JP2022537031A - プロテアーゼネキシン-1に対する立体構造的な単一ドメイン抗体及びその使用 - Google Patents
プロテアーゼネキシン-1に対する立体構造的な単一ドメイン抗体及びその使用 Download PDFInfo
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Abstract
Description
本発明は、プロテアーゼネキシン-1(PN-1)に対する立体構造的な単一ドメイン抗体、及び特に治療分野におけるその使用に関する。
血友病患者及びより一般的には恒常的な出血性疾患を有する患者における出血エピソードを制御するための現在の処置は、多くの欠点を呈する。阻害剤を用いたこれらの患者の処置は、組換え型第VIIa因子又は血漿由来活性化プロトロンビン複合体などの、第VIII因子又は第IX因子迂回剤に限定されている。しかしながら、これらの製品は高価であり、かなりの数の患者が、これらの薬剤に応答しない。したがって、組換え型又は血漿由来第VIII因子若しくは第IX因子の静注に大半が依拠する現在の処置の限界に因り、天然抗凝固タンパク質をターゲットとすることを目的とした新規な戦略が出現した。
セルピン2としても知られている、プロテアーゼネキシン-1(PN-1)は、多くの生物学的事象における重要な調節因子である、セルピンと称される、セリンプロテアーゼ阻害剤の一員である。PN-1は、血漿中には殆ど検出不可能であるが、多くの器官において見られ、大半の細胞型(単球、血小板、及び血管細胞を含む)によって産生される、セルピンである。PN-1は、ヒト染色体2q33-q35上のセルピン2遺伝子によってコードされる、45から50kDaの糖タンパク質である。PN-1は、分子のタンパク質コア内でジスルフィド結合を形成していない3つのシステイン残基を含有している、378アミノ酸残基の一本鎖である(Bouton et al., 2012 and Mc Grogan et al 1988 Boulaftali et al., 2010)。本発明者らは以前に、PN-1をターゲットとすることが、軽症及び中等症の血友病患者におけるトロンビン生成を改善することを実証した。これらの所見は、血小板における特異的な抗凝固剤としてのPN-1の阻害のための必要条件を確立し、PN-1の遮断が、出血性疾患の処置に役割を果たすことを実証した。
本発明者らは、プロテアーゼネキシン-1(PN-1)に対する選択的な結合を可能とする、3つの特異的なCDRを含む、単一ドメイン抗体(sdAb)を開発した。これらのsdAbは、治療剤としての実行ツールを構成する。
本明細書において使用する「プロテアーゼネキシン-1」すなわち「PN-1」は、当技術分野におけるその一般的な意味を有し、セルピン2としても知られるプロテアーゼネキシン-1を指す。PN-1は、当技術分野におけるその一般的な意味を有し、多くの生物学的事象における重要な調節因子である、セルピンと称される、セリンプロテアーゼ阻害剤の一員を指す。PN-1は、血漿中には殆ど検出不可能であるが、多くの器官において見られ、大半の細胞型(単球、血小板、及び血管細胞を含む)によって産生される、セルピンである。PN-1は、ヒト染色体2q33-q35上のセルピン2遺伝子によってコードされる、45から50kDaの糖タンパク質である。PN-1は、分子のタンパク質コア内でジスルフィド結合を形成していない3つのシステイン残基を含有している、378アミノ酸残基の一本鎖である(Bouton et al., 2012 and Mc Grogan et al 1988 Boulaftali et al., 2010)。
本出願における関心対象の配列は、以下の表1に示されている:
FR1-CDR1-FR2-CDR2-FR3-CDR3-FR4(I)
(式中、
CDR1は、以下の配列:X1-T-W-X4-X5-E-I(ここでのX1はS又はDであり、X4はF又はRであり、X5はR又はLである)を有し;そして
