JP2022546485A - 腫瘍高精度アッセイのための組成物および方法 - Google Patents

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Abstract

試料の腫瘍バイオマーカープロファイリングのための遺伝子変異を評価するのに有用な標的核酸配列のライブラリーを調製するための方法および組成物が提供される。特に、試料中の腫瘍バイオマーカー標的配列の選択的増幅を可能にする標的特異的プライマーパネルが提供される。一態様では、本発明は、2つ以上の試料タイプからの腫瘍バイオマーカーに関連する1つ以上の標的配列の選択的増幅に有用な標的特異的プライマーに関する。いくつかの態様では、開示された方法および組成物を使用して得られる増幅された標的配列は、核酸配列決定を含む様々なプロセスで使用され得、かつ腫瘍に関連する1つ以上の標的配列の遺伝的バリアントの存在を検出するために使用され得る。

Description

関連出願の相互参照
本出願は、2019年8月30日に出願された米国仮出願第62/894,576の優先権および権益を主張し、その全体が参照により本明細書に組み込まれる。
配列表
本出願は、これと同時に提出された電子配列表の資料を参照により組み込む。電子配列表中の資料は、2020年8月27日に作成された「LT01496_STX.txt」と題されたテキスト(.txt)ファイルとして提出され、これは550KBのファイルサイズを有し、その全体が参照により本明細書に組み込まれる。
本発明は、標的核酸配列のライブラリーの組成物およびそれを調製する方法ならびにそれらの使用に関する。
がん療法の進歩は、腫瘍学全体で有望な結果を提供し始めている。標的療法、免疫チェックポイント阻害剤、がんワクチン、およびT細胞療法は、従来の化学療法よりも応答性の高い集団で持続可能な結果を示している。しかしながら、応答性の高い候補の効果的な同定、および/または応答をモニタリングすることは困難であることが証明されている。腫瘍の微小環境、腫瘍の進化、および薬物応答のバイオマーカーをよりよく理解する必要性は喫緊である。様々な試料タイプで複数の関連するバイオマーカーを効率的かつ効果的に検出できる、より高スループットで体系的、かつ標準化されたアッセイ溶液が望まれる。
本発明の一態様では、組成物は、試料中のアクショナブルな腫瘍バイオマーカーの単一ストリーム多重決定のために提供される。いくつかの実施形態では、組成物は、試料中の低レベルの標的を迅速かつ効果的に検出するために、複数の標的配列に向けられた複数のプライマー試薬からなる。提供される組成物は、複数の遺伝子配列が、DNAホットスポット変異遺伝子、コピー数多型(CNV)遺伝子、遺伝子間融合遺伝子、および遺伝子内融合遺伝子の中から標的から選択される腫瘍遺伝子配列を標的とする。提供される組成物は、統合されかつ自動化されたワークフローで、様々な試料(例えば、FFPE組織、血漿)からの主要なバイオマーカー、例えばEGFR、ALK、BRAF、ROS1、HER2、MET、NTRK、およびRETの検出を最大化する。
いくつかの実施形態では、試料中の複数のアクショナブルな標的遺伝子が、潜在的な診断、予後、候補治療レジメン、および/または有害事象を示す試料中の腫瘍活性における変化を決定する。特定の実施形態では、提供される組成物は、表Aから選択される複数のプライマー試薬を含む。いくつかの実施形態では、本発明の組成物を含む多重アッセイが提供される。いくつかの実施形態では、本発明の組成物を含む試験キットが提供される。
本発明の別の態様では、生物学的試料中のアクショナブルな腫瘍バイオマーカーを決定するための方法が提供される。そのような方法は、標的配列を含む生物学的試料からの複数の標的配列の多重増幅を実施することを含む。増幅は、増幅条件下でポリメラーゼの存在下で複数の標的特異的プライマーを使用して、目的の複数の標的配列を含む試料の少なくとも一部を接触させて、複数の増幅された標的配列を生成することを含む。この方法は、複数の標的腫瘍配列の各々の存在を検出することをさらに含み、対照試料と比較した1つ以上のアクショナブルな腫瘍バイオマーカーの検出は、潜在的な診断、予後、候補治療レジメン、および/または有害事象を示す試料中の腫瘍活性における変化を決定する。本明細書に記載の方法は、本明細書に提供される本発明の組成物を利用する。いくつかの実施形態では、標的遺伝子は、DNAホットスポット変異遺伝子、コピー数多型(CNV)遺伝子、遺伝子間融合遺伝子、および遺伝子内融合遺伝子からなる群から選択される。ある特定の実施形態では、標的遺伝子は、表1の遺伝子から選択される。特定の実施形態では、標的遺伝子は、表1の遺伝子からなる。
またさらに、核酸ライブラリーの配列の分析のための、提供される組成物および提供される組成物を含むキットの使用は、本発明の追加の態様である。いくつかの実施形態では、得られたライブラリーの配列の分析は、低頻度対立遺伝子の検出、遺伝子融合および新規融合の改善された検出、ならびに/または目的の試料および/もしくは目的の複数の試料における遺伝子変異の検出を可能にする。ある特定の実施形態では、提供される組成物および方法の使用の手動、部分的に自動化、および完全に自動化された実装が企図される。特定の実施形態では、提供組成物の使用は、試料の遺伝子分析のための完全に統合されたライブラリー調製、鋳型化、および配列決定システムにおいて実装される。ある特定の実施形態では、本発明の提供される組成物および方法の使用は、組織および/または血漿標本の第一線試験、ならびにバイオマーカーの再発および/または耐性の検出のための標本の継続的モニタリングを含む研究および臨床応用に利益をもたらす。
本明細書に言及されるすべての刊行物、特許、および特許出願は、各個別の刊行物、特許、または特許出願が、具体的かつ個別に参照により組み込まれることが示されるのと同程度に、参照により本明細書に組み込まれる。
複雑な試料からのアクショナブルな腫瘍バイオマーカーを含む標的化ライブラリーの生成のための効率的な方法は、様々な核酸分析に望ましい。本発明は、とりわけ、標的核酸配列のライブラリーを調製する方法を提供し、ユニークタグ配列を含む、高度に多重化された標的化ライブラリーの迅速な生成を可能にし、得られるライブラリー組成物は、配列決定用途を含む、様々な用途に有用である。提供される組成物は、組織および血漿由来の試料における変異、コピー数多型(CNV)、および遺伝子融合の検出用に設計されている。提供される組成物は、遺伝子分析のための次世代ワークフローをもたらすためのハイスループット試料で使用するための標的化プライマーパネルおよび試薬を含む。特定の実施形態では、使用は、完全に統合された試料から分析システムに実装される。本発明の新規特徴は、添付の特許請求の範囲に詳細に記載され、本発明の特徴および利点の完全な理解は、本発明の原理が利用される、例示的な実施形態を記載する以下の詳細な説明を参照することにより得られるであろう。
本明細書に使用されるセクションの見出しは、構成目的のものに過ぎず、決して記載される主題を限定すると解釈されるものではない。それらに限定されるものではないが、特許、特許出願、記事、書籍、論文、およびインターネットウェブページを含む、本出願で引用されたすべての文献および同様の資料が、任意の目的でそれらの全体が参照によって明示的に組み込まれる。組み込まれる参照文献における用語の定義が、本教示に提供される定義と異なる場合、本教示に提供される定義が優先されるものとする。ごく少量かつごくわずかな偏差が本明細書における本教示の範囲内であるように、本教示で論じられる温度、濃度、時間などの前に「約」が暗示されることが理解されるであろう。本出願において、単数形の使用は、別段具体的に記載されない限り、複数形を含む。本明細書で使用されるとき、単数形「a」、「an」、および「the」、ならびに単語の任意の単数使用は、明確かつ疑いの余地なく1つの指示対象に限定されない限り、複数の指示対象を含むことが留意される。また、「含む(comprise)」、「含む(comprises)」、「含む(comprising)」、「含有する(contain)」、「含有する(contains)」、「含有する(containing)」、「含む(include)」、「含む(includes)」、および「含む(including)」の使用は、限定することを意図していない。一般的な説明は両方とも例示的かつ説明的なものに過ぎず、本発明を限定するものではないことを理解されたい。
別段に定義されない限り、本明細書に記載される本発明に関連して使用される科学および技術用語は、当業者によって一般的に理解される意味を有するものとする。さらに、文脈によって別段必要とされない限り、単数の用語は複数を含み、複数の用語は単数を含むものとする。一般的には、本明細書で使用される細胞および組織培養、分子生物学、ならびにタンパク質およびオリゴまたはポリヌクレオチド化学およびハイブリダイゼーションに関連して利用される術語、ならびにその技法は、当該技術分野で周知であり、一般的に使用されるものである。本主題の実施は、別段に示されない限り、当技術分野の技術の範囲内である有機化学、分子生物学(組換え技術を含む)、細胞生物学、および生化学の従来の技法および説明を使用することができる。そのような従来の技法には、合成ポリヌクレオチドの調製、重合技法、ポリマー粒子の化学的および物理的分析、核酸ライブラリーの調製、核酸配列決定および分析などが含まれるが、これらに限定されない。適切な技法の特定の図は、本明細書で提供される実施例を参照することによって使用することができる。他の同等の従来の手順も使用することができる。このような従来の技法および説明は、Genome Analysis:A Laboratory Manual Series(Vols.I-IV),PCR Primer:A Laboratory Manual,and Molecular Cloning:A Laboratory Manual(all from Cold Spring Harbor Laboratory Press),Hermanson,Bioconjugate Techniques,Second Edition(Academic Press,2008)、Merkus,Particle Size Measurements(Springer,2009)、Rubinstein and Colby,Polymer Physics(Oxford University Press,2003)などの標準的な実験室マニュアルに見出すことができる。本明細書で提供される実施形態に従って利用されるとき、以下の用語は、別段に示されない限り、以下の意味を有すると理解されるものとする。
本明細書で使用されるとき、「増幅する」、「増幅すること」、または「増幅反応」、およびそれらの派生語は、一般的には、(鋳型核酸分子と呼ばれる)核酸分子の少なくとも一部分が複製されるか、または少なくとも1つの追加の核酸分子にコピーされる作用またはプロセスを指す。追加の核酸分子は、鋳型核酸分子の少なくともいくらかの部分と実質的に同一または実質的に相補的である配列を任意選択的に含む。鋳型標的核酸分子は、一本鎖または二本鎖であり得る。追加の得られる複製核酸分子は、独立して一本鎖または二本鎖であり得る。いくつかの実施形態では、増幅は、標的核酸分子の少なくともいくらかの部分の少なくとも1つのコピーの生成、または標的核酸分子の少なくともいくらかの部分に相補的である標的核酸配列の少なくとも1つのコピーの生成のための鋳型依存性インビトロ酵素触媒反応を含む。増幅は、核酸分子の線形または指数関数的複製を任意選択的に含む。いくつかの実施形態では、かかる増幅は、等温条件を使用して実施され、他の実施形態では、かかる増幅は、熱サイクリングを含むことができる。いくつかの実施形態では、増幅は、単一の増幅反応における複数の標的配列の同時増幅を含む多重増幅である。少なくともいくつかの標的配列は、単一の増幅反応に含まれる同じ核酸分子または異なる標的核酸分子上に位置することができる。いくつかの実施形態では、「増幅」は、単独または組み合わせにかかわらず、DNAベースの核酸および/またはRNAベースの核酸の少なくともいくらかの部分の増幅を含む。増幅反応は、一本鎖または二本鎖核酸基質を含むことができ、当業者に知られている任意の増幅プロセスをさらに含むことができる。いくつかの実施形態では、増幅反応は、ポリメラーゼ連鎖反応(PCR)を含む。いくつかの実施形態では、増幅反応は、等温増幅を含む。
本明細書で使用されるとき、「増幅条件」および派生語(例えば、増幅の条件など)は、一般的には、1つ以上の核酸配列を増幅するのに好適な条件を指す。増幅は、線形または指数関数的であり得る。いくつかの実施形態では、増幅条件は、等温条件を含むか、あるいは熱サイクリング条件、または等温条件および熱サイクリング条件の組み合わせを含む。いくつかの実施形態では、1つ以上の標的核酸配列を増幅するのに好適な条件は、ポリメラーゼ連鎖反応(PCR)条件を含む。典型的には、増幅条件は、1つ以上の標的配列などの核酸を増幅するか、または1つ以上のアダプターに連結した増幅標的配列、例えば、アダプター連結増幅標的配列を増幅するのに十分な反応混合物を指す。一般的には、増幅条件は、増幅用または核酸合成用の触媒、例えば、ポリメラーゼ、増幅される核酸に対してある程度の相補性を有するプライマー、および核酸にハイブリダイズされるとプライマーの伸長を促進するデオキシリボヌクレオシド三リン酸(dNTP)などのヌクレオチドを含む。増幅条件は、核酸へのプライマーのハイブリダイゼーションまたはアニーリング、プライマーの伸長、および伸長されたプライマーが増幅中の核酸配列から分離される変性ステップを必要とし得る。典型的には、必ずしもそうではないが、増幅条件は、熱サイクリングを含むことができる。いくつかの実施形態では、増幅条件は、アニーリング、伸長、および分離のステップが繰り返される複数のサイクルを含む。典型的には、増幅条件は、Mg++またはMn++などのカチオン(例えば、MgCl2など)を含み、かつイオン強度の様々な調整剤を任意選択的に含むこともできる。
本明細書で使用されるとき、「標的配列」、「標的核酸配列」、または「目的の標的配列」および派生語は、一般的には、試料中に存在することが疑われるか、または予想される任意の核酸配列を含む、本開示に従って増幅または合成することができる任意の一本鎖または二本鎖核酸配列を指す。いくつかの実施形態では、標的配列は、二本鎖形態で存在し、標的特異的プライマーまたは付加アダプターの追加前に、増幅もしくは合成される特定のヌクレオチド配列、またはその補体の少なくとも一部分を含む。標的配列は、増幅または合成反応に有用なプライマーがポリメラーゼによる伸長の前にハイブリダイズすることができる核酸を含むことができる。いくつかの実施形態では、用語は、ヌクレオチドの配列同一性、順序、または位置が本開示の方法の1つ以上によって決定される核酸配列を指す。
本明細書で使用される、「部分」という用語およびその変形は、所定の核酸分子、例えば、プライマーまたは鋳型核酸分子に関して使用される場合、核酸分子の部分または全長を含む、核酸分子の長さ内の任意の数の連続ヌクレオチドを含む。
本明細書で使用されるとき、「接触させること」およびその派生語は、2つ以上の成分に関して使用される場合、参照される成分の接近、近接、混合、または混入が、かかる成分の物理的な接触を必ずしも必要とせずに促進または達成される任意のプロセスを指し、参照される成分のいずれか1つ以上を含有する溶液を相互に混合することを含む。参照される成分は、任意の特定の順序または組み合わせで接触され得、成分の列挙の特定の順序は、限定的ではない。例えば、「AをBおよびCと接触させること」は、AをまずB、次いでCと接触させる実施形態、ならびにCをA、次いでBと接触させる実施形態、ならびにAおよびCの混合物をBと接触させる実施形態などを包含する。さらに、かかる接触させることは、接触プロセス中のある時点で、参照される成分のすべてが同時に存在するか、または同じ混合物もしくは溶液に同時に含まれる限り、接触プロセスの最終結果が参照される成分のすべてを含む混合物であることを必ずしも必要としない。例えば、「AをBおよびCと接触させること」は、CをまずAと接触させて第1の混合物を形成し、次いで、第1の混合物をBと接触させて第2の混合物を形成し、続いて、Cを第2の混合物から除去し、任意選択的にAもまた除去し、Bのみを残す実施形態を含み得る。接触させる参照成分のうちの1つ以上が複数を含む(例えば、「標的配列を複数の標的特異的プライマーおよびポリメラーゼと接触させる」)場合、複数の各メンバーは、接触させることが、複数のいずれか1つ以上のメンバーを複数のいずれかの他のメンバーと、および/またはいずれかの他の参照成分と(例えば、複数の標的特異的プライマーのすべてではないがいくつかは、標的配列、次いでポリメラーゼ、および次いで複数の標的特異的プライマーの他のメンバーと接触させることができる)いずれかの順序または組み合わせで接触させることを含むことができるように、接触プロセスの個々の成分として見ることができる。
本明細書で使用されるとき、「プライマー」という用語およびその派生語は、一般的には、目的の標的配列にハイブリダイズすることができる任意のポリヌクレオチドを指す。いくつかの実施形態では、プライマーは、核酸合成を開始するのに役立つこともできる。典型的には、プライマーは、ヌクレオチドがポリメラーゼによって重合され得る基質として機能するが、いくつかの実施形態では、プライマーは、合成核酸鎖に組み込まれ、別のプライマーがハイブリダイズして、合成核酸分子に相補的である新たな鎖の合成を開始することができる部位を提供することができる。プライマーは、任意の好適な長さの線状ポリマーを形成するために任意選択的に連結され得る、ヌクレオチドまたはその類似体の任意の組み合わせから構成され得る。いくつかの実施形態では、プライマーは、一本鎖オリゴヌクレオチドまたはポリヌクレオチドである。(本開示の目的において、「ポリヌクレオチド」および「オリゴヌクレオチド」という用語は、本明細書において互換的に使用され、二者間の長さの違いを必ず示すとは限らない)。いくつかの実施形態では、プライマーは、二本鎖である。二本鎖の場合、プライマーは、伸長生成物を調製するために使用される前に、その鎖を分離するようにまず処理される。好ましくは、プライマーは、オリゴデオキシリボヌクレオチドである。プライマーは、伸長生成物の合成を開始するのに十分に長くなければならない。プライマーの長さは、温度、プライマーの供給源、および方法の使用を含む、多くの因子に依存するであろう。いくつかの実施形態では、プライマーは、増幅または合成条件に曝露される場合、増幅または合成の開始点として機能し、かかる増幅または合成は、鋳型依存様式で起こり得、任意選択的に標的配列の少なくとも一部分に相補的であるプライマー伸長生成物の形成をもたらす。例示的な増幅または合成条件は、プライマーをポリヌクレオチド鋳型(例えば、標的配列を含む鋳型)、ヌクレオチド、およびポリメラーゼなどの誘導剤と好適な温度およびpHで接触させて、標的特異的プライマーの末端へのヌクレオチドの重合を誘導することを含むことができる。二本鎖の場合、プライマーは、プライマー伸長生成物を調製するために使用される前に、その鎖を分離するように任意選択的に処理することができる。いくつかの実施形態では、プライマーは、オリゴデオキシリボヌクレオチドまたはオリゴリボヌクレオチドである。いくつかの実施形態では、プライマーは、1つ以上のヌクレオチド類似体を含むことができる。標的特異的プライマーの、配列を含む、正確な長さおよび/または組成は、融解温度(Tm)、GC含有量、二次構造の形成、反復ヌクレオチドモチーフ、予測されるプライマー伸長生成物の長さ、目的の核酸分子にわたるカバレッジの程度、単一の増幅または合成反応に存在するプライマーの数、プライマー内のヌクレオチド類似体または修飾ヌクレオチドの存在などを含む、多くの特性に影響を及ぼすことができる。いくつかの実施形態では、プライマーは、増幅または合成反応内で適合性プライマーと対合して、順方向プライマーおよび逆方向プライマーからなるプライマー対を形成することができる。いくつかの実施形態では、プライマー対の順方向プライマーは、核酸分子の鎖の少なくとも一部分と実質的に相補的である配列を含み、プライマー対のプライマーの逆方向プライマーは、鎖の少なくとも一部分と実質的に同一である配列を含む。いくつかの実施形態では、順方向プライマーおよび逆方向プライマーは、核酸二重鎖の反対の鎖にハイブリダイズすることができる。任意選択的に、順方向プライマーは、第1の核酸鎖の合成を開始し、逆方向プライマーは、第2の核酸鎖の合成を開始し、第1および第2の鎖は、互いに実質的に相補的であるか、またはハイブリダイズして二本鎖核酸分子を形成することができる。いくつかの実施形態では、増幅または合成生成物の一末端は、順方向プライマーによって定義され、増幅または合成生成物の他端は、逆方向プライマーによって定義される。いくつかの実施形態では、エクソン、コーディング領域、または遺伝子の増幅などの、長いプライマー伸長生成物の増幅または合成が必要である場合、領域の十分な増幅を可能にするために所望の長さに及ぶよりもいくつかのプライマー対を作成することができる。いくつかの実施形態では、プライマーは、1つ以上の切断可能な基を含むことができる。いくつかの実施形態では、プライマー長さは、約10~約60ヌクレオチド、約12~約50ヌクレオチド、および約15~約40ヌクレオチドの範囲の長さである。典型的には、プライマーは、dNTPおよびポリメラーゼの存在下で増幅条件に曝露される場合、対応する標的配列にハイブリダイズし、プライマー伸長を受けることができる。いくつかの場合、特定のヌクレオチド配列またはプライマーの一部分は、増幅反応の開始時に既知であるか、または本明細書に開示される方法の1つ以上によって決定することができる。いくつかの実施形態では、プライマーは、プライマー内の1つ以上の位置に1つ以上の切断可能な基を含む。
