JP2021153464A - Phospholipid-containing substance stabilizer and body fluid inspection kit comprising the same - Google Patents

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Abstract

To provide a phospholipid-containing substance stabilizer that can stably protect a phospholipid-containing substance.SOLUTION: A phospholipid-containing substance stabilizer contains a linear molecule and γ-cyclodextrin, where a mass ratio of the γ-cyclodextrin to the linear molecule is less than 9.SELECTED DRAWING: None

Description

本発明は、リン脂質含有物質安定化剤およびそれを含む体液検査キットに関する。 The present invention relates to a phospholipid-containing substance stabilizer and a body fluid test kit containing the same.

近年、バイオ医薬品、細胞治療、再生治療など、バイオマテリアルを利用した医薬品および医療機器の開発が活発に行われている。これらは、サイトカイン、免疫反応など、生体が日常的に使用しているシグナルを通じて、投与された局所、あるいは生体全体を、治療に適した環境に変化させる事が可能である。また、長期に渡って、その変化を持続可能である。そのため、従来の低分子薬や抗体医薬と比べて、低い副作用と、長期の治療効果をもつものと期待されている。 In recent years, pharmaceuticals and medical devices using biomaterials such as biopharmacy, cell therapy, and regenerative therapy have been actively developed. Through signals that the living body uses on a daily basis, such as cytokines and immune responses, these can change the administered local or whole living body into an environment suitable for treatment. Also, the change is sustainable over the long term. Therefore, it is expected to have lower side effects and long-term therapeutic effect as compared with conventional small molecule drugs and antibody drugs.

バイオマテリアルを利用した医薬品および医療機器は、不安定なものが多く、これらを保護する技術にも注目が集まっている。 Many pharmaceuticals and medical devices that use biomaterials are unstable, and technologies for protecting them are also attracting attention.

例えば、抗体等のバイオ医薬品は、シリコンとの接触や輸送時の振動により変性し、薬効に影響が及ぶことが知られている。また、細胞治療の実現のためには、治療用の細胞の状態が重要であることが認識されている(非特許文献1)。 For example, it is known that biopharmaceuticals such as antibodies are denatured by contact with silicon or vibration during transportation, which affects the drug efficacy. In addition, it is recognized that the state of therapeutic cells is important for the realization of cell therapy (Non-Patent Document 1).

さらに、診断薬の分野では、血液を対象としたリキッドバイオプシーにおいて、上記技術の重要性が強く認識されている。血液を対象としたリキッドバイオプシーでは、少量の血液からcfDNA(cell free DNA)、エクソソームなどを抽出し、癌の診断、治療などに利用する。具体的には、コンパニオン診断への利用、適切な抗癌剤の選択、癌に対する治療効果のモニター、再発癌の早期発見への利用などが活発に検討されている。 Furthermore, in the field of diagnostic agents, the importance of the above technique is strongly recognized in liquid biopsy for blood. In liquid biopsy for blood, cfDNA (cell free DNA), exosomes, etc. are extracted from a small amount of blood and used for diagnosis and treatment of cancer. Specifically, its use for companion diagnostics, selection of appropriate anticancer agents, monitoring of therapeutic effects on cancer, use for early detection of recurrent cancer, etc. are being actively studied.

特に、cfDNAにおいては、バイオマテリアルを保護する技術が、採血後の血液細胞の崩壊を防ぎ、検査の精度を向上させる技術として期待されている。 In particular, in cfDNA, a technique for protecting biomaterials is expected as a technique for preventing the collapse of blood cells after blood collection and improving the accuracy of examination.

これらを実現する技術としては、種々のものが検討されている。例えば、非特許文献2には、ポリエチレングリコール修飾による、リポソーム製剤の安定化が検討されている。非特許文献3には、核酸医薬の安定性向上を検討した種々の報告がなされている。非特許文献4には、RNA医薬品の安定性向上の検討が報告されている。 Various technologies have been studied to realize these. For example, Non-Patent Document 2 considers stabilization of a liposome preparation by modifying polyethylene glycol. In Non-Patent Document 3, various reports have been made on the improvement of the stability of nucleic acid drugs. Non-Patent Document 4 reports a study on improving the stability of RNA drugs.

