JP2024015870A - Method for making car-t cell, kit for making car-t cell, and method for improving car-t cell content - Google Patents
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Abstract
Description
本発明の実施形態は、CAR-T細胞を作製する方法、CAR-T細胞作製用キット及びCAR-T細胞含有率を向上させる方法に関する。 Embodiments of the present invention relate to a method for producing CAR-T cells, a kit for producing CAR-T cells, and a method for increasing CAR-T cell content.
がんの遺伝子治療のためにCAR-T細胞が使用されている。CAR-T細胞は、CARキメラ抗体遺伝子がゲノムに組込まれたT細胞である。標的とするがん細胞が特異的に発現している抗原を認識することによって、がん細胞を認識して殺傷する。 CAR-T cells are used for cancer gene therapy. CAR-T cells are T cells that have a CAR chimeric antibody gene integrated into their genome. It recognizes and kills cancer cells by recognizing the antigen specifically expressed by the target cancer cells.
通常、CAR-T細胞の含有率が高い細胞群を得るには、培養系に敷き詰められたフィーダー細胞上で培養される。フィーダー細胞から放出される抗原タンパク質などの分泌物の作用によって、CAR-T細胞は安定して効率よく増殖する(非特許文献1)。しかし、このような方法は、操作が煩雑であり、汎用性が低い。しかしながら、フィーダー細胞を用いずにCAR-T細胞を高効率に製造する方法はない。 Usually, to obtain a cell population with a high content of CAR-T cells, cells are cultured on feeder cells lined in a culture system. CAR-T cells proliferate stably and efficiently by the action of secreted substances such as antigen proteins released from feeder cells (Non-Patent Document 1). However, such a method requires complicated operations and has low versatility. However, there is no method for producing CAR-T cells with high efficiency without using feeder cells.
本発明が解決しようとする課題は、フィーダー細胞を用いることなく、高効率で、CAR-T細胞を作製する方法、その方法に使用される細胞作製用キット及びCAR-T細胞含有率向上方法を提供することである。 The problem to be solved by the present invention is to provide a method for producing CAR-T cells with high efficiency without using feeder cells, a cell production kit used in the method, and a method for increasing the content of CAR-T cells. It is to provide.
実施形態に従うCAR-T細胞を作製する方法は、CAR-T細胞の作製時に細胞からCAR抗原タンパク質又はその部分タンパク質を細胞外に分泌させることにより、フィーダー細胞を用いずに目的のCAR-T細胞群を作ることを備える。 The method for producing CAR-T cells according to the embodiment is to secrete the CAR antigen protein or its partial protein from the cells during production of the CAR-T cells, thereby producing the desired CAR-T cells without using feeder cells. Prepare to form a group.
以下、実施形態について、添付の図面を参照して説明する。なお、各実施形態において、実質的に同一の構成部位には同一の符号を付し、その説明を一部省略する場合がある。図面は模式的なものであり、各部の厚さと平面寸法との関係、各部の厚さの比率等は現実のものとは異なる場合がある。 Embodiments will be described below with reference to the accompanying drawings. In addition, in each embodiment, the same code|symbol may be attached|subjected to the substantially same component part, and some descriptions may be abbreviate|omitted. The drawings are schematic, and the relationship between the thickness of each part and the planar dimension, the ratio of the thickness of each part, etc. may differ from the actual one.
(第1の実施形態)
第1の実施形態は、CAR遺伝子導入細胞からCAR抗原タンパク質又はその部分タンパク質を細胞外に分泌させ、CAR-T細胞の増殖を促進させることで、フィーダー細胞を用いずに、CAR-T細胞含有率が高い細胞群を高効率に作製する方法である(図1のS11)。
(First embodiment)
In the first embodiment, CAR antigen protein or its partial protein is secreted extracellularly from CAR gene-transfected cells to promote the proliferation of CAR-T cells, thereby eliminating the need to use feeder cells and containing CAR-T cells. This is a method for highly efficiently producing a cell group with a high cell density (S11 in Figure 1).
CAR遺伝子導入細胞は、材料細胞にそれ自身公知の導入手段によりCAR遺伝子を組み込むことにより形成される。CAR遺伝子の導入は、例えば、リポソーム法、リポフェクション法、エレクトロポレーション法であればよいが、リポソーム法が好ましい。例えば、リポソーム法の場合、それ自身公知の何れかのCAR(キメラ抗体受容体)をコードする核酸がリポソームに包含されて、材料細胞の細胞質へと送達され、そこから材料細胞の核へと送られたのちに、細胞のゲノムに組み込まれるように構成されている。細胞のゲノムに組み込まれることにより、当該材料細胞の細胞膜表面にCARが発現される。 CAR gene-introduced cells are formed by integrating the CAR gene into material cells using known introduction means. The CAR gene may be introduced by, for example, liposome method, lipofection method, or electroporation method, but liposome method is preferable. For example, in the case of the liposome method, a nucleic acid encoding any CAR (chimeric antibody receptor) known per se is encapsulated in a liposome and delivered to the cytoplasm of the material cell, and from there to the nucleus of the material cell. It is structured so that it is integrated into the cell's genome after being programmed. By being integrated into the genome of the cell, the CAR is expressed on the cell membrane surface of the material cell.
CARをコードする核酸は、核に取り込まれ、導入された材料細胞の表面にCARを発現するように構成されている。CARをコードする核酸は、例えば、CAR-DNAであり、即ちこれは、CAR遺伝子配列をコードする二本鎖DNAが好ましい。CAR-DNAは、核に取り込まれ、細胞のゲノムに挿入されてCARを発現する構成に適切な形態であればよい。 The nucleic acid encoding the CAR is configured to be internalized into the nucleus and to express the CAR on the surface of the cells into which the material has been introduced. The nucleic acid encoding CAR is, for example, CAR-DNA, ie it is preferably double-stranded DNA encoding the CAR gene sequence. CAR-DNA may be in any form as long as it is incorporated into the nucleus and inserted into the genome of the cell to express CAR.
CARをコードする核酸は、CAR細胞作製用の遺伝子セットに含まれた形態で使用されてもよい。例えば、CAR細胞作製用の遺伝子セットは、CARをコードする核酸、例えば、CAR-DNAを含み、更に任意の成分として核酸導入促進剤を含み得る。核酸導入促進剤は、CAR-DNAのゲノムへの組み込み(挿入)を促進する遺伝子などのゲノム組込み促進剤を含む。ゲノム組込み促進剤は、例えば、PB-mRNAなどのpiggyBac遺伝子であり得る。そのような酵素遺伝子は、トランスポサーセ(transposase: DNA転移酵素)遺伝子として知られている。材料細胞であるT細胞へのCAR遺伝子とトランスポサーセ遺伝子の導入により、安定してCAR-T(CAR遺伝子をT細胞のゲノムに組込んだ細胞)を作出できる。代表的なトランスポサーセには、蛾に由来するpiggyBacや、魚に由来するSleeping Beautyなどがある。これらの何れが使用されてもよいが、しかしながらこれらに限定するものではない。更にその他のゲノム組み込み促進機構を発揮する装置を使用することも可能である。例えば、CARをコードする核酸をプラスミドDNAに組み込み、それをリポソームに封入してもよい。また更には、PB遺伝子と共にプラスミドに組み込んだものをCAR細胞作製用の遺伝子セットとして封入してもよい。PB遺伝子は、DNAでもmRNAでもよいが、mRNAが好ましい。 A nucleic acid encoding a CAR may be used in a form included in a gene set for producing CAR cells. For example, a gene set for producing CAR cells contains a nucleic acid encoding CAR, such as CAR-DNA, and may further contain a nucleic acid introduction promoter as an optional component. The nucleic acid introduction promoter includes a genome integration promoter such as a gene that promotes integration (insertion) of CAR-DNA into the genome. The genome integration promoter can be, for example, piggyBac gene such as PB-mRNA. Such enzyme genes are known as transposase (DNA transferase) genes. By introducing the CAR gene and transposase gene into T cells, which are material cells, CAR-T (cells with the CAR gene integrated into the T cell genome) can be stably produced. Typical transposases include piggyBac, which is derived from moths, and Sleeping Beauty, which is derived from fish. Any of these may be used, but is not limited thereto. Furthermore, it is also possible to use devices that exhibit other mechanisms for promoting genome integration. For example, a nucleic acid encoding a CAR may be incorporated into plasmid DNA and encapsulated in liposomes. Furthermore, the PB gene may be integrated into a plasmid and enclosed as a gene set for producing CAR cells. The PB gene may be DNA or mRNA, but mRNA is preferable.
また、ゲノム組込み促進剤は、CAR-DNAのゲノムへの組み込み(挿入)を促進する遺伝子によりコードされるタンパク質、例えば、piggyBacであってもよい。ゲノム組込み促進剤がタンパク質である場合であっても、CARをコードする核酸と共に材料細胞の細胞質へと送達されればよい。言い換えれば、ゲノム組込み促進剤は、ゲノム組み込み(又は挿入)を促進する遺伝子又はタンパク質であってもよい。また、例えば、ゲノム組込み促進剤は、CAR遺伝子と同時にリポソームに封入されて、材料細胞に送達されてもよい。 Furthermore, the genome integration promoter may be a protein encoded by a gene that promotes integration (insertion) of CAR-DNA into the genome, such as piggyBac. Even when the genome integration promoter is a protein, it may be delivered to the cytoplasm of the material cell together with the nucleic acid encoding the CAR. In other words, the genome integration promoter may be a gene or protein that promotes genome integration (or insertion). Furthermore, for example, the genome integration promoter may be encapsulated in a liposome at the same time as the CAR gene and delivered to the material cells.
材料細胞は、遺伝子導入によりCAR-T細胞を得られる細胞であればよい。例えば材料細胞は、T細胞である。例えば、T細胞を材料細胞として使用する場合には、末梢血単核球(Peripheral Blood Mononuclear Cells: PBMC)或いはリンパ球画分などに含まれた状態で材料細胞を含む材料細胞群である材料画分として使用されてもよい。CAR-T細胞を治療や診断用に使用する場合には、治療、予防及び/又は診断の対象から採取されたPBMCであり得る。末梢血からのPBMCの調整は、フィコールを用いた超遠心などの密度勾配遠心分離法など、それ自身公知の何れかの方法により行われればよい。 The material cells may be any cells from which CAR-T cells can be obtained by gene transfer. For example, the material cells are T cells. For example, when using T cells as material cells, a material cell group containing material cells in peripheral blood mononuclear cells (PBMCs) or lymphocyte fractions may be used. May be used as a minute. When CAR-T cells are used for treatment or diagnosis, they may be PBMCs collected from a subject for treatment, prevention, and/or diagnosis. Preparation of PBMC from peripheral blood may be performed by any method known per se, such as density gradient centrifugation such as ultracentrifugation using Ficoll.
上記のようなCAR遺伝子導入細胞から分泌されるCAR抗原タンパク質又はその部分タンパク質は、当該CARの標的である抗原である。CAR遺伝子導入細胞からCAR抗原タンパク質又はその部分タンパク質を細胞外に分泌させることは、材料細胞にCARをコードする核酸を導入する前及び/若しくは後、並びに/又は導入するのと同時に行われてよい。またそれは、少なくとも材料細胞にCARをコードする核酸を導入するのと同時及び/又は導入後であってもよい。 The CAR antigen protein or its partial protein secreted from the CAR gene-introduced cells as described above is an antigen that is a target of the CAR. Secreting the CAR antigen protein or a partial protein thereof from the CAR gene-introduced cells may be performed before and/or after the introduction of the CAR-encoding nucleic acid into the material cells, and/or at the same time as the introduction. . Further, it may be performed at least simultaneously with and/or after the introduction of the CAR-encoding nucleic acid into the material cells.
CAR遺伝子導入細胞からCAR抗原タンパク質又はその部分タンパク質を細胞外に分泌させるためには、材料細胞及び/又はCARをコードする核酸を導入された材料細胞及び/又はCAR-T細胞に対して、分泌型CAR抗原タンパク質又はその部分タンパク質の遺伝子が導入されていることにより行われ得る。CAR抗原タンパク質又はその部分タンパク質の遺伝子の導入は、分泌型抗原タンパク質をコードする核酸を包含するリポソームと当該細胞との接触により行われ得る。分泌型抗原タンパク質をコードする核酸には、CAR抗原タンパク質又はその部分タンパク質をコードする配列と、細胞外分泌シグナル配列とが含まれてよい。または分泌型抗原タンパク質をコードする核酸はmRNAであってよい。細胞質に取り込まれた分泌型抗原タンパク質をコードする核酸により、抗原タンパク質又はその部分タンパク質が細胞外に分泌される。CAR-T細胞は、CAR抗原タンパク質との接触によって、分裂増殖が促進される。実施形態に従うCAR-T細胞の作製方法は、核酸のゲノムへの導入によるCAR-T細胞の作出と、作出されたCAR-T細胞とCAR抗原との接触とによるCAR-T細胞の分裂増殖との両方を行うことによって総合的に、目的とする「CAR-T細胞含有率の高い細胞群」としてCAR-T細胞を作製する。 In order to secrete the CAR antigen protein or a partial protein thereof from the CAR gene-introduced cells, secretion is performed on the material cells and/or the material cells and/or CAR-T cells into which the CAR-encoding nucleic acid has been introduced. This can be achieved by introducing a gene for a type CAR antigen protein or a partial protein thereof. Introduction of a gene for a CAR antigen protein or a partial protein thereof can be performed by contacting the cell with a liposome containing a nucleic acid encoding a secreted antigen protein. A nucleic acid encoding a secreted antigen protein may include a sequence encoding a CAR antigen protein or a partial protein thereof, and an extracellular secretion signal sequence. Alternatively, the nucleic acid encoding the secreted antigenic protein may be mRNA. A nucleic acid encoding a secreted antigen protein taken into the cytoplasm causes the antigen protein or a partial protein thereof to be secreted outside the cell. The division and proliferation of CAR-T cells is promoted by contact with the CAR antigen protein. The method for producing CAR-T cells according to the embodiment includes the production of CAR-T cells by introducing a nucleic acid into the genome, and the division and proliferation of CAR-T cells by contacting the produced CAR-T cells with a CAR antigen. By performing both of these steps, CAR-T cells are produced comprehensively as the desired "cell group with a high CAR-T cell content."