本明細書で使用されるとき、「標的特異的プライマー」およびその派生語は、一般的には、標的配列を含む核酸分子の少なくとも一部分に対して、少なくとも50%相補的、典型的には少なくとも75%相補的、もしくは少なくとも85%相補的、より典型的には少なくとも90%相補的、より典型的には少なくとも95%相補的、より典型的には少なくとも98%、もしくは少なくとも99%相補的、または同一である少なくとも1つの配列を含む、一本鎖または二本鎖ポリヌクレオチド、典型的にはオリゴヌクレオチドを指す。かかる場合、標的特異的プライマーおよび標的配列は、互いに「対応する」と記載される。いくつかの実施形態では、標的特異的プライマーは、その対応する標的配列の少なくとも一部分(または標的配列の補体)にハイブリダイズすることができ、かかるハイブリダイゼーションは、標準的なハイブリダイゼーション条件下またはストリンジェントなハイブリダイゼーション条件下で任意選択的に実施することができる。いくつかの実施形態では、標的特異的プライマーは、標的配列またはその補体にハイブリダイズすることができないが、標的配列またはその補体を含む核酸鎖の一部分にハイブリダイズすることができる。いくつかの実施形態では、標的特異的プライマーは、標的配列自体の少なくとも一部分に対して、少なくとも75%相補的、典型的には少なくとも85%相補的、より典型的には少なくとも90%相補的、より典型的には少なくとも95%相補的、より典型的には少なくとも98%相補的、またはより典型的には少なくとも99%相補的である少なくとも1つの配列を含み、他の実施形態では、標的特異的プライマーは、標的配列以外の核酸分子の少なくとも一部に対して、少なくとも75%相補的、典型的には少なくとも85%相補的、より典型的には少なくとも90%相補的、より典型的には少なくとも95%相補的、より典型的には少なくとも98%相補的、またはより典型的には少なくとも99%相補的である少なくとも1つの配列を含む。いくつかの実施形態では、標的特異的プライマーは、試料中に存在する他の標的配列に対して実質的に非相補的であり、任意選択的に、標的特異的プライマーは、試料中に存在する他の核酸分子に対して実質的に非相補的である。いくつかの実施形態では、標的配列(または標的配列の補体)を含まないか、またはそれに対応しない試料中に存在する核酸分子は、「非特異的」配列または「非特異的核酸」と呼ばれる。いくつかの実施形態では、標的特異的プライマーは、その対応する標的配列の少なくとも一部分と実質的に相補的であるヌクレオチド配列を含むように設計される。いくつかの実施形態では、標的特異的プライマーは、その対応する標的配列を含む核酸分子の少なくとも一部分に対してその全長にわたって、少なくとも95%相補的、もしくは少なくとも99%相補的、または同一である。いくつかの実施形態では、標的特異的プライマーは、その対応する標的配列の少なくとも一部分に対してその全長にわたって、少なくとも90%、少なくとも95%相補的、少なくとも98%相補的、もしくは少なくとも99%相補的、または同一であり得る。いくつかの実施形態では、順方向標的特異的プライマーおよび逆方向標的特異的プライマーは、鋳型依存的プライマー伸長を介して標的配列を増幅するために使用することができる標的特異的プライマー対を定義する。典型的には、標的特異的プライマー対の各プライマーは、対応する標的配列を含む核酸分子の少なくとも一部分と実質的に相補的であるが、試料中の少なくとも1つの他の標的配列と50%未満相補的である少なくとも1つの配列を含む。いくつかの実施形態では、増幅は、単一の増幅反応において複数の標的特異的プライマー対を用いて実施することができ、各プライマー対は、順方向標的特異的プライマーおよび逆方向標的特異的プライマーを含み、各々が、試料中の対応する標的配列と実質的に相補的または実質的に同一である少なくとも1つの配列を含み、各プライマー対は、異なる対応する標的配列を有する。いくつかの実施形態では、標的特異的プライマーは、増幅反応に存在する任意の他の標的特異的プライマーに対して、その3’末端またはその5’末端で実質的に非相補的であり得る。いくつかの実施形態では、標的特異的プライマーは、増幅反応における他の標的特異的プライマーへの最小限のクロスハイブリダイゼーションを含むことができる。いくつかの実施形態では、標的特異的プライマーは、増幅反応混合物中の非特異的配列への最小限のクロスハイブリダイゼーションを含む。いくつかの実施形態では、標的特異的プライマーは、最小限の自己相補性を含む。いくつかの実施形態では、標的特異的プライマーは、3’末端に位置する1つ以上の切断可能な基を含むことができる。いくつかの実施形態では、標的特異的プライマーは、標的特異的プライマーの中心ヌクレオチドの近くまたは周囲に位置する1つ以上の切断可能な基を含むことができる。いくつかの実施形態では、1つ以上の標的特異的プライマーは、標的特異的プライマーの5’末端に切断不可能なヌクレオチドのみを含む。いくつかの実施形態では、標的特異的プライマーは、任意選択的に同じ増幅反応において、1つ以上の異なる標的特異的プライマーと比較して、プライマーの3’末端または5’末端で最小限のヌクレオチド配列重複を含む。いくつかの実施形態では、単一の反応混合物中の1、2、3、4、5、6、7、8、9、10個以上の標的特異的プライマーは、上記の実施形態の1つ以上を含む。いくつかの実施形態では、単一の反応混合物中の複数の標的特異的プライマーの実質的にすべては、上記の実施形態の1つ以上を含む。
本明細書で使用されるとき、「アダプター」という用語は、目的のポリヌクレオチドの操作に使用することができる核酸分子を指す。いくつかの実施形態では、アダプターは、1つ以上の標的核酸の増幅に使用される。いくつかの実施形態では、アダプターは、配列決定のための反応において使用される。いくつかの実施形態では、アダプターは、5’リン酸残基を欠く1つ以上の末端を有する。いくつかの実施形態では、アダプターは、少なくとも1つのプライミング部位を含むか、これからなるか、またはこれから本質的になる。アダプターを含有するかかるプライミング部位は、「プライマー」アダプターと呼ぶことができる。いくつかの実施形態では、アダプタープライミング部位は、PCRプロセスにおいて有用であり得る。いくつかの実施形態では、アダプターは、本明細書において遺伝子特異的標的配列、標的特異的配列、または標的特異的プライマーと呼ばれる、試料内の少なくとも1つの標的配列の3’末端または5’末端に実質的に相補的である核酸配列を含む。いくつかの実施形態では、アダプターは、試料中に存在する任意の標的配列の3’末端または5’末端に対して実質的に非相補的である核酸配列を含む。いくつかの実施形態では、アダプターは、標的核酸配列に実質的に相補的ではない一本鎖または二本鎖線状オリゴヌクレオチドを含む。いくつかの実施形態では、アダプターは、試料の核酸分子の少なくとも1つ、好ましくはいくつかまたはすべてに対して実質的に非相補的である核酸配列を含む。いくつかの実施形態では、好適なアダプター長さは、約10~75ヌクレオチド、約12~50ヌクレオチド、および約15~40ヌクレオチドの範囲の長さである。一般的には、アダプターは、ヌクレオチドおよび/または核酸のいずれかの組み合わせを含むことができる。いくつかの態様では、アダプターは、1つ以上の場所に1つ以上の切断可能な基を含む。いくつかの実施形態では、アダプターは、プライマー、例えば、ユニバーサルプライマーの少なくとも一部分と実質的に同一または実質的に相補的である配列を含む。いくつかの実施形態では、アダプターは、カタログ化、同定、または配列決定を補助するタグ配列を含む。いくつかの実施形態では、アダプターは、特に好適な温度およびpH下でポリメラーゼおよびdNTPの存在下、標的配列の増幅のための基質として作用する。
本明細書で使用されるとき、「ポリメラーゼ」およびその派生語は、一般的には、ヌクレオチド(その類似体を含む)の核酸鎖への重合を触媒することができる任意の酵素を指す。必ずしもそうではないが、典型的には、かかるヌクレオチド重合は、鋳型依存様式で生じ得る。かかるポリメラーゼには、限定することなく、天然ポリメラーゼおよびその任意のサブユニットおよびトランケーション、変異ポリメラーゼ、バリアントポリメラーゼ、組換え、融合、または他の様式で操作されたポリメラーゼ、化学的に修飾されたポリメラーゼ、合成分子または集合体、ならびにかかる重合を触媒する能力を保持するそれらの任意の類似体、誘導体、または断片が含まれ得る。任意選択的に、ポリメラーゼは、1つ以上のアミノ酸の他のアミノ酸との置換、ポリメラーゼからの1つ以上のアミノ酸の挿入もしくは欠失、または2つ以上のポリメラーゼの部分の結合を伴う1つ以上の変異を含む変異ポリメラーゼであり得る。典型的には、ポリメラーゼは、ヌクレオチド結合および/またはヌクレオチド重合の触媒が生じ得る1つ以上の活性部位を含む。いくつかの例示的なポリメラーゼは、限定なしに、DNAポリメラーゼおよびRNAポリメラーゼを含む。本明細書で使用される、「ポリメラーゼ」という用語およびその変形は、互いに連結した少なくとも2つの部分を含む融合タンパク質も指し、第1の部分は、ヌクレオチドの核酸鎖への重合を触媒することができるペプチドを含み、第2のポリペプチドを含む第2の部分に連結している。いくつかの実施形態では、第2のポリペプチドは、レポーター酵素または加工性増強ドメインを含むことができる。任意選択的に、ポリメラーゼは、5’エキソヌクレアーゼ活性またはターミナルトランスフェラーゼ活性を有することができる。いくつかの実施形態では、例えば、熱、化学物質の使用、または反応混合物への新たな量のポリメラーゼの再追加により、ポリメラーゼを任意選択的に再活性化することができる。いくつかの実施形態では、ポリメラーゼは、任意選択的に再活性化することができるホットスタートポリメラーゼおよび/またはアプタマーベースのポリメラーゼを含むことができる。
本明細書で使用される「同一性」および「同一」という用語ならびにそれらの変形は、2つ以上の核酸配列を参照して使用される場合、2つ以上の配列(例えば、ヌクレオチドまたはポリペプチド配列)の配列類似性を指す。2つ以上の相同配列の状況下において、配列またはその部分配列の同一性または相同性パーセントは、同じ(すなわち、約70%同一性、好ましくは75%、80%、85%、90%、95%、98%、または99%同一性)であるすべてのモノマー単位(例えば、ヌクレオチドまたはアミノ酸)のパーセンテージを示す。同一性パーセントは、比較ウィンドウ上で最大の一致について比較および整列される場合、特定される領域、または以下に記載されるデフォルトパラメータでBLASTもしくはBLAST 2.0配列比較アルゴリズムを使用して、または手動アライメントおよび目視検査により、指定される領域を超えることができる。アミノ酸レベルまたはヌクレオチドレベルで少なくとも85%同一性がある場合、配列は「実質的に同一」であると言われる。好ましくは、同一性は、長さが少なくとも約25、50、もしくは100残基である領域にわたって、または少なくとも1つの比較配列の全長にわたって存在する。配列同一性および配列類似性のパーセントを決定するための典型的なアルゴリズムは、BLASTおよびBLAST 2.0アルゴリズムであり、これらは、Altschul et al,Nuc.Acids Res.25:3389-3402(1977)に記載される。他の方法には、Smith&Waterman,Adv.Appl.Math.2:482(1981)、およびNeedleman&Wunsch,J.Mol.Biol.48:443(1970)などのアルゴリズムが含まれる。2つの核酸配列が実質的に同一であるという別の指標は、2つの分子またはそれらの相補体がストリンジェントなハイブリダイゼーション条件下で互いにハイブリダイズすることである。
本明細書で使用される「相補的」および「補体」という用語ならびにそれらの変形は、ハイブリダイズされた二重鎖のように、逆平行配向にある2つ以上の個々の対応する位置で累積塩基対合を受けることができる任意の2つ以上の核酸配列(例えば、鋳型核酸分子の部分または全体、標的配列および/またはプライマー)を指す。かかる塩基対合は、確立された規則の任意のセットに従って、例えば、ワトソン-クリック塩基対合規則に従って、またはいくらかの他の塩基対合パラダイムに従って進めることができる。任意選択的に、第1の核酸配列と第2の核酸配列との間に「完全」または「総」相補性があり得、第1の核酸配列中の各ヌクレオチドは、第2の核酸配列上の対応する逆平行位置のヌクレオチドとの安定化塩基対合相互作用を受けることができる。「部分的」相補性は、1つの核酸配列の残基の少なくとも20%であるが、100%未満が、他の核酸配列中の残基と相補的である、核酸配列を記載する。いくつかの実施形態では、1つの核酸配列の残基の少なくとも50%であるが、100%未満は、他の核酸配列中の残基と相補的である。いくつかの実施形態では、1つの核酸配列の残基の少なくとも70%、80%、90%、95%、または98%であるが、100%未満は、他の核酸配列中の残基と相補的である。1つの核酸配列の残基の少なくとも85%が他の核酸配列中の残基と相補的である場合、配列は、「実質的に相補的」であると言われる。いくつかの実施形態では、2つの相補的または実質的に相補的な配列は、標準的またはストリンジェントなハイブリダイゼーション条件下で互いにハイブリダイズすることができる。「非相補的」は、1つの核酸配列の残基の20%未満が、他の核酸配列中の残基と相補的である、核酸配列を記載する。1つの核酸配列の残基の15%未満が他の核酸配列中の残基と相補的である場合、配列は、「実質的に非相補的」であると言われる。いくつかの実施形態では、2つの非相補的または実質的に非相補的な配列は、標準的またはストリンジェントなハイブリダイゼーション条件下で互いにハイブリダイズすることができない。「不一致」は、2つの対向したヌクレオチドが相補的ではない任意の位置に存在する。相補的ヌクレオチドは、生理学的条件下でのDNA複製中に互いに対向するDNAポリメラーゼにより効率的に組み込まれるヌクレオチドを含む。典型的な実施形態では、相補的ヌクレオチドは、互いに逆平行な位置にあるヌクレオチドおよび/またはポリヌクレオチドの核酸塩基の間に、特定のワトソン-クリック型水素結合を通して形成されたA-T/UおよびG-C塩基対、またはいくらかの他のタイプの塩基対合パラダイムを通して形成された塩基対などの、互いの塩基対を形成することができる。他の人工塩基対の相補性は、塩基の他のタイプの水素結合および/もしくは疎水性ならびに/または塩基間の形状相補性に基づくことができる。
本明細書で使用されるとき、「増幅された標的配列」およびその派生語は、一般的には、標的特異的プライマーおよび本明細書で提供される方法を使用して標的配列の増幅/これらを増幅することにより生成された核酸配列を指す。増幅された標的配列は、標的配列に関して同じセンス(2回以降の偶数回の増幅で生成されたプラス鎖)またはアンチセンス(すなわち、1回以降の奇数回の増幅中に生成されたマイナス鎖)のいずれかであり得る。本開示の目的のために、増幅された標的配列は、典型的には、反応における別の増幅された標的配列の任意の部分と50%未満相補的である。
本明細書で使用されるとき、「連結する」、「連結」という用語および派生語は、一般的には、2つ以上の分子を一緒に共有結合する、例えば、2つ以上の核酸分子を互いに共有結合するための行為またはプロセスを指す。いくつかの実施形態では、連結は、核酸の隣接するヌクレオチド間のニックを接合することを含む。いくつかの実施形態では、連結は、第1の核酸分子の末端と第2の核酸分子の末端との間に共有結合を形成することを含む。いくつかの実施形態、例えば、連結される核酸分子が従来のヌクレオチド残基を含む実施形態では、連結は、1つの核酸の5’リン酸基と第2の核酸の3’ヒドロキシル基との間に共有結合を形成し、これにより連結された核酸分子を形成することを含むことができる。いくつかの実施形態では、ニックを接合するか、または隣接するヌクレオチド間で5’リン酸を3’ヒドロキシルに結合するための任意の手段を使用することができる。例示的な実施形態では、リガーゼなどの酵素を使用することができる。
本明細書で使用されるとき、「リガーゼ」およびその派生語は、一般的には、2つの基質分子の連結を触媒することができる任意の薬剤を指す。いくつかの実施形態では、リガーゼは、核酸の隣接するヌクレオチド間のニックの接合を触媒することができる酵素を含む。いくつかの実施形態では、リガーゼは、1つの核酸分子の5’リン酸と別の核酸分子の3’ヒドロキシルとの間の共有結合の形成を触媒し、それにより連結核酸分子を形成することができる酵素を含む。好適なリガーゼは、これらに限定されないが、T4 DNAリガーゼ、T7 DNAリガーゼ、Taq DNAリガーゼ、およびE.coli DNAリガーゼを含み得る。
本明細書で定義されるように、「切断可能な基」は、一般的には、いったん核酸に組み込まれると適切な条件下で切断することができる任意の部分を指す。例えば、切断可能な基は、試料の標的特異的プライマー、増幅された配列、アダプター、または核酸分子に組み込むことができる。例示的な実施形態では、標的特異的プライマーは、増幅生成物に組み込まれる切断可能な基を含むことができ、その後増幅後に切断され、それにより増幅生成物から標的特異的プライマーの一部または全部を除去する。切断可能な基は、任意の許容可能な手段により、試料の標的特異的プライマー、増幅された配列、アダプター、または核酸分子から切断またはそうでなければ除去することができる。例えば、切断可能な基は、酵素、熱、光酸化、または化学処理により、試料の標的特異的プライマー、増幅された配列、アダプター、または核酸分子から除去することができる。一態様では、切断可能な基は、天然に存在しない核酸塩基を含むことができる。例えば、オリゴデオキシリボヌクレオチドは、ウラシルグリコシラーゼによって除去することができるウラシルなどの1つ以上のRNA核酸塩基を含むことができる。いくつかの実施形態では、切断可能な基は、1つ以上の修飾された核酸塩基(7-メチルグアニン、8-オキソ-グアニン、キサンチン、ヒポキサンチン、5,6-ジヒドロウラシル、または5-メチルシトシンなど)または1つ以上の修飾されたヌクレオシド(すなわち、7-メチルグアノシン、8-オキソ-デオキシグアノシン、キサントシン、イノシン、ジヒドロウリジン、または5-メチルシチジン)を含むことができる。修飾された核酸塩基またはヌクレオチドは、酵素的、化学的、または熱的手段により核酸から除去することができる。一実施形態では、切断可能な基は、増幅(または合成)後、紫外線(すなわち、ブロモデオキシウリジン)への曝露時に、プライマーから除去することができる部分を含むことができる。別の実施形態では、切断可能な基は、メチル化シトシンを含むことができる。典型的には、メチル化シトシンは、例えば、増幅(または合成)の誘導後、亜硫酸水素ナトリウム処理時に、プライマーから切断することができる。いくつかの実施形態では、切断可能な部分は、制限部位を含むことができる。例えば、プライマーまたは標的配列は、1つ以上の制限酵素に特異的な核酸配列を含むことができ、増幅(または合成)に続いて、プライマーまたは標的配列は、切断可能な基が除去されるように1つ以上の制限酵素で処理することができる。典型的には、試料の標的特異的プライマー、増幅された配列、アダプター、または核酸分子とともに、1つ以上の位置に1つ以上の切断可能な基を含めることができる。
本明細書で使用されるとき、「消化」、「消化ステップ」、およびその派生語は、一般的には、切断可能な基が、試料の標的特異的プライマー、増幅された配列、アダプター、または核酸分子から切断されるか、そうでなければ除去される任意のプロセスを指す。いくつかの実施形態では、消化ステップは、化学的、熱的、光酸化的、または消化的プロセスを含む。
本明細書で使用されるとき、「ハイブリダイゼーション」という用語は、当該技術分野でのその使用と一致しており、一般的には、2つの核酸分子が塩基対合相互作用を受けるプロセスを指す。2つの核酸分子は、一方の核酸分子の任意の部分が他方の核酸分子の任意の部分と塩基対合される場合、ハイブリダイズされると言われ、2つの核酸分子がそれらのそれぞれの全長にわたってハイブリダイズされることは必ずしも必要ではなく、いくつかの実施形態では、核酸分子の少なくとも1つは、他の核酸分子とハイブリダイズされない部分を含むことができる。「ストリンジェントな条件下でハイブリダイズすること」という句およびその変形は、一般的には、標的特異的プライマーの標的配列へのハイブリダイゼーションが、高いハイブリダイゼーション温度および低いイオン強度の存在下で起こる条件を指す。本明細書で使用されるとき、「標準的なハイブリダイゼーション条件」という句およびその変形は、一般的には、プライマーのオリゴヌクレオチド(すなわち、標的配列)へのハイブリダイゼーションが、低いハイブリダイゼーション温度および高いイオン強度の存在下で起こる条件を指す。1つの例示的な実施形態では、標準的なハイブリダイゼーション条件には、約100mmの硫酸マグネシウム、pH8.9の約500mMの硫酸トリス、および約50~55℃の約200mMの硫酸アンモニウム、またはその等価物を含有する水性環境が含まれる。
本明細書で使用されるとき、「末端」という用語およびその変形は、核酸分子、例えば、標的配列または増幅された標的配列に関して使用される場合、核酸分子の末端30ヌクレオチド、末端20、およびさらにより典型的には末端15ヌクレオチドを含むことができる。結合した一連の連続ヌクレオチドからなる線状核酸分子は、典型的には少なくとも2つの末端を含む。いくつかの実施形態では、核酸分子の一末端は、3’ヒドロキシル基またはその等価物を含むことができ、「3’末端」およびその派生語として呼ぶことができる。任意選択的に、3’末端は、モノヌクレオチドペントース環の5’リン酸基に結合していない3’ヒドロキシル基を含む。典型的には、3’末端は、非結合3’ヒドロキシル基を含むヌクレオチドに隣接して位置する1つ以上の5’結合ヌクレオチド、典型的には3’ヒドロキシルに隣接して位置する30ヌクレオチド、典型的には末端20、およびさらにより典型的には末端15ヌクレオチドを含む。一般的には、1つ以上の結合ヌクレオチドは、オリゴヌクレオチド中に存在するヌクレオチドのパーセンテージとして表すことができ、または非結合3’ヒドロキシルに隣接するいくつかの結合ヌクレオチドとして提供することができる。例えば、3’末端は、オリゴヌクレオチドのヌクレオチド長の50%未満を含むことができる。いくつかの実施形態では、3’末端は、いずれの非結合3’ヒドロキシル基も含まないが、プライマー伸長および/またはヌクレオチド重合によるヌクレオチドの付着部位として機能することができる任意の部分を含むことができる。いくつかの実施形態では、「3’末端」という用語は、例えば、標的特異的プライマーを指す場合、3’末端に末端10ヌクレオチド、末端5ヌクレオチド、末端4、3、2、またはそれより少ないヌクレオチドを含むことができる。いくつかの実施形態では、「3’末端」という用語は、標的特異的プライマーを指す場合、3’末端から10ヌクレオチド位以下に位置するヌクレオチドを含むことができる。本明細書で使用されるとき、「5’末端」、およびその派生語は、一般的には核酸分子の末端、例えば、遊離5’リン酸基またはその等価物を含む、標的配列または増幅された標的配列を指す。いくつかの実施形態では、5’末端は、隣接するモノヌクレオチドペントース環の3’ヒドロキシルに結合していない5’リン酸基を含む。典型的には、5’末端は、5’リン酸に隣接して位置する1つ以上の結合ヌクレオチド、典型的には5’リン酸基を含むヌクレオチドに隣接して位置する30ヌクレオチド、典型的には末端20、およびさらにより典型的には末端15ヌクレオチドを含む。一般的には、1つ以上の結合ヌクレオチドは、オリゴヌクレオチド中に存在するヌクレオチドのパーセンテージとして表すことができ、または5’リン酸に隣接するいくつかの結合ヌクレオチドとして提供することができる。例えば、5’末端は、オリゴヌクレオチドのヌクレオチド長の50%未満であり得る。別の例示的な実施形態では、5’末端は、末端5’リン酸を含むヌクレオチドに隣接する約15ヌクレオチドを含むことができる。いくつかの実施形態では、5’末端は、いずれの非結合5’リン酸基も含まないが、3’ヒドロキシル基、または別の核酸分子の3’末端への付着部位として機能することができる任意の部分を含むことができる。いくつかの実施形態では、「5’末端」という用語は、例えば、標的特異的プライマーを指す場合、5’末端に末端10ヌクレオチド、末端5ヌクレオチド、末端4、3、2、またはそれより少ないヌクレオチドを含むことができる。いくつかの実施形態では、「5’末端」という用語は、標的特異的プライマーを指す場合、5’末端から10位以下に位置するヌクレオチドを含むことができる。いくつかの実施形態では、標的特異的プライマーの5’末端は、切断不可能なヌクレオチドのみ、例えば、本明細書に開示される1つ以上の切断可能な基を含有しないヌクレオチド、または当業者によって容易に決定される切断可能なヌクレオチドを含むことができる。ポリヌクレオチドの「第1の末端」および「第2の末端」とは、ポリヌクレオチドの5’末端または3’末端を指す。ポリヌクレオチドの第1の末端または第2の末端のいずれかは、ポリヌクレオチドの5’末端または3’末端であり得、「第1」および「第2」という用語は、末端が具体的に5’末端または3’末端であることを示すことを意図していない。
本明細書で使用されるとき、「タグ」、「バーコード」、「ユニークタグ」、または「タグ配列」、およびその派生語は、一般的には、試料中の複数の増幅された標的配列を区別または分離するための「鍵」として機能することができるアダプターまたはプライマー内のユニークな短い(6~14ヌクレオチド)核酸配列を指す。本開示の目的のために、バーコードまたはユニークタグ配列は、アダプターまたはプライマーのヌクレオチド配列に組み込まれる。本明細書で使用されるとき、「バーコード配列」は、目的の核酸配列の試料または供給源の同定を可能にするのに十分である核酸固定配列を示す。バーコード配列は、そうである必要はないが、同定が基づく元の核酸配列の小区分であり得る。いくつかの実施形態では、バーコードは、5~20核酸長である。いくつかの実施形態では、バーコードはアナログなヌクレオチド、例えば、L-DNA、LNA、PNAなどを含む。本明細書で使用されるとき、「ユニークタグ配列」は、少なくとも1つのランダム配列および少なくとも1つの固定配列を有する核酸配列を示す。ユニークタグ配列は、単独で、または第2のユニークタグ配列とともに、試料中の単一の標的核酸分子の同定を可能にするのに十分である。ユニークタグ配列は、そうである必要はないが、元の標的核酸配列の小区分を含むことができる。いくつかの実施形態では、ユニークタグ配列は、長さが2~50ヌクレオチドもしくは塩基対、または2~25ヌクレオチドもしくは塩基対、または2~10ヌクレオチドもしくは塩基対である。ユニークタグ配列は、固定配列が点在する少なくとも1つのランダム配列を含むことができる。
