JP2600090B2 - Host vector system - Google Patents

Host vector system

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JP2600090B2
JP2600090B2 JP17908991A JP17908991A JP2600090B2 JP 2600090 B2 JP2600090 B2 JP 2600090B2 JP 17908991 A JP17908991 A JP 17908991A JP 17908991 A JP17908991 A JP 17908991A JP 2600090 B2 JP2600090 B2 JP 2600090B2
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plasmid
pseudomonas
pbr325
bacteria
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文良 福本
守 佐藤
侑三 美濃部
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農林水産省農業環境技術研究所長
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Description

【発明の詳細な説明】DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION

【0001】[0001]

【産業上の利用分野】本発明は、プラスミドpBR32
2、pBR325またはpBR328をベクターとして
用い、Pseudomonas avenaeを宿主と
して用いる宿主ベクター系に関するものであり、プラス
ミドpBR322、pBR325またはpBR328で
形質転換され、プロリン要求性変異株である、イネ褐条
病菌(Pseudomonas avenae)に関す
る。本発明の宿主ベクター系および新規細菌は、シュー
ドモナス属細菌を用いた有用物質生産菌の作出等の微生
物工業分野への利用や、バイオコントロール微生物の作
出等の農業分野への利用が期待される。
The present invention relates to a plasmid pBR32
2. It relates to a host vector system using pBR325 or pBR328 as a vector and Pseudomonas avenae as a host, and is transformed with a plasmid pBR322, pBR325 or pBR328 and is a proline-requiring mutant, Pseudomonas avenae. ). The host vector system and the novel bacterium of the present invention are expected to be used in the field of microbial industry such as production of useful substance-producing bacteria using Pseudomonas bacteria, and in the field of agriculture such as production of biocontrol microorganisms.

【0002】[0002]

【従来の技術】シュードモナス属細菌の遺伝子発現機構
を明らかにする手段として、遺伝子組換え技術による該
細菌からの遺伝子の単離が行われている。その方法とし
ては下記の2つの手段が一般的に採用されている。 大腸菌の宿主ベクター系を用いてクローニングを行な
う。 シュードモナス属の宿主ベクター系を用いてクローニ
ングを行なう。しかしながら、の方法については、シ
ュードモナス属細菌由来の遺伝子の大腸菌における発現
は一般に効率が低いという難点がある。 の方法については、形質転換効率が低い上、菌種によ
っては発現が不十分のことが多い。
2. Description of the Related Art As a means for clarifying the gene expression mechanism of Pseudomonas genus bacteria, a gene is isolated from the bacterium by genetic recombination technology. As the method, the following two means are generally adopted. Cloning is performed using an E. coli host vector system. Cloning is performed using a Pseudomonas host vector system. However, the method (1) has a drawback that expression of a gene derived from Pseudomonas bacteria in E. coli is generally low in efficiency. In the method (1), the transformation efficiency is low and the expression is often insufficient depending on the bacterial species.

【0003】一方、大腸菌の宿主ベクター系のベクター
として開発されてきたpBR系プラスミド(pBR32
2、pBR325、pBR328等)は、クローニング
用ベクターとして極めて優れた利点を有する。しかしな
がら、これらのプラスミドはシュードモナス属菌内では
複製できず、ベクターとして利用され得なかった。
On the other hand, a pBR plasmid (pBR32) which has been developed as a host vector vector for Escherichia coli.
2, pBR325, pBR328, etc.) have extremely excellent advantages as cloning vectors. However, these plasmids could not replicate in Pseudomonas sp. And could not be used as vectors.

【0004】[0004]

【発明が解決しようとする課題】本発明者らは、イネか
ら分離されたイネ褐条病菌(Pseudomonasa
venae)が、pBR系プラスミドにより形質転換複
製され、かつ、大腸菌の系と同程度に極めて効率よく形
質転換され得ること、さらには、該細菌より選抜された
プロリン要求性株が、より一層効率よくpBR系プラス
ミドにより形質転換されうることを見出し、本発明を完
成した。本発明により、シュードモナス属細菌、とくに
Pseudomonas avenaeの遺伝子のクロ
ーニングを極めて簡便に行なうことができる。
DISCLOSURE OF THE INVENTION The present inventors have proposed a rice brown streak fungus (Pseudomonasa) isolated from rice.
venae) can be transformed and replicated with a pBR-based plasmid and transformed as efficiently as the Escherichia coli system. Furthermore, a proline-requiring strain selected from the bacterium can be more efficiently The present inventors have found that transformation can be performed using a pBR plasmid, and have completed the present invention. According to the present invention, the cloning of the gene of Pseudomonas bacteria, particularly Pseudomonas avenae, can be performed extremely easily.