目的のCAR-T細胞群は、予め定めた量又は細胞数でCAR-T細胞を含む細胞群や、PBMCなどの材料細胞群に含まれていた他の細胞を予め定めた割合などで含むCAR-T細胞群であってよい。例えば、治療用のCAR-T細胞群を実施形態に従う方法により作製する場合は、目的のCAR-T細胞群は、治療に必要な細胞数のCAR-T細胞であってよい。ここで、「目的のCAR-T細胞群」とは、例えば、10%以上、より好ましくは20%以上、例えば20%~80%でCAR-T細胞を含む細胞群であってよい。またこのようなCAR-T細胞群は「CAR-T細胞含有率の高い細胞群」とも解され得る。 The target CAR-T cell group is a cell group containing CAR-T cells in a predetermined amount or number of cells, or a CAR group containing a predetermined ratio of other cells contained in the material cell group such as PBMC. -Can be a T cell population. For example, when a therapeutic CAR-T cell group is produced by the method according to the embodiment, the target CAR-T cell group may be the number of CAR-T cells necessary for the treatment. Here, the "target CAR-T cell group" may be, for example, a cell group containing CAR-T cells at 10% or more, more preferably at least 20%, for example from 20% to 80%. Further, such a CAR-T cell group can also be interpreted as a "cell group with a high CAR-T cell content."
上述した通り、第1の実施形態の方法は、フィーダー細胞を使わないという特徴を有する。実施形態の方法によれば、フィーダー細胞を使用することなく、高効率なCAR-T細胞の作製が可能である。フィーダー細胞は、一般的に特定の確立された細胞株として供給されるがん細胞などである。フィーダー細胞は、使用時には培養容器の底に付着され、目的とする細胞と共培養される。こうすることによって、より生体に近い環境に近い状態を作り出し、共培養される目的細胞を安定に培養や増殖することを可能にする。そのためフィーダーは広く使用されている。特に初代ヒト細胞を安定して培養するためにはフィーダー細胞は不可欠と考えられている。従来、治療用に用いるのに十分な程度に高効率に、CAR-T細胞含有率が高い細胞群を作製する場合にも必要とされており、そのために確立された細胞株が大切に受け継がれている。フィーダー細胞を使用してCAR-T細胞が制作された場合には、CAR-T細胞の使用に先駆けてフィーダー細胞が完全に分離される必要がある。また、CAR-T細胞作製前には、フィーダー細胞にγ線照射を行うことによってフィーダー細胞の増殖能を消失する必要もある。このように操作が煩雑であることや、フィーダー細胞の必要性自体がCAR-T細胞の作製の汎用化を困難にしている。実施形態に従えば、このようなフィーダー細胞を用いずにCAR-T細胞を安定に且つ高効率で製造することが可能である。CAR遺伝子導入細胞からCAR抗原タンパク質又はその部分タンパク質を細胞外に分泌させることで、CARに抗原タンパク質又はその部分タンパク質が結合し、CAR-T細胞の増殖が促進される。フィーダー細胞を使用する必要がないので、操作も簡便であり、多くの医療機関や研究機関が導入し易く、従って、がんの治療や予防、また基礎研究においても顕著な効果を奏することが予測される。 As described above, the method of the first embodiment is characterized in that it does not use feeder cells. According to the method of the embodiment, CAR-T cells can be produced with high efficiency without using feeder cells. Feeder cells include cancer cells, typically supplied as specific established cell lines. When used, feeder cells are attached to the bottom of a culture container and co-cultured with target cells. By doing so, it is possible to create an environment more similar to that of a living body, and to stably culture and proliferate the target cells to be co-cultured. Therefore, feeders are widely used. In particular, feeder cells are considered essential for stably culturing primary human cells. Traditionally, it has also been required to generate cell populations with a high CAR-T cell content with high enough efficiency to be used for treatment, and for this purpose, established cell lines have been carefully passed down. ing. When CAR-T cells are produced using feeder cells, the feeder cells must be completely isolated prior to use of the CAR-T cells. Furthermore, before producing CAR-T cells, it is necessary to eliminate the proliferative ability of feeder cells by irradiating them with gamma rays. These complicated operations and the necessity of feeder cells make it difficult to generalize the production of CAR-T cells. According to the embodiment, CAR-T cells can be produced stably and with high efficiency without using such feeder cells. By secreting the CAR antigen protein or its partial protein from the CAR gene-introduced cells, the antigen protein or its partial protein binds to CAR, and the proliferation of CAR-T cells is promoted. Since it does not require the use of feeder cells, it is easy to operate and can be easily introduced by many medical institutions and research institutions. Therefore, it is expected to have remarkable effects in cancer treatment and prevention as well as basic research. be done.
(第2の実施形態)
第2の実施形態によれば、CAR-T細胞の作製時にCAR-T細胞含有率を向上させる方法が提供される。この方法は、CAR-T細胞の作製時に、CARの標的である抗原タンパク質、或いはその一部の部分配列(即ち、部分タンパク質)に細胞外分泌シグナル配列を付加した分泌型抗原タンパク質遺伝子を導入した細胞群と、CAR-T細胞を含む細胞群を共培養することで、フィーダー細胞を用いずに、CAR-T細胞の増殖を促進させることにより、当該細胞群のCAR細胞に含有率を向上させる(図2のS21)。
(Second embodiment)
According to the second embodiment, a method for increasing CAR-T cell content during production of CAR-T cells is provided. This method involves introducing a secreted antigen protein gene in which an extracellular secretion signal sequence is added to the antigen protein, which is the target of CAR, or a partial sequence thereof (i.e., partial protein) to generate CAR-T cells. By co-cultivating a cell group containing CAR-T cells with a group of cells containing CAR-T cells, the proliferation of CAR-T cells is promoted without using feeder cells, thereby increasing the content of CAR cells in the cell group ( S21 in Figure 2).
CAR-T細胞の作製時とは、2つの状況を含んでいる。1つ目の状況は、材料細胞にCAR遺伝子を導入することによりCAR-T細胞へとトランスフェクションが起きることにより、材料細胞からCAR-T細胞が新たに作られる、形成される状況を指す。2つ目の状況は、複数のCAR-T細胞間での接触や高密度化など、活性化により分裂増殖が生じ、それによってCAR-T細胞の数が増える状況を指す。第2の実施形態は、このような、CAR-T細胞の作製時におけるCAR-T細胞の数を更に効率よく増加させる方法と解されてもよい。言い換えれば、CAR-T細胞の作製時に、当該CARの標的である抗原タンパク質、或いはその一部の部分配列(即ち、部分タンパク質)に細胞外分泌シグナル配列を付加した分泌型抗原タンパク質遺伝子を導入した細胞群と、当該CAR-T細胞を含む細胞群を共培養することで当該CAR-T細胞の増殖を促進させ、当該細胞群のCAR細胞含有率を向上させる方法である。 The generation of CAR-T cells includes two situations. The first situation refers to a situation in which CAR-T cells are newly produced or formed from material cells by transfection into CAR-T cells by introducing a CAR gene into material cells. The second situation refers to a situation where activation causes division and proliferation, such as contact between multiple CAR-T cells or high density, and thereby increases the number of CAR-T cells. The second embodiment may be understood as a method for more efficiently increasing the number of CAR-T cells during the production of CAR-T cells. In other words, when producing CAR-T cells, cells are introduced with a secreted antigen protein gene in which an extracellular secretion signal sequence is added to the antigen protein that is the target of the CAR, or a partial sequence thereof (i.e., partial protein). This method promotes the proliferation of the CAR-T cells by co-culturing the cell group containing the CAR-T cells and the cell group containing the CAR-T cells, thereby increasing the CAR cell content of the cell group.
分泌型抗原タンパク質遺伝子を導入した細胞群から放出される抗原タンパク質又はその部分タンパク質が、CAR-T細胞の表面に発現しているCARに対して結合すると、CAR-T細胞が活性化され、CAR-T細胞が分裂増殖し、その数を効率的に増大する。 When the antigen protein or its partial protein released from the cell group into which the secreted antigen protein gene has been introduced binds to the CAR expressed on the surface of the CAR-T cell, the CAR-T cell is activated and the CAR -T cells divide and proliferate, effectively increasing their number.
分泌型抗原タンパク質遺伝子が導入されるべき細胞群は、CAR-T細胞の材料細胞、材料細胞群に含まれる材料細胞を除く単核細胞、或いは材料細胞群(PBMC)それ自体であってもよい。或いはフィーダー細胞ではない、何れか他の細胞であって、生物障害性や毒性のない、又は生物障害性や毒性が相対的に低い細胞を選択することが好ましい。共培養される「CR-T細胞を含む細胞群」とは、PBMCを材料細胞群として使用した場合では、CAR遺伝子の導入により作出されたCAR-T細胞とPBMCに含まれている他の細胞とを含む細胞群のことをいう。分泌型抗原タンパク質遺伝子を導入した細胞群には、分泌型抗原タンパク質遺伝子を導入したCAR-T細胞、T細胞及び/又はその他の単核球などが含まれる。共培養とは、それらの細胞と、分泌型抗原タンパク質遺伝子が導入されていない新たに形成されたCAR-T細胞とが1つの培養系において共に培養される状況をいう。CAR-T細胞群と共培養される細胞群としては、CAR-T細胞に対して障害性や毒性のない、又は障害性や毒性が相対的に低く、又は/かつT細胞の増殖をサポート可能な細胞、例えば白血病細胞株のaK562細胞や横紋筋肉腫由来細胞株のSJCRH30細胞、又は/かつ分泌型抗原タンパク質遺伝子からのタンパク質発現量が高い細胞、例えばヒト胎児腎細胞のHEK293細胞などが挙げられる。 The cell group into which the secreted antigen protein gene should be introduced may be the material cells of CAR-T cells, mononuclear cells other than the material cells included in the material cell group, or the material cell group (PBMC) itself. . Alternatively, it is preferable to select any other cell that is not a feeder cell and has no biotoxicity or toxicity, or a cell with relatively low biotoxicity or toxicity. "Cell group containing CR-T cells" to be co-cultured refers to CAR-T cells created by introducing the CAR gene and other cells contained in PBMCs when PBMCs are used as the material cell group. A group of cells containing The cell group into which the secreted antigen protein gene has been introduced includes CAR-T cells, T cells, and/or other mononuclear cells into which the secreted antigen protein gene has been introduced. Co-culture refers to a situation in which these cells and newly formed CAR-T cells into which the secreted antigen protein gene has not been introduced are cultured together in one culture system. The cell group to be co-cultured with the CAR-T cell group is non-toxic or non-toxic to CAR-T cells, or has relatively low toxicity or toxicity, and/or can support T-cell proliferation. cells, such as aK562 cells, a leukemia cell line, SJCRH30 cells, a rhabdomyosarcoma-derived cell line, and/or cells that express a high amount of protein from a secreted antigen protein gene, such as HEK293 cells, a human embryonic kidney cell. It will be done.
実施形態によれば、フィーダー細胞必要としないという構成上の特徴は、また顕著な効果でもある。更に実施形態に従うCAR-T細胞の作製方法及びCAR-T細胞の含有率を向上する方法によれば、フィーダー細胞を使用してCAR-T細胞を製造した場合と比較してもより高い効率でCAR-T細胞を作製することが可能である。 According to embodiments, the structural feature of not requiring feeder cells is also a significant advantage. Furthermore, according to the method for producing CAR-T cells and the method for increasing the content of CAR-T cells according to the embodiment, CAR-T cells can be produced with higher efficiency than when CAR-T cells are produced using feeder cells. It is possible to generate CAR-T cells.