CDR2は、以下の配列:S-X2-X3-X4-W-H-A(ここでのX2はD又はEであり、X3はP又はDであり、X4はT又はGである)を有し;そして
CDR3は、配列番号3又は配列番号7として示される配列を有する)
で示される式(I)のアミノ酸配列を含む、単離された単一ドメイン抗体(sdAb)に関する。
FR1-CDR1-FR2-CDR2-FR3-CDR3-FR4(I)
(式中、
CDR1は、配列番号9として示される配列を有し;そして
CDR2は、配列番号10として示される配列を有し;そして
CDR3は、配列番号11として示される配列を有する)
で示されるアミノ酸配列を含む、単離された単一ドメイン抗体に関する(「A08誘導体」)。
FR1-CDR1-FR2-CDR2-FR3-CDR3-FR4(I)
(式中、
CDR1は、配列番号1、配列番号5及び配列番号9からなる群より選択される配列を有し;そして
CDR2は、配列番号2、配列番号6及び配列番号10からなる群より選択される配列を有し;そして
CDR3は、配列番号3、配列番号7及び配列番号11からなる群より選択される配列を有する)
で示されるアミノ酸配列を含む、単離された単一ドメイン抗体(sdAb)に関する。
FR1-CDR1-FR2-CDR2-FR3-CDR3-FR4(I)
(式中、
CDR1は、以下の配列:X1-T-W-X4-X5-E-I(ここでのX1はS又はDであり、X4はF又はRであり、X5はR又はLである)を有し;そして
CDR2は、以下の配列:S-X2-X3-X4-W-H-A(ここでのX2はD又はEであり、X3はP又はDであり、X4はT又はGである)を有し;そして
CDR3は、配列番号3又は配列番号7として示される配列を有する)
で示されるアミノ酸配列を含む単一ドメイン抗体と、PN-1への結合に関して交差競合する。
-以下の配列:X1-T-W-X4-X5-E-I(ここでのX1はS又はDであり、X4はF又はRであり、X5はR又はLである)を有するCDR1;及び
-以下の配列:S-X2-X3-X4-W-H-A(ここでのX2はD又はEであり、X3はP又はDであり、X4はT又はGである)を有するCDR2;及び
-配列番号3又は配列番号7として示される配列を有するCDR3
を含む、少なくとも1つの単一ドメイン抗体を含む。
自動ペプチド合成の代替法として、組換えDNA技術を使用し得、ここでは、選択されたタンパク質をコードするヌクレオチド配列が発現ベクターに挿入され、適切な宿主細胞に形質転換又はトランスフェクトされ、そして本明細書に下記されているような発現に適した条件下で培養される。組換え法は、より長いポリペプチドを産生するのに特に好ましい。
本発明の単一ドメイン抗体及びポリペプチドは、プロテアーゼネキシン-1(PN-1)の阻害剤として使用される。
典型的には、本発明の単一ドメイン抗体及びポリペプチドは、薬学的に許容される賦形剤及び場合により持続放出マトリックス、例えば生分解性ポリマーと組み合わせて、医薬組成物を形成し得る。したがって、本発明の単一ドメイン抗体及びポリペプチドは、医薬組成物の形態で被験者に投与される。
材料及び方法
本発明者らは、トロンビンS-2238用の発色基質(クリオペプ社、モンペリエ、フランス)を使用して、ヒト及びマウスのPN-1の抗トロンビン触媒活性の阻害を決定した。S-2238は、pNA(4-ニトロアニリン)に共有結合した、トロンビンに対して特異的な短いペプチドである。S-2238は、トロンビンによって切断されると、遊離pNAを放出し、これは、分光光度計によって405nmで検出され得る。ヒト又はマウスのPN-1(20nM)を、二価ハイブリッド体(10又は1μMの、B11-Bv、B11-F06、又はB11-A08)と共に又はそれを伴わずに、Hepes緩衝液(20mMのHepes、0.15M NaCl、pH7.5、0.1%ヒト血清アルブミン)中で37℃で5分間インキュベートし、その後、トロンビン(1nM)と共に37℃で10分間インキュベートし、その後、発色基質S-2238(2mM)を添加した。405nmにおける吸光度の変化を90分間記録した。残留トロンビン活性は、トロンビンのみの活性に対する、二価ハイブリッド体と共に又はそれを伴わずにインキュベートされたPN-1の存在下において測定された活性の比として表現される。
