JP2023507629A - 肥満の予防および処置のための組成物および方法 - Google Patents
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Abstract
Description
肥満は、あらゆる年齢で起こり得る慢性代謝性疾患であり、主に脂肪組織の過剰な蓄積による体重の過度の増加を特徴とする。過体重および肥満は、先進国で最も一般的な栄養関連の問題である。WHOのデータによると、18歳以上の成人19億人以上が太りすぎである。これらのうち、6億人以上が肥満である(世界保健機関、2015年)。この疾患の新たに診断された症例の数は毎年増加している。さらに心配なのは、小児肥満のレベルが驚くべき速度で増加していることである。したがって、2014年には、5歳未満の約4,000万人の子供が太りすぎであった。小児期の肥満は成人期の肥満の深刻な予測因子であり、早死や障害のリスクを大幅に高めることを考えると、このような状況は必然的に懸念を引き起こす。
亜鉛は、人体の適切な代謝状態を確保するために不可欠な微量元素である。全身の200以上の酵素が亜鉛に依存している。この元素は、酵素の構成要素または酵素の全てのクラスをカバーするそれらの活性の調節因子のいずれかである:トランスフェラーゼ(RNAおよびDNAポリメラーゼ、逆転写酵素、チミジンキナーゼ、ヌクレオチジルトランスフェラーゼ、カルボキシペプチダーゼおよび他のペプチダーゼ)、ヒドロラーゼ(アルカリホスファターゼ、5-ヌクレオチダーゼ)、アミノペプチダーゼなど)、リアーゼ(アルドラーゼ、炭酸脱水素酵素など)、酸化還元酵素(アルコールデヒドロゲナーゼ、スーパーオキシドジスムターゼなど)、リガーゼおよびイソメラーゼ。亜鉛がないと、タンパク質、脂肪、炭水化物の代謝は不可能である。
一態様では、本開示は、肥満および過体重を予防および/または処置するための治療的または予防的に有効な量(用量)で、亜鉛(64Znが濃縮された亜鉛である)を含む組成物を提供する。いくつかの実施形態において、64Znが濃縮された亜鉛は、64Zne化合物または64Zne塩の形態である。いくつかの実施形態において、開示された組成物は、64Zneが、2つのアスパラギン酸分子を有するアスパラギン酸塩(化学式-С4H5O4N64Zne)、硫酸塩、およびクエン酸塩からなる群から選択される塩の形態である。
開示される組成物は、それを必要とする対象に、任意の適切な投与様式、任意の適切な頻度、および任意の適切な有効な投与量で投与され得る。
[実施例1]
身体によるグルコースの吸収および利用に対する64Zneおよび酢酸Zn-Zn(CH3COO)2の潜在的効果の比較研究によって、亜鉛同位体が、多数のパラメーターに対して身体によるグルコースの吸収および利用により良い効果を有することが示された。
[実施例2]
高脂肪食によって誘導される肥満の発症に対する64Zneベースの組成物の効果を評価するために、未処置の肥満の動物モデルおよび64Zne溶液で処置された肥満の動物モデルにおけるいくつかの人体計測値を評価した。
- 第1の群(肥満)の動物は、高脂肪食を食べ続け、実験の次の6週間は水を自由に摂取できた。
- 第2の群(肥満+64Zne溶液)の動物も高脂肪食に従い、実験の次の6週間は水を自由に摂取できたが、3日ごとに、実験が終了するまで、2mlの容量で2.25mg/mlの濃度で胃内に64Zneの溶液を投与された。この溶液は、2.25mg/mlの薬学的に許容される亜鉛塩、特にアスパラギン酸亜鉛を含有し、64Znによる濃縮レベルは80パーセント以上であった。特許請求されている組成物の調製には、希釈剤(液体媒体)として標準的なダルベッコのリン酸緩衝生理食塩水(指定製造業者の)(重水素枯渇水ラングウェイに基づく)を使用した。
[実施例3]
肥満の病理学的変化、特に脂質プロファイルを受ける血液生化学的変数に対する軽亜鉛同位体64Zneの効果を研究するための実験を実施した。この目的のために、実施例2に記載されるように、実験動物において高脂肪食肥満が誘導された。実験のために、以下の動物を使用した:標準的な食事を消費した対照動物;次の6週間高脂肪食を与えられた動物;および高脂肪食を与えられたが、実験の全6週間の間、64Zneベースの組成物(2.25mg/mlの濃度で80%以上の濃縮度の64Zneを含むアスパラギン酸亜鉛を2mlの容量で胃内に投与した)も投与された動物。実験結果を表4に示す。
