JP2632339B2 - How to detect potato and potato viroid group - Google Patents
How to detect potato and potato viroid groupInfo
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Description
【発明の詳細な説明】 〔産業上の利用分野〕 本発明は特定の塩基配列を有する合成ヌクレオチドプ
ローブを用いた、ジャガイモやせいも病ウイロイド(以
下PSTVという)グループに属するウイロイドの検出法に
関する。Description: TECHNICAL FIELD The present invention relates to a method for detecting viroids belonging to the potato and bursal viroid (hereinafter referred to as PSTV) groups using a synthetic nucleotide probe having a specific base sequence.
ウイロイドは、一本鎖環状RNA分子であり、植物に感
染すると萎縮、成長阻害、奇形等さまざまな病徴を引き
起こす病原体である。PSTVもそのひとつでこれに感染す
ると、塊茎が紡錘状になったりひび割れが生じたり、収
量が低下し、その外観による損害もはなはだ甚大であ
る。Viroid is a single-stranded cyclic RNA molecule, and is a pathogen that causes various symptoms such as atrophy, growth inhibition, and malformation when infected to plants. One of these is PSTV, which can cause spindles and cracks in tubers, reduce yields, and cause significant damage to its appearance.
又、そのRNAの塩基配列相同性から、PSTV(注:グル
ープではなくPSTVそのもの)、カンキツ・エクソコーテ
ィスウイロイド(以下CEVという)、キクわい化ウイロ
イド(以下CSVという)、トマト・プランタマチョウイ
ロイド(以下TPMVという)トマト頂部わい化ウイロイド
(以下TASVという)が同一グループに分類されており、
これらをPSTVグループと称している。Also, based on the nucleotide sequence homology of the RNA, PSTV (Note: PSTV itself, not a group), Citrus exocortis viroid (hereinafter referred to as CEV), kikuwa viroid (hereinafter referred to as CSV), tomato planta macho viroid ( Tomato top dwarf viroid (hereinafter referred to as TASV) is classified into the same group,
These are called PSTV groups.
一方、近年急成長をとげている茎頂培養等による無菌
苗の生産に於いては、このようなウイロイドを除いたウ
イロイドフリーの植物体を得ることが必須とされてい
る。特に実際にはウイルスフリー体とされていたものに
さえ、ウイロイドが検出されたという報告があるので注
意しなければならない(学術月報、Vol.40(1987)P29
〜P33)。On the other hand, in the production of aseptic seedlings by shoot apex culture and the like, which has been growing rapidly in recent years, it is essential to obtain viroid-free plants excluding such viroids. In particular, it should be noted that there is a report that viroid was detected even in a virus-free form (Academic Monthly, Vol. 40 (1987) P29)
~ P33).
なお、現在PSTVによる害は日本においてまだ確認され
ていないが、輸入たねイモからの感染を未然に防ぐ手段
を講じておかなくてはならない。Although the damage caused by PSTV has not yet been confirmed in Japan, measures must be taken to prevent infection from imported potatoes.
ところが、ウイロイドの場合、自己成分としてRNAだ
けからできており、蛋白質を持たないため、通常の免疫
学的検出方法が適用できず、従来、その検出には、適当
な植物を検体としてそれに被検体の汁液等を塗り付け、
検体の生育により、被検体の感染の有無を検出する生物
検定法や、被検体のRNAを抽出し、電気泳動法等による
分析で検出する方法、さらにはウイロイドの全RNAに相
補的なDNA(cDNA)をプローブとして用いる遺伝子診断
等が行われてきた。However, in the case of viroid, since it is made of only RNA as a self-component and has no protein, a conventional immunological detection method cannot be applied. Sap, etc.
Bioassays to detect the presence or absence of infection in the specimen depending on the growth of the specimen, methods for extracting RNA from the specimen and detecting it by electrophoresis, etc., and DNA complementary to total RNA of viroid ( Gene diagnosis using cDNA) as a probe has been performed.
しかしながら、現在までの生物検定法の場合、多大な
手間と時間を要し、感度も十分とはいえず、又、cDNAを
プローブとして用いる検出方法も、このcDNAそのものに
感染性があることが判明し、この方法にも安全性の点か
ら問題があった。However, bioassays to date require a great deal of time and effort, are not sufficiently sensitive, and the detection method using cDNA as a probe proves that this cDNA itself is infectious. However, this method also has a problem in terms of safety.
本発明者らは以上のような問題点を解決し、より簡便
で且つ実用的な検出法を提供すべく検討を重ねた結果、
特定の合成オリゴヌクレオチドプローブを用いる検出法
をここに確立した。The present inventors have solved the above problems, as a result of repeated studies to provide a more convenient and practical detection method,
A detection method using a particular synthetic oligonucleotide probe has now been established.