STACEY,G. et al.,2017.Preservation and stability of cell therapy products: recommendations from an expert workshop.Regenerative Medicine,12(5),pp.553−564STACEY, G.M. et al. , 2017. Preservation and stability of cell therapy products: recommendations from expert workshop. Regenerative Medicine, 12 (5), pp. 553-564 International Journal of Antimicrobial Agents 19 (2002) 299−311International Journal of International Agents 19 (2002) 299-311 Nat Biotechnol.2017 March;35(3):238−248Nat Biotechnology. 2017 March; 35 (3): 238-248 Nucleic Acids Research,2019,Vol.47,No.1,432-449Nucleic Acids Research, 2019, Vol. 47, No. 1,432-449

バイオマテリアルを利用した医薬品および医療機器の多くは、リン脂質膜を構成として有するリン脂質含有物質であり、これらは一般的に不安定である。例えば、血液を対象とするリキッドバイオプシーでは、cfDNAは微量であるために、採血後の血液細胞を保護し、有核細胞からのDNAの溶出を抑える必要がある。また、エクソソームでは、それ自身が熱、凍結融解、容器吸着などにより消失することから、検査の質を向上させるためにも、エクソソーム自身を安定化することが望まれている。 Many pharmaceuticals and medical devices using biomaterials are phospholipid-containing substances having a phospholipid membrane as a constituent, and these are generally unstable. For example, in liquid biopsy for blood, since the amount of cfDNA is very small, it is necessary to protect the blood cells after blood collection and suppress the elution of DNA from the nucleated cells. Further, since exosomes themselves disappear due to heat, freeze-thaw, container adsorption, etc., it is desired to stabilize the exosomes themselves in order to improve the quality of inspection.

非特許文献2に記載の技術のように、ポリエチレングリコールを使用することによって、リン脂質含有物質の安定性向上が図られている。しかし、リン脂質含有物質をより安定化させる技術が望まれている。 As in the technique described in Non-Patent Document 2, the stability of phospholipid-containing substances is improved by using polyethylene glycol. However, a technique for further stabilizing a phospholipid-containing substance is desired.

そこで、本発明は、リン脂質含有物質をより安定して保護することができるリン脂質含有物質安定化剤を提供することを目的とする。 Therefore, an object of the present invention is to provide a phospholipid-containing substance stabilizer capable of more stably protecting a phospholipid-containing substance.

本発明者らは、上記課題を解決すべく鋭意研究を積み重ねた。その結果、直線状分子とγ−シクロデキストリンとを組み合わせて使用することによって、上記課題を解決することを見出し、本発明の完成に至った。 The present inventors have accumulated diligent research to solve the above problems. As a result, they have found that the above-mentioned problems can be solved by using a linear molecule and γ-cyclodextrin in combination, and have completed the present invention.

すなわち、本発明の一形態によれば、直線状分子とγ−シクロデキストリンとを含み、前記直線状分子に対する前記γ−シクロデキストリンの質量比が9未満である、リン脂質含有物質安定化剤が提供される。 That is, according to one embodiment of the present invention, a phospholipid-containing substance stabilizer containing a linear molecule and γ-cyclodextrin, wherein the mass ratio of the γ-cyclodextrin to the linear molecule is less than 9. Provided.

また、本発明の他の形態によれば、直線状分子とγ−シクロデキストリンとを有する可溶性の複合体を含む、リン脂質含有物質安定化剤が提供される。 Further, according to another embodiment of the present invention, there is provided a phospholipid-containing substance stabilizer containing a soluble complex having a linear molecule and γ-cyclodextrin.

本発明によれば、リン脂質含有物質をより安定して保護することができるリン脂質含有物質安定化剤を提供することができる。 According to the present invention, it is possible to provide a phospholipid-containing substance stabilizer capable of more stably protecting a phospholipid-containing substance.