(第3の実施形態)
第3の実施形態によれば、フィーダー細胞を用いずにCAR-T細胞を作製する方法が提供される。第3の実施形態について図3を用いて説明する。この方法は、3つのステージ、S31、S32及びS33を備える。S31は、2つのフェーズ(a)と(b)とを含む。S31の(a)では、第1の培養系において、材料細胞にCAR遺伝子と、及びゲノム組込み促進剤を導入してCAR-T細胞を得る。(b)では、第1の培養系と互いに独立又は非独立の第2の培養系において、材料由来細胞から当該CARの標的である抗原タンパク質又はその一部タンパク質を分泌させる。(a)と(b)は同時に行われても、段階的に行われてもよい。また、詳しくは後述するが、第1の培養系と第2の培養系の関係は、互いに独立していてもよく、互いに非独立であってもよい。即ち、第1の培養系と第2の培養系がそれぞれ別の容器内にそれぞれ形成されてもよく、或いは1つの反応容器内に一部又は完全に重なり合って存在してもよい。即ち、「第1の培養系」=「第2の培養系」であっであってもよい。S32では、分泌された抗原タンパク質又はその一部タンパク質を、S31(a)のCAR遺伝子、及びゲノム組込み促進剤の導入で作出されたCAR-T細胞に接触させて、CAR-T細胞の分裂増殖を促進させる。S33では、遺伝子導入によるCAR-T細胞の作出と、CAR-T細胞の分裂増殖を促進させることによって目的のCAR-T細胞含有率が高い細胞群を得る。
(Third embodiment)
According to a third embodiment, a method for producing CAR-T cells without using feeder cells is provided. A third embodiment will be described using FIG. 3. This method comprises three stages, S31, S32 and S33. S31 includes two phases (a) and (b). In (a) of S31, in the first culture system, the CAR gene and the genome integration promoter are introduced into the material cells to obtain CAR-T cells. In (b), in a second culture system that is independent or non-independent of the first culture system, the antigen protein or a partial protein thereof that is the target of the CAR is secreted from the material-derived cells. (a) and (b) may be performed simultaneously or in stages. Furthermore, although the details will be described later, the relationship between the first culture system and the second culture system may be mutually independent or may be mutually non-independent. That is, the first culture system and the second culture system may be formed in separate containers, or may partially or completely overlap in one reaction container. That is, the "first culture system" may be equal to the "second culture system." In S32, the secreted antigen protein or a part thereof is brought into contact with CAR-T cells created by introducing the CAR gene of S31(a) and a genome integration promoter, and the CAR-T cells divide and proliferate. promote. In S33, a cell group with a high target CAR-T cell content is obtained by generating CAR-T cells through gene transfer and promoting the division and proliferation of CAR-T cells.
遺伝子導入によるCAR-T細胞の作出は、CARをコードする核酸と当該核酸を細胞のゲノムに組み込む酵素遺伝子或いはタンパク質(ゲノム組込み促進剤)を包含する第1のリポソーム、及びT細胞を含む材料細胞とを接触させて、当該核酸を材料細胞に導入することにより行われる。抗原タンパク質又はその一部タンパク質を分泌させることは、当該分泌型抗原タンパク質をコードする核酸を、材料細胞及び/又は当該CARをコードする核酸が導入された材料細胞に導入することで行われる。この導入は、当該細胞に第2のリポソームを接触させることで進行する。第2のリポソームは、当該抗原タンパク質又はその部分タンパク質をコードする配列に細胞外分泌シグナル配列を付加した分泌型抗原タンパク質をコードする核酸を包含する。CAR遺伝子、及びゲノム組込み促進剤の導入によるCAR-T細胞の作出とCAR-T細胞の分裂増殖を促進させることは、同時又は段階的に行われる。 Creation of CAR-T cells by gene transfer involves the use of a first liposome containing a nucleic acid encoding CAR and an enzyme gene or protein (genome integration promoter) that integrates the nucleic acid into the genome of the cell, and material cells containing T cells. This is carried out by bringing the nucleic acid into contact with the cell material and introducing the nucleic acid into the material cell. Secreting an antigen protein or a partial protein thereof is performed by introducing a nucleic acid encoding the secreted antigen protein into a material cell and/or a material cell into which a nucleic acid encoding the CAR has been introduced. This introduction proceeds by contacting the cell with the second liposome. The second liposome includes a nucleic acid encoding a secreted antigen protein, which is obtained by adding an extracellular secretion signal sequence to a sequence encoding the antigen protein or a partial protein thereof. Generation of CAR-T cells and promotion of division and proliferation of CAR-T cells by introducing a CAR gene and a genome integration promoter are performed simultaneously or in stages.
言い換えると、第3の実施形態は、図4に示される4つのステージを有する方法として解される。 In other words, the third embodiment can be understood as a method having four stages as shown in FIG.
1つ目のステージでは、第1の培養系において、CARをコードする核酸、及びゲノム組込み促進剤を包含する第1のリポソームとT細胞を含む材料細胞とを接触させて当該CARをコードする核酸を当該材料細胞に導入し、当該材料細胞からCAR-T細胞を作出する(S41)。 In the first stage, in a first culture system, a first liposome containing a nucleic acid encoding a CAR and a genome integration promoter is brought into contact with a material cell containing T cells to obtain a nucleic acid encoding the CAR. is introduced into the material cells, and CAR-T cells are generated from the material cells (S41).
2つ目のステージでは、前記第1の培養系と互いに独立又は非独立の第2の培養系において、当該材料細胞及び/又は当該CARをコードする核酸を導入された前記材料細胞に、当該CARの標的である抗原タンパク質又はその部分タンパク質をコードする配列に細胞外分泌シグナル配列を付加した分泌型抗原タンパク質をコードする核酸を包含する第2のリポソームを接触させて当該分泌型抗原タンパク質をコードする核酸を当該細胞に導入し、当該細胞から当該抗原タンパク質又はその一部タンパク質を分泌させる(S42)。 In the second stage, in a second culture system that is independent or non-independent of the first culture system, the CAR is introduced into the material cells and/or the material cells into which the nucleic acid encoding the CAR is introduced. A second liposome containing a nucleic acid encoding a secreted antigen protein in which an extracellular secretion signal sequence is added to a sequence encoding an antigen protein or a partial protein thereof that is a target of is introduced into the cells, and the antigen protein or a partial protein thereof is secreted from the cells (S42).
3つ目のステージでは、前記CAR遺伝子、及びゲノム組込み促進剤の導入により形成されたCAR-T細胞に前記分泌された抗原タンパク質又はその一部タンパク質を接触させ、当該CAR-T細胞の分裂増殖を促進させる(S43)。 In the third stage, the secreted antigen protein or a partial protein thereof is brought into contact with the CAR-T cells formed by introducing the CAR gene and the genome integration promoter, and the CAR-T cells undergo division and proliferation. (S43).
4つ目のステージでは、前記CAR遺伝子及びゲノム組込み促進剤の導入によりCAR-T細胞を作出することと前記分裂増殖を促進させることにより、目的のCAR-T細胞の含有率が高い細胞群を作製する(S44)。 In the fourth stage, CAR-T cells are generated by introducing the CAR gene and genome integration promoter, and the division and proliferation is promoted to create a cell group with a high content of the desired CAR-T cells. Create (S44).
第3の実施形態に従えば、フィーダー細胞を用いずにCAR-T細胞含有率が高い細胞群を安定に且つ高効率に製造することが可能である。フィーダー細胞を使用する必要がないので、操作も簡便であり、多くの医療機関や研究機関が導入し易く、従って、がんの治療や研究においても顕著な効果を奏することが予測される。 According to the third embodiment, it is possible to stably and highly efficiently produce a cell group with a high CAR-T cell content without using feeder cells. Since there is no need to use feeder cells, it is easy to operate and can be easily introduced into many medical institutions and research institutions, and is therefore predicted to have a significant effect in cancer treatment and research.
(第4の実施形態)
第4の実施形態に従うフィーダー細胞を用いずにCAR-T細胞を作製する方法の1例を図5及び図6を用いて説明する。この方法は、各リポソームが、導入されるべき全種類の遺伝子のための物質を内包する1種類のリポソームを使用することによって、1ステップでリポソームの添加と遺伝子導入の操作が完了する、非常に操作の簡便な1ステップ法である。
(Fourth embodiment)
An example of a method for producing CAR-T cells without using feeder cells according to the fourth embodiment will be explained using FIGS. 5 and 6. This method is extremely efficient, as each liposome contains materials for all types of genes to be introduced, and the liposome addition and gene transfer operations are completed in one step. It is a one-step method that is easy to operate.
図5(a)に示すように、使用するリポソーム50は、CAR細胞作製用の遺伝子セットと分泌型抗原タンパク質遺伝子とを含む。図5の例では、具体的にはリポソーム50は、脂質粒子51内にCARをコードする核酸52と、ゲノム組込み促進剤53、例えばPB-mRNAと、分泌型抗原タンパク質をコードする核酸54とを内包している。図5(b)は、分泌型抗原タンパク質をコードする核酸54の例を模式的に拡大した図である。分泌型抗原タンパク質をコードする核酸54は、抗原タンパク質部分配列54aと、その一方の末端に付与された分泌シグナル配列54bと、他端にリンカー54cを介して連結している修飾配列54d、例えば、IgG Fc-tag配列とを備える。細胞内で産生された抗原タンパク質は、分泌シグナルによって細胞外へと放出される。IgG Fc-tagは、任意の配列であり、細胞外へと放出されたタンパク質に水親和性を与えて安定化に寄与する。CARの標的の1例は、CD19である。従って、抗原タンパク質の1例はCD19である。抗原タンパク質は、CD19の一部分であってもよく、それはペプチドと解される長さであってもよい。例えば、CD19タンパク質の部分タンパク質の1例は、CD19タンパク質の細胞外ドメイン配列であり得る。細胞外分泌シグナル配列は、これに限定するものではないがインターロイキン6のシグナル配列であり得る。
As shown in FIG. 5(a), the
このリポソーム50を容器55のCAR-T細胞作製用培地56に添加する。容器55には、予めCAR-T細胞作製用培地56中に材料細胞57を用意する(図5の(c))。材料細胞57は、上述したようにPBMC中のT細胞であってよい。PBMCは、治療対象である患者から予め採取された末梢血から調製され得る。
This
末梢血単核球細胞(PBMC)の分離は、例えば、次のように行われてよい。ヒトから採取した末梢血から単核球をフィコール密度勾配遠心によって分離して、末梢血単核球細胞(PBMC: Peripheral Blood Mononuclear Cell)を得る。具体的には、例えば単核球分離用のフィコール試薬(Ficoll-Paque Premium, Cytiva社など)を使用して、密度勾配遠心により、PBMCを遠心分離する。 Isolation of peripheral blood mononuclear cells (PBMC) may be performed, for example, as follows. Mononuclear cells are separated from peripheral blood collected from humans by Ficoll density gradient centrifugation to obtain peripheral blood mononuclear cells (PBMCs). Specifically, PBMCs are centrifuged by density gradient centrifugation using, for example, Ficoll reagent for mononuclear cell separation (Ficoll-Paque Premium, Cytiva, etc.).
PBMCに含まれるT細胞の培養は、例えば、次の通りに行い得る。分離したPBMCに含まれるT細胞を培養する。T細胞の培養は、市販のT細胞培養用培地(TexMACS, Miltenyi biotec社や、AlyS705, 細胞科学研究所社など)を用いて行う。培地には必要に応じて、T細胞の生存や増殖を補助する成分、例えば人工血清(動物由来の成分を含まない、人工的に調整された血清)、サイトカイン(インターロイキン7やインターロイキン15など)を加えてもよい。 Cultivation of T cells contained in PBMC can be performed, for example, as follows. Cultivate T cells contained in the separated PBMC. T cells are cultured using a commercially available T cell culture medium (TexMACS, Miltenyi biotec, AlyS705, Cell Science Institute, etc.). The medium contains components that support the survival and proliferation of T cells, such as artificial serum (artificially prepared serum that does not contain animal-derived components) and cytokines (such as interleukin 7 and interleukin 15), as necessary. ) may be added.
