JP2673688B2 - Plasma protein assay - Google Patents

Plasma protein assay

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JP2673688B2
JP2673688B2 JP62234490A JP23449087A JP2673688B2 JP 2673688 B2 JP2673688 B2 JP 2673688B2 JP 62234490 A JP62234490 A JP 62234490A JP 23449087 A JP23449087 A JP 23449087A JP 2673688 B2 JP2673688 B2 JP 2673688B2
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protein
plasma
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thrombin
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研二 松本
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【発明の詳細な説明】 (産業上の利用分野) 本発明はプロテインC(以下PCと略す)の定量法に関
する。更に詳しくは、血漿よりPCを分離することなく、
直接血漿中のPC活性を酵素学的に測定することによるPC
の定量法に関する。 (従来の技術) PCはビタミンK依存性血漿蛋白質の一つであり、Ca2+
イオンの存在下でトロンビン−トロンボモジュリン複合
体によって活性型プロテインC(以下PCaと略す)に活
性化される。PCaは凝固系補酵素のV因子及びVIII因子
を選択的に失活化し強力な抗凝固作用を示すとともに、
血管プラスミノーゲンアクチベーターを遊離させ線溶促
進作用を示す血漿蛋白質の一つとして注目されている。 血中PC値は、汎発性血管内凝固症候群(DIC)や肝硬
変、慢性肝炎などの肝疾患において低下することが知ら
れ、又、多発性血栓症を呈するPC欠損症も近年報告され
ている。従って、上記のPC欠損症やDIC、肝疾患などを
診断するうえで、又、これら疾患の早期発見などのため
に、正確で簡便なPC定量法が要求されている。 現在、いくつかのPC定量法が用いられており、その一
つとして酵素学的活性測定法が挙げられる。 この測定法はPCaに特異的な合成ペプチド基質を用い
る方法である。しかし、血液中にはPCインヒビターが存
在し、又、アンチトロンビンIII等の阻害剤で阻害され
ずに合成基質に作用する妨害物質が存在するため、現在
の合成基質を用いて直接血漿中のPC活性を定量するのは
困難である。 従って、抗体カラムや吸着剤などを用いて血漿からPC
を分離するという前処理が必要である。しかし、これら
の方法では使用する血漿もある程度多量に要求されるう
え、時間と手間がかかり、多くの試料を迅速に処理する
場合に不利である。さらに、吸着剤を用いて前処理をす
る操作では、PCの回収率に欠点があり、又、抗体カラム
を用いた場合は回収率はよいが該カラムは非常に高価で
あるという問題点がある。 合成基質を用いる他にも、PCの抗凝固作用を利用する
生物学的活性測定法がある。この方法はPCをヘビ毒で活
性化した後、血漿凝固系に加え、その凝固時間延長作用
を測定するものであるが、感度が高い方法とは言い難
い。 又、免疫学的にPCを定量する方法がある。この方法は
PCに対するポリクローナル又はモノクロール抗体を用い
た抗原抗体反応によってPCを量的に定量するもので、ラ
ジオイムノアッセイ法、エンザイムイムノアッセイ法、
Laurell法などが実施されている。免疫学的定量法は量
的には定量できるが、用いる抗体は非常に高価であり、
操作時間も長く、又、PCに正常の活性があるかどうかは
本法では確認できない。 本発明者らは、上述したような従来のPC定量法の問題
点を解決すべく鋭意研究を行った結果、血漿からPCを分
離する前処理もなく、操作が簡便で短時間に多量の試料
を測定できる酵素学的活性測定法を見出し本発明を完成
した。 (発明が解決しようとする問題点) 本発明の目的は、新規で有用なPC定量法を提供するこ
とにある。 (問題点を解決するための手段) 本発明は、合成ペプチド基質を用いて酵素学的にPC活
性を測定する方法において、該基質に対する妨害物質の
作用を特異的に阻害することを特徴とするPCの定量法で
ある。即ち、本発明は合成ペプチド基質に作用するPCa
以外の血漿中の妨害物質を特異的に阻害することによっ
て、血漿よりPCを分離することなく直接血漿中のPCaの
活性を測定可能にした。 本発明PC定量法は以下のように行うことができる。 血漿を希釈し、PC活性化物質を加えることによってPC
を活性化する。 PC活性化完了後、合成基質に作用するPCa以外の血漿
中の妨害物質に対する阻害剤を加える。 合成ペプチド基質を加え反応させ、PCaによる分解産
物の発色又は螢光を測定することによってPCの定量を行
う。 上述した本発明定量法をさらに詳細に説明する。 1)血漿の希釈率 血漿中にはPCaを阻害するPCインヒビターが存在する
ため、何らかの処置を施さない限りPCa活性を正確には
測定できない。本発明定量法では、約10倍以上に血漿を
希釈することによってPCインヒビターの影響を無視する
ことができた。 尚、血漿は通常の方法により調製したものを使用する
ことができ、例えばクエン酸存在下に採血した後遠心分
離して得たクエン酸加血漿等を用いることができる。 2)緩衝液 血漿を希釈する緩衝液としては、トリス塩酸等の緩衝
剤により生体内条件に近いpHに調製したものを用いるの
が好ましい。通常に使用される緩衝液と同様、生体内条
件に合わせるために、塩化ナトリウム等の塩類を加えて
もよい。 又、血漿中の種々のプロテアーゼの作用を抑えるため
に、PCaの活性に影響を及ぼさない程度に大豆トリプシ
ンインヒビター(SBTI)、アプロチニン等のプロテアー
ゼインヒビターを加えることもできる。さらに、最終反
応停止時の弱酸性下で不溶の蛋白質の析出を防ぐため
に、ウシ血清アルブミン(BSA)等の安定化剤を加えて