図1は、試験例1における血液中への溶出DNA量を測定した結果を示すグラフである。FIG. 1 is a graph showing the results of measuring the amount of DNA eluted in blood in Test Example 1. 図2は、試験例1で調製したリン脂質含有物質安定化剤および比較組成物の外観を示す写真である。FIG. 2 is a photograph showing the appearance of the phospholipid-containing substance stabilizer and the comparative composition prepared in Test Example 1. 図3は、試験例2における血液中への溶出DNA量を測定した結果を示すグラフである。FIG. 3 is a graph showing the results of measuring the amount of DNA eluted in blood in Test Example 2. 図4は、試験例3における血液中への溶出DNA量を測定した結果を示すグラフである。FIG. 4 is a graph showing the results of measuring the amount of DNA eluted in blood in Test Example 3. 図5は、試験例4における血液上清中に溶出したヘモグロビン量を測定した結果を示すグラフである。FIG. 5 is a graph showing the results of measuring the amount of hemoglobin eluted in the blood supernatant in Test Example 4. 図6は、試験例5における血液中への溶出DNA量を測定した結果を示すグラフである。FIG. 6 is a graph showing the results of measuring the amount of DNA eluted in blood in Test Example 5. 図7は、試験例6における血液中への溶出DNA量を測定した結果を示すグラフである。FIG. 7 is a graph showing the results of measuring the amount of DNA eluted in blood in Test Example 6. 図8は、試験例7における血液中への溶出DNA量を測定した結果を示すグラフである。FIG. 8 is a graph showing the results of measuring the amount of DNA eluted in blood in Test Example 7. 図9は、試験例8における血液中への溶出DNA量を測定した結果を示すグラフである。FIG. 9 is a graph showing the results of measuring the amount of DNA eluted in blood in Test Example 8. 図10は、試験例9における血液中への溶出DNA量を測定した結果を示すグラフである。FIG. 10 is a graph showing the results of measuring the amount of DNA eluted in blood in Test Example 9. 図11は、試験例10における血液中への溶出DNA量を測定した結果を示すグラフである。FIG. 11 is a graph showing the results of measuring the amount of DNA eluted in blood in Test Example 10. 図12は、試験例11における血液中への溶出DNA量を測定した結果を示すグラフである。FIG. 12 is a graph showing the results of measuring the amount of DNA eluted in blood in Test Example 11. 図13は、試験例12における血液中への溶出DNA量を測定した結果を示すグラフである。FIG. 13 is a graph showing the results of measuring the amount of DNA eluted in blood in Test Example 12. 図14は、試験例13における血液中への溶出DNA量を測定した結果を示すグラフである。FIG. 14 is a graph showing the results of measuring the amount of DNA eluted in blood in Test Example 13. 図15は、試験例14(振動)における血液中への溶出DNA量を測定した結果を示すグラフである。FIG. 15 is a graph showing the results of measuring the amount of DNA eluted in blood in Test Example 14 (vibration). 図16は、試験例14(衝撃)における血液中への溶出DNA量を測定した結果を示すグラフである。FIG. 16 is a graph showing the results of measuring the amount of DNA eluted in blood in Test Example 14 (impact). 図17は、試験例15における血液中への溶出DNA量を測定した結果を示すグラフである。FIG. 17 is a graph showing the results of measuring the amount of DNA eluted in blood in Test Example 15. 図18は、試験例16(高浸透圧負荷)におけるリポソームからの蛍光物質の溶出量を測定した結果を示すグラフである。FIG. 18 is a graph showing the results of measuring the elution amount of the fluorescent substance from the liposome in Test Example 16 (high osmotic pressure load). 図19は、試験例16(熱負荷)におけるリポソームからの蛍光物質の溶出量を測定した結果を示すグラフである。FIG. 19 is a graph showing the results of measuring the elution amount of the fluorescent substance from the liposome in Test Example 16 (heat load). 図20は、試験例17で測定したDNA量(縦軸)とDNAの塩基対数(横軸)との関係を示すグラフである。FIG. 20 is a graph showing the relationship between the amount of DNA measured in Test Example 17 (vertical axis) and the number of base pairs of DNA (horizontal axis).

以下、本発明の一形態に係る実施の形態を説明する。本発明は、以下の実施の形態のみには限定されない。 Hereinafter, embodiments according to one embodiment of the present invention will be described. The present invention is not limited to the following embodiments.

本明細書において、範囲を示す「X〜Y」は「X以上Y以下」を意味する。また、特記しない限り、操作および物性等の測定は室温(20〜25℃)/相対湿度40〜50%RHの条件で測定する。 In the present specification, "X to Y" indicating a range means "X or more and Y or less". Unless otherwise specified, the operation and physical properties are measured under the conditions of room temperature (20 to 25 ° C.) / relative humidity of 40 to 50% RH.