【0005】[0005]

【課題を解決するための手段】すなわち、本発明は、 プラスミドpBR322、pBR325またはpBR
328をベクターとして用い、 Pseudomonas avenaeを宿主として
用いる、宿主ベクター系に関するものであり、プラスミ
ドpBR322、pBR325またはpBR328で形
質転換され、プロリン要求性変異株である、イネ褐条病
菌(Pseudomonas avenae)に関する
ものである。
That is, the present invention relates to a plasmid pBR322, pBR325 or pBR.
The present invention relates to a host vector system using 328 as a vector and Pseudomonas avenae as a host, which is transformed with a plasmid pBR322, pBR325 or pBR328, and is a proline-requiring mutant, a rice brown streak (Pseudomonas avenae). It is.

【0006】本発明の、pBR322、pBR325ま
たはpBR328で形質転換され、プロリン要求性変異
株であるイネ褐条病菌は、以下のように製造される。イ
ネ褐条病菌K1株からの、プロリン要求性変異株の作出
は以下のように行なう。対数増殖期の細菌〔K1(MA
FF03−01752)株〕を、100μg/mlの濃
度のニトロソグアニジンで37℃、30分間処理後、一
夜培養する。それらの細菌を平板培養してコロニーを形
成させる。個々のコロニーを最小培地および最小培地に
カザミノ酸とトリプトファンを加えた培地で培養し、後
者でのみ増殖するアミノ酸変異株を選抜する。それらの
菌株をさらに最小培地および最小培地にプロリンを添加
した培地にて培養し、後者でのみ増殖する株を選抜する
ことにより、プロリン要求性変異株を得ることができ
る。本発明において得られてプロリン要求性株は、Pr
47株と命名した。
[0006] The rice brown streak, which is a proline-requiring mutant transformed with pBR322, pBR325 or pBR328 of the present invention, is produced as follows. The production of a proline-requiring mutant from the brown streak fungus strain K1 is performed as follows. Bacteria in logarithmic growth phase [K1 (MA
FF03-01752)] is treated with nitrosoguanidine at a concentration of 100 μg / ml at 37 ° C. for 30 minutes, and then cultured overnight. The bacteria are plated to form colonies. Individual colonies are cultured in a minimal medium and a medium in which casamino acid and tryptophan are added to the minimal medium, and amino acid mutants that grow only in the latter are selected. Proline-requiring mutants can be obtained by further culturing these strains in a minimal medium and a medium in which proline is added to the minimal medium, and selecting strains that grow only in the latter. The proline-requiring strain obtained in the present invention is Pr
The strain was named 47 strains.

【0007】本発明にて用いられたK1株は、財団法人
醗酵研究所(大阪市淀川区十三本町2丁目17番85
号、TEL:06−302−7281)に寄託されてお
り、受入番号は「IFO15113」である。また、P
r47株も上記の財団法人醗酵研究所に寄託されてお
り、受入番号は「IFO15114号」である。いずれ
の菌も本発明の実施のために分譲されうる。
The K1 strain used in the present invention was obtained from Fermentation Research Institute (2-17-17, Jusanhoncho, Yodogawa-ku, Osaka-shi).
No. TEL: 06-302-7281) and the accession number is “IFO15113”. Also, P
The r47 strain has also been deposited with the above-mentioned Fermentation Research Institute, and the accession number is “IFO15114”. Any fungus can be furnished for the practice of the present invention.