もよい。 3)PC活性化物質 PC活性化物質としては、トロンビン−トロンボモジュ
リン複合体、ヘビ毒等が挙げられるが、本来の生理条件
を考慮すると、トロンビン−トロンボモジュリン複合体
が好ましい。トロンビンとトロンボモジュリンは複合体
としてから反応系に加えてもよいし、それぞれ個々に加
えることもできる。 又、PCの活性化にはCa2+イオンが必要とされているの
で、PC活性化の反応系において至適濃度となるように、
Ca2+イオンを血漿希釈用緩衝液中やPC活性化物質の溶液
中に加えておくのが好ましい。 4)妨害物質の阻害剤 PCを活性化するために加えたトロンビンはPC活性を測
定するのに用いる合成基質に対して作用し測定上の妨害
となるので、PCを活性化した後、トロンビンに対する阻
害剤を加える必要がある。この阻害剤はトロンビンを阻
害するけれどもPCaには無影響であるものが利用でき、
アンチトロンビンIIIなどを用いることができる。アン
チトロンビンIIIの阻害反応はヘパリンの存在により著
しく促進されるため、ヘパリンを共存させるのが実際的
で好ましい。 しかし、アンチトロンビンIIIのみではその他の妨害
物質の活性を抑えることはできない。事実、アンチトロ
ンビンIII−ヘパリンを加えるのみで、合成基質を用い
てPC活性を測定した結果、免疫学的定量法によるPC量に
比して、その数百倍の活性が見かけ上の活性量として測
定された。このようにアンチトロンビンIIIのみを添加
してPC活性を測定する場合は、PC以外に合成基質に作用
する物質が存在し正確にPCaの活性を測定できないとい
う問題点があるため、従来はカラム等でPCを分離するな
どの煩雑な処理が必要であった。 本発明者は、PC活性を測定するために用いる合成基質
に対して作用する妨害物質の活性を抑制する方法を種々
検討した結果、アンチトロンビンIIIのように分子量の
大きい物質でなく、低分子量のトロンビン阻害剤を用い
ることによって、トロンビン以外の妨害物質の活性が抑
制されることを明らかにし、PCの分離精製等の操作を必
要とせずにPCaの活性のみを測定することに成功した。 本発明において用いることができる低分子量トロンビ
ン阻害剤は、PCaの活性に影響しないものを使用するの
が好ましく、分子量2,000以下のトロンビン阻害剤、好
ましくは分子量1,000以下の物質、例えば、(2R,4R)−
1−〔N2−(3−メチル−1,2,3,4−テトラヒドロ−8
−キノリンスルホニル)−L−アルギニル〕−4−メチ
ル−2−ピペリジンカルボン酸(化合物1)、ダンシル
アルギニン N−(3−エチル−1,5−ペンタンジイ
ル)アミド(化合物2)等のN−アリールスルホニル−
L−アルギニン誘導体〔J.Med.Chem.,23,827−836,同12
93−1299,(1980)等〕、N−(2−ナフチルルホニル
グリシル)−4−アミジノフェニルアラニンペペリジノ
(化合物3)等のN−アリールスルホニルグリシル−ア
ミジノフェニルアラニン誘導体(Thromb.Res.,36,No.5,
457−165(1984)等〕などが挙げられる。 5)合成ペプチド基質 PC活性を測定する合成ペプチド基質としては、従来の
酵素学的活性測定法で使用されているものを使用するこ
とができ、例えば、pGlu−Pro−Arg−pNA(S−2366:ピ
ログルタミル−プロリル−アルギニル−p−ニトロアニ
リド)、D−Val−Leu−Arg−pNA(S−2266:D−バリル
−ロイシル−アルギニル−p−ニトロアニリド)、D−
Phe−Pip−Arg−pNA(S−2238:D−フェニルアラニル−
ピペリジノ−アルギニル−p−ニトロアニリド)等の発
色合成基質やBoc−Leu−Ser−Thr−Arg−MCA(3112−V:
t−ブトキシカルボニルロイシル−セリル−トレオニル
−アルギニル−4−メチルクマリンアミド)等の螢光合
成基質が挙げられる。 上記の合成ペプチド基質はPCaによって分解され発色
又は螢光物質が産生されるため、これら分解産物を比色
定量又は螢光定量することによってPC活性が定量的に求
められる。 (実施例) 〜操作〜 ヒト血漿 10μ 緩衝液 140μ トロンビン−トロンボモジュリン複合体 50μ ・ヒト血漿:ヒトクエン酸血漿 ・緩衝液:50mMトリス塩酸(pH8.0)、0.1M塩化ナトリウ
ム、1mM塩化カルシウム、25U/mlアプロチニン ・トロンビン−トロンボモジュリン複合体:20U/mlトロ
ンビン、1.7n mol/mlトロンボモジュリン 上記組成の反応溶液を37℃で30分間反応させた。 〜操作〜 ・25U/mlアンチトロンビンIII ・100U/mlヘパリン ・100μg/ml化合物1 上記組成の混合溶液100μを操作の反応溶液に加
え、37℃で10分間反応させた。 〜操作〜 操作の反応液に、合成基質S−2366の3mM溶液を100
μ加え、37℃で20分間反応後、100μの50%酢酸を
加えて反応を停止させ、450nmで比色定量した。 正常ヒトプール血漿及びPC除去血漿を用いて本実施例
の希釈検量線を作成し、これを第1図に示した。 第1図より明らかなように、検量線は0から100%の
範囲で良好な直線性を示しており、本発明PC定量法は優
れた定量性を有するものである。 次に、本発明定量法について種々の条件を検討した結
果を示す。尚、基本となる操作方法は前述の実施例の方
法に従って行った。 血漿の希釈率 PCインヒビターの影響と血漿の希釈率を調べた結果、
本発明定量法では約10倍以上に血漿を希釈することによ
って、希釈率とPC活性の間に直線的な関係が得られた。
これより低い希釈率になるに従ってPCインヒビターの作
用がより発現してくるため、PC活性が抑えられていき直
線関係よりずれが生じてくるため好ましくない。 従って、本発明実施例においては血漿10μに緩衝液
140μを加え15倍に希釈して用いた。 Ca2+イオン濃度 PC活性化時のCa2+イオンの至適濃度を検討した結果、
Ca2+イオンは0.1乃至4mMが至適濃度であり、0.5乃至2.5
mMがより好ましい。 トロンビン添加量 本実施例の反応系においては1U以上のトロンビンを添
加することによってPCをほぼ100%活性化することがで
きた。PC活性化後に加えるアンチトロンビンIII−ヘパ
リン量をなるべく少なくするために、本実施例ではトロ
