JP2024008528A - Reverse transcription method without use of manganese - Google Patents
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Abstract
Description
本発明は、マンガン（Ｍｎ）を使用せずに逆転写活性を有する核酸ポリメラーゼで逆転写反応を行う方法及びこの逆転写反応を利用した核酸増幅方法（例えば、ＲＴ－ＰＣＲ方法）等に関する。本発明は、研究分野のみならず臨床診断や環境検査等にも利用できる。 The present invention relates to a method for performing a reverse transcription reaction using a nucleic acid polymerase having reverse transcription activity without using manganese (Mn), and a nucleic acid amplification method (for example, an RT-PCR method) using this reverse transcription reaction. The present invention can be used not only in the research field but also in clinical diagnosis, environmental testing, etc.
核酸増幅法は数コピーの標的核酸を可視化可能なレベル、すなわち数億コピー以上に増幅する技術であり、生命科学研究分野のみならず、遺伝子診断、臨床検査といった医療分野、あるいは、食品や環境中の微生物検査等においても、広く用いられている。 Nucleic acid amplification is a technology that amplifies a few copies of a target nucleic acid to a visible level, that is, hundreds of millions of copies or more, and it is used not only in the life science research field, but also in the medical field such as genetic diagnosis and clinical testing, as well as in foods and the environment. It is also widely used in microbial testing, etc.
代表的な核酸増幅法であるＰＣＲ（Ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ Ｃｈａｉｎ Ｒｅａｃｔｉｏｎ）は、（１）熱処理によるＤＮＡ変性（２本鎖ＤＮＡから１本鎖ＤＮＡへの解離）、（２）鋳型１本鎖ＤＮＡへのプライマーのアニーリング、（３）ＤＮＡポリメラーゼを用いた前記プライマーの伸長、という３ステップを１サイクルとし、このサイクルを繰り返すことによって、試料中の標的核酸を増幅する方法である。 PCR (Polymerase Chain Reaction), a typical nucleic acid amplification method, involves (1) DNA denaturation by heat treatment (dissociation from double-stranded DNA to single-stranded DNA), (2) incorporation of primers into template single-stranded DNA. This is a method of amplifying a target nucleic acid in a sample by repeating the three steps of annealing and (3) extension of the primer using DNA polymerase as one cycle, and repeating this cycle.
標的核酸がＲＮＡである場合（例えば、病原性微生物の検出においてＲＮＡウイルスを検出対象とする場合、あるいは遺伝子の発現量をｍＲＮＡの定量によって測定する場合など）では、逆転写酵素によりＲＮＡをｃＤＮＡに変換する逆転写反応をＰＣＲの前に行うＲＴ－ＰＣＲも広く用いられている。 When the target nucleic acid is RNA (for example, when RNA viruses are to be detected in the detection of pathogenic microorganisms, or when gene expression levels are measured by quantifying mRNA), reverse transcriptase is used to convert RNA into cDNA. RT-PCR, in which a reverse transcription reaction for conversion is performed before PCR, is also widely used.
ＲＴ－ＰＣＲにおいては、逆転写酵素及びＤＮＡポリメラーゼの２種類の酵素を用いる２酵素系のＲＴ－ＰＣＲと、逆転写活性を持つＤＮＡポリメラーゼを用いる１酵素系のＲＴ－ＰＣＲが存在する。２酵素系のＲＴ－ＰＣＲは、逆転写酵素が高い逆転写活性を持つため、効率的なＲＴを可能にする。しかしながら、逆転写酵素は一般的に耐熱性を持たないものが多く、ＲＮＡが二次構造をとる場合は、十分な逆転写反応ができないことが知られている。またＲＴ－ＰＣＲを連続的に実施する場合は、逆転写酵素とＤＮＡポリメラーゼの２つの酵素の最適化が必要であり、各酵素の選択やそれらの最適な反応条件の検討等に時間を要していた。一方、１酵素系のＲＴ－ＰＣＲは、一般に耐熱性を有するＤＮＡポリメラーゼを用いて実施するため、二次構造を形成できない高温での逆転写を可能にする。しかしながら、ＤＮＡポリメラーゼによる逆転写活性は逆転写酵素と比較すると低いことが知られており、さらなる改善が求められていた。 In RT-PCR, there are two-enzyme RT-PCR, which uses two types of enzymes, reverse transcriptase and DNA polymerase, and one-enzyme RT-PCR, which uses DNA polymerase with reverse transcription activity. Two-enzyme RT-PCR enables efficient RT because reverse transcriptase has high reverse transcription activity. However, it is known that many reverse transcriptases generally do not have heat resistance, and that if RNA has a secondary structure, a sufficient reverse transcription reaction cannot be carried out. Furthermore, when performing RT-PCR continuously, it is necessary to optimize two enzymes, reverse transcriptase and DNA polymerase, and it takes time to select each enzyme and consider their optimal reaction conditions. was. On the other hand, single-enzyme RT-PCR is generally carried out using a thermostable DNA polymerase, and therefore enables reverse transcription at high temperatures where secondary structures cannot be formed. However, it is known that the reverse transcription activity of DNA polymerase is lower than that of reverse transcriptase, and further improvements have been desired.
ＤＮＡポリメラーゼとして汎用されるＴａｑ ＤＮＡポリメラーゼは、マグネシウムイオン（Ｍｇ２＋）存在下で微弱ながら逆転写活性を持つが、その効率は非常に低く（非特許文献１）、実用上十分な逆転写反応を行うことはできない。逆転写活性を有するＤＮＡポリメラーゼとしては、Ｔｈｅｒｍｕｓ ｔｈｅｒｍｏｐｈｉｌｕｓ ＨＢ８（サーマス・サーモフィルス ＨＢ８）由来のＤＮＡポリメラーゼ（Ｔｔｈ）やＴｈｅｍｕｓ ｓｐ Ｚ０５由来のＤＮＡポリメラーゼ（Ｚ０５）などがこれまでに知られている。これらの酵素はマンガンイオン（Ｍｎ２＋）存在下で強い逆転写活性を示すことができるが、Ｍｎ２＋以外の２価イオンでは逆転写活性が非常に弱いとされている（非特許文献２）。従って、これらの逆転写活性を有するＤＮＡポリメラーゼを用いて十分な効率で逆転写反応を行う場合には、マンガンイオンを共存させることが必須と考えられていた。例えば、特許文献１、２では、逆転写活性を有する改変されたＤＮＡポリメラーゼを用いた実施例において、酢酸マンガン（Ｍｎ（ＯＡｃ）２）を一緒に用いるＴｔｈ ＤＮＡ Ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ ＲＴ－ＰＣＲ Ｂｕｆｆｅｒ（Ｒｏｃｈｅ製、非特許文献３）を使用して逆転写反応の評価を行ったことを記載している。 Taq DNA polymerase, which is commonly used as a DNA polymerase, has a weak reverse transcription activity in the presence of magnesium ions (Mg 2+ ), but its efficiency is very low (Non-Patent Document 1), making it difficult to perform a reverse transcription reaction that is sufficient for practical use. It cannot be done. As DNA polymerases having reverse transcription activity, DNA polymerases derived from Themus thermophilus HB8 (Tth) and DNA polymerases derived from Themus sp Z05 (Z05) have been known so far. Although these enzymes can exhibit strong reverse transcription activity in the presence of manganese ions (Mn 2+ ), it is said that their reverse transcription activity is very weak in the presence of divalent ions other than Mn 2+ (Non-Patent Document 2). Therefore, in order to carry out a reverse transcription reaction with sufficient efficiency using these DNA polymerases having reverse transcription activity, it has been thought that it is essential to have manganese ions present. For example , in Patent Documents 1 and 2, in an example using a modified DNA polymerase having reverse transcription activity, Tth DNA Polymerase RT-PCR Buffer (manufactured by Roche, It is described that the reverse transcription reaction was evaluated using Non-Patent Document 3).
マンガンは環境等への有害性が懸念されており、マンガンを使用せずに反応させることができる手法の開発が望まれている。また、マンガン存在下ではＤＮＡポリメラーゼの忠実性が低下する場合があることが知られており、忠実性の面からもマンガンを使用せずに効率よく反応させることが望まれている。 There are concerns that manganese may be harmful to the environment, and there is a desire to develop a method that allows the reaction to occur without using manganese. Furthermore, it is known that the fidelity of DNA polymerase may decrease in the presence of manganese, and from the viewpoint of fidelity, it is desired to carry out the reaction efficiently without using manganese.
これまでに、ＰＣＲやＲＴ－ＰＣＲにおいてパフォーマンスを向上させるため、ＤＮＡポリメラーゼの改良が種々実施されている。例えば、特許文献３では、野生型Ｔｈｅｒｍｕｓ ａｑｕａｔｉｃｕｓ（Ｔａｑ）ＤＮＡポリメラーゼのアミノ酸配列に特定の変異を入れることにより、マンガンを使用せずに、マグネシウムイオン共存下で効率的な逆転写を可能にすると記載している。しかし、その性能は実用上まだ十分ではなく、更なる改善が求められていた。 To date, various improvements have been made to DNA polymerases in order to improve performance in PCR and RT-PCR. For example, Patent Document 3 describes that by introducing a specific mutation into the amino acid sequence of wild-type Thermus aquaticus (Taq) DNA polymerase, efficient reverse transcription is enabled in the presence of magnesium ions without using manganese. are doing. However, its performance was still insufficient for practical use, and further improvements were required.
本発明は上記の従来技術に鑑みてなされたものであり、マンガンを使用せずに、逆転写活性を有する核酸ポリメラーゼで効率的に逆転写反応を行う方法を提供することを目的とする。また、マンガンイオン不存在下において、ＲＮＡから効率よく逆転写し、その逆転写産物から核酸増幅する方法の提供等を更なる目的とする。 The present invention has been made in view of the above-mentioned prior art, and an object of the present invention is to provide a method for efficiently carrying out a reverse transcription reaction using a nucleic acid polymerase having reverse transcription activity without using manganese. A further object of the present invention is to provide a method for efficiently reverse transcribing RNA and amplifying nucleic acids from the reverse transcription product in the absence of manganese ions.
本発明者は、上記事情に鑑み、鋭意研究を行った結果、Ｔｈｅｒｍｕｓ ｔｈｅｒｍｏｐｈｉｌｕｓ（サーマス・サーモフィルス）由来のＤＮＡポリメラーゼ（Ｔｔｈ ＤＮＡポリメラーゼ、配列番号１）又はＴｈｅｍｕｓ ｓｐ Ｚ０５由来のＤＮＡポリメラーゼ（Ｚ０５ ＤＮＡポリメラーゼ、配列番号２）の特定部位におけるアミノ酸を改変することで、マンガンイオン（Ｍｎ２＋）を含まない反応液中でも効率的な逆転写反応及びＲＴ－ＰＣＲ反応を行うことが可能であることを見出し、更に検討を重ねて、本発明を完成するに至った。 In view of the above circumstances, the present inventors conducted extensive research and found that a DNA polymerase derived from Thermus thermophilus (Tth DNA polymerase, SEQ ID NO: 1) or a DNA polymerase derived from Themus sp Z05 (Z05 DNA polymerase) , SEQ ID NO: 2), it has been discovered that efficient reverse transcription and RT-PCR reactions can be performed even in a reaction solution that does not contain manganese ions (Mn 2+ ). After further study, the present invention was completed.
代表的な本願発明は、以下の通りである。
［項１］ 配列番号１又は２に示されるアミノ酸配列と９０％以上の同一性を有するアミノ酸配列からなり、且つ、７５１位に相当する部位のアミノ酸がチロシン、システイン、グルタミン、セリン、トレオニン、及びアスパラギンからなる群より選択される極性側鎖を有する中性アミノ酸に置換されている逆転写活性を有する核酸ポリメラーゼを用いて、マンガンイオン不存在下でＲＮＡからｃＤＮＡを合成する逆転写反応を行う、逆転写方法。
［項２］ 前記核酸ポリメラーゼが、配列番号１又は２に示されるアミノ酸配列と９６％以上の同一性を有するアミノ酸配列からなり、且つ、７５１位に相当するアミノ酸がチロシン、システイン、グルタミン、セリン、トレオニン、及びアスパラギンからなる群より選択される極性側鎖を有する中性アミノ酸に置換されている核酸ポリメラーゼである、項１に記載の逆転写方法。
［項３］ 前記核酸ポリメラーゼが、配列番号１又は２に示されるアミノ酸配列において７５１位に相当するアミノ酸がチロシン、システイン、グルタミン、セリン、トレオニン、及びアスパラギンからなる群より選択される極性側鎖を有する中性アミノ酸に置換されている核酸ポリメラーゼである、項１又は２に記載の逆転写方法。
［項４］ 前記核酸ポリメラーゼをマグネシウムイオン共存下で反応させる、項１～３のいずれかに記載の逆転写方法。
［項５］ 精製工程を経ていない生体試料を用いて逆転写反応を行う、項１～４のいずれかに記載の逆転写方法。
［項６］ 逆転写反応を５分以下で行う、項１～５のいずれかに記載の逆転写方法。
［項７］ 前記核酸ポリメラーゼが、更に、５０９位及び７４４位からなる群より選択される少なくとも一つに相当する部位においてアミノ酸の改変を含む、項１～６のいずれかに記載の逆転写方法。
［項８］ ５０９位及び７４４位からなる群より選択される少なくとも一つに相当する部位におけるアミノ酸の改変が、ヒスチジン、リジン及びアルギニンからなる群より選択される塩基性アミノ酸への置換である、項７に記載の逆転写方法。
［項９］ 以下の工程：
（ａ）配列番号１又は２に示されるアミノ酸配列と９０％以上の同一性を有するアミノ酸配列からなり、且つ、７５１位に相当するアミノ酸がチロシン、システイン、グルタミン、セリン、トレオニン、及びアスパラギンからなる群より選択される極性側鎖を有する中性アミノ酸に置換されている逆転写活性を有する核酸ポリメラーゼを用いて、マンガンイオン不存在下でＲＮＡからｃＤＮＡを合成する逆転写反応を行う工程、及び
（ｂ）前記工程（ａ）の逆転写反応により生じた逆転写産物を鋳型として、前記核酸ポリメラーゼにより更に核酸増幅反応を行う工程、
を包含する、核酸増幅方法。。
［項１０］ 前記工程（ａ）の逆転写反応をマグネシウムイオン共存下で行う、項９に記載の核酸増幅方法。
［項１１］ 前記工程（ａ）の逆転写反応を精製工程を経ていない生体試料を用いて行う、項９又は１０に記載の核酸増幅方法。
［項１２］ 前記工程（ａ）の逆転写反応を５分以下で完了する、項９～１１のいずれかに記載の核酸増幅方法。
［項１３］ ＲＴ－ＰＣＲ方法である、項９～１２のいずれかに記載の核酸増幅方法。
［項１４］ 逆転写反応及びＰＣＲ反応を１時間以下で行うＲＴ－ＰＣＲ方法である、項９～１３のいずれかに記載の核酸増幅方法。
［項１５］ 項１～８のいずれかに記載の逆転写方法又は項９～１４のいずれかに記載の核酸増幅方法に用いる試薬であって、配列番号１又は２に示されるアミノ酸配列と９０％以上の同一性を有するアミノ酸配列からなり、且つ、７５１位に相当するアミノ酸がチロシン、システイン、グルタミン、セリン、トレオニン、及びアスパラギンからなる群より選択される極性側鎖を有する中性アミノ酸に置換されている逆転写活性を有する核酸ポリメラーゼを含む、試薬。
［項１６］ 項１～８のいずれかに記載の逆転写方法又は項９～１４のいずれかに記載の核酸増幅方法に用いる試薬キットであって、配列番号１又は２に示されるアミノ酸配列と９０％以上の同一性を有するアミノ酸配列からなり、且つ、７５１位に相当するアミノ酸がチロシン、システイン、グルタミン、セリン、トレオニン、及びアスパラギンからなる群より選択される極性側鎖を有する中性アミノ酸に置換されている逆転写活性を有する核酸ポリメラーゼを含む、試薬キット。
［項１７］ マンガンイオンを生じさせる成分を含まない、項１６に記載の試薬キット。
［項１８］ 更にマグネシウムイオンを生じさせる成分を含む、項１６又は１７に記載の試薬キット。
Representative inventions of the present application are as follows.
