JP2527345B2 - Method for producing oligosaccharide or glycoside containing a-galactosyl group using a-galactosylfructoside as a starting material - Google Patents

Method for producing oligosaccharide or glycoside containing a-galactosyl group using a-galactosylfructoside as a starting material

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JP2527345B2
JP2527345B2 JP62295801A JP29580187A JP2527345B2 JP 2527345 B2 JP2527345 B2 JP 2527345B2 JP 62295801 A JP62295801 A JP 62295801A JP 29580187 A JP29580187 A JP 29580187A JP 2527345 B2 JP2527345 B2 JP 2527345B2
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卓 中村
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  • Saccharide Compounds (AREA)

Description

【発明の詳細な説明】 [産業上の利用分野] 本発明はα−ガラクトシダーゼの基質にα−ガラクト
シルフラクトシドを用いることにより効率よく安価にα
−ガラクトシル基を含む有用オリゴ糖あるいは配糖体を
製造する方法に関するものである。
DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION [Field of Industrial Application] The present invention uses α-galactosylfructoside as a substrate for α-galactosidase to efficiently and inexpensively produce α.
-A method for producing a useful oligosaccharide or glycoside containing a galactosyl group.

[従来の技術] 近年、ラフィノース、スターキオースなどの非還元末
端にα−ガラクトース基を有するオリゴ糖が腸内有用細
菌であるビフィズス菌増殖因子として有効であると認め
られ、これらオリゴ糖を甘味料として用いることが検討
されている。ラフィノース、スターキオースの供給源と
しては、大豆オリゴ糖またはビート中のラフィノースが
ある。しかしながら、上記ラフィノース、スターキオー
スの原料として考えられる大豆オリゴ糖は量的に少ない
ため大量供給が難しく、また、価格も高い。ビート中の
ラフィノースも、供給時期が10月〜3月と限定されるこ
と、および、現在のところ価格が高いという欠点をもっ
ている。
[Prior Art] In recent years, oligosaccharides having an α-galactose group at the non-reducing end, such as raffinose and starchose, have been recognized as effective as growth factors for Bifidobacteria, which are useful enteric bacteria, and these oligosaccharides are used as sweeteners. It is being considered for use. Sources of raffinose and starchiose include raffinose in soybean oligosaccharides or beets. However, soybean oligosaccharides, which are considered as a raw material for the above raffinose and starkose, are small in quantity, so it is difficult to supply them in large quantities, and the price is also high. Raffinose in beet also has the drawback that the supply period is limited to October to March, and that the price is currently high.

一方、オリゴ糖あるいは配糖体の合成法としては糖転
移酵素または加水分解酵素の糖転移作用を利用する方法
が開発されている。例えばβ−フラクトフラノシダーゼ
によるフラクトオリゴ糖、β−ガラクトシダーゼによる
β−ガラクトオリゴ糖の製造がある。同様にα−ガラク
トシダーゼの糖転移作用を利用してα−ガラクトシル基
を持ったオリゴ糖、配糖体等の有用化合物を製造する方
法が考えらえるが、この場合、α−ガラクトシル基を供
給する安価な原料が必要である。しかしながら、現在の
ところα結合したガラクトースを含むオリゴ糖、多糖は
天然界に少なく、ラフィノース、スターキオース、ベル
バスコースなどのラフィノース族オリゴ糖やプランテオ
ースあるいはそれらの誘導体しか存在せず、どれも大量
供給が難しい。
On the other hand, as a method for synthesizing an oligosaccharide or a glycoside, a method utilizing a glycosyltransferase activity of a glycosyltransferase or a hydrolase has been developed. For example, there is production of fructooligosaccharides by β-fructofuranosidase and β-galactooligosaccharides by β-galactosidase. Similarly, a method for producing useful compounds such as oligosaccharides and glycosides having an α-galactosyl group by utilizing the glycosyl transfer activity of α-galactosidase can be considered. In this case, an α-galactosyl group is supplied. Inexpensive raw materials are needed. However, at present, there are few oligosaccharides and polysaccharides containing α-linked galactose in the natural world, and there are only raffinose family oligosaccharides such as raffinose, starchose, verbascose and planteose or their derivatives, and they are supplied in large quantities. Is difficult.

