JP2607989B2 - Culture substrate - Google Patents

Culture substrate

Info

Publication number
JP2607989B2
JP2607989B2 JP3167341A JP16734191A JP2607989B2 JP 2607989 B2 JP2607989 B2 JP 2607989B2 JP 3167341 A JP3167341 A JP 3167341A JP 16734191 A JP16734191 A JP 16734191A JP 2607989 B2 JP2607989 B2 JP 2607989B2
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
culture substrate
cells
culture
nerve cells
fluorocarbon
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Expired - Fee Related
Application number
JP3167341A
Other languages
Japanese (ja)
Other versions
JPH04330277A (en
Inventor
渡辺 芳明 株式会社バイオマテリアル研究所内
Original Assignee
株式会社バイオマテリアル研究所
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by 株式会社バイオマテリアル研究所 filed Critical 株式会社バイオマテリアル研究所
Priority to JP3167341A priority Critical patent/JP2607989B2/en
Publication of JPH04330277A publication Critical patent/JPH04330277A/en
Application granted granted Critical
Publication of JP2607989B2 publication Critical patent/JP2607989B2/en
Anticipated expiration legal-status Critical
Expired - Fee Related legal-status Critical Current

Links

Description

【発明の詳細な説明】DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION

【産業上の利用分野】生体内にある細胞を体外に取り出
して培養することは、生命科学、医学、薬学、農学等の
分野及びそれらを応用した産業において重要な技術とな
つている。現在では各種の培地、増殖因子、培養基質の
研究開発が進められた結果、多くの細胞種が培養系に移
されている。しかし、十分に機能を維持したり生体内と
同じ形態をとらせたりすることが困難な細胞もまだ多く
存在する。代表的な細胞に神経細胞がある。神経細胞は
その機能の高度な複雑さから未解明な点が非常に多く、
実験系が組み立てやすい安定した培養系の確立が切望さ
れているものである。
2. Description of the Related Art It is an important technology in the fields of life science, medicine, pharmacy, agriculture, and the like and in industries that apply them to take out and culture cells in a living body outside the body. At present, as a result of research and development of various media, growth factors, and culture substrates, many cell types have been transferred to culture systems. However, there are still many cells for which it is difficult to maintain a sufficient function or to take the same form as in a living body. A typical cell is a nerve cell. Nerve cells have many unclear points due to the high complexity of their functions.
The establishment of a stable culture system that is easy to assemble with an experimental system has been desired.

【0002】[0002]

【従来の技術】神経細胞は、その形態が他の細胞とは著
しく異なり繊維状の細い神経突起を有している。この神
経突起を伸ばした形が神経細胞の本来の形態であり、こ
の状態を維持することが生体から取り出した神経細胞の
機能を生体外で検討する基本となる。数μm以下の細い
神経突起の伸展を良好に行なわせるためには、神経細胞
の培養基質への接着が問題となる。
2. Description of the Related Art Nerve cells have fibrous thin neurites whose morphology is significantly different from other cells. The elongated form of the neurite is the original form of the nerve cell, and maintaining this state is the basis for examining the function of the nerve cell extracted from the living body in vitro. In order to favorably extend thin neurites of several μm or less, adhesion of nerve cells to a culture substrate becomes a problem.

【0003】通常行なわれる細胞接着性を高める方法と
しては、ラミニン、コラーゲンなどの細胞接着性蛋白質
や、ポリリジン、ポリオルニチン、ポリアリルアミン他
のカチオン性ポリアミンあるいはこれらの混合物をガラ
スもしくは表面処理が施された培養用プラスチツク基質
にコーテイングする。多くの神経細胞では、これらのコ
ーテイングを行なわないと細胞接着や神経突起の伸展が
不充分で良好な培養が行えない。
[0003] As a method for enhancing cell adhesion, a cell adhesion protein such as laminin or collagen, or a cationic polyamine such as polylysine, polyornithine, polyallylamine, or a mixture thereof is glass- or surface-treated. Coated plastic substrate for culture. In many nerve cells, if these coatings are not performed, cell adhesion and neurite extension are insufficient, and good culture cannot be performed.