本明細書で使用されるとき、「比較可能な最高最低融解温度」およびその派生語は、一般的には、切断可能な基の消化後の単一アダプターまたは標的特異的プライマーの各核酸断片の融解温度(Tm)を指す。アダプターまたは標的特異的プライマーによって生成された各核酸断片のハイブリダイゼーション温度は、標的特異的プライマーもしくはアダプターまたはその断片もしくは部分からの核酸配列のそれぞれの標的へのハイブリダイゼーションを防止するのに必要な最高最低温度を決定するために比較される。最高ハイブリダイゼーション温度がわかると、例えば、プライマーの長さに沿って1つ以上の切断可能な基の位置を移動することにより、アダプターまたは標的特異的プライマーを操作して、各核酸断片に対して比較可能な最高最低融解温度を達成して、これによりライブラリー調製の消化および修復ステップを最適化することが可能である。
本明細書で使用されるとき、「追加のみ」およびその派生語は、一般的には、試薬および成分が第1または単一の反応混合物に追加される一連のステップを指す。典型的には、一連のステップは、一連のステップを完了するために、第1の容器から第2の容器に反応混合物を取り出すことを除外する。一般的には、追加のみのプロセスでは、反応混合物を含有する容器の外側での反応混合物の操作を除外する。典型的には、追加のみのプロセスは、自動化および高スループットに適している。
本明細書で使用されるとき、「重合条件」およびその派生語は、一般的には、ヌクレオチド重合に好適な条件を指す。典型的な実施形態では、かかるヌクレオチド重合は、ポリメラーゼによって触媒される。いくつかの実施形態では、重合条件は、合成された核酸配列の生成をもたらす、任意選択的に鋳型依存様式での、プライマー伸長のための条件を含む。いくつかの実施形態では、重合条件には、ポリメラーゼ連鎖反応(PCR)が含まれる。典型的には、重合条件は、核酸を合成するのに十分であり、ポリメラーゼおよびヌクレオチドを含む反応混合物の使用を含む。重合条件は、標的特異的プライマーの標的配列へのアニーリングおよびポリメラーゼの存在下での鋳型依存様式でのプライマーの伸長のための条件を含むことができる。いくつかの実施形態では、重合条件は、熱サイクリングを使用して実施することができる。加えて、重合条件は、2つの核酸鎖のアニーリング、伸長、および分離のステップが繰り返される複数のサイクルを含むことができる。典型的には、重合条件には、MgCl2などのカチオンが含まれる。一般的には、核酸鎖を形成するための1つ以上のヌクレオチドの重合には、ヌクレオチドがホスホジエステル結合を介して互いに結合されることが含まれるが、特定のヌクレオチド類似体の状況下において代替結合が可能であり得る。
本明細書で使用されるとき、「核酸」という用語は、ポリヌクレオチドおよびオリゴヌクレオチドを含む、天然の核酸、人工の核酸、それらの類似体、またはそれらの組み合わせを指す。本明細書で使用されるとき、「ポリヌクレオチド」および「オリゴヌクレオチド」という用語は、互換的に使用され、これらに限定されないが、ヌクレオチド間ホスホジエステル結合、例えば、3’-5’および2’-5’、逆結合、例えば、3’-3’および5’-5’、分岐構造、またはアナログ核酸によって結合した2’-デオキシリボヌクレオチド(核酸)およびリボヌクレオチド(RNA)を含む、ヌクレオチドの一本鎖および二本鎖ポリマーを意味する。ポリヌクレオチドは、H+、NH4 +、トリアルキルアンモニウム、Mg2+、Na+などの関連する対イオンを有する。オリゴヌクレオチドは、デオキシリボヌクレオチドのみ、リボヌクレオチドのみ、またはそれらのキメラ混合物で構成することができる。オリゴヌクレオチドは、核酸塩基および糖の類似体で構成することができる。ポリヌクレオチドは、典型的には、それらがより一般的には当該技術分野において頻繁にオリゴヌクレオチドと呼ばれる場合、数個のモノマー単位、例えば、5~40個から、それらがより一般的には当該技術分野においてポリヌクレオチドと呼ばれる場合、数千個のモノマーヌクレオチド単位までのサイズの範囲であり、本開示の目的では、しかしながら、オリゴヌクレオチドおよびポリヌクレオチドの両方は、任意の好適な長さのものであり得る。別段に示されない限り、オリゴヌクレオチド配列が表されるときはいつでも、ヌクレオチドは左から右へ5’~3’の順序であり、「A」はデオキシアデノシンを示し、「C」はデオキシシチジンを示し、「G」はデオキシグアノシンを示し、「T」はチミジンを示し、「U」はデオキシウリジンを示すことが理解されるであろう。本明細書で議論され、当該技術分野で知られるように、モノヌクレオチドは、典型的には、1つのヌクレオチドの5’リン酸または同等の基の、その隣接するヌクレオチドの3’ヒドロキシルまたは同等の基への付着を介して、任意選択的にホスホジエステルまたは他の好適な結合を介してオリゴヌクレオチドを形成するように反応させるので、オリゴヌクレオチドおよびポリヌクレオチドは、「5’末端」および「3’末端」を有すると言われる。
本明細書で使用されるとき、「ポリメラーゼ連鎖反応」(「PCR」)という用語は、クローニングまたは精製なしにゲノムDNAの混合物中の目的のポリヌクレオチドのセグメントの濃度を増加させるための方法を記載する、参照により本明細書に組み込まれる、K.B.Mullis米国特許第4,683,195号および同第4,683,202号の方法を指す。目的のポリヌクレオチドを増幅するためのこのプロセスは、大過剰の2つのオリゴヌクレオチドプライマーを目的の所望のポリヌクレオチドを含有するDNA混合物に導入し、続いてDNAポリメラーゼの存在下で正確な順序の熱サイクリングを行うことからなる。2つのプライマーは、目的の二本鎖ポリヌクレオチドのそれらのそれぞれの鎖と相補的である。増幅を行うために、混合物は変性され、プライマーは次いで目的分子のポリヌクレオチド内のそれらの相補的な配列にアニールされる。アニーリングに続いて、プライマーは、ポリメラーゼで伸長され、相補的な鎖の新しい対を形成する。変性、プライマーアニーリング、およびポリメラーゼ伸長のステップは、高濃度の目的の所望のポリヌクレオチドの増幅されたセグメントを得るために、多数回繰り返すことができる(すなわち、変性、アニーリング、および伸長は、1つの「サイクル」を構成し、多数の「サイクル」があり得る)。目的の所望のポリヌクレオチドの増幅されたセグメント(アンプリコン)の長さは、互いに対するプライマーの相対位置によって決定され、したがって、この長さは制御可能なパラメータである。プロセスを繰り返すことにより、方法は、「ポリメラーゼ連鎖反応」(以下「PCR」)と呼ばれる。目的のポリヌクレオチドの所望の増幅されたセグメントは、混合物において(濃度に関して)主要な核酸配列になるので、「PCR増幅された」と言われる。本明細書で定義されるとき、複数の標的核酸分子を含む試料内の標的核酸分子は、PCRを介して増幅される。上記で議論される方法の変更において、標的核酸分子は、複数の異なるプライマー対、いくつかの場合では目的の標的核酸分子あたり1つ以上のプライマー対を使用してPCR増幅することができ、それにより多重PCR反応物を形成する。多重PCRを使用すると、試料から複数の目的の核酸分子を同時に増幅して、増幅された標的配列を形成することが可能である。いくつかの異なる方法論(例えば、バイオアナライザーまたはqPCRによる定量化、標識プローブでのハイブリダイゼーション、ビオチン化プライマーの組み込み、続いてアビジン酵素共役検出、dCTPまたはdATPなどの32P標識デオキシヌクレオチド三リン酸の増幅された標的配列への組み込み)によって増幅された標的配列を検出することも可能である。任意のオリゴヌクレオチド配列は、適切なプライマーのセットで増幅することができ、これによりゲノムDNA、cDNA、ホルマリン固定パラフィン包埋DNA、細針生検、および様々な他の供給源からの標的核酸分子の増幅を可能にする。特に、本明細書に開示される多重PCRプロセスによって作成された増幅標的配列は、それ自体が後続のPCR増幅または様々な下流アッセイもしくは操作のための効率的な基質である。
本明細書で定義されるとき、「多重増幅」とは、少なくとも1つの標的特異的プライマーを使用した試料内の2つ以上の標的配列の選択的かつ非ランダムな増幅を指す。いくつかの実施形態では、多重増幅は、標的配列のいくつかまたはすべてが単一の反応容器内で増幅されるように実施される。所定の多重増幅の「プレキシー」または「プレックス」は、一般的には、その単一の多重増幅中に増幅される異なる標的特異的配列の数を指す。いくつかの実施形態では、プレキシーは、約12プレックス、24プレックス、48プレックス、96プレックス、192プレックス、384プレックス、768プレックス、1536プレックス、3072プレックス、6144プレックス以上であり得る。
組成物
試料内の腫瘍の状態を判断するために、試料内のアクショナブルな腫瘍の腫瘍バイオマーカーを決定するための単一ストリーム多重次世代シーケンシングワークフローを開発した。本発明の腫瘍高精度アッセイ組成物および方法は、腫瘍免疫応答に関与するメカニズムを理解するためのバイオマーカースクリーニングのための特異的かつ堅牢な解決策を提供する。したがって、多重ライブラリー調製のための組成物が提供され、腫瘍の状態を評価するために様々な試料タイプの低レベルバイオマーカー標的を評価するために、手動または自動化された次世代シーケンシングテクノロジーおよびワークフローソリューション(例えば、Ion Torrent(商標)NGSワークフロー)と組み合わせて使用する。
したがって、試料中のアクショナブルな腫瘍バイオマーカーの単一ストリーム多重決定のための組成物が提供される。いくつかの実施形態では、組成物は、試料中の低レベル標的を検出するために複数の標的配列に向けられたプライマー対試薬の複数のセットからなり、標的遺伝子は、以下の機能:DNAホットスポット変異遺伝子、コピー数多型(CNV)遺伝子、遺伝子間融合遺伝子、および遺伝子内融合遺伝子からなる腫瘍応答遺伝子から選択される。いくつかの実施形態では、標的遺伝子は、表1の1つ以上の機能からなる腫瘍遺伝子から選択される。いくつかの実施形態では、標的遺伝子は、潜在的な診断、予後、候補治療レジメン、および/または有害事象の可能性を示す試料における腫瘍活性の変化を決定する、試料中の1つ以上のアクショナブルな標的遺伝子から選択される。全体として、本発明の提供された多重パネルを構成する遺伝子の様々な機能は、がん療法へのアクショナブルなアプローチを推奨する包括的な概念を提供する。
ある特定の実施形態では、標的腫瘍配列は、がんに関連する変異を有する配列に向けられる。いくつかの実施形態では、標的配列または増幅された標的配列は、頭頸部がん(例えば、HNSCC、鼻咽頭、唾液腺)、脳がん(例えば、膠芽腫、神経膠腫、神経膠肉腫、多形性膠芽腫、神経芽細胞腫)、乳がん(例えば、TNBC、トラスツズマブ耐性HER2+乳がん、ER+/HER-乳がん)、婦人科(例えば、子宮、卵巣がん、子宮頸がん、子宮内膜がん、ファロピアンがん)、結腸直腸がん、胆嚢がん、食道がん、胃腸がん、胃がん、膀胱がん、前立腺がん、精巣がん、尿路上皮がん、肝臓がん(例えば、肝細胞、HCC)、肺がん(例えば、非小細胞肺、小細胞肺)、腎臓(腎細胞)がん、膵臓がん(例、腺がん、腺管)、甲状腺がん、胆管がん、下垂体腫瘍、ウィルムス腫瘍、カポジ肉腫、有毛細胞がん、骨肉腫、胸腺がん、皮膚がん、黒色腫、心臓がん、口腔および喉頭がん、神経芽細胞腫、中皮腫、およびその他の固形腫瘍(胸腺、骨、軟部組織、口腔SCC、骨髄線維症、滑膜肉腫)からなる群から選択される1つ以上の固形腫瘍がんに関連する変異を有する配列に向けられる。一実施形態では、変異は、置換、挿入、逆位、点変異、欠失、ミスマッチ、および転座を含み得る。いくつかの実施形態では、標的配列または増幅された標的配列は、多発性骨髄腫、びまん性大細胞型B細胞リンパ腫(DLBCL)、リンパ腫、ホジキンリンパ腫、非ホジキンリンパ腫、濾胞性リンパ腫、白血病、急性骨髄性白血病(AML)、慢性リンパ性白血病(CLL)、骨髄異形成症候群からなる群から選択される1つ以上の血液(blood)/血液(hematologic)がんに関連する変異を有する配列に向けられる。一実施形態では、がんに関連する変異バイオマーカーは、表1に提供される遺伝子のうちの少なくとも1つに位置する。
いくつかの実施形態では、1つ以上の変異体腫瘍配列は、表1から選択される遺伝子のうちの少なくとも1つに位置する。いくつかの実施形態では、1つ以上の変異体配列は、がん活性を示す。
いくつかの実施形態では、1つ以上の変異体配列は、治療薬に応答する患者の可能性を示す。いくつかの実施形態では、1つ以上の変異体腫瘍バイオマーカー配列は、治療薬に応答しない患者の可能性を示す。ある特定の実施形態では、関連する治療薬は、キナーゼ阻害剤、細胞シグナル伝達阻害剤、チェックポイント遮断、T細胞療法、および治療用ワクチンを含むがこれらに限定されない腫瘍療法であり得る。
いくつかの実施形態では、標的配列または変異体標的配列は、がんに関連する変異に向けられる。いくつかの実施形態では、標的配列または変異体標的配列は、頭頸部がん(例えば、HNSCC、鼻咽頭、唾液腺)、脳がん(例えば、膠芽腫、神経膠腫、神経膠肉腫、多形性膠芽腫、神経芽細胞腫)、乳がん(例えば、TNBC、トラスツズマブ耐性HER2+乳がん、ER+/HER-乳がん)、婦人科(例えば、子宮、卵巣がん、子宮頸がん、子宮内膜がん、ファロピアンがん)、結腸直腸がん、胆嚢がん、食道がん、胃腸がん、胃がん、膀胱がん、前立腺がん、精巣がん、尿路上皮がん、肝臓がん(例えば、肝細胞、HCC)、肺がん(例えば、非小細胞肺、小細胞肺)、腎臓(腎細胞)がん、膵臓がん(例、腺がん、腺管)、甲状腺がん、胆管がん、下垂体腫瘍、ウィルムス腫瘍、カポジ肉腫、有毛細胞がん、骨肉腫、胸腺がん、皮膚がん、黒色腫、心臓がん、口腔および喉頭がん、神経芽細胞腫、中皮腫、およびその他の固形腫瘍(胸腺、骨、軟部組織、口腔SCC、骨髄線維症、滑膜肉腫)からなる群から選択される1つ以上の固形腫瘍がんに関連する変異に向けられる。一実施形態では、変異は、置換、挿入、逆位、点変異、欠失、ミスマッチ、および転座を含み得る。一実施形態では、変異は、コピー数の変動を含み得る。一実施形態では、変異は、生殖細胞変異または体細胞変異を含み得る。いくつかの実施形態では、標的配列または増幅された標的配列は、多発性骨髄腫、びまん性大細胞型B細胞リンパ腫(DLBCL)、リンパ腫、ホジキンリンパ腫、非ホジキンリンパ腫、濾胞性リンパ腫、白血病、急性骨髄性白血病(AML)、慢性リンパ性白血病(CLL)、骨髄異形成症候群からなる群から選択される1つ以上の血液/血液がんに関連する変異を有する配列に向けられる。
一実施形態では、がんに関連する変異は、表1に提供される遺伝子のうちの少なくとも1つに位置する。いくつかの実施形態では、変異体標的配列は、表1に提供される遺伝子のうちの1つ以上に向けられる。いくつかの実施形態では、変異体標的配列は、表1に提供される遺伝子の任意の1つ以上のアンプリコン配列を含む。いくつかの実施形態では、変異体標的配列は、表1に提供される遺伝子の任意の1つ以上のアンプリコン配列からなる。いくつかの実施形態では、変異体標的配列は、表1に提供される遺伝子の各々のアンプリコン配列を含む。
いくつかの実施形態では、組成物は、表Aに提供される腫瘍標的特異的プライマー対のうちのいずれか1つ以上を含む。いくつかの実施形態では、組成物は、表Aに提供される腫瘍標的特異的プライマー対のすべてを含む。いくつかの実施形態では、表Aに提供される腫瘍の標的特異的プライマー対のうちのいずれか1つ以上を使用して、本明細書に記載の方法によって、開示されるように、試料中に存在する標的配列を増幅することができる。
いくつかの実施形態では、表Aからの腫瘍標的特異的プライマーは、2、3、4、5、6、7、8、9、10、20、40、60、80、100、150、200、250、300、350、400、450、500、550、600、またはそれ以上の、標的特異的プライマー対を含む。いくつかの実施形態では、増幅された標的配列は、表Aに提供される標的特異的プライマーを使用して生成される増幅された標的配列のうちのいずれか1つ以上を含み得る。いくつかの実施形態では、がんに関連する標的特異的プライマーのうちの少なくとも1つは、配列番号1~1563から選択される標的特異的プライマーを使用して生成される少なくとも1つの核酸配列と少なくとも90%同一である。いくつかの実施形態では、腫瘍に関連する標的特異的プライマーのうちの少なくとも1つは、その全長にわたって、試料中の少なくとも1つの標的配列に対して相補的である。いくつかの実施形態では、免疫応答に関連する標的特異的プライマーのうちの少なくとも1つは、3’末端に切断不可能なヌクレオチドを含む。いくつかの実施形態では、3’末端の切断不可能なヌクレオチドは、末端の3’ヌクレオチドを含む。一実施形態では、増幅された標的配列は、がんに関連する変異を有する1つ以上の個々のエクソンに向けられる。一実施形態では、増幅された標的配列は、がんに関連する変異を有する個々のエクソンに向けられる。
方法
本発明の提供される方法は、下流分析に好適な高度に多重化されたライブラリーの迅速な調製を可能にする効率的な手順を含む。方法は、任意選択的に、1つ以上のユニークタグ配列の組み込みを可能にする。特定の方法は、非常に迅速なライブラリー生成を伝達する合理化された追加のみの手順を含む。
本明細書で提供されるのは、試料中の腫瘍活性を決定するための方法である。いくつかの実施形態では、この方法は、生物学的試料からの複数の腫瘍配列の多重増幅を含み、増幅は、試料の少なくとも一部を、増幅条件下で、複数の標的配列に向けられた複数のプライマー対試薬のセット、およびポリメラーゼと接触させ、それにより増幅された標的発現配列を生成することを含む。この方法は、試料中の1つ以上の標的配列の変異の存在を検出することをさらに含み、対照と比較した1つ以上の腫瘍マーカーの変異は、試料中の腫瘍活性の変化を決定する。いくつかの実施形態では、本方法の腫瘍配列は、以下の機能:DNAホットスポット変異遺伝子、コピー数多型(CNV)遺伝子、遺伝子間融合遺伝子、および遺伝子内融合遺伝子からなる腫瘍応答遺伝子から選択される。いくつかの実施形態では、標的遺伝子は、表1の1つ以上の機能からなる腫瘍遺伝子から選択される。いくつかの実施形態では、標的遺伝子は、潜在的な診断、予後、候補治療レジメン、および/または有害事象の可能性を示す試料における腫瘍活性の変化を決定する、試料中の1つ以上のアクショナブルな標的遺伝子から選択される。全体として、本発明の提供された多重パネルを構成する遺伝子の様々な機能は、がん療法へのアクショナブルなアプローチを推奨する包括的な概念を提供する。
ある特定の実施形態では、本方法の標的腫瘍配列は、がんに関連する変異を有する配列に向けられる。いくつかの実施形態では、標的配列または増幅された標的配列は、頭頸部がん(例えば、HNSCC、鼻咽頭、唾液腺)、脳がん(例えば、膠芽腫、神経膠腫、神経膠肉腫、多形性膠芽腫、神経芽細胞腫)、乳がん(例えば、TNBC、トラスツズマブ耐性HER2+乳がん、ER+/HER-乳がん)、婦人科(例えば、子宮、卵巣がん、子宮頸がん、子宮内膜がん、ファロピアンがん)、結腸直腸がん、胆嚢がん、食道がん、胃腸がん、胃がん、膀胱がん、前立腺がん、精巣がん、尿路上皮がん、肝臓がん(例えば、肝細胞、HCC)、肺がん(例えば、非小細胞肺、小細胞肺)、腎臓(腎細胞)がん、膵臓がん(例、腺がん、腺管)、甲状腺がん、胆管がん、下垂体腫瘍、ウィルムス腫瘍、カポジ肉腫、有毛細胞がん、骨肉腫、胸腺がん、皮膚がん、黒色腫、心臓がん、口腔および喉頭がん、神経芽細胞腫、中皮腫、およびその他の固形腫瘍(胸腺、骨、軟部組織、口腔SCC、骨髄線維症、滑膜肉腫)からなる群から選択される1つ以上の固形腫瘍がんに関連する変異を有する配列に向けられる。一実施形態では、変異は、置換、挿入、逆位、点変異、欠失、ミスマッチ、および転座を含み得る。いくつかの実施形態では、標的配列または増幅された標的配列は、多発性骨髄腫、びまん性大細胞型B細胞リンパ腫(DLBCL)、リンパ腫、ホジキンリンパ腫、非ホジキンリンパ腫、濾胞性リンパ腫、白血病、急性骨髄性白血病(AML)、慢性リンパ性白血病(CLL)、骨髄異形成症候群からなる群から選択される1つ以上の血液/血液がんに関連する変異を有する配列に向けられる。一実施形態では、がんに関連する変異バイオマーカーは、表1に提供される遺伝子のうちの少なくとも1つに位置する。
いくつかの実施形態では、本方法の1つ以上の変異体腫瘍配列は、表1から選択される遺伝子のうちの少なくとも1つに位置する。いくつかの実施形態では、1つ以上の変異体配列は、がん活性を示す。
いくつかの実施形態では、本方法の1つ以上の変異体配列は、治療薬に応答する患者の可能性を示す。いくつかの実施形態では、1つ以上の変異体腫瘍バイオマーカー配列は、治療薬に応答しない患者の可能性を示す。ある特定の実施形態では、関連する治療薬は、キナーゼ阻害剤、細胞シグナル伝達阻害剤、チェックポイント遮断、T細胞療法、および治療用ワクチンを含むがこれらに限定されない腫瘍療法であり得る。
いくつかの実施形態では、本方法の標的配列または変異体標的配列は、がんに関連する変異に向けられる。いくつかの実施形態では、本方法の標的配列または変異体標的配列は、頭頸部がん(例えば、HNSCC、鼻咽頭、唾液腺)、脳がん(例えば、膠芽腫、神経膠腫、神経膠肉腫、多形性膠芽腫、神経芽細胞腫)、乳がん(例えば、TNBC、トラスツズマブ耐性HER2+乳がん、ER+/HER-乳がん)、婦人科(例えば、子宮、卵巣がん、子宮頸がん、子宮内膜がん、ファロピアンがん)、結腸直腸がん、胆嚢がん、食道がん、胃腸がん、胃がん、膀胱がん、前立腺がん、精巣がん、尿路上皮がん、肝臓がん(例えば、肝細胞、HCC)、肺がん(例えば、非小細胞肺、小細胞肺)、腎臓(腎細胞)がん、膵臓がん(例、腺がん、腺管)、甲状腺がん、胆管がん、下垂体腫瘍、ウィルムス腫瘍、カポジ肉腫、有毛細胞がん、骨肉腫、胸腺がん、皮膚がん、黒色腫、心臓がん、口腔および喉頭がん、神経芽細胞腫、中皮腫、およびその他の固形腫瘍(胸腺、骨、軟部組織、口腔SCC、骨髄線維症、滑膜肉腫)からなる群から選択される1つ以上の固形腫瘍がんに関連する変異に向けられる。一実施形態では、変異は、置換、挿入、逆位、点変異、欠失、ミスマッチ、および転座を含み得る。一実施形態では、変異は、コピー数の変動を含み得る。一実施形態では、変異は、生殖細胞変異または体細胞変異を含み得る。いくつかの実施形態では、標的配列または増幅された標的配列は、多発性骨髄腫、びまん性大細胞型B細胞リンパ腫(DLBCL)、リンパ腫、ホジキンリンパ腫、非ホジキンリンパ腫、濾胞性リンパ腫、白血病、急性骨髄性白血病(AML)、慢性リンパ性白血病(CLL)、骨髄異形成症候群からなる群から選択される1つ以上の血液/血液がんに関連する変異を有する配列に向けられる。
一実施形態では、がんに関連する変異は、表1に提供される遺伝子のうちの少なくとも1つに位置する。いくつかの実施形態では、変異体標的配列は、表1に提供される遺伝子のうちの1つ以上に向けられる。いくつかの実施形態では、変異体標的配列は、表1に提供される遺伝子の任意の1つ以上のアンプリコン配列を含む。いくつかの実施形態では、変異体標的配列は、表1に提供される遺伝子の任意の1つ以上のアンプリコン配列からなる。いくつかの実施形態では、変異体標的配列は、表1に提供される遺伝子の各々のアンプリコン配列を含む。
いくつかの実施形態では、方法は、表Aに提供される腫瘍標的特異的プライマー対のうちのいずれか1つ以上の使用を含む。いくつかの実施形態では、方法は、表Aに提供される腫瘍標的特異的プライマー対のすべての使用を含む。いくつかの実施形態では、表Aに提供される腫瘍の標的特異的プライマー対のうちのいずれか1つ以上の使用は、本明細書に記載の方法によって、開示されるように、試料中に存在する標的配列を増幅するのに使用することができる。