ヒト及びマウスのPN-1の抗トロンビン活性の阻害
ラマ由来ライブラリーを使用して、計7回のパンニング及び940個の試験されたVHHにより、PN-1を認識する52個の候補が得られた。3つのナノボディーズ(B11、F06、及びA08)が、ヒト及びマウスのPN-1の抗トロンビン活性を阻害することができることが判明した。より良好な親和性及び阻害活性を示す、二量体の組合せを試験した。実際に、ハイブリッド体のB11-Bv、B11-F06及びB11-A08は、ヒト及びマウスのPN-1の抗トロンビン活性を阻害することができた(図2E~F)。
ラマ由来ライブラリーを認識する候補の注意深い特徴付けにより、これらの全てのVHHにより、プラスミノーゲンアクチベーター阻害剤-1(PAI-1)も認識する52個の候補がもたらされた。さらに、本発明者らが試験した全ての市販の抗PN-1抗体も非特異的であることが判明した。本明細書において、本発明者らは、単一ドメイン抗体のB11、F06及びA08、並びにハイブリッド体の二価B11-Bv;B11-F06、B11-A08は、ヒト及びマウスの両方のPN-1に、PN-1の系統学的に最も近いセルピン類縁体であるPAI-1との交差反応を伴うことなく、効率的に結合することを発見した(図2E~G)。
材料及び方法
材料
イソプロピルβ-D-1-チオガラクトピラノシド(IPTG)、ヒト血清アルブミン(HSA)、ウシ血清アルブミン(BSA)は、シグマ・アルドリッチ社(サン・カンタン・ファラヴィエ、フランス)製であった。ペルオキシダーゼで標識されたポリクローナルウサギ抗c-Mycタグ抗体、ポリクローナルウサギ抗6xヒスチジンタグ抗体は、アブカム社(パリ、フランス)製であった。ヒト及びマウスのPN-1並びにヒトα-トロンビンは記載の通りに調製された20、21。プロトロンビン時間及び活性化プロトロンビン時間の試薬は、スタゴ・ダイアグノスティカ社(アンエール・シュル・セーヌ、フランス)製であった。発色基質のPNAPEP-1344及びPNAPEP-0238は、クリオペプ社(モンペリエ、フランス)製であった。ダイナビーズM-450エポキシビーズ、大腸菌(E.coli)TG1細胞、テリフィックブロス(TB)培地、溶原性ブロス(LB)培地は、サーモフィッシャーサイエンティフィック社(ヴィルボン・シュル・イヴェット、フランス)製であった。プラスミノーゲンアクチベーター阻害剤-1(PAI-1)は、スタゴBNL社(リール、フランス)製であった。AEBSFは、vWR社(フォントネー・スー・ボワ、フランス)製であった。
1匹のラマ(ラマ・グラマ)の免疫化は、がん研究センター(エクス・マルセイユ大学、マルセイユ、フランス)に外注された22。簡潔に言えば、ラマを、等しい比率のフロイント不完全アジュバントと、ヒト又はマウスのPN-1の混合物100μgを用いて免疫化した。血液採取後、mRNAをリンパ球から抽出し、VHHライブラリーを記載の通りに構築した22~24。該ライブラリーは、VHHをコードするDNA断片を含有し、これをpHEN6-ファージミドベクターにクローニングし、これをエレクトロコンピテントなE.coli TG1細胞25(サーモフィッシャーサイエンティフィック社)において形質転換することにより、0.9×108個のクローンのライブラリーが作製された。M13K07ヘルパーファージを使用して、TG1 VHHライブラリーに感染させて、VHHの表面における発現を可能とした。