[実施例4]
多数の研究によって、肥満がレドックス状態の変化および代謝リスクの増大と密接に関連していることが示されている。脂肪細胞の機能障害を引き起こす要因の1つは酸化ストレスである。酸化ストレスならびにその結果としての組織損傷および細胞死は、多くの慢性的な病的状態の発症の基礎である。フリーラジカルの過剰な生成および/またはそれらの解毒システムの枯渇は、酸化促進と抗酸化との不均衡につながり、それが次に細胞膜脂質およびタンパク質と核酸との構造に影響を及ぼす。フリーラジカルによって媒介される脂質過酸化(LPO)は、細胞膜の破壊およびさらなる細胞損傷の重要な原因の1つである。膜脂質の分解は、膜の流動性およびイオンに対する透過性の増大を誘導し、それが全体として細胞の恒常性を破壊する。フリーラジカル酸化の生成物(4-ヒドロキシアルケン、マロンジアルデヒドなど)は、変異原性および細胞毒性が高い。
[実施例5]
動物におけるサイトカインプロファイルは、実施例2に記載されるような肥満モデルを使用して評価した。対照群、肥満の未処置動物モデルの群、および高脂肪食を与えられ、64Zneで処置された動物の群を、実験で使用した。
[実施例6]
略語のリスト
ROS-反応性酸素種
AOD-抗酸化防御
FFA-遊離脂肪酸
GI管-胃腸管
BMI-ボディマス指数
IDO-インドールアミン-2,3-ジオキシゲナーゼ
IR-インスリン耐性
MAO-モノアミンオキシダーゼ
OMP-タンパク質の酸化的修飾
OS-酸化ストレス
SOD-スーパーオキシドジスムターゼ
IL-インターロイキン
肥満モデルの開発
この研究では、白色非血統ラットを使用した。動物は、実験的生物学的クリニック(飼育場)の配置、設備、および維持に関する標準規則に従って、キエフのタラスシェフチェンコ国立大学の学術研究センター生物学医学研究所の認定された飼育場で飼育した。この研究は、実験的およびその他の科学的目的に使用される脊椎動物の保護に関する欧州条約(Strasbourg、1986年3月18日)の国際基準および勧告に準拠して実施され、学術研究センター生物学医学研究所の生物倫理委員会によって承認された。Murzin,O.B., European Convention for the Protection of Vertebrate Animals Used for Experimental and Other Scientific Purposes/ O. B. Murzin, //Practical workbook on human phisiology. - Dnipropetrovsk): Publishing House of Dnipropetrovsk University, 2004. -P.135-148.
全血から動物血清を調製した。フィブリノーゲン関連タンパク質を除去するために、血液を37℃で30分間インキュベートした後、血餅を清潔で乾燥したガラス棒でチューブの壁から注意深く分離し、血清の生成を促進した。試料を、2500gで15分間遠心分離した。得られた上清(血清)を直ちに血液細胞から分離し、凍結し、実験まで-20℃で保存した。
実験の終わりに、動物を断頭によって安楽死させた。組織除去中の全ての操作は、1~4℃の温度で実行した。
実験の終わりに、動物を断頭により安楽死させた。臓器除去中の全ての操作は、1~4℃の温度で実行した。
実験の終わりに、動物を断頭により安楽死させた。臓器除去中の全ての操作は、1~4℃の温度で実行した。
少なくとも2時間絶食した動物の血液中のグルコース濃度を測定した。カテーテルを使用して尾静脈から血液を採取した。グルコース濃度は、GLUTOFOT-IIグルコースメーター(ウクライナ)を製造業者の指示に従って使用して決定した。Medical test "Glyukofot-II": [user’s manual for "Glyukofot-II-Hemoglan]. - Kiev: Norm, 2008. -12p.試験のストリップは、多孔質親水性膜へのグルコースオキシダーゼおよびペルオキシダーゼ酵素の吸収を含む、グルコースオキシダーゼ法によるグルコース濃度を決定するために必要な全ての試薬成分を含有していた。着色された複合体の形成は、反応の結果であった。全血をストリップに一滴垂らし、室温で30秒間放置した。次に、そのストリップを蒸留水で洗浄し、血糖値計に入れた。グルコース濃度は、mmol/Lで表された。