[Item 1] Consists of an amino acid sequence having 90% or more identity with the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 1 or 2, and the amino acid at the site corresponding to position 751 is tyrosine, cysteine, glutamine, serine, threonine, and Performing a reverse transcription reaction to synthesize cDNA from RNA in the absence of manganese ions using a nucleic acid polymerase having reverse transcription activity substituted with a neutral amino acid having a polar side chain selected from the group consisting of asparagine. Reverse transcription method.
[Item 2] The nucleic acid polymerase consists of an amino acid sequence having 96% or more identity with the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 1 or 2, and the amino acid corresponding to position 751 is tyrosine, cysteine, glutamine, serine, 2. The reverse transcription method according to item 1, wherein the nucleic acid polymerase is substituted with a neutral amino acid having a polar side chain selected from the group consisting of threonine and asparagine.
[Item 3] The nucleic acid polymerase has a polar side chain in which the amino acid corresponding to position 751 in the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 1 or 2 is selected from the group consisting of tyrosine, cysteine, glutamine, serine, threonine, and asparagine. 3. The reverse transcription method according to item 1 or 2, wherein the nucleic acid polymerase is substituted with a neutral amino acid having the following.
[Item 4] The reverse transcription method according to any one of Items 1 to 3, wherein the nucleic acid polymerase is reacted in the presence of magnesium ions.
[Item 5] The reverse transcription method according to any one of Items 1 to 4, wherein the reverse transcription reaction is performed using a biological sample that has not undergone a purification step.
[Item 6] The reverse transcription method according to any one of Items 1 to 5, wherein the reverse transcription reaction is performed in 5 minutes or less.
[Item 7] The reverse transcription method according to any one of Items 1 to 6, wherein the nucleic acid polymerase further comprises an amino acid modification at a site corresponding to at least one selected from the group consisting of positions 509 and 744. .
[Item 8] The modification of the amino acid at a site corresponding to at least one selected from the group consisting of positions 509 and 744 is a substitution with a basic amino acid selected from the group consisting of histidine, lysine, and arginine. The reverse transcription method according to item 7.
[Item 9] The following steps:
(a) Consists of an amino acid sequence having 90% or more identity with the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 1 or 2, and the amino acid corresponding to position 751 consists of tyrosine, cysteine, glutamine, serine, threonine, and asparagine performing a reverse transcription reaction for synthesizing cDNA from RNA in the absence of manganese ions using a nucleic acid polymerase having reverse transcription activity substituted with a neutral amino acid having a polar side chain selected from the group; b) further performing a nucleic acid amplification reaction with the nucleic acid polymerase using the reverse transcription product produced by the reverse transcription reaction of step (a) as a template;
A nucleic acid amplification method comprising: .
[Item 10] The nucleic acid amplification method according to Item 9, wherein the reverse transcription reaction in step (a) is performed in the presence of magnesium ions.
[Item 11] The nucleic acid amplification method according to Item 9 or 10, wherein the reverse transcription reaction in step (a) is performed using a biological sample that has not undergone a purification step.
[Item 12] The nucleic acid amplification method according to any one of Items 9 to 11, wherein the reverse transcription reaction in step (a) is completed in 5 minutes or less.
[Item 13] The nucleic acid amplification method according to any one of Items 9 to 12, which is an RT-PCR method.
[Item 14] The nucleic acid amplification method according to any one of Items 9 to 13, which is an RT-PCR method in which the reverse transcription reaction and PCR reaction are performed in 1 hour or less.
[Item 15] A reagent used in the reverse transcription method according to any one of Items 1 to 8 or the nucleic acid amplification method according to any one of Items 9 to 14, which has the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 1 or 2 and 90 % or more, and the amino acid corresponding to position 751 is replaced with a neutral amino acid having a polar side chain selected from the group consisting of tyrosine, cysteine, glutamine, serine, threonine, and asparagine. A reagent comprising a nucleic acid polymerase having reverse transcription activity.
[Item 16] A reagent kit for use in the reverse transcription method according to any one of Items 1 to 8 or the nucleic acid amplification method according to any one of Items 9 to 14, comprising the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 1 or 2. consisting of an amino acid sequence with an identity of 90% or more, and the amino acid corresponding to position 751 is a neutral amino acid having a polar side chain selected from the group consisting of tyrosine, cysteine, glutamine, serine, threonine, and asparagine. A reagent kit comprising a nucleic acid polymerase having substituted reverse transcription activity.
[Item 17] The reagent kit according to Item 16, which does not contain a component that generates manganese ions.
[Item 18] The reagent kit according to Item 16 or 17, further comprising a component that generates magnesium ions.
本発明により、マンガンイオン（Ｍｎ２＋）を用いなくともＲＮＡから効率よく逆転写反応を行うことができる。従って、マンガンイオンを使用せずに、単一の逆転写活性を有する核酸ポリメラーゼで逆転写反応及び増幅反応を行うことも可能になる。マンガンは環境等への影響が懸念されているため、本発明によれば、そのような懸念が低減され、環境等にやさしい逆転写反応を行うこと等が可能になる。また、マンガン共存下で生じやすいポリメラーゼの忠実性低下の影響も低減でき、高い忠実性を維持しながら効率的な逆転写反応を行うことも可能となり得る。 According to the present invention, reverse transcription reaction can be efficiently performed from RNA without using manganese ions (Mn 2+ ). Therefore, it becomes possible to perform reverse transcription and amplification reactions with a single nucleic acid polymerase having reverse transcription activity without using manganese ions. Since there are concerns about the effects of manganese on the environment, the present invention reduces such concerns and makes it possible to perform environment-friendly reverse transcription reactions. Furthermore, it is possible to reduce the influence of a decrease in polymerase fidelity that tends to occur in the coexistence of manganese, and it may become possible to perform an efficient reverse transcription reaction while maintaining high fidelity.
以下、本発明の実施形態を示しつつ、本発明についてさらに詳説する。 Hereinafter, the present invention will be explained in further detail while showing embodiments of the present invention.
本発明は、マンガンイオンを共存させずに、逆転写活性を有する改変型核酸ポリメラーゼを用いて逆転写反応を行う方法、及びその逆転写反応を利用したＲＴ－ＰＣＲ方法等に関する。逆転写活性を有する核酸ポリメラーゼとは、ＲＮＡからｃＤＮＡを合成する能力（これを「逆転写活性」（ＲＴ活性）ともいう）及び核酸を増幅する能力（これを「ポリメラーゼ活性」ともいう）を兼ね備えた核酸ポリメラーゼである。核酸ポリメラーゼは、好ましくはＤＮＡポリメラーゼであり、ポリメラーゼ活性としてＤＮＡを増幅するＤＮＡポリメラーゼ活性を兼ね備えたポリメラーゼであり得る。ＤＮＡポリメラーゼとは、１本鎖の核酸を鋳型として、それに相補的な塩基配列を有するＤＮＡ鎖を合成する酵素を意味する。逆転写活性及びＤＮＡポリメラーゼ活性の有無は、例えば、ＲＮＡを鋳型とするＲＴ－ＰＣＲにおいて核酸増幅反応が成立するか否かで判定することができる。また例えば、後述の逆転写活性（ＲＴ活性）の評価方法に記載の手順により、当該核酸ポリメラーゼの逆転写活性の有無及びその程度を判定することができる。 The present invention relates to a method for performing a reverse transcription reaction using a modified nucleic acid polymerase having reverse transcription activity without the coexistence of manganese ions, and an RT-PCR method using the reverse transcription reaction. A nucleic acid polymerase with reverse transcription activity has the ability to synthesize cDNA from RNA (this is also referred to as "reverse transcription activity" (RT activity)) and the ability to amplify nucleic acids (this is also referred to as "polymerase activity"). It is a nucleic acid polymerase. The nucleic acid polymerase is preferably a DNA polymerase, and may be a polymerase that has a DNA polymerase activity that amplifies DNA as a polymerase activity. DNA polymerase refers to an enzyme that uses a single-stranded nucleic acid as a template to synthesize a DNA strand having a complementary base sequence. The presence or absence of reverse transcription activity and DNA polymerase activity can be determined, for example, by whether a nucleic acid amplification reaction is successful in RT-PCR using RNA as a template. Furthermore, for example, the presence or absence and degree of reverse transcription activity of the nucleic acid polymerase can be determined by the procedure described in the method for evaluating reverse transcription activity (RT activity) described below.
特定の実施形態において、本発明は、サーマス・サーモフィルス（Ｔｈｅｒｍｕｓ ｔｈｅｒｍｏｐｈｉｌｕｓ）由来のＤＮＡポリメラーゼ又はＴｈｅｍｕｓ ｓｐ Ｚ０５由来のＤＮＡポリメラーゼにおいて、７５１位に相当する部位でアミノ酸改変を有する変異型核酸ポリメラーゼを使用することを特徴とする。サーマス・サーモフィルス由来のＤＮＡポリメラーゼの全長アミノ酸配列を配列番号１に示す。また、配列番号１に示されるアミノ酸配列をコードするサーマス・サーモフィルス由来の遺伝子配列を配列番号２に示す。そして、Ｔｈｅｍｕｓ ｓｐ Ｚ０５由来のＤＮＡポリメラーゼの全長アミノ酸配列を配列番号３に示す。また、配列番号３に示されるアミノ酸配列をコードするＴｈｅｍｕｓ ｓｐ Ｚ０５由来の遺伝子配列を配列番号４に示す。 In certain embodiments, the invention uses a mutant nucleic acid polymerase having an amino acid modification at a site corresponding to position 751 in a DNA polymerase from Thermus thermophilus or a DNA polymerase from Themus sp Z05. It is characterized by The full-length amino acid sequence of DNA polymerase derived from Thermus thermophilus is shown in SEQ ID NO: 1. Furthermore, the gene sequence derived from Thermus thermophilus that encodes the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 1 is shown in SEQ ID NO: 2. The full-length amino acid sequence of the DNA polymerase derived from Themus sp Z05 is shown in SEQ ID NO: 3. Furthermore, the gene sequence derived from Themus sp Z05 that encodes the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 3 is shown in SEQ ID NO: 4.
一つの実施形態において、本発明において使用する核酸ポリメラーゼは、配列番号１又は２に示されるアミノ酸配列からなるタンパク質において、７５１位に相当する部位のアミノ酸に変異（好ましくは、他のアミノ酸への置換）を含む改変型核酸ポリメラーゼであることを特徴とする。改変前のアミノ酸配列は、配列番号１又は２と完全に同一である場合に限られるものではなく、逆転写活性及びポリメラーゼ活性（好ましくはＤＮＡポリメラーゼ活性）が維持されている限り特に制限されないが、例えば、配列番号１又は２に記載のアミノ酸配列との同一性が９０％以上、好ましくは９５％以上、より好ましくは９６％以上、更に好ましくは９７％以上、更により好ましくは９８％以上、なかでも９９％以上であるアミノ酸配列から構成されるものが好適である。 In one embodiment, the nucleic acid polymerase used in the present invention mutates (preferably substitutes with another amino acid) the amino acid at the site corresponding to position 751 in a protein consisting of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 1 or 2. ) is characterized by being a modified nucleic acid polymerase comprising: The amino acid sequence before modification is not limited to being completely identical to SEQ ID NO: 1 or 2, and is not particularly limited as long as reverse transcription activity and polymerase activity (preferably DNA polymerase activity) are maintained. For example, the identity with the amino acid sequence set forth in SEQ ID NO: 1 or 2 is 90% or more, preferably 95% or more, more preferably 96% or more, still more preferably 97% or more, even more preferably 98% or more, or However, it is preferable that the amino acid sequence consists of 99% or more of the amino acid sequence.