いくつかの実施形態では、方法は、2、3、4、5、6、7、8、9、10、20、40、60、80、100、150、200、250、300、350、400、450、500、550、600、またはそれ以上の、標的特異的プライマー対を含む表Aからの腫瘍標的特異的プライマーの使用を含む。いくつかの実施形態では、増幅された標的配列の検出を含む方法は、表Aに提供される標的特異的プライマーを使用して生成される増幅された標的配列のうちのいずれか1つ以上を含み得る。いくつかの実施形態では、方法は、配列番号1~1563から選択される標的特異的プライマーを使用して生成される少なくとも1つの核酸配列と少なくとも90%同一であるがんに関連する標的特異的プライマーのうちの少なくとも1つの使用を含む。いくつかの実施形態では、腫瘍に関連する標的特異的プライマーのうちの少なくとも1つは、その全長にわたって、試料中の少なくとも1つの標的配列に対して相補的である。いくつかの実施形態では、免疫応答に関連する標的特異的プライマーのうちの少なくとも1つは、3’末端に切断不可能なヌクレオチドを含む。いくつかの実施形態では、3’末端の切断不可能なヌクレオチドは、末端の3’ヌクレオチドを含む。一実施形態では、増幅された標的配列は、がんに関連する変異を有する1つ以上の個々のエクソンに向けられる。一実施形態では、本方法のものである増幅された標的配列は、がんに関連する変異を有する個々のエクソンに向けられる。
いくつかの実施形態では、方法は、検出および任意選択的に、臨床的にアクショナブルなマーカーの同定を含む。本明細書で定義されるように、「臨床的にアクショナブルなマーカー」という用語は、当業者によってがんの治療の予後と既知であるか、またはそれと関連付けられ得る臨床的にアクショナブルな変異および/または臨床的にアクショナブルな発現パターンを含む。一実施形態では、がんの治療の予後は、薬物、薬物の組み合わせ、または治療計画に対するがんの応答性または非応答性に関連する変異および/または発現パターンの同定を含む。一実施形態では、方法は、がんの発症、進行、または寛解に関連する、または相関する核酸分子の集団からの複数の標的配列の増幅を含む。いくつかの実施形態では、提供される方法は、試料中の1つを超える標的配列の選択的増幅、ならびにがんに関連する変異の検出および/または同定を含む。いくつかの実施形態では、増幅された標的配列は、表1に提供される遺伝子の2つ以上のヌクレオチド配列を含む。いくつかの実施形態では、増幅された標的配列は、表Aに提供される標的特異的プライマーを使用して生成された任意の1つ以上の増幅された標的配列を含み得る。一実施形態では、増幅された標的配列は、10、50、100、150、200、250、300、350、400、450、500、550、600またはそれ以上の表1からの遺伝子のアンプリコンを含む。
本発明の一態様では、標的核酸配列のライブラリーを調製するための方法が提供される。いくつかの実施形態では、方法は、標的核酸が第1の増幅を受ける条件下で、核酸試料を試料における1つ以上の標的核酸配列の増幅が可能な複数のアダプターと接触させることと、得られる第1の増幅生成物を消化して、得られるプライマーダイマーを低減または排除し、部分的に消化された標的アンプリコンを調製し、それによりギャップのある二本鎖アンプリコンを生成することと、を含む。方法は、部分的に消化された標的アンプリコンを修復することと、次いで修復された標的アンプリコンを第2の増幅においてユニバーサルプライマーを使用して増幅し、それにより標的核酸配列のライブラリーを生成することと、をさらに含む。本明細書の方法において使用される複数のアダプターの各々は、ユニバーサルハンドル配列と、標的核酸配列と、切断可能な部分と、任意選択的に1つ以上のタグ配列とを含む。少なくとも2個および最大10万個の標的特異的アダプター対が提供される方法に含まれ、各アダプターの標的核酸配列は、少なくとも1つの切断可能な部分を含み、ユニバーサルハンドル配列は、切断可能な部分を含まない。任意のタグ配列が少なくとも1つのアダプターに含まれるいくつかの実施形態では、切断可能な部分は、タグ配列のいずれかの末端に隣接するアダプター配列に含まれる。
本発明の一態様では、標的核酸配列のタグ付けされたライブラリーを調製するための方法が提供される。いくつかの実施形態では、方法は、標的核酸が第1の増幅を受ける条件下で、核酸試料を試料における1つ以上の標的核酸配列の増幅が可能な複数のアダプターと接触させることと、得られる第1の増幅生成物を消化して、得られるプライマーダイマーを低減または排除し、部分的に消化された標的アンプリコンを調製し、それによりギャップのある二本鎖アンプリコンを生成することと、を含む。方法は、部分的に消化された標的アンプリコンを修復することと、次いで修復された標的アンプリコンを第2の増幅においてユニバーサルプライマーを使用して増幅し、それにより標的核酸配列のライブラリーを生成することと、をさらに含む。本明細書の方法において使用される複数のアダプターの各々は、ユニバーサルハンドル配列と、標的核酸配列と、切断可能な部分と、1つ以上のタグ配列とを含む。少なくとも2個および最大10万個の標的特異的アダプター対が提供される方法に含まれ、各アダプターの標的核酸配列は、少なくとも1つの切断可能な部分を含み、ユニバーサルハンドル配列は、切断可能な部分を含まず、切断可能な部分は、タグ配列のいずれかの末端に隣接して含まれる。
ある特定の実施形態では、各ユニバーサル配列の比較可能な最高最低融解温度は、アダプター中に存在する各標的核酸配列および各タグ配列の比較可能な最高最低融解温度よりも高い。
いくつかの実施形態では、アダプターの各々は、本明細書でさらに記載されるユニークタグ配列を含み、各々が、各アダプターにおいてタグ配列のいずれかの末端に隣接する切断可能な基をさらに含む。ユニークタグ配列が使用されるいくつかの実施形態では、生成された各標的特異的アンプリコン配列は、少なくとも1個の異なる配列および最大107個の異なる配列を含む。ある特定の実施形態では、複数のアダプターの各標的特異的対は、異なるタグ配列を含む最大16,777,216個の異なるアダプターの組み合わせを含む。
いくつかの実施形態では、方法は、複数のギャップのあるポリヌクレオチド生成物を消化試薬および修復試薬と同時に接触させることを含む。いくつかの実施形態では、方法は、複数のギャップのあるポリヌクレオチド生成物を消化試薬、次いで修復試薬と順次に接触させることを含む。
本明細書で提供される方法において有用な消化試薬は、アダプター中に存在する切断可能な部位を切断することができる任意の試薬を含み、いくつかの実施形態では、これらに限定されないが、ウラシルDNAグリコシラーゼ(UDG)、アプリンエンドヌクレアーゼ(例えば、APE1)、RecJf、ホルムアミドピリミジン[fapy]-DNAグリコシラーゼ(fpg)、NthエンドヌクレアーゼIII、エンドヌクレアーゼVIII、ポリヌクレオチドキナーゼ(PNK)、Taq DNAポリメラーゼ、DNAポリメラーゼIおよび/またはヒトDNAポリメラーゼベータのうちの1つまたは組み合わせを含む。
本明細書で提供される方法において有用な修復試薬は、ギャップのあるアンプリコンの修復が可能な任意の試薬を含み、いくつかの実施形態では、これらに限定されないが、Phusion DNAポリメラーゼ、Phusion U DNAポリメラーゼ、SuperFi DNAポリメラーゼ、Taq DNAポリメラーゼ、ヒトDNAポリメラーゼベータ、T4 DNAポリメラーゼおよび/またはT7 DNAポリメラーゼ、SuperFiU DNAポリメラーゼ、E.coli DNAリガーゼ、T3 DNAリガーゼ、T4 DNAリガーゼ、T7 DNAリガーゼ、Taq DNAリガーゼ、および/または9°N DNAリガーゼのうちのいずれか1つまたは組み合わせを含む。
よって、ある特定の実施形態では、消化および修復試薬は、ウラシルDNAグリコシラーゼ(UDG)、アプリンエンドヌクレアーゼ(例えば、APE1)、RecJf、ホルムアミドピリミジン[fapy]-DNAグリコシラーゼ(fpg)、NthエンドヌクレアーゼIII、エンドヌクレアーゼVIII、ポリヌクレオチドキナーゼ(PNK)、Taq DNAポリメラーゼ、DNAポリメラーゼIおよび/またはヒトDNAポリメラーゼベータのうちの1つまたは組み合わせ、ならびにPhusion DNAポリメラーゼ、Phusion U DNAポリメラーゼ、SuperFi DNAポリメラーゼ、Taq DNAポリメラーゼ、ヒトDNAポリメラーゼベータ、T4 DNAポリメラーゼおよび/またはT7 DNAポリメラーゼ、SuperFiU DNAポリメラーゼ、E.coli DNAリガーゼ、T3 DNAリガーゼ、T4 DNAリガーゼ、T7 DNAリガーゼ、Taq DNAリガーゼ、および/または9°N DNAリガーゼのうちのいずれか1つまたは組み合わせのうちのいずれか1つまたは組み合わせを含む。ある特定の実施形態では、消化および修復試薬は、ウラシルDNAグリコシラーゼ(UDG)、アプリンエンドヌクレアーゼ(例えば、APE1)、Taq DNAポリメラーゼ、Phusion U DNAポリメラーゼ、SuperFiU DNAポリメラーゼ、T7 DNAリガーゼのうちのいずれか1つまたは組み合わせを含む。ある特定の実施形態では、消化および修復試薬は、ウラシルDNAグリコシラーゼ(UDG)、ホルムアミドピリミジン[fapy]-DNAグリコシラーゼ(fpg)、Phusion U DNAポリメラーゼ、Taq DNAポリメラーゼ、SuperFiU DNAポリメラーゼ、T4 PNKおよびT7 DNAリガーゼのうちのいずれか1つまたは組み合わせを含む。
いくつかの実施形態では、方法は、単一ステップで行われる消化および修復ステップを含む。他の実施形態では、方法は、異なる温度で時間的に離れて行われるステップの消化および修復を含む。
いくつかの実施形態では、本発明の方法が行われ、方法ステップのうちの1つ以上は、手動モードで行われる。特定の実施形態では、本発明の方法が行われ、方法ステップの各々は、手動で行われる。いくつかの実施形態では、本発明の方法が行われ、方法ステップの1つ以上は、自動モードで行われる。特定の実施形態では、本発明の方法が行われ、方法ステップの各々は、自動化される。いくつかの実施形態では、本発明の方法が行われ、方法ステップのうちの1つ以上は、手動および自動モードの組み合わせで行われる。
いくつかの実施形態では、本発明の方法は、少なくとも1つの精製ステップを含む。例えば、ある特定の実施形態では、精製ステップは、修復されたアンプリコンの第2の増幅後にのみ行われる。いくつかの実施形態では、2つの精製ステップが利用され、第1の精製ステップは、消化および修復後に行われ、第2の精製ステップは、修復されたアンプリコンの第2の増幅後に行われる。
いくつかの実施形態では、精製ステップは、固相付着反応、固相固定化反応、またはゲル電気泳動を実施することを含む。ある特定の実施形態では、精製ステップは、固相可逆的固定化(SPRI)ビーズを使用して行われる分離を含む。特定の実施形態では、精製ステップは、SPRIビーズを使用して行われる分離を含み、SPRIビーズは、常磁性ビーズを含む。
いくつかの実施形態では、方法は、標的核酸が第1の増幅を受ける条件下で、核酸試料を試料における1つ以上の標的核酸配列の増幅が可能な複数のアダプターと接触させることと、得られる第1の増幅生成物を消化して、得られるプライマーダイマーを低減または排除し、部分的に消化された標的アンプリコンを調製し、それによりギャップのある二本鎖アンプリコンを生成することと、を含む。方法は、部分的に消化された標的アンプリコンを修復し、次いで修復されたアンプリコンを精製することと、次いで修復された標的アンプリコンを第2の増幅においてユニバーサルプライマーを使用して増幅し、それにより標的核酸配列のライブラリーを生成することと、次いで得られるライブラリーを精製することと、をさらに含む。本明細書の方法において使用される複数のアダプターの各々は、ユニバーサルハンドル配列と、標的核酸配列と、切断可能な部分と、任意選択的に1つ以上のタグ配列とを含む。少なくとも2個および最大10万個の標的特異的アダプター対が提供される方法に含まれ、各アダプターの標的核酸配列は、少なくとも1つの切断可能な部分を含み、ユニバーサルハンドル配列は、切断可能な部分を含まない。任意のタグ配列が少なくとも1つのアダプターに含まれるいくつかの実施形態では、切断可能な部分は、タグ配列のいずれかの末端に隣接するアダプター配列に含まれる。
いくつかの実施形態では、方法は、標的核酸が第1の増幅を受ける条件下で、核酸試料を試料における1つ以上の標的核酸配列の増幅が可能な複数のアダプターと接触させることと、得られる第1の増幅生成物を消化して、得られるプライマーダイマーを低減または排除し、部分的に消化された標的アンプリコンを調製し、それによりギャップのある二本鎖アンプリコンを生成することと、を含む。方法は、部分的に消化された標的アンプリコンを修復し、修復されたアンプリコンを精製することと、次いで修復された標的アンプリコンを第2の増幅においてユニバーサルプライマーを使用して増幅し、それにより標的核酸配列のライブラリーを生成することと、次いで得られるライブラリーを精製することと、をさらに含む。本明細書の方法において使用される複数のアダプターの各々は、ユニバーサルハンドル配列と、標的核酸配列と、切断な可能部分と、1つ以上のタグ配列とを含む。少なくとも2個および最大10万個の標的特異的アダプター対が提供される方法に含まれ、各アダプターの標的核酸配列は、少なくとも1つの切断可能な部分を含み、ユニバーサルハンドル配列は、切断可能な部分を含まず、切断可能な部分は、タグ配列の隣接するいずれかの末端に含まれる。
いくつかの実施形態では、方法は、標的核酸が第1の増幅を受ける条件下で、核酸試料を試料における1つ以上の標的核酸配列の増幅が可能な複数のアダプターと接触させることと、得られる第1の増幅生成物を消化して、得られるプライマーダイマーを低減または排除し、部分的に消化された標的アンプリコンを調製し、それによりギャップのある二本鎖アンプリコンを生成することと、を含む。方法は、部分的に消化された標的アンプリコンを修復し、次いで修復されたアンプリコンを精製することと、次いで修復された標的アンプリコンを第2の増幅においてユニバーサルプライマーを使用して増幅し、それにより標的核酸配列のライブラリーを生成することと、次いで得られるライブラリーを精製することと、をさらに含む。本明細書の方法において使用される複数のアダプターの各々は、ユニバーサルハンドル配列と、標的核酸配列と、切断可能な部分と、任意選択的に1つ以上のタグ配列とを含む。少なくとも2個および最大10万個の標的特異的アダプター対が提供される方法に含まれ、各アダプターの標的核酸配列は、少なくとも1つの切断可能な部分を含み、ユニバーサルハンドル配列は、切断可能な部分を含まない。任意のタグ配列が少なくとも1つのアダプターに含まれるいくつかの実施形態では、切断可能な部分は、タグ配列のいずれかの末端に隣接するアダプター配列に含まれる。いくつかの実施形態では、消化および修復試薬は、ウラシルDNAグリコシラーゼ(UDG)、アプリンエンドヌクレアーゼ(例えば、APE1)、RecJf、ホルムアミドピリミジン[fapy]-DNAグリコシラーゼ(fpg)、NthエンドヌクレアーゼIII、エンドヌクレアーゼVIII、ポリヌクレオチドキナーゼ(PNK)、Taq DNAポリメラーゼ、DNAポリメラーゼIおよび/またはヒトDNAポリメラーゼベータのうちの1つまたは組み合わせ、ならびにPhusion DNAポリメラーゼ、Phusion U DNAポリメラーゼ、SuperFi DNAポリメラーゼ、Taq DNAポリメラーゼ、ヒトDNAポリメラーゼベータ、T4 DNAポリメラーゼおよび/またはT7 DNAポリメラーゼ、SuperFiU DNAポリメラーゼ、E.coli DNAリガーゼ、T3 DNAリガーゼ、T4 DNAリガーゼ、T7 DNAリガーゼ、Taq DNAリガーゼ、および/または9°N DNAリガーゼのうちのいずれか1つまたは組み合わせのうちのいずれか1つまたは組み合わせを含む。ある特定の実施形態では、消化および修復試薬は、ウラシルDNAグリコシラーゼ(UDG)、アプリンエンドヌクレアーゼ(例えば、APE1)、Taq DNAポリメラーゼ、Phusion U DNAポリメラーゼ、SuperFiU DNAポリメラーゼ、T7 DNAリガーゼのうちのいずれか1つまたは組み合わせを含む。ある特定の実施形態では、消化および修復試薬は、ウラシルDNAグリコシラーゼ(UDG)、ホルムアミドピリミジン[fapy]-DNAグリコシラーゼ(fpg)、Phusion U DNAポリメラーゼ、Taq DNAポリメラーゼ、SuperFiU DNAポリメラーゼ、T4 PNKおよびT7 DNAリガーゼのうちのいずれか1つまたは組み合わせを含む。
いくつかの実施形態では、方法は、標的核酸が第1の増幅を受ける条件下で、核酸試料を試料における1つ以上の標的核酸配列の増幅が可能な複数のアダプターと接触させることと、得られる第1の増幅生成物を消化して、得られるプライマーダイマーを低減または排除し、部分的に消化された標的アンプリコンを調製し、それによりギャップのある二本鎖アンプリコンを生成することと、を含む。方法は、部分的に消化された標的アンプリコンを修復し、修復されたアンプリコンを精製することと、次いで修復された標的アンプリコンを第2の増幅においてユニバーサルプライマーを使用して増幅し、それにより標的核酸配列のライブラリーを生成することと、次いで得られるライブラリーを精製することと、をさらに含む。本明細書の方法において使用される複数のアダプターの各々は、ユニバーサルハンドル配列と、標的核酸配列と、切断な可能部分と、1つ以上のタグ配列とを含む。少なくとも2個および最大10万個の標的特異的アダプター対が提供される方法に含まれ、各アダプターの標的核酸配列は、少なくとも1つの切断可能な部分を含み、ユニバーサルハンドル配列は、切断可能な部分を含まず、切断可能な部分は、タグ配列の隣接するいずれかの末端に含まれる。いくつかの実施形態では、消化および修復試薬は、ウラシルDNAグリコシラーゼ(UDG)、アプリンエンドヌクレアーゼ(例えば、APE1)、RecJf、ホルムアミドピリミジン[fapy]-DNAグリコシラーゼ(fpg)、NthエンドヌクレアーゼIII、エンドヌクレアーゼVIII、ポリヌクレオチドキナーゼ(PNK)、Taq DNAポリメラーゼ、DNAポリメラーゼIおよび/またはヒトDNAポリメラーゼベータのうちの1つまたは組み合わせ、ならびにPhusion DNAポリメラーゼ、Phusion U DNAポリメラーゼ、SuperFi DNAポリメラーゼ、Taq DNAポリメラーゼ、ヒトDNAポリメラーゼベータ、T4 DNAポリメラーゼおよび/またはT7 DNAポリメラーゼ、SuperFiU DNAポリメラーゼ、E.coli DNAリガーゼ、T3 DNAリガーゼ、T4 DNAリガーゼ、T7 DNAリガーゼ、Taq DNAリガーゼ、および/または9°N DNAリガーゼのうちのいずれか1つまたは組み合わせのうちのいずれか1つまたは組み合わせを含む。ある特定の実施形態では、消化および修復試薬は、ウラシルDNAグリコシラーゼ(UDG)、アプリンエンドヌクレアーゼ(例えば、APE1)、Taq DNAポリメラーゼ、Phusion U DNAポリメラーゼ、SuperFiU DNAポリメラーゼ、T7 DNAリガーゼのうちのいずれか1つまたは組み合わせを含む。ある特定の実施形態では、消化および修復試薬は、ウラシルDNAグリコシラーゼ(UDG)、ホルムアミドピリミジン[fapy]-DNAグリコシラーゼ(fpg)、Phusion U DNAポリメラーゼ、Taq DNAポリメラーゼ、SuperFiU DNAポリメラーゼ、T4 PNKおよびT7 DNAリガーゼのうちのいずれか1つまたは組み合わせを含む。
ある特定の実施形態では、本発明の方法は、単一の追加のみのワークフロー反応において行われ、高度に多重化された標的化ライブラリーの迅速な生成を可能にする。例えば、一実施形態では、標的核酸配列のライブラリーを調製するための方法は、標的核酸が第1の増幅を受ける条件下で、核酸試料を試料における1つ以上の標的核酸配列の増幅が可能な複数のアダプターと接触させることと、得られる第1の増幅生成物を消化して、得られるプライマーダイマーを低減または排除し、部分的に消化された標的アンプリコンを調製し、それによりギャップのある二本鎖アンプリコンを生成することと、を含む。方法は、部分的に消化された標的アンプリコンを修復することと、次いで修復された標的アンプリコンを第2の増幅においてユニバーサルプライマーを使用して増幅し、それにより標的核酸配列のライブラリーを生成し、得られるライブラリーを精製することと、をさらに含む。ある特定の実施形態では、精製は、第2の増幅後のライブラリーの生成に続いて行われる単一または繰り返しの分離ステップを含み、他の方法ステップは、ステップで生成された生成物のいずれかの一部分(アリコート)の別の反応容器への必要な移送なしに、単一の反応容器で行われる。本明細書の方法において使用される複数のアダプターの各々は、ユニバーサルハンドル配列と、標的核酸配列と、切断可能な部分と、任意選択的に1つ以上のタグ配列とを含む。少なくとも2個および最大10万個の標的特異的アダプター対が提供される方法に含まれ、各アダプターの標的核酸配列は、少なくとも1つの切断可能な部分を含み、ユニバーサルハンドル配列は、切断可能な部分を含まない。任意のタグ配列が少なくとも1つのアダプターに含まれるいくつかの実施形態では、切断可能な部分は、タグ配列のいずれかの末端に隣接するアダプター配列に含まれる。
別の実施形態では、標的核酸が第1の増幅を受ける条件下で、核酸試料を試料における1つ以上の標的核酸配列の増幅が可能な複数のアダプターと接触させることと、得られる第1の増幅生成物を消化して、得られるプライマーダイマーを低減または排除し、部分的に消化された標的アンプリコンを調製し、それによりギャップのある二本鎖アンプリコンを生成することと、を含む、標的核酸配列のタグ付けされたライブラリーを調製するための方法が提供される。方法は、部分的に消化された標的アンプリコンを修復することと、次いで修復された標的アンプリコンを第2の増幅においてユニバーサルプライマーを使用して増幅し、それにより標的核酸配列のライブラリーを生成し、得られるライブラリーを精製することと、をさらに含む。ある特定の実施形態では、精製は、単一または繰り返しの分離ステップを含み、他の方法ステップは、ステップで生成された生成物のいずれかの一部分の別の反応容器への必要な移送なしに、単一の反応容器で任意選択的に行われる。本明細書の方法において使用される複数のアダプターの各々は、ユニバーサルハンドル配列と、標的核酸配列と、切断可能な部分と、1つ以上のタグ配列とを含む。少なくとも2個および最大10万個の標的特異的アダプター対が提供される方法に含まれ、各アダプターの標的核酸配列は、少なくとも1つの切断可能な部分を含み、ユニバーサルハンドル配列は、切断可能な部分を含まず、切断可能な部分は、タグ配列のいずれかの末端に隣接して含まれる。
一実施形態では、標的核酸配列のライブラリーを調製するための方法は、標的核酸が第1の増幅を受ける条件下で、核酸試料を試料における1つ以上の標的核酸配列の増幅が可能な複数のアダプターと接触させることと、得られる第1の増幅生成物を消化して、得られるプライマーダイマーを低減または排除し、部分的に消化された標的アンプリコンを調製し、それによりギャップのある二本鎖アンプリコンを生成することと、を含む。方法は、部分的に消化された標的アンプリコンを修復することと、次いで修復された標的アンプリコンを第2の増幅においてユニバーサルプライマーを使用して増幅し、それにより標的核酸配列のライブラリーを生成し、得られるライブラリーを精製することと、をさらに含む。
特定の実施形態では、消化試薬は、ウラシルDNAグリコシラーゼ(UDG)、APエンドヌクレアーゼ(APE1)、RecJf、ホルムアミドピリミジン[fapy]-DNAグリコシラーゼ(fpg)、NthエンドヌクレアーゼIII、エンドヌクレアーゼVIII、ポリヌクレオチドキナーゼ、Taq DNAポリメラーゼ、DNAポリメラーゼIおよび/またはヒトDNAポリメラーゼベータのうちのいずれか1つまたはいずれかの組み合わせを含む。ある特定の実施形態では、消化試薬は、ウラシルDNAグリコシラーゼ(UDG)、APエンドヌクレアーゼ(APE1)、RecJf、ホルムアミドピリミジン[fapy]-DNAグリコシラーゼ(fpg)、NthエンドヌクレアーゼIII、エンドヌクレアーゼVIII、ポリヌクレオチドキナーゼ、Taq DNAポリメラーゼ、DNAポリメラーゼIおよび/またはヒトDNAポリメラーゼベータのうちのいずれか1つまたはいずれかの組み合わせを含み、消化試薬は、ホルムアミドピリミジン[fapy]-DNAグリコシラーゼ(fpg)を欠いている。