PAI-1と交差反応するVHHの数を減少させるために、ファージ粒子をまず、100μgのPAI-1でコーティングされたビーズと共にインキュベートした(室温でPBS-3%ウシ血清アルブミン中で1時間)。結合していないファージを、マウスPN-1及びヒトPN-1(各々50μg)の混合物でコーティングされたビーズ上に通過させた。捕捉されたファージを、0.5mg/mlのトリプシンで溶出した。連続して3回の濃縮が行なわれた。
単離されたファージをTG1細菌に感染させた後、細胞を、撹拌下でTB培地中で4時間増殖させ、その後、1mMのIPTGを加えて、30℃でVHHの発現を誘導した。誘導から18時間後、細胞を遠心分離にかけ、周辺質の抽出物を、TES緩衝液(200mMのトリスHCl、pH8、0.5mMのEDTA、及び500mMのショ糖)中で4℃で1時間溶解し、その後、PBSで4倍希釈されたTES緩衝液中で30分間溶解した後に収集した。放出された可溶性タンパク質を、PN-1、PAI-1又はウシ血清アルブミンへの結合について試験した。PBS中のタンパク質(1□g/ウェル)を、ヌンクマキシソーププレート(サーモフィッシャーサイエンティフィック社)上に4℃で一晩かけてコーティングした。飽和(PBS-ウシ血清アルブミン3%、37℃で1時間)後、結合したVHHを、アルカリホスファターゼに結合させたポリクローナル抗6xヒスチジンタグ抗体を使用してプローブし、3,3’,5,5’-テトラメチルベンジジン(TMB)の加水分解を介して検出し、450nmにおける吸光度を解読した。
第二のアプローチにおいて、合成VHHライブラリーを使用して、抗PN-1 VHH(ハイブリジェニクス・サービスSAS社、パリ、フランス)を単離した。3×109個のVHHを含有している、このhs2dAb(ヒト化合成単一ドメイン抗体)ファージディスプレイライブラリーをまず、ヒトPAI-1でコーティングされたビーズと共にインキュベートして、非特異的な結合物質を減少させた。その後、結合していないVHHを、マウス又はヒトのPN-1でコーティングされたビーズと共にインキュベートした。計3回のファージディスプレイが行なわれ、除去工程は、各回の最中に繰り返された。3回の後、90個のE.coliクローンを無作為に拾い上げ、ヒト及びマウスのPN-1並びにPAI-1への結合について分析した。PAI-1よりもPN-1に対しての方が5倍超で増加したシグナルを示したファージクローンを、PN-1(マウス、ヒト、又はその両方)に対する特異的な結合物質と判断した。陽性クローンのシークエンスにより、18個の異なる陽性VHHの存在が判明した。これらの中の4つが、マウスPN-1及びヒトPN-1の両方を認識し、さらなる特徴付けのためにpHEN2ベクターにサブクローニングした。
抗PN-1 VHHを、E.coli WK6細胞に直接形質転換した。各クローンをまず、10mLのLB培地/100μg/mLのアンピシリン/2%グルコース/1mMのMgCl2中、穏やかな撹拌下で37℃で一晩かけて増殖させた。このプレ培養液3mLを使用して、330mLのTB培地/100μg/mLのアンピシリン/0.1%グルコース/1mMのMgCl2に接種した。培養液を、OD600が0.8~1に達するまで、撹拌した(170rpm、37℃)。その後、VHHの発現は、1mMのIPTGによって誘導され、培地を一晩増殖させたままにした(170rpm、28℃)。周辺質タンパク質を、10秒間オン/10秒間オフのサイクルを用いた30分間の超音波処理(フィッシャーサイエンティフィック社、イルキルシュ、フランス)によって抽出した。溶解率は、(溶解後の吸光度/溶解前の吸光度)×100によって確認された。ヒスチジンのタグの付いたVHHを次に、指示されているように(vWR社)、Co2+アフィニティクロマトグラフィーを介して精製した。少数派の混入物は、サイズ排除クロマトグラフィーを介して、平衡緩衝液として20mMのHepes(pH7.4)/0.1MのNaClを使用して除去された。精製されたVHHは、SDS-Page及びクーマシー染色を介して評価したところ、95%を超える均一度を示した。二価VHHについては、2コピーの一価sdAbが、[GGGs]3及びC末端6xヒスチジンタグからなるリンカーによって分離され、これにより、Co2+アフィニティクロマトグラフィーを介した精製が可能となった。