【0004】[0004]

【発明が解決しようとする課題】細胞接着性蛋白質は、
生体から大量に採ることができるものではなく、また安
定性にも劣る。すなわち機能的には高いものではある
が、実用的観点からは使いにくいものである。ポリアミ
ン系のものはこの物質自体に毒性があり、無血清条件で
神経細胞を培養する際にはむしろ負の要因となつてしま
う場合があり、すべての場合に用いることができるもの
ではない。不安定な細胞接着性蛋白質や毒性を持つポリ
アミン類を慎重にコーテイングすることが不要な基質、
高い安定性と良好な培養性を示す基質は実用上おおきな
有用性を持つと言える。
The cell adhesion protein is:
It cannot be obtained in large quantities from living organisms, and has poor stability. That is, although it is high in function, it is difficult to use from a practical viewpoint. Polyamine-based substances are toxic to the substance itself, and may be rather a negative factor when culturing nerve cells under serum-free conditions, and cannot be used in all cases. Substrates that do not require careful coating of unstable cell adhesion proteins and toxic polyamines,
A substrate showing high stability and good cultivation properties can be said to have practically great utility.

【0005】本発明者は、このような基質を開発すべく
鋭意研究を積重ねた結果、透明プラスチツクをフルオロ
カーボンの低温プラズマ処理したものが所期の効果を奏
することを見い出して本発明を完成するに至つた。
The present inventors have made intensive studies to develop such a substrate, and as a result, they have found that transparent plastic treated with low-temperature plasma of fluorocarbon has the desired effect, and completed the present invention. It has been reached.

【0006】すなわち、本発明は、従来のような不安定
な細胞接着性蛋白質や毒性を持つポリアミン類を慎重に
コーテイングする操作が不必要であり、高い安定性と良
好な培養性を示す神経細胞の新規培養基質を提供するこ
とを目的とするものである。さらに、本発明は、神経細
胞の培養を行なう際に、基質への接着性、神経突起の伸
展が良好な新規培養基質を提供することを目的とするも
のである。
That is, the present invention does not require an operation of carefully coating an unstable cell adhesive protein or a toxic polyamine as in the prior art, and exhibits high stability and good cultivation. It is an object of the present invention to provide a novel culture substrate. Another object of the present invention is to provide a novel culture substrate having good adhesion to a substrate and excellent neurite extension when culturing neurons.

【0007】[0007]

【課題を解決するための手段】このような目的を達成す
るための本発明の構成は、以下の(1)〜(4)の技術
的手段からなるものである。 (1)透明プラスチツクをフルオロカーボンの低温プラ
ズマ処理したことを特徴とする神経細胞の培養基質。 (2)透明プラスチツクをフルオロカーボンの低温プラ
ズマ処理し、次いでアンモニアの低温プラズマ処理した
ことを特徴とする神経細胞の培養基質。 (3)フルオロカーボンが、テトラフルオロメタン、ヘ
キサフルオロエタンないしはその混合物から選択される
前記(1)ないしは(2)記載の神経細胞の培養基質。 (4)透明プラスチツクがポリスチレン、ホリメチルペ
ンテン、メチルメタアクリレートポリスルホン、ポリエ
ーテルスルホン、ポリエチレンテレフタレート、ポリカ
ーボネート、ポリフツ化ブビニリデンから選択される前
記(1)ないし(2)記載の神経細胞の培養基質。
The structure of the present invention for achieving the above object comprises the following technical means (1) to (4). (1) A culture substrate for nerve cells, wherein transparent plastic is treated with low-temperature plasma of fluorocarbon. (2) A culture substrate for nerve cells, wherein the transparent plastic is subjected to low-temperature plasma treatment of fluorocarbon and then to low-temperature plasma treatment of ammonia. (3) The culture substrate for nerve cells according to (1) or (2), wherein the fluorocarbon is selected from tetrafluoromethane, hexafluoroethane, or a mixture thereof. (4) The culture substrate for neural cells according to (1) or (2), wherein the transparent plastic is selected from polystyrene, polymethylpentene, methyl methacrylate polysulfone, polyether sulfone, polyethylene terephthalate, polycarbonate, and polyvinylidene fluoride.