いくつかの実施形態では、消化試薬は、5’~3’方向に分解する一本鎖DNAエキソヌクレアーゼを含む。いくつかの実施形態では、切断試薬は、脱塩基部位を分解する一本鎖DNAエキソヌクレアーゼを含む。本明細書のいくつかの実施形態では、消化試薬は、RecJfエキソヌクレアーゼを含む。特定の実施形態では、消化試薬は、APE1およびRecJfを含み、切断試薬は、アプリン/アピリミジンエンドヌクレアーゼを含む。ある特定の実施形態では、消化試薬は、APエンドヌクレアーゼ(APE1)を含む。
いくつかの実施形態では、修復試薬は、少なくとも1つのDNAポリメラーゼを含み、ギャップ充填試薬は、Phusion DNAポリメラーゼ、Phusion U DNAポリメラーゼ、SuperFi DNAポリメラーゼ、Taq DNAポリメラーゼ、ヒトDNAポリメラーゼベータ、T4 DNAポリメラーゼおよび/またはT7 DNAポリメラーゼおよび/またはSuperFi U DNAポリメラーゼのうちのいずれか1つまたはいずれかの組み合わせを含む。いくつかの実施形態では、修復試薬は、複数のヌクレオチドをさらに含む。
いくつかの実施形態では、修復試薬は、ATP依存性またはATP非依存性リガーゼを含み、修復試薬は、E.coli DNAリガーゼ、T3 DNAリガーゼ、T4 DNAリガーゼ、T7 DNAリガーゼ、Taq DNAリガーゼ、9°NDNAリガーゼのうちのいずれか1つまたはいずれかの組み合わせを含む。
ある特定の実施形態では、消化および修復試薬は、ウラシルDNAグリコシラーゼ(UDG)、アプリンエンドヌクレアーゼ(例えば、APE1)、RecJf、ホルムアミドピリミジン[fapy]-DNAグリコシラーゼ(fpg)、NthエンドヌクレアーゼIII、エンドヌクレアーゼVIII、ポリヌクレオチドキナーゼ(PNK)、Taq DNAポリメラーゼ、DNAポリメラーゼIおよび/またはヒトDNAポリメラーゼベータのうちの1つまたは組み合わせ、ならびにPhusion DNAポリメラーゼ、Phusion U DNAポリメラーゼ、SuperFi DNAポリメラーゼ、Taq DNAポリメラーゼ、ヒトDNAポリメラーゼベータ、T4 DNAポリメラーゼおよび/またはT7 DNAポリメラーゼ、SuperFiU DNAポリメラーゼ、E.coli DNAリガーゼ、T3 DNAリガーゼ、T4 DNAリガーゼ、T7 DNAリガーゼ、Taq DNAリガーゼ、および/または9°N DNAリガーゼのうちのいずれか1つまたは組み合わせのうちのいずれか1つまたは組み合わせを含む。特定の実施形態では、消化および修復試薬は、ウラシルDNAグリコシラーゼ(UDG)、アプリンエンドヌクレアーゼ(例えば、APE1)、Taq DNAポリメラーゼ、Phusion U DNAポリメラーゼ、SuperFiU DNAポリメラーゼ、T7 DNAリガーゼのうちのいずれか1つまたは組み合わせを含む。ある特定の実施形態では、精製は、第2の増幅後のライブラリーの生成に続いて行われる単一または繰り返しの分離ステップを含み、方法ステップは、ステップで生成された生成物のいずれかの一部分の別の反応容器への必要な移送なしに、第1の精製まで単一の反応容器で行われる。本明細書の方法において使用される複数のアダプターの各々は、ユニバーサルハンドル配列と、標的核酸配列と、切断可能な部分と、任意選択的に1つ以上のタグ配列とを含む。少なくとも2個および最大10万個の標的特異的アダプター対が提供される方法に含まれ、各アダプターの標的核酸配列は、少なくとも1つの切断可能な部分を含み、ユニバーサルハンドル配列は、切断可能な部分を含まない。任意のタグ配列が少なくとも1つのアダプターに含まれるいくつかの実施形態では、切断可能な部分は、タグ配列のいずれかの末端に隣接するアダプター配列に含まれる。
別の実施形態では、標的核酸が第1の増幅を受ける条件下で、核酸試料を試料における1つ以上の標的核酸配列の増幅が可能な複数のアダプターと接触させることと、得られる第1の増幅生成物を消化して、得られるプライマーダイマーを低減または排除し、部分的に消化された標的アンプリコンを調製し、それによりギャップのある二本鎖アンプリコンを生成することと、を含む、標的核酸配列のタグ付けされたライブラリーを調製するための方法が提供される。方法は、部分的に消化された標的アンプリコンを修復することと、次いで修復された標的アンプリコンを第2の増幅においてユニバーサルプライマーを使用して増幅し、それにより標的核酸配列のライブラリーを生成し、得られるライブラリーを精製することと、をさらに含む。ある特定の実施形態では、消化および修復試薬は、ウラシルDNAグリコシラーゼ(UDG)、アプリンエンドヌクレアーゼ(例えば、APE1)、RecJf、ホルムアミドピリミジン[fapy]-DNAグリコシラーゼ(fpg)、NthエンドヌクレアーゼIII、エンドヌクレアーゼVIII、ポリヌクレオチドキナーゼ(PNK)、Taq DNAポリメラーゼ、DNAポリメラーゼIおよび/またはヒトDNAポリメラーゼベータのうちの1つまたは組み合わせ、ならびにPhusion DNAポリメラーゼ、Phusion U DNAポリメラーゼ、SuperFi DNAポリメラーゼ、Taq DNAポリメラーゼ、ヒトDNAポリメラーゼベータ、T4 DNAポリメラーゼおよび/またはT7 DNAポリメラーゼ、SuperFiU DNAポリメラーゼ、E.coli DNAリガーゼ、T3 DNAリガーゼ、T4 DNAリガーゼ、T7 DNAリガーゼ、Taq DNAリガーゼ、および/または9°N DNAリガーゼのうちのいずれか1つまたは組み合わせのうちのいずれか1つまたは組み合わせを含む。特定の実施形態では、消化および修復試薬は、ウラシルDNAグリコシラーゼ(UDG)、アプリンエンドヌクレアーゼ(例えば、APE1)、Taq DNAポリメラーゼ、Phusion U DNAポリメラーゼ、SuperFiU DNAポリメラーゼ、T7 DNAリガーゼのうちのいずれか1つまたは組み合わせを含む。ある特定の実施形態では、精製は、第2の増幅後のライブラリーの生成に続いて行われる単一または繰り返しの分離ステップを含み、他の方法ステップは、ステップで生成された生成物のいずれかの一部分(アリコート)の別の反応容器への必要な移送なしに、単一の反応容器で行われる。本明細書の方法において使用される複数のアダプターの各々は、ユニバーサルハンドル配列と、標的核酸配列と、切断可能な部分と、1つ以上のタグ配列とを含む。少なくとも2個および最大10万個の標的特異的アダプター対が提供される方法に含まれ、各アダプターの標的核酸配列は、少なくとも1つの切断可能な部分を含み、ユニバーサルハンドル配列は、切断可能な部分を含まず、切断可能な部分は、タグ配列のいずれかの末端に隣接して含まれる。
いくつかの実施形態では、方法のステップの第1の増幅から得られるアダプター-ダイマー副生成物は、得られるライブラリーから大幅に除去される。ある特定の実施形態では、増幅された標的核酸の富化集団は、低減した量のアダプター-ダイマー副生成物を含有する。特定の実施形態では、アダプターダイマー副生成物は、排除される。
いくつかの実施形態では、ライブラリーは、4時間未満で調製される。いくつかの実施形態では、ライブラリーは、3時間未満で調製、濃縮、および配列決定される。いくつかの実施形態では、ライブラリーは、2~3時間で調製、濃縮、および配列決定される。いくつかの実施形態では、ライブラリーは、約2.5時間で調製される。いくつかの実施形態では、ライブラリーは、約2.75時間で調製される。いくつかの実施形態では、ライブラリーは、約3時間で調製される。
組成物
本発明の追加の態様は、複数の核酸アダプターを含む組成物、ならびに本発明の方法に従って調製されたライブラリー組成物を含む。提供される組成物は、本明細書に記載される方法と併せて、ならびに当該技術分野において知られる追加の分析および用途に有用である。
よって、複数の核酸アダプターを含む組成物が提供され、複数のアダプターの各々は、5’ユニバーサルハンドル配列、任意選択的に1つ以上のタグ配列、および3’標的核酸配列を含み、各アダプターは、切断可能な部分を含み、アダプターの標的核酸配列は、少なくとも1つの切断可能な部分を含み、タグ配列が存在する場合、切断可能な部分は、タグ配列のいずれかの末端に隣接して含まれ、ユニバーサルハンドル配列は、切断可能な部分を含まない。少なくとも2個および最大10万個の標的特異的アダプター対が、提供される組成物に含まれる。提供される組成物は、高度に多重化された標的化ライブラリーの迅速な生成を可能にする。
いくつかの実施形態では、提供される組成物は、複数の核酸アダプターを含み、複数のアダプターの各々は、5’ユニバーサルハンドル配列、1つ以上のタグ配列、および3’標的核酸配列を含み、各アダプターは、切断可能な部分を含み、アダプターの標的核酸配列は、少なくとも1つの切断可能な部分を含み、切断可能な部分は、タグ配列のいずれかの末端に隣接して含まれ、ユニバーサルハンドル配列は、切断可能な部分を含まない。少なくとも2個および最大10万個の標的特異的アダプター対が、提供される組成物に含まれる。提供される組成物は、高度に多重化されたタグ付き標的化ライブラリーの迅速な生成を可能にする。
プライマー/アダプター組成物は、一本鎖でも二本鎖でもよい。いくつかの実施形態では、アダプター組成物は、一本鎖アダプターを含む。いくつかの実施形態では、アダプター組成物は、二本鎖アダプターを含む。いくつかの実施形態では、アダプター組成物は、一本鎖および二本鎖アダプターの混合物を含む。
いくつかの実施形態では、組成物は、少なくとも2つの異なる標的核酸配列の増幅が可能なアダプター対の多重を含む1つ以上の標的核酸配列の増幅が可能な複数のアダプターを含み、標的特異的プライマー配列は、組成物中の他の標的特異的プライマー配列と実質的に非相補的である。いくつかの実施形態では、組成物は、少なくとも25、50、75、100、150、200、250、300、350、400、450、500、750、1000、1250、1500、1750、2000、2250、2500、2750、3000、3250、3500、3750、4000、4500、5000、5500、6000、7000、8000、9000、10000、11000、または12000個以上の標的特異的アダプター対を含む。いくつかの実施形態では、標的特異的アダプター対は、長さ約15ヌクレオチド~約40ヌクレオチドを含み、少なくとも1つのヌクレオチドは、切断可能な基で置き換えられる。いくつかの実施形態では、切断可能な基は、ウリジンヌクレオチドである。いくつかの実施形態では、標的特異的アダプター対は、臨床的もしくは病理学的状態に関連するゲノムのエクソン、遺伝子、エクソーム、もしくは領域の増幅、例えば、がん、例えば、肺がん、結腸がん、乳がんなどに関連する1つ以上の変異(例えば、ドライバー変異)を含む1つ以上の部位の増幅、または遺伝性疾患、例えば、嚢胞性線維症、筋ジストロフィーなどに関連する変異の増幅のために設計される。いくつかの実施形態では、標的配列にハイブリダイズし、本明細書で提供されるように増幅された場合の標的特異的アダプター対は、長さが約100~約600塩基対であるアダプター連結増幅標的配列のライブラリーを生成する。いくつかの実施形態では、アダプター連結増幅標的配列が、ライブラリーにおける他のアダプター連結増幅標的配列の残部と比較して30%超でライブラリーにおいて過剰発現されることはない。いくつかの実施形態では、アダプター連結増幅標的配列ライブラリーは、それぞれの標的配列のGC含有量、増幅標的配列長、または融解温度(Tm)に関して実質的に均質である。
いくつかの実施形態では、本発明の組成物中のアダプター対の標的特異的プライマー配列は、核酸分子の特定の領域を増幅することができる標的特異的配列である。いくつかの実施形態では、標的特異的アダプターは、ゲノムDNAまたはcDNAを増幅することができる。いくつかの実施形態では、標的特異的アダプターは、これらに限定されないが、ヒトDNAもしくはRNA、マウスDNAもしくはRNA、ウシDNAもしくはRNA、イヌDNAもしくはRNA、ウマDNAもしくはRNA、または目的の任意の他の哺乳動物などの哺乳動物核酸を増幅することができる。他の実施形態では、標的特異的アダプターは、目的の植物核酸を増幅するように向けられた配列を含む。他の実施形態では、標的特異的アダプターは、感染因子、例えば、細菌および/またはウイルス核酸を増幅するように向けられた配列を含む。いくつかの実施形態では、選択的増幅に必要な核酸の量は、約1ng~1マイクログラムである。いくつかの実施形態では、1つ以上の標的配列の選択的増幅に必要な核酸の量は、約1ng、約5ng、または約10ngである。いくつかの実施形態では、標的配列の選択的増幅に必要な核酸の量は、約10ng~約200ngである。
本明細書に記載されるように、複数のアダプターの各々は、5’ユニバーサルハンドル配列を含む。いくつかの実施形態では、ユニバーサルハンドル配列は、増幅プライマー結合配列、配列決定プライマー結合配列、および/または捕捉プライマー結合配列のうちのいずれか1つまたはいずれかの組み合わせを含む。いくつかの実施形態では、各アダプターユニバーサルハンドル配列の比較可能な最高最低融解温度は、同じアダプター中に存在する各標的核酸配列および各タグ配列の比較可能な最高最低融解温度よりも高い。好ましくは、提供されるアダプターのユニバーサルハンドル配列は、目的のユニークタグ配列および/または標的核酸配列の任意の部分に対して有意な相補性および/またはハイブリダイゼーションを示さない。いくつかの実施形態では、第1のユニバーサルハンドル配列は、増幅プライマー結合配列、配列決定プライマー結合配列、および/または捕捉プライマー結合配列のうちのいずれか1つまたはいずれかの組み合わせを含む。いくつかの実施形態では、第2のユニバーサルハンドル配列は、増幅プライマー結合配列、配列決定プライマー結合配列、および/または捕捉プライマー結合配列のうちのいずれか1つまたはいずれかの組み合わせを含む。ある特定の実施形態では、第1および第2のユニバーサルハンドル配列は、順方向および逆方向ユニバーサルハンドル配列に対応し、ある特定の実施形態では、複数の標的特異的アダプター対の各々について同じ第1および第2のユニバーサルハンドル配列が含まれる。かかる順方向および逆方向ユニバーサルハンドル配列は、本発明の方法に従ったライブラリーの生成において修復されたアンプリコンの第2の増幅を実施するために、ユニバーサルプライマーとともに標的化される。ある特定の実施形態では、第1の5’ユニバーサルハンドル配列は、2つのユニバーサルハンドル配列(例えば、増幅プライマー結合配列、配列決定プライマー結合配列、および/または捕捉プライマー結合配列の組み合わせ)を含み、第2の5’ユニバーサル配列は、2つのユニバーサルハンドル配列(例えば、増幅プライマー結合配列、配列決定プライマー結合配列、および/または捕捉プライマー結合配列の組み合わせ)を含み、5’第1および第2のユニバーサルハンドル配列は、目的の標的核酸配列の任意の部分に対して有意なハイブリダイゼーションを示さない。
ユニバーサル増幅プライマーまたはユニバーサルプライマーの構造および特性は、当業者に周知であり、特定の分析プラットフォームに適合するように提供される方法および組成物と併せた利用のために実装することができる。本明細書で提供されるアダプターのユニバーサルハンドル配列は、好ましいユニバーサルプライマー配列を収容するように適宜に適合される。例えば、例えば、本明細書に記載されるように、任意選択のバーコード配列を有するユニバーサルP1およびAプライマーは、当該技術分野において記載されており、Ion Torrentシーケンシングプラットフォーム(Ion Xpress(商標)アダプター、Thermo Fisher Scientific)での配列決定に利用される。同様に、当該技術分野において記載され、知られている追加および他のユニバーサルアダプター/プライマー配列(例えば、Illuminaユニバーサルアダプター/プライマー配列は、例えば、https://support.illumina.com/content/dam/illumina-support/documents/documentation/chemistry_documentation/experiment-design/illumina-adapter-sequences_1000000002694-01.pdfで見つけることができ、PacBioユニバーサルアダプター/プライマー配列は、例えば、https://s3.amazonaws.com/files.pacb.com/pdf/Guide_Pacific_Biosciences_Template_Preparation_and_Sequencing.pdfで見つけることができるなど)は、本明細書で提供される方法および組成物とともに使用することができる。本発明のアダプターとともに使用するための適切なヌクレオチド配列の好適なユニバーサルプライマーは、当該技術分野での日常的な使用における標準的な自動化核酸合成機器および試薬を使用して容易に調製される。1つの単一タイプのユニバーサルプライマーまたは2つの異なるユニバーサルプライマーの別個のタイプ(またはさらに混合物)、例えば、第2の増幅における修復されたアンプリコンの増幅に好適な一対のユニバーサル増幅プライマーが、本発明の方法における使用のために含まれる。ユニバーサルプライマーは、任意選択的に異なるタグ(バーコード)配列を含み、タグ(バーコード)配列は、アダプターにハイブリダイズしない。第2のユニバーサル増幅においてアンプリコンに組み込まれたバーコード配列は、例えば、試料供給源の効果的な同定のために利用することができる。
いくつかの実施形態では、アダプターは、5’第1のユニバーサルハンドル配列と3’標的特異的配列との間に位置するユニークタグ配列をさらに含み、ユニークタグ配列は、目的のユニークタグ配列および/または標的核酸配列の任意の部分に対して有意な相補性および/またはハイブリダイゼーションを示さない。いくつかの実施形態では、複数のプライマーアダプター対は、104~109個の異なるタグ配列の組み合わせを有する。よって、ある特定の実施形態では、生成された各標的特異的アダプター対は、104~109個の異なるタグ配列を含む。いくつかの実施形態では、複数のプライマーアダプターは、少なくとも1個の異なるユニークタグ配列および最大105個の異なるユニークタグ配列を含む、各標的特異的アダプターを含む。いくつかの実施形態では、複数のプライマーアダプターは、少なくとも1個の異なるユニークタグ配列および最大105個の異なるユニークタグ配列を含む各標的特異的アダプターを含む。ある特定の実施形態では、生成された各標的特異的アンプリコンは、各々が2個の異なるユニークタグ配列を有する、異なるタグ配列を含む少なくとも2個および最大109個の異なるアダプター組み合わせを含む。いくつかの実施形態では、複数のプライマーアダプターは、4096個の異なるタグ配列を含む各標的特異的アダプターを含む。ある特定の実施形態では、生成された各標的特異的アンプリコンは、各々が2個の異なるユニークタグ配列を有する、異なるタグ配列を含む最大16,777,216個の異なるアダプター組み合わせを含む。
いくつかの実施形態では、複数のアダプター中の個々プライマーアダプターは、固定タグ配列と交互になっている異なるランダムタグ配列を含むユニークタグ配列(例えば、タグアダプターに含有される)を含む。いくつかの実施形態では、少なくとも1つのユニークタグ配列は、少なくとも1つのランダム配列および少なくとも1つの固定配列を含むか、または両側で固定配列に隣接するランダム配列を含むか、または両側でランダム配列に隣接する固定配列を含む。いくつかの実施形態では、ユニークタグ配列は、長さが2~2000ヌクレオチドまたは塩基対である固定配列を含む。いくつかの実施形態では、ユニークタグ配列は、長さが2~2000ヌクレオチドまたは塩基対であるランダム配列を含む。
いくつかの実施形態では、ユニークタグ配列は、固定配列が点在する少なくとも1つのランダム配列を有する配列を含む。いくつかの実施形態では、複数のユニークタグ中の個々のタグは、構造(N)n(X)x(M)m(Y)yを有し、式中、「N」は、A、G、C、T、U、またはIから生成されたランダムタグ配列を表し、「N」ランダムタグ配列のヌクレオチド長を表す「n」は、2~10であり、「X」は、固定タグ配列を表し、「X」ランダムタグ配列のヌクレオチド長を表す「x」は、2~10であり、「M」は、A、G、C、T、U、またはIから生成されたランダムタグ配列を表し、ランダムタグ配列「M」は、ランダムタグ配列「N」とは異なるか、またはそれと同じであり、「M」ランダムタグ配列のヌクレオチド長を表す「m」は、2~10であり、「Y」は、固定タグ配列を表し、「Y」の固定タグ配列は、「X」の固定タグ配列と同じであるか、またはそれとは異なり、「Y」ランダムタグ配列のヌクレオチド長を表す「y」は、2~10である。いくつかの実施形態では、固定タグ配列「X」は、複数のタグにおいて同じである。いくつかの実施形態では、固定タグ配列「X」は、複数のタグにおいて異なる。いくつかの実施形態では、固定タグ配列「Y」は、複数のタグにおいて同じである。いくつかの実施形態では、固定タグ配列「Y」は、複数のタグにおいて異なる。いくつかの実施形態では、複数のアダプター内の固定タグ配列「(X)x」および「(Y)y」は、配列アライメントアンカーである。
いくつかの実施形態では、ユニークタグ配列内のランダム配列は、「N」で表され、固定配列は、「X」で表される。よって、ユニークタグ配列は、N123123またはN123123456456で表される。任意選択的に、ユニークタグ配列は、ヌクレオチド位置の一部またはすべてが、A、G、C、T、U、およびIからなる群からランダムに選択されるランダム配列を有することができる。例えば、ランダム配列内の各々の位置のヌクレオチドは、A、G、C、T、U、もしくはIのうちのいずれか1つから独立して選択されるか、またはこれら6つの異なるタイプのヌクレオチドのサブセットから選択される。任意選択的に、ランダム配列内の各々の位置のヌクレオチドは、A、G、C、またはTのうちのいずれか1つから独立して選択される。いくつかの実施形態では、第1の固定タグ配列「X123」は、複数のタグ内の同一または異なる配列である。いくつかの実施形態では、第2の固定タグ配列「X456」は、複数のタグにおいて同じであるか、または異なる。いくつかの実施形態では、複数のアダプター内の第1の固定タグ配列「X123」および第2の固定タグ配列「X456」は、配列アライメントアンカーである。
いくつかの実施形態では、ユニークタグ配列は、配列5’-NNNACTNNNTGA-3’を含み、式中、「N」は、A、G、C、またはTからランダムに生成されたランダム配列内の位置を表し、生じ得る別個のランダムタグの数は、46(または4^6)と計算され、約4096であり、2つのユニークタグの生じ得る異なる組み合わせの数は、412(または4^12)であり、約1678万である。いくつかの実施形態では、
Figure 2022546485000001
の下線部分は、配列アライメントアンカーである。
いくつかの実施形態では、ユニークタグ配列内の固定配列は、エラーが訂正された配列決定データを生成するために使用することができる配列アライメントアンカーである。いくつかの実施形態では、ユニークタグ配列内の固定配列は、エラーが訂正された配列決定リードのファミリーを生成するために使用することができる配列アライメントアンカーである。
本明細書で提供されるアダプターは、少なくとも1つの切断可能な部分を含む。いくつかの実施形態では、切断可能な部分は、3’標的特異的配列内にある。いくつかの実施形態では、切断可能な部分は、5’第1のユニバーサルハンドル配列と3’の標的特異的配列との間の接合部またはその近くにある。いくつかの実施形態では、切断可能な部分は、5’第1のユニバーサルハンドル配列とユニークタグ配列との間の接合部またはその近く、ならびにユニークタグ配列と3’標的特異的配列との間の接合部またはその近くにある。切断可能な部分は、修飾されたヌクレオチド、ヌクレオシド、または核酸塩基中に存在することができる。いくつかの実施形態では、切断可能な部分は、目的の標的配列に天然に存在しない核酸塩基を含むことができる。