[本発明が解決しようとする問題点] そこで、本発明の目的はα−ガラクトシル基を有する
安価な原料を提供することにあり、更にこの基質を使用
してα−ガラクトシダーゼの転移反応を利用しα−ガラ
クトシル基を持ったオリコ糖、配糖体の合成法を提供す
ることにある。
[Problems to be Solved by the Present Invention] Therefore, an object of the present invention is to provide an inexpensive raw material having an α-galactosyl group, and further to utilize the transfer reaction of α-galactosidase by using this substrate. It is intended to provide a method for synthesizing oricosugars and glycosides having an α-galactosyl group.

[問題点を解決するための手段] 本発明者らは種々研究を重ねた結果、α−ガラクトシ
ルフラクトシドがα−ガラクトシダーゼの糖転移作用に
おけるガラクトシル基の供与体として使えることを見い
出し本発明に至った。すなわち、本発明はガラクトース
とフラクトース残基を含む化合物(例えば、シュークロ
ース、ラフィノース、スターキオースなど)にレバンシ
ュークラーゼを作用させ、α−ガラクトシルフラクトシ
ドを合成し、このα−ガラクトシルフラクトシドを基質
としてα−ガラクトシダーゼの転移作用によってα−ガ
ラクトシル基を転移させα−ガラクトシル基を含む有用
なオリゴ糖、配糖体あるいは多糖を合成することを特徴
とするものである。
[Means for Solving Problems] As a result of various studies conducted by the present inventors, they found that α-galactosylfructoside can be used as a donor of a galactosyl group in the transglycosylation action of α-galactosidase, and the present invention has been completed. It was That is, the present invention allows levansucrase to act on a compound containing a galactose and a fructose residue (for example, sucrose, raffinose, starchose, etc.) to synthesize α-galactosylfructoside, and use this α-galactosylfructoside as a substrate. It is characterized in that the α-galactosyl group is transferred by the transferring action of α-galactosidase to synthesize a useful oligosaccharide, glycoside or polysaccharide containing the α-galactosyl group.

以下に、本発明について詳述する。The present invention will be described in detail below.

使用しうるガラクトースとしては市販のガラクトース
はもちろん、α−ガラクトシル基あるいはβ−ガラクト
シル基を含む天然のオリゴ糖、配糖体あるいは多糖から
酵素(β−ガラクタナーゼ、β−ガラクトシダーゼ、α
−ガラクトシダーゼなど)あるいは酸を使用しても加水
分解することにより調製したガラクトースも使用でき
る。レバンシュークラーゼは糖転移酵素であるが、シュ
ークロースとガラクトースに本酵素を作用させた場合フ
ラクトースがβ−2.6結合で結合したレバンの合成反
応、ガラクトースへの転移によるα−ガラクトシルフラ
クトシドの合成反応および加水分解反応の三つの反応を
触媒する。三つの反応の比率は供与体であるシュークロ
ース、受容体であるガラクトースを濃度比や反応温度に
より影響を受ける。α−ガラクトシルフラクトシドを効
率よく合成させるには受容体と供与体のモル比を大きく
する方が良く、1:1から4:1が望ましい。また、基質濃度
は高い方が良く、20〜50%が望ましい。反応温度は、低
温ほど転移反応が起こり易く10〜30℃で適当である。反
応のpH及び反応時間は、レバンシュークラーゼが作用し
てα−ガラクトシルフラクトシドが生成されれば良く、
pH3.0〜10、反応時間は1〜48時間が適用される。
Commercially available galactose can be used as the galactose which can be used, as well as natural oligosaccharides containing α-galactosyl group or β-galactosyl group, glycosides or polysaccharides (β-galactanase, β-galactosidase, α).
-Galactosidase etc.) or galactose prepared by hydrolysis using an acid can also be used. Levansucrase is a glycosyltransferase, but when this enzyme acts on sucrose and galactose, the synthesis reaction of levan in which fructose is bound by β-2.6 bond, the synthesis reaction of α-galactosylfructoside by the transfer to galactose And catalyzes three reactions, a hydrolysis reaction. The ratio of the three reactions is influenced by the concentration ratio of the donor sucrose and the acceptor galactose and the reaction temperature. In order to synthesize α-galactosylfructoside efficiently, it is better to increase the molar ratio of the acceptor and the donor, preferably 1: 1 to 4: 1. Also, the higher the substrate concentration, the better, and 20 to 50% is desirable. As for the reaction temperature, the lower the reaction temperature, the more easily the rearrangement reaction occurs, and the temperature is preferably 10 to 30 ° C. The reaction pH and reaction time may be such that Levansucrase acts to produce α-galactosylfructoside,
A pH of 3.0 to 10 and a reaction time of 1 to 48 hours are applied.