本明細書において、リン脂質含有物質安定化とは、保管や外部負荷に対しても、リン脂質含有物質が有するリン脂質によって構成される構造の崩壊を抑制することができることを意味する。例えば、リン脂質含有物質がリン脂質膜を含む場合、安定化とは、リン脂質膜の構造を維持できる(崩壊を抑制できる)ことを意味する。より具体的には、リン脂質含有物質が血液中の有核細胞(例えば、白血球)である場合、安定化とは、有核細胞の崩壊を抑制し、よって有核細胞内の成分(例えば、DNA)が血液中に放出されることを抑制する。 As used herein, the stabilization of a phospholipid-containing substance means that the disruption of the structure composed of phospholipids of the phospholipid-containing substance can be suppressed even with respect to storage and an external load. For example, when the phospholipid-containing substance contains a phospholipid membrane, stabilization means that the structure of the phospholipid membrane can be maintained (disintegration can be suppressed). More specifically, when the phospholipid-containing substance is a nucleated cell (eg, leukocyte) in the blood, stabilization suppresses the disruption of the nucleated cell and thus the intracellular component (eg, leukocyte). It suppresses the release of DNA) into the blood.

<リン脂質含有物質安定化剤>
本発明の第1の形態は、直線状分子とγ−シクロデキストリンとを含み、前記直線状分子に対する前記γ−シクロデキストリンの質量比が9未満である、リン脂質含有物質安定化剤である。
<Phospholipid-containing substance stabilizer>
A first embodiment of the present invention is a phospholipid-containing substance stabilizer containing a linear molecule and γ-cyclodextrin, wherein the mass ratio of the γ-cyclodextrin to the linear molecule is less than 9.

また、本発明の第2の形態は、直線状分子とγ−シクロデキストリンとを有する可溶性の複合体を含む、リン脂質含有物質安定化剤である。 A second form of the present invention is a phospholipid-containing substance stabilizer containing a soluble complex having a linear molecule and γ-cyclodextrin.

本発明のリン脂質含有物質安定化剤によって、リン脂質含有物質が保護されるメカニズムは、完全には解明されていないが、以下のように推測される。 The mechanism by which the phospholipid-containing substance is protected by the phospholipid-containing substance stabilizer of the present invention has not been completely elucidated, but it is presumed as follows.

液体中に直線状分子(例えば、ポリエチレングリコール)とγ−シクロデキストリンとが存在すると、γ−シクロデキストリンが直線状分子をとりこむ、すなわち包接が進行し、直線状分子とγ−シクロデキストリンとの複合体(包接錯体)が形成される。このような複合体は、γ−シクロデキストリンのヒドロキシ基同士が水素結合することにより3次元ネットワークを形成することによってゲルを形成し、沈殿を生じる場合がある。あるいは、2本の直線状分子が、γ−シクロデキストリンに包接し、3次元ネットワークを形成することによってゲルを形成する場合がある。しかし、直線状分子とγ−シクロデキストリンとを所定の質量比で使用することにより、複合体は可溶性を維持できる。 When a linear molecule (for example, polyethylene glycol) and γ-cyclodextrin are present in the liquid, the γ-cyclodextrin takes up the linear molecule, that is, inclusion proceeds, and the linear molecule and γ-cyclodextrin become A complex (inclusion complex) is formed. Such a complex may form a gel by forming a three-dimensional network by hydrogen-bonding the hydroxy groups of γ-cyclodextrin to each other, which may cause precipitation. Alternatively, two linear molecules may form a gel by inclusion in γ-cyclodextrin and forming a three-dimensional network. However, by using a linear molecule and γ-cyclodextrin in a predetermined mass ratio, the complex can remain soluble.

γ−シクロデキストリンは、リン脂質含有物質、例えばリン脂質膜を含む材料と相互作用し、リン脂質膜に吸着する作用を有する。本発明者らは、複合体を構成するγ−シクロデキストリンにおいても同様に、リン脂質膜に吸着する作用を有することを確認した。 γ-Cyclodextrin has an action of interacting with a phospholipid-containing substance, for example, a material containing a phospholipid membrane, and adsorbing to the phospholipid membrane. The present inventors have confirmed that γ-cyclodextrin constituting the complex also has an action of adsorbing to a phospholipid membrane.