いくつかの実施形態では、複数のアダプター中の少なくとも1つの切断可能な部分は、ウラシル塩基、ウリジン、またはデオキシウリジンヌクレオチドである。いくつかの実施形態では、切断可能な部分は、3’標的特異的配列、ならびに5’ユニバーサルハンドル配列とユニークタグ配列および/または3’標的特異的配列との間の接合部内にあり、複数のアダプター中の少なくとも1つの切断可能な部分は、ウラシルDNAグリコシラーゼ(UDG)で切断可能である。いくつかの実施形態では、切断可能な部分が切断され、感受性の脱塩基部位をもたらし、脱塩基部位で反応することができる少なくとも1つの酵素は、伸長可能な3’末端を含むギャップを生成する。ある特定の実施形態では、得られるギャップは、5’-デオキシリボースリン酸基を含む。ある特定の実施形態では、得られるギャップは、伸長可能な3’末端および5’連結可能なリン酸基を含む。
別の実施形態では、イノシンは、切断可能な基としてDNAベースの核酸に組み込むことができる。1つの例示的な実施形態では、EndoVを使用して、イノシン残基の近くを切断することができる。別の例示的な実施形態では、酵素hAAGを使用して、イノシン残基を核酸から切断し、脱塩基部位を作成することができる。
切断可能な部分が存在する場合、アダプターにおける少なくとも1つの切断可能な部分の位置は、複数の二本鎖アダプターにおける任意の所定の二本鎖アダプターの融解温度(Tm)を有意に変化させない。複数の二本鎖アダプターからの任意の2つの所定の二本鎖アダプターの融解温度(Tm)は、実質的に同じであり、任意の2つの所定の二本鎖アダプターの融解温度(Tm)は、互いの10℃を超えて異ならない。しかしながら、複数のアダプターの各々の中で、配列領域の融解温度は異なり、例えば、ユニバーサルハンドル配列の比較可能な最高最低融解温度が、任意のアダプターのいずれかのユニークタグ配列および/または標的特異的配列の比較可能な最高最低融解温度よりも高い。比較可能な最高最低融解温度のこの局在化された差異は、アンプリコンの消化および修復、ならびに本明細書で提供される方法の最終的に改善された有効性を最適化するように調整することができる。
本発明の方法によって生成された核酸ライブラリーを含む組成物がさらに提供される。よって、複数の増幅された標的核酸アンプリコンを含む組成物が提供され、複数のアンプリコンの各々は、5’ユニバーサルハンドル配列、任意選択的に第1のユニークタグ配列、中間標的核酸配列、任意選択的に第2のユニークタグ配列、および3’ユニバーサルハンドル配列を含む。提供される組成物には、少なくとも2個および最大10万個の標的特異的アンプリコンが含まれる。提供される組成物は、高度に多重化された標的化ライブラリーを含む。いくつかの実施形態では、提供される組成物は、複数の核酸アンプリコンを含み、複数のアンプリコンの各々は、5’ユニバーサルハンドル配列、第1のユニークタグ配列、中間標的核酸配列、第2のユニークタグ配列、および3’ユニバーサルハンドル配列を含む。提供される組成物には、少なくとも2個および最大10万個の標的特異的タグ付きアンプリコンが含まれる。提供される組成物は、高度に多重化されたタグ付き標的化ライブラリーを含む。
いくつかの実施形態では、ライブラリー組成物は、少なくとも2つの異なる標的核酸配列の多重を含む複数の標的特異的アンプリコンを含む。いくつかの実施形態では、組成物は、少なくとも25、50、75、100、150、200、250、300、350、400、450、500、750、1000、1250、1500、1750、2000、2250、2500、2750、3000、3250、3500、3750、4000、4500、5000、5500、6000、7000、8000、9000、10000、11000、または12000個以上の標的特異的アンプリコンを含む。いくつかの実施形態では、標的特異的アンプリコンは、臨床的もしくは病理学的状態に関連するゲノムの1つ以上のエクソン、遺伝子、エクソーム、もしくは領域、例えば、がん、例えば、肺がん、結腸がん、乳がんなどに関連する1つ以上の変異(例えば、ドライバー変異)を含む1つ以上の部位を含むアンプリコン、または遺伝性疾患、例えば、嚢胞性線維症、筋ジストロフィーなどに関連する変異を含むアンプリコンを含む。いくつかの実施形態では、標的特異的アンプリコンは、長さが約100~約750塩基対であるアダプター連結アンプリコン標的配列のライブラリーを含む。
本明細書に記載されるように、複数のアンプリコンの各々は、5’ユニバーサルハンドル配列を含む。いくつかの実施形態では、ユニバーサルハンドル配列は、増幅プライマー結合配列、配列決定プライマー結合配列、および/または捕捉プライマー結合配列のうちのいずれか1つまたはいずれかの組み合わせを含む。好ましくは、提供されるアダプターのユニバーサルハンドル配列は、目的のユニークタグ配列および/または標的核酸配列の任意の部分に対して有意な相補性および/またはハイブリダイゼーションを示さない。いくつかの実施形態では、第1のユニバーサルハンドル配列は、増幅プライマー結合配列、配列決定プライマー結合配列、および/または捕捉プライマー結合配列のうちのいずれか1つまたはいずれかの組み合わせを含む。いくつかの実施形態では、第2のユニバーサルハンドル配列は、増幅プライマー結合配列、配列決定プライマー結合配列、および/または捕捉プライマー結合配列のうちのいずれか1つまたはいずれかの組み合わせを含む。ある特定の実施形態では、第1および第2のユニバーサルハンドル配列は、順方向および逆方向ユニバーサルハンドル配列に対応し、ある特定の実施形態では、複数の標的特異的アンプリコンの各々について同じ第1および第2のユニバーサルハンドル配列が含まれる。かかる順方向および逆方向ユニバーサルハンドル配列は、本発明の方法に従って得られる増幅生成物の生成において予備ライブラリー組成物の第2の増幅を実施するために、ユニバーサルプライマーとともに標的化される。ある特定の実施形態では、第1の5’ユニバーサルハンドル配列は、2つのユニバーサルハンドル配列(例えば、増幅プライマー結合配列、配列決定プライマー結合配列、および/または捕捉プライマー結合配列の組み合わせ)を含み、第2の5’ユニバーサル配列は、2つのユニバーサルハンドル配列(例えば、増幅プライマー結合配列、配列決定プライマー結合配列、および/または捕捉プライマー結合配列の組み合わせ)を含み、5’第1および第2のユニバーサルハンドル配列は、目的の標的核酸配列の任意の部分に対して有意なハイブリダイゼーションを示さない。
ユニバーサル増幅プライマーまたはユニバーサルプライマーの構造および特性は、当業者に周知であり、特定の分析プラットフォームに適合するように提供される方法および組成物と併せた利用のために実装することができる。本明細書で提供されるアダプターおよびアンプリコンのユニバーサルハンドル配列は、好ましいユニバーサルプライマー配列を収容するように適宜に適合される。例えば、例えば、本明細書に記載されるように、任意選択的のバーコード配列を有するユニバーサルP1およびAプライマーは、当該技術分野において記載されており、Ion Torrentシーケンシングプラットフォーム(Ion Xpress(商標)アダプター、Thermo Fisher Scientific)での配列決定に利用される。同様に、当該技術分野において記載され、知られている追加および他のユニバーサルアダプター/プライマー配列(例えば、Illuminaユニバーサルアダプター/プライマー配列は、例えば、https://support.illumina.com/content/dam/illumina-support/documents/documentation/chemistry_documentation/experiment-design/illumina-adapter-sequences_1000000002694-01.pdfで見つけることができ、PacBioユニバーサルアダプター/プライマー配列は、例えば、https://s3.amazonaws.com/files.pacb.com/pdf/Guide_Pacific_Biosciences_Template_Preparation_and_Sequencing.pdfで見つけることができるなど)は、本明細書で提供される方法および組成物とともに使用することができる。本発明のライブラリーとともに使用するための適切なヌクレオチド配列の好適なユニバーサルプライマーは、当該技術分野での日常的な使用における標準的な自動化核酸合成機器および試薬を使用して容易に調製される。1つの単一タイプまたは2つの異なるユニバーサルプライマーの別個のタイプ(またはさらに混合物)、例えば、予備ライブラリーの増幅に好適な一対のユニバーサル増幅プライマーが、本発明のライブラリーの生成において使用され得る。ユニバーサルプライマーは、任意選択的にタグ(バーコード)配列を含み、タグ(バーコード)配列は、アダプター配列または標的核酸配列にハイブリダイズしない。第2のユニバーサル増幅においてアンプリコンに組み込まれたバーコード配列は、例えば、試料供給源の効果的な同定のために利用して、それによりバーコード化ライブラリーを生成することができる。よって提供される組成物は、高度に多重化されたバーコード化標的化ライブラリーを含む。提供される組成物は、高度に多重化されたバーコード化タグ付き標的化ライブラリーも含む。
いくつかの実施形態では、アンプリコンライブラリーは、5’第1のユニバーサルハンドル配列と3’標的特異的配列との間に位置するユニークタグ配列を含み、ユニークタグ配列は、ユニークタグ配列および/または標的核酸配列の任意の部分に対して有意な相補性および/またはハイブリダイゼーションを示さない。いくつかの実施形態では、複数のアンプリコンは、104~109個の異なるタグ配列の組み合わせを有する。よって、ある特定の実施形態では、ライブラリーにおける複数のアンプリコンの各々は、104~109個の異なるタグ配列を含む。いくつかの実施形態では、ライブラリーにおける複数のアンプリコンの各々は、少なくとも1個の異なるユニークタグ配列および最大105個の異なるユニークタグ配列を含む。ある特定の実施形態では、ライブラリーにおける各標的特異的アンプリコンは、各々が2個の異なるユニークタグ配列を有する、異なるタグ配列を含む少なくとも2個および最大109個の異なる組み合わせを含む。いくつかの実施形態では、ライブラリーにおける複数のアンプリコンの各々は、4096個の異なるタグ配列を含むタグ配列を含む。ある特定の実施形態では、ライブラリーの各標的特異的アンプリコンは、各々が2個の異なるユニークタグ配列を有する、異なるタグ配列を含む最大16,777,216個の異なる組み合わせを含む。
いくつかの実施形態では、ライブラリーの複数のアンプリコン中の個々のアンプリコンは、固定タグ配列と交互になっている異なるランダムタグ配列を含むユニークタグ配列(例えば、タグアダプター配列に含まれる)を含む。いくつかの実施形態では、少なくとも1つのユニークタグ配列は、少なくとも1つのランダム配列および少なくとも1つの固定配列を含むか、または両側で固定配列に隣接するランダム配列を含むか、または両側でランダム配列に隣接する固定配列を含む。いくつかの実施形態では、ユニークタグ配列は、長さが2~2000ヌクレオチドまたは塩基対である固定配列を含む。いくつかの実施形態では、ユニークタグ配列は、長さが2~2000ヌクレオチドまたは塩基対であるランダム配列を含む。
いくつかの実施形態では、ユニークタグ配列は、固定配列が点在する少なくとも1つのランダム配列を有する配列を含む。いくつかの実施形態では、複数のユニークタグ中の個々のタグは、構造(N)n(X)x(M)m(Y)yを有し、式中、「N」は、A、G、C、T、U、またはIから生成されたランダムタグ配列を表し、「N」ランダムタグ配列のヌクレオチド長を表す「n」は、2~10であり、「X」は、固定タグ配列を表し、「X」ランダムタグ配列のヌクレオチド長を表す「x」は、2~10であり、「M」は、A、G、C、T、U、またはIから生成されたランダムタグ配列を表し、ランダムタグ配列「M」は、ランダムタグ配列「N」とは異なるか、またはそれと同じであり、「M」ランダムタグ配列のヌクレオチド長を表す「m」は、2~10であり、「Y」は、固定タグ配列を表し、「Y」の固定タグ配列は、「X」の固定タグ配列と同じであるか、またはそれとは異なり、「Y」ランダムタグ配列のヌクレオチド長を表す「y」は、2~10である。いくつかの実施形態では、固定タグ配列「X」は、複数のタグにおいて同じである。いくつかの実施形態では、固定タグ配列「X」は、複数のタグにおいて異なる。いくつかの実施形態では、固定タグ配列「Y」は、複数のタグにおいて同じである。いくつかの実施形態では、固定タグ配列「Y」は、複数のタグにおいて異なる。いくつかの実施形態では、複数のアンプリコン内の固定タグ配列「(X)x」および「(Y)y」は、配列アライメントアンカーである。
いくつかの実施形態では、ユニークタグ配列内のランダム配列は、「N」で表され、固定配列は、「X」で表される。よって、ユニークタグ配列は、N123123またはN123123456456で表される。任意選択的に、ユニークタグ配列は、ヌクレオチド位置の一部またはすべてが、A、G、C、T、U、およびIからなる群からランダムに選択されるランダム配列を有することができる。例えば、ランダム配列内の各々の位置のヌクレオチドは、A、G、C、T、U、もしくはIのうちのいずれか1つから独立して選択されるか、またはこれら6つの異なるタイプのヌクレオチドのサブセットから選択される。任意選択的に、ランダム配列内の各々の位置のヌクレオチドは、A、G、C、またはTのうちのいずれか1つから独立して選択される。いくつかの実施形態では、第1の固定タグ配列「X123」は、複数のタグ内の同一または異なる配列である。いくつかの実施形態では、第2の固定タグ配列「X456」は、複数のタグにおいて同じであるか、または異なる。いくつかの実施形態では、複数のアンプリコン内の第1の固定タグ配列「X123」および第2の固定タグ配列「X456」は、配列アライメントアンカーである。
いくつかの実施形態では、ユニークタグ配列は、配列5’-NNNACTNNNTGA-3’を含み、式中、「N」は、A、G、C、またはTからランダムに生成されたランダム配列内の位置を表し、生じ得る別個のランダムタグの数は、46(または4^6)と計算され、約4096であり、2つのユニークタグの生じ得る異なる組み合わせの数は、412(または4^12)であり、約1678万である。いくつかの実施形態では、
Figure 2022546485000002
の下線部分は、配列アライメントアンカーである。
いくつかの実施形態では、ユニークタグ配列内の固定配列は、エラーが訂正された配列決定データを生成するために使用することができる配列アライメントアンカーである。いくつかの実施形態では、ユニークタグ配列内の固定配列は、エラーが訂正された配列決定リードのファミリーを生成するために使用することができる配列アライメントアンカーである。
キット、システム
本発明の第1または第2の態様の方法を使用する標的核酸のライブラリーの調製における使用のためのキットが、本明細書でさらに提供される。キットの実施形態は、第1の増幅生成物を生成することができる本明細書で定義される少なくとも一対の標的特異的アダプターの供給、および任意選択的に、アダプターのユニバーサルハンドルにアニールし、増幅生成物の合成を開始することができる増幅プライマーの少なくとも1つのユニバーサル対の供給を含み、増幅生成物は、ユニバーサル配列に連結した目的の標的配列を含む。アダプターおよび/またはプライマーは、すぐに使用することができるキットにおいて、またはより好ましくは使用前に希釈が必要な濃縮物として、またはさらに使用前に再構成が必要な凍結乾燥もしくは乾燥形態で提供給され得る。ある特定の実施形態では、キットは、成分の希釈または再構成のための好適な希釈剤の供給をさらに含む。任意選択的に、キットは、本明細書で提供されるライブラリーの生成において増幅、消化、修復、および/または精製を実施する際の使用のための試薬、緩衝液、酵素、dNTPなどの供給をさらに含む。かかる試薬の非限定的な例は、添付の例証の材料および方法のセクションに記載されるとおりである。任意選択的にキットにおいて供給されるさらなる成分には、提供される方法を使用して調製されたライブラリーの精製に好適な成分が含まれる。いくつかの実施形態では、5’ユニバーサルハンドル配列、3’標的特異的配列、および切断可能な基を有する複数の標的特異的アダプター、DNAポリメラーゼ、アダプター、dATP、dCTP、dGTP、dTTP、ならびに消化試薬を含む標的特異的ライブラリーを生成するためのキットが提供される。いくつかの実施形態では、キットは、1つ以上の抗体、修復試薬、任意選択的に核酸バーコードを含むユニバーサルプライマー、精製溶液、またはカラムをさらに含む。
キットに含めるためのアダプターの特定の特徴は、本発明の他の態様に関連して本明細書の他の場所に記載されるとおりである。ユニバーサル増幅プライマーの構造および特性は、当業者に周知であり、特定の分析プラットフォームに適合させるように、提供される方法および組成物とともに利用するために実装することができる(例えば、本明細書に記載されるように、ユニバーサルP1およびAプライマーは、当該技術分野において記載されており、Ion Torrentシーケンシングプラットフォームでの配列決定に利用されている)。同様に、当該技術分野において記載され、知られている追加および他のユニバーサルアダプター/プライマー配列(例えば、Illuminaユニバーサルアダプター/プライマー配列、PacBioユニバーサルアダプター/プライマー配列など)は、本明細書で提供される方法および組成物とともに使用することができる。キットに含まれるアダプターとともに使用するための適切なヌクレオチド配列の好適なプライマーは、当該技術分野での日常的な使用における標準的な自動化核酸合成機器および試薬を使用して容易に調製される。キットは、1つの単一タイプのユニバーサルプライマーまたは2つの異なるユニバーサルプライマーの別個のタイプ(またはさらに混合物)、例えば、第1の増幅におけるアダプターで修飾された鋳型の増幅に好適な一対の増幅プライマーの供給を含む。キットは、本発明の方法による目的の試料の第1の増幅のための少なくとも一対のアダプターに加えて、任意選択的に異なるタグ(バーコード)配列を有する少なくとも2つの異なる増幅プライマーを含み得、タグ(バーコード)配列は、アダプターにハイブリダイズしない。キットを使用して、少なくとも2つの異なる試料を増幅することができ、各試料は、別々に本発明の方法に従って増幅され、第2の増幅は、バーコードを有する単一のユニバーサルプライマーを使用し、次いでライブラリー調製後に調製された試料ライブラリーをプールすることを含む。いくつかの実施形態では、キットは、本明細書に記載される第2の増幅ステップにおける使用のための異なるユニバーサルプライマー対を含む。この文脈において、「ユニバーサル」プライマー対は、実質的に同一のヌクレオチド配列を有するが、いくつかの他の特徴または修飾に関して異なり得る。
システム、例えば、本明細書で提供される方法を実施するために使用される、および/または本明細書で提供される組成物を含むシステムがさらに提供される。いくつかの実施形態では、システムは、自動モードで行われる方法を促進する。ある特定の実施形態では、システムは、高スループットモードを促進する。ある特定の実施形態では、システムは、例えば、流体取扱要素、流体含有要素、所望の反応温度を達成および維持するための熱源および/もしくはヒートシンク、ならびに/または必要に応じて配置する場所からシステムの構成要素を移動させることができるロボット要素(例えば、マルチウェルプレート取扱要素)を含む。
試料
本明細書で定義されるように、「試料」およびその派生語は、その最も広い意味で使用され、標的核酸を含むことが疑われる任意の標本、培養物、および/または類似物を含む。いくつかの実施形態では、試料は、DNA、RNA、TNA、キメラ核酸、ハイブリッド核酸、多重形態の核酸、または前述の2つ以上の任意の組み合わせを含む。いくつかの実施形態では、本発明の方法に関連して有用な試料には、目的の1つ以上の標的核酸を含有する任意の生体、臨床、外科、農業、大気、または水ベースの標本が含まれる。いくつかの実施形態では、試料は、ヒトまたは哺乳動物供給源などの動物から得られる核酸分子を含む。別の実施形態では、試料は、植物、細菌、ウイルス、または真菌などの非哺乳動物供給源から得られる核酸分子を含む。いくつかの実施形態では、核酸分子の供給源は、保管または絶滅試料または種であり得る。いくつかの実施形態では、試料は、例えば、ゲノムDNA、RNA TNAなどの供給源から調製された単離核酸試料、または例えば、新鮮凍結もしくはホルマリン固定パラフィン包埋(FFPE)核酸標本などの調製試料を含む。試料が、単一個体、遺伝的に関連するメンバーからの核酸試料の集合体、遺伝的に関連しないメンバーからの複数の核酸試料、腫瘍試料および正常組織試料などの単一個体からの複数の核酸試料(一致)、または母体対象から得られる母体および胎児DNAなどの2つの異なる形態の遺伝物質を含有する単一供給源からの遺伝物質、または植物もしくは動物DNAを含有する試料中の汚染細菌DNAの存在からのものであることも想定される。いくつかの実施形態では、核酸材料の供給源は、新生児から得られる核酸(例えば、新生児スクリーニングのための血液試料)を含む。いくつかの実施形態では、提供される方法は、単一の核酸試料からの複数の標的特異的配列の増幅を含む。いくつかの実施形態では、提供される方法は、2つ以上の核酸試料または種からの2つ以上の標的配列の標的特異的増幅を含む。ある特定の実施形態では、提供される方法は、単一の試料からの高度に多重化された標的核酸配列の増幅を含む。特定の実施形態では、提供される方法は、各々同じ供給源生物からの、複数の試料からの高度に多重化された標的核酸配列の増幅を含む。
いくつかの実施形態では、試料は、標的核酸および非標的核酸の混合物を含む。ある特定の実施形態では、試料は、1つ以上の標的核酸の混合物を含み、かつ1つ以上の非標的核酸を含み得る複数の初期ポリヌクレオチドを含む。いくつかの実施形態では、複数のポリヌクレオチドを含む試料は、元の試料の一部分またはアリコートを含み、いくつかの実施形態では、試料は、元の試料全体である複数のポリヌクレオチドを含む。いくつかの実施形態では、試料は、異なる時点で同じ供給源または同じ対象から単離される複数の初期ポリヌクレオチドを含む。
いくつかの実施形態では、核酸試料は、体液からの細胞フリー核酸、組織からの核酸、生検組織からの核酸、針生検からの核酸、単一の細胞からの核酸、または2つ以上の細胞からの核酸を含む。ある特定の実施形態では、単一の反応混合物は、1~100ngの複数の初期ポリヌクレオチドを含有する。いくつかの実施形態では、複数の初期ポリヌクレオチドは、ホルマリン固定パラフィン包埋(FFPE)試料、ゲノムDNA、RNA、TNA、細胞フリーDNAもしくはRNAもしくはTNA、循環腫瘍DNAもしくはRNAもしくはTNA、新鮮凍結試料、または前述の2つ以上の混合物を含み、いくつかの実施形態では、複数の初期ポリヌクレオチドは、核酸参照標準を含む。いくつかの実施形態では、試料は、生検、腫瘍、擦過物、スワブ、血液、粘液、尿、血漿、精液、毛、レーザー捕捉顕微解剖体、外科的切除物、および他の臨床または実験室で得られた試料から得られた核酸分子を含む。いくつかの実施形態では、試料は、疫学的、農業的、法医学的、または病原的試料である。ある特定の実施形態では、試料は、参照物を含む。いくつかの実施形態では、試料は、正常組織または十分に実証された腫瘍試料である。ある特定の実施形態では、参照物は、標準的な核酸配列(例えば、Hg19)である。
標的核酸配列分析