マイクロロンの中結合の半ウェルプレート(グライナーバイオワン社、コートアボフ、フランス)を、0.5μg/ウェルのマウスPN-1又はヒトPN-1で4℃で一晩かけてコーティングし、その後、PBS/ウシ血清アルブミン0.1%Tween-20 0.1%中の様々な濃度のVHH(0~20μg/mL)と共に37℃で2時間インキュベートした。結合した抗PN-1VHHを、一価VHHについては、ペルオキシダーゼで標識されたポリクローナル抗cMycタグ抗体を用いて、又は二価VHHについては抗6xヒスチジンタグ抗体を用いて同じ緩衝液中でプローブし、TMBの加水分解を介して検出し、450nmにおける吸光度を解読した。
96ウェルプレート(グライナーバイオワン社)において、様々な濃度の抗PN-1VHHを、10nMのPN-1と共に、室温で15分間、20mMのHepes/0.15MのNaCl/0.1%のヒト血清アルブミン中でインキュベートした。その後、1nMの精製されたトロンビンをウェルに加え、30分間室温でインキュベートした。トロンビン活性は、37℃における発色基質H-D-Phe-Pip-Arg-pNA(PNAPEP-0238)(0.2mM)からのp-ニトロアニリンの放出速度を測定することによって定量され、マルチウェルプレートリーダーで405nmにおいて解読した。各VHHのIC50を計算するために、僅かに改変されたプロトコールを使用した:抗PN-1VHHは、0~2μMの濃度で使用され、VHHのインキュベーションは5分間行なわれ、その後、1nMのトロンビンと共に10分間インキュベートした。PNAPEP-0238基質を、0.2mMの濃度で加え、37℃で2時間インキュベートした。トロンビン活性の定量は、上記のように行なわれた。
血液試料は、ACD-A液の抗凝固剤のチューブ中に採取された。血液を、120gで15分間の遠心分離にかけて、多血小板血漿(PRP)を回収した。その後、2μL/mLのアピラーゼ(5mg/mL)及び1μL/mLのPGE1(10mM)を加え、多血小板血漿を1200gで20℃で12分間遠心分離にかけた。ペレットを、洗浄緩衝液(3.6mMのクエン酸、0.5mMのグルコース、0.5mMのKCl、10.3mMのNaCl、2mMのCaCl2、pH6.5、0.30%のウシ血清アルブミン、2μL/mLのアピラーゼ(5mg/mL)及び1μL/mLのPGE1(10mM))中に穏やかに再懸濁し、1200gで20℃で12分間遠心分離にかけた。血小板を、反応緩衝液(0.03mMのNaH2PO4、0.5mMのHepes、0.55mMのグルコース、0.2mMのMgCl2、0.1mMのKCl、113.7mMのNaCl、12mMのNaHCO3、2mMのCaCl2、pH7.3、及び0.3%ウシ血清アルブミン)中、5×108個の細胞/mLの濃度に調整した。「活性化血小板」の状態のために、50μMのTRAP(トロンビン受容体活性化ペプチド)を、血小板に37℃で30分間かけて加えた。血小板を1200gで室温で10分間遠心分離にかけて、上清を保持した。96ウェルプレート(グライナーバイオワン社)において、80μLの活性化された又は活性化されていない血小板の上清に、1μMのVHHを加え、室温で15分間インキュベートした。その後、0.1nMのトロンビンを各ウェルに加え、室温で30分間インキュベートした。PNAPEP-0238基質を、0.2mMの濃度で加え、37℃で2時間インキュベートした。トロンビン活性の定量は、上記の通りに実施された。