ンビン添加量を1Uとしている。 トロンボモジュリン添加量 トロンボモジュリンの添加量を種々変えて行った結
果、本実施例においては0.04n mol以上の添加量でPCの
活性化が十分になされ、0.06乃至0.16n molで行うのが
好ましい。 化合物1添加量 本実施例の操作において加える混合溶液中の化合物
1の濃度を種々変えて検討した結果、混合溶液中の化合
物1の濃度が約75μg/ml以上で、合成基質S−2366に作
用するPCa以外の妨害物質をほとんど影響がないまでに
阻害することができた。 又、分離精製したPCを用いて化合物1のPCaに対する
阻害作用を調べた結果、操作の混合溶液中150μg/ml
以上ではPC活性が阻害されてくるため、本実施例におい
てはそれ以下の濃度で用いるのが好ましい。 上記化合物1の代わりに化合物2を用いて行った結
果、化合物1と同じ濃度の溶液を用いて本発明を実施で
きた。又、化合物3の場合は、溶液の濃度が約25μg/ml
で、妨害物質の活性をほぼ抑えることが可能であった。 以上の実施例により、本発明定量法を詳細に説明した
が、本法において特徴とする必須要件より、例えば次の
ようなプロテインC活性測定用キットを作成することが
できる。 〜キット構成成分〜 a)プロテインC活性化物質 b)アンチトロンビンIII c)低分子量トロンビン阻害剤 d)合成ペプチド基質 さらに具体的なキットの一例を示す。各々1バイアル
中の量を示す。 a)トロンビン−トロンボモジュリン複合体(凍結乾燥
品) 10U/mlトロンビン−0.85n mol/mlトロンボモジュリン ・4mlの蒸留水で溶かして使用。 b)アンチトロンビンIII−ヘパリン複合体(凍結乾燥
品) 25U/mlアンチトロンビンIII−100U/mlヘパリン ・下記dの溶液4mlで溶かして使用。 c)化合物1水溶液 5ml(100μg/ml) d)合成基質 S−2366(凍結乾燥品) ・4mlの蒸留水で溶かして使用(3mM水溶液)。 上記の構成成分によるキットに、例えば、血漿希釈用
緩衝液50ml(50mMトリス塩酸(pH8.0)−0.1M塩化ナト
リウム−1mM塩化カルシウム−0.1%BSA−0.1mg/mlSBT
I)や反応停止剤21ml(2%クエン酸溶液)などを加え
てもよい。 本キットの操作は次のように簡単且つ短時間で行うこ
とができる。 被検血漿を血漿希釈用緩衝液で21倍に希釈する。この
液を56℃5分間インキュベートし、生成したフィブリン
を遠心して除去した後、200μを分取する。 トロンビン−トロンボモジュリン複合体溶液を100μ
加え、37℃で30分間インキュベートする。 アンチトロンビンIII−ヘパリン−化合物1の混合溶
液100μを加え、37℃で5分間インキュベートする。 S−2366溶液100μを加え、37℃で30分間インキュ
ベートする。 2%クエン酸溶液500μを加え、405nmにおける吸光
度を測定する。 前記1セットのキットで約40検体を測定できるが、1
バイアル当りの成分含有量や血漿の希釈率などを変えた
り、系ぜいたいのスケールを適宜変化させることによ
り、目的に適した種々のキットを作成することが可能で
ある。 (作用) 本発明定量法と免疫学的定量法〔EIA法:J.C.Giddings
et al,Brit.J.Haematol.,52,495−502(1982)〕を用
いて、健常人、肝疾患患者及びDIC患者の血漿中のPCを
定量して比較した結果を第2図に示す。 尚、本発明定量法におけるPC活性は第1図の検量線を
用いて求め、百分率で表した。 第2図より、本発明定量法によるPC活性と免疫学的定
量法によるPC抗原量の間には、良好な相関関係があるこ
とが明らかに示される。又、この相関性は健常人だけで
なく、血漿PC含量が低いとされる肝疾患患者やDIC患者
の場合にも良く適合している。 (効果) 本発明PC定量法により、従来の酵素学的活性測定法で
は必須であり、非常に手間のかかるPCの分離精製という
前処理をすることなく、血漿そのものを用いて行うこと
が可能となった。 上述の試験結果より明らかなように、本発明定量法
は、わずか10μの血漿を試料として用い、短時間の操
作により該血漿中のPCを定量することができ、操作も非
常に簡単なものである。又、免疫学的定量法との比較試
験において、本法により定量されたPC活性はPC抗原量と
良好な相関関係を有することから明らかなように、本発
明方法は非常に定量性に優れていることがわかる。 このように、従来の定量法に比べ、本発明PC定量法は
非常に簡便、正確かつ迅速なものであり、特に多量の試
料を処理するのに有用である。従って、本発明定量法は
キット化するのも容易であり、PC欠損症、DIC、肝疾患
などの診断に使用する上で非常に有用性の高いPC定量法
である。
TECHNICAL FIELD The present invention relates to a method for quantifying protein C (hereinafter abbreviated as PC). More specifically, without separating PC from plasma,
PC directly by enzymatically measuring PC activity in plasma
The quantification method. (Prior Art) PC is one of vitamin K-dependent plasma proteins, and Ca 2+
In the presence of ions, activated protein C (hereinafter abbreviated as PCa) is activated by the thrombin-thrombomodulin complex. PCa selectively inactivates factor V and factor VIII of coagulation system coenzyme and shows a strong anticoagulant action, and