すなわち本発明は、ジャガイモやせいも病ウイロイド
グループに属するウイロイドに対し、そのRNAにおける
共通配列と相補性を有する塩基配列が5′GTTTCCCCGGGG
ATCCCT3′である合成オリゴヌクレオチドプローブを用
いることを特徴とするジャガイモやせいも病ウイロイド
類の検出方法を提供するものである。In other words, the present invention relates to a viroid belonging to the potato and bursal viroid group, wherein the nucleotide sequence having complementarity with the common sequence in the RNA is 5 ′ GTTTCCCCGGGG.
An object of the present invention is to provide a method for detecting potato and scleroderma viroids, which comprises using a synthetic oligonucleotide probe of ATCCCT 3 ' .
以下本発明を詳細に説明する。 Hereinafter, the present invention will be described in detail.
核酸は、4種の塩基(A−アデニン、G−グアニン、
C−シトシン、T−チミン(RNAのときはU−ウラシ
ル))と糖の複合体がリン酸を介して直鎖状にならぶ一
次構造を持つ。A−T(又はU)、G−Cの間に特異的
な水素結合の組合わせが形成され、この相補性をもとに
一本鎖核酸は二本鎖を形成し(ハイブリッド)安定化す
る。この親和力は二本鎖間の相補性の高さに依存し、そ
れは温度条件によりコントロールできる。本発明は以上
の点を利用し、特定の合成オリゴヌクレオチドプローブ
を用いて適切な温度条件を設定することにより、目的と
するウイロイドを容易に検出することができた。Nucleic acids have four bases (A-adenine, G-guanine,
A complex of C-cytosine, T-thymine (U-uracil in the case of RNA) and a sugar has a primary structure that is linearly arranged via phosphoric acid. A specific hydrogen bond combination is formed between AT (or U) and GC, and based on this complementarity, the single-stranded nucleic acid forms a double strand (hybrid) and stabilizes. . This affinity depends on the degree of complementarity between the two strands, which can be controlled by the temperature conditions. The present invention, utilizing the above points, was able to easily detect a target viroid by setting appropriate temperature conditions using a specific synthetic oligonucleotide probe.
PSTV、CEV、CSV、TPMV、TASVについては、そのRNAの
全塩基配列がすでに決定されており以下に示す配列であ
ることがわかっている。(図1) ここで用いる合成オリゴヌクレオチドプローブの配列
は、PSTV類に共通する塩基配列部分に相補的なもので、
15〜25塩基のものを選択した。For PSTV, CEV, CSV, TPMV, and TASV, the entire nucleotide sequence of the RNA has already been determined and is known to be the following sequence. (Fig. 1) The sequence of the synthetic oligonucleotide probe used here is complementary to the base sequence common to PSTVs.
Those with 15 to 25 bases were selected.
たとえば、PSTVグループウイロイドRNAの中央保存配
列部分(PSTVの85〜104番目)の塩基配列の一部に相補
的な18mer(5′GTTTCCCCGGGGATCCCT3′)をプローブと
して用いた場合、そのハイブリッド融解温度(Tm)が60
℃であることからハイブリダイゼーションの温度条件を
55℃として反応させると、このプローブはPSTVグループ
のウイロイドとのみ反応し、他のグループのウイロイド
(たとえばホップわい化ウイロイド(HSV))とは反応
しない。つまり、PSTVグループのウイロイドを特異的に
検出することができる。なお、ここに示した温度条件は
用いるプローブにより変更することが望ましい。For example, when an 18mer (5′GTTTCCCCGGGGATCCCT3 ′) complementary to a part of the base sequence of the central conserved sequence portion (85-104 of PSTV) of the PSTV group viroid RNA is used as a probe, its hybrid melting temperature (Tm) Is 60
° C.
When reacted at 55 ° C., this probe reacts only with viroids of the PSTV group and does not react with viroids of other groups (eg, hop dwarf viroids (HSV)). That is, the viroid of the PSTV group can be specifically detected. It is desirable that the temperature conditions shown here be changed depending on the probe used.
本発明で用いられる合成オルゴヌクレオチドは、いわ
ゆるホスホトリエステル法等の既知合成方法により合成
することができ、ハイブリダイゼーション後の検出は、
放射性同位元素(32P)標識、酵素標識、蛍光標識等い
ずれの標識法を用いてもよく、その標識位置は特に限定
されない。The synthetic orthonucleotide used in the present invention can be synthesized by a known synthesis method such as the so-called phosphotriester method, and the detection after hybridization is performed as follows.