インスリン、インターロイキン、およびアディポカインのレベルは、免疫酵素法(Halenova TI et al. RSC Adv. 2016;6: 100046-55)を使用して決定した。この方法は、可溶性タンパク質試験手順に従って、吸着能力を備えたマイクロプレートで実施した。予め0.1M NaHCO3緩衝液(pH9.6)で10μg/mlの濃度に希釈した抗原溶液を、プレートウェル内で、4℃で12時間インキュベートした。このウェルをTBS緩衝液で3回、最初は0.05%Tween-20ありで、次にTween-20なしで洗浄することにより、未結合の物質を除去した。非特異的結合部位は、5%スキムミルクの溶液または1%ウシ血清アルブミンの溶液を、プレートウェルに添加して、37℃で60分間インキュベートすることによってブロックした。インキュベーション後、そのウェルをTBSを用いて、最初は0.05%Tween-20ありで、次にTween-20を使用しないで、3回洗浄した。一次抗体を、製造業者の指示に従ってTBSで希釈し、抗原とともに37℃で60分間インキュベートした。TBSワーキング緩衝液で洗浄した後、最初に0.05%Tween-20を添加し、次にTween-20を添加せずに、二次抗体のコンジュゲートをウェルに添加し、37℃で60分間インキュベートした。一次抗体と同様に、二次抗体は製造業者の指示に従ってTBSで希釈した。洗浄手順の後、0.05Mリン酸-クエン酸緩衝液中の基質としてのフェニルジアミン二塩酸塩を各ウェルに添加し、続いて0.3%過酸化水素を添加した。10分後(発色に必要な反応時間)、2.5nのH2SO4を加えた。
動物における血清アルカリホスファターゼ活性は、Microlab 300生化学的分析器および標準的なPLIVA-Lachema Diagnostika試験キット(チェコ共和国)を使用して分光光度的に測定した。試験キット//Pliva-Lachema Diagnostika.-2008。
動物中の血清アルブミンのレベルは、Microlab 300生化学分析器および標準のPLIVA-Lachema Diagnostica試験キット(チェコ共和国)を使用して分光光度的に決定した。試験キット//Pliva-Lachema Diagnostika.-2008。
スーパーオキシドジスムターゼ活性を測定するために、この酵素がアドレナリンの自己酸化を阻害する能力に基づく方法を用いた。Syrota T.V. Questions of med. clin.-1999.-V.5, No.3.-P.263-272.
カタラーゼ活性を決定するために、過酸化水素がモリブデン塩と安定した着色複合体を形成する能力に依存する分光光度法を使用した。Korolyuk M. A.et al., Lab. Business. -1988. -No.1.-P.44-67.インキュベーション中、過酸化水素の濃度は、試験試料中のカタラーゼによって媒介される酵素活性に起因して低下した。4%モリブデン酸アンモニウム溶液および0.03%過酸化水素を使用した。試験試料を0.03%の過酸化水素に加えることにより反応を開始した。タンパク質の代わりに、適切な容量の蒸留水をブランク試料に追加した。インキュベーション培地に4%モリブデン酸アンモニウム溶液を添加することにより、10分後に反応を停止させた。μQuantマイクロプレート分光光度計(BioTek Instruments)を使用して、410nmの波長で光学密度を測定した。カタラーゼ活性は、較正曲線を使用して計算し、μmol H2O2/mgタンパク質×分として見積もった。