よって、γ−シクロデキストリンを介して、複合体がリン脂質膜に吸着し、その結果、リン脂質膜に直線状分子が導入されることで、Peg−liposomeのようにリン脂質膜を含む材料を安定化すると考えられる。また、リン脂質膜に直線状分子が導入されることで、外部負荷(振動、衝撃など)に対しても、リン脂質膜を含む材料を安定化すると考えられる。 Therefore, the complex is adsorbed on the phospholipid membrane via γ-cyclodextrin, and as a result, linear molecules are introduced into the phospholipid membrane, so that a material containing the phospholipid membrane such as Peg-liposomes can be obtained. It is thought to stabilize. Further, it is considered that the introduction of linear molecules into the phospholipid membrane stabilizes the material containing the phospholipid membrane against an external load (vibration, impact, etc.).

なお、上記メカニズムは推定であり、本発明は上記推定によって限定されない。 The mechanism is an estimation, and the present invention is not limited by the estimation.

(リン脂質含有物質)
本発明の第1の形態および第2の形態に係るリン脂質含有物質は、共通しており、以下の説明も共通である。
(Phospholipid-containing substance)
The phospholipid-containing substances according to the first and second forms of the present invention are common, and the following description is also common.

リン脂質含有物質は、リン脂質を含むものであれば特に制限されない。リン脂質含有物質は、好ましくはリン脂質膜を含む材料であり、より好ましくは白血球、赤血球、培養細胞、リポソームおよびエクソソームからなる群から選択される少なくとも一種である。 The phospholipid-containing substance is not particularly limited as long as it contains phospholipids. The phospholipid-containing substance is preferably a material containing a phospholipid membrane, and more preferably at least one selected from the group consisting of leukocytes, erythrocytes, cultured cells, liposomes and exosomes.

なお、白血球をより具体的に例示すると、好中球、好酸球、好塩基球、リンパ球、単球であり、リンパ球をより具体的に例示するとT細胞、B細胞、NK細胞であり、単球をより具体的に例示すると、樹状細胞、マクロファージ、ランゲルハンス細胞である。 More specific examples of leukocytes are neutrophils, eosinophils, basophils, lymphocytes, and monocytes, and more specific examples of lymphocytes are T cells, B cells, and NK cells. More specifically, monocytes are dendritic cells, macrophages, and Langerhans cells.

(直線状分子)
本発明の第1の形態および第2の形態に係る直線状分子は、共通しており、以下の説明も共通である。
(Linear molecule)
The linear molecules according to the first form and the second form of the present invention are common, and the following description is also common.

直線状分子は、γ−シクロデキストリンを貫通しうるものであれば、特に制限されない。直線状分子は、リン脂質含有物質をより保護できるとの観点から、好ましくはポリエチレングリコール(本明細書中、単に「Peg」とも称する)、ポリプロピレングリコール(本明細書中、単に「PPG」とも称する)、ポリビニルアルコール(本明細書中、単に「PVA」とも称する)からなる群から選択される少なくとも一つであり、より好ましくはポリエチレングリコールおよびプロピレングリコールから選択される少なくとも一つである。 The linear molecule is not particularly limited as long as it can penetrate γ-cyclodextrin. The linear molecule is preferably polyethylene glycol (also simply referred to as "Peg" in the present specification) or polypropylene glycol (also simply referred to as "PPG" in the present specification) from the viewpoint of being able to protect phospholipid-containing substances more. ), Polyvinyl alcohol (also simply referred to as "PVA" in the present specification), and more preferably at least one selected from polyethylene glycol and propylene glycol.

直線状分子の重量平均分子量は、特に制限されないが、リン脂質含有物質をより保護できるとの観点から、好ましくは1000〜200000である。 The weight average molecular weight of the linear molecule is not particularly limited, but is preferably 1000 to 200,000 from the viewpoint of further protecting the phospholipid-containing substance.

直線状分子としてPegを用いる場合、Pegの重量平均分子量は、より好ましくは6000〜200000であり、さらに好ましくは20000〜100000であり、よりさらに好ましくは35000〜60000である。 When Peg is used as the linear molecule, the weight average molecular weight of Peg is more preferably 6000 to 20000, still more preferably 20000 to 100,000, and even more preferably 35,000 to 60000.