さらに、改変前のアミノ酸配列は、配列番号１又は２に記載のアミノ酸配列において、１又は数個のアミノ酸が欠失、置換、及び／又は付加されたアミノ酸配列であってもよい。ここで「１又は数個」とは、逆転写活性及びポリメラーゼ活性（好ましくはＤＮＡポリメラーゼ活性）が維持される限り特に制限されないが、例えば、１～２０個、好ましくは１～１０個、より好ましくは１～５個である。 Furthermore, the amino acid sequence before modification may be an amino acid sequence in which one or several amino acids are deleted, substituted, and/or added to the amino acid sequence set forth in SEQ ID NO: 1 or 2. Here, "one or several" is not particularly limited as long as reverse transcription activity and polymerase activity (preferably DNA polymerase activity) are maintained, but for example, 1 to 20, preferably 1 to 10, more preferably is 1 to 5.
前記のような配列番号１又は２と高いアミノ酸配列同一性を示す関係にある改変前のアミノ酸配列は、例えば、遺伝子工学的な手法により人為的に作製するものであってもよいし、天然に由来するタンパク質のアミノ酸配列であってもよい。このような天然に由来するアミノ酸配列としては、特に限定するものではないが、例えば、Ｔｈｅｒｍｕｓ ｔｈｅｒｍｏｐｈｉｌｕｓ ＨＢ８由来のＤＮＡポリメラーゼ（Ｔｔｈ）、Ｔｈｅｍｕｓ ｓｐ Ｚ０５由来のＤＮＡポリメラーゼ（Ｚ０５）、及びこれらと高い配列同一性を示すことが知られているＴｈｅｒｍｏｔｏｇａ ｍａｒｉｔｉｍａ由来のＤＮＡポリメラーゼ（Ｔｍａ）などが挙げられる。好ましくは、Ｔｔｈ又はＺ０５由来のアミノ酸配列であり、なかでも安定して高い効果を発揮し得るという観点から、Ｔｔｈ由来のアミノ酸配列がとりわけ好適である。 The amino acid sequence before modification that has a high amino acid sequence identity with SEQ ID NO: 1 or 2 as described above may be one that is artificially created by genetic engineering techniques, or one that is naturally occurring. It may also be the amino acid sequence of the derived protein. Such naturally derived amino acid sequences include, but are not particularly limited to, DNA polymerase derived from Thermus thermophilus HB8 (Tth), DNA polymerase derived from Themus sp Z05 (Z05), and those having high sequence identity with these. Examples include DNA polymerase derived from Thermotoga maritima (Tma), which is known to exhibit sexual activity. Amino acid sequences derived from Tth or Z05 are preferred, and amino acid sequences derived from Tth are particularly preferred from the viewpoint of being able to exhibit stable and high effects.
特定の実施形態において、本発明において使用する核酸ポリメラーゼは、配列番号１又は２におけるアミノ酸配列或いは前記のような配列番号１又は２と特定の関係にあるアミノ酸配列において、７５１位のフェニルアラニン（Ｆ７５１）に相当する部位でアミノ酸改変を有する。本発明の核酸ポリメラーゼは、Ｆ７５１位に相当する部位におけるアミノ酸改変以外に、本発明の効果を奏する限りにおいて、他のアミノ酸部位においても任意のアミノ酸改変を含んでいてもよい。ＲＮＡからの核酸増幅をより確実に効率よく行うことが可能であるという観点から、配列番号１又は２におけるアミノ酸配列或いは前記のような配列番号１又は２と特定の関係にあるアミノ酸配列において、５０９位のグルタミンに相当する部位（Ｑ５０９位）及び／又は７４４位に相当する部位（Ｅ７４４）に更にアミノ酸改変を有するものとするものが好適である。 In a specific embodiment, the nucleic acid polymerase used in the present invention is a phenylalanine at position 751 (F751) in the amino acid sequence in SEQ ID NO: 1 or 2 or in an amino acid sequence having a specific relationship with SEQ ID NO: 1 or 2 as described above. It has an amino acid modification at a site corresponding to . In addition to the amino acid modification at the site corresponding to position F751, the nucleic acid polymerase of the present invention may include any amino acid modification at other amino acid sites as long as the effect of the present invention is achieved. From the viewpoint that it is possible to perform nucleic acid amplification from RNA more reliably and efficiently, in the amino acid sequence in SEQ ID NO: 1 or 2 or the amino acid sequence in a specific relationship with SEQ ID NO: 1 or 2 as described above, 509 Preferably, the amino acid is further modified at the site corresponding to glutamine at position Q509 (position Q509) and/or at the site corresponding to position 744 (E744).
本明細書においては、塩基配列、アミノ酸配列およびその個々の構成因子については、アルファベット表記による簡略化した記号を用いる場合があるが、いずれも分子生物学・遺伝子工学分野における慣行に従う。また、本明細書においては、アミノ酸配列の変異を簡潔に示すため、例えば「Ｆ７５１Ｙ」などの表記を用いる。「Ｆ７５１Ｙ」は、第７５１番目のフェニルアラニンをチロシンに置換したことを示しており、すなわち、置換前のアミノ酸残基の種類、その場所、置換後のアミノ酸残基の種類を示している。また、配列番号は、特に断らない限り、配列表に記載された配列番号に対応する。また、多重変異体の場合は、上記の表記を「／」でつなげて表す。たとえば「Ｑ５０９Ｒ／Ｆ７５１Ｙ」は、第５０９番目のグルタミンをアルギニンに置換し、かつ、第７５１番目のフェニルアラニンをチロシンに置換したことを示す。なお、本明細書において、配列番号１又は２に示されるアミノ酸配列と完全同一ではないアミノ酸配列おける、配列番号１又は２上のある位置（順番）に相当する部位とは、配列の一次構造を常法に従って比較（アラインメント）したときに、配列番号１又は２の当該位置と対応する位置をいうものとする。 In this specification, simplified alphabetical symbols may be used for base sequences, amino acid sequences, and their individual constituent elements, but all of these are in accordance with conventions in the fields of molecular biology and genetic engineering. Furthermore, in this specification, in order to concisely indicate mutations in amino acid sequences, a notation such as "F751Y" is used, for example. "F751Y" indicates that the 751st phenylalanine was substituted with tyrosine, that is, it indicates the type of amino acid residue before substitution, its location, and the type of amino acid residue after substitution. Furthermore, unless otherwise specified, the sequence numbers correspond to the sequence numbers listed in the sequence listing. In addition, in the case of multiple mutants, the above notation is expressed by connecting them with "/". For example, "Q509R/F751Y" indicates that glutamine at position 509 is replaced with arginine, and phenylalanine at position 751 is replaced with tyrosine. In addition, in this specification, a site corresponding to a certain position (order) on SEQ ID NO: 1 or 2 in an amino acid sequence that is not completely identical to the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 1 or 2 is defined as It refers to a position that corresponds to the relevant position in SEQ ID NO: 1 or 2 when compared (aligned) according to a conventional method.
また、本明細書において「変異型核酸ポリメラーゼ」又は「改変型核酸ポリメラーゼ」という場合の「変異型」又は「改変型」とは、従来知られた核酸ポリメラーゼとは異なるアミノ酸配列を備えることを意味するものであり、人為的変異によるか自然界における変異によるかを区別するものではない。 In addition, in this specification, when referring to "mutant nucleic acid polymerase" or "modified nucleic acid polymerase," the term "mutant type" or "modified type" means having an amino acid sequence different from that of conventionally known nucleic acid polymerases. It does not distinguish between artificial variation and natural variation.
特定の好ましい実施形態において、本発明に使用する核酸ポリメラーゼは、配列番号１又は２と特定の配列同一性を示す関係にあるアミノ酸配列において、７５１位に相当する部位のアミノ酸を中性のアミノ酸に改変したものである。好ましくは、７５１位に相当する部位でのアミノ酸を、チロシン、システイン、グルタミン、セリン、トレオニン、又はアスパラギンに置換したものである。チロシン、システイン、グルタミン、セリン、トレオニン、アスパラギンはいずれも極性の中性側鎖を有するアミノ酸として知られており、等電点も約５．０～約５．７程度で近く、共通の性質を示し得るアミノ酸として同等の効果が発揮されることが期待できる。 In a specific preferred embodiment, the nucleic acid polymerase used in the present invention converts the amino acid at the position corresponding to position 751 into a neutral amino acid in the amino acid sequence that has a specific sequence identity with SEQ ID NO: 1 or 2. This is a modified version. Preferably, the amino acid at the site corresponding to position 751 is substituted with tyrosine, cysteine, glutamine, serine, threonine, or asparagine. Tyrosine, cysteine, glutamine, serine, threonine, and asparagine are all known as amino acids with polar and neutral side chains, and have similar isoelectric points of approximately 5.0 to 5.7, so they share common properties. It can be expected that the same effect as that of other amino acids can be exhibited.
更なる好ましい実施形態において、本発明に使用する核酸ポリメラーゼは、配列番号１又は２と特定の配列同一性を示す関係にあるアミノ酸配列において、更に５０９位及び／又は７４４位に相当する部位のアミノ酸を塩基性アミノ酸に改変したものである。好ましくは、５０９位及び／又は７４４位に相当する部位のアミノ酸を、アルギニン、リジン、又はヒスチジンに置換したものである。例えば、本発明の核酸ポリメラーゼは、５０９位に相当する部位のアミノ酸をアルギニン、又はリジンに置換したものであり得る。塩基性アミノ酸として、アルギニンの等電点は約１０．８、リジンの等電点は約９．７、ヒスチジンの等電点は約７．６あることが知られている。つまり、これらの塩基性アミノ酸はいずれも高い等電点を有しているので、共通の性質を示し得るアミノ酸として同等の効果が発揮されることが期待できる。 In a further preferred embodiment, the nucleic acid polymerase used in the present invention further comprises an amino acid at a position corresponding to position 509 and/or 744 in the amino acid sequence that has a specific sequence identity with SEQ ID NO: 1 or 2. is modified to a basic amino acid. Preferably, the amino acid at the site corresponding to position 509 and/or 744 is substituted with arginine, lysine, or histidine. For example, the nucleic acid polymerase of the present invention may have the amino acid at the site corresponding to position 509 substituted with arginine or lysine. It is known that, as basic amino acids, arginine has an isoelectric point of about 10.8, lysine has an isoelectric point of about 9.7, and histidine has an isoelectric point of about 7.6. In other words, since all of these basic amino acids have high isoelectric points, they can be expected to exhibit similar effects as amino acids that can exhibit common properties.
本発明において使用される改変された核酸ポリメラーゼを製造する方法としては、従来からの公知の方法が使用できる。好ましくは、野生型核酸ポリメラーゼをコードする遺伝子に変異を導入して、タンパク質工学的手法により新たな機能を有する変異型（改変型）核酸ポリメラーゼを製造する方法が用いられる。 Conventionally known methods can be used to produce the modified nucleic acid polymerase used in the present invention. Preferably, a method is used in which a mutation is introduced into a gene encoding a wild-type nucleic acid polymerase, and a mutant (modified) nucleic acid polymerase having a new function is produced by protein engineering techniques.
アミノ酸の改変を導入する方法の一態様として、Ｉｎｖｅｒｓｅ ＰＣＲ法に基づく部位特異的変異導入法を用いることができる。例えば、ＫＯＤ －Ｐｌｕｓ－ Ｍｕｔａｇｅｎｅｓｉｓ Ｋｉｔ（Ｔｏｙｏｂｏ製）は、（１）目的とする遺伝子を挿入したプラスミドを変性させ、該プラスミドに変異プライマーをアニーリングさせ、続いてＫＯＤ ＤＮＡポリメラーゼを用いて伸長反応を行う、（２）（１）のサイクルを１５回繰り返す、（３）制限酵素ＤｐｎＩを用いて鋳型としたプラスミドのみを選択的に切断する、（４）新たに合成された遺伝子をリン酸化、Ｌｉｇａｔｉｏｎを実施し環化させる、（５）環化した遺伝子を大腸菌に形質転換することで、目的とする変異の導入されたプラスミドを保有する形質転換体を取得することのできるキットであり、本発明に使用する核酸ポリメラーゼの作製に好適に用いることができる。 As one aspect of the method for introducing amino acid modifications, a site-directed mutagenesis method based on the inverse PCR method can be used. For example, the KOD -Plus- Mutagenesis Kit (manufactured by Toyobo) involves (1) denaturing a plasmid into which a gene of interest has been inserted, annealing a mutation primer to the plasmid, and then performing an elongation reaction using KOD DNA polymerase. , (2) Repeat the cycle of (1) 15 times, (3) Selectively cleave only the template plasmid using the restriction enzyme DpnI, (4) Phosphorylate the newly synthesized gene, and remove the ligation. (5) Transforming Escherichia coli with the circularized gene to obtain a transformant carrying a plasmid into which a desired mutation has been introduced; It can be suitably used for producing a nucleic acid polymerase to be used.
本発明に使用する核酸ポリメラーゼは、Ｓｓｏ７ｄやＰＣＮＡの融合タンパク質の形態であってもよい。また、Ｈｉｓタグ、ＧＳＴタグなどのタンパク質タグを付加した融合タンパク質であってもよい。 The nucleic acid polymerase used in the present invention may be in the form of a fusion protein of Sso7d or PCNA. Alternatively, it may be a fusion protein to which a protein tag such as a His tag or a GST tag is added.