【0008】K1(NR8201)株の細菌学的性状に
ついては、詳しく調べられており、それらの結果から、
イネ褐条病菌(Pseudomonas avena
e)と同定されている(土屋ら、農業環境技術研究所3
8号、1983年)。また、Pr47株は、細菌学的性
状はK1株と同様であるが、プロリン要求性である点だ
けが異なる。さらにK1株、Pr47株のいずれも、細
菌の培養に通常用いられるLB培地、ジャガイモ半合成
培地等の一般的な増殖用培地でよく増殖できる。
[0008] The bacteriological properties of the K1 (NR8201) strain have been investigated in detail, and from those results,
Rice brown streak fungus (Pseudomonas avena)
e) (Tsuchiya et al., Agricultural and Environmental Research Institute 3)
No. 8, 1983). The Pr47 strain has the same bacteriological properties as the K1 strain, but differs only in proline requirement. Furthermore, both the K1 strain and the Pr47 strain can grow well on a general growth medium such as an LB medium or a potato semi-synthetic medium which is usually used for culturing bacteria.

【0009】本発明の宿主ベクター系は以下のように製
造される。Hanahanの方法〔J.Mol.Bio
l.,Vol.166,pp.557−580,(19
83)]に従って、形質転換のための感受性菌を調整す
る。2xTY培地(バクトトリプトン16g、イースト
エクストラクト10g、塩化ナトリウム5g、蒸留水1
l)で培養し、0.3−0.4OD(660nm)に達
した細菌を遠心機で集菌し、RF1溶液に置換して4℃
にて1.5−2.0時間静置する。
The host vector system of the present invention is produced as follows. The method of Hanahan [J. Mol. Bio
l. , Vol. 166, pp. 557-580, (19
83)] to prepare susceptible bacteria for transformation. 2xTY medium (16 g of bactotryptone, 10 g of yeast extract, 5 g of sodium chloride, 1 g of distilled water)
1), the bacteria reaching 0.3-0.4 OD (660 nm) are collected by a centrifuge, replaced with RF1 solution, and replaced with 4 ° C.
For 1.5-2.0 hours.

【0010】RF1溶液の組成は以下のとおりである。 さらに、RF2溶液に15〜30分置き、マイクロチュ
ーブに50〜100μlずつ分注した細菌をドライアイ
ス・エタノール中で急速に凍結し、−80℃で保存す
る。 RF2溶液の組成は以下のとおりである。
The composition of the RF1 solution is as follows. Further, the bacteria placed in the RF2 solution for 15 to 30 minutes, dispensed in 50 to 100 μl aliquots into microtubes are rapidly frozen in dry ice / ethanol and stored at −80 ° C. The composition of the RF2 solution is as follows.

【0011】形質転換の方法も上記Hanahanの方
法に準じて行える。すなわち、50μlの感受性菌に2
0ngのプラスミドを添加して氷中で1時間静置する。
42℃で90秒加温し、再び数分間氷中に戻した試料を
35℃で3時間培養する。これらの試料を抗生物質を添
加した選択培地で培養し、形成されたコロニー数で形質
転換の効率を測定できる。
[0011] The transformation can be carried out according to the above-mentioned method of Hanahan. That is, 50 μl of the susceptible bacteria
Add 0 ng of plasmid and let stand for 1 hour on ice.
The sample heated at 42 ° C. for 90 seconds and returned to ice for several minutes is incubated at 35 ° C. for 3 hours. These samples are cultured in a selective medium to which an antibiotic has been added, and the transformation efficiency can be measured by the number of colonies formed.

【0012】[0012]

【作用】プラスミドpBR322、pBR325または
pBR328を用いて、K1株またはPr47株につい
て、プラスミド1μg当たり104−5個の高率にて形
質転換し組換え体を作ることが可能になる。
[Action] with the plasmid pBR322, pBR325 or pBR328, the strain K1 or Pr47 strain, it is possible to make the transformed recombinant at 10 4-5 high rate per plasmid 1 [mu] g.

【0013】[0013]