It is attracting attention as one of the plasma proteins that release vascular plasminogen activator and have a fibrinolytic promoting action. Blood PC level is known to decrease in liver diseases such as generalized intravascular coagulation (DIC), liver cirrhosis, and chronic hepatitis, and PC deficiency with multiple thrombosis has recently been reported. . Therefore, in diagnosing the above-mentioned PC deficiency, DIC, liver disease and the like, and for early detection of these diseases, an accurate and simple PC quantitative method is required. At present, several PC quantification methods are used, and one of them is the enzymatic activity measurement method. This assay method uses a synthetic peptide substrate specific for PCa. However, there are PC inhibitors in blood and interfering substances that act on synthetic substrates without being inhibited by inhibitors such as antithrombin III. The activity is difficult to quantify. Therefore, using plasma such as antibody column or adsorbent,
A pre-treatment of separating is required. However, these methods require a large amount of plasma to be used, are time-consuming and troublesome, and are disadvantageous when rapidly processing a large number of samples. Furthermore, the pretreatment using an adsorbent has a drawback in the recovery rate of PC, and when an antibody column is used, the recovery rate is good, but the column is very expensive. . In addition to using a synthetic substrate, there is a biological activity measurement method that utilizes the anticoagulant effect of PC. This method involves activating PC with snake venom and then adding it to the plasma coagulation system to measure its coagulation time-prolonging action, but it cannot be said to be a highly sensitive method. There is also an immunological method for quantifying PC. This method is
A method for quantitatively quantifying PC by an antigen-antibody reaction using a polyclonal or monoclonal antibody against PC, a radioimmunoassay method, an enzyme immunoassay method,
The Laurell method etc. are implemented. Although the immunological quantification method can be quantitatively quantified, the antibody used is very expensive,
The operation time is long, and it cannot be confirmed by this method whether the PC has normal activity. As a result of intensive research to solve the problems of the conventional PC quantification method as described above, the present inventors have no pretreatment for separating PC from plasma, are easy to operate, and can handle a large amount of sample in a short time. The present invention has been completed by finding out a method for measuring an enzymatic activity capable of measuring the. (Problems to be Solved by the Invention) An object of the present invention is to provide a novel and useful PC assay method. (Means for Solving the Problems) The present invention is characterized by specifically inhibiting the action of an interfering substance on a substrate in a method of enzymatically measuring PC activity using a synthetic peptide substrate. This is a quantitative method for PC. That is, the present invention relates to PCa acting on a synthetic peptide substrate.