提供される本発明の方法および組成物は、後続の分析のために標的配列を増幅し、任意選択的にタグ付けし、調製するのに特に適している。よって、いくつかの実施形態では、本明細書で提供される方法は、得られるライブラリー調製物を分析することを含む。例えば、方法は、標的核酸のポリヌクレオチド配列の分析、および該当する場合、標的核酸に追加された任意のタグ配列の分析を含む。複数の標的核酸領域が増幅されるいくつかの実施形態では、提供される方法は、複数の標的核酸のポリヌクレオチド配列を決定することを含む。提供される方法は、任意選択的に、第2のタグ配列、例えば、バーコード配列を使用して、標的配列の供給源を同定する(または試料供給源についての他の情報を提供する)ことをさらに含む。ある特定の実施形態では、調製されたライブラリー組成物の使用は、核酸ライブラリーの配列の分析のために提供される。
特定の実施形態では、調製されたタグ付きライブラリー組成物の使用は、標的核酸ライブラリーの配列をさらに分析するために提供される。いくつかの実施形態では、配列の決定は、試料中の標的配列の少なくとも1つの存在量を決定することを含む。いくつかの実施形態では、試料中の低頻度対立遺伝子の決定は、核酸ライブラリーの配列の決定に含まれる。ある特定の実施形態では、複数のポリヌクレオチド中の変異標的核酸の存在の決定は、核酸ライブラリーの配列の決定に含まれる。いくつかの実施形態では、変異標的核酸の存在の決定は、複数のポリヌクレオチド中の少なくとも1つの変異標的核酸の存在量レベルを検出することを含む。例えば、かかる決定は、少なくとも1つの変異標的核酸が試料中に元の複数のポリヌクレオチドの0.05%~1%で存在することを検出することと、少なくとも1つの変異標的核酸が試料中にポリヌクレオチドの約1%~約5%で存在することを検出することと、および/または試料中に少なくとも85%~100%の標的核酸を検出することと、を含む。いくつかの実施形態では、変異標的核酸の存在の決定は、試料中のコピー数変動および/または遺伝子融合配列の検出および同定を含む。
いくつかの実施形態では、本開示の教示によって生成された増幅標的配列の核酸配列決定は、デノボ配列決定または標的化再配列決定を含む。いくつかの実施形態では、核酸配列決定は、増幅された標的配列の核酸配列決定結果を参照核酸配列に対して比較することをさらに含む。いくつかの実施形態では、標的ライブラリー配列の核酸配列決定は、核酸配列内の変異の有無を決定することをさらに含む。いくつかの実施形態では、核酸配列決定は、疾患(例えば、がんおよび/または遺伝性疾患)に関連する遺伝子マーカーの同定を含む。
いくつかの実施形態では、開示される方法の標的配列の調製されたライブラリーは、さらなる精製または操作の有無にかかわらず、様々な下流の分析またはアッセイにおいて使用される。いくつかの実施形態では、分析は、従来の配列決定反応、高スループット次世代シーケンシング、標的化多重アレイ配列検出、または前述の2つ以上の任意の組み合わせによる配列決定を含む。ある特定の実施形態では、分析は、高スループット次世代シーケンシングによって行われる。特定の実施形態では、配列決定は、双方向様式で行われ、それにより任意の所定のアンプリコンについて順方向鎖および逆方向鎖の両方で配列リードを生成する。
いくつかの実施形態では、本明細書で提供される方法に従って調製されたライブラリーは、次いで追加の分析のためにさらに操作される。例えば、調製されたライブラリー配列は、ブリッジ増幅またはemPCRなどの当該技術分野において知られる下流富化技法において使用され、次いで次世代シーケンシングにおいて使用される鋳型ライブラリーを生成する。いくつかの実施形態では、標的核酸ライブラリーは、富化用途および配列決定用途において使用される。例えば、提供される標的核酸ライブラリーの配列決定は、任意の好適なDNA配列決定プラットフォームを使用して達成される。いくつかの実施形態では、開示される方法または後続して調製された鋳型ライブラリーのライブラリー配列は、一塩基多型(SNP)分析、遺伝子型決定またはエピジェネティック分析、コピー数変動分析、遺伝子発現分析、これらに限定されないが、希少または低頻度対立遺伝子変異の検出、予後および/または診断、検出、ならびに分析を含む遺伝子変異の分析、これらに限定されないが、デノボ配列決定、標的化再配列決定、および合成アセンブリ分析を含む核酸配列決定に使用される。一実施形態では、調製されたライブラリー配列は、5%未満の対立遺伝子頻度で変異を検出するために使用される。いくつかの実施形態では、本明細書に開示される方法は、4%、3%、2%未満、または約1%の対立遺伝子頻度で核酸の集団における変異を検出するために使用される。別の実施形態では、本明細書に記載されるように調製されたライブラリーは、核酸分子の集団から生殖系列または体細胞変異を検出および/または同定するために配列決定される。ある特定の実施形態では、配列決定アダプターは、調製されたライブラリーの末端に連結され、核酸配列決定に好適な複数のライブラリーを生成する。
いくつかの実施形態では、標的特異的アンプリコンライブラリーを調製するための方法は、核酸配列決定またはクローン増幅などの様々な下流プロセスまたはアッセイにおける使用のために提供される。いくつかの実施形態では、ライブラリーは、核酸配列決定に好適な複数のクローン鋳型を生成するためにブリッジ増幅またはemPCRを使用して増幅される。例えば、任意選択的に、標的特異的増幅に続いて、これらに限定されないが、ライブラリー増幅ステップおよび/またはクローン増幅ステップを含む、二次および/または三次増幅プロセスが実施される。「クローン増幅」とは、個々の分子の多数のコピーの生成を指す。当該技術分野において知られる様々な方法は、クローン増幅のために使用される。例えば、エマルジョンPCRは、1つの方法であり、個々のDNA分子をオイル相内の水泡中のプライマーでコーティングされたビーズとともに単離することを含む。ポリメラーゼ連鎖反応(PCR)は、次いで各ビーズを単離されたライブラリー分子のクローンコピーでコーティングし、これらのビーズは後の配列決定のために続いて固定化される。エマルジョンPCRは、MarguilisらならびにShendureおよびPorrecaら(「ポロニー配列決定」としても知られ、Agencourtによって商業化され、最近Applied Biosystemsによって買収された)によって公開された方法の中で使用される。Margulies,et al.(2005) Nature 437:376-380、Shendure et al.,Science 309(5741):1728-1732。クローン増幅のための別の方法は、「ブリッジPCR」であり、断片が固体表面に付着したプライマーで増幅される。これらの方法は、クローン増幅の他の方法と同様に、各々が単一分子ポリヌクレオチド断片に由来する多数のコピーを含有する多数の物理的に単離された場所を生成する。よって、いくつかの実施形態では、1つ以上の標的特異的アンプリコンは、例えば、核酸配列決定に好適な複数のクローン鋳型を生成するためにブリッジ増幅またはemPCRを使用して増幅される。
いくつかの実施形態では、クローン的に増幅されるライブラリー配列の少なくとも1つは、支持体または粒子に付着している。支持体は、任意の好適な材料で構成することができ、例えば、平面、回転楕円体、または微粒子を含む、任意の好適な形状を有することができる。いくつかの実施形態では、支持体は、その全体が参照により本明細書に組み込まれる、米国特許出願公開第2010/0304982号に記載される足場ポリマー粒子である。ある特定の実施形態では、方法は、ライブラリー配列の富化集団の少なくとも一部分を支持体(例えば、配列決定支持体)上に堆積させることを含み、支持体は、一連の配列決定反応部位を含む。いくつかの実施形態では、ライブラリー配列の富化集団は、支持体上の配列決定反応部位に付着しており、支持体は、一連の102~1010個の配列決定反応部位を含む。
配列決定は、核酸の配列に関する情報の決定を意味し、核酸の部分および完全配列情報の同定または決定を含み得る。配列情報は、異なる程度の統計的確実性または信頼性で決定され得る。いくつかの実施形態では、配列分析は、qPCR、rtPCR、および/または当該技術分野において知られるアレイハイブリダイゼーション検出方法論などによる高スループット、低深度検出を含む。いくつかの実施形態では、配列決定分析は、Sangerシーケンシングまたは他の高スループット次世代シーケンシング法などによる詳細な配列評価の決定を含む。次世代シーケンシングとは、多数(典型的には数千~数十億)の核酸配列を本質的に大規模な並列様式で決定する方法を使用した配列決定を意味し、例えば、多数の配列は、例えば、並列で、またはあるいは、それ自体が並列化され得る超高スループット連続プロセスを使用して読み出される。よって、ある特定の実施形態では、本発明の方法は、大規模並列配列決定を含む配列決定分析を含む。かかる方法は、これらに限定されないが、パイロシーケンシング(例えば、454 Life Sciences,Inc.,Branford,Conn.によって商業化される)、連結による配列決定(例えば、SOLiD(商標)技術、Life Technologies,Inc.,Carlsbad,Calif.で商業化される)、修飾ヌクレオチドを使用した合成による配列決定(Illumina,Inc.,San Diego,Calif.によるTruSeq(商標)およびHiSeg(商標)、ならびにMiSeq(商標)および/またはNovaSeq(商標)技術、Helicos Biosciences Corporation,Cambridge,Mass.によるHeliScope(商標)、ならびにPacific Biosciences of California,Inc.,Menlo Park,Calif.によるPacBio Sequel(登録商標)またはRSシステムで商業化されるもの)、イオン検出技術による配列決定(例えば、Ion Torrent(商標)技術、Life Technologies,Carlsbad,Calif.)、DNAナノボールの配列決定(Complete Genomics,Inc.,Mountain View,Calif.)、ナノポアベースの配列決定技術(例えば、Oxford Nanopore Technologies,LTD,Oxford,UKによって開発される)、および同様の高度に並列化された配列決定法を含む。
例えば、ある特定の実施形態では、本開示の教示により生成されたライブラリーは、Ion Torrent(商標)PGMシステム(例えば、核酸断片ライブラリーのIon Sphere(商標)粒子上へのPCR媒介付加)(Life Technologies、Part No.4467389)またはIon Torrent Proton(商標)PGMシステムを使用するIon Xpress(商標)鋳型キットを含む様々な下流の用途において使用されるのに十分な収率である。例えば、アンプリコンライブラリーから鋳型ライブラリーを調製するための指示は、その全体が参照により本明細書に組み込まれる、Ion Xpress鋳型キットユーザガイド(Life Technologies、Part No.4465884)に見つけることができる。核酸配列決定のために後続の鋳型ライブラリーをIon Torrent(商標)チップにロードするための指示は、その全体が参照により本明細書に組み込まれる、Ionシーケンシングユーザガイド(Part No.4467391)に記載される。
配列決定反応の開始点は、配列決定プライマーを固相増幅反応の生成物にアニールすることにより提供され得る。これに関して、鋳型ライブラリーの形成中に追加されるアダプターの一方または両方は、鋳型ライブラリーの全ゲノムまたは固相増幅に由来する増幅生成物への配列決定プライマーのアニーリングを可能にするヌクレオチド配列を含み得る。本発明の実施形態の実装に応じて、タグ配列および/または標的核酸配列は、単一の配列決定プライマーからの単一のリード、または2つの異なる配列決定プライマーからの複数のリードにおいて決定され得る。2つの配列決定プライマーからの2つのリードの場合、「タグリード」および「標的配列リード」は、第1の配列決定リードが完了した後にアニールされたプライマーを除去するための好適な変性ステップとともに、いずれかの順序で実施される。
いくつかの実施形態では、シーケンサーは、増幅された標的核酸分子の配列を決定するためにパラメータまたはソフトウェアを適用するサーバーに結合される。ある特定の実施形態では、シーケンサーは、試料中に存在する低頻度変異対立遺伝子の存在を決定するためにパラメータまたはソフトウェアを適用するサーバーに結合される。
例証
実施例1 材料および方法
RNAおよびDNAが分析される試料、例えばFFPE RNAおよびcfTNAにおいて逆転写(RT)反応法(21uL反応)が行われ得る。
1. 5×URT緩衝液を室温で少なくとも5分間解凍する。(注:チューブ内に白い沈殿物がないか確認されたい。必要に応じて混合するためにボルテックスする)
Figure 2022546485000003
2. MicroAmp EnduraPlate 96ウェルプレートで、以下の成分を追加してRT反応を設定する。
(5~15ngのRNAまたはDNA//5~40ngのcfTNA)
Figure 2022546485000004
3. ボルテックスまたはピペッティングにより内容物全体を混合する。簡単にスピンダウンする。
4. 各反応ミックスの上部に20μlのParol 40Cオイルを添加する。
5. プレートをサーモサイクラー(例えば、SimpliAmpサーモサイクラー)にロードし、次のプログラムを実行する。
Figure 2022546485000005
低サイクルタグ付けPCR(38uL反応体積±20uLオイル):
96ウェルPCRプレートウェルでタグ付けPCR反応を組み立てる。
FFPE DNA試料のみ
1. MicroAmp EnduraPlate 96ウェルプレートに以下の成分を追加して、反応を組み立てる。
a.UDGミックスの調製:1ul+5ulの5×URT緩衝液
b.6ulの希釈UDGを15μlのFFPE DNA試料に添加する。
c.ボルテックスで混合する。簡単にスピンダウンして、ウェルの底に反応物を集める。
d.各試料の上部に20μLのParol 40Cオイルを添加する。
e.次のように反応を実施する。
Figure 2022546485000006
2. 増幅マスターミックスの調製:
Figure 2022546485000007
3. 17μLのPCRマスターミックスを21μLのUDGティートFFPE DNA試料に追加する。
ピペットを20μLの体積に設定する。オイル相を乱すことなく反応物を完全に混合するために、20回上下にピペッティングしてオイルの下で反応物を混合する。プレートを簡単にスピンダウンする。
FFPE RNAおよびcfTNA試料のみ
1. 上述のRTステップからRT反応物に成分を直接追加する。
Figure 2022546485000008
2. ピペットを20μLの体積に設定する。オイル相を乱すことなく反応物を完全に混合するために、20回上下にピペッティングしてオイルの下で反応物を混合する。プレートを簡単にスピンダウンする。
3. SimpliAmpで次のサイクリング条件を使用して、3サイクルのタグ付けPCRを実施する。
FFPE DNAおよびRNAライブラリーの場合:
Figure 2022546485000009
cfTNAライブラリーの場合、
Figure 2022546485000010
消化充填ライゲーション(45.6μL反応体積±20μLオイル):
1. 上述のPCR反応ウェルの各々に7.6μLのSUPAを添加する。オイル層の下の試料に直接SUPAを添加する。
2. ピペットを25μLに設定する。オイル層の下の反応を20回上下にピペッティングして混合する。プレートを簡単にスピンダウンする。
3. プレートをサーモサイクラーにロードし、次のプログラムを実行する。
Figure 2022546485000011
ライブラリー増幅(約51μL反応体積±20μLオイル)
1. 上述の消化充填ライゲーション後の反応物30μLをAmpliSeq HDデュアルバーコードに注意深く移す。20回上下にピペッティングしてよく混合する。すべての反応物をオイル層の下の元のウェルに戻す。
2. ピペットを30μLに設定する。20回上下にピペッティングすることにより、オイルの下で反応物全体を混合する。プレートを簡単にスピンダウンする。
3. プレートをサーモサイクラーにロードし、次のプログラムを実行する。
Figure 2022546485000012
2-ラウンドAmpureXPライブラリー精製
得られる修復された試料は、36.8ulのAmpure(登録商標)ビーズ(Beckman Coulter,Inc.)を2ラウンド、製造業者の使用説明書に従って使用して精製される。簡潔に述べると:
オイル層の下にある46μLのライブラリー反応物をPCRプレートの新しい清浄なウェルに移す。
36.8μlのAgencourt(商標)AMPure(商標)XP試薬を各試料に添加し、ピペッティングして混合し、室温で5分間インキュベートする。
ウェル内の溶液が透明になるまで、プレートを磁石の上に置く。
上清を注意深く取り除いて、残っている上清を取り除く。
10mM pH8のトリス-HCl中の80%エタノール150uLを添加する。ビーズペレットを乱さないようにされたい。
磁石上のプレートを5秒間隔で3回切り替える。上清を取り除く。もう一度洗浄ステップを繰り返す。ピペットを使用して、ウェル内の残りの緩衝液を取り除く。
ウェルを室温で5分間乾燥させる。
30uLの低TE緩衝液をウェルに添加し、ピペットでビーズを再懸濁する。
溶液を室温で5分間インキュベートし、プレートを磁石の上に置いて溶液を透明にする。
30uLの溶離液をプレート上の清浄なウェルに移す。
上述のウェルに30μL(1×体積)のAmpureXPビーズを添加する。よく混合するためにピペッティングする。
2回目の精製後に40uLの低TE緩衝液を使用して溶出し、上述のステップを繰り返す。
ライブラリーの40uLを新しい清浄なウェルに移す。
個別イコライザーによるライブラリーの正規化
まず、Ion Library Equalizer(商標)キットのすべての試薬を室温まで温める。すべての試薬をボルテックスして遠心分離する。Equalizer(商標)ビーズを洗浄する(以前に実施した場合は、Equalizer(商標)ビーズの添加および洗浄にスキップする)。
1. 4つの反応ごとに、12μLのビーズを清浄な1.5mLチューブおよび24μL/反応物のEqualizer(商標)洗浄緩衝液に添加する。
2. チューブを磁気ラックに3分間、または溶液が完全に透明になるまで置く。
3. ペレットを乱すことなく慎重に上清を取り除き、廃棄する。
4. 磁石から取り出し、反応ごとに24μLのEqualizer(商標)洗浄緩衝液を添加し、再懸濁する。
ライブラリーを増幅する
5. 精製されたライブラリーを含むプレートを磁石から取り外し、10μLの5×DV-Amp Mixおよび2μLのEqualizer(商標)プライマー(Equalizerキットのピンクのキャップ)を添加する。総体積=52μL
6. 混合する。
7. 試料の上に20μLのParol 40Cオイルを静かに添加する。
8. サーモサイクラーで次のプログラムを実行する。
98Cで2分間
FFPE DNA/RNAの場合は9サイクルの増幅、cfTNAの場合は6サイクルの増幅:
98Cで15秒間
64Cで1分間
次いで
4Cで無限に保持
9. (任意選択的)熱サイクリング後、プレートを遠心分離して液滴を収集する。
増幅されたライブラリーにEqualizer(商標)キャプチャーを添加する
10. オイル層の下の各々のライブラリー増幅反応物に10μLのEqualizerキャプチャーを添加する。
11. 10回上下に混合する。
12. 室温で5分間インキュベートする。
Equalizer(商標)ビーズを添加して洗浄する
13. オイル層の下にある60μLの増幅されたライブラリー試料を、洗浄したビーズを入れたウェルに移す。
14. 完全に混合する。
15. 室温で5分間インキュベートする。
16. プレートを磁石に入れ、次いで、2分間または溶液が透明になるまでインキュベートする。
17. 上清を取り除く。
18. 150μLのEqualizer(商標)洗浄緩衝液を各々の反応物に添加する。
19. プレートを磁石に入れたまま、上清を取り除き、廃棄する。
20. ビーズ洗浄を繰り返して、イコライズされたライブラリーを溶出する。
イコライズされたライブラリーを溶出する
21. 磁石からプレートを取り外し、100μLのEqualizer(商標)溶出緩衝液を各々のペレットに添加する。
22. 50ulの体積で5回のピペッティング混合する。
23. サーモサイクラーで32℃で5分間インキュベートして、ライブラリーを溶出する。
24. すぐに取り外し、プレートを磁石に入れ、溶液が透明になったらすぐに新しいウェルに移す。
25. qPCRを実施し、鋳型化および配列決定のためにプールを100pMに調整する。
実施例2 組成物および方法
提供される方法の第1のステップは、数回の増幅、例えば、3~6サイクルの増幅、特定の例では、各遺伝子特異的標的配列に対して順方向および逆方向アダプターを使用する3サイクルの増幅を含む。各アダプターは、5’ユニバーサル配列、および3’遺伝子特異的標的配列を含有する。いくつかの実施形態では、アダプターは、5’ユニバーサルおよび3’遺伝子特異的標的配列の間に位置するユニークタグ配列を任意選択的に含む。
ユニークタグ配列が利用される具体的な実施形態では、各遺伝子特異的標的アダプター対は、各アダプターに多数の異なるユニークタグ配列を含む。例えば、各遺伝子特異的標的アダプターは、最大4096個のTAGを含む。よって、各標的特異的アダプター対は、少なくとも4個および最大16,777,216個の可能な組み合わせを含む。
提供されるアダプターの各々は、順方向および逆方向アダプター配列中の特定の位置でチミンの代わりに切断可能なウラシルを含む。ウラシル(U)の位置は、ユニークタグ配列を有するすべての順方向および逆方向アダプターについて一貫しており、ウラシル(U)は、存在する場合ユニークタグ配列の5’および3’末端に隣接して存在し、各遺伝子特異的標的配列の位置は必然的に変動するが、Uは、遺伝子特異的標的配列領域の各々に存在する。各ユニークタグ配列(UT)に隣接し、遺伝子特異的配列領域にあるウラシルは、選択された温度でハイブリダイズしたままであるように設計される、ユニバーサルハンドル配列の融解温度よりも低い温度での断片解離を促進するように、配列およびかかる配列の計算されたTmとともに設計される。UT領域の隣接配列中のUの変動は可能であるが、設計は、融解温度を順方向および逆方向アダプターの各々に対するユニバーサルハンドル配列のそれよりも低く維持する。例示的なアダプター配列構造は、以下を含む。
Figure 2022546485000013
ここで、各Nは、A、C、G、またはTから選択される塩基であり、UT領域の定常セクションは、可変(N)部分の正しい同定を確保するためにアンカー配列として使用される。UT領域のTmがユニバーサルハンドル領域のそれを下回ったままである限り、UTの定常領域と可変領域は、有意に変更することができる(例えば、代替定常配列、セクションあたり>3N)。重要なことには、切断可能なウラシルは、各々の順方向(例えば、TCTGTACGGTGACAAGGCG(配列番号1566)および逆方向(例えば、TGACAAGGCGTAGTCACGG(配列番号1567))のユニバーサルハンドル配列に存在しない。この実施例では、ユニバーサル配列は、ION Torrentプラットフォームでの配列を配列決定の後続の増幅および追加に対応するように設計されているが、当業者は、そのようなユニバーサル配列を、代替のシーケンシングプラットフォーム(例えば、ILLUMINAシーケンシングシステム、QIAGENシーケンシングシステム、PACBIOシーケンシングシステム、BGIシーケンシングシステムなど)により適用し得る他のユニバーサル配列を使用するように適応できることを理解する。