材料細胞57に接触したリポソーム50は、細胞内エンドサイトーシスにより材料細胞57に取り込まれた後に細胞質においてその内容物を放出する。材料細胞57であるT細胞に取り込まれたリポソーム50からのCARをコードする核酸52が、核内へと入り、ゲノムへと組み込まれることによって、材料細胞57であるT細胞は、CAR-T細胞58となる。その細胞膜上にはCAR59が発現する。他方、分泌型抗原タンパク質をコードする核酸54は、(核酸がDNAの場合はリポソームから細胞質に放出された後に細胞核に移行し、そこでmRNAに転写された後に、核酸がmRNAの場合にはリポソームから細胞質に放出された後に、)細胞質において抗原タンパク質60へと翻訳されて培地56へと放出される(図5の(d))。CAR59に抗原タンパク質60が結合すると、CAR-T細胞58は、活性化され、効率よく分裂増殖が進んでいく。細胞の性質を保ったまま増殖させることを目的とした拡大培養をした際のCAR-T細胞58の様子を模式的に図5(e)に示す。抗原タンパク質により刺激され活性化されたCAR-T細胞は、細胞分裂が促進され、更なるCAR-T細胞61が形成される。培地中56のPBMCにリポソーム50を添加してから14日程度で、例えば、治療に必要な細胞数のCAR-T細胞が作製される。
The
このような1ステップ法によるフィーダー細胞を用いずにCAR-T細胞を作製する方法の1例のスキームを図6に示す。まず、所望のリポソームを1種類準備する(S51)。上述の例の場合、脂質粒子51内にCARをコードする核酸52と、PB-mRNA53と、分泌型抗原タンパク質をコードする核酸54とを内包するリポソーム50を準備した。続いて、材料細胞を含む培養系にリポソームを持ち込む(S52)。ここではCAR-T細胞作製用培地56中にPBMCを用意し、その培地へリポソームを添加した。次に、適切な条件下で培養することによって、フィーダー細胞を用いずに目的とするCAR-T細胞群を得る(S53)。これらの工程により、CAR-T細胞を作製する方法の1例が達成される。
A scheme of an example of a method for producing CAR-T cells without using feeder cells by such a one-step method is shown in FIG. First, one type of desired liposome is prepared (S51). In the case of the above example, a
フィーダー細胞表面に抗原を提示させた抗原提示フィーダー細胞を使用した場合と、実施形態に従う方法で得られるCAR-T増幅効果の違いは次の通りである。CAR-T増幅では、抗原を如何に効率よくCAR-Tに接触させることができるか(活性化できるか)が重要となる。フィーダー細胞の場合では、培養器の底面に付着した状態で細胞表面に抗原を提示する。このため、フィーダー細胞がT細胞に対して提示できる抗原の最大値は培養器底面の面積による制限を受ける。またフィーダー細胞の場合、細胞が培養器底面に付着しているので、T細胞との接触面は、T細胞の片面に限定される。これに対して、分泌型抗原ペプチドは、培養器中の培養液に溶解していることから、T細胞に対して提示できる抗原の数は培養液の体積に依存する。体積は(面積×高さ)であることから、分泌型抗原ペプチドは、フィーダー細胞より、培養器の(高さ)分、多くの抗原を提示することができる。さらに、分泌型抗原ペプチドは、培養液に溶解しているため、T細胞との接触面は細胞全面で、細胞への接触効率が非常に高い。これらの特徴により、実施形態に従う方法は、抗原提示フィーダー細胞に比べて、CAR-Tへの接触効率(活性化効率)が高く、CAR-T増幅効果が高いものとなる。 The differences in the CAR-T amplification effect obtained when using antigen-presenting feeder cells with antigens presented on the surface of the feeder cells and the method according to the embodiment are as follows. In CAR-T amplification, it is important to efficiently bring the antigen into contact with CAR-T (activate it). In the case of feeder cells, the antigen is presented on the cell surface while attached to the bottom of the culture vessel. Therefore, the maximum amount of antigen that feeder cells can present to T cells is limited by the area of the bottom of the culture vessel. In the case of feeder cells, since the cells are attached to the bottom of the culture vessel, the contact surface with T cells is limited to one side of the T cells. On the other hand, since secreted antigenic peptides are dissolved in the culture medium in the incubator, the number of antigens that can be presented to T cells depends on the volume of the culture medium. Since the volume is (area x height), the secreted antigen peptide can present more antigen than the feeder cells by the (height) of the culture vessel. Furthermore, since the secreted antigenic peptide is dissolved in the culture medium, the contact surface with T cells is the entire surface of the cell, and the efficiency of contact with the cells is extremely high. Due to these characteristics, the method according to the embodiment has a higher efficiency of contacting CAR-T (activation efficiency) and a higher effect of amplifying CAR-T than antigen-presenting feeder cells.
第4の実施形態に従えば、フィーダー細胞を用いずにCAR-T細胞を安定に且つ高効率で製造することが可能である。また1ステップ法であるために、簡便にまた汚染を受ける可能性も極力減らすことが可能である。 According to the fourth embodiment, CAR-T cells can be produced stably and with high efficiency without using feeder cells. Furthermore, since it is a one-step method, it is simple and the possibility of contamination can be reduced as much as possible.
(第5の実施形態)
第4の実施形態で示したフィーダー細胞を用いずにCAR-T細胞を作製する方法の1ステップ法は、2種類のリポソームを使用することに行われてもよい。第5の実施形態による方法は、2種類のリポソームを使用すること以外は第4の実施形態と同様に実施され得る。図7及び図8を使用して、2種類のリポソームについて説明する。
(Fifth embodiment)
The one-step method for producing CAR-T cells without using feeder cells shown in the fourth embodiment may be performed using two types of liposomes. The method according to the fifth embodiment can be carried out in the same manner as the fourth embodiment except for using two types of liposomes. Two types of liposomes will be explained using FIGS. 7 and 8.
この方法で使用される第1のリポソーム70Aは、脂質粒子51中にCARをコードする核酸52と、ゲノム組込み促進剤53とを包含する。第2のリポソーム70Bは、分泌型抗原タンパク質をコードする核酸54を包含する(図7(a))。これらの2種類の所望のリポソームを準備する。予め培地56を入れた容器55に材料細胞57を添加したところへ、2種類のリポソームを同時に加える(図7(b))。これを適切な条件下で培養することによって目的とするCAR-T細胞群を得る(図7(c))。図には示していないが、この場合も拡大培養を続けると図5(e)のようにCAR-T細胞の分裂が促進される。培地中56のPBMCにリポソーム50を添加してから14日程度で、例えば、治療に必要な細胞数のCAR-T細胞が作製される。
The
このような1ステップ法によるフィーダー細胞を用いずにCAR-T細胞を作製する方法の1例のスキームを図8に示す。まず、所望のリポソームを2種類準備する(S61)。上述の例の場合、脂質粒子51内にCARをコードする核酸52と、PB-mRNA53とを含むリポソーム70Aと、分泌型抗原タンパク質をコードする核酸54とを内包するリポソーム70Bとを準備した。続いて、材料細胞を含む培養系にこれらのリポソームを持ち込む(S62)。ここではCAR-T細胞作製用培地56中にPBMCを用意し、その培地へリポソームを添加した。次に、適切な条件下で培養することによって、フィーダー細胞を用いずに目的とするCAR-T細胞群を得る(S63)。これらの工程により、CAR-T細胞を作製する方法の1例が達成される。
FIG. 8 shows a scheme of an example of a method for producing CAR-T cells without using feeder cells by such a one-step method. First, two types of desired liposomes are prepared (S61). In the case of the above example, a
第5の実施形態に従えば、フィーダー細胞を用いずにCAR-T細胞含有率が高い細胞群を安定に且つ高効率に製造することが可能である。また1ステップ法であるために、簡便にまた汚染を受ける可能性も極力減らすことが可能である。また、CARをコードする核酸52と分泌型抗原タンパク質をコードする核酸54とを第1のリポソーム70Aと第2のリポソーム70Bに分けて封入されているため、組み合わせることによる多様化が可能であり、汎用性にも優れ、商品として扱う場合や種々の研究を行う場合などにも有利である。
According to the fifth embodiment, it is possible to stably and highly efficiently produce a cell group with a high CAR-T cell content without using feeder cells. Furthermore, since it is a one-step method, it is simple and the possibility of contamination can be reduced as much as possible. Furthermore, since the
(第6の実施形態)
第5の実施形態で示された2種類のリポソームを使用すれば、2ステップ法としてCAR-T細胞を作製する方法が達成できる。図9を用いて説明する。図9では、1つ目のステップとしてのA系列(a-1)~(a-2)と2つ目のステップであるB系列(b-1)~(b-4)の各工程と培養系の様子を模式的に示し、全体の流れをスキームとして図10に示す。
(Sixth embodiment)
By using the two types of liposomes shown in the fifth embodiment, a two-step method for producing CAR-T cells can be achieved. This will be explained using FIG. 9. In Figure 9, each process and culture of the A series (a-1) to (a-2) as the first step and the B series (b-1) to (b-4) as the second step are shown. FIG. 10 schematically shows the state of the system and shows the overall flow as a scheme.
第5の実施形態にて説明した通りの2種類のリポソームを準備する(図9(a-1),(b-1)、図10(S71))。A系列では、第1のリポソーム70Aが第1の培養系である容器55Aの培地56に添加される。第1のリポソームは、培地56A中で材料細胞57に接触して取り込まれ、結果としてCAR-T細胞が作製される(図9(a-2)、図10の(S72),(S73))。一方、B系列では、第2のリポソーム70Bは、第1の培養系とは独立した第2の培養系である容器55Bに含まれた培地66に添加される。培地66には任意の細胞77が含まれている(図9(b-2)、図10の(S72))。第2のリポソーム70Bを第2の培養系である容器55Bへと添加するタイミングは、第1のリポソーム70Aを第1の培養系である容器55Aに添加するよりも前であっても、後であっても、同時であってもよい。また複数の時点で添加してもよい。リポソーム70Bとの接触により、任意の細胞77に分泌型抗原タンパク質をコードする核酸54が導入され、抗原タンパク質60が培地66に放出される(図9(b-3)、図10(S73))。次に培地66を回収し、第1の培養系である容器55Aに添加する(図9(a-2)、図10の(S74))。図9(a-2)においては、第1のリポソームの添加とB系列から得られた抗原タンパク質60を含む培地66の添加とを同時に行った場合の第1の培養系の様子を示した。
Two types of liposomes as described in the fifth embodiment are prepared (FIG. 9(a-1), (b-1), FIG. 10 (S71)). In series A, the
ここでは培地66を回収して第1の培養系に添加することによって抗原タンパク質60を持ち込む例を示した。放出される抗原タンパク質が水溶性となるように構築することにより、当該抗原タンパク質とCAR-T細胞との接触効率が上昇し、より高効率に増幅を進めることが可能である。任意の細胞77は、第1の培養系において使用される材料細胞や材料細胞群であってもよく、それ以外の抗原タンパク質をより有利の行うことが可能な何れの公知の細胞を使用してもよい。また、生体に無害であることが知られた細胞が好ましい。培地66は、使用される任意の細胞77の細胞種に応じて選択すればよい。
Here, an example is shown in which the
第6の実施形態によれば、所望のタイミングで、且つ所望量の抗原タンパク質を産生することが可能である。CAR-T遺伝子導入によるCAR-T細胞の作出と対応させてもよく、第1のリポソームの添加に先駆けて行っておいてもよい。また任意に細胞種を選択できるために材料細胞及び材料細胞群の抗原タンパク質生成能が低い場合、或いはそのような場合に備えて、1ステップ法と組わせてB系統を行ってもよい。 According to the sixth embodiment, it is possible to produce a desired amount of antigen protein at a desired timing. This may be done in conjunction with the production of CAR-T cells by CAR-T gene introduction, or may be carried out prior to the addition of the first liposome. Furthermore, since the cell type can be arbitrarily selected, the B lineage may be performed in combination with the one-step method in cases where the antigen protein production ability of the material cells and material cell groups is low, or in preparation for such a case.
(第7の実施形態)
第7の実施形態によれば、フィーダー細胞を用いずにCAR-T細胞を作製する方法に使用するための細胞作製用キットが提供される。当該細胞作製用キットは、リポソームの補完安定性を向上させる物質と共に、以下のA及び/又はBのリポソーム群を含むキットであり得る;
・Aのリポソーム群:
キメラ抗体受容体(CAR)をコードする核酸を包含する第1のリポソーム、及び
当該CARの標的である抗原タンパク質又はその部分タンパク質をコードする配列に細胞外分泌シグナル配列を付加した分泌型抗原タンパク質をコードする核酸を包含する第2のリポソーム、
・Bのリポソーム群:
当該CARをコードする核酸と
当該CARの標的である抗原タンパク質又はその部分タンパク質をコードする配列に細胞外分泌シグナル配列を付加した分泌型抗原タンパク質をコードする核酸と
を共に包含するリポソーム。
(Seventh embodiment)
According to the seventh embodiment, a cell production kit for use in a method for producing CAR-T cells without using feeder cells is provided. The cell production kit may include the following liposome group A and/or B together with a substance that improves the complementation stability of liposomes;
・Liposome group A:
A first liposome containing a nucleic acid encoding a chimeric antibody receptor (CAR), and encoding a secreted antigen protein in which an extracellular secretion signal sequence is added to a sequence encoding an antigen protein or a partial protein thereof that is a target of the CAR. a second liposome comprising a nucleic acid;
・Liposome group B:
A liposome containing both a nucleic acid encoding the CAR and a nucleic acid encoding a secreted antigenic protein obtained by adding an extracellular secretion signal sequence to a sequence encoding an antigenic protein or a partial protein thereof that is a target of the CAR.
Aのリポソーム群に含まれる第1のリポソームの例は、図7(a)に示す第1のリポソーム70Aであり、第2のリポソームの例は図7(a)に示す第2のリポソーム70Bである。Aのリポソーム群は、第1のリポソームと第2のリポソームをそれぞれ複数で含むグループである。
An example of the first liposome included in the liposome group A is the
Bのリポソーム群に含まれるリポソームの例は、図5(a)に示されたリポソームであり、Bのリポソーム群は、例えば、1ステップ1リポソームの方法の要素、即ち、1リポソームがCAR遺伝子と抗原タンパク質遺伝子の両方の発現を可能にする要素を1つのリポソームに包含しているグループである。更にこのリポソームには、CAR遺伝子を導入及び発現させることを可能にする更なる要素を含み得る。 An example of a liposome included in the liposome group B is the liposome shown in FIG. 5(a). This is a group of liposomes that contain elements that enable expression of both antigen protein genes in one liposome. Furthermore, the liposome may contain further elements that make it possible to introduce and express the CAR gene.