【0008】培養基質の形状は、フイルム、プレート、
デイツシユ等の細胞培養可能な形であればいずれも可能
である。培養している細胞を顕微鏡下観察することは通
常に行なわれることで培養基質としては透明性が必要で
ある。特殊な細胞−たとえば光感受性細胞−では不透明
基質が適当な場合がある。透明材料の代表的なものにガ
ラスがあり、現在も一部では使われているが、使い易さ
すなわち軽くて扱い易い、使い捨てできる価格の低さ等
の点からほとんどプラスチツク製に代わりつつある。
[0008] The shape of the culture substrate may be a film, a plate,
Any type of cell culture, such as a dish, is possible. Observation of the cultured cells under a microscope is usually performed, and the culture substrate needs to be transparent. For special cells, such as light-sensitive cells, an opaque substrate may be appropriate. A typical transparent material is glass, which is still used in some cases. However, it is almost being replaced by plastic because of its ease of use, that is, lightness and ease of use, and low disposable price.

【0009】一般的に、プラスチツクは単一組成で構成
されているのではなく成型性や安定性を高めるため各種
の添加剤が加えられている。これらが細胞に対して毒性
を示す場合があり、すべてのプラスチツクが用いうるも
のではない。また培養した細胞は免疫染色などの方法
で、その特徴を識別することも行なわれているが、この
場合、アルコール類、アミン類、弱酸、弱アルカリ等が
使われるためある程度の耐薬品性が必要である。これら
のことから透明プラスチツクとしては、ポリスチレン、
ポリメチルペンテン、メチルメタアクリレート、ポリス
ルホン、ポリエーテルスルホン、ポリエチレンテレフタ
レートが好適である。ポリカーボネート、ポリフツ化ブ
ビニリデンなども幅広い用途を考えなければ使用するこ
とができる。
Generally, plastics are not composed of a single composition, but various additives are added to improve moldability and stability. These can be toxic to cells and not all plastics can be used. The characteristics of the cultured cells are also identified by immunostaining or other methods, but in this case, alcohols, amines, weak acids, weak alkalis, etc. are used, so some degree of chemical resistance is required. It is. For these reasons, transparent plastics include polystyrene,
Polymethylpentene, methyl methacrylate, polysulfone, polyethersulfone, and polyethylene terephthalate are preferred. Polycarbonate, polyvinylidene fluoride, and the like can also be used unless a wide variety of applications are considered.

【0010】フルオロカーボンの低温プラズマ処理はサ
ンプルを入れたチヤンバーを減圧、次いで、フルオロカ
ーボンガスを導入する。サンプルを間に置いた2つの電
極に高周波(例えば13、56MHZ が用いられる)を
かけることにより低温プラズマ処理が発生し表面処理が
行なわれる。導入するフルオロカーボン量は、高周波ジ
エネレーターの大きさにもよるが、数百mTorrまで
任意に設定できる。ガス種は、各種の使用可能なものが
あるが、テトラフルオロメタン、ヘキサフルオロエタン
及びその混合物が使い易く、好適である。フツ素ガスも
使用できるが取り扱いはやや難しい。処理時間は数十秒
から数十分の間が良い。ガス純度はグレードの高いもの
が必要である。低純度のものは表面の均一性の低下を招
く。アンモニアプラズマ処理も同様に行うが、処理時間
は数秒から数分の間が好適である。アンモニアの純度も
高いものが必要である。
In the low-temperature plasma treatment of fluorocarbon, a chamber containing a sample is depressurized, and then a fluorocarbon gas is introduced. Sample surface treatment low-temperature plasma treatment is generated by applying a high-frequency (e.g. 13,56MH Z is used) to the two electrodes was placed between the is performed. The amount of the fluorocarbon to be introduced depends on the size of the high-frequency generator, but can be arbitrarily set up to several hundred mTorr. There are various gas species that can be used, but tetrafluoromethane, hexafluoroethane and a mixture thereof are preferable because they are easy to use. Fluorine gas can also be used, but handling is somewhat difficult. The processing time is preferably between tens of seconds to tens of minutes. Gas purity must be high. A low-purity one causes a decrease in surface uniformity. The ammonia plasma treatment is performed in the same manner, but the treatment time is preferably between several seconds and several minutes. A high ammonia purity is required.