直線状分子としてPPGを用いる場合、PPGの重量平均分子量は、より好ましくは1000〜4000であり、さらに好ましくは2000〜3000である。 When PPG is used as the linear molecule, the weight average molecular weight of PPG is more preferably 1000 to 4000, still more preferably 2000 to 3000.

直線状分子としてPVAを用いる場合、PVAの重量平均分子量は、より好ましくは1000〜4000であり、さらに好ましくは1500〜3000である。 When PVA is used as the linear molecule, the weight average molecular weight of PVA is more preferably 1000 to 4000, still more preferably 1500 to 3000.

重量平均分子量は、標準物質としてポリスチレンを用いたゲル浸透クロマトグラフィ(GPC)によって測定した値を採用する。 For the weight average molecular weight, a value measured by gel permeation chromatography (GPC) using polystyrene as a standard substance is adopted.

直線状分子は、市販品を用いてもよく、また合成品を用いてもよい。 As the linear molecule, a commercially available product may be used, or a synthetic product may be used.

(γ−シクロデキストリン)
本発明の第1の形態および第2の形態に係るγ−シクロデキストリンは、共通しており、以下の説明も共通である。
(Γ-Cyclodextrin)
The γ-cyclodextrin according to the first form and the second form of the present invention are common, and the following description is also common.

シクロデキストリン(CyD)は、グルコースがα(1→4)グルコシド結合によって結合し、環状構造をとった環状オリゴ糖の一種である。γ−シクロデキストリン(本明細書中、単に「γCyD」とも称する)は、グルコースが8個結合している。 Cyclodextrin (CyD) is a type of cyclic oligosaccharide having a cyclic structure in which glucose is bound by an α (1 → 4) glucoside bond. Eight glucoses are bound to γ-cyclodextrin (also simply referred to as “γCyD” in the present specification).

γCyDとしては、市販品を使用することができる。市販品としては、デキシパール γ−100(塩水港精糖株式会社製)などが挙げられる。 As γCyD, a commercially available product can be used. Examples of commercially available products include Dixipal γ-100 (manufactured by Shiomizu Port Refinery Co., Ltd.).

(直線状分子およびγ−シクロデキストリンの含有量)
第1の形態のリン脂質含有物質安定化剤において、直線状分子に対するγ−シクロデキストリンの質量比が9未満である。質量比の下限は、0超である。このような質量比であることにより、リン脂質含有物質を保護し、安定化することができる。前記質量比は、リン脂質含有物質の安定化をより高めるとの観点から、好ましくは0.0002〜2.5であり、より好ましくは0.0002〜1.2であり、さらに好ましくは0.0002〜0.6である。
(Contents of linear molecules and γ-cyclodextrin)
In the first form of the phospholipid-containing substance stabilizer, the mass ratio of γ-cyclodextrin to the linear molecule is less than 9. The lower limit of the mass ratio is more than 0. With such a mass ratio, the phospholipid-containing substance can be protected and stabilized. The mass ratio is preferably 0.0002 to 2.5, more preferably 0.0002 to 1.2, and even more preferably 0., from the viewpoint of further enhancing the stabilization of the phospholipid-containing substance. It is 0002 to 0.6.

(直線状分子とγ−シクロデキストリンとを有する可溶性の複合体)
第2の形態のリン脂質含有物質安定化剤は、直線状分子とγ−シクロデキストリンとを有する可溶性の複合体を含む。
(A soluble complex with a linear molecule and γ-cyclodextrin)
The second form of phospholipid-containing material stabilizer comprises a soluble complex having a linear molecule and γ-cyclodextrin.

本明細書において、「可溶性」とは、水に可溶であることを言う。 As used herein, "soluble" means soluble in water.

本明細書において、「複合体」とは、γCyDの環を直線状分子が貫通した構造を有するもの、およびこれらの集合体を意味する。 As used herein, the term "complex" means a structure having a structure in which a linear molecule penetrates a ring of γCyD, and an aggregate thereof.

上述のとおり、液体中に直線状分子(例えば、ポリエチレングリコール)とγCyDとが存在すると、γCyDが直線状分子をとりこむ、すなわち包接が進行することで、直線状分子とγCyDとの複合体(包接錯体)を形成することができる。 As described above, when a linear molecule (for example, polyethylene glycol) and γCyD are present in the liquid, γCyD takes in the linear molecule, that is, the inclusion proceeds, so that the complex of the linear molecule and γCyD (for example, Inclusion complex) can be formed.