0.1~0.5mgのタンパク質を含有する試験試料のアリコートを、ぴったりと合うガラスホモジナイザーに入れ、これに、ヘプタン/イソプロピルアルコール混合物を1:1の比率で加え、10分間ホモジナイズした。次に、試料を、ぴったりと合うストッパーで閉じた試験管内で、1000gで15分間遠心分離した。上清画分を注意深く集め、蒸留水を加えて、ヘプタンおよびイソプロピルアルコールの相を分離した。シッフ塩基のレベルは、分光光度計を使用して、励起波長360nmおよび発光波長420nmで試料の光学密度を測定することにより、上部ヘプタン相で決定した。シッフ塩基のレベルは、タンパク質1mgあたりの単位数を表した。
試験試料のアリコートを試料に加え、等量の17%トリクロロ酢酸(TCA)を加えた。試料を、1000gで15分間遠心分離した。Nedzvetsky V et al., J Diabetes Metab. 2012;3(8): 1-9.上清に0.8%チオバルビツール酸の溶液を加え、沸騰水浴中で10分間インキュベートした後、発色させた。試料の光学密度は、分光光度計を使用して532nmの波長で測定した。TBA活性産物の濃度は、タンパク質1mgあたりのnmolで表され、モル吸光係数(1.56×105cм-1×M-1)を使用して計算された。
タンパク質の酸化的修飾の強度の推定は、タンパク質カルボニルとシッフ塩基との間の反応、および中性で塩基性の性質の2,4-ジニトロフェニルヒドラゾンの形成を伴う2,4-ジニトロフェニルヒドラジン(DNPH)に基づく。Vartanyan L.S, Gurevich S.M. Biochemistry.-1989.-Vol.54, No.6.-P.1020-1025.
血清および組織ホモジネートのアリコートを0.4M過塩素酸と1:5の比率で混合して、タンパク質を沈殿させた。その試料を4℃で60分間インキュベートした後、4℃の冷蔵遠心分離機で、800gで5分間遠心分離した。相分離後、上清を回収し、2MのKOHでpHを5~6に調整した。遠心分離により試料を再沈殿させた。その上清を、0.01Mリン酸ナトリウム緩衝液、pH6.2で予め平衡化したKM-セファロースカラムに適用した。結合した物質は、緩衝液1(0.01Mのリン酸ナトリウム緩衝液、pH6.2)および緩衝液2(0.03Mのリン酸ナトリウム緩衝液、pH6.2)を使用して室温で溶出した。トリプトファンは、緩衝液1を使用して溶出され、セロトニンは、緩衝液2を使用して溶出された。
トリプトファンヒドロキシラーゼ活性は、Donald M. Kuhn et al., Biochemistry.-1980.-Vol.77.-P.4688-4691よって記載されているとおり決定した。組織ホモジネートを室温で解凍し、12,000gで30分間遠心分離した。この上清を、さらなる研究で使用した。
インドールアミン-2,3-ジオキシゲナーゼ活性は、Y. Kudo, C.A.R. Boyd, I. L. Sargent et al.//Mol. Human reproduction.-2000.-Vol.6, N4.-P.369-374に記載のとおり決定した。組織ホモジネートを室温で解凍し、12,000gで30分間遠心分離した。その上清を、さらなる研究で使用した。
血清モノアミンオキシダーゼ活性は、Balakleevsky A. I.//Lab. business.-1976.-3.-P.151-152によって記載された方法を使用して決定した。この方法は、MAOの作用下で塩酸ベンジルアミンからベンズアルデヒドを形成することからなる。ベンズアルデヒドは、2,3-ジニトロフェニルヒドラジンと相互作用し、遠心分離によって沈殿させることができる不溶性ヒドラゾンを形成する。次に、ヒドラゾン沈殿物は、アルカリ性培地中でラズベリー色の安定した化合物を形成し、その含有量は分光光度法で決定され得る。
実験の終わりに、動物を断頭により安楽死させた。サイズ0.5~0.5cmに調製した肝臓および膵臓をすぐに固定液に入れた。臓器は、パラホルムアルデヒドの4%溶液で、25%の温度で72時間固定した。固定後、小片を水道水ですすいだ。次に、材料を脱水した。これは、臓器の小片をアルコールの濃度を上げて(70%>80%>90%>96%)通過させ、各濃度で1日放置することで達成された。最後に、水を96%アルコールに置き換えたら、その材料をジオキサンに15分間入れ、次にキシレンに15分間入れた。完全に清澄化した後、その材料をサーモスタット内のパラフィン浴(パラフィンとキシレンの混合物を1:1の比率)に37℃で30分間入れた。次に、その材料を、56℃のサーモスタットで2回のパラフィン交換(30~35分)に浸漬し、パラフィンブロックを作製した。