96ウェルプレート(グライナーバイオワン社)において、10μMの抗PN-1VHHを、20mMのHepes pH7.5、150mMのNaCl、0.1%ヒト血清アルブミン、pH7.5中、10nMのPAI-1と共に室温で15分間インキュベートした。続いて、1.3nMのuPAを加えた。室温で10分間インキュベートした後、ウェルを、発色基質Glu-Gly-Arg-pNA、PNAPEP-1344(0.2mM)からのp-ニトロアニリンの放出速度を37℃で測定することによって、uPA活性について定量し、マルチウェルプレートリーダーによって405nmにおいて解読した。
平衡的な結合が、OctetQK機器(フォルテバイオ社、レディング、イギリス)を使用したBLI分析を介して行なわれた。100mMのMES(pH5.0)で希釈された一価VHH(25μg/mL)を、アミン反応性バイオセンサー上に固定した。エタノールアミンによってクエンチした後、VHHでコーティングされたセンサーを、ヒト若しくはマウスのPN-1又はヒトPAI-1(1μM)と共に、PBS-Tween0.1%緩衝液中で15分間インキュベートして、会合を可能とした。続いて、バイオセンサーを、PBS-Tween0.1%緩衝液中で10分間インキュベートし、解離を開始した。代替的な実験では、PBS-Tween0.1%緩衝液中50μg/mLのビオチニル化されたPN-1の反応中心ループを、ストレプトアビジンセンサー上に固定した。会合前に、5Uのトロンビン又はPBS-Tween緩衝液を、センサーと共に37℃で30分間インキュベートし、その後、37℃で15分間かけての二価VHH(100μg/mL)の会合が続いた。続いて、バイオセンサーを、PBS-tween0.1%緩衝液に10分間入れ、解離を開始した。データは、Octetソフトウェアバージョン4.0を使用して分析された。
50μlのマウスの正常なプールされた血漿(MNPP)を、オウレン・コーラー緩衝液で8倍希釈し、50μLの第II因子欠損(プロトロンビン欠損)凍結乾燥血漿(スタゴ・ダイアグノスティカ社)を加えた。混合物を、62.5nMのマウスPN-1と共に、288nMの二価VHHの存在下又は非存在下において、37℃で15分間インキュベートした。プロトロンビン時間は、100μLのネオプラスチンCI(スタゴ・ダイアグノスティカ社)を混合物に加えることによって開始された。凝塊形成は、凝固計STArt(スタゴ・ダイアグノスティカ社)によって測定された。アッセイは、37℃で2回同じ実験が3回実施された。
50μlの第VIII因子欠損マウス血漿を、オウレン・コーラー緩衝液で8倍希釈し、これに、50μLの第VIII因子欠損凍結乾燥血漿及び50μLのPTT試薬(スタゴ・ダイアグノスティカ社)を加えた。100秒間インキュベーションした後、625nMのVHH及び500nMのマウスPN-1を加えた。37℃で240秒間インキュベーションした後、活性化トロンボプラスチン時間の試験が、100μLの0.025MのCaCl2の添加によって開始された。凝塊形成は、凝固計によって測定された。アッセイは、37℃で、2回同じ実験が3回実施された。
データは、平均値と標準誤差(SD)として提示され、プリズムソフトウェアを使用して分析された。一元分散分析を、対照との数値の比較のために使用した。0.05未満のP値、又は0.0001未満のP値が、それぞれ有意及び非常に有意と判断された。
合成VHHライブラリーからの抗PN-1VHHの開発
特異的で強力な阻害性の抗PN-1VHHを得るために、本発明者らは、合成VHHライブラリーを使用した。VHHは、古典的なVHHのために使用されたのと同じプロトコールを使用して選択された。4つの最強の結合物質を、さらなる特徴付けのために選択した:H12、B11、F06及びA08。図1に提示されたヒトPN-1、マウスPN-1及びPAI-1の吸着されていないファージのELISAは、4つ全てのVHHがヒトPN-1及びマウスPN-1を個別に認識していること、並びに、それらがヒトPAI-1を認識していないことを強調する。