図11を参照しながらリポソーム70A及び70Bについて更に説明をする。リポソーム70A及び70Bを構成する脂質粒子51は、例えばその材料である複数の脂質の分子が非共有結合で配列してできた脂質膜から構成され得る。脂質粒子51は、中空82であり、その部分にCARをコードする核酸52及び任意のゲノム組込み促進剤53、及び/又は分泌型抗原タンパク質をコードする核酸54が封入される。脂質粒子51は、細胞に取り込まれ分解される性質を有するものであればよいが、その構成成分として、例えば、第1脂質81a及び第2脂質81bを少なくとも含むものが挙げられる。第1脂質81aは下記式(I)を有する脂質化合物であり、第2脂質81bは下記式(II)を有する脂質化合物である。式(I)に示す第1の脂質化合物はFFT10であり、式(II)に示す第2の脂質化合物はFFT20である。
The
細胞作製用キットは、リポソームに加えて、リポソームの保管安定性を向上させる物質を更に含んでもよい。保管安定性を向上させる物質は、限定されるものではないが、例えば、アルブミン、リポタンパク、アポリポタンパク、グロブリン等の糖タンパク等:pH調整剤、緩衝化剤、張度調整剤等;ナトリウムアセテート、ナトリウムラクテート、ナトリウムクロリド、カリウムクロリド、カルシウムクロリド等の製薬学的に許容可能であり、組成物を生理的状態に近づける関与剤;フリーラジカルによるダメージを抑制する、α-トコフェロールのような脂肪親和性フリーラジカルクエンチャー;脂質の過酸化損傷を抑制し、貯蔵安定性を改良するためのフェリオキサミンのような水溶性キレーター等の脂質保護剤等である。 In addition to the liposome, the cell production kit may further contain a substance that improves the storage stability of the liposome. Substances that improve storage stability include, but are not limited to, glycoproteins such as albumin, lipoproteins, apolipoproteins, and globulins; pH adjusters, buffering agents, tonicity adjusters, etc.; sodium acetate; , pharmaceutically acceptable agents such as sodium lactate, sodium chloride, potassium chloride, calcium chloride, which bring the composition closer to physiological conditions; lipophilic agents such as α-tocopherol, which inhibit free radical damage; free radical quenchers; lipid protectants such as water-soluble chelators such as ferrioxamine to inhibit peroxidative damage to lipids and improve storage stability;
細胞作製用キットは、リポソームを適切な担体に含ませた液体の組成物として備えてもよい。担体は、例えば、水、生理食塩水のような食塩水、グリシン水溶液又は緩衝液等である。或いは、リポソームは乾燥した粉末状の組成物として細胞作製用キットに備えられてもよい。粉末状の組成物は、使用者が上記担体のような適切な液体を加えることによって使用可能となる。また、このようなリポソームは何れも適切な容器や小袋などに収容されていてよい。そのような組成物やリポソームは、公知の方法で滅菌されていることも好ましい。 The cell production kit may be provided as a liquid composition containing liposomes in a suitable carrier. Examples of the carrier include water, a saline solution such as physiological saline, an aqueous glycine solution, or a buffer solution. Alternatively, the liposome may be included in a cell production kit as a dry powder composition. Powdered compositions are ready for use by the user by adding a suitable liquid, such as the carrier described above. Further, any such liposomes may be contained in a suitable container, sachet, or the like. It is also preferred that such compositions and liposomes be sterilized by known methods.
細胞作製用キットは、更に、培養用ディッシュ、シャーレ、チューブなどの滅菌容器、培地、pH調整試薬、抗生物質、増殖因子、ビタミン、塩類、洗浄用組成物、滅菌超純水、PBMC調整用試薬、リポソーム調製用脂質組成物、各種インストラクションなど、所望に応じた要素を更に備えてもよい。 The cell production kit further includes sterile containers such as culture dishes, petri dishes, and tubes, culture media, pH adjustment reagents, antibiotics, growth factors, vitamins, salts, cleaning compositions, sterile ultrapure water, and PBMC adjustment reagents. , a lipid composition for liposome preparation, various instructions, and other desired elements may be further provided.
脂質粒子51は、第1脂質81a及び第2脂質81bの他に更なる脂質を含んでもよい。脂質粒子51を構成する脂質分子材料の組成の中で、第1脂質81aと第2脂質81bとからなる画分を以下「第1画分」と称する。また、第1脂質81a及び第2脂質81b以外の脂質分子材料からなる画分を以下「第2画分」と称する。第2画分に含まれる脂質をまとめて以下「第3脂質81c」とも称する。
The
第1画分及び第2画分という言葉は、脂質粒子51の構成成分の組成を表すものであって、そこに含まれる脂質の物理的な位置を示すのもではない。例えば、第1画分及び第2画分の構成成分は脂質粒子51の中でそれぞれ1つのまとまりになっている必要はなく、第1画分に含まれる脂質と第2画分に含まれる脂質とは混ざり合って存在し得る。脂質粒子51を構成する脂質材料全体に対する第1画分の配合割合は30%以上50%未満(モル比)であることが好ましい。
The terms "first fraction" and "second fraction" refer to the composition of the constituent components of the
第1画分における第2脂質81bの配合割合は40%以上であることが好ましい。その場合、核酸導入によるT細胞性腫瘍細胞特異性、及びリポソームに包含される物質の導入効率が向上し得る。また第1画分中の第2脂質81bの配合割合が50%以上である場合、特に生体内、即ち、インビボにおけるリポソームに包含される導入されるべき物質の導入量が向上し得るためより好ましい。第2脂質81bの配合割合が60%以上であれば更に好ましい。第2脂質81bの配合割合の上限は80%、90%、95%、96%、97%、98%又は99%であり得る。
The blending ratio of the
第1画分における第1脂質81aと第2脂質81bとの配合割合により、脂質粒子51の粒子径及び細胞への浸透性が変化する場合もある。例えば、第2脂質81bが多いほど脂質粒子51の粒子径は大きくなり得る。脂質粒子51の平均粒子径は、用途に応じて変更することが可能であり、例えば約50nm~約300nmに調節することが好ましい。例えばインビボで用いる場合は、約70nm~約100nmとすることが好ましい場合がある。
Depending on the blending ratio of the
脂質粒子51の第2画分に含まれる第3脂質81cの種類は限定されるものではないが、例えば、第2画分はベース脂質を含む。ベース脂質として、例えば、生体膜の主成分である脂質を用いることができる。ベース脂質は、リン脂質又はスフィンゴ脂質、例えば、ジアシルホスファチジルコリン、ジアシルホスファチジルエタノールアミン、セラミド、スフィンゴミエリン、ジヒドロスフィンゴミエリン、ケファリン又はセレブロシド、或いはこれらの組み合わせ等である。
Although the type of the
例えば、ベース脂質として、
1,2-ジオレオイル-sn-グリセロ-3-ホスホエタノールアミン(DOPE)、
1,2-ステアロイル-sn-グリセロ-3-ホスホエタノールアミン(DSPE)、
1,2-ジパルミトイル-sn-グリセロ-3-ホスファチジルコリン(DPPC)、
1-パルミトイル-2-オレオイル-sn-グリセロ-3-ホスファチジルコリン(POPC)、
1,2-ジ-O-オクタデシル-3-トリメチルアンモニウムプロパン(DOTMA)、
1,2-ジオレオイル-3-ジメチルアンモニウムプロパン(DODAP)、
1,2-ジミリストイル-3-ジメチルアンモニウムプロパン(14:0 DAP)、
1,2-ジパルミトイル-3-ジメチルアンモニウムプロパン(16:0 DAP)、
1,2-ジステアロイル-3-ジメチルアンモニウムプロパン(18:0 DAP)、
N-(4-カルボキシベンジル)-N,N-ジメチル-2,3-ビス(オレオイロキシ)プロパン(DOBAQ)、
1,2-ジオレオイル-3-トリメチルアンモニウムプロパン(DOTAP)、
1,2-ジオレオイル-sn-グリセロ-3-ホスホクロリン(DOPC)、
1,2-ジリノレオイル-sn-グリセロ-3-ホスホクロリン(DLPC)、
1,2-ジオレオイル-sn-グリセロ-3-ホスホ-L-セリン(DOPS)、又はコレステロール、
或いはこれらの何れかの組み合わせ等を用いることが好ましい。
For example, as a base lipid,
1,2-dioleoyl-sn-glycero-3-phosphoethanolamine (DOPE),
1,2-stearoyl-sn-glycero-3-phosphoethanolamine (DSPE),
1,2-dipalmitoyl-sn-glycero-3-phosphatidylcholine (DPPC),
1-palmitoyl-2-oleoyl-sn-glycero-3-phosphatidylcholine (POPC),
1,2-di-O-octadecyl-3-trimethylammoniumpropane (DOTMA),
1,2-dioleoyl-3-dimethylammonium propane (DODAP),
1,2-dimyristoyl-3-dimethylammoniumpropane (14:0 DAP),
1,2-dipalmitoyl-3-dimethylammonium propane (16:0 DAP),
1,2-distearoyl-3-dimethylammonium propane (18:0 DAP),
N-(4-carboxybenzyl)-N,N-dimethyl-2,3-bis(oleoyloxy)propane (DOBAQ),
1,2-dioleoyl-3-trimethylammoniumpropane (DOTAP),
1,2-dioleoyl-sn-glycero-3-phosphochlorin (DOPC),
1,2-dilinoleoyl-sn-glycero-3-phosphochlorin (DLPC),
1,2-dioleoyl-sn-glycero-3-phospho-L-serine (DOPS), or cholesterol,
Alternatively, it is preferable to use a combination of any of these.
上記ベース脂質として、特にカチオン性脂質又は中性脂質の脂質を用いること好ましく、その含有量によって脂質粒子51の酸解離定数を調節することができる。カチオン性脂質としてDOTAPを用いることが好ましく、中性脂質としてDOPEを用いることが好ましい。
It is particularly preferable to use a cationic lipid or a neutral lipid as the base lipid, and the acid dissociation constant of the
第2画分は、脂質粒子51の凝集を防止する脂質を含むこともまた好ましい。例えば、凝集を防止する脂質は、PEG修飾した脂質、例えば、ポリエチレングリコール(PEG)ジミリストイルグリセロール(DMG-PEG)、オメガ-アミノ(オリゴエチレングリコール)アルカン酸モノマーから誘導されるポリアミドオリゴマー(米国特許第6,320,017号)又はモノシアロガングリオシド等を更に含むことが好ましい。
It is also preferred that the second fraction contains a lipid that prevents aggregation of the
第2画分は、更に、毒性を調整するための相対的に毒性の低い脂質;脂質粒子51に配位子を結合させる官能基を有する脂質;ステロール、例えばコレステロール等の内包物の漏出を抑制するための脂質等の脂質を含んでもよい。特に、コレステロールを含ませることが好ましい。
The second fraction further includes a relatively low toxicity lipid for adjusting toxicity; a lipid having a functional group that binds a ligand to the
第2画分に用いる脂質の種類及びその組成は、目的とする脂質粒子51の酸解離定数(pKa)若しくは脂質粒子51の粒子径、封入される物質の種類、或いは細胞中での安定性等を考慮して適切に選択される。
The type of lipid used in the second fraction and its composition are determined by the acid dissociation constant (pKa) of the
例えば、第2画分は、DOPEと、DOTAPと、コレステロールと、DMG-PEGとを含む場合、導入されるべき遺伝子核酸、例えば、例えば、CARをコードする核酸52、ゲノム組込み促進剤53、分泌型抗原タンパク質をコードする核酸54の送達効率が特に優れているため好ましい。以降、便宜的に、CARをコードする核酸52、任意の核導入促進剤53、分泌型抗原タンパク質をコードする核酸54を「導入されるべき遺伝子核酸52~54」などとも記載する。
For example, when the second fraction contains DOPE, DOTAP, cholesterol, and DMG-PEG, the gene nucleic acid to be introduced, for example, the nucleic
脂質粒子51内には、導入されるべき遺伝子核酸52~54の他に、必要に応じて更なる成分が内包されていてもよい。更なる成分は、例えば、pH調整剤、浸透圧調整剤又は遺伝子活性化剤等である。pH調整剤は、例えば、クエン酸などの有機酸及びその塩等である。浸透圧調整剤は、糖又はアミノ酸等である。遺伝子活性化剤については後述する。
In addition to the gene
導入されるべき遺伝子核酸52~54及び必要に応じて他の物質を内包する脂質粒子51は、例えば、小分子を脂質粒子に封入する際に用いられる公知の方法、例えば、バンガム法、有機溶媒抽出法、界面活性剤除去法又は凍結融解法等を用いて製造することができる。例えば、脂質粒子51の材料を所望の比率でアルコール等の有機溶媒に含ませて得られた脂質混合物と、導入しようとする遺伝子核酸等の内包するべき成分を含む水性緩衝液を用意し、脂質混合物に水性緩衝液を添加する。得られた混合物を撹拌して懸濁することにより導入されるべき遺伝子核酸、例えば、CARをコードする核酸52、ゲノム組込み促進剤53、分泌型抗原タンパク質をコードする核酸54を所望に応じて内包した脂質粒子51が形成される。
The
脂質粒子51の構成成分の配合比は、脂質混合物中の各材料の配合比を変えることで容易に調節することができる。例えば、脂質粒子51の構成成分の混合比は、脂質混合物中の各材料の混合比と略同一であり得る。また、脂質粒子51に内包する物質の量比は、水性緩衝液中の両者の量比を変えることにより容易に調節することができる。
The blending ratio of the components of the
脂質粒子51は、T細胞と接触させることにより、例えば該細胞内にエンドサイトーシスにより取り込まれ得る。そして、導入されるべき遺伝子核酸、例えば、CARをコードする核酸52、ゲノム組込み促進剤53、分泌型抗原タンパク質をコードする核酸54が該細胞内に放出され得る。脂質粒子51は第1脂質81a及び第2脂質81bを含むことにより、T細胞により取り込まれやすく、他の細胞には取り込まれにくい性質を有する。したがって、脂質粒子51に導入されるべき遺伝子核酸を内包してT細胞に接触させる簡単な手順により、従来のように抗体又は受容体を用いることなく導入されるべき遺伝子核酸、例えば、CARをコードする核酸52、核導入促進剤53、分泌型抗原タンパク質をコードする核酸54を所望に応じて組み合わせて効率よくT細胞に導入することができる。それにより、フィーダー細胞を使用することなく、脂質粒子51はT細胞に選択的又は特異的に導入されるべき遺伝子核酸を送達することが可能である。
By bringing the
第7の実施形態の細胞作製用キットによれば、フィーダー細胞を使用することなく、フィーダー細胞を用いずにCAR-T細胞含有率が高い細胞群を作製する方法を簡便且つ容易に実施することが可能である。 According to the cell production kit of the seventh embodiment, a method for producing a cell group with a high CAR-T cell content can be carried out simply and easily without using feeder cells. is possible.