タンパク質濃度は、ブラッドフォードタンパク質アッセイを使用して測定した。Bradford MM. Anal Biochem. 1976;86: 193-200.タンパク質濃度を測定するために、10%NaOH、蒸留水、およびブラッドフォード試薬を試料に添加した。ブラッドフォード試薬は、初期溶液(95%エタノール、85%H3PO4およびクーマシーブリリアントブルー染料)を95%エタノールおよび85%H3PO4と混合すること、ならびに得られた混合物を蒸留水で所望の容量に調整することによって、調製した。
得られた結果の統計処理は、OrginLab Orgin(登録商標)Pro9.1およびStatSoft STaStica(登録商標)10ソフトウェアを使用した変動統計および相関分析の方法を使用して実行した。Brandt Z. Statistical methods for observations. -М.:Mir, 1975.-312p.試料の正常な分布の仮説は、シャピロ・ウィルク検定を使用して試験した。試料が正規分布の基準を満たしている場合、試料間の差の有意性は、スチューデントのt検定を使用して決定した。試料が正規分布の基準を満たしていない場合、試料間の差の有意性は、マン・ホイットニーU検定を使用して決定された。p<0.05の場合、差は統計的に有意であると見なされた。
肥満の動物モデルにおけるアスパラギン酸型のZn-64安定同位体の生化学的および人体計測的効果
現代の概念によれば、広範囲の生物学的に活性な物質を産生する脂肪組織は、肥満の病因に積極的に関与している。したがって、脂肪沈着の増大によって生じる過体重は、肥満の発症中の代謝障害の結果としてだけでなく、この疾患の経過を引き起こし、非常に複雑にして、多くの肥満関連障害の発症に寄与する重要な因子としても見なされる。
膵臓とは混合腺であり、外分泌機能と内分泌機能の両方を備えている。膵臓の大部分は、腺房に配置された外分泌細胞で構成されている。腺房からの分泌物は、挿入された小葉内および小葉間管および主膵管を通って膵臓から流出する。対照群の動物の外分泌細胞のクラスターである腺房は(図7A~図7F)、典型的な構造を有している:頂端極の細胞質は顆粒状で明るい好酸性であるが、基底極は強い好塩基性の核を含有する。
肥満の発症は主にカロリー摂取量の増加および不十分なエネルギー消費の結果であるという証明された事実にもかかわらず、体重増加の新しい病原性機構の探索は依然として今日的な意味を帯びている。
酵素の形成、転写因子の活性化、異種生物の酸化および殺菌保護に必要なフリーラジカル反応は、細胞の正常な機能の基礎である。さらに、それらは遺伝子の発現に関与し、ホルモンおよび細胞シグナルを伝達し、細胞再生のプロセスを調節する。したがって、反応性酸素種と反応性窒素種は人体で自然に生成され、代謝プロセスの重要な副産物である。抗酸化剤は、フリーラジカルのレベルを生理学的限界内に維持する。細胞が適切に機能するためには、抗酸化防御とフリーラジカル酸化との間のバランスが必要である。フリーラジカルの量が抗酸化防御の活性を超えると、酸化ストレスと呼ばれる現象が発生する。
脂肪組織は、体のエネルギー貯蔵所であるだけでなく、視床下部、下垂体、膵臓、肝臓、骨格筋、腎臓、内皮、免疫系などを含む、多くの組織および器官の応答を調節する内分泌、パラクリンおよびオートクリンシグナルの複合体を通じて代謝の調節に積極的に関与する器官でもあることは疑いの余地がない。したがって、脂肪組織は、サイトカインを含む50以上のタンパク質因子、ホルモン、および成長因子を分泌する。IL-1、IL-6、IL-8、IL-12、TNF-α、IFN-γなどの炎症誘発性サイトカイン、ならびにIL-4、IL-10、IL-13、TGFなどの抗炎症性サイトカインがある。Mohamed-Ali V., Pinkney J., Coppacf S. Adipose tissue as endocrine and paracrine organ//Int J Obes Relat Meabol Disord 1998; 22: 1145-1158.