上記核酸ポリメラーゼ遺伝子を必要に応じて発現ベクターに移し替え、宿主として例えば大腸菌を、該発現ベクターを用いて形質転換した後、アンピシリン等の薬剤を含む寒天培地に塗布し、コロニーを形成させる。コロニーを栄養培地、例えばＬＢ培地や２×ＹＴ培地に接種し、３７℃で１２～２０時間培養した後、菌体を破砕して粗酵素液を抽出する。ベクターとしては、ｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔ由来のものが好ましい。菌体を破砕する方法としては公知のいかなる手法を用いても良いが、例えば超音波処理、フレンチプレスやガラスビーズ破砕のような物理的破砕法やリゾチームのような溶菌酵素を用いることができる。 The above nucleic acid polymerase gene is transferred to an expression vector as necessary, and a host such as E. coli is transformed using the expression vector, and then applied to an agar medium containing a drug such as ampicillin to form colonies. The colony is inoculated into a nutrient medium, such as LB medium or 2xYT medium, and after culturing at 37°C for 12 to 20 hours, the cells are crushed and the crude enzyme solution is extracted. The vector is preferably derived from pBluescript. Any known method may be used to disrupt the bacterial cells, including physical disruption methods such as ultrasonication, French press and glass bead crushing, and lytic enzymes such as lysozyme.
上記方法により選抜された菌株から精製核酸ポリメラーゼを取得する方法は、いかなる手法を用いても良いが、例えば下記のような方法がある。栄養培地に培養して得られた菌体を回収した後、酵素的または物理的破砕法により破砕抽出して粗酵素液を得る。得られた粗酵素抽出液から熱処理、例えば８０℃、３０分間処理し、その後硫安沈殿により核酸ポリメラーゼ画分を回収する。この粗酵素液をセファデックスＧ－２５（アマシャムファルマシア・バイオテク製）を用いたゲル濾過等の方法により脱塩を行うことができる。この操作の後、ヘパリンセファロースカラムクロマトグラフィーにより分離、精製し、精製酵素標品を得ることができる。該精製酵素標品はＳＤＳ－ＰＡＧＥによってほぼ単一バンドを示す程度に純化される。 Any method may be used to obtain purified nucleic acid polymerase from the strain selected by the above method, and examples include the following methods. After collecting the cells obtained by culturing them in a nutrient medium, the cells are crushed and extracted using an enzymatic or physical crushing method to obtain a crude enzyme solution. The obtained crude enzyme extract is subjected to heat treatment, for example, at 80° C. for 30 minutes, and then the nucleic acid polymerase fraction is recovered by ammonium sulfate precipitation. This crude enzyme solution can be desalted by a method such as gel filtration using Sephadex G-25 (manufactured by Amersham Pharmacia Biotech). After this operation, the enzyme can be separated and purified by heparin Sepharose column chromatography to obtain a purified enzyme preparation. The purified enzyme preparation is purified by SDS-PAGE to the extent that it shows almost a single band.
本発明に使用する核酸ポリメラーゼが、逆転写活性及びＤＮＡポリメラーゼ活性を有するか否かは、具体的には、下記のような方法により測定することができる。 Specifically, whether the nucleic acid polymerase used in the present invention has reverse transcription activity and DNA polymerase activity can be determined by the following method.
［逆転写活性（ＲＴ活性）の評価方法］
本発明に使用する核酸ポリメラーゼは、従来のものと比べて逆転写活性に優れ、短時間で逆転写反応を行うことが可能であり得る。具体的には、特に限定はされないが、標的ＲＮＡの全長が例えば５０～３００ｂｐである場合に、好ましくは１５０～２５０ｂｐである場合に、その標的ＲＮＡからの逆転写反応が５分以下で完了するものである。本発明において、逆転写活性はリアルタイムＲＴ－ＰＣＲで算出されるＣｔ、もしくはＣｑ値から評価できる。得られたＣｔが１小さいことはすなわち逆転写効率が２倍、２小さいことは逆転写効率が４倍であることを示す。
[Evaluation method of reverse transcription activity (RT activity)]
The nucleic acid polymerase used in the present invention has superior reverse transcription activity compared to conventional polymerases, and may be capable of performing a reverse transcription reaction in a short time. Specifically, although not particularly limited, when the total length of the target RNA is, for example, 50 to 300 bp, preferably 150 to 250 bp, the reverse transcription reaction from the target RNA is completed in 5 minutes or less. It is something. In the present invention, reverse transcription activity can be evaluated from the Ct or Cq value calculated by real-time RT-PCR. A decrease in the obtained Ct by 1 means that the reverse transcription efficiency is twice as high, and a decrease in the obtained Ct by 2 means that the reverse transcription efficiency is 4 times as high.
［ＤＮＡポリメラーゼ活性測定法］
本発明においては、純化されたＤＮＡポリメラーゼの活性は、以下に示す方法により測定する。酵素活性が強い場合には、保存緩衝液（５０ｍＭ Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ（ｐＨ８．０），５０ｍＭ ＫＣｌ，１ｍＭ ジチオスレイトール，０．１％ Ｔｗｅｅｎ２０，０．１％ Ｎｏｎｉｄｅｔ Ｐ４０，５０％ グリセリン）でサンプルを希釈して測定を行う。（１）下記のＡ液２５μｌ、Ｂ液５μｌ、Ｃ液５μｌ、滅菌水１０μｌ、及び酵素溶液５μｌをマイクロチューブに加えて、７５℃にて１０分間反応する。（２）その後氷冷し、Ｅ液５０μｌ、Ｄ液１００μｌを加えて、攪拌後更に１０分間氷冷する。（３）この液をガラスフィルター（ワットマン製ＧＦ／Ｃフィルター）で濾過し、０．１Ｎ 塩酸およびエタノールで十分洗浄する。（４）フィルターの放射活性を液体シンチレーションカウンター（パッカード製Ｔｒｉ－Ｃａｒｂ２８１０ ＴＲ）で計測し、鋳型ＤＮＡのヌクレオチドの取り込みを測定する。酵素活性の１単位はこの条件で３０分当りの１０ｎｍｏｌのヌクレオチドを酸不溶性画分（即ち、Ｄ液を添加したときに不溶化する画分）に取り込む酵素量とする。
Ａ液：４０ｍＭ Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ緩衝液（ｐＨ７．５）１６ｍＭ 塩化マグネシウム１５ｍＭ ジチオスレイトール１００μｇ／ｍｌ ＢＳＡ（牛血清アルブミン）
Ｂ液：１．５μｇ／μｌ 活性化仔牛胸腺ＤＮＡ
Ｃ液：１．５ｍＭ ｄＮＴＰ（２５０ｃｐｍ／ｐｍｏｌ ［３Ｈ］ｄＴＴＰ）
Ｄ液：２０％ トリクロロ酢酸（２ｍＭ ピロリン酸ナトリウム）
Ｅ液：１ｍｇ／ｍｌ 仔牛胸腺ＤＮＡ
[DNA polymerase activity measurement method]
In the present invention, the activity of purified DNA polymerase is measured by the method shown below. If the enzyme activity is strong, remove the sample with storage buffer (50mM Tris-HCl (pH 8.0), 50mM KCl, 1mM dithiothreitol, 0.1% Tween20, 0.1% Nonidet P40, 50% glycerin). Dilute and measure. (1) Add 25 μl of solution A, 5 μl of solution B, 5 μl of solution C, 10 μl of sterilized water, and 5 μl of enzyme solution shown below to a microtube, and react at 75° C. for 10 minutes. (2) Then, cool on ice, add 50 μl of solution E and 100 μl of solution D, stir, and cool on ice for another 10 minutes. (3) Filter this liquid through a glass filter (GF/C filter manufactured by Whatman) and wash thoroughly with 0.1N hydrochloric acid and ethanol. (4) The radioactivity of the filter is measured using a liquid scintillation counter (Tri-Carb2810 TR manufactured by Packard) to measure the incorporation of nucleotides into template DNA. One unit of enzyme activity is defined as the amount of enzyme that incorporates 10 nmol of nucleotides into the acid-insoluble fraction (ie, the fraction that becomes insolubilized when Solution D is added) per 30 minutes under these conditions.
Solution A: 40mM Tris-HCl buffer (pH 7.5) 16mM magnesium chloride 15mM dithiothreitol 100μg/ml BSA (bovine serum albumin)
Solution B: 1.5μg/μl activated calf thymus DNA
Solution C: 1.5mM dNTP (250cpm/pmol [3H]dTTP)
Solution D: 20% trichloroacetic acid (2mM sodium pyrophosphate)
Solution E: 1mg/ml calf thymus DNA
本発明に使用する核酸ポリメラーゼは、当該分野で公知の任意の核酸増幅方法において使用することができるものである。核酸増幅のための温度・時間・反応サイクル等の条件は、増幅したい核酸の種類や塩基の配列、鎖長等によって変わるが、当業者であれば適宜設定できる。通常、ＰＣＲやＲＴ－ＰＣＲでは、（１）熱処理によるＤＮＡ変性（２本鎖ＤＮＡから１本鎖ＤＮＡへの解離）、（２）鋳型１本鎖ＤＮＡへのプライマーのアニーリング、（３）ＤＮＡポリメラーゼを用いた前記プライマーの伸長、という３ステップを１サイクルとし、このサイクルを繰り返す。本発明における伸長時間とは、（３）のプライマーを伸長させる反応に必要な１サイクルの時間を示す。また、ＰＣＲやＲＴ－ＰＣＲでは、上記の（２）アニーリング及び（３）プライマーの伸長を同温度で、２ステップで行う場合もある。この場合には、本発明の伸長時間とは、便宜上 、（２）アニーリング及び（３）伸長を並行して行う時間を伸長時間という。一例として、本発明の核酸ポリメラーゼを用いる核酸増幅法として、ＰＣＲやＲＴ－ＰＣＲを行う場合では、伸長時間を１ｋｂあたり３０秒以下にしてもよい。 The nucleic acid polymerase used in the present invention can be used in any nucleic acid amplification method known in the art. Conditions such as temperature, time, and reaction cycle for nucleic acid amplification vary depending on the type of nucleic acid to be amplified, base sequence, chain length, etc., and can be set as appropriate by those skilled in the art. Usually, in PCR or RT-PCR, (1) DNA denaturation by heat treatment (dissociation from double-stranded DNA to single-stranded DNA), (2) annealing of primers to template single-stranded DNA, (3) DNA polymerase The three steps of elongation of the primer using the primer are one cycle, and this cycle is repeated. The extension time in the present invention refers to the time required for one cycle of the reaction to extend the primer (3). Furthermore, in PCR or RT-PCR, the above (2) annealing and (3) primer extension may be performed in two steps at the same temperature. In this case, the extension time of the present invention is, for convenience, the time during which (2) annealing and (3) extension are performed in parallel. As an example, when performing PCR or RT-PCR as a nucleic acid amplification method using the nucleic acid polymerase of the present invention, the extension time may be set to 30 seconds or less per 1 kb.
特定の実施形態では、本発明に使用する核酸ポリメラーゼは、ＰＣＲ反応サイクルの高温下でも十分に機能し得る程度の耐熱性を備えていることが好ましい。例えば、８５℃で１分以上の熱処理を実施しても、酵素活性が半分以上低下しないレベルの耐熱性を有するものが好ましい。例えば、 ＲＴ－ＰＣＲに用いられる反応温度としては、特に限定されないが、４０～８０℃での逆転写反応後に９０～１００℃での熱変性と４０～８０℃での会合・伸長反応を行うＰＣＲ反応サイクル条件が挙げられ、好ましくは、５０～６５℃での逆転写反応後に９４～９８℃での熱変性と５５～６５℃での会合・伸長反応を行うＰＣＲ反応サイクル条件（例えば、６０℃での逆転写反応後に９５℃での熱変性と６０℃での会合・伸長反応を行うＰＣＲ反応サイクル条件）を例示することができる。本発明に使用する核酸ポリメラーゼは、このような温度範囲において良好な活性が維持されるものであり、効果的に核酸を増幅することが可能である。 In certain embodiments, the nucleic acid polymerase used in the present invention preferably has sufficient thermostability to function even under the high temperatures of PCR reaction cycles. For example, it is preferable to have heat resistance at a level where the enzyme activity does not decrease by half or more even if heat treatment is performed at 85° C. for 1 minute or more. For example, the reaction temperature used in RT-PCR is not particularly limited, but PCR involves reverse transcription reaction at 40-80°C followed by heat denaturation at 90-100°C and association/extension reaction at 40-80°C. Preferably, PCR reaction cycle conditions include reverse transcription reaction at 50 to 65°C followed by heat denaturation at 94 to 98°C and association/extension reaction at 55 to 65°C (for example, 60°C Examples of PCR reaction cycle conditions include reverse transcription reaction at 95° C. followed by heat denaturation at 95° C. and association/extension reaction at 60° C.). The nucleic acid polymerase used in the present invention maintains good activity in such a temperature range, and is capable of effectively amplifying nucleic acids.
通常、ＴｔｈやＺ０５などのＤＮＡポリメラーゼで逆転写する際は、マンガン（Ｍｎ）イオンを必要とする。一方、本発明の逆転写方法及び／又は逆転写反応を含む核酸増幅方法では、逆転写反応時に従来必要とされていたマンガンイオンが存在しなくてもよいことを大きな特徴としている。従って、本発明の逆転写方法及び／又は逆転写反応を含む核酸増幅方法は、マンガンイオンを生じさせる成分（例えば、塩化マンガン、硫酸マンガン、酢酸マンガン等のマンガン塩）を含まない条件下で逆転写反応を行うように実施される。マンガンは環境等への有害性が懸念されており、マンガンを使用せずに逆転写反応及び逆転写反応を含む核酸増幅方法（例えば、ＲＴ－ＰＣＲ方法）を実施できることは非常に有益である。 Normally, manganese (Mn) ions are required when reverse transcription is performed using a DNA polymerase such as Tth or Z05. On the other hand, a major feature of the reverse transcription method and/or nucleic acid amplification method including reverse transcription reaction of the present invention is that manganese ions, which are conventionally required during reverse transcription reaction, do not need to be present. Therefore, the reverse transcription method and/or nucleic acid amplification method including a reverse transcription reaction of the present invention can be reversed under conditions that do not contain components that generate manganese ions (for example, manganese salts such as manganese chloride, manganese sulfate, and manganese acetate). It is carried out like a photoreaction. There are concerns that manganese is harmful to the environment, and it is extremely beneficial to be able to perform reverse transcription reactions and nucleic acid amplification methods (for example, RT-PCR methods) that include reverse transcription reactions without using manganese.