By specifically inhibiting the interfering substances in plasma other than PC, the activity of PCa in plasma could be directly measured without separating PC from plasma. The PC quantification method of the present invention can be performed as follows. PC by diluting plasma and adding PC activator
Activate. After completion of PC activation, an inhibitor against an interfering substance in plasma other than PCa that acts on the synthetic substrate is added. PC is quantified by adding a synthetic peptide substrate and reacting, and measuring the color development or fluorescence of the degradation product by PCa. The quantification method of the present invention described above will be described in more detail. 1) Plasma Dilution Ratio Since there are PC inhibitors that inhibit PCa in plasma, PCa activity cannot be accurately measured without any treatment. In the quantification method of the present invention, the effect of the PC inhibitor could be ignored by diluting the plasma about 10 times or more. The plasma may be prepared by a conventional method, and for example, citrated plasma obtained by collecting blood in the presence of citric acid and then centrifuging may be used. 2) Buffer solution As a buffer solution for diluting plasma, it is preferable to use a buffer solution prepared by a buffering agent such as Tris-hydrochloric acid to have a pH close to in-vivo conditions. Similar to the commonly used buffer, salts such as sodium chloride may be added in order to match the in vivo conditions. In order to suppress the action of various proteases in plasma, protease inhibitors such as soybean trypsin inhibitor (SBTI) and aprotinin can be added to the extent that PCa activity is not affected. Further, a stabilizer such as bovine serum albumin (BSA) may be added to prevent precipitation of insoluble protein under weak acidity when the final reaction is stopped. 3) PC Activator Examples of the PC activator include thrombin-thrombomodulin complex and snake venom. Considering the original physiological conditions, the thrombin-thrombomodulin complex is preferable. Thrombin and thrombomodulin may be added to the reaction system after forming a complex, or may be added individually. In addition, since Ca 2+ ions are required for activation of PC, the optimum concentration should be set in the reaction system for PC activation.