【0011】[0011]

【発明の効果】本発明の基質を用いて神経細胞の培養を
行なうと、良好な基質への接着、神経突起の伸展が認め
られる。すなわちこれまで用いられてきた細胞接着性蛋
白質などを用いる必要がないため、各種の細胞が産生す
る蛋白質、ペプチド、ホルモンなどの影響、効果をより
明確に調べることが可能となり神経細胞の研究では本発
明の培養基質は非常に有用なものとなり産業上の利便性
大なるものがある。以下、実施例により本発明をさらに
具体的に説明する。
When the nerve cells are cultured using the substrate of the present invention, good adhesion to the substrate and extension of the neurite are observed. In other words, since it is not necessary to use cell adhesive proteins that have been used so far, it is possible to more clearly examine the effects and effects of proteins, peptides, hormones, and the like produced by various cells. The culture substrate of the present invention is very useful and has industrial convenience. Hereinafter, the present invention will be described more specifically with reference to examples.

【0012】[0012]

【実施例】【Example】

実施例1.ポリスチレン、ポリメチルペンテンの直径3
5mmのプラスチツクデイツシユ(住友ベークライト社
製)をテトラフルオロメタンの低温プラズマ処理した。
プラズマ重合装置(サムコ社製)のチヤンバー内にサン
プルを入れた後、0.05Torrに減圧、テトラフル
オロメタン(昭和電工社製、純度99.999%を0.
2Torrになるまで導入し、50Wで5分間処理し
た。この試料をXPS法(X線光電子分光法)による表
面分析を行つたところ表面のフツ素/炭素の原素比はポ
リスチレンで0.8ポリメチルペンテンで1.0であつ
た。
Embodiment 1 FIG. Polystyrene, polymethylpentene diameter 3
A 5-mm plastic tissue (manufactured by Sumitomo Bakelite Co., Ltd.) was treated with low-temperature plasma of tetrafluoromethane.
After placing the sample in a chamber of a plasma polymerization apparatus (manufactured by Samco), the pressure was reduced to 0.05 Torr, and tetrafluoromethane (manufactured by Showa Denko KK, purity: 99.999% was 0.1%).
It was introduced until it reached 2 Torr, and was treated at 50 W for 5 minutes. The sample was subjected to surface analysis by XPS (X-ray photoelectron spectroscopy). As a result, the elemental ratio of fluorine / carbon on the surface was 1.0 with polystyrene and 0.8 with polymethylpentene.

【0013】ラツト胎児(18日胚)の海馬神経細胞の
無血清培養は以下のように行つた。5匹の胎児より海馬
部分を切り出し、直ちにパパイン(ワージントン社製)
液(10ユニツト/ml)で酵素処理した。培地はDM
E/F−12(シグマ社製、以下DF培地)を用いてイ
ンシユリン(シグマ社製、5μg/ml相当量添加)、
トランスフエリン(シグマ社製、同5μg/ml)プロ
ジエステロン(シグマ社製、5μg/ml)を添加した
ものを用いた。前記酵素処理した細胞分散液を遠心分離
した後、DF培地で2×104 個/mlの細胞液を各デ
イツシユに2mlずつ加えた。比較品は同形状の細胞培
養用デイツシユ(住友ベークライト社製)を用いた。3
7℃の炭酸ガスインキユベーター(CO2 :5%)中
で、2日間培養した。顕微鏡下細胞を観察したところ神
経細胞の接着、神経突起の伸展、いずれも比較品に比べ
良好な状態が認められた。
[0013] Serum-free culture of hippocampal neurons of rat embryos (day 18 embryos) was performed as follows. Cut out the hippocampus from 5 fetuses and immediately papain (Worthington)
The solution was treated with the enzyme (10 units / ml). The medium is DM
Using E / F-12 (manufactured by Sigma, hereinafter referred to as DF medium), inulin (added to Sigma with an equivalent of 5 μg / ml),
Transferrin (manufactured by Sigma, 5 μg / ml) and prodiesterone (manufactured by Sigma, 5 μg / ml) were used. After the enzyme-treated cell dispersion was centrifuged, 2 × 10 4 cells / ml of cell solution was added to each dish in an amount of 2 ml in DF medium. As a comparative product, a cell culture dish of the same shape (manufactured by Sumitomo Bakelite Co., Ltd.) was used. 3
The cells were cultured in a carbon dioxide incubator (CO 2 : 5%) at 7 ° C. for 2 days. Observation of the cells under a microscope showed that both the adhesion of the nerve cells and the extension of the neurites were in a better condition than the comparative product.