α−ガラクトシダーゼは本来加水分解酵素であるが、
気質濃度を高めると糖転移作用をも触媒するようにな
る。従って、α−グラクトシダーゼの糖転移作用を利用
し、α−ガラクトシルフラクトシドを供与体に用いて、
ラフィノース、スターキオース、ガラクトビオース、α
−ガラクトシルグリセリンなどを合成する場合、基質濃
度は高い方が良い。通常10〜50%濃度を用いる方が好ま
しい。α−アラクトシダーゼの作用条件は用いる酵素に
よって異なるが、pH3.0〜10.0、好ましくは5.0〜8.0の
範囲で、反応温度は20〜80℃、好ましくは50〜70℃の範
囲である。反応時間は、酵素の使用量によって異なる
が、基質のα−ガラクトシルフラクトシドが約90%程度
分解されるまで行うことが好ましく通常1〜48時間であ
る。しかしながら、本発明の以上の条件、あるいは反応
形態のみに限定されるものではない。
α-galactosidase is originally a hydrolase,
Increasing air quality also catalyzes the transglycosylation action. Therefore, utilizing the glycosyl transfer activity of α-galactosidase, using α-galactosylfructoside as a donor,
Raffinose, Starkiose, Galactobiose, α
-When synthesizing galactosylglycerin, etc., the higher the substrate concentration, the better. Usually, it is preferable to use a concentration of 10 to 50%. The action conditions of α-actosidase vary depending on the enzyme used, but the pH is in the range of 3.0 to 10.0, preferably 5.0 to 8.0, and the reaction temperature is in the range of 20 to 80 ° C, preferably 50 to 70 ° C. The reaction time varies depending on the amount of enzyme used, but is preferably 1 to 48 hours until the substrate α-galactosylfructoside is decomposed by about 90%. However, the present invention is not limited to the above conditions or reaction modes.

ここで、α−ガラクシルフラクトシドを合成するのに
使用しうるレバンシュークラーゼ(EC 2,4,1,10)とし
ては、ガラクトースとシュークロースもしくはラフィノ
ースなどのフラクトース残基を含む化合物の溶液に作用
してシュークロースもしくはラフィノースなどのフラク
トース残基を含む化合物のフラクトース残基をガラクト
ースのC1位に転移して、非還元性のα−ガラクトシルフ
ラクトシドを生成しうる酵素であれば良く、酵素の起源
・種類に限定されない。例えば、バチルス・サブチリス
(Bacillus subtilis)、アエロバクター・レバニカム
(Aerobacter levanicum)、アセトバクター・サブオキ
シダンス(Acetobacter suboxydans)、グレコノバクタ
ー・オキシダンス(Gluconobacter oxydans)、ストレ
プトコッカス・ミュータンス(Streptococcus mutan
s)、ストレプトコッカス・サリバリウス(Streptococc
us salivalius)などの多くの微生物が生産するレバン
シュークラーゼが本発明の目的に利用できる。
Here, levansucrase (EC 2,4,1,10) that can be used to synthesize α-galactosylfructoside is a solution of a compound containing galactose and a fructose residue such as sucrose or raffinose. Any enzyme capable of acting to transfer a fructose residue of a compound containing a fructose residue such as sucrose or raffinose to the C1 position of galactose and producing a non-reducing α-galactosylfructoside may be used. The origin and type are not limited. For example, Bacillus subtilis, Aerobacter levanicum, Acetobacter suboxydans, Gluconobacter oxydans, Streptococcus mutan
s), Streptococcus salivarius (Streptococc
levansucrase produced by many microorganisms such as us salivalius) can be used for the purpose of the present invention.