(第8の実施形態)
上述した何れの実施形態に従うフィーダー細胞を用いずにCAR-T細胞を作製する方法は、CAR-T細胞によるがんを治療するために利用することが可能である。ここでは、例えば、第4の実施形態及び図5に示す1ステップ法のCAR-T細胞を作製する方法を利用する自己免疫細胞療法の例について図12を参照しながら説明する。まず、リポソームを準備する(S91)。例えば、図5に示すように、脂質粒子51内にCARをコードする核酸52と、ゲノム組込み促進剤53、例えばPB-mRNAと、分泌型抗原タンパク質をコードする核酸54とを内包しているリポソーム50を準備する。次に、治療されるべき対象から材料細胞群を採取する(S92)。適切な培地中に材料細胞群を播種し、そこにリポソームを添加する(S93)。適切な条件下で材料細胞群を培養し、CAR-T細胞群を作製する(S94)。得られたCAR-T細胞群について、所望に応じて任意の試験を行う(S95)。CAR-T細胞群を対象に投与する(S96)。対象への投与は、得られたCAR-T細胞群のCAR-T含有率に基づいて投与量を決定して、静脈内投与により行われ得る。
(Eighth embodiment)
The method for producing CAR-T cells without using feeder cells according to any of the embodiments described above can be used to treat cancer using CAR-T cells. Here, for example, an example of autoimmune cell therapy using the fourth embodiment and the one-step method for producing CAR-T cells shown in FIG. 5 will be described with reference to FIG. 12. First, liposomes are prepared (S91). For example, as shown in FIG. 5, a liposome encapsulating within a lipid particle 51 a
また、得られたCAR-T細胞群は使用に供されるまで-180℃で凍結保存されてもよい。CAR-T細胞の凍結保存方法は、それ自身公知の何れかの生細胞のための凍結保存方法を使用できる。例えば、凍結保存液に懸濁し、凍結保存バッグ中で、例えば-150℃のフリーザーなどで凍結保存する。凍結保存に供される細胞の数は、最終的に得られたCAR-T細胞群に含まれる全ての種類の細胞についての総生細胞数や、CAR-T細胞の生細胞数を測定し、得られたCAR-T細胞含有率に基づいて決定され得る。更に、CAR-T細胞を他の細胞から分離することも可能である。例えば、CAR-T細胞/T細胞に特異的な細胞表面抗原に基づいて分離することができる。T細胞/CAR-T細胞を分離する場合は、T細胞表面の特異的抗原であるCD3に対する抗体(抗CD3抗体)を使用して、MACS(磁気細胞分離法)などの方法で分離すればよい。CAR-T細胞を分離する場合は、CARに特異的なイディオタイブ抗体を使用して、上述のMACSなどの方法で分離すればよい。 Furthermore, the obtained CAR-T cell population may be stored frozen at -180°C until it is used. As a cryopreservation method for CAR-T cells, any known cryopreservation method for living cells can be used. For example, it is suspended in a cryopreservation solution and stored frozen in a cryopreservation bag, for example, in a -150°C freezer. The number of cells to be subjected to cryopreservation is determined by measuring the total number of living cells of all types of cells included in the finally obtained CAR-T cell group and the number of living CAR-T cells. It can be determined based on the obtained CAR-T cell content. Furthermore, it is also possible to separate CAR-T cells from other cells. For example, CAR-T cells/T cells can be separated based on cell surface antigens specific to them. To isolate T cells/CAR-T cells, use an antibody against CD3 (anti-CD3 antibody), which is a specific antigen on the surface of T cells, and use a method such as MACS (magnetic cell separation). . When separating CAR-T cells, they can be separated using a method such as the above-mentioned MACS using an idiotype antibody specific to CAR.
リポソームとしては、上述した何れかのリポソームであり得る。対象は、治療を必要とするヒト、愛玩動物、家畜などを含む何れかの動物であり得る。材料細胞群は、T細胞を含む細胞群であればよく、例えば、PBMCやリンパ球画分などであってもよい。例えば、注射器などで末梢血を採取したのちに、勾配遠心分離法などにより単核球分画を単離したり、血液成分分離装置によりリンパ球画分を採取したりして得られ得る。 The liposome may be any of the liposomes mentioned above. The subject can be any animal, including humans, companion animals, livestock, etc., in need of treatment. The material cell group may be any cell group containing T cells, and may be, for example, PBMC or lymphocyte fraction. For example, it can be obtained by collecting peripheral blood with a syringe or the like, and then isolating a mononuclear cell fraction using a gradient centrifugation method or the like, or collecting a lymphocyte fraction using a blood component separation device.
適切な培地は、使用する材料細胞群に適した何れかの培地を使用すればよい。 As an appropriate medium, any medium suitable for the material cell group used may be used.
所望に応じて行われる任意の試験は、対象にCAR-T細胞群を投与する前に行われる安全性確認のための検査であり得る。生物学的、形態学的、臨床的、非臨床的及び薬学的な視点から患者の安全性を考慮して試験が行われ得る。また、実施される国、行政、学会及び有識者による組織や団体などの基準によって求められる各種の試験が行われてもよい。また、図12には示していないが、材料についての安全性試験などを含む各種の試験が当該方法の実施前又は各材料を使用する以前に行われてもよい。 Any desired test may be a safety test performed prior to administering the CAR-T cell population to a subject. Tests can be conducted taking into account patient safety from biological, morphological, clinical, non-clinical, and pharmaceutical perspectives. In addition, various tests may be conducted as required by the standards of the country, government, academic society, or organization or organization of experts. Further, although not shown in FIG. 12, various tests including safety tests on materials may be performed before implementing the method or before using each material.
当該治療方法は、がんの治療、再発防止、がんの進行遅延、がんの予防、自己治癒力の改善、ウイルス感染予防、免疫力の誘導、化学療法との併用療法のため、QOL向上などのために使用されてよい。また、当該治療方法は、健康な状態や未病の状態にある対象に対して予防的に使用されてもよい。 This treatment method improves QOL because it treats cancer, prevents recurrence, delays cancer progression, prevents cancer, improves self-healing ability, prevents viral infection, induces immunity, and is used in combination with chemotherapy. May be used for such purposes. Further, the treatment method may be used prophylactically for subjects who are in a healthy state or a pre-symptomatic state.
上述では自己免疫細胞を使用した例を示したが、自己由来の材料細胞に限るものではなく、同種異系由来の材料細胞を使用することも本実施形態に含まれる。その場合は、図12のS92の工程は「ドナーから材料細胞群を採取」或いは「ドナーからの材料細胞群を準備する」となること以外は同様に当該方法を実施することが可能である。 Although the above example uses autoimmune cells, this embodiment is not limited to autologous material cells, and also includes the use of allogeneic material cells. In that case, the method can be carried out in the same manner, except that the step S92 in FIG. 12 is "collect material cell group from donor" or "prepare material cell group from donor".
このような第8の実施形態に従うと、簡便でより安全なCAR-T細胞治療を提供することが可能である。ここでは、第4の実施形態で示した方法を利用した治療方法の1例を示したが、第4の実施形態に変えて、ここに記載された他の何れか実施形態を使用しても同様に実施することが可能であり、且つ同様の効果を得ることが可能である。 According to the eighth embodiment, it is possible to provide simpler and safer CAR-T cell therapy. Here, one example of a treatment method using the method shown in the fourth embodiment has been shown, but instead of the fourth embodiment, any other embodiment described herein may also be used. It is possible to carry out the same method and obtain the same effect.
(実施例1)
例1 分泌型抗原タンパク質(sCD19-Fc)遺伝子のDNA配列の合成
抗原タンパク質を、CD19.CAR-Tの標的であるCD19として、分泌型CD19抗原タンパク質(sCD19-Fc)のDNA配列(配列番号1)を設計し、DNA配列を合成した。設計されたDNA配列(配列番号1)の構成は、図5(b)に示す通りである。ヒト・CD19の細胞外ドメインのアミノ酸配列(配列番号3)をコードするDNA配列(配列番号4)の5’末端側に、ヒト・インターロイキン6(IL-6)の細胞外分泌シグナルのアミノ酸配列(配列番号5)をコードするDNA配列(配列番号6)を連結した。当該DNA配列(配列番号4)の3’末端側には、リンカー配列(配列番号7)をコードするDNA配列(配列番号8)を介してイムノグロブリンのFc領域のアミノ酸配列(配列番号9)をコードするDNA配列(配列番号10)を連結した。5’末端側から3’末端側に向けて「分泌シグナル配列」「抗体タンパク質部分配列」「IgG Fc-tag配列」の順番で並んで連結されている。
(Example 1)
Example 1 Synthesis of the DNA sequence of the secreted antigen protein (sCD19-Fc) gene The antigen protein is CD19, which is the target of CD19.CAR-T, and the DNA sequence of the secreted CD19 antigen protein (sCD19-Fc) (SEQ ID NO: 1 ) was designed and the DNA sequence was synthesized. The structure of the designed DNA sequence (SEQ ID NO: 1) is as shown in FIG. 5(b). The amino acid sequence of the extracellular secretion signal of human interleukin 6 (IL-6) ( A DNA sequence (SEQ ID NO: 6) encoding SEQ ID NO: 5) was ligated. The amino acid sequence of the Fc region of immunoglobulin (SEQ ID NO: 9) is attached to the 3' end of the DNA sequence (SEQ ID NO: 4) via a DNA sequence (SEQ ID NO: 8) encoding a linker sequence (SEQ ID NO: 7). The encoding DNA sequence (SEQ ID NO: 10) was ligated. The "secretion signal sequence,""antibody protein partial sequence," and "IgG Fc-tag sequence" are connected in the order from the 5' end to the 3' end.
例2 プラスミドの作製
分泌型CD19抗原遺伝子のRNAを調整するための鋳型DNAとして、pGEM-GL-pAに、例1で得たsCD19-FcのDNA配列を組込んだプラスミドを作製した。pGEM-GL-pAは、T7プロモーターとpoly(A)配列とが組込まれた市販のRNA合成鋳型プラスミドDNA:pGEM-4Z(プロメガ)に、ヒト・βグロビンのリーダー配列(Globin leader)とpSP64 pA vector(プロメガ)のpoly(A)配列とを組込んで作製した。例1で得たsCD19-FcのDNA配列は、pGEM-GL-pAのβグロビン・リーダー配列とpoly(A)配列との間に組込み、これをRNA調整の鋳型DNAとした。
Example 2 Preparation of Plasmid A plasmid was prepared by incorporating the sCD19-Fc DNA sequence obtained in Example 1 into pGEM-GL-pA as a template DNA for preparing RNA of the secreted CD19 antigen gene. pGEM-GL-pA is a commercially available RNA synthesis template plasmid DNA: pGEM-4Z (Promega) into which a T7 promoter and a poly(A) sequence have been integrated, and a human β-globin leader sequence (Globin leader) and pSP64 pA. It was created by incorporating the poly(A) sequence of vector (Promega). The sCD19-Fc DNA sequence obtained in Example 1 was integrated between the β-globin leader sequence and poly(A) sequence of pGEM-GL-pA, and this was used as template DNA for RNA preparation.