生理学的および病理生理学的プロセスにおける亜鉛の関与は、体内の亜鉛のレベルに大きく依存する。亜鉛は全ての細胞と器官に見られるが、1つまたは別の器官でのその濃度はかなり異なり、器官の特定の活動に依存する。人体の亜鉛貯留は非常に少なく、約1.5~3gの量である。この数字は多くの要因(人の年齢および性別、胃腸粘膜の状態、関連する病気、妊娠など)に依存する。亜鉛はほとんど全ての組織に見られる。亜鉛貯留の約62~63%は骨格筋にある。多くの研究者によって提供されたデータによると、亜鉛は次のように人体に分布している(μg/g):皮膚、副腎-6、卵巣-12、脳-13、リンパ節-14、消化管-21、心臓-27、腎臓-37、肝臓-38、筋肉-48、骨-66、前立腺-87、精子-125。全血は約2.5~5.3μg/mlの亜鉛を含有する。血漿中の亜鉛は少ない(0.7~1.2μg/ml、これは体内の亜鉛の総量の約0.2~1%である)。赤血球の破壊に起因して、血清中の亜鉛のレベルは血漿中よりもわずかに高くなる(1.1~1.3μg/ml)。
初めて、食事誘導性肥満モデルにおける肥満の発症および進行の主要な病原性関連に対するアスパラギン酸型のZn-64安定同位体の効果に関する包括的な研究を実施した。得られた結果は、過体重および肥満患者の治療における補助治療薬としてのアスパラギン酸型のZn-64安定同位体の使用の妥当性の事実上の根拠を提供する。
[実施例7]
第1の群は、生理食塩水を注射された動物(体重約180~220グラム)から構成されていた。
動物はケージに入れられ(ケージごとに4匹)、食物/水へは自由なアクセスであった。動物がケージに入れられてから3日後、実験薬(天然亜鉛すなわち同位体軽亜鉛)を注射する。投与は1日おきに1匹あたり7回の注射で行われる(腹腔内投与法)。各動物への注射薬の投与量は、動物体重1kgあたり3750μgという亜鉛の比率に基づいて計算された。最後の注射後、動物の半分は、空腹状態に保たれ(12時間)、水は自由に摂取させる。この期間が終了すると、動物は実験から除外する。動物の半分は、さらに7日間、食べ物/水を自由に摂取し続ける。最後の注射から6日目、動物は空腹状態に保たれ(12時間)、水を自由に摂取できる。この期間が終了すると、動物は実験から除外される。
動物研究活動を管理する動物福祉規則の順守
第1回国民生物倫理会議(National Congress on Bioethics)(Kiev,Ukraine,2001年)によって承認され、「実験的およびその他の科学的目的に使用される脊椎動物の保護に関する欧州条約」(Strasbourg,France,1986)の規定に同意した、動物を扱う一般原則(General Principles of Working with Animals)に従って動物を使用して生物医学研究を実施するための国際勧告に、実験動物での作業中に従った。ラットでの実験作業は、キエフのタラスシェフチェンコ国立大学の飼育場で行った。動物での研究は、この機関の科学評議会によって承認され、次に、当時採択された現在のウクライナの法律と調整された、実験動物を用いた実験作業の規則によって規制された。
2~3ヶ月齢で体重120~300gの白色ラットについて研究を行った。実験動物は、水を自由に摂取できる標準的な飼育場の食事で飼育された。実験中、動物はプラスチック製のケージで自然な昼夜の光モードで、室温19~24℃、湿度50%以下に保たれた。実験の前に、動物は研究室で7日間順応させられた。
ラット血清は全血から調製した。付随するタンパク質およびフィブリノーゲンを除去するために、全血を37℃で30分間静置した後、試料を2500gで15分間遠心分離した。得られた上清(血清)を直ちに血球から分離し、さらなる分析のために-20℃で凍結した。