また、α−ガラクトシダーゼは、メリビオース、ラフ
ィノース、スターキオース、あるいはフェニル−α−ガ
ラクトシドのようなα−ガラクトシル基を含むオリゴ糖
や配糖体を分解し、糖転移作用を触媒する酵素であれば
良く、酵素の起源・種類に限定されない。例えばピクノ
ポラス・シナバリス(Pycnoporus cinnabarinus)、ス
トレプトコッカス・ボビス(Streptococcus bovis)、
デプロコッカス・ニューモニア(Diplococcus pneumoni
ae)、モルティエレラ・ビナセ(Mortiellela vinace
a)などの微生物やビシア・サティバ(Vicia sativa)
などの植物が生産するα−ガラクトシダーゼが使用でき
る。これらの微生物からレバンシュークラーゼあるいは
α−アラクトシダーゼを生産する方法は、通常液体培養
もしくは固体培養が用いられる。液体培養の場合はその
培養上澄液を、固体培養の場合はその抽出液を、そのま
ま酵素剤として利用できる。また、場合によって菌体を
そのまま酵素剤として利用することも可能である。ま
た、必要に応じて既知の方法で精製した酵素も使用でき
る。これら酵素あるいは酵素を生産する菌体は固定化し
てカラムに詰めたり膜に固定化して連続式であるいはバ
ッチ式で繰り返し反応に利用することも可能である。
Further, α-galactosidase may be any enzyme that decomposes oligosaccharides or glycosides containing an α-galactosyl group such as melibiose, raffinose, starchose, or phenyl-α-galactoside, and catalyzes a glycosyl transfer action, The origin and type of enzyme are not limited. For example, Pycnoporus cinnabarinus, Streptococcus bovis,
Diplococcus pneumoni
ae), Mortiellela vinace
a) and other microorganisms and Vicia sativa
Α-galactosidase produced by plants such as As a method for producing levansucrase or α-actosidase from these microorganisms, liquid culture or solid culture is usually used. In the case of liquid culture, the culture supernatant can be used as it is, and in the case of solid culture, the extract can be used as it is as an enzyme preparation. In addition, depending on the case, it is possible to use the bacterial cells as they are as an enzyme agent. In addition, an enzyme purified by a known method can be used if necessary. It is also possible to immobilize these enzymes or bacterial cells that produce the enzymes in a column or immobilize them on a membrane and use them in a continuous or batch reaction repeatedly.

[発明の効果] 現在、α−ガラクトシル基を含む有用なオリゴ糖や配
糖体を酵素的に合成する場合、安価で大量に存在するα
−ガラクトシル基の供給源は天然界では知られていな
い。本発明のα−ガラクトシルフラクトシドは、ガラク
トースとフラクトシル基を持つ化合物からレバンシュー
クラーゼによって大量に合成できる。また、レバンシュ
ークラーゼは、転移酵素であるため率良く安価合成が可
能である。このα−ガラクトシルフラクトシドを基質に
用いることにより、α−ガラクトシダーゼの転移作用に
よってα−ガラクトシル基を含む有用なオリゴ糖や配糖
体を酵素的に安価かつ大量に合成できる。
[Effect of the Invention] Currently, when enzymatically synthesizing useful oligosaccharides or glycosides containing an α-galactosyl group, α is present in large amounts at low cost.
The source of the galactosyl group is unknown in nature. The α-galactosylfructoside of the present invention can be synthesized in a large amount by levansucrase from a compound having galactose and a fructosyl group. Levansucrase is a transferase and can be efficiently synthesized at low cost. By using this α-galactosylfructoside as a substrate, useful oligosaccharides or glycosides containing an α-galactosyl group can be enzymatically inexpensively and massively synthesized by the transfer action of α-galactosidase.

次に本発明の詳細を実施例を挙げて説明する。 Next, details of the present invention will be described with reference to examples.

