.

実施例1〜6,比較例1〜7 ストレプトコッカス・サーモフィルスの上記菌体懸濁
液2mlに界面活性剤の10%水溶液を0.2ml加え、50℃で30
分間、加温処理を行なった。
Examples 1 to 6 and Comparative Examples 1 to 7 To 2 ml of the above-mentioned cell suspension of Streptococcus thermophilus, 0.2 ml of a 10% aqueous solution of a surfactant was added, and the mixture was stirred at 50 ° C. for 30 minutes.
A heating process was performed for a minute.

処理に用いた界面活性剤は下記のとおりである。 The surfactants used for the treatment are as follows.

実施例1:ショ糖脂肪酸エステル・DK−SS(第一工業製薬
株式会社) 実施例2:ショ糖脂肪酸エステル・DK−SL(第一工業製薬
株式会社) 実施例3:ショ糖脂肪酸エステル・DK−SL18A(第一工業
製薬株式会社) 実施例4:ホスファチジルグリセロール84重量%を含有す
る転移レシチンを、パンクレアチン(シグマ社)で処理
し、β位を加水分解して得られたもの。リゾホスファチ
ジルグリセロール89重量%を含有。
Example 1: Sucrose fatty acid ester / DK-SS (Daiichi Kogyo Seiyaku Co., Ltd.) Example 2: Sucrose fatty acid ester / DK-SL (Daiichi Kogyo Seiyaku Co., Ltd.) Example 3: Sucrose fatty acid ester / DK -SL18A (Daiichi Kogyo Seiyaku Co., Ltd.) Example 4: A product obtained by treating transferred lecithin containing 84% by weight of phosphatidylglycerol with pancreatin (Sigma) and hydrolyzing the β-position. Contains 89% by weight of lysophosphatidylglycerol.

実施例5:ホスファチジルグリセロール30重量%を含有す
る転移レシチンより実施例4のものと同様にして得られ
たリゾホスファチジルグリセロール60重量%含有品。
Example 5: A product containing 60% by weight of lysophosphatidylglycerol, which was obtained in the same manner as in Example 4 from the transferred lecithin containing 30% by weight of phosphatidylglycerol.

実施例6:キラサヤポニン(丸善化成株式会社) 比較例1:ソルビタン脂肪酸エステル・スパン20(東京化
成株式会社) 比較例2:グリセリン脂肪酸エステル・サントーン(ダー
キー社) 比較例3:酵素処理レシチン・エルマイザーA(協和発酵
株式会社) 比較例4〜7:ショ糖脂肪酸エステル 参考例1 菌体懸濁液20mlに20mlのエタノールを加え、20℃で30
分間処理した。次いで0.01Mリン酸カリウム緩衝液10ml
を加えて希釈し、遠心分離してエタノールを除き、同じ
緩衝液で全量を2mlにした。
Example 6: Kirasayaponin (Maruzen Kasei Co., Ltd.) Comparative Example 1: Sorbitan fatty acid ester span 20 (Tokyo Kasei Co., Ltd.) Comparative Example 2: Glycerin fatty acid ester Suntone (Derky Co.) Comparative Example 3: Enzyme-treated lecithin Hermizer A (Kyowa Hakko Co., Ltd.) Comparative Examples 4 to 7: Sucrose fatty acid ester Reference Example 1 20 ml of ethanol was added to 20 ml of the bacterial cell suspension, and the mixture was stirred at 20 ° C. for 30 minutes.
Minutes. Then 0.01M potassium phosphate buffer 10ml
Was added to dilute, and the mixture was centrifuged to remove ethanol, and the total volume was adjusted to 2 ml with the same buffer.

参考例2 無処理菌体懸濁液 参考例3 菌体懸濁液を15分間超音波処理して菌体を破砕し、酵
素液とした。
Reference Example 2 Untreated bacterial cell suspension Reference Example 3 The bacterial cell suspension was sonicated for 15 minutes to crush the bacterial cells to obtain an enzyme solution.

参考例4 界面活性剤としてドデシルベンゼンスルホン酸ソーダ
を用いて実施例と同様に処理した。
Reference Example 4 The same treatment as in Example was carried out using sodium dodecylbenzenesulfonate as a surfactant.