一つの実施形態において、本発明の逆転写方法及び／又は逆転写反応を含む核酸増幅方法は、マンガンイオンに替えて、マンガンイオン以外の二価イオン（好ましくは、二価陽イオン）が共存する条件下で、逆転写反応を行うことが好ましい。なかでも、逆転写反応時にマンガンイオンの代わりにマグネシウム（Ｍｇ）イオンを生じさせる成分が添加されていることが好ましい。マグネシウムイオンを生じさせる成分としては、例えば、塩化マグネシウム、硫酸マグネシウム、酢酸マグネシウム等のマグネシウム塩が挙げられるが、これらに限定されない。 In one embodiment, the reverse transcription method and/or the nucleic acid amplification method including a reverse transcription reaction of the present invention includes the coexistence of divalent ions other than manganese ions (preferably divalent cations) in place of manganese ions. It is preferable to perform the reverse transcription reaction under the following conditions. Among these, it is preferable to add a component that generates magnesium (Mg) ions instead of manganese ions during the reverse transcription reaction. Examples of the component that generates magnesium ions include, but are not limited to, magnesium salts such as magnesium chloride, magnesium sulfate, and magnesium acetate.
本発明の逆転写方法及び逆転写反応を含む核酸増幅方法は、精製工程を経ていない生体試料内の核酸を精製することなく使用して、逆転写反応及び／又は増幅反応を行うことが可能である。精製とは、生体試料の組織、細胞壁などの夾雑物質と生体試料中の核酸を分離する方法であり、フェノールあるいはフェノール・クロロホルム等を用いて、核酸を分離する方法や、イオン交換樹脂、ガラスフィルターあるいはタンパク凝集作用を有する試薬によって核酸を分離する方法がある。 The reverse transcription method and the nucleic acid amplification method including the reverse transcription reaction of the present invention can perform the reverse transcription reaction and/or the amplification reaction using nucleic acid in a biological sample that has not undergone a purification step without being purified. be. Purification is a method of separating nucleic acids in a biological sample from contaminants such as tissues and cell walls of the biological sample, and methods that use phenol or phenol/chloroform to separate nucleic acids, ion exchange resins, glass filters, etc. Alternatively, there is a method of separating nucleic acids using a reagent that has a protein aggregation effect.
一つの実施形態において、本発明における逆転写方法及び逆転写反応を含む核酸増幅方法は、生体試料をこれらの精製法をとることなく、逆転写反応液及び／又は核酸増幅反応液に添加し、逆転写反応を行う方法及び／又は増幅反応を行う方法であり得る。本発明において「精製工程を経ていない生体試料」とは、生体試料そのもの、あるいは液体の生体試料を水などの溶媒を用いて希釈したもの、固体の生体試料を水などの溶媒に添加し熱をかけて破砕させたものなどが挙げられる。 In one embodiment, the reverse transcription method and the nucleic acid amplification method including reverse transcription reaction in the present invention include adding a biological sample to a reverse transcription reaction solution and/or a nucleic acid amplification reaction solution without using these purification methods, The method may be a method of performing a reverse transcription reaction and/or a method of performing an amplification reaction. In the present invention, a "biological sample that has not undergone a purification process" refers to a biological sample itself, a liquid biological sample diluted with a solvent such as water, or a solid biological sample added to a solvent such as water and heated. Examples include those that have been crushed by
臓器や細胞、ウイルスなど、増幅対象となる核酸が試料の組織内に存在する場合、前記核酸を抽出するために組織を破壊する行為（物理的な処理による破壊、界面活性剤などを使用した破壊など）は、本発明で言う精製に該当しない。また、前記方法で得られた試料、または、生体試料を、緩衝液などにより希釈する行為も本発明で言う精製に該当しない。 When a nucleic acid to be amplified exists in the tissue of a sample, such as an organ, cell, or virus, the act of destroying the tissue in order to extract the nucleic acid (destruction by physical treatment, destruction using surfactants, etc.) etc.) do not fall under the purification term of the present invention. Furthermore, the act of diluting the sample or biological sample obtained by the above method with a buffer solution does not fall under the purification term in the present invention.
本発明の方法に適用する生体試料は、生体から採取された試料であれば特に限定されない。例えば、動植物組織、体液、排泄物、細胞、細菌、ウイルス等をいう。体液には糞便や血液、唾液が含まれ、細胞には血液から分離した白血球が含まれるが、これらに限定されるものではない。 The biological sample applied to the method of the present invention is not particularly limited as long as it is a sample collected from a living body. For example, it refers to animal and plant tissue, body fluids, excrement, cells, bacteria, viruses, etc. Body fluids include feces, blood, and saliva, and cells include, but are not limited to, white blood cells separated from blood.
一つの好ましい実施形態において、本発明の逆転写方法及び／又は逆転写反応を含む核酸増幅方法は、ＲＮＡからｃＤＮＡを合成する逆転写反応を５分以下で完了できる。ＲＮＡからｃＤＮＡを合成する逆転写反応を５分以下で完了できるとは、例えば、全長が５０～３００ｂｐの標的ＲＮＡからのｃＤＮＡの合成が５分以下で完了することをいい、好ましくは、全長が１５０～２５０ｂｐの標的ＲＮＡからのｃＤＮＡの合成が５分以下で完了することをいう。この場合の逆転写反応時間の下限値は特に限定されないが、例えば、１分以上、３分以上、又は４分以上であり得る。 In one preferred embodiment, the reverse transcription method and/or nucleic acid amplification method including a reverse transcription reaction of the present invention can complete the reverse transcription reaction for synthesizing cDNA from RNA in 5 minutes or less. Being able to complete the reverse transcription reaction for synthesizing cDNA from RNA in 5 minutes or less means, for example, that the synthesis of cDNA from a target RNA with a full length of 50 to 300 bp can be completed in 5 minutes or less, and preferably, Synthesis of cDNA from target RNA of 150 to 250 bp is completed in 5 minutes or less. The lower limit of the reverse transcription reaction time in this case is not particularly limited, but may be, for example, 1 minute or more, 3 minutes or more, or 4 minutes or more.
本発明に使用する核酸ポリメラーゼは、上記のように短時間で逆転写反応を行うことができるだけでなく、ＰＣＲ反応などの増幅反応も効率よく行うことができる。従って、更なる好ましい実施形態において、本発明の核酸増幅方法は、別途、逆転写酵素を組み合わせて使用する必要がなく、単独で、逆転写反応及び増幅反応（例えば、ＲＴ－ＰＣＲ反応）を行うこともできる。本発明では特定の改変型核酸ポリメラーゼを使用することにより、逆転写反応及び増幅反応を効率的に行えるので、逆転写反応及び増幅反応の全体に要する時間も短縮することができ、例えば、逆転写反応及びＰＣＲ反応（ＲＴ－ＰＣＲ反応）を１時間以下で行うこともできる。この場合の逆転写反応及びＰＣＲ反応に係る時間の下限値は特に限定されないが、例えば、３０分間以上、４０分間以上、又は５０分間以上であり得る。 The nucleic acid polymerase used in the present invention can not only perform reverse transcription reactions in a short time as described above, but also efficiently perform amplification reactions such as PCR reactions. Therefore, in a further preferred embodiment, the nucleic acid amplification method of the present invention does not require the use of a separate reverse transcriptase in combination, and the reverse transcription reaction and amplification reaction (for example, RT-PCR reaction) are carried out alone. You can also do that. In the present invention, by using a specific modified nucleic acid polymerase, the reverse transcription reaction and amplification reaction can be performed efficiently, so the time required for the entire reverse transcription reaction and amplification reaction can be shortened. The reaction and PCR reaction (RT-PCR reaction) can also be carried out in one hour or less. The lower limit of the time for the reverse transcription reaction and PCR reaction in this case is not particularly limited, but may be, for example, 30 minutes or more, 40 minutes or more, or 50 minutes or more.
一つの実施形態において、本発明の核酸増幅方法は、前記の本発明の核酸ポリメラーゼに加えて、更に別のＤＮＡポリメラーゼを組み合わせて使用してもよい。本発明の核酸ポリメラーゼと組み合わせて用いられる別のＤＮＡポリメラーゼは、当該分野で公知の任意のＤＮＡポリメラーゼであり得るが、例えば、上記本発明で用いる改変型核酸ポリメラーゼ以外のＴｈｅｒｍｕｓ ｔｈｅｒｍｏｐｈｉｌｕｓ由来ＤＮＡポリメラーゼ若しくはＴｈｅｍｕｓ ｓｐ Ｚ０５由来ＤＮＡポリメラーゼ、又はＴａｑ ＤＮＡポリメラーゼ等のＴｈｅｒｍｕｓ ａｑｕａｔｉｃｕｓ由来ＤＮＡポリメラーゼ、Ｔｍａ ＤＮＡポリメラーゼ等のＴｈｅｒｍｏｔｏｇａ ｍａｒｉｔｉｍａ由来ＤＮＡポリメラーゼ、ＫＯＤ ＤＮＡポリメラーゼ等のＴｈｅｒｍｏｃｏｃｃｕｓ ｋｏｄａｋａｒｅｎｓｉｓ由来ＤＮＡポリメラーゼ、Ｐｆｕ ＤＮＡポリメラーゼ等のＰｙｒｏｃｏｃｃｕｓ ｆｕｒｉｏｓｕｓ由来ＤＮＡポリメラーゼ等を挙げることができる。なお、本明細書で、例えばＴｈｅｒｍｕｓ ａｑｕａｔｉｃｕｓ由来ＤＮＡポリメラーゼという場合、Ｔｈｅｒｍｕｓ ａｑｕａｔｉｃｕｓから単離された野生型ＤＮＡポリメラーゼに限定されず、当該野生型ＤＮＡポリメラーゼと高いアミノ酸配列同一性（例えば、９０％以上、９５％以上、９６％以上、９７％以上、９８％以上又は９９％以上のアミノ酸配列同一性）を示すＤＮＡポリメラーゼ変異体又は当該野生型ＤＮＡポリメラーゼのアミノ酸配列において１又は数個のアミノ酸が欠失、置換、及び／又は付加されたＤＮＡポリメラーゼ変異体も含み、他の微生物に由来するＤＮＡポリメラーゼも同様であり得る。好ましくは、組み合わせて用いられる別のＤＮＡポリメラーゼは、上記改変型核酸ポリメラーゼ以外のＴｈｅｒｍｕｓ ｔｈｅｒｍｏｐｈｉｌｕｓ由来ＤＮＡポリメラーゼ又はＴｈｅｍｕｓ ｓｐ Ｚ０５由来ＤＮＡポリメラーゼであり、より好ましくはＴｔｈ ＤＮＡポリメラーゼ又はＺ０５ ＤＮＡポリメラーゼであり、更に好ましくはＴｔｈ ＤＮＡポリメラーゼである。本発明の核酸ポリメラーゼともう１つ別のＤＮＡポリメラーゼとを組み合わせて核酸増幅反応（例えば、ＲＴ－ＰＣＲ反応）を行うことを二酵素系の核酸増幅反応（例えば、二酵素系ＲＴ－ＰＣＲ反応）などといい、本発明の核酸ポリメラーゼはこのような態様でも好適に実施され得る。 In one embodiment, the nucleic acid amplification method of the present invention may use a combination of another DNA polymerase in addition to the aforementioned nucleic acid polymerase of the present invention. Another DNA polymerase used in combination with the nucleic acid polymerase of the present invention may be any DNA polymerase known in the art, for example, a DNA polymerase derived from Thermus thermophilus other than the modified nucleic acid polymerase used in the present invention described above or Themus sp Z05-derived DNA polymerase, or Thermus aquaticus-derived DNA polymerase such as Taq DNA polymerase, Thermotoga maritima-derived DNA polymerase such as Tma DNA polymerase, Thermoco such as KOD DNA polymerase, etc. DNA polymerase derived from Pyrococcus furiosus such as DNA polymerase derived from P. ccus kodakarensis and Pfu DNA polymerase etc. can be mentioned. In this specification, for example, when referring to DNA polymerase derived from Thermus aquaticus, it is not limited to a wild-type DNA polymerase isolated from Thermus aquaticus, and refers to a DNA polymerase having high amino acid sequence identity (e.g., 90% or more) with the wild-type DNA polymerase. DNA polymerase mutants exhibiting amino acid sequence identity of 95% or more, 96% or more, 97% or more, 98% or more, or 99% or more, or where one or several amino acids are deleted in the amino acid sequence of the wild-type DNA polymerase. , substitutions, and/or additions, as well as DNA polymerases derived from other microorganisms. Preferably, the other DNA polymerase used in combination is a Thermus thermophilus-derived DNA polymerase or a Themus sp Z05-derived DNA polymerase other than the modified nucleic acid polymerase, more preferably a Tth DNA polymerase or a Z05 DNA polymerase, and still more preferably is Tth DNA polymerase. A two-enzyme type nucleic acid amplification reaction (e.g., a two-enzyme type RT-PCR reaction) refers to performing a nucleic acid amplification reaction (e.g., an RT-PCR reaction) by combining the nucleic acid polymerase of the present invention and another DNA polymerase. The nucleic acid polymerase of the present invention can also be suitably implemented in such an embodiment.