【0014】実施例2.実施例1で調整したポリスチレ
ンデイツシユをさらにアンモニアプラズマ処理した。ア
ンモニア(昭和電工社製、純度99.999%)を0.
005Torrまで減圧したチヤンバー内に0.2To
rrまで導入。50Wで2分処理し、XPS法により表
面にフツ素の他にアミン、アミドの基が導入されている
ことを確認し、細胞培養試験を行つた。DF培地(実施
例1と同じ)に牛胎児血清(ハイクローン社を添加(1
0%)した培地を用いた。ラツト新生児の脊髄後根神経
節を切り出し、0.1%のトリプシン(シグマ社製)で
45分間、37℃で酵素処理した遠心分離した後、上記
培地に神経栄養因子(NGF,シグマ社製)を添加(5
0ng/ml)し、細胞分散液を調整、3×103 個/
mlの分散液を2ml/デイツシユで加えた。比較品を
実施例1と同じものを用い、2日間培養した。本発明の
調整品では神経突起の伸展が比較品より優つていること
が認められた。
Embodiment 2 FIG. The polystyrene dish prepared in Example 1 was further subjected to an ammonia plasma treatment. Ammonia (manufactured by Showa Denko KK, purity 99.999%) was added in an amount of 0.
0.2To in the chamber depressurized to 005 Torr
Introduced up to rr. The cells were treated at 50 W for 2 minutes, and it was confirmed by the XPS method that amine and amide groups were introduced into the surface in addition to fluorine, and a cell culture test was performed. Fetal bovine serum (Hyclone was added to DF medium (same as in Example 1) (1
0%). A dorsal root ganglion of a rat newborn was cut out, centrifuged at 37 ° C. for 45 minutes with 0.1% trypsin (Sigma), and centrifuged. The neurotrophic factor (NGF, Sigma) was added to the above medium. (5
0 ng / ml) to prepare a cell dispersion, 3 × 10 3 cells /
ml of the dispersion was added at 2 ml / date. The same comparative product was used as in Example 1 and cultured for 2 days. It was found that the neurite outgrowth was superior to the comparative product in the preparation of the present invention.

Claims (4)

(57)【特許請求の範囲】(57) [Claims] 【請求項1】 透明プラスチツクをフルオロカーボンの
低温プラズマ処理したことを特徴とする神経細胞の培養
基質。
1. A culture substrate for nerve cells, wherein a transparent plastic is treated with low-temperature plasma of fluorocarbon.
【請求項2】 透明プラスチツクをフルオロカーボンの
低温プラズマ処理し、次いでアンモニアの低温プラズマ
処理したことを特徴とする神経細胞の培養基質。
2. A culture substrate for nerve cells, wherein the transparent plastic is subjected to low-temperature plasma treatment of fluorocarbon and then to low-temperature plasma treatment of ammonia.
【請求項3】 フルオロカーボンが、テトラフルオロメ
タン、ヘキサフルオロエタンないしはその混合物から選
択される請求項1ないしは2記載の神経細胞の培養基
質。
3. The culture substrate for nerve cells according to claim 1, wherein the fluorocarbon is selected from tetrafluoromethane, hexafluoroethane, and a mixture thereof.
【請求項4】 透明プラスチツクがポリスチレン、ホリ
メチルペンテン、メチルメタアクリレート、ポリスルホ
ン、ポリエーテルスルホン、ポリエチレンテレフタレー
ト、ポリカーボネート、ポリフツ化ビニリデンから選択
される請求項1ないし2記載の神経細胞の培養基質。 【0001】
4. The culture substrate for nerve cells according to claim 1, wherein the transparent plastic is selected from polystyrene, polymethylpentene, methyl methacrylate, polysulfone, polyethersulfone, polyethylene terephthalate, polycarbonate, and polyvinylidene fluoride. [0001]
JP3167341A 1991-04-26 1991-04-26 Culture substrate Expired - Fee Related JP2607989B2 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP3167341A JP2607989B2 (en) 1991-04-26 1991-04-26 Culture substrate