精製されたVHHを、PAI-1、並びにヒトPN-1及びマウスPN-1の両方とのそれらの相互作用について分析した。初期のスクリーニングと一致して、4つの選択されたVHHはいずれも、ヒト又はマウスのPAI-1に対する関連した結合を示さなかった(図2A~B)。これに対して、VHH H12、B11、F06及びA08は全て、ヒト及びマウスの両方のPN-1に対して用量依存的な結合を示した(図2C~D)。PN-1に対する様々なVHHの阻害活性を評価するために、本発明者らは次に、PN-1及び様々なVHHの存在下において、トロンビン活性を測定するアッセイを実施した。ヒトPN-1及びマウスPN-1の両方への結合において最も効率的であったが、VHH H12は、PN-1により媒介されるトロンビン活性の阻害に対してほんの部分的にしか干渉せず、ヒトPN-1及びマウスPN-1に対してそれぞれ74±5%及び53±17%までトロンビン活性を回復させた(図2E~F)。VHH B11、F06及びA08は、ヒトPN-1によるトロンビンの阻害を上昇させるのにより効率的であることが判明し、トロンビン活性の回復は、B11については100±7%、F06については100±5%、A08については100±11%であった(図2E)。同じような強力な阻害能がまた、マウスPN-1に対しても観察された:B11では92±10%、F06については96±9%、A08については94±14%(図2F)。これらの中のいずれのVHHも、PAI-1によるu-PAの阻害に影響を及ぼさなかった(図2G)。結論すると、この2回目の選択戦略により、ヒトPN-1及びマウスPN-1の両方に対して選択的かつ阻害的であるVHHが生じた。
ヒトPN-1及びマウスPN-1に対する、B11、F06、及びA08の50%阻害濃度を決定するために、本発明者らは、様々な濃度のVHHを、10nMのPN-1及び1nMのトロンビンと共にインキュベートした。PNAPEP-0238基質の分解を2時間経過観察した。ヒトPN-1に対する試験されたVHHについての計算されたIC50値は、B11については0.05±0.01μM、F06については0.29±0.03μM、A08については0.96±0.39μMであった(図3A)。マウスPN-1を使用して、それぞれ計算されたIC50値は、B11については1.58±0.24μM、F06については0.56±0.13μM、A08については2.88±0.77μMであった(図3A)。特にマウスPN-1に対するVHHの阻害作用を増加させるために、本発明者らは次に、3つの異なる二価構築物、すなわちB11bv、B11F06、及びB11A08を作製した(図3B)。この工学操作工程後、本発明者らは、精製された二価VHHが、ヒトPN-1及びマウスPN-1への結合能を保持しているかどうかを確認した(図4A~B)。本発明者らはまた、それらがPAI-1を依然として認識しなかったことを確認した(示されていない)。
凝固に対する二価VHHの効果を試験するために、本発明者らは、マウス血漿を使用してマウスPN-1を用いて、改良されたプロトロンビン時間及び活性化プロトロンビン時間の凝固アッセイを実施した。
本出願全体を通して、様々な参考文献が、本発明が属する技術分野の最先端技術を記載する。これらの参考文献の開示は、本開示への参照によってここに組み入れられる。
Claims (20)
- 3つの相補性決定領域(CDR1~CDR3)と4つのフレームワーク領域(FR1~FR4)からなる、式(I):
FR1-CDR1-FR2-CDR2-FR3-CDR3-FR4(I)
(式中、
CDR1は、以下の配列:X1-T-W-X4-X5-E-I(ここでのX1はS又はDであり、X4はF又はRであり、X5はR又はLである)を有し;そして
CDR2は、以下の配列:S-X2-X3-X4-W-H-A(ここでのX2はD又はEであり、X3はP又はDであり、X4はT又はGである)を有し;そして
CDR3は、配列番号3又は配列番号7として示される配列を有する)
で示されるアミノ酸配列を含む、単離された単一ドメイン抗体(sdAb)。 - i)配列番号1として示される配列を有するCDR1、配列番号2として示される配列を有するCDR2、及び配列番号3として示される配列を有するCDR3;又は