Ca 2+ ions are preferably added to the plasma dilution buffer or the solution of the PC activator. 4) Inhibitors of interfering substances Thrombin added to activate PC acts on the synthetic substrate used to measure PC activity and interferes with the measurement. Inhibitors need to be added. Although this inhibitor inhibits thrombin, it is available that has no effect on PCa,
Antithrombin III or the like can be used. Since the antithrombin III inhibitory reaction is significantly promoted by the presence of heparin, coexistence of heparin is practical and preferable. However, antithrombin III alone cannot suppress the activity of other interfering substances. In fact, as a result of measuring the PC activity using a synthetic substrate only by adding antithrombin III-heparin, the activity was several hundred times that of the PC amount by the immunological assay, Was measured. As described above, when the PC activity is measured by adding only antithrombin III, there is a problem that the activity of PCa cannot be accurately measured due to the existence of a substance acting on the synthetic substrate other than PC, and thus, conventionally, the column etc. It required complicated processing such as separating the PC at. The present inventor, as a result of various studies of methods for suppressing the activity of interfering substances acting on a synthetic substrate used for measuring PC activity, a substance having a low molecular weight, not a substance having a large molecular weight such as antithrombin III, By using a thrombin inhibitor, it was clarified that the activity of interfering substances other than thrombin was suppressed, and we succeeded in measuring only PCa activity without the need for operations such as separation and purification of PC. Low molecular weight thrombin inhibitors that can be used in the present invention, it is preferable to use those that do not affect the activity of PCa, a thrombin inhibitor having a molecular weight of 2,000 or less, preferably a substance having a molecular weight of 1,000 or less, for example, (2R, 4R ) −
1- [N 2 - (3- methyl-1,2,3,4-tetrahydro -8
-Quinolinesulfonyl) -L-arginyl] -4-methyl-2-piperidinecarboxylic acid (Compound 1), dansylarginine N- (3-ethyl-1,5-pentanediyl) amide (Compound 2) and other N-arylsulfonyls −
L-arginine derivative [J. Med. Chem., 23, 827-836, 12
93-1299, (1980), etc.], N- (2-naphthylulphonylglycyl) -4-amidinophenylalanine peperidino (Compound 3) and other N-arylsulfonylglycyl-amidinophenylalanine derivatives (Thromb. Res. , 36, No.5,
457-165 (1984) etc.] and the like. 5) Synthetic peptide substrate As a synthetic peptide substrate for measuring PC activity, those used in conventional enzymatic activity measuring methods can be used. For example, pGlu-Pro-Arg-pNA (S-2366). : Pyroglutamyl-prolyl-arginyl-p-nitroanilide), D-Val-Leu-Arg-pNA (S-2266: D-valyl-leucyl-arginyl-p-nitroanilide), D-
Phe-Pip-Arg-pNA (S-2238: D-phenylalanyl-
Colorimetric synthetic substrates such as piperidino-arginyl-p-nitroanilide) and Boc-Leu-Ser-Thr-Arg-MCA (3112-V:
t-butoxycarbonylleucyl-seryl-threonyl-arginyl-4-methylcoumarinamide) and the like. Since the above-mentioned synthetic peptide substrate is decomposed by PCa to produce a chromogenic or fluorescent substance, PC activity can be quantitatively determined by colorimetric or fluorescent quantification of these degradation products. (Example) -Operation- Human plasma 10μ buffer 140μ Thrombin-thrombomodulin complex 50μ-Human plasma: human citrate plasma-Buffer: 50mM Tris-HCl (pH8.0), 0.1M sodium chloride, 1mM calcium chloride, 25U / ml aprotinin / thrombin-thrombomodulin complex: 20 U / ml thrombin, 1.7 nmol / ml thrombomodulin The reaction solution having the above composition was reacted at 37 ° C for 30 minutes. -Operation- 25 U / ml antithrombin III 100 U / ml heparin 100 μg / ml Compound 1 100 μl of the mixed solution having the above composition was added to the reaction solution of the operation and reacted at 37 ° C. for 10 minutes. -Operation- 100 mM 3 mM solution of the synthetic substrate S-2366 is added to the reaction solution of the operation.
After the reaction was carried out at 37 ° C. for 20 minutes, 100 μ of 50% acetic acid was added to stop the reaction, and colorimetry was performed at 450 nm. A dilution calibration curve of this example was prepared using normal human pool plasma and PC-depleted plasma, and this is shown in FIG. As is clear from FIG. 1, the calibration curve shows a good linearity in the range of 0 to 100%, and the PC quantification method of the present invention has excellent quantification. Next, the results of examining various conditions for the quantification method of the present invention will be shown. The basic operation method was performed according to the method of the above-described embodiment. Plasma Dilution Rate As a result of examining the effect of PC inhibitor and plasma dilution rate,
In the assay method of the present invention, a linear relationship was obtained between the dilution rate and the PC activity by diluting plasma approximately 10 times or more.
As the dilution rate becomes lower than this, the action of the PC inhibitor is further expressed, and the PC activity is suppressed, resulting in a shift from the linear relationship, which is not preferable. Therefore, in the example of the present invention, a buffer solution was added to plasma 10 μm.