また、第2の形態に係る複合体は、ゲルを形成しない程度に3次元ネットワークを形成し得る。そのため、複合体は、2以上の複合体の集合体であってもよい。 In addition, the complex according to the second form can form a three-dimensional network to the extent that it does not form a gel. Therefore, the complex may be an aggregate of two or more complexes.

第2の形態に係る複合体において、直線状分子に対するγCyDの質量比は、可溶性を維持するとの観点から、好ましくは0を超えて9未満である。前記質量比は、リン脂質含有物質の安定化をより高めるとの観点から、好ましくは0.0002〜2.5であり、より好ましくは0.0002〜1.2であり、さらに好ましくは0.0002〜0.6である。なお、当該質量比は、直線状分子およびγCyDの仕込み量から算出することができる。 In the complex according to the second embodiment, the mass ratio of γCyD to the linear molecule is preferably more than 0 and less than 9 from the viewpoint of maintaining solubility. The mass ratio is preferably 0.0002 to 2.5, more preferably 0.0002 to 1.2, and even more preferably 0., from the viewpoint of further enhancing the stabilization of the phospholipid-containing substance. It is 0002 to 0.6. The mass ratio can be calculated from the amount of linear molecules and γCyD charged.

(好ましい実施形態)
第1の形態および第2の形態のリン脂質含有物質安定化剤は、好ましくは液状の形態である。
(Preferable embodiment)
The phospholipid-containing substance stabilizers of the first and second forms are preferably in liquid form.

上述のとおり、液体中に直線状分子(例えば、ポリエチレングリコール)とγCyDとが存在すると、γCyDが直線状分子をとりこむ、すなわち包接が進行し、直線状分子とγCyDとの複合体(包接錯体)が形成される。したがって、第1の形態のリン脂質含有物質安定化剤は、直線状分子の少なくとも一部がγCyDと複合体を形成することができる。 As described above, when a linear molecule (for example, polyethylene glycol) and γCyD are present in the liquid, γCyD takes in the linear molecule, that is, inclusion proceeds, and a complex (inclusion) of the linear molecule and γCyD occurs. Complex) is formed. Therefore, in the first form of the phospholipid-containing substance stabilizer, at least a part of the linear molecule can form a complex with γCyD.

本実施形態のリン脂質含有物質安定化剤に含まれる溶媒は、特に制限されず、例えば水(滅菌水)、生理食塩水、PBS、クエン酸緩衝液、トリス緩衝液、炭酸緩衝液、酢酸緩衝液などが挙げられる。 The solvent contained in the phospholipid-containing substance stabilizer of the present embodiment is not particularly limited, and is, for example, water (sterile water), physiological saline, PBS, citric acid buffer, Tris buffer, carbonate buffer, acetic acid buffer. Examples include liquids.

本実施形態のリン脂質含有物質安定化剤中の直線状分子の濃度は、例えば20〜780mg/mLであり、好ましくは180〜780mg/mLであり、より好ましくは300〜780mg/mLである。また、直線状分子の濃度の下限は、400mg/mL以上または500mg/mL以上であってもよい。 The concentration of the linear molecule in the phospholipid-containing substance stabilizer of the present embodiment is, for example, 20 to 780 mg / mL, preferably 180 to 780 mg / mL, and more preferably 300 to 780 mg / mL. Further, the lower limit of the concentration of the linear molecule may be 400 mg / mL or more or 500 mg / mL or more.

本実施形態のリン脂質含有物質安定化剤中のγCyDの濃度は、例えば0.1〜50mg/mLであり、好ましくは0.15〜25mg/mLであり、より好ましくは0.3〜15mg/mLである。また、γCyDの濃度の上限は、6mg/mL以下、3mg/mL以下、1.5mg/mL以下または1mg/mL以下であってもよい。 The concentration of γCyD in the phospholipid-containing substance stabilizer of the present embodiment is, for example, 0.1 to 50 mg / mL, preferably 0.15 to 25 mg / mL, and more preferably 0.3 to 15 mg / mL. It is mL. The upper limit of the concentration of γCyD may be 6 mg / mL or less, 3 mg / mL or less, 1.5 mg / mL or less, or 1 mg / mL or less.