本発明の方法は、逆転写反応を必要とするＲＮＡからの核酸増幅法（例えば、ＲＴ－ＰＣＲ）に適用することが特に有益である。このようなＲＴ－ＰＣＲ法では、例えば、少なくとも１種のプライマー、ｄＮＴＰ（デオキシリボヌクレオチド三リン酸）を反応させることによりプライマーを伸長して、ＤＮＡプライマー伸長物を合成する。具体的には、プライマーエクステンション法、シークエンス法、従来の温度サイクルを行わない方法およびサイクルシーケンス法等に適用することが可能である。 The method of the invention is particularly advantageously applied to nucleic acid amplification methods from RNA that require a reverse transcription reaction (eg, RT-PCR). In such an RT-PCR method, for example, at least one type of primer, dNTP (deoxyribonucleotide triphosphate), is reacted to extend the primer to synthesize a DNA primer extension product. Specifically, it can be applied to primer extension methods, sequencing methods, conventional methods that do not involve temperature cycling, cycle sequencing methods, and the like.
更なる実施形態として、本発明は、前記のような逆転写方法及び／又は逆転写反応を含む核酸増幅方法に用いる試薬を提供する。当該試薬は、前記のような本発明に使用する特定の改変型核酸ポリメラーゼを少なくとも含めばよい。この試薬は、任意の逆転写反応及び核酸増幅反応に用いられ得るが、一つの実施形態として、ＤＮＡポリメラーゼ活性だけでなく、逆転写活性も有する核酸ポリメラーゼを含むので、例えば、ＲＮＡからの核酸増幅のために使用することができ、好ましくは、ＲＴ－ＰＣＲ法において使用することができる。ＲＴ－ＰＣＲとしては、ＲＴ－ＰＣＲやｑＲＴ－ＰＣＲ等が挙げられるが、これらに限定されない。即ち、本発明の試薬は、鋳型となる標的核酸（検出対象核酸）がＲＮＡであっても核酸増幅できるため、汎用性の高い試薬とすることができる。本発明の試薬における前記改変型核酸ポリメラーゼの量は、本発明の効果を奏する限りにおいて限定されないが、例えば、逆転写反応及び／又は核酸増幅反応における終濃度が０．１～２０Ｕ／２０μｌとなるような量を例示することができる。 As a further embodiment, the present invention provides a reagent for use in a reverse transcription method and/or a nucleic acid amplification method including a reverse transcription reaction as described above. The reagent may at least contain the specific modified nucleic acid polymerase used in the present invention as described above. This reagent can be used in any reverse transcription reaction and nucleic acid amplification reaction, but in one embodiment, it contains a nucleic acid polymerase that has not only DNA polymerase activity but also reverse transcription activity, so it can be used, for example, in nucleic acid amplification from RNA. It can be used for, preferably in RT-PCR method. Examples of RT-PCR include, but are not limited to, RT-PCR and qRT-PCR. That is, the reagent of the present invention can amplify a nucleic acid even if the target nucleic acid (nucleic acid to be detected) serving as a template is RNA, so it can be a highly versatile reagent. The amount of the modified nucleic acid polymerase in the reagent of the present invention is not limited as long as it achieves the effects of the present invention, but for example, the final concentration in the reverse transcription reaction and/or nucleic acid amplification reaction is 0.1 to 20 U/20 μl. Examples include amounts such as:
核酸増幅用試薬の一例としては、一方のプライマーが他方のプライマーのＤＮＡ伸長生成物に互いに相補的である２種のプライマー、ｄＮＴＰ、及び上記のような本発明の核酸ポリメラーゼ、２価イオン、１価イオン及び緩衝液を含み、さらに具体的には、一方のプライマーが他方のプライマーＤＮＡ伸長生成物に相補的である２種のプライマー、ｄＮＴＰ及び上記核酸ポリメラーゼ、マグネシウムイオン、アンモニウムイオン及び／又はカリウムイオン、ＢＳＡ、上述のような非イオン界面活性剤及び緩衝液を含むものとすることができる。ＲＴ－ＰＣＲに用いる試薬とする場合には、限定はされないが、例えば、反応液中終濃度が１ｍＭ以上となるマグネシウム塩 などの塩を含むことが好ましい。マグネシウム塩としては、例えば、塩化マグネシウム、硫酸マグネシウム、酢酸マグネシウム等のマグネシウム塩を挙げることができる。また、核酸増幅用試薬は、前記の逆転写活性を有する核酸ポリメラーゼ以外に、他の核酸ポリメラーゼ（例えば、別のＤＮＡポリメラーゼ）を更に含んでいてもよい。 Examples of reagents for nucleic acid amplification include two primers in which one primer is complementary to the DNA extension product of the other primer, dNTPs, the nucleic acid polymerase of the present invention as described above, divalent ions, 1 valent ions and a buffer, and more specifically, two primers, one primer being complementary to the DNA extension product of the other, a dNTP and the above nucleic acid polymerase, magnesium ions, ammonium ions and/or potassium. It can include ionic, BSA, non-ionic surfactants and buffers as described above. When used as a reagent for RT-PCR, the reagent preferably contains a salt such as a magnesium salt, which has a final concentration of 1 mM or more in the reaction solution, although it is not limited thereto. Examples of the magnesium salt include magnesium salts such as magnesium chloride, magnesium sulfate, and magnesium acetate. Furthermore, the nucleic acid amplification reagent may further contain another nucleic acid polymerase (for example, another DNA polymerase) in addition to the aforementioned nucleic acid polymerase having reverse transcription activity.
核酸増幅用試薬の別の実施態様としては、一方のプライマーが他方のプライマーのＤＮＡ伸長生成物に互いに相補的である２種のプライマー、ｄＮＴＰ及び上述したような本発明における核酸ポリメラーゼ、２価イオン、１価イオン、緩衝液及び必要に応じて耐熱性核酸ポリメラーゼのポリメラーゼ活性及び／又は３’－５’エキソヌクレアーゼ活性を抑制する活性を有する抗体を含む核酸増幅用試薬がある。該抗体としては、モノクローナル抗体、ポリクローナル抗体などが挙げられる。本核酸増幅用試薬は、ＰＣＲの感度上昇、非特異的増幅の軽減に特に有効である。 Another embodiment of the reagent for nucleic acid amplification includes two primers, one of which is complementary to the DNA extension product of the other primer, a dNTP, the nucleic acid polymerase of the present invention as described above, and a divalent ion. There are reagents for nucleic acid amplification that contain a monovalent ion, a buffer, and, if necessary, an antibody having an activity of suppressing the polymerase activity and/or 3'-5' exonuclease activity of a thermostable nucleic acid polymerase. Such antibodies include monoclonal antibodies, polyclonal antibodies, and the like. The present nucleic acid amplification reagent is particularly effective in increasing PCR sensitivity and reducing non-specific amplification.
本発明の更なる別の一態様は、上記のような本発明に使用する特定の改変型核酸ポリメラーゼを少なくとも含む試薬キットであり得る。具体的には、本キットは、ＲＮＡからｃＤＮＡを合成する逆転写反応及び／又はＲＮＡを鋳型とする核酸増幅反応を行うために用いられ得る。当該キットは、逆転写活性が向上した核酸ポリメラーゼを含むため、ＲＮＡを鋳型とする核酸増幅反応に好適に用いることができ、例えば、ＲＴ－ＰＣＲ法等に好適に用いることができる。本発明では、特定の改変型核酸ポリメラーゼを使用することにより、マンガンイオンを必要とせずに、逆転写反応を行うことができるため、当該キットは、マンガンイオンを生じさせる成分（マンガン塩等）を含む必要が無い。好ましくは、当該キットはマグネシウムイオンを生じさせる成分（マグネシウム塩等）を含む態様であるのがよい。当該キットには、本発明の核酸増幅方法の手順を記載した添付文書等が含まれていてもよい。 Yet another aspect of the present invention may be a reagent kit containing at least the specific modified nucleic acid polymerase used in the present invention as described above. Specifically, this kit can be used to perform a reverse transcription reaction to synthesize cDNA from RNA and/or a nucleic acid amplification reaction using RNA as a template. Since the kit contains a nucleic acid polymerase with improved reverse transcription activity, it can be suitably used in a nucleic acid amplification reaction using RNA as a template, for example, it can be suitably used in RT-PCR. In the present invention, by using a specific modified nucleic acid polymerase, the reverse transcription reaction can be performed without the need for manganese ions. There is no need to include it. Preferably, the kit includes a component (such as a magnesium salt) that generates magnesium ions. The kit may include a package insert etc. that describes the procedure of the nucleic acid amplification method of the present invention.
更なる実施形態として、本発明は、前記のような本発明の核酸ポリメラーゼ、当該核酸ポリメラーゼを含む核酸増幅用試薬、又は当該核酸増幅用試薬を含む核酸増幅用キットを用いる核酸増幅方法を提供する。当該核酸増幅方法は、少なくとも以下の工程を含む方法であることが好ましい：
（ａ）配列番号１又は２に示されるアミノ酸配列と９０％以上の同一性を有するアミノ酸配列からなり、且つ、７５１位に相当するアミノ酸がチロシン、システイン、グルタミン、セリン、トレオニン、及びアスパラギンからなる群より選択される極性側鎖を有する中性アミノ酸に置換されている逆転写活性を有する核酸ポリメラーゼを用いて、マンガンイオン不存在下でＲＮＡからｃＤＮＡを合成する逆転写反応を行う工程、及び
（ｂ）前記工程（ａ）の逆転写反応により生じた逆転写産物を鋳型として、前記核酸ポリメラーゼにより更に核酸増幅反応を行う工程、
上記方法によれば、前記工程（ａ）及び（ｂ）を単一の改変型核酸ポリメラーゼにより実施するので、複数の酵素を組み合わせて用いる必要がなく、効率的に核酸増幅反応を行うことができる。また、特定の実施形態では、前記工程（ｂ）においてＴｔｈ ＤＮＡポリメラーゼ等の別のＤＮＡポリメラーゼを更に組み合わせて使用してもよい。本発明に用いる核酸ポリメラーゼ、核酸増幅用試薬、及びキットは、マンガンイオンが存在しなくても、優れた逆転写活性を発揮することができるので、ＲＮＡを鋳型とする核酸増幅方法に好適である。本発明の核酸増幅方法は、例えば、ＲＴ－ＰＣＲ反応を行う工程を包含する方法であり得る。逆転写反応工程は、本発明の核酸ポリメラーゼを鋳型ＲＮＡと所定条件（例えば、５０～６５℃で１～３０分間）下で共存させることにより行うことができる。
As a further embodiment, the present invention provides a nucleic acid amplification method using the nucleic acid polymerase of the present invention as described above, a nucleic acid amplification reagent containing the nucleic acid polymerase, or a nucleic acid amplification kit containing the nucleic acid amplification reagent. . The nucleic acid amplification method preferably includes at least the following steps:
(a) Consists of an amino acid sequence having 90% or more identity with the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 1 or 2, and the amino acid corresponding to position 751 consists of tyrosine, cysteine, glutamine, serine, threonine, and asparagine performing a reverse transcription reaction for synthesizing cDNA from RNA in the absence of manganese ions using a nucleic acid polymerase having reverse transcription activity substituted with a neutral amino acid having a polar side chain selected from the group; b) further performing a nucleic acid amplification reaction with the nucleic acid polymerase using the reverse transcription product produced by the reverse transcription reaction of step (a) as a template;
According to the above method, since steps (a) and (b) are carried out using a single modified nucleic acid polymerase, there is no need to use multiple enzymes in combination, and the nucleic acid amplification reaction can be carried out efficiently. . Additionally, in certain embodiments, another DNA polymerase, such as Tth DNA polymerase, may be used in combination in step (b). The nucleic acid polymerase, nucleic acid amplification reagent, and kit used in the present invention can exhibit excellent reverse transcription activity even in the absence of manganese ions, and are therefore suitable for nucleic acid amplification methods using RNA as a template. . The nucleic acid amplification method of the present invention may include, for example, a step of performing an RT-PCR reaction. The reverse transcription reaction step can be carried out by allowing the nucleic acid polymerase of the present invention to coexist with template RNA under predetermined conditions (for example, at 50 to 65°C for 1 to 30 minutes).
前述のように、本発明によれば、マンガンイオンを生じさせる成分を使用せず、これに替えてマグネシウムイオン等の二価イオンを生じさせる成分を共存させることによっても、逆転写反応を効率的に行うことができる。従って、本発明の核酸増幅方法は、マンガンイオン以外の二価イオンを生じさせる成分を共存させる条件下で逆転写反応を行う工程を包含する方法であってもよいし、好ましくは、マンガンイオンに替えてマグネシウムイオンを共存させる条件下で逆転写反応を行う工程を包含する方法であってもよい。更に、本発明によればは精製工程を経ておらず核酸増幅反応を阻害し得る夾雑物質を含み得る生体試料からであっても逆転写反応（及び必要に応じてその後の増幅反応）を行うことができることも確認されている。従って、本発明の方法は、精製工程を経ていない生体試料を用いて逆転写反応を行う工程及び／又は増幅反応を行う工程を包含する方法であってもよい。また、本発明の方法は効率よく短時間で逆転写反応及び増幅反応を行うこともできる。従って、本発明の核酸増幅方法は、ＲＮＡからｃＤＮＡを合成する逆転写反応を５分以下で行う工程を包含する方法とすることができ、更には、逆転写反応及びＰＣＲ反応の全体にかかる時間が１時間以下であるＲＴ－ＰＣＲ方法としてもよい。 As described above, according to the present invention, the reverse transcription reaction can be efficiently carried out by not using a component that generates manganese ions, but instead by coexisting a component that generates divalent ions such as magnesium ions. can be done. Therefore, the nucleic acid amplification method of the present invention may include a step of performing a reverse transcription reaction under conditions in which a component that generates divalent ions other than manganese ions coexists, and preferably, Alternatively, a method may include a step of performing the reverse transcription reaction under conditions in which magnesium ions are present. Furthermore, according to the present invention, the reverse transcription reaction (and subsequent amplification reaction if necessary) can be performed even from a biological sample that has not undergone a purification process and may contain contaminants that may inhibit the nucleic acid amplification reaction. It has also been confirmed that this is possible. Therefore, the method of the present invention may include a step of performing a reverse transcription reaction and/or a step of performing an amplification reaction using a biological sample that has not undergone a purification step. Furthermore, the method of the present invention allows reverse transcription reactions and amplification reactions to be carried out efficiently and in a short time. Therefore, the nucleic acid amplification method of the present invention can include a step of performing a reverse transcription reaction for synthesizing cDNA from RNA in 5 minutes or less, and furthermore, the method can include a step of performing a reverse transcription reaction for synthesizing cDNA from RNA in 5 minutes or less, and furthermore, the method can include a step of performing a reverse transcription reaction for synthesizing cDNA from RNA in 5 minutes or less. It is also possible to use an RT-PCR method in which the time is 1 hour or less.