140 μm was added and diluted 15-fold for use. Ca 2+ ion concentration As a result of examining the optimum concentration of Ca 2+ ions during PC activation,
Ca 2+ ion has an optimal concentration of 0.1 to 4 mM, 0.5 to 2.5
mM is more preferred. Addition amount of thrombin In the reaction system of this example, PC was able to be activated almost 100% by adding 1 U or more of thrombin. In order to reduce the amount of antithrombin III-heparin added after PC activation as much as possible, the amount of thrombin added is 1 U in this example. Thrombomodulin addition amount As a result of variously changing the addition amount of thrombomodulin, in this example, PC activation was sufficiently performed with an addition amount of 0.04 nmol or more, and it is preferable to perform it with 0.06 to 0.16 nmol. Addition amount of compound 1 As a result of examining variously changing the concentration of compound 1 in the mixed solution added in the operation of this example, when the concentration of compound 1 in the mixed solution was about 75 μg / ml or more, it acted on the synthetic substrate S-2366. It was able to inhibit the interfering substances other than PCa that had a significant effect. In addition, the inhibitory effect of Compound 1 on PCa was examined using separated and purified PC, and it was found that 150 μg / ml in the mixed solution of the operation.
Since the PC activity is inhibited by the above, it is preferable to use it at a concentration lower than that in this example. As a result of using Compound 2 instead of Compound 1, the present invention could be carried out using a solution having the same concentration as that of Compound 1. In the case of Compound 3, the solution concentration is about 25 μg / ml.
It was possible to suppress the activity of interfering substances. Although the quantification method of the present invention has been described in detail by the above examples, for example, the following kit for protein C activity measurement can be prepared based on the essential requirements characterized by this method. -Kit Components-a) Protein C Activator b) Antithrombin III c) Low Molecular Weight Thrombin Inhibitor d) Synthetic Peptide Substrate A more specific example of the kit is shown. The amounts in each vial are shown. a) Thrombin-thrombomodulin complex (freeze-dried product) 10U / ml thrombin-0.85n mol / ml thrombomodulin-Dissolved in 4ml of distilled water for use. b) Antithrombin III-heparin complex (lyophilized product) 25 U / ml antithrombin III-100 U / ml heparin. c) Compound 1 aqueous solution 5 ml (100 μg / ml) d) Synthetic substrate S-2366 (freeze-dried product) -Dissolved in 4 ml of distilled water for use (3 mM aqueous solution). The kit comprising the above-mentioned components includes, for example, 50 ml of a buffer for plasma dilution (50 mM Tris-HCl (pH 8.0) -0.1 M sodium chloride-1 mM calcium chloride-0.1% BSA-0.1 mg / ml SBT.
I) or a reaction terminator 21 ml (2% citric acid solution) may be added. The operation of this kit can be performed easily and in a short time as follows. The test plasma is diluted 21-fold with the plasma dilution buffer. This solution is incubated at 56 ° C. for 5 minutes, the produced fibrin is removed by centrifugation, and 200 μm is collected. 100 μm of thrombin-thrombomodulin complex solution
In addition, incubate at 37 ° C for 30 minutes. Add 100 μl of the mixed solution of antithrombin III-heparin-compound 1 and incubate at 37 ° C. for 5 minutes. Add 100 µ of S-2366 solution and incubate at 37 ° C for 30 minutes. Add 500 μ of 2% citric acid solution and measure the absorbance at 405 nm. About 40 samples can be measured with the kit of 1
Various kits suitable for the purpose can be prepared by changing the content of components per vial, the dilution rate of plasma, etc., or by appropriately changing the scale of the system. (Effect) Quantitative method of the present invention and immunological quantification method [EIA method: JC Giddings
et al, Brit. J. Haematol., 52, 495-502 (1982)] is used to quantify and compare the PC in plasma of healthy subjects, liver disease patients and DIC patients. The PC activity in the assay method of the present invention was determined using the calibration curve in FIG. 1 and expressed as a percentage. From FIG. 2, it is clearly shown that there is a good correlation between the PC activity by the assay method of the present invention and the amount of PC antigen by the immunological assay method. Moreover, this correlation is well suited not only for healthy individuals but also for patients with liver diseases and DIC patients, who are considered to have low plasma PC content. (Effect) According to the PC assay method of the present invention, it is possible to perform the assay using plasma itself without the pretreatment of separation and purification of PC, which is indispensable in the conventional method for measuring enzymatic activity. became. As is clear from the above-mentioned test results, the assay method of the present invention uses only 10μ of plasma as a sample, and it is possible to quantify PC in the plasma by a short-time operation, and the operation is very simple. is there. Further, in the comparison test with the immunological quantification method, it is clear that the PC activity quantified by this method has a good correlation with the amount of PC antigen, and thus the method of the present invention is extremely excellent in quantification. You can see that Thus, the PC quantification method of the present invention is much simpler, more accurate, and faster than the conventional quantification methods, and is particularly useful for treating a large amount of sample. Therefore, the assay method of the present invention is easy to prepare as a kit, and is a highly useful assay method for PC for diagnosis of PC deficiency, DIC, liver disease and the like.