例3 mRNAの合成
例2で得られた鋳型DNAを用い、mRNA合成キット:T7 mScript Standard Production System(Cellscript)を使用して、次のようにmRNAを合成した。RNA合成手順は、キットのプロトコルに従った。例2の鋳型DNAを制限酵素Eco RIで切断して精製した後、1.0μgの鋳型DNAを含む、in vitro transcription反応液を調整し、37℃の恒温槽で2時間反応させた。反応終了後、合成したRNAを、酢酸アンモニウム沈殿法で精製した後、RNAの5’末端と3’末端に、それぞれCap構造とpoly(A)構造を付加してmRNA化した。合成したRNAを65℃に10分間インキュベートした後、氷上で急冷してRNAの二次構造を破壊し、キットのCapping反応液100μLを調整した。37℃の恒温槽で1時間反応させて、RNAの5’末端にCap構造を付加した。続けて、同溶液にキットのpoly(A)構造付加試薬を加えて、37℃の恒温槽で2時間反応させ、3’末端にpoly(A)構造を付加した。反応終了後、酢酸アンモニウム沈殿法で、反応液中のmRNAを精製した。RNAの濃度は、分光光度計(BioSpec-mini, Shimadzu)を用いて、吸光度(A260)を測定し、OD1.0 = 40.0μg/mL RNAとして算出した。
Example 3 Synthesis of mRNA Using the template DNA obtained in Example 2, mRNA was synthesized as follows using an mRNA synthesis kit: T7 mScript Standard Production System (Cellscript). The RNA synthesis procedure followed the kit's protocol. After the template DNA of Example 2 was purified by cleaving it with the restriction enzyme Eco RI, an in vitro transcription reaction solution containing 1.0 μg of template DNA was prepared and reacted in a constant temperature bath at 37° C. for 2 hours. After the reaction was completed, the synthesized RNA was purified by ammonium acetate precipitation, and then a Cap structure and a poly(A) structure were added to the 5' and 3' ends of the RNA to convert it into mRNA. After incubating the synthesized RNA at 65°C for 10 minutes, it was rapidly cooled on ice to destroy the secondary structure of the RNA, and 100 μL of the kit's capping reaction solution was prepared. A Cap structure was added to the 5' end of the RNA by reacting for 1 hour in a constant temperature bath at 37°C. Subsequently, the kit's poly(A) structure-adding reagent was added to the same solution, and the mixture was reacted for 2 hours in a constant temperature bath at 37°C to add a poly(A) structure to the 3' end. After the reaction was completed, the mRNA in the reaction solution was purified by ammonium acetate precipitation. The concentration of RNA was calculated by measuring absorbance (A260) using a spectrophotometer (BioSpec-mini, Shimadzu) as OD1.0 = 40.0 μg/mL RNA.
例4 sCD19-Fc mRNA内包リポソーム、及びpiggyBac-mRNA/CAR-pDNA共内包リポソームの調整(2ステップ-2リポソーム法でCAR-Tを作製するためのリポソーム)
2ステップ-2リポソーム法でのCAR-T作製に使用するリポソームとして、sCD19-Fc mRNA内包リポソーム(sCD19リポソーム)、及びCAR-T作製用リポソーム(PB/CARリポソーム)を調整した。
Example 4 Preparation of sCD19-Fc mRNA-containing liposome and piggyBac-mRNA/CAR-pDNA co-containing liposome (liposome for producing CAR-T by 2-step-2 liposome method)
As liposomes used for CAR-T production using the 2-step-2 liposome method, sCD19-Fc mRNA-containing liposomes (sCD19 liposomes) and liposomes for CAR-T production (PB/CAR liposomes) were prepared.
エタノール脂質液(FFT20 / FFT10 / DOTAP / DOPE / コレステロール / PEG-DMG =0.35 / 0.702 / 0.09 / 0.21 / 0.875 / 0.105 nmol/μL比)に、sCD19-Fc mRNA液を加えた後、6.6倍量の10 mM HEPES(pH7.3)を静かに添加して、リポソーム溶液を調整した。 After adding the sCD19-Fc mRNA solution to the ethanol lipid solution (FFT20 / FFT10 / DOTAP / DOPE / Cholesterol / PEG-DMG = 0.35 / 0.702 / 0.09 / 0.21 / 0.875 / 0.105 nmol/μL ratio), 6.6 times the amount of The liposome solution was prepared by gently adding 10 mM HEPES (pH 7.3).
CAR-T作製用リポソームは、蛾のトランスポサーセであるpiggyBacを使用したCAR-T作製に適用できるリポソームとした。リポソームに内包するPiggyBacは、野生型piggyBacを高活性化したTS-HyPB(配列番号11)のmRNAとした。TS-HyPBは、ヒト免疫不全ウイルスHIVのTATタンパク質の核移行シグナルと、シミアンウイルス40のラージT抗原タンパク質の核移行シグナルと、野生型piggyBacに変異を導入した高活性化HyPBを5’末端側からこの順に連結し、かつコドン使用頻度をヒト向けに最適化したpiggyBacである。CAR-T作製用リポソームには、piggyBac mRNAと、piggyBacのゲノム組込みドナーDNA(CAR-pDNA)であるCD19.CARトランスポゾン組込みプラスミドDNA(pIRII-CAR.CD19(CD28))を共内包した。CAR-T作製用リポソームは、エタノール脂質液(FFT20 / FFT10 / DOTAP / DOPE / コレステロール / PEG-DMG =0.35 / 0.702 / 0.09 / 0.21 / 0.875 / 0.105 nmol/μL比)に、piggyBac mRNA液とCAR-pDNAを加えた後、6.6倍量の10 mM HEPES(pH7.3)を静かに添加して、リポソーム溶液を調整した。
The liposome for CAR-T production was a liposome that can be applied to CAR-T production using piggyBac, a moth transposase. The PiggyBac encapsulated in the liposome was the mRNA of TS-HyPB (SEQ ID NO: 11), which is highly activated wild-type piggyBac. TS-HyPB contains the nuclear import signal of the TAT protein of the human immunodeficiency virus HIV, the nuclear import signal of the large T antigen protein of
リポソーム溶液は、調整後、遠心式限外ろ過チューブ(Amicon Ultra 0.5 mL, Ultracel-50K, ミリポア)を用いて、14,000 ×gの遠心で濃縮した後、10 mM HEPES(pH7.3)を加えて、同様の遠心式限外ろ過チューブでバッファー交換と濃縮を同時におこなった。
リポソームに内包されたRNA量とDNA量は、QuantiFluorTM RNA System(プロメガ)、及びQuant-iTTM PicoGreenTM dsDNA Assay Kitsで測定した。
After preparation, the liposome solution was concentrated by centrifugation at 14,000 × g using a centrifugal ultrafiltration tube (Amicon Ultra 0.5 mL, Ultracel-50K, Millipore), and then 10 mM HEPES (pH 7.3) was added. Buffer exchange and concentration were performed simultaneously using a similar centrifugal ultrafiltration tube.
The amounts of RNA and DNA encapsulated in the liposomes were measured using QuantiFluorTM RNA System (Promega) and Quant-iTTM PicoGreenTM dsDNA Assay Kits.
例5 sCD19-Fc mRNA/piggyBac-mRNA/CAR-pDNA共内包リポソームの調整(1ステップ-1リポソーム法でCAR-Tを作製するためのリポソーム)
1ステップ-1リポソーム法でのCAR-T作製に使用するリポソームとして、sCD19-Fc mRNA/ piggyBac-mRNA/CAR-pDNAを共内包したリポソーム(sCD19/PB/CARリポソーム)を調整した(piggyBac-mRNAとCAR-pDNAについては、例4を参照されたい)。
Example 5 Preparation of sCD19-Fc mRNA/piggyBac-mRNA/CAR-pDNA co-encapsulating liposome (liposome for producing CAR-T by 1 step-1 liposome method)
A liposome co-encapsulating sCD19-Fc mRNA/ piggyBac-mRNA/CAR-pDNA (sCD19/PB/CAR liposome) was prepared as a liposome used for CAR-T production using the 1-step-1 liposome method (piggyBac-mRNA). and CAR-pDNA, see Example 4).
エタノール脂質液(FFT20 / FFT10 / DOTAP / DOPE / コレステロール / PEG-DMG =0.35 / 0.702 / 0.09 / 0.21 / 0.875 / 0.105 nmol/μL比)に、sCD19-Fc mRNA液、piggyBac mRNA溶液、及びCAR-pDNAを加えた後、6.6倍量の10 mM HEPES(pH7.3)を静かに添加して、リポソーム溶液を調整した。 Add sCD19-Fc mRNA solution, piggyBac mRNA solution, and CAR-pDNA to ethanol lipid solution (FFT20 / FFT10 / DOTAP / DOPE / cholesterol / PEG-DMG = 0.35 / 0.702 / 0.09 / 0.21 / 0.875 / 0.105 nmol/μL ratio). was added, then 6.6 times the amount of 10 mM HEPES (pH 7.3) was gently added to prepare the liposome solution.
リポソーム溶液は、調整後、遠心式限外ろ過チューブ(Amicon Ultra 0.5 mL, Ultracel-50K, ミリポア)を用いて、14,000 ×gの遠心で濃縮した後、10 mM HEPES(pH7.3)を加えて、同様の遠心式限外ろ過チューブでバッファー交換と濃縮を同時におこなった。
リポソームに内包されたRNA量とDNA量は、例4と同様に、QuantiFluorTM RNA System(プロメガ)、及びQuant-iTTM PicoGreenTM dsDNA Assay Kitsで測定した。
After preparation, the liposome solution was concentrated by centrifugation at 14,000 × g using a centrifugal ultrafiltration tube (Amicon Ultra 0.5 mL, Ultracel-50K, Millipore), and then 10 mM HEPES (pH 7.3) was added. Buffer exchange and concentration were performed simultaneously using a similar centrifugal ultrafiltration tube.
The amounts of RNA and DNA encapsulated in the liposomes were measured in the same manner as in Example 4 using QuantiFluorTM RNA System (Promega) and Quant-iTTM PicoGreenTM dsDNA Assay Kits.
例6 sCD19-Fcを用いた2リポソーム法、1リポソーム法によるCAR-Tの作製
CAR-Tは、ヒト末梢血単核球細胞であるPBMC(Peripheral Blood Mononuclear Cell, ロンザ社から購入)を材料に作製した。PBMCを起眠後、サイトカイン(IL-7、10 ng/mL、IL-15、5 ng/mL)を加えたTexMACS培地を用いて1.0 x 106細胞/mLの細胞懸濁液を調整した。この懸濁液200μLを、抗CD3/CD28抗体でコーティングした96ウェル丸底プレートに播種し、37℃、5%CO2雰囲気で培養し、T細胞を活性化した。培養プレートは、リン酸緩衝生理食塩水(PBS)で100倍希釈した抗CD3/CD28抗体液を、96ウェル丸底プレート(Non-tissue culture treated、Nunc)に、ウェルあたり150μL加えて、37℃、5%CO2雰囲気に2時間以上静置してコーティングした。
Example 6 Production of CAR-T using sCD19-Fc by two-liposome method and one-liposome method
CAR-T was produced using PBMC (Peripheral Blood Mononuclear Cells, purchased from Lonza), which are human peripheral blood mononuclear cells. After the PBMCs were woken up, a cell suspension of 1.0 x 10 6 cells/mL was prepared using TexMACS medium supplemented with cytokines (IL-7, 10 ng/mL, IL-15, 5 ng/mL). 200 μL of this suspension was seeded on a 96-well round bottom plate coated with anti-CD3/CD28 antibody, and cultured at 37° C. in a 5% CO 2 atmosphere to activate T cells. For the culture plate, add 150 μL of anti-CD3/CD28 antibody solution diluted 100 times with phosphate buffered saline (PBS) per well to a 96-well round bottom plate (Non-tissue culture treated, Nunc) and incubate at 37°C. , and coated by standing in a 5% CO 2 atmosphere for more than 2 hours.
2ステップ-2リポソーム法では、T細胞の活性化から24時間後に、PB/CARリポソーム(例4)を2.0μg/ウェルで投与して、37℃、5%CO2雰囲気で培養を継続した。これと並行して、PB/CARリポソームとは別のウェルにsCD19リポソームを2.0μg/ウェルで投与して、37℃、5%CO2雰囲気で培養した。 In the 2-step-2 liposome method, PB/CAR liposomes (Example 4) were administered at 2.0 μg/well 24 hours after T cell activation, and culture was continued at 37° C. in a 5% CO 2 atmosphere. In parallel, sCD19 liposomes were administered at 2.0 μg/well to wells separate from the PB/CAR liposomes, and cultured at 37° C. in a 5% CO 2 atmosphere.
sCD19リポソームの投与から24時間後に、ウェルから培養液を回収し、遠心で細胞を沈殿させ、その上清をコンディション培地として回収した。CAR作製用リポソームを投与したウェルは、細胞をピペッティングで回収し、その回収された培養液を48ウェルプレートに移し、ここに上述のコンディション培地を追加して、37℃、5%CO2雰囲気で培養を継続した。 24 hours after administration of sCD19 liposomes, the culture medium was collected from the wells, cells were precipitated by centrifugation, and the supernatant was collected as conditioned medium. The cells in the wells to which the liposomes for CAR production were administered were collected by pipetting, the collected culture medium was transferred to a 48-well plate, the above-mentioned conditioned medium was added thereto, and the cells were incubated at 37°C in a 5% CO 2 atmosphere. Culture was continued.
1ステップ-1リポソーム法では、T細胞の活性化から24時間後に、sCD19/PB/CARリポソーム(例5)を2.0μg/ウェルで投与して、37℃、5%CO2雰囲気で培養を継続した。以降は、2ステップ法と1ステップ法とも、細胞の増殖状態に応じて培地交換や拡大培養をおこない、細胞培養を2週間継続してCAR-Tを作製した。 In the 1-step-1 liposome method, 24 hours after T cell activation, sCD19/PB/CAR liposomes (Example 5) are administered at 2.0 μg/well and culture is continued at 37°C in a 5% CO 2 atmosphere. did. Thereafter, in both the two-step method and the one-step method, CAR-T was produced by changing the medium and expanding the culture depending on the growth state of the cells, and continuing the cell culture for two weeks.