全腎臓、肝臓および筋肉ホモジネートを以下のように調製した。臓器切除およびホモジナイゼーションは、1~4℃の温度で実施した。組織のホモジナイザーションは、140mMのNaCl、1mMのEDTAを含有する50mMのTris-HCl緩衝液(pH7.4)で行った。使用した緩衝液の容量(ml)は、単離された臓器の質量(グラム)の5倍であった。単離された肝臓は、シリンジを使用して門脈を介して冷却生理食塩水(0.9%NaCl)で灌流した。細かく刻んだ肝臓を、細かく粉砕したテフロン乳棒を備えたホモジナイザーに移し、冷却した緩衝液中でホモジナイズした。分離された一対の腎臓を、冷やした生理食塩水で灌流して、脂肪組織から放出し、はさみで細かく刻んだ。細かく刻んだ組織を、細かく粉砕したテフロン乳棒を備えたホモジナイザーに移し、冷却した緩衝液でホモジナイズした。全腎臓および肝臓ホモジネートを600gで15分間遠心分離した。ミンチを落ち着けた後、液体をデカントし、15,000gで15分間再度遠心分離した。これらの2つの手順により、核とミトコンドリアの破片を取り除くことができた。調製したホモジネートのアリコートを、窒素中で凍結した(Rybalchenko V. K., Koganov M. M. Structure and function of membrane 1988. -312 pp)。
酵素結合免疫吸着アッセイ
(ラットの血清中のインスリンレベルは、可溶性タンパク質に使用される一般的な方法に基づく酵素免疫測定法を使用して決定された。これは、可溶性タンパク質の吸着能力を有する96ウェルマイクロプレートで実施した[Crowther J. R. ELISA Guidebook/J. R. Crowther.-Totowa, New Jersey: Humana Press Inc., 2001. -P.436]。
スーパーオキシドジスムターゼ(SOD、EC1.15.1.1)活性を測定するために、アドレナリン自己酸化のプロセスを阻害する酵素の能力に基づく方法を使用する。
実験開始の16時間前に水にだけアクセスできた動物を耐糖能試験に使用した。ラットを40mg/kgの用量でチオペンタールナトリウムの腹腔内注射で麻酔した。同じ実験群内で5匹の動物を使用した。血糖の基礎レベルをラットで決定し、その後、動物に3g/kgの用量で2mlのグルコース水溶液を与えた。グルコースの濃度は、実験開始から60分後に決定した。採血は尾静脈を介して行った[Gorbulinska O. V. Sugar-lowering effects of water extracts of yakon (Smallanthus sonchifolius poepp.&endl.) /O. V. Gorbulinska, M. R. Khokhla, L. T. Mishenko et al.// Biological Studios -2014. -8(2). -P.57-64.]結果は図16A-図16Eを参照のこと。
経口投与
第1の群-対照。動物の体重約140~150グラム(動物の初期体重)。
動物研究活動を管理する動物福祉規則の順守
この実験に使用された実験動物は、動物を含む臨床的および生物学的研究に関する国際基準および勧告に準拠し、第1回国民生物倫理会議(Kyiv、Ukraine、2001年)によって承認された人道的動物取り扱いの基本原則(Basic Principle of Humane Animal Handling)に準拠して維持され、これは実験的およびその他の科学的目的に使用される脊椎動物の保護に関する欧州条約(Strasbourg、1986年3月18日)の基準に沿ったものである。動物を含む全ての実験は、ウクライナの適用法に準拠して開発され、同機関の学術委員会によって承認された動物試験規則に従って、キエフのタラスシェフチェンコ国立大学の飼育場で実施された。
体重120~130gの生後2~3ヶ月の白色ラットをこの実験に使用した。実験動物には標準的な飼育場の食事を与え、水は自由に摂取できた。この実験中、動物はプラスチック製のケージに収容され、環境制御は、12時間の明暗サイクルで19~24℃および50%の相対湿度の条件を維持するように設定された。実験開始前の7日間、全ての動物を環境に順応させた。
全血中のグルコース濃度は、GlucoDr Ato AGM-4000血中グルコース計(Allmedicus Co.、Ltd.,Korea)を使用するグルコースオキシダーゼ法によって測定した。全ての手順は、製造業者の指示に従って実行した。
I型実験的糖尿病は、10mMクエン酸緩衝液(pH4.5)に溶解した動物体重100gあたり6mgの用量でのストレプトゾトシン溶液の単回腹腔内注射によって誘導された。対照群のラットには、前述の方法で10mMクエン酸緩衝液(pH4.5)を投与した。全血中グルコース濃度は、ラットの糖尿病誘導の2日後に測定した。動物は、22~32mmol/Lに達する血中グルコースレベルで糖尿病であると見なされた(M. Zafar, S. Naqvi//Int. J. Morphol. -2010. -Vol.28, No1. -P.135-142.)。