【図面の簡単な説明】 第1図は本発明実施例に従って作成した検量線であり、
第2図は本発明定量法と免疫学的定量法(EIA法)の相
関性を調べた結果である。
BRIEF DESCRIPTION OF THE DRAWINGS FIG. 1 is a calibration curve prepared according to an example of the present invention,
FIG. 2 shows the results of examining the correlation between the assay method of the present invention and the immunoassay method (EIA method).

Claims (1)

(57)【特許請求の範囲】 1.トロンビン及びトロンボモジュリンにより血漿中の
プロテインCを活性化させ、合成ペプチド基質を用いて
プロテインC活性を測定する方法において、該基質に対
する妨害物質の作用を特異的に阻害するために、アンチ
トロンビンIII及び低分子量のトロンビン阻害剤を用い
るプロテインCの定量法。 2.トロンビン及びトロンボモジュリンを加えて血漿中
のプロテインCを活性化させ、次いでアンチトロンビン
III及び低分子量のトロンビン阻害剤を加えて合成ペプ
チド基質に対する妨害物質の作用を特異的に阻害した後
に合成ペプチド基質を用いてプロテインC活性を測定す
る特許請求の範囲第1項記載のプロテインCの定量法。 3.低分子量のトロンビン阻害剤がN−アリールスルホ
ニル−L−アルギニン誘導体である特許請求の範囲第1
項又は第2項記載のプロテインCの定量法。 4.低分子量のトロンビン阻害剤が(2R,4R)−1−〔N
2−(3−メチル−1,2,3,4−テトラヒドロ−8−キノリ
ンスルホニル)−L−アルギニル〕−4−メチル−2−
ピペリジンカルボン酸である特許請求の範囲第3項記載
のプロテインCの定量法。 5.低分子量のトロンビン阻害剤がダンシルアルギニン
N−(3−エチル−1,5−ペンタンジイル)アミドで
ある特許請求の範囲第3項記載のプロテインCの定量
法。 6.低分子量のトロンビン阻害剤がN−アリールスルホ
ニルグリシル−アミジノフェニルアラニン誘導体である
特許請求の範囲第1項又は第2項記載のプロテインCの
定量法。 7.低分子量のトロンビン阻害剤がN−(2−ナフチル
ルホニルグリシル)−4−アミジノフェニルアラニンペ
ペリジノである特許請求の範囲第6項記載のプロテイン
Cの定量法。 8.アンチトロンビンIIIと共にヘパリンを用いる特許
請求の範囲第1項乃至第7項のいずれか一項に記載のプ
ロテインCの定量法。
(57) [Claims] In a method for activating protein C in plasma by thrombin and thrombomodulin and measuring protein C activity using a synthetic peptide substrate, antithrombin III and low A method for quantifying protein C using a molecular weight thrombin inhibitor. 2. Thrombin and thrombomodulin are added to activate protein C in plasma and then antithrombin
The protein C activity according to claim 1, wherein the activity of the interfering substance on the synthetic peptide substrate is specifically inhibited by adding III and a low molecular weight thrombin inhibitor, and then the protein C activity is measured using the synthetic peptide substrate. Quantitative method. 3. The low molecular weight thrombin inhibitor is an N-arylsulfonyl-L-arginine derivative.
Item 2. A method for quantifying protein C according to item 2 or item 2. 4. Low molecular weight thrombin inhibitors are (2R, 4R) -1- [N
2- (3-Methyl-1,2,3,4-tetrahydro-8-quinolinesulfonyl) -L-arginyl] -4-methyl-2-
The method for quantifying protein C according to claim 3, which is piperidinecarboxylic acid. 5. The method for quantifying protein C according to claim 3, wherein the low-molecular weight thrombin inhibitor is dansylarginine N- (3-ethyl-1,5-pentanediyl) amide. 6. The method for quantifying protein C according to claim 1 or 2, wherein the low molecular weight thrombin inhibitor is an N-arylsulfonylglycyl-amidinophenylalanine derivative. 7. The method for quantifying protein C according to claim 6, wherein the low-molecular-weight thrombin inhibitor is N- (2-naphthylulphonylglycyl) -4-amidinophenylalanine peperidino. 8. The method for quantifying protein C according to any one of claims 1 to 7, wherein heparin is used together with antithrombin III.
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