Any labeling method such as radioisotope ( 32 P) labeling, enzyme labeling, and fluorescent labeling may be used, and the labeling position is not particularly limited.
また検出を行うにあたっての試料の調製に関しては、
植物からそのRNAを抽出する通常の方法、例えば、日本
植物病理学会報Vol.50(1984)P331〜338の方法により
行えばよい。Regarding sample preparation for detection,
It may be carried out by a usual method of extracting the RNA from a plant, for example, the method of Japanese Society for Plant Pathology Vol. 50 (1984), pages 331 to 338.
以下実施例で本発明を具体的に説明する。 Hereinafter, the present invention will be described specifically with reference to Examples.
実施例1 PSTV、CEV、CSVにそれぞれ感染したトマトから、各ウ
イロイドを含む低分子RNA分画を抽出し、4XSSC−7.5%
ホルムアミド中で60℃、15分間加熱変性処理を行い、ニ
トロセルロース紙にスポットした。スポット量は2μ
とし、原液は10μgの低分子RNAを含むように調整し
た。6XSSC−0.1%SDS−5X Denhardt's試薬中で50℃、1
時間、プレハイブリダイゼーションを行った後、6XSSC
−0.1%SDS−5X Denhardt's試薬中でハイブリダイゼー
ションを行った。プローブは、PSTVの85〜102番目の配
列に相補的な18mer(5′GTTTCCCCGGGGATCCCT3′)の
5′末端を32Pで標識したものを用いた。比活性は約108
dpm/μgDNAであった。プローブのTmが60℃であることを
考慮してハイブリダイゼーションの温度条件を55℃とし
た結果、プローブはPSTV、CEV、CSVすべてと反応し、
又、他のグループのウイロイドや健全葉からの抽出試料
とは全く反応しなかった。Example 1 A small RNA fraction containing each viroid was extracted from tomatoes infected with PSTV, CEV, and CSV, respectively, and extracted with 4XSSC-7.5%
Heat denaturation treatment was performed at 60 ° C. for 15 minutes in formamide, and spotted on nitrocellulose paper. Spot size is 2μ
The stock solution was adjusted to contain 10 μg of small RNA. 6XSSC-0.1% SDS-5X Denhardt's reagent at 50 ° C, 1
After prehybridization for 6 hours, 6XSSC
Hybridization was performed in -0.1% SDS-5X Denhardt's reagent. The probe used was labeled 5 'end with 32 P complementary 18mer (5' GTTTCCCCGGGGATCCCT 3 ') in 85 to 102-th sequence of PSTV. Specific activity is about 10 8
dpm / μg DNA. Considering that the Tm of the probe is 60 ° C, the hybridization temperature condition was set to 55 ° C, so that the probe reacted with PSTV, CEV, and CSV,
It did not react with viroids of other groups or samples extracted from healthy leaves at all.
実施例2 PSTV、CEV、CSVにそれぞれ感染したトマトから、各ウ
イロイドを含む低分子RNA分画を抽出し、4XSSC−7.5%
ホルムアミド中で60℃、15分間加熱変性処理を行い、ニ
トロセルロース紙にスポットした。スポット量は2μ
とし、原液は10μgの低分子RNAを含むように調整し
た。Example 2 A small RNA fraction containing each viroid was extracted from tomatoes infected with PSTV, CEV, and CSV, respectively, and 4XSSC-7.5%
Heat denaturation treatment was performed at 60 ° C. for 15 minutes in formamide, and spotted on nitrocellulose paper. Spot size is 2μ
The stock solution was adjusted to contain 10 μg of small RNA.
6XSSC−0.1%SDS−5XDenhardt's試薬中で50℃、1時
間、プレハイブリダイゼーションを行った後、6XSSC−
0.1%SDS−5XDenhardt's試薬中でハイブリダイゼーショ
ンを行った。プローブは、PSTVの85〜102番目の配列に
相補的な18mer(5′GTT*TCCCCGGGGATCCCT3′)で*
で示した部分のリン酸結合がビオチンで標識されている
ものを用いた。このプローブは下記のように調製した。
すなわち、保護基を持つアミノエチルホスホン酸タイプ
のT*Tダイマー(式1) を用いホスホトリエステル法によりオリゴマーを合成後
脱後保護、精製する。6XSSC-0.1% SDS-5 After performing prehybridization at 50 ° C for 1 hour in Denhardt's reagent, 6XSSC-
Hybridization was performed in 0.1% SDS-5X Denhardt's reagent. Probe is a complementary 18mer to 85-102 th sequence of PSTV (5 'GTT * TCCCCGGGGATCCCT 3 ') *
The one in which the phosphate bond in the portion indicated by is labeled with biotin was used. This probe was prepared as follows.