ラット血清は全血から調製した。付随するタンパク質およびフィブリノーゲンを除去するために、全血を37℃で30分間静置した後、その試料を2500gで15分間遠心分離した。得られた上清(血清)を直ちに血球から分離し、さらなる分析のために-20℃で凍結した。
ラットの全血中の糖化ヘモグロビンのレベルを、確立された手順に従って分光光度的に測定した。アッセイは、Lachema(チェコ共和国)によって製造された標準的なアッセイキットを使用して実行した。
ラットの血清中のインスリンレベルは、可溶性タンパク質に使用される一般的な方法に基づく酵素免疫測定法を使用して決定された。これは、可溶性タンパク質の吸着能力を備えた96ウェルマイクロプレートで実行した。
タンパク質濃度は、染料クーマシーブリリアントブルーG-250の吸収シフトに基づくブラッドフォードタンパク質アッセイを使用して測定した。
得られた結果の統計的処理は、変動統計の方法を使用して実施し、相関分析は、Origno Pro7.0およびSPSS 16ソフトウェアを使用して実施した。主要な統計値は、平均(M)と平均の標準誤差(m)の計算によって得た。変数間の差は、パラメトリック統計手法(ANOVA)を使用して評価した。スチューデントのt検定を使用して、2つの試料間の差の統計的有意性を評価した。р<0.05の場合、差は統計的に有意であると見なした。
ラットの実験群におけるI型糖尿病の発症に対するZn64アスパラギン酸の潜在的効果を調べた研究では、以下の結果が示された(表22)。I型糖尿病の発症を特徴付ける主なパラメーター、すなわち、グルコース、糖化ヘモグロビンおよびインスリンの濃度が、試験物質の投与後に改善することが実証された。グルコースレベル(26%)および糖化ヘモグロビン(30%)の有意な減少が記録された。血清インスリンレベルが13%増加したこともわかった。得られた結果によって、この試験物質がI型糖尿病の経過に正の効果をもたらし、この病状の発症中に血流中のグルコースレベルの上昇による毒性作用を軽減する予防薬として使用され得ることが示され得る。
グルース代謝および関連するプロセスに対する試験物質の潜在的効果に関する本研究は、I型糖尿病を発症している患者の体内のグルコース代謝を正常化するためのその使用の見通しを示した。おそらくそれは独立した薬剤として使用されても、そして他の薬と組み合わせて使用されてもよい。
Claims (11)
- 64Zne化合物またはその塩を含む予防的または治療的に有効な量の組成物を、それを必要とする対象に投与することを含む、過体重または肥満を予防または処置する方法であって、64Zne化合物またはその塩は少なくとも80%の64Zneである、方法。
- 組成物が希釈剤または賦形剤をさらに含む、請求項1に記載の方法。
- 希釈剤が重水素枯渇水である、請求項2に記載の方法。
- 64Zne化合物またはその塩が少なくとも95%の64Zneである、請求項1~3のいずれか一項に記載の方法。
- 64Zne化合物またはその塩が少なくとも99%の64Zneである、請求項1~4のいずれか一項に記載の方法。
- 組成物が0.05mgと110mgの間の64Zneを含有する、請求項1~5のいずれか一項に記載の方法。
- 組成物が1mgと10mgの間の64Zneを含有する、請求項6に記載の方法。
- 64Zne化合物またはその塩が少なくとも90%の64Zneであり、組成物が、64Zneが0.1mg/mlと10mg/mlの間の濃度で存在する水溶液である、請求項1に記載の方法。
- 64Zneが、2つのアスパラギン酸分子を有するアスパラギン酸塩(化学式-С4H5O4N64Zne)、硫酸塩、およびクエン酸塩からなる群から選択される塩の形態である、請求項1~8のいずれか一項に記載の方法。
- 組成物が注射によって投与される、請求項1~9のいずれか一項に記載の方法。
- 組成物が経口投与される、請求項1~9のいずれか一項に記載の方法。
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