[実施例] 酵素の活性 レバンシュークラーゼの活性測定法 20%(w/v)シュークロース溶液0.5mlおよび100mMリ
ン酸緩衝液(pH7.0)、0.4mlにレバンシュークラーゼ溶
液0.1mlを加えて30℃で10分間反応させる。この反応液
を10分間加熱して酵素を失活させた後、生じたグルコー
ス量をグルコースオーキシダーゼ法で測定した。酵素活
性1単位は、この条件下で1分間に1μmoleのグルコー
スを生成する酵素量と定義した。
[Examples] Enzyme activity Levansucrase activity assay method 0.5% of 20% (w / v) sucrose solution and 100 mM phosphate buffer (pH 7.0) Incubate for 10 minutes at 30 ℃. The reaction solution was heated for 10 minutes to inactivate the enzyme, and the amount of glucose produced was measured by the glucose oxidase method. One unit of enzyme activity was defined as the amount of enzyme that produced 1 μmole of glucose per minute under this condition.

α−ガラクトシダーゼの活性測定法 10mMパラニトロフェニル−α−ガラクトシド0.2mlと1
00mM酢酸緩衝液(pH5.5)0.2mlにα−ガラクトシダーゼ
溶液0.05mlを加えて40℃10分間反応させる。反応後、0.
2M Na2CO3 0.5mlを加えて反応を止め、遊離してくるパ
ラニトロフェノール量を分光光度計にて400nmを吸光度
を計ることにより測定した。酵素活性1単位は、この条
件下で1分間に1μmoleのパラニトロフェノールを生成
する酵素量と定義した。
Assay method for α-galactosidase activity 10 mM para-nitrophenyl-α-galactoside 0.2 ml and 1
0.05 ml of α-galactosidase solution is added to 0.2 ml of 00 mM acetate buffer (pH 5.5) and reacted at 40 ° C for 10 minutes. After the reaction, 0.
The reaction was stopped by adding 0.5 ml of 2M Na 2 CO 3 and the amount of liberated para-nitrophenol was measured by measuring the absorbance at 400 nm with a spectrophotometer. One unit of enzyme activity was defined as the amount of enzyme that produced 1 μmole of para-nitrophenol per minute under these conditions.

酵素標品の調製 レバンシュークラーゼ 5%大豆粕抽出液(20倍量の0.2% NaOH溶液で100℃
1時間抽出する)、%庶糖、0.6%リン酸二アンモニウ
ム、0.02%ヨウ化カリウム、0.02%硫酸マグネシウム、
0.3%酢酸カルシウムを含む培地(pH7.0)200mlを1l三
角フラスコに分注し、120℃15分間のオートクレーブに
より滅菌した後、Bacillus subtilis var.saccharolyti
cusを植菌し、37℃にて40〜44時間静置培養した。遠心
分離により得た菌体を20mMリン酸緩衝液(pH7.0)に懸
濁し、ホモジナイザーにより1分間処理した後、遠心分
離により上澄液を得た。これを粗酵素液として以下の実
験に使用した。
Preparation of enzyme preparation Levansucrase 5% soybean meal extract (20 times volume of 0.2% NaOH solution at 100 ° C
Extract for 1 hour),% sucrose, 0.6% diammonium phosphate, 0.02% potassium iodide, 0.02% magnesium sulfate,
200 ml of medium (pH 7.0) containing 0.3% calcium acetate was dispensed into a 1 l Erlenmeyer flask and sterilized by autoclaving at 120 ° C for 15 minutes, and then Bacillus subtilis var.saccharolyti
The cus was inoculated and statically cultured at 37 ° C for 40 to 44 hours. The cells obtained by centrifugation were suspended in 20 mM phosphate buffer (pH 7.0), treated with a homogenizer for 1 minute, and then centrifuged to obtain a supernatant. This was used as a crude enzyme solution in the following experiments.

α−ガラクトシダーゼ シュークロース2%、ペプトン3%、酵母エキス0.5
%、(NH42SO41%、KH2PO40.5%、MgSO4・7H2O0.05%
からなる培地51(pH5.0)を殺菌後、Pycronoporus cinn
abarinus IFO6139株を植菌し、30℃10日間振とう培養し
た。遠心分離によって得た上澄液に0.75飽和になるよう
に硫安を加え、一夜放置した。沈澱物を集め200mlのpH
5.0を酢酸緩衝液に溶解し、同緩衝液に対して透析した
標品をα−ガラクトシダーゼの粗酵素標品とした。
α-galactosidase sucrose 2%, peptone 3%, yeast extract 0.5
%, (NH 4) 2 SO 4 1%, KH 2 PO 4 0.5%, MgSO 4 · 7H 2 O0.05%
Pycronoporus cinn after sterilizing medium 51 (pH 5.0) consisting of
The abarinus IFO6139 strain was inoculated and shake-cultured at 30 ° C for 10 days. Ammonium sulfate was added to the supernatant obtained by centrifugation to 0.75 saturation, and the mixture was allowed to stand overnight. Collect the precipitate and pH of 200 ml
5.0 was dissolved in an acetate buffer and dialyzed against the same buffer to obtain a crude α-galactosidase enzyme preparation.