以下、本発明を実施例に基づき、より詳細に説明する。なお、本発明は実施例に特に限定されるものではない。 Hereinafter, the present invention will be explained in more detail based on Examples. Note that the present invention is not particularly limited to the examples.
実施例１
ＤＮＡポリメラーゼプラスミドの作製
人工合成により作成したＴｈｅｒｍｕｓ ｔｈｅｒｍｏｐｈｉｌｕｓ ＨＢ８由来のＤＮＡポリメラーゼ遺伝子（配列番号２）、Ｔｈｅｍｕｓ ｓｐ Ｚ０５由来のＤＮＡポリメラーゼ遺伝子（配列番号４）をｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔにクローニングし、それぞれ野生型Ｔｔｈ、Ｚ０５ ＤＮＡポリメラーゼを組み込んだプラスミドを作製した（それぞれｐＴｔｈ、ｐＺ０５）。変異をもつプラスミドの作製には、ｐＴｔｈ、ｐＺ０５を鋳型に、ＫＯＤ －Ｐｌｕｓ－ Ｍｕｔａｇｅｎｅｓｉｓ Ｋｉｔ（Ｔｏｙｏｂｏ）を用いて、方法は取扱い説明書に準じて行った。二重変異の一部については作製した変異プラスミドを鋳型に、同様のキットを用いてさらに変異を入れることで作製した。作製したプラスミド、及びその際に使用した鋳型・プライマーを表１に示す。得られたプラスミドはエシェリシア・コリＪＭ１０９を形質転換し、酵素調製に用いた。
Example 1
Preparation of DNA polymerase plasmid
A DNA polymerase gene derived from Thermus thermophilus HB8 (SEQ ID NO: 2) and a DNA polymerase gene derived from Themus sp Z05 (SEQ ID NO: 4), which were created by artificial synthesis, were cloned into pBluescript to create a plasmid incorporating wild type Tth and Z05 DNA polymerase, respectively. were produced (pTth and pZ05, respectively). A plasmid with a mutation was produced using pTth and pZ05 as templates and the KOD-Plus- Mutagenesis Kit (Toyobo) according to the instruction manual. Some of the double mutations were created by using the created mutant plasmid as a template and further introducing mutations using a similar kit. Table 1 shows the constructed plasmids and the templates and primers used. The obtained plasmid was used to transform Escherichia coli JM109 and used for enzyme preparation.
実施例２
ＤＮＡポリメラーゼの作製
実施例１で得られた菌体の培養は、以下のようにして実施した。まず、滅菌処理した１００μｇ／ｍｌのアンピシリンを含有するＴＢ培地（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｃｌｏｎｉｎｇ ２ｎｄ ｅｄｉｔｉｏｎ、ｐ．Ａ．２）８０ｍＬを、５００ｍＬ坂口フラスコに分注した。この培地に予め１００μｇ／ｍｌのアンピシリンを含有する３ｍｌのＬＢ培地（１％バクトトリプトン、０．５％酵母エキス、０．５％塩化ナトリウム；ギブコ製）で３７℃、１６時間培養したエシェリシア・コリＪＭ１０９（プラスミド形質転換株）（試験管使用）を接種し、３７℃にて１６時間通気培養した。培養液より菌体を遠心分離により回収し、５０ｍｌの破砕緩衝液（３０ｍＭ Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ緩衝液（ｐＨ８．０）、３０ｍＭ ＮａＣｌ、０．１ｍＭ ＥＤＴＡ）に懸濁後、ソニケーション処理により菌体を破砕し、細胞破砕液を得た。次に細胞破砕液を８０℃にて１５分間処理した後、遠心分離にて不溶性画分を除去した。更に、ポリエチレンイミンを用いた除核酸処理、硫安塩析、ヘパリンセファロースクロマトグラフィーを行い、最後に保存緩衝液（５０ｍＭ Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ緩衝液（ｐＨ８．０）、５０ｍＭ 塩化カリウム、１ｍＭ ジチオスレイトール、０．１％ Ｔｗｅｅｎ２０、０．１％ノニデットＰ４０、５０％グリセリン）に置換し、耐熱性ＤＮＡポリメラーゼを得た。
Example 2
Preparation of DNA polymerase
The bacterial cells obtained in Example 1 were cultured as follows. First, 80 mL of sterilized TB medium (Molecular cloning 2nd edition, p.A.2) containing 100 μg/ml ampicillin was dispensed into a 500 mL Sakaguchi flask. Escherichia was cultured in 3 ml of LB medium (1% Bactotryptone, 0.5% yeast extract, 0.5% sodium chloride; manufactured by Gibco) containing 100 μg/ml of ampicillin in advance at 37°C for 16 hours. E. coli JM109 (plasmid transformed strain) (test tube used) was inoculated and cultured at 37° C. for 16 hours with aeration. The bacterial cells were collected from the culture medium by centrifugation, suspended in 50 ml of disruption buffer (30 mM Tris-HCl buffer (pH 8.0), 30 mM NaCl, 0.1 mM EDTA), and then sonicated to remove the bacterial cells. The cells were crushed to obtain a cell disruption solution. Next, the cell lysate was treated at 80° C. for 15 minutes, and then the insoluble fraction was removed by centrifugation. Furthermore, nucleic acid removal treatment using polyethyleneimine, ammonium sulfate salting out, and heparin sepharose chromatography were performed, and finally, storage buffer (50mM Tris-HCl buffer (pH 8.0), 50mM potassium chloride, 1mM dithiothreitol, 0 .1% Tween 20, 0.1% Nonidet P40, 50% glycerin) to obtain a thermostable DNA polymerase.
上記精製工程のＤＮＡポリメラーゼ活性測定は、以下の操作で行った。また、酵素活性が高い場合はサンプルを希釈して測定を行った。 Measurement of DNA polymerase activity in the above purification step was performed using the following procedure. In addition, when the enzyme activity was high, the sample was diluted and measured.
（試薬）
Ａ液： ４０ｍＭ Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ緩衝液（ｐＨ７．５）、１６ｍＭ 塩化マグネシウム、１５ｍＭ ジチオスレイトール、１００μｇ／ｍｌ ＢＳＡ
Ｂ液： １．５μｇ／μｌ 活性化仔牛胸腺ＤＮＡ
Ｃ液： １．５ｍＭ ｄＮＴＰ（２５０ｃｐｍ／ｐｍｏｌ ［３Ｈ］ｄＴＴＰ）
Ｄ液： ２０％ トリクロロ酢酸（２ｍＭ ピロリン酸ナトリウム）
Ｅ液： １ｍｇ／ｍｌ 仔牛胸腺ＤＮＡ
(reagent)
Solution A: 40mM Tris-HCl buffer (pH 7.5), 16mM magnesium chloride, 15mM dithiothreitol, 100μg/ml BSA
Solution B: 1.5μg/μl activated calf thymus DNA
Solution C: 1.5mM dNTP (250cpm/pmol [3H]dTTP)
Solution D: 20% trichloroacetic acid (2mM sodium pyrophosphate)
Solution E: 1mg/ml calf thymus DNA
（方法）
Ａ液２５μｌ、Ｂ液５μｌ、Ｃ液５μｌ及び滅菌水１０μｌを、マイクロチューブに加えて攪拌混合後、上記精製酵素希釈液５μｌを加えて、７５℃で１０分間反応する。その後冷却し、Ｅ液５０μｌ、Ｄ液１００μｌを加えて、攪拌後更に１０分間氷冷する。この液をガラスフィルター（ワットマン製ＧＦ／Ｃフィルター）で濾過し、０．１Ｎ塩酸及びエタノールで十分洗浄し、フィルターの放射活性を液体シンチレーションカウンター（パッカード製Ｔｒｉ－Ｃａｒｂ２８１０ ＴＲ）を用いて計測し、鋳型ＤＮＡへのヌクレオチドの取り込みを測定した。酵素活性の１単位はこの条件下で３０分当り１０ｎｍｏｌのヌクレオチドを酸不溶性画分に取り込む酵素量とした。この結果、作製されたいずれの改変型ＤＮＡポリメラーゼも十分なＤＮＡポリメラーゼ活性を有していることが確認された。
(Method)
Add 25 μl of solution A, 5 μl of solution B, 5 μl of solution C, and 10 μl of sterilized water to a microtube, stir and mix, then add 5 μl of the above purified enzyme dilution and react at 75° C. for 10 minutes. Thereafter, it is cooled, 50 μl of solution E and 100 μl of solution D are added, and after stirring, the mixture is further cooled on ice for 10 minutes. This liquid was filtered with a glass filter (GF/C filter manufactured by Whatman), thoroughly washed with 0.1N hydrochloric acid and ethanol, and the radioactivity of the filter was measured using a liquid scintillation counter (Tri-Carb2810 TR manufactured by Packard). Nucleotide incorporation into template DNA was measured. One unit of enzyme activity was defined as the amount of enzyme that incorporated 10 nmol of nucleotide into the acid-insoluble fraction per 30 minutes under these conditions. As a result, it was confirmed that all of the produced modified DNA polymerases had sufficient DNA polymerase activity.
実施例３
ＲＴ－ＰＣＲによるインフルエンザＲＮＡの検出
実施例２で作製したＤＮＡポリメラーゼを用いて、ＲＮＡからの１ステップでのＲＴ－ＰＣＲを実施した。ＲＴ－ＰＣＲには５×Ｂｕｆｆｅｒ ｆｏｒ ｒＴｔｈ／ＴＴｘ（ＤＮＡ／ＲＮＡ）（Ｔｏｙｏｂｏ製）を用い、１×Ｂｕｆｆｅｒ、および２．５ｍＭ Ｍｎ（ＯＡｃ）２もしくは２．５ｍＭ ＭｇＣｌ２、０．４ｍＭ ｄＮＴＰｓ、インフルエンザＲＮＡを増幅する０．４ｐｍｏｌのプライマー（配列番号１３及び１４）、０．２ｐｍｏｌのプローブ（配列番号１５）、１Ｕの抗体混合酵素を含む２０μｌの反応液にインフルエンザＲＮＡ、１０６コピーを添加し、９０℃、３０秒の前反応の後、６０℃、５分の逆転写反応、９５℃、６０秒での再度、前反応後、９５℃、５秒→６０℃、３０秒を４０サイクル繰り返すスケジュールでリアルタイムＰＣＲを行った。酵素には野生型Ｔｔｈ ＤＮＡポリメラーゼ、改変型Ｔｔｈ ＤＮＡポリメラーゼ（Ｅ６８３Ｋ、Ｆ７５１Ｙ）、野生型のＺ０５ ＤＮＡポリメラーゼ、改変型Ｚ０５ ＤＮＡポリメラーゼ（Ｆ７５１Ｙ）を使用し、Ｎ＝２の試験を実施した。
Example 3
Detection of influenza RNA by RT-PCR
Using the DNA polymerase prepared in Example 2, one-step RT-PCR was performed from RNA. For RT-PCR, 5×Buffer for rTth/TTx (DNA/RNA) (manufactured by Toyobo) was used, 1×Buffer, and 2.5mM Mn(OAc) 2 or 2.5mM MgCl 2 , 0.4mM dNTPs, and influenza. Add 10 6 copies of influenza RNA to a 20 μl reaction solution containing 0.4 pmol of primers for amplifying RNA (SEQ ID NO: 13 and 14), 0.2 pmol of probe (SEQ ID NO: 15), and 1 U of antibody mixed enzyme, After pre-reaction at 90°C for 30 seconds, reverse transcription reaction at 60°C for 5 minutes, again at 95°C for 60 seconds, and after pre-reaction, repeat 40 cycles of 95°C, 5 seconds → 60°C, 30 seconds. Real-time PCR was performed. An N=2 test was conducted using wild-type Tth DNA polymerase, modified Tth DNA polymerase (E683K, F751Y), wild-type Z05 DNA polymerase, and modified Z05 DNA polymerase (F751Y) as enzymes.
表２にはＴｔｈ ＤＮＡポリメラーゼと改変型Ｔｔｈ ＤＮＡポリメラーゼ（Ｅ６８３Ｋ、Ｆ７５１Ｙ）のＣｔ値をまとめた結果を示す。Ｍｎ（ＯＡｃ）２存在下、野生型のＴｔｈ ＤＮＡポリメラーゼと比較し、Ｆ７５１Ｙの改変型Ｔｔｈ ＤＮＡポリメラーゼのＣｔは若干小さく、効率よくＲＴ－ＰＣＲを実施できた。また、Ｍｎ（ＯＡｃ）２に替えてＭｇＣｌ２を使用した条件下では、野生型のＴｔｈ ＤＮＡポリメラーゼを用いた場合にＣｔ値の大幅な遅れが確認された。一方、Ｆ７５１Ｙの改変型Ｔｔｈ ＤＮＡポリメラーゼを用いる場合のＣｔ値は６程度小さく、５０倍以上効率よく、ＲＴ－ＰＣＲを実施できた。特許第４４６８９１９号記載の変異体であるＥ６８３Ｋと比較しても、Ｃｔ値は１～２程度小さく、２～４倍程度効率が良いことが示された。 Table 2 shows a summary of the Ct values of Tth DNA polymerase and modified Tth DNA polymerase (E683K, F751Y). In the presence of Mn(OAc) 2 , the Ct of the F751Y modified Tth DNA polymerase was slightly smaller than that of the wild type Tth DNA polymerase, and RT-PCR could be performed efficiently. Furthermore, under conditions where MgCl2 was used instead of Mn(OAc) 2 , a significant delay in the Ct value was confirmed when wild-type Tth DNA polymerase was used. On the other hand, when F751Y modified Tth DNA polymerase was used, the Ct value was about 6 lower, and RT-PCR could be performed more than 50 times more efficiently. Even when compared with E683K, a mutant described in Patent No. 4,468,919, the Ct value was about 1 to 2 lower, and it was shown to be about 2 to 4 times more efficient.