以上の各例による菌体または酵素液についてβ−ガラ
クトシダーゼ活性を測定した結果を表1に示した。な
お、同表に示した酵素活性は、参考例1によるものの酵
素活性を100とした相対値である。参考例2の無処理菌
体でも15の活性を示すので、活性20以下のものは事実上
処理効果がなかったと考えられる。
Table 1 shows the results of measuring the β-galactosidase activity of the bacterial cells or enzyme solutions of the above examples. The enzyme activity shown in the table is a relative value based on the enzyme activity of Reference Example 1 as 100. Since the untreated cells of Reference Example 2 also exhibited 15 activities, it is considered that those having an activity of 20 or less had virtually no treatment effect.

表1 HLB値 酵素活性 実施例1 19 99 実施例2 20 108 実施例3 16 108 実施例4 22 116 実施例5 25 98 実施例6 − 98 比較例1 8 18 比較例2 2 17 比較例3 11 18 比較例4 2 18 比較例5 6 18 比較例6 11 16 比較例7 15 20 参考例1 100 参考例2 15 参考例3 104 参考例4 40 118 〔発明の効果〕 上述のように、本発明によれば従来適当な活性化方法
がないため実用化されていなかった食品製造用β−ガラ
クトシダーゼ菌体酵素を安全かつ容易に製造することが
できるようになる。そして、本発明の製造法により得ら
れる菌体酵素の活性は、エタノールやドデシルベンゼス
ルホン酸ソーダを用いる従来の代表的活性化方法による
ものと比べて全く遜色がない。
Table 1 HLB value Enzyme activity Example 1 19 99 Example 2 20 108 Example 3 16 108 Example 4 22 116 Example 5 25 98 Example 6-98 Comparative Example 1 8 18 Comparative Example 2 2 17 Comparative Example 3 11 18 Comparative Example 4 2 18 Comparative Example 5 6 18 Comparative Example 6 11 16 Comparative Example 7 15 20 Reference Example 1 100 Reference Example 2 15 Reference Example 3 104 Reference Example 4 40 118 [Effect of the Invention] As described above, the present invention According to the method, a β-galactosidase microbial enzyme for food production, which has not been put into practical use because there is no suitable activation method, can be produced safely and easily. The activity of the bacterial enzyme obtained by the production method of the present invention is comparable to that obtained by the conventional typical activation method using ethanol or sodium dodecylbenzesulfonate.

β−ガラクトシダーゼ菌体酵素は酵素が菌体に固定さ
れている一種の固定化酵素であるから、酵素反応に使用
した後、遠心分離や濾過により簡単に回収して繰り返し
使用可能である。また、これをさらに担体に固定した固
定化酵素として使用することもできる。このため、細胞
を破壊して取り出したβ−ガラクトシダーゼを用いるよ
りもはるかに低いコストで酵素反応を行うことができ、
また、反応生成物の精製も容易であるという利点があ
る。
Since the β-galactosidase microbial enzyme is a kind of immobilized enzyme in which the enzyme is immobilized on the microbial cells, it can be repeatedly used after being used for the enzymatic reaction and then easily recovered by centrifugation or filtration. It can also be used as an immobilized enzyme which is further immobilized on a carrier. Therefore, the enzymatic reaction can be performed at a much lower cost than using β-galactosidase taken out by destroying cells,
Further, there is an advantage that the reaction product can be easily purified.

Claims (1)

(57)【特許請求の範囲】(57) [Claims] 【請求項1】細胞内にβ−ガラクトシダーゼを生産する
微生物を培養し、得られた菌体を、ショ糖脂肪酸エステ
ルもしくはリゾホスホリピドからなるHLB値16以上の界
面活性剤またはキラサヤポニンで処理することを特徴と
するβ−ガラクトシダーゼ菌体酵素の製造法。
1. A method of culturing a β-galactosidase-producing microorganism in a cell, and treating the resulting cell body with a surfactant having an HLB value of 16 or more composed of sucrose fatty acid ester or lysophospholipid or Kirasa yaponin. The method for producing a β-galactosidase microbial cell enzyme.
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