提供される組成物の使用方法は、AmpliSeq HDテクノロジーによるライブラリーの調製と、そのわずかな変形、ならびにThermo Fisher Scientificから入手可能な試薬およびキットの使用を含む。SuperFiU DNAは、ウラシル結合ポケット(例えば、AA 36)およびファミリーBポリメラーゼ触媒ドメイン(例えば、AA 762)における修飾を含む。SuperFiUは、2017年6月26日に出願された米国仮特許出願第62/524,730号に記載されており、これは参照により本明細書に組み込まれる。ポリメラーゼ酵素は、アダプター配列中に含まれるウラシルおよび/または任意の代替の切断可能な残基(例えば、イノシンなど)を利用するそれらの能力が制限され得る。ある特定の実施形態では、酵素特異的PCRエラーを低減するためにポリメラーゼの混合物を使用することが有利であり得る。
方法の第2のステップは、得られるアンプリコン、および任意の未使用ウラシル含有アダプターの部分消化を含む。例えば、ウラシルが切断可能な部位として組み込まれる場合、消化および修復は、得られるプライマー、プライマーダイマー、およびアンプリコンからのウリジン一リン酸の酵素的切断と、DNA断片を融解し、次いでポリメラーゼフィルインおよび連結によってギャップのあるアンプリコンを修復することと、を含む。このステップは、多重PCRにおいて発生するプライマー-ダイマー生成物を低減し、潜在的に排除する。いくつかの例では、消化および修復は、単一ステップで行われる。特定の例では、消化および修復ステップを時間的に分離することが望ましい場合がある。例えば、熱不安定性ポリメラーゼ阻害剤は、消化がより低い温度(25~40℃)で起こり、修復が、ユニバーサルハンドル配列を融解するには十分に高くないが、ポリメラーゼ阻害剤相互作用(例えば、ポリメラーゼ-Ab)を破壊するには十分に温度を増加させることによって活性化されるように、方法とともに利用され得る。
ウラシル-DNAグリコシラーゼ(UDG)酵素を使用して、ウラシルを除去し、脱塩基部位を残すことができ、これは(これらに限定されないが)APE1-アプリン/アピリミジンエンドヌクレアーゼ、FPG-ホルムアミドピリミジン[fapy]-DNAグリコシラーゼ、Nth-エンドヌクレアーゼIII、エンドVIII-エンドヌクレアーゼVIII、PNK-ポリヌクレオチドキナーゼ、Taq-Thermus aquaticus DNAポリメラーゼ、DNA pol I-DNAポリメラーゼI、Polベータ-ヒトDNAポリメラーゼベータを含むいくつかの酵素または酵素の組み合わせによって作用することができる。特定の実装では、方法は、ヒトアプリン/アピリミジンエンドヌクレアーゼ、APE1を使用する。APE1活性は、3’-OHおよび5’-デオキシリボース-リン酸(5’-dRP)を残す。5’-dRPの除去は、recJ、ポリメラーゼベータ、Taq、DNA pol I、または5’-3’エキソヌクレアーゼ活性を有する任意のDNAポリメラーゼを含む多くの酵素によって達成することができる。これらの酵素のいずれかによる5’-dRPの除去は、連結可能な5’-リン酸末端を作成する。別の実装では、UDG活性は、ウラシルを除去し、脱塩基部位を残し、これはFPGによって除去され、3’および5’-リン酸が残る。次いで3’-リン酸は、T4 PNKによって除去され、ポリメラーゼ伸長可能な3’-OHが残る。次いで5’-デオキシリボースリン酸は、ポリメラーゼベータ、fpg、Nth、Endo VIII、Taq、DNA pol I、または5’-3’エキソヌクレアーゼ活性を有する任意の他のDNAポリメラーゼによって除去することができる。特定の実装では、Taq DNAポリメラーゼが利用される。
修復フィルインプロセスは、ほぼすべてのポリメラーゼ、場合によってはステップ1における増幅に使用される増幅ポリメラーゼによって、または(これらに限定されないが)Phusion DNAポリメラーゼ、Phusion U DNAポリメラーゼ、SuperFi DNAポリメラーゼ、SuperFi U DNAポリメラーゼ、TAQ、Polベータ、T4 DNAポリメラーゼ、およびT7 DNAポリメラーゼを含むステップ2において追加された任意のポリメラーゼによって達成することができる。アンプリコンの連結修復は、(これらに限定されないが)T4 DNAリガーゼ、T7 DNAリガーゼ、Taq DNAリガーゼを含む多くのリガーゼによって実施することができる。方法の特定の実装では、Taq DNAポリメラーゼが利用され、連結修復がT7 DNAリガーゼによって達成される。
ライブラリー調製の最後のステップは、調製されたアンプリコンの5’および3’末端上のユニバーサルハンドル配列に相補的な配列を含有するユニバーサルプライマーを使用した標準的なPCRプロトコルによる修復アンプリコンの増幅を含む。例えば、A-ユニバーサルプライマー、およびP1ユニバーサルプライマー、Ion Expressアダプターキット(Thermo Fisher Scientific,Inc.)の各部分は、任意選択的に、試料特異的バーコードを含有し得る。最後のライブラリー増幅ステップは、これらに限定されないが、Phusion DNAポリメラーゼ、Phusion U DNAポリメラーゼ、SuperFi DNAポリメラーゼ、SuperFi U DNAポリメラーゼ、Taq DNAポリメラーゼ、Veraseq Ultra DNAポリメラーゼを含む多くのポリメラーゼによって実施され得る。
実施例3 アッセイの内容および方法
表1の標的に特異的な標的配列に向けられるプライマーとともに、アダプターは、各々の遺伝子特異的標的配列について4096個のユニークタグ配列をそれぞれ含み、各々の遺伝子特異的標的配列対について16,777,216個の異なるユニークタグの組み合わせの推定値をもたらす。
ライブラリーの調製は、上述された方法に従って行った。準備されたライブラリーは、鋳型化および配列決定のために調製され、分析される。配列決定は、これらに限定されないが、合成による配列決定、連結による配列決定、および/またはハイブリダイゼーションによる配列決定を含む、様々な既知の方法によって行うことができる。配列決定は、本明細書の実施例では、Ion Torrentプラットフォーム(Thermo Fisher Scientific,Inc.)を使用して行われたが、ライブラリーは、任意の他のプラットフォーム、例えば、Illumina、Qiagen、PacBioなどを使用した分析、例えば、配列決定のために調製および適合させることができる。結果は、例えば以下のような、性能を評価するためのいくつかのメトリックを使用して分析できる。
○ファミリー数(捕捉された入力DNAのng)ファミリー数の中央値は、個々の標的にマッピングされるファミリー数の尺度である。この場合、各ユニーク分子タグは、ファミリーである。
○均一性は、少なくとも0.2倍の平均リード深度によって網羅される標的塩基のパーセンテージの尺度である。このメトリックは、技術が特定の標的を選択的に過小増幅しないことを確認するために使用される。
○陽性/陰性:既知の変異を有する対照試料が利用され、分析される場合(例えば、Acrometrix腫瘍学ホットスポット対照DNA、Thermo Fisher Scientific,Inc.)、真陽性の数を追跡することができる。
■真陽性:真陽性の数は、存在し、正しく同定された変異の数を知らせる。
■偽陽性(FP):(ホットスポットおよび標的全体)偽陽性の数は、試料中に存在しないことが知られているが、存在すると決定される変異の数を知らせる。
■偽陰性(FN)(アクロメトリクススパイクインが使用される場合)偽陰性の数は、存在したが同定されなかった変異の数を知らせる。
○オン/オフ標的は、標的領域にわたって整列された/整列されていないマッピングされたリードのパーセンテージである。このメトリックは、技術が、パネルが設計された標的を主に増幅することを確認するために使用される。
○低品質は、データを分析する価値があることを確認するために追跡される。このメトリックは、一般的なシステムメトリックであり、この技術に直接関連するものではない。
Figure 2022546485000014
臨床的証拠は、遺伝子/バリアントの組み合わせが薬物ラベル、ガイドライン、および/または臨床試験に現れる事例の数として定義される。表2および3は、臨床的証拠によって裏付けられた、提供されたアッセイに関連する上位の遺伝子/バリアントおよび適応症を示している。
Figure 2022546485000015
提供されたアッセイの対象となる最大29の遺伝子およびバリアントの組み合わせは、薬物ラベルおよび/またはガイドライン(NCCNおよびESMO)に記載されている。
Figure 2022546485000016
実施例4の結果
プライマーは、本明細書で提供される組成物設計アプローチを使用して設計され、ライブラリー増幅ステップが(2つのユニバーサル配列をアンプリコンの各末端、例えば、A-ユニバーサルハンドルおよびP1-ユニバーサルハンドルを各末端に配置して)本明細書に記載されるように双方向配列決定を可能にするために2つのプライマー対を利用し、表1に上述されるようなパネル標的遺伝子のものを使用して腫瘍遺伝子に標的化された。調製されたライブラリーは、Ion Gene Studio鋳型化/および配列決定キットおよびインスツルメンテーション(Thermo Fisher Scientific,Inc.)および/または新しい完全に統合されたライブラリー調製、鋳型化、および配列決定システムを使用して配列決定された。インスタントパネルの実施は、テクノロジーが目的の変異、コピー数多型、および融合を適切に検出できることを示している。
4A.NSCLC FFPE試料からの様々なALKおよびROSアイソフォームでの融合検出機能
ライブラリーは、上述のように調製および配列決定された。予想どおり、様々な融合アイソフォームの検出が実証された。
Figure 2022546485000017
4B:GeneStudio S5および新しいシーケンサーを使用した一致試料での変異検出
Figure 2022546485000018
ライブラリーの調製、配列決定、および分析は、ION GeneStudio S5での手動の調製および配列決定の両方、ならびに自動化された統合ライブラリーの調製、鋳型化、および配列決定システムを使用して、上述のように一致した試料の変異検出のために行われた。高精度アッセイは、自動化システムと比較して、手動ワークフローを備えたGeneStudio S5の両方で、一致した組織および血漿試料全体で一致するPIK3CAおよびKRAS変異の検出を示した。
4C:様々ながんの適応症にわたるDNAバリアントの検出
ライブラリーの調製、配列決定、および分析は、ION GeneStudio S5での手動の調製および配列決定の両方、ならびに自動化された統合ライブラリーの調製、鋳型化、および配列決定システムを使用して、上述のように様々な異なる試料タイプの変異検出のために行われた。高精度アッセイは、様々ながん適応症試料タイプにわたって様々なドライバー変異が検出されたことを示した。
Figure 2022546485000019
4D:一致したFFPEおよび血漿試料のコホートを使用した検出
一致したFFPEおよび血漿試料のコホート全体でバリアントを検出する際のアッセイの性能を評価するために、ライブラリーの調製、配列決定、および分析を行った。このアッセイは、様々ながん適応症試料タイプにわたる様々なドライバー変異の検出を示した。一致したFFPEおよび血漿試料のセットでアッセイを使用すると、8つのうち4つが一致したPIK3CA(1)およびKRAS(3)変異を有しており、一方、8つに1つは一致するNOバリアントが検出された
Figure 2022546485000020
4E:既知のバリアントを伴うFFPEがん試料の変異の検出
ONCOMINE cfDNAアッセイを使用して以前に確認された既知の変異を含む、16のFFPE試料(NSCLC、乳房、およびCRC)のバリアントの検出におけるアッセイの性能を評価するために、ライブラリーの調製、配列決定、および分析を行った。統合システムでのアッセイを使用して、試料を単一の実行(チップ)で試験した。8つの試料は、ONCOMINE cfDNAアッセイを使用して以前に特徴づけられていた。このコホートでは、EGFR、ERBB4、IDH1、KRAS、MET、PIK3CA、およびTP53内で17の変異が検出された。さらに、EGFR、ERBB2、およびFGFR1での3つの増幅は最後に、FGFR2およびRSPO3ドライバー遺伝子との3つの融合も検出された。このアッセイでは、FFPE試料のコホートで、SNV変異、CNV増幅、融合を含む、様々なバリアントを検出することができた。
4F:FFPEからの複数のがんのタイプによるSNVおよびCNVの検出
このアッセイは、様々ながんの適応症にわたる様々なドライバー変異を検出するために使用された。すべての結果は、異なるアッセイおよびシステムを使用した以前の特性評価と一致していた。
Figure 2022546485000021
4G:ALK、ROS1、RET、NTRK1、NTRK2、およびNTRK3ドライバー遺伝子間の融合の検出。
融合バリアントの検出におけるアッセイの性能を評価するために、ライブラリーの調製、配列決定、および分析を行った。アッセイは、6つのドライバー遺伝子(ALK、BRAF FGFR3、NTRK1、NTRK3、RET、およびROS1)を表す11の融合アイソフォーム、ならびに標的化アイソフォーム検出を使用した3つのドライバー遺伝子(NTRK1、NTRK2、およびNTRK3)を表す15のNTRK融合アイソフォームを再現性よく検出することができた。
Figure 2022546485000022
4H:対照材料中のEGFRおよびKRASバリアントの検出
Figure 2022546485000023
Horizon EGFR遺伝子特異的Multiplex参照標準5%および1%FFPE対照を使用するEGFRのバリアントの検出、ならびにHorizon KRAS遺伝子特異的Multiplex参照標準5%FFPEを使用するRASの融合バリアントの検出におけるアッセイの性能を評価するために、ライブラリーの調製、配列決定、および分析を行った。このアッセイでは、Horizon FFPE対照を使用して、5%の対立遺伝子頻度ですべてのEGFRバリアントを検出することができた。通常のLODを下回る1%の対立遺伝子頻度で、アッセイは2回の複製で8つの事例のうち7つを検出した。このアッセイは、Horizon対照を使用して6つのRAS変異を再現性よく検出することができた。
4I:cfDNA対照を使用したKRAS、BRAF、KIT、EGFR変異の検出
cfDNA対照SeraCare Seraseq ctDNA基準材料v2 AF 0.125%またはHorizon Multiplex I cfDNA参照標準セット(1%および0.1%)を使用する、KRAS、BRAF、KIT、EGFR変異の検出におけるアッセイの性能を評価するために、ライブラリーの調製、配列決定、および分析を行った。このアッセイでは、cfDNA対照を使用して対立遺伝子頻度0.1%までの変異を検出することができた。
Figure 2022546485000024
4J:METおよびPTENのコピー数多型の検出
対照および細胞株を使用したMETコピー増加およびPTENコピー減少の検出におけるアッセイの性能を評価するために、ライブラリーの調製、配列決定、および分析を行った。METを検出するためにStructural Multiplex FFPE参照標準(Horizon)を使用し、PTENコピー数多型を検出するためにPTEN細胞株(ATCC)を使用した。このアッセイでは、対照および細胞株をそれぞれ使用して、METコピー数の増加およびPTENコピー数の減少を検出することができた。
Figure 2022546485000025
4K:細胞株におけるNTRK1、FGFR3、RET融合の検出。
NTRK1、FGFR3、RET融合細胞株での検出におけるアッセイの性能を評価するために、ライブラリーの調製、配列決定、および分析を行った。KM12細胞株(ATCC)、SW780細胞株(ATCC)、LC-2/ad細胞株(Sigma Aldrich)を核酸の調製および評価に使用した。アッセイは、アッセイの標的化アイソフォームおよび不均衡アッセイ法の両方を使用して、TPM3-NTRK1融合アイソフォームを検出することができた。アッセイは、アッセイの標的化アイソフォームおよび不均衡アッセイ法の両方を使用して、FGFR3-BAIAP2L1融合アイソフォームを検出することができた。興味深いことに、ALKの不均衡もこの細胞株で検出された。これらの結果をさらに理解するための研究が進行中である。このアッセイでは、標的化アイソフォームおよび不均衡アッセイの両方の方法を使用してCCDC6-RET融合アイソフォームを検出することができた。
Figure 2022546485000026
4L:FFPE試料中のALKおよびROS1融合の検出
FFPE試料中のALKおよびROS1融合の検出におけるアッセイの性能を評価するために、ライブラリーの調製、配列決定、および分析を行った。このアッセイでは、標的化アイソフォームおよび不均衡アッセイの両方の方法を使用してALK融合を検出し、FFPE試料に対して標的化アイソフォーム法を使用してROS1融合を検出することができた。
Figure 2022546485000027
本発明の好ましい実施形態が本明細書において示され、記載されているが、かかる実施形態が例としてのみ提供されることは、当業者には明らかであろう。多くの変化形、変更、および置換は、本発明から逸脱することなく、当業者に思いつくであろう。本明細書に記載される本発明の実施形態の様々な代替物が本発明の実施に用いられ得ることを理解されたい。以下の特許請求の範囲は、本発明の範囲を定義し、これらの特許請求の範囲の範囲内の方法および構造ならびにそれらの同等物がそれにより網羅されることが意図される。
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Claims (20)

  1. 試料中のアクショナブルな腫瘍バイオマーカーの単一ストリーム多重決定のための組成物であって、前記組成物が、前記試料中の低レベル標的を検出するために複数の標的配列に向けられたプライマー対試薬の複数のセットからなり、標的遺伝子が、以下の機能:DNAホットスポット変異遺伝子、コピー数多型(CNV)遺伝子、遺伝子間融合遺伝子、および遺伝子内融合遺伝子からなる群から選択される、組成物。
  2. 試料中の1つ以上のアクショナブルな標的遺伝子が、潜在的な診断、予後、候補治療レジメン、および/または有害事象を示す前記試料中の腫瘍活性における変化を決定する、請求項1に記載の組成物。
  3. 前記標的遺伝子が、表1の遺伝子から選択される、請求項1に記載の組成物。
  4. 前記標的遺伝子が、表1の遺伝子からなる、請求項1に記載の組成物。
  5. 前記複数の標的配列が、表Aからのプライマーによって検出されるアンプリコン配列を含む、請求項1に記載の組成物。
  6. 前記複数の標的配列が、表Aからのプライマーによって検出されるアンプリコン配列の各々を含む、請求項1に記載の組成物。
  7. 前記複数のプライマー試薬が、表Aのプライマーから選択される、請求項1に記載の組成物。
  8. 前記複数のプライマー試薬が、表Aのプライマーの各々からなる、請求項1に記載の組成物。
  9. 請求項1~8のいずれかに記載の組成物を含む、多重アッセイ。
  10. 請求項1~8のいずれかに記載の組成物を含む、試験キット。
  11. 生物学的試料中の試料中の1つ以上のアクショナブルな腫瘍バイオマーカーの存在を決定するための方法であって、
    生物学的試料からの複数の標的腫瘍配列の多重増幅であって、前記増幅が、前記試料の少なくとも一部を、増幅条件下で請求項1~8のいずれか一項に記載の組成物およびポリメラーゼと接触させ、それによって増幅された標的腫瘍配列を生成することを含む、多重増幅と、
    前記複数の標的配列の各々を検出することであって、対照試料と比較した1つ以上のアクショナブルな腫瘍バイオマーカーの検出が、潜在的な診断、予後、候補治療レジメン、および/または有害事象を示す前記試料中の腫瘍活性における変化を決定する、検出することと、を含む、方法。
  12. 標的遺伝子が、DNAホットスポット変異遺伝子、コピー数多型(CNV)遺伝子、遺伝子間融合遺伝子、および遺伝子内融合遺伝子からなる群から選択される、請求項11に記載の方法。
  13. 前記標的遺伝子が、表1の遺伝子から選択される、請求項11に記載の方法。
  14. 前記標的遺伝子が、表1の遺伝子からなる、請求項11に記載の方法。
  15. 前記複数の標的配列が、表Aからのプライマーによって検出されるアンプリコン配列を含む、請求項11に記載の方法。
  16. 前記複数の標的配列が、表Aからのプライマーによって検出されるアンプリコン配列の各々を含む、請求項11に記載の方法。
  17. 前記複数のプライマー試薬が、表Aのプライマーから選択される、請求項11に記載の方法。
  18. 前記複数のプライマー試薬が、表Aのプライマーの各々からなる、請求項11に記載の方法。
  19. 前記生物学的試料が、腫瘍および/または腫瘍の周囲の組織を含む、請求項11に記載の方法。
  20. 前記生物学的試料および前記対照試料が、同じ個体からのものである、請求項11に記載の方法。
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Family Cites Families (10)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4683195A (en) 1986-01-30 1987-07-28 Cetus Corporation Process for amplifying, detecting, and/or-cloning nucleic acid sequences
US4683202A (en) 1985-03-28 1987-07-28 Cetus Corporation Process for amplifying nucleic acid sequences
US20030092019A1 (en) * 2001-01-09 2003-05-15 Millennium Pharmaceuticals, Inc. Methods and compositions for diagnosing and treating neuropsychiatric disorders such as schizophrenia
US8574835B2 (en) 2009-05-29 2013-11-05 Life Technologies Corporation Scaffolded nucleic acid polymer particles and methods of making and using
AU2013347838A1 (en) * 2012-11-26 2015-06-11 Caris Life Sciences Switzerland Holdings Gmbh Biomarker compositions and methods
CN104630375B (zh) * 2015-02-16 2018-10-30 北京圣谷同创科技发展有限公司 癌症基因突变及基因扩增检测
US10344336B2 (en) * 2015-06-09 2019-07-09 Life Technologies Corporation Methods, systems, compositions, kits, apparatus and computer-readable media for molecular tagging
CN108473975A (zh) 2016-11-17 2018-08-31 领星生物科技(上海)有限公司 检测肿瘤发展的系统和方法
SG11202001010UA (en) 2017-08-07 2020-03-30 Univ Johns Hopkins Methods and materials for assessing and treating cancer
CN107723354B (zh) 2017-08-23 2021-09-07 广州永诺健康科技有限公司 一种基于高通量测序检测非小细胞肺癌致癌基因突变的多重pcr引物、试剂盒和方法

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