ii)配列番号5として示される配列を有するCDR1、配列番号6として示される配列を有するCDR2、及び配列番号7として示される配列を有するCDR3
を含む、請求項1記載の単離された単一ドメイン抗体。 - 配列番号4又は配列番号8として示される配列に対して少なくとも70%の同一性を有する、請求項1又は2記載の単離された単一ドメイン抗体。
- 配列番号4又は配列番号8として示される配列を含む、請求項1~3記載の単離された単一ドメイン抗体。
- 3つの相補性決定領域(CDR1~CDR3)と4つのフレームワーク領域(FR1~FR4)からなる、式(I):
FR1-CDR1-FR2-CDR2-FR3-CDR3-FR4(I)
(式中、
CDR1は、配列番号9として示される配列を有し;そして
CDR2は、配列番号10として示される配列を有し;そして
CDR3は、配列番号11として示される配列を有する)
で示されるアミノ酸配列を含む、単離された単一ドメイン抗体。 - 配列番号9として示される配列を有するCDR1、配列番号10として示される配列を有するCDR2、及び配列番号11として示される配列を有するCDR3を含む、請求項5記載の単離された単一ドメイン抗体。
- 配列番号12として示される配列に対して少なくとも70%の同一性を有する、請求項5又は6記載の単離された単一ドメイン抗体。
- 配列番号12として示される配列を含む、請求項5~7記載の単離された単一ドメイン抗体。
- 請求項1又は5記載の単一ドメイン抗体とPN-1への結合に関して交差競合する、交差競合する単一ドメイン抗体。
- 請求項1又は5記載の少なくとも1つの単一ドメイン抗体を含むポリペプチド。
- i)配列番号1として示される配列を有するCDR1、配列番号2として示される配列を有するCDR2、及び配列番号3として示される配列を有するCDR3;又は
ii)配列番号5として示される配列を有するCDR1、配列番号6として示される配列を有するCDR2、及び配列番号7として示される配列を有するCDR3;又は
iii)配列番号9として示される配列を有するCDR1、配列番号10として示される配列を有するCDR2、及び配列番号11として示される配列を有するCDR3
を含む、少なくとも2つの単一ドメイン抗体を含む、請求項10記載のポリペプチド。 - i)請求項1~4のいずれか一項記載の単一ドメイン抗体;及び
ii)請求項5~8のいずれか一項記載の第二の単一ドメイン抗体
を含む、請求項10記載のポリペプチド。 - i)配列番号1として示される配列を有するCDR1、配列番号2として示される配列を有するCDR2、及び配列番号3として示される配列を有するCDR3を含む、単一ドメイン抗体;及び
ii)配列番号5として示される配列を有するCDR1、配列番号6として示される配列を有するCDR2、及び配列番号7として示される配列を有するCDR3を含む、第二の単一ドメイン抗体
を含む、請求項10記載のポリペプチド。 - 配列番号17、配列番号18及び配列番号19からなる群より選択される配列を含む、請求項10記載のポリペプチド。
- 請求項1若しくは5記載の単一ドメイン抗体及び/又は請求項10のポリペプチドをコードしている、核酸分子。
- 請求項15の核酸を含むベクター。
- 請求項15の核酸及び/又は請求項16のベクターによってトランスフェクトされたか、感染されたか、又は形質転換された宿主細胞。
- 請求項1若しくは5の単一ドメイン抗体及び/又は請求項10のポリペプチドの有効量を被験者に投与する工程を含む、それを必要とする被験者における出血性疾患を予防又は治療するための方法。
- 出血性疾患が血友病である、請求項18の方法。
- 請求項1若しくは5の単一ドメイン抗体及び/又は請求項10のポリペプチドを含む、医薬組成物。
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