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP3167341A JP2607989B2 (en) 1991-04-26 1991-04-26 Culture substrate

Publications (2)

Publication Number Publication Date
JPH04330277A JPH04330277A (en) 1992-11-18
JP2607989B2 true JP2607989B2 (en) 1997-05-07

Family

ID=15847936

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP3167341A Expired - Fee Related JP2607989B2 (en) 1991-04-26 1991-04-26 Culture substrate

Country Status (1)

Country Link
JP (1) JP2607989B2 (en)

Families Citing this family (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP4660713B2 (en) * 2003-07-15 2011-03-30 財団法人新産業創造研究機構 Cell adhesion material
JP2005110676A (en) * 2003-09-17 2005-04-28 Think Engineering Kk Living cell culture substrate, method for producing the substrate, etching treatment apparatus used in the method for producing the same, and method for culturing living cell
JP6019738B2 (en) * 2012-05-16 2016-11-02 大日本印刷株式会社 Method for producing substrate having hydrophilic layer
JP2022103120A (en) * 2020-12-25 2022-07-07 国立大学法人信州大学 Cell culture member and method for modifying surface thereof
JP2022103121A (en) * 2020-12-25 2022-07-07 国立大学法人信州大学 Cell culture member and method for modifying surface thereof

Also Published As

Publication number Publication date
JPH04330277A (en) 1992-11-18

Similar Documents

Publication Publication Date Title
AU686738B2 (en) Cell culture substrates and methods of use
Bakirci et al. Cell sheet based bioink for 3D bioprinting applications
AU783772B2 (en) Method for providing a substrate with a ready-to-use uniformly distributed extracellular matrix
US4822741A (en) Biocompatible polyorganosiloxane composition for cell culture apparatus
Li et al. Impact of vitronectin concentration and surface properties on the stable propagation of human embryonic stem cells
De Bartolo et al. Novel membranes and surface modification able to activate specific cellular responses
JP2607989B2 (en) Culture substrate
JP3270286B2 (en) Cell culture container, method for producing the same, and cell culture method
JPH05260950A (en) Collagen-coated cell culture apparatus and its production
Kang et al. Attachment and growth of fibroblast cells on polypeptide derivatives
JPS63196273A (en) Substrate for cell culture
JPH04126074A (en) Substrate for culture of tissue cell
JPH0775547A (en) Culture substrate
Jóźawiak et al. Attachment and metabolic activity of hepatocytes cultivated on selected polymeric membranes
JP4269256B2 (en) Nerve cell culture substrate and method for producing the same
JPH05244938A (en) Cell and its culture
JP3359556B2 (en) Culture plate and its culture method or test method
JPH0698757A (en) Laminin-coated cell-culture tool and its production
JPS63119754A (en) Artificial element having cell growth specificity
JPH05227944A (en) Polylysine-coated tool for culturing cell and its production
JPH02181628A (en) Immobilization of biologically active part on substrate, immobilization of living cell on substrate and cultivation of cell
RU2328527C1 (en) Microcarrier for growing substrate-dependent animal cells in vitro
JPS63196272A (en) Substrate material for cell culture
JPS6251982A (en) Substrate for cultivating cell
JP2002142752A (en) Collagen-coated cell culture vessel and method for producing the same

Legal Events

Date Code Title Description
FPAY Renewal fee payment (prs date is renewal date of database)

Free format text: PAYMENT UNTIL: 20090213

Year of fee payment: 12

FPAY Renewal fee payment (prs date is renewal date of database)

Free format text: PAYMENT UNTIL: 20090213

Year of fee payment: 12

FPAY Renewal fee payment (prs date is renewal date of database)

Free format text: PAYMENT UNTIL: 20100213

Year of fee payment: 13

FPAY Renewal fee payment (prs date is renewal date of database)

Free format text: PAYMENT UNTIL: 20110213

Year of fee payment: 14

LAPS Cancellation because of no payment of annual fees