That is, an aminoethylphosphonic acid type T * T dimer having a protecting group (Formula 1) After the synthesis of the oligomer by the phosphotriester method using the above method, the oligomer is removed, protected and purified.
そののちBHSE(ビオチン−ヒドロキシスクシンイミド
エステル(式2)) でホスホン酸部分のアミノ基にビオインを結合させる。
(式3) ハイブリダイゼーションの温度条件は55℃とし、反応
後の検出には、ビオチンと特異的に結合するアビシンの
アルカリフォスファターゼ結合体を作用させた後、アル
カリフォスファターゼの基質となるBCIP(5−bromo−
4−chloro−3−indolylphosphate)及びNBT(nitro−
blue tetrazolium)を作用させることで得られる発色を
用いた。この場合、プローブとPSTV、CEV、CSVとの間の
反応は発色により確認されたが多種ウイロイドや健全葉
からの抽出試料との間では反応しなかった。Then BHSE (biotin-hydroxysuccinimide ester (formula 2)) Binds bioin to the amino group of the phosphonic acid moiety.
(Equation 3) The hybridization was carried out at a temperature of 55 ° C. For the detection after the reaction, an alkaline phosphatase conjugate of avidin which specifically binds to biotin was allowed to act, and BCIP (5-bromo-
4-chloro-3-indolylphosphate) and NBT (nitro-
blue tetrazolium) was used. In this case, the reaction between the probe and PSTV, CEV, and CSV was confirmed by color development, but did not react with various viroids or samples extracted from healthy leaves.
実施例3 PSTV、CEV、CSVにそれぞれ感染したトマトから、各ウ
イロイドを含む低分子RNA分画を抽出し、4XSSC−7.5%
ホルムアミド中で60℃、15分間加熱変性処理を行い、ニ
トロセルロース紙にスポットした。スポット量は2μ
とし、原液は10μgの低分子RNAを含むように調整し
た。Example 3 A small RNA fraction containing each viroid was extracted from tomatoes infected with PSTV, CEV and CSV, respectively, and 4XSSC-7.5%
Heat denaturation treatment was performed at 60 ° C. for 15 minutes in formamide, and spotted on nitrocellulose paper. Spot size is 2μ
The stock solution was adjusted to contain 10 μg of small RNA.
6XSSC−0.1%SDS−5X Denhardt's試薬中で50℃、1時
間、プレハイブリダイゼーションを行った後、6XSSC−
0.1%SDS−5X Denhardt's試薬中でハイブリダイゼーシ
ョンを行った。プローブは、PSTVの85〜102番目の配列
に相補的な18mer(5′GTT*TCCCCGGGGATCCCT3′)で
*で示した部分のリン酸結合がビオチンで標識されてい
るものを用いた。このプローブは下記のように調製し
た。すなわち、保護基を持つアミノエチルホスホン酸タ
イプのT*Tダイマー(式1) を用いホスホトリエステル法によりオリゴマーを合成後
脱保護、精製する。そののちアームを持ったビオチン化
試薬(式4)) によりホスホン酸部分のアミノ基をビオイン化する。
(式5) ハイブリダイゼーションの温度条件は55℃とし、反応
後の検出には、ビオチンと特異的に結合するアビジンの
アルカルフォスファターゼ結合体を作用させた後、アル
カリフォスファターゼの基質となるBCIP(5−bromo−
4−chloro−3−indolylphosphate)及びNBT(nitro−
blue tetrazolium)を作用させることで得られる発色を
用いた。この場合、プローブとPSTV、CEV、CSVとの間の
反応は発色により確認されたが他種ウイロイドや健全葉
からの抽出試料とは反応しなかった。又、ここに示した
プローブを用いた場合の検出感度は、実施例2の場合に
比べ約5倍以上の感度を示した。6XSSC-0.1% SDS-5X After performing prehybridization at 50 ° C for 1 hour in Denhardt's reagent, 6XSSC-
Hybridization was performed in 0.1% SDS-5X Denhardt's reagent. The probe used was an 18-mer ( 5 ′ GTT * TCCCCGGGGATCCCT 3 ′ ) complementary to the 85-102nd sequence of PSTV, with the phosphate bond at the portion indicated by * being labeled with biotin. This probe was prepared as follows. That is, an aminoethylphosphonic acid type T * T dimer having a protecting group (Formula 1) Is deprotected and purified after synthesizing an oligomer by the phosphotriester method. Then a biotinylated reagent with an arm (Formula 4) Converts the amino group of the phosphonic acid moiety into a bioin.