例7 CAR-Tの検出
リポソーム投与から2週間後、PBMCをインキュベータから取出し、蛍光活性化セルソーター(FACS)でCAR-Tの作製率を調べた。FACSは、FACSVerse(BD Biosciences)を使用した。培養プレートからPBMCを回収し、PBSで一度洗浄してから、50μLのPBSに細胞を懸濁し、ビオチン標識された抗ヒトIgG(H+L)抗体[Biotin F(ab’)2 Fragment Goat Anti-Human IgG(H+L)antibody、The Jackson Laboratory]を2μL加えて、4℃、15分間で反応させた。反応終了後、PBSで一度洗浄し、50μLのPBSに細胞を懸濁して、抗ヒトCD3抗体(V450 Mouse Anti-Human CD3、Clone UCHT1、BD Biosciences)と、APC標識ストレプトアビジン(APC Streptavidin, BD Biosciences)を各2μL加え、4℃で15分間反応させ、PBSで細胞を洗浄してから、PBSに懸濁し、FACSで分析した。FACSでは、CAR発現細胞の赤色蛍光(APC)と、CD3発現T細胞の青色蛍光(V450)を検出した。CAR-Tは、赤色蛍光と青色蛍光とが共陽性の細胞(CAR陽性かつCD3陽性の細胞)である。CAR-T作製率は、全検出細胞に対するCAR-Tの割合とした。
Example 7 Detection of CAR-T Two weeks after liposome administration, PBMCs were removed from the incubator and the production rate of CAR-T was examined using a fluorescence-activated cell sorter (FACS). For FACS, FACSVerse (BD Biosciences) was used. Collect PBMC from the culture plate, wash once with PBS, suspend the cells in 50 μL of PBS, and add biotin-labeled anti-human IgG (H+L) antibody [Biotin F(ab')2 Fragment Goat Anti- 2 μL of Human IgG (H+L) antibody, The Jackson Laboratory] was added and reacted at 4° C. for 15 minutes. After the reaction, wash once with PBS, suspend the cells in 50 μL of PBS, and add anti-human CD3 antibody (V450 Mouse Anti-Human CD3, Clone UCHT1, BD Biosciences) and APC-labeled streptavidin (APC Streptavidin, BD Biosciences). ) was added to each cell, reacted for 15 minutes at 4°C, washed the cells with PBS, suspended in PBS, and analyzed by FACS. FACS detected red fluorescence (APC) of CAR-expressing cells and blue fluorescence (V450) of CD3-expressing T cells. CAR-T is a cell that is co-positive for red fluorescence and blue fluorescence (CAR-positive and CD3-positive cell). The CAR-T production rate was defined as the ratio of CAR-T to all detected cells.
結果の散布図を図13に示した。縦軸がAPCの蛍光強度(CAR)、横軸がV450の蛍光強度(T細胞)である。CAR-Tは、散布図のUR領域(CAR陽性かつCD3陽性領域)の細胞である。CAR-T作製率を図13のグラフに示す。2ステップ-2リポソーム法でCAR-Tを作製した細胞群(コンディション培地で培養した細胞群)では、36.3%の作製率であった。1ステップ-1リポソーム法でCAR-Tを作製した細胞群では、39%の作製率であった。sCD19を用いずに培養した細胞群は19.7%の作製率であった。この結果から、sCD19の使用によって、CAR-Tの作製率が向上することが示された。 A scatter diagram of the results is shown in FIG. 13. The vertical axis is the fluorescence intensity of APC (CAR), and the horizontal axis is the fluorescence intensity of V450 (T cells). CAR-T is the cell in the UR region (CAR-positive and CD3-positive region) of the scatter diagram. The CAR-T production rate is shown in the graph of FIG. 13. In the cell group in which CAR-T was produced using the 2-step-2 liposome method (cell group cultured in conditioned medium), the production rate was 36.3%. In the cell group in which CAR-T was produced using the 1-step-1 liposome method, the production rate was 39%. The cell group cultured without sCD19 had a production rate of 19.7%. This result showed that the use of sCD19 improved the production rate of CAR-T.
例8 CAR-Tによる腫瘍細胞の殺傷性能の評価
例6において、2ステップ-2リポソーム法で作製したCAR-Tと、ヒト前駆B細胞性白血病細胞株NALM6(ATCCより購入)とを、混合比1:1で、総細胞数が1.0×105cells/wellになるように96ウェルプレートに播種した。5日間、37℃、5%CO2雰囲気でCAR-TとNALM6を共培養したのち、細胞を回収してPBSで洗浄した。その後、50μLのPBSで懸濁した抗ヒトCD3抗体(V450 Mouse Anti-Human CD3、Clone UCHT1、BD Biosciences)と、抗ヒトCD19抗体(FITC Mouse Anti-Human CD19、BD Biosciences)とをそれぞれ2μL添加して、4℃で30分間反応させた。反応後、PBSで洗浄し、PBSに懸濁してFACSで分析した。FACSでは、CD3発現T細胞の青色蛍光(V450)と、CD19発現NALM6細胞の緑色蛍光(FITC)を検出した。
Example 8 Evaluation of tumor cell killing performance by CAR-T In Example 6, CAR-T produced by the 2-step-2 liposome method and the human precursor B-cell leukemia cell line NALM6 (purchased from ATCC) were mixed at a mixing ratio of The cells were seeded in a 96-well plate at a ratio of 1:1 for a total number of cells of 1.0×10 5 cells/well. After CAR-T and NALM6 were co-cultured for 5 days at 37°C in a 5% CO 2 atmosphere, the cells were collected and washed with PBS. Then, 2 μL each of anti-human CD3 antibody (V450 Mouse Anti-Human CD3, Clone UCHT1, BD Biosciences) and anti-human CD19 antibody (FITC Mouse Anti-Human CD19, BD Biosciences) suspended in 50 μL of PBS were added. The mixture was reacted at 4°C for 30 minutes. After the reaction, the cells were washed with PBS, suspended in PBS, and analyzed by FACS. FACS detected blue fluorescence (V450) of CD3-expressing T cells and green fluorescence (FITC) of CD19-expressing NALM6 cells.
結果の散布図を図14(a-1)及び(a-2)に、腫瘍細胞殺傷率を図14(b)に示した。(a-1)及び(a-1)のグラフの縦軸はFITCの蛍光強度であり、NALM6存在の指標である。同横軸はV450の蛍光強度であり、これはT細胞存在の指標である。(a-2)に示すように、CARを発現しないPBMCとNALM6の共培養では、細胞の約93%がFITC陽性のNALM6(UL;図中左上画分)であった。それに対して、(a-1)に示すCAR発現群でのT細胞は、細胞の約95%がCAR-Tを含むT細胞群(LR)であった(図14(a-1), (a-2))。NALM6(UL)は3%程度しか含まれておらず、腫瘍細胞殺傷率は約93%であった(図14(b))。例6で作製したCAR-Tが、CD19発現B細胞性腫瘍細胞を殺傷することが示された。 The scatter diagram of the results is shown in FIGS. 14(a-1) and (a-2), and the tumor cell killing rate is shown in FIG. 14(b). The vertical axis of the graphs (a-1) and (a-1) is the fluorescence intensity of FITC, which is an indicator of the presence of NALM6. The horizontal axis is the fluorescence intensity of V450, which is an indicator of the presence of T cells. As shown in (a-2), in the co-culture of PBMCs that do not express CAR and NALM6, approximately 93% of the cells were FITC-positive NALM6 (UL; upper left fraction in the figure). In contrast, in the CAR-expressing group shown in (a-1), approximately 95% of the cells were a T cell group (LR) containing CAR-T (Figure 14 (a-1), ( a-2)). Only about 3% of NALM6 (UL) was contained, and the tumor cell killing rate was about 93% (Figure 14(b)). The CAR-T produced in Example 6 was shown to kill CD19-expressing B-cell tumor cells.
本発明のいくつかの実施形態を説明したが、これらの実施形態は、例として提示したものであり、発明の範囲を限定することは意図していない。これら新規な実施形態は、その他の様々な形態で実施されることが可能であり、発明の要旨を逸脱しない範囲で、種々の省略、置き換え、変更を行うことができる。これら実施形態やその変形は、発明の範囲や要旨に含まれるとともに、特許請求の範囲に記載された発明とその均等の範囲に含まれる。 Although several embodiments of the invention have been described, these embodiments are presented by way of example and are not intended to limit the scope of the invention. These novel embodiments can be implemented in various other forms, and various omissions, substitutions, and changes can be made without departing from the gist of the invention. These embodiments and their modifications are included within the scope and gist of the invention, as well as within the scope of the invention described in the claims and its equivalents.
50…リポソーム、51…脂質粒子、52…CARをコードする核酸、53…核導入促進剤、54…分泌型抗原タンパク質をコードする核酸、54a…抗原タンパク質部分配列、54b分泌シグナル配列、54c…リンカー、54d…IgG Fc-tag配列、55,55A,55B…容器、56…CAR-T細胞作製用培地、57…材料細胞、58…CAR-T細胞、59…CAR、60…抗原タンパク質、61…CAR-T細胞、66…培地、70A…第1のリポソーム、70B…第2のリポソーム、77…任意の細胞、81a…第1脂質、81b…第2脂質、81c…第3脂質 50... Liposome, 51... Lipid particle, 52... Nucleic acid encoding CAR, 53... Nuclear import promoter, 54... Nucleic acid encoding secreted antigen protein, 54a... Antigen protein partial sequence, 54b Secretion signal sequence, 54c... Linker , 54d... IgG Fc-tag sequence, 55, 55A, 55B... Container, 56... CAR-T cell production medium, 57... Material cells, 58... CAR-T cells, 59... CAR, 60... Antigen protein, 61... CAR-T cell, 66...medium, 70A...first liposome, 70B...second liposome, 77...any cell, 81a...first lipid, 81b...second lipid, 81c...third lipid
Claims (20)
前記第1の培養系と互いに独立又は非独立の第2の培養系において、当該材料細胞及び/又は当該CARをコードする核酸を導入された前記材料細胞に、当該CARの標的である抗原タンパク質又はその部分タンパク質をコードする配列に細胞外分泌シグナル配列を付加した分泌型抗原タンパク質をコードする核酸を包含する第2のリポソームを接触させて当該分泌型抗原タンパク質をコードする核酸を当該細胞の細胞質へと導入し、当該細胞から当該抗原タンパク質又はその一部タンパク質を分泌させること、
前記CAR-Tをコードする核酸の導入により作出された当該CAR-T細胞に前記分泌された抗原タンパク質又はその一部タンパク質を接触させ、当該CAR-T細胞の分裂増殖を促進させること、及び
前記CAR-Tをコードする核酸の導入により当該CAR-T細胞を作製することと前記分裂増殖を促進させることにより、目的の当該CAR-T細胞群を作ること
を含むCAR-T細胞を作製する方法。 In a first culture system, bringing a first liposome containing a nucleic acid encoding a CAR into contact with material cells containing T cells to introduce the nucleic acid encoding the CAR into the material cells;
In a second culture system that is independent or non-independent of the first culture system, the material cells and/or the material cells into which the nucleic acid encoding the CAR has been introduced are treated with an antigen protein or the target of the CAR. A second liposome containing a nucleic acid encoding a secreted antigen protein in which an extracellular secretion signal sequence is added to the sequence encoding the partial protein is brought into contact with the nucleic acid encoding the secreted antigen protein into the cytoplasm of the cell. introducing the antigen protein or a partial protein thereof from the cell;
contacting the secreted antigen protein or a partial protein thereof to the CAR-T cells produced by introducing the nucleic acid encoding the CAR-T, and promoting the division and proliferation of the CAR-T cells; A method for producing CAR-T cells comprising producing the CAR-T cells by introducing a nucleic acid encoding CAR-T and producing the desired CAR-T cell group by promoting the division and proliferation. .
・Aのリポソーム群:
CARをコードする核酸を包含する第1のリポソーム、及び
当該CARの標的である抗原タンパク質又はその部分タンパク質をコードする配列に細胞外分泌シグナル配列を付加した分泌型抗原タンパク質をコードする核酸を包含する第2のリポソーム、
・Bのリポソーム群:
当該CARをコードする核酸と
当該CARの標的である抗原タンパク質又はその部分タンパク質をコードする配列に細胞外分泌シグナル配列を付加した分泌型抗原タンパク質をコードする核酸と
を共に包含するリポソーム;
を含む請求項1~8の何れか1項に記載のCAR-T細胞を作製する方法に使用するためのCAR-T細胞作製用キット。 The following liposome groups A and/or B, together with a substance that improves the storage stability of liposomes;
・Liposome group A:
A first liposome containing a nucleic acid encoding a CAR, and a second liposome containing a nucleic acid encoding a secreted antigenic protein obtained by adding an extracellular secretion signal sequence to a sequence encoding an antigenic protein or a partial protein thereof that is a target of the CAR. 2 liposomes,
・Liposome group B:
A liposome containing both a nucleic acid encoding the CAR and a nucleic acid encoding a secreted antigen protein obtained by adding an extracellular secretion signal sequence to a sequence encoding an antigen protein or a partial protein thereof that is a target of the CAR;
A kit for producing CAR-T cells for use in the method for producing CAR-T cells according to any one of claims 1 to 8.
Priority Applications (1)
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JP2022118228A JP2024015870A (en) | 2022-07-25 | 2022-07-25 | Method for making car-t cell, kit for making car-t cell, and method for improving car-t cell content |
Applications Claiming Priority (1)
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Family Applications (1)
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