実施例1 α−ガラクトシルフラクトシドの作成 シュークロース10gとガラクトース20gを含むpH7.0の
リン酸緩衝液100mlにレバンシュークラーゼ溶液(20単
位/ml)1mlを加え、30℃にて48時間反応させた。反応液
を活性炭カラムクロマトグラフィーにかけ、オリゴ糖類
を吸着させた後、エチルアルコール0%〜20%の濃度勾
配により溶出させた。溶出液を濃縮乾燥して転移生成物
9gを得た。転移生成物は還元性を有しないこと、およ
び、サッカラーゼにより完全にガラクトースとフラクト
ースに加水分解されることからα−ガラクトシルフラク
トシドと同定した。
Example 1 Preparation of α-galactosylfructoside 1 ml of levansucrase solution (20 units / ml) was added to 100 ml of pH 7.0 phosphate buffer containing 10 g of sucrose and 20 g of galactose and reacted at 30 ° C. for 48 hours. It was The reaction solution was subjected to activated carbon column chromatography to adsorb oligosaccharides and then eluted with a concentration gradient of 0% to 20% ethyl alcohol. Concentrated and dried eluate to transfer product
I got 9g. The transfer product was identified as α-galactosylfructoside because it had no reducing property and was completely hydrolyzed to galactose and fructose by saccharase.

α−ガラクトシダーゼによるオリゴ糖の作成 α−ガラクトシルフラクトシド(1g)とシュークロー
ス(1g)を含むpH5.0の酢酸緩衝液5mlに、上記の様に調
製したα−ガラクトシダーゼ溶液(8単位/ml)0.5mlを
加え70℃24時間反応させた。反応液を10分間煮沸加熱し
酵素を失活させた後、反応液1μlを紙にスポットし
n−ブタノール:ピリジン:水=6:4:3の組成を溶媒系
で4重展開後、フロログルシン法にようケトース呈色を
行うと、ラフィノースに相当する位置にスポットが検出
された。この反応液を活性炭カラムクロマトグラフィー
にかけ、オリゴ糖類を吸着させた後、エチルアルコール
の濃度勾配により溶出させた。3量体画分を集め、濃縮
し凍結乾燥標品1.1gを得た。
Preparation of oligosaccharide by α-galactosidase α-galactosidase solution (8 units / ml) prepared as above in 5 ml of pH 5.0 acetate buffer containing α-galactosylfructoside (1 g) and sucrose (1 g) 0.5 ml was added and reacted at 70 ° C. for 24 hours. After the reaction solution was boiled and heated for 10 minutes to inactivate the enzyme, 1 μl of the reaction solution was spotted on a paper, and a composition of n-butanol: pyridine: water = 6: 4: 3 was developed in a solvent system four times and then the phloroglucin method When ketose coloring was performed as described above, a spot was detected at a position corresponding to raffinose. The reaction solution was subjected to activated carbon column chromatography to adsorb oligosaccharides and then eluted with a concentration gradient of ethyl alcohol. The trimeric fraction was collected and concentrated to obtain a freeze-dried standard product (1.1 g).

本標品は、(a)α−アラクトシダーゼで加水分解す
るとガラクトースとシュークロースを等モル生成するこ
と、(b)β−フラクトシダーゼで加水分解すると、等
モルのメリビオースとフラクトースを生成すること、
(c)α−ガラクトシダーゼとβ−フラクトシダーゼと
の加水分解するとガラクトース、グルコース、フラクト
ースを1モルずつ生成すること、(d)ペーパークロマ
トグラフィーの移動度がラフィノースと一致する。以上
のことからラフィノースであると同定した。
This preparation (a) produces equimolar amounts of galactose and sucrose when hydrolyzed with α-actosidase, and (b) produces equimolar melibiose and fructose when hydrolyzed with β-fructosidase. ,
(C) Hydrolysis of α-galactosidase and β-fructosidase produces 1 mol of galactose, 1 glucose, and 1 mol of fructose, and (d) mobility in paper chromatography is consistent with raffinose. From the above, it was identified as raffinose.