表３にはＺ０５ ＤＮＡポリメラーゼと改変型Ｚ０５ ＤＮＡポリメラーゼ（Ｆ７５１Ｙ）のＣｔ値をまとめた結果を示す。Ｍｎ（ＯＡｃ）２存在下、野生型のＺ０５ ＤＮＡポリメラーゼと比較し、Ｆ７５１Ｙの改変型Ｚ０５ポリメラーゼの場合のＣｔは変化は見られなかった。また、Ｍｎ（ＯＡｃ）２に替えてＭｇＣｌ２を使用した条件下では、野生型のＺ０５ ＤＮＡポリメラーゼを用いた場合に野生型Ｔｔｈ ＤＮＡポリメラーゼと同様にＣｔ値の大幅な遅れが確認された。一方、Ｆ７５１Ｙの改変型Ｚ０５ ＤＮＡポリメラーゼを用いる場合のＣｔ値は３倍程度小さく、１０倍程度効率よく、ＲＴ－ＰＣＲを実施できた。この結果から、Ｔｔｈ ＤＮＡポリメラーゼにおける改変体と同様に、Ｚ０５ ＤＮＡポリメラーゼにおける改変体であっても、改変型ＤＮＡポリメラーゼでＲＴ－ＰＣＲの効率が改善しており、マンガンイオン不存在下でも有効に逆転写反応を行うことができていることが示された。 Table 3 shows a summary of the Ct values of Z05 DNA polymerase and modified Z05 DNA polymerase (F751Y). In the presence of Mn(OAc) 2 , no change in Ct was observed for the F751Y modified Z05 polymerase compared to the wild type Z05 DNA polymerase. Furthermore, under conditions where MgCl 2 was used instead of Mn(OAc) 2 , when wild-type Z05 DNA polymerase was used, a significant delay in Ct value was confirmed, similar to wild-type Tth DNA polymerase. On the other hand, when using the modified F751Y Z05 DNA polymerase, the Ct value was about 3 times lower, and RT-PCR could be performed about 10 times more efficiently. From this result, similar to the modified version of Tth DNA polymerase, even the modified version of Z05 DNA polymerase improves the efficiency of RT-PCR with the modified DNA polymerase, and it can be effectively reversed even in the absence of manganese ions. It was shown that photoreaction could be performed.
本試験例で使用した反応液は、前記の改変型ＤＮＡポリメラーゼ以外に逆転写酵素を含まないことから、本発明のように特定のＤＮＡポリメラーゼを使用することにより、全く予想外のことにマンガンイオン不存在下でも高い逆転写活性を発揮できたことが分かる。本試験例の結果から、このＤＮＡポリメラーゼを単一の反応酵素として使用する場合であっても、逆転写反応及び増幅反応（ＰＣＲ反応）を効率よく行うことができることが示された。 Since the reaction solution used in this test example does not contain reverse transcriptase other than the modified DNA polymerase described above, by using a specific DNA polymerase as in the present invention, manganese ion It can be seen that high reverse transcription activity could be exhibited even in its absence. The results of this test example showed that even when this DNA polymerase was used as a single reaction enzyme, reverse transcription reactions and amplification reactions (PCR reactions) could be performed efficiently.
実施例４
ＲＴ－ＰＣＲによるＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２ ＲＮＡの検出
実施例２で作製した改変型Ｔｔｈ ＤＮＡポリメラーゼ（Ｆ７５１Ｙ）を用いて、マンガンイオン不存在下でＲＮＡからの１ステップでのＲＴ－ＰＣＲを実施した。ＲＴ－ＰＣＲには５×Ｂｕｆｆｅｒ ｆｏｒ ｒＴｔｈ／ＴＴｘ（ＤＮＡ／ＲＮＡ）（Ｔｏｙｏｂｏ製）を用い、１×Ｂｕｆｆｅｒ、２．５ｍＭ ＭｇＣｌ２、０．４ｍＭ ｄＮＴＰｓ、ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２ ＲＮＡを増幅する０．４ｐｍｏｌのプライマー（配列番号１６及び１７）、０．２ｐｍｏｌのプローブ（配列番号１８）、１Ｕの抗体混合酵素を含む２０μｌの反応液にＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２ ＲＮＡ ２５００、６２５、１５６、３９、１０、０コピーを添加し、９０℃、３０秒の前反応の後、６０℃、５分の逆転写反応、９５℃、６０秒での再度、前反応後、９５℃、５秒→６０℃、３０秒を４０サイクル繰り返すスケジュールでリアルタイムＰＣＲを行った。
Example 4
Detection of SARS-CoV-2 RNA by RT-PCR
Using the modified Tth DNA polymerase (F751Y) prepared in Example 2, one-step RT-PCR from RNA was performed in the absence of manganese ions. For RT-PCR, 5×Buffer for rTth/TTx (DNA / RNA) (manufactured by Toyobo) was used. SARS-CoV-2 RNA 2500, 625, 156, 39, 10, After pre-reaction at 90°C for 30 seconds, reverse transcription reaction at 60°C for 5 minutes, again at 95°C for 60 seconds, after pre-reaction, 95°C, 5 seconds → 60°C, 30 seconds. Real-time PCR was performed on a schedule that repeated 40 cycles per second.
図１は、ＲＴ－ＰＣＲの増幅曲線、表４にはＣｔ値を示す。マンガンイオンを生じさせる成分に替えて、ＭｇＣｌ２を使用した場合でも、１０コピーのＲＮＡまで検出が可能であった。本発明により、有害な影響が懸念されているＭｎを使用することなく、ＲＴ－ＰＣＲが可能であり、環境等への影響を減らすことが可能となることが分かる。 FIG. 1 shows the RT-PCR amplification curve, and Table 4 shows the Ct values. Even when MgCl 2 was used instead of the component that generates manganese ions, it was possible to detect up to 10 copies of RNA. It can be seen that according to the present invention, RT-PCR can be performed without using Mn, which is feared to have harmful effects, and the impact on the environment can be reduced.
実施例５
ＲＴ－ＰＣＲによるノロウイルスＲＮＡの検出
実施例２で作成した改変型Ｔｔｈ ＤＮＡポリメラーゼ（Ｑ５０９Ｒ／Ｆ７５１Ｙ）を用いて、マンガンイオン不存在下でＲＮＡからの１ステップでのＲＴ－ＰＣＲを実施した。ＲＴ－ＰＣＲには５×Ｂｕｆｆｅｒ ｆｏｒ ｒＴｔｈ／ＴＴｘ（ＤＮＡ／ＲＮＡ）（Ｔｏｙｏｂｏ製）を用い、１×Ｂｕｆｆｅｒ、３．７５ｍＭ ＭｇＣｌ２、０．４ｍＭ ｄＮＴＰｓ、ノロウイルス検出キットＧ１／Ｇ２－高速プローブ検出 Ｑｕｉｃｋ Ｓｔｅｐ－付属のプライマー液 ２μＬ、プローブ液 ２μＬ、６Ｕの抗体混合酵素を含む２０μｌの反応液にノロウイルスＧ１ ＲＮＡ、およびＧ２ ＲＮＡそれぞれ１０３、１０２、２５コピーを添加し、９０℃、６０秒の前反応の後、５６℃、５分の逆転写反応後、９５℃、１秒→５６℃、１０秒を５サイクル、９５℃、１秒→５４℃、１０秒を５サイクル、９５℃、１秒→５２℃、１０秒を４０サイクルでリアルタイムＰＣＲを行った。
Example 5
Detection of norovirus RNA by RT-PCR
Using the modified Tth DNA polymerase (Q509R/F751Y) created in Example 2, one-step RT-PCR was performed from RNA in the absence of manganese ions. For RT-PCR, use 5x Buffer for rTth/TTx (DNA/RNA) (manufactured by Toyobo), 1x Buffer, 3.75mM MgCl 2 , 0.4mM dNTPs, Norovirus Detection Kit G1/G2 - High Speed Probe Detection Quick Step - Add 10 3 , 10 2 , and 25 copies of norovirus G1 RNA and G2 RNA to a 20 μl reaction solution containing 2 μL of the attached primer solution, 2 μL of probe solution, and 6 U of antibody mixed enzyme, and incubate at 90°C for 60 seconds. After pre-reaction, after reverse transcription reaction at 56°C for 5 minutes, 5 cycles of 95°C, 1 second → 56°C, 10 seconds, 5 cycles of 95°C, 1 second → 54°C, 10 seconds, 95°C, 1 Real-time PCR was performed with 40 cycles of 10 seconds at 52°C.
ノロウイルス検出キットＧ１／Ｇ２－高速プローブ検出 Ｑｕｉｃｋ Ｓｔｅｐ－付属のプライマー液、プローブ液は、反応が問題なく実施されるとインターナルコントロール（ＩＣ）としてＦＡＭのシグナルが得られる。また、Ｇ１型ノロウイルスＲＮＡが含まれるとＣｙ５のシグナルが、Ｇ２型ノロウイルスＲＮＡが含まれるとＲＯＸのシグナルが得られる。表５にはＣｔ値を示す。今回、マンガンイオンを含まず、これに替えてマグネシウムイオンを含む反応系でもＩＣ、Ｇ１型、Ｇ２型すべての検出が可能であった。今回の反応は約１時間でＲＴ－ＰＣＲが完了する高速サイクルとなっている。このような条件でも問題なく反応が実施された。また本反応系に１０％糞便液１μＬを添加しても、同様の結果が得られた。このことからＭｎを使用せず、替わりにＭｇ存在下とした場合でも高速かつ阻害物質を含む条件で反応が実施できることが示された。 Norovirus Detection Kit G1/G2 - High Speed Probe Detection Quick Step - If the attached primer solution and probe solution are successfully carried out, a FAM signal will be obtained as an internal control (IC). Furthermore, when G1 type norovirus RNA is included, a Cy5 signal is obtained, and when G2 type norovirus RNA is included, a ROX signal is obtained. Table 5 shows the Ct values. This time, it was possible to detect all of IC, G1 type, and G2 type in a reaction system that did not contain manganese ions but instead contained magnesium ions. This reaction is a high-speed cycle in which RT-PCR is completed in about 1 hour. The reaction was carried out without problems even under these conditions. Similar results were also obtained when 1 μL of 10% fecal fluid was added to this reaction system. This indicates that the reaction can be carried out at high speed and under conditions containing inhibitors even when Mn is not used but instead in the presence of Mg.
本発明により、分子生物学の分野において有用な逆転写方法及び逆転写反応を含む核酸増幅方法（例えば、ＲＴ－ＰＣＲ方法）が提供される。本発明により、従来は一般的に必要と考えられてきたマンガンを使用せずに逆転写反応を実施できるという利点がある。これにより、例えば、マンガンによる環境等への影響を抑えて、環境等にやさしい反応を可能にする。また、マンガンの使用が不要になることから、マンガン存在下で生じ得るポリメラーゼの忠実性低下の影響も抑えられることが期待できる。本発明は、遺伝子発現解析に際して特に有用であり、研究用途のみならず臨床診断や環境検査等にも利用できる。 The present invention provides a reverse transcription method and a nucleic acid amplification method (eg, RT-PCR method) including a reverse transcription reaction, which are useful in the field of molecular biology. The present invention has the advantage that the reverse transcription reaction can be carried out without using manganese, which has heretofore been generally considered necessary. Thereby, for example, the influence of manganese on the environment can be suppressed, and an environment-friendly reaction can be performed. Furthermore, since the use of manganese is no longer necessary, it is expected that the influence of decreased fidelity of the polymerase that may occur in the presence of manganese can be suppressed. The present invention is particularly useful in gene expression analysis, and can be used not only for research purposes but also for clinical diagnosis, environmental testing, etc.
Claims (18)
（ａ）配列番号１又は２に示されるアミノ酸配列と９０％以上の同一性を有するアミノ酸配列からなり、且つ、７５１位に相当するアミノ酸がチロシン、システイン、グルタミン、セリン、トレオニン、及びアスパラギンからなる群より選択される極性側鎖を有する中性アミノ酸に置換されている逆転写活性を有する核酸ポリメラーゼを用いて、マンガンイオン不存在下でＲＮＡからｃＤＮＡを合成する逆転写反応を行う工程、及び
（ｂ）前記工程（ａ）の逆転写反応により生じた逆転写産物を鋳型として、前記核酸ポリメラーゼにより更に核酸増幅反応を行う工程、
を包含する、核酸増幅方法。。 The following steps:
(a) Consists of an amino acid sequence having 90% or more identity with the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 1 or 2, and the amino acid corresponding to position 751 consists of tyrosine, cysteine, glutamine, serine, threonine, and asparagine performing a reverse transcription reaction for synthesizing cDNA from RNA in the absence of manganese ions using a nucleic acid polymerase having reverse transcription activity substituted with a neutral amino acid having a polar side chain selected from the group; b) further performing a nucleic acid amplification reaction with the nucleic acid polymerase using the reverse transcription product produced by the reverse transcription reaction of step (a) as a template;
A nucleic acid amplification method comprising: .
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2022
- 2022-07-08 JP JP2022110468A patent/JP2024008528A/en active Pending
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