(Equation 5) The hybridization was carried out at a temperature of 55 ° C. For the detection after the reaction, an alkaline phosphatase conjugate of avidin, which specifically binds to biotin, was allowed to act, and then BCIP (5-bromo-
4-chloro-3-indolylphosphate) and NBT (nitro-
blue tetrazolium) was used. In this case, the reaction between the probe and PSTV, CEV, or CSV was confirmed by color development, but did not react with other species of viroid or samples extracted from healthy leaves. Further, the detection sensitivity when the probe shown here was used was about 5 times or more that of the case of Example 2.
以上説明してきた通り、本発明の合成オリゴヌクレオ
チドプローブを用いてハイブリダイゼーションを行うこ
とにより、極めて容易にPSTVグループのウイロイドを検
出することが可能となった。したがって、本発明はPSTV
グループの感染による植物の病気の早期診断及びウイロ
イド伝搬の防止、無菌苗生産に大きな効果を発揮するも
のであるといえる。As described above, by performing hybridization using the synthetic oligonucleotide probe of the present invention, viroids of the PSTV group can be detected extremely easily. Therefore, the present invention
It can be said that it exerts great effects on early diagnosis of plant diseases caused by group infection, prevention of viroid propagation, and production of aseptic seedlings.
図1はPSTV,TPMV,TASV,CEV,及びCSVのRNA全塩基配列を
示す図である。FIG. 1 is a diagram showing the entire RNA base sequences of PSTV, TPMV, TASV, CEV, and CSV.
フロントページの続き (72)発明者 志波 孝光 東京都板橋区高島平1‐19‐13 東荘 105号 (56)参考文献 化学と生物,Vol.25,No.3 (1987)P.154−163 昭和62年度日本植物病理学会大会講演 要旨予稿集(1987.Feb.10)P. 245Continued on the front page (72) Inventor Takamitsu Shiba 1-19-13 Takashimadaira, Itabashi-ku, Tokyo Tosho 105 No. (56) Reference Chemistry and Biology, Vol. 25, No. 3 (1987) p. 154-163 Abstracts of 1987 Annual Meeting of the Japanese Society of Plant Pathology Abstracts (1987. Feb. 10) P. 245
Claims (2)
リゴヌクレオチドプローブを用いるハイブリダイゼーシ
ョンによるウイロイドの検出方法において、ジャガイモ
やせいも病ウイロイドグループに属するウイロイドに対
し、そのRNAにおける共通配列と相補性を有する塩基配
列が5′GTTTCCCCGGGGATCCCT3′である合成オリゴヌク
レオチドプローブを用いることを特徴とするジヤガイモ
やせいも病ウイロイドグループの検出方法。1. A method for detecting viroids by hybridization using a synthetic oligonucleotide probe having complementarity with viroid RNA, the method comprising the steps of determining whether a viroid belonging to the potato or blast disease viroid group is complementary to a common sequence in the RNA. A method for detecting a potato or blast disease viroid group, comprising using a synthetic oligonucleotide probe having a base sequence of 5 ′ GTTTCCCCGGGGATCCCT 3 ′ .
に属するウイロイドが、ジャガイモやせいも病ウイロイ
ド、カンキツ・エキソコーティスウイロイド、キクわい
化ウイロイド、トマト・プランタマチョウイロイドおよ
びトマト頂部わい化ウイロイドである請求項1に記載の
検出方法。2. The viroid belonging to the potato or bursal viroid group, wherein the viroid is a potato or bursal viroid, a citrus exocortis viroid, a chrysanthemum viroid, a tomato planta macho viroid and a tomato top vitrified viroid. Item 4. The detection method according to Item 1.
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Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP2374788A JP2632339B2 (en) | 1988-02-05 | 1988-02-05 | How to detect potato and potato viroid group |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
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JP2374788A JP2632339B2 (en) | 1988-02-05 | 1988-02-05 | How to detect potato and potato viroid group |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH0223894A JPH0223894A (en) | 1990-01-26 |
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1988
- 1988-02-05 JP JP2374788A patent/JP2632339B2/en not_active Expired - Lifetime
Non-Patent Citations (2)
Title |
---|
化学と生物,Vol.25,No.3(1987)P.154−163 |
昭和62年度日本植物病理学会大会講演要旨予稿集(1987.Feb.10)P.245 |
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JPH0223894A (en) | 1990-01-26 |
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