実施例2 (α−ガラクトシル基を有するオリゴ糖の作
成) シュークロース1gとガラクトース2gを含むpH7.0リン
酸緩衝液5mlにレバンシュークラーゼを実施例1−と
同様に作用させた後、実施例1−で使用したα−ガラ
クトシダーゼ溶液0.2mlを加え、さらに70℃24時間反応
させた。反応液1μlを紙スポットし、ペーパークロ
マトグラフィーにより反応生成物をケトース呈色で調べ
た結果、ラフィノースと思われるスポットが確認され
た。実施例1−の場合と同様に活性炭カラムクロマト
グラフィーにより3量体区分を単離し、酵素法により構
造を確認した結果ラフィノースであることが明らかとな
った。
Example 2 (Preparation of oligosaccharide having α-galactosyl group) Levansucrase was allowed to act on 5 ml of pH 7.0 phosphate buffer containing 1 g of sucrose and 2 g of galactose in the same manner as in Example 1 and then 0.2 ml of the α-galactosidase solution used in 1- was added, and the mixture was further reacted at 70 ° C. for 24 hours. 1 μl of the reaction solution was spotted on paper, and the reaction product was examined by ketose coloration by paper chromatography. As a result, spots considered to be raffinose were confirmed. As in the case of Example 1-, the trimer segment was isolated by activated carbon column chromatography, and the structure was confirmed by the enzymatic method. As a result, it was found to be raffinose.

実施例3 (α−ガラクトシル基を有する配糖体の作
成) α−ガラクトシルフラクトシド(500mg)とグリセリ
ン1gを含むpH5.0の酢酸緩衝液3mlに実施例1−で使用
したα−ガラクトシダーゼ溶液0.3mlを加え、70℃48時
間反応させた。反応液を10分間加熱し酵素を熱失活させ
た。反応液に1N NaOH溶液0.3mlを加えて60分間加熱し還
元糖を分解し、イオン交換樹脂で処理をした後ペーパー
クロマトグラフィーにより反応生成物を調べた結果、グ
ルコースに相当する位置にスポットが確認された。この
グルコースに相当する区分をペーパーから抽出し、性質
を調べた。(a)この標品は還元力を有しない(b)α
−ガラクトシダーゼにより加水分解するとガラストース
とグリセリンを等モル生成する。以上のことよりこの標
品はガラクトシルグリセリンであると同定した。
Example 3 (Preparation of glycoside having α-galactosyl group) 0.3 ml of the α-galactosidase solution used in Example 1 was added to 3 ml of pH 5.0 acetate buffer containing α-galactosylfructoside (500 mg) and 1 g of glycerin. ml was added and reacted at 70 ° C. for 48 hours. The reaction solution was heated for 10 minutes to heat inactivate the enzyme. 0.3 ml of 1N NaOH solution was added to the reaction solution and heated for 60 minutes to decompose reducing sugars, treated with an ion exchange resin, and then the reaction product was examined by paper chromatography.As a result, spots were confirmed at positions corresponding to glucose. Was done. The section corresponding to this glucose was extracted from the paper and examined for properties. (A) This preparation has no reducing power (b) α
-Hydrolysis with galactosidase produces equimolar amounts of glassose and glycerin. Based on the above, this sample was identified as galactosylglycerin.

Claims (1)

(57)【特許請求の範囲】(57) [Claims] 【請求項1】α−ガラクトシルフラクトシドを供与体に
用いα−ガラクトシダーゼの糖転移作用を利用すること
を特徴とするα−ガラクトシル基を含むオリゴ糖あるい
は配糖体の製造法
1. A method for producing an oligosaccharide or a glycoside having an α-galactosyl group, which comprises utilizing α-galactosylfructoside as a donor and utilizing the transglycosylation action of α-galactosidase.
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