【実施例】以下に、実施例により本発明をさらに詳しく
説明するが、本発明はこれに限定されない。 〔実施例1〕プラスミドによる形質転換 K1株とPr47株の感受性株(50μl)に20ng
のPBR322株および対照区として蒸留水を数μl加
え、十分混合した後、氷中に1時間静置した。42℃で
1分間静置し、再び氷中に数分間置いた後、SOC培地
(バクトトリプトン20g、イーストエクストラクト5
g、塩化ナトリウム0.5g、20mMブドウ糖、20
mM 硫酸マグネシウム、蒸留水1l)にて35℃3時
間培養後、テトラサイクリン(25μg/ml)を含む
LB平板培地にて、35℃一夜培養する。形成されたコ
ロニー数を測定し、プラスミド1μg当たりのコロニー
数に換算して形質転換効率を算出した。表−1に5反復
の平均値を示した。pBR325およびpBR328の
場合、クロラムフェニコール(30μg/ml)を含む
LB培地で培養した。これらの結果から、K1株はpB
R322、pBR325およびpBR328を高率に形
質転換した。さらにPr47株はK1株に比べその効率
が約10〜50倍高く、1.3−3.0X10であっ
た(表−1)。
EXAMPLES The present invention will be described in more detail with reference to the following Examples, but it should not be construed that the present invention is limited thereto. [Example 1] Transformation with plasmid 20 ng to susceptible strain (50 µl) of K1 strain and Pr47 strain
Of PBR322 strain and several μl of distilled water as a control were mixed well, and allowed to stand on ice for 1 hour. After leaving still at 42 ° C. for 1 minute and again placing on ice for several minutes, the SOC medium (20 g of bactotryptone, yeast extract 5) was added.
g, sodium chloride 0.5 g, 20 mM glucose, 20 g
After culturing for 3 hours at 35 ° C. in 1 l of mM magnesium sulfate and distilled water, the cells are cultured overnight at 35 ° C. in an LB plate medium containing tetracycline (25 μg / ml). The number of formed colonies was measured, and the conversion efficiency was calculated by converting the number of colonies per 1 μg of plasmid. Table 1 shows the average value of 5 repetitions. In the case of pBR325 and pBR328, the cells were cultured in an LB medium containing chloramphenicol (30 μg / ml). From these results, the K1 strain was pB
R322, pBR325 and pBR328 were transformed at high rates. Furthermore, the efficiency of the Pr47 strain was about 10 to 50 times higher than that of the K1 strain, and was 1.3 to 3.0 × 10 6 (Table 1).

【0014】〔実施例2〕電気泳動による形質転換の確
認 プラスミドがPr47株に形質転換されたことを確認す
るために、形成されたコロニーを液体培養し、プラスミ
ドの抽出を行なった。pBR325を用いてPr47株
を形質転換して得られたコロニーを12個とり、クロラ
ムフェニコール(30μg/ml)を含む1.5mlの
液体培地中で35℃一夜振とう培養した。アルカリ法に
てプラスミドを抽出し、1%アガロース電気泳動にかけ
た結果、抽出したプラスミドは形質転換にもちいたpB
R325と同じ移動度を示し、12個すべてが形質転換
されたことが確認された。結果を図1に示す。図1にお
いて、レーンAはマーカーDNA、レーンはプラスミド
pBR325、レーン1〜6は形質転換体から抽出した
プラスミドを示す。
Example 2 Confirmation of Transformation by Electrophoresis To confirm that the plasmid was transformed into the Pr47 strain, the formed colonies were subjected to liquid culture, and the plasmid was extracted. Twelve colonies obtained by transforming the Pr47 strain using pBR325 were picked and cultured in a 1.5 ml liquid medium containing chloramphenicol (30 μg / ml) with shaking at 35 ° C. overnight. The plasmid was extracted by the alkaline method and subjected to 1% agarose electrophoresis.
It showed the same mobility as R325, and it was confirmed that all 12 cells were transformed. The results are shown in FIG. In FIG. 1, lane A shows marker DNA, lanes show plasmid pBR325, and lanes 1 to 6 show plasmids extracted from transformants.

【図面の簡単な説明】[Brief description of the drawings]

【図1】形質転換体より抽出したプラスミドのアガロー
スゲル電気泳動の電気泳動パターンを示す図である。
FIG. 1 is a view showing an electrophoresis pattern of agarose gel electrophoresis of a plasmid extracted from a transformant.

Claims (2)

(57)【特許請求の範囲】(57) [Claims] 【請求項1】 プラスミドpBR322、pBR32
5またはpBR328をベクターとして用い、 Pseudomonas avenaeを宿主として
用いる、 宿主ベクター系。
1. The plasmids pBR322 and pBR32
5 or pBR328 as a vector, and Pseudomonas avenae as a host.
【請求項2】 プラスミドpBR322、pBR325
またはpBR328で形質転換され、プロリン要求性変
異株である、イネ褐条病菌(Pseudomonas
avenae)。
2. The plasmids pBR322, pBR325
Alternatively, PBR328, which is a proline-requiring mutant, is a rice brown streak (Pseudomonas).
avenae).
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