本実施形態のリン脂質含有物質安定化剤は、溶媒に加えて、必要に応じてその他の成分を選択して含むことができる。その他の成分としては、抗凝固剤、等張化剤、抗酸化剤、防腐剤、プロテアーゼ阻害剤、カスパーゼ阻害剤、ヌクレアーゼ阻害剤、組織固定剤などが挙げられる。これらの具体的成分としては次に示すものが例示されるがその限りではない。抗凝固剤としては、エチレンジアミン四酢酸(以降、EDTAと略称する)及びその塩、クエン酸及びその塩、ヘパリンなどが例示される。等張化剤としては、塩化ナトリウム、塩化カリウム、塩化カルシウム、亜硫酸水素ナトリウム、キシリトール、ソルビトール、マンニトール、ぶどう糖、グリセリン、プロピレングリコール、リン酸水素ナトリウム、リン酸二水素ナトリウム、リン酸二水素カリウム、炭酸水素ナトリウム、乳酸ナトリウム、タウリンなどが例示される。抗酸化剤としては、トコフェロール、アスコルビン酸、グルタチオンなどが例示される。プロテアーゼ阻害剤としては、フェニルメチルスルフォニルフロリド、アミノエチルベンジルスルフォニルフロリド、ロイペプチン、ペプステインA、アプロチニン、ベンズアミジンなどが例示される。防腐剤としては、パラベン類、塩化ベンザルコニウム、塩化ゼンゼトニウム、クロルヘキシジン及びその塩、アジ化ナトリウム、フッ化ナトリウムなどが例示される。カスパーゼ阻害剤としては、エンゾライフサイエンシス社から販売されているZ−YVAD−FMK、Z−VDVAD−FMK、Z−DEVD−FMK、Z−LEHD−FMKが例示されるが、製造会社、製品名、化学構造などこの限りでない。ヌクレアーゼ阻害剤としては、プロテイナーゼKが例示される。組織固定剤としては、ホルムアルデヒド、グルタルアルデヒド、ジアゾリジニル尿素、イミダゾリジニル尿素などが例示される。 The phospholipid-containing substance stabilizer of the present embodiment can be additionally contained in addition to the solvent, if necessary, by selecting other components. Other components include anticoagulants, tonicity agents, antioxidants, preservatives, protease inhibitors, caspase inhibitors, nuclease inhibitors, tissue fixatives and the like. Examples of these specific components include, but are not limited to, the following. Examples of the anticoagulant include ethylenediaminetetraacetic acid (hereinafter abbreviated as EDTA) and a salt thereof, citric acid and a salt thereof, heparin and the like. Isotonic agents include sodium chloride, potassium chloride, calcium chloride, sodium hydrogen sulfite, xylitol, sorbitol, mannitol, glucose, glycerin, propylene glycol, sodium hydrogen phosphate, sodium dihydrogen phosphate, potassium dihydrogen phosphate, Examples include sodium hydrogen carbonate, sodium lactate, and taurine. Examples of the antioxidant include tocopherol, ascorbic acid, glutathione and the like. Examples of protease inhibitors include phenylmethylsulfonylfloride, aminoethylbenzylsulfonylfloride, leupeptin, pepstain A, aprotinin, benzamidine and the like. Examples of preservatives include parabens, benzalkonium chloride, zenzetonium chloride, chlorhexidine and salts thereof, sodium azide, sodium fluoride and the like. Examples of the caspase inhibitor include Z-YVAD-FMK, Z-VDVAD-FMK, Z-DEVD-FMK, and Z-LEHD-FMK sold by Enzolife Sciences, but the manufacturer and product name. , Chemical structure, etc. are not limited to this. Proteinase K is exemplified as a nuclease inhibitor. Examples of the tissue fixative include formaldehyde, glutaraldehyde, diazoridinyl urea, and imidazolidinyl urea.

本実施形態のリン脂質含有物質安定化剤が抗凝固剤を含む場合、EDTAおよびその塩の濃度は、特に制限されず、例えば1〜100mg/mLである。また、クエン酸およびその塩の濃度は、特に制限されず、例えば1〜1000mg/mLである。 When the phospholipid-containing substance stabilizer of the present embodiment contains an anticoagulant, the concentration of EDTA and its salt is not particularly limited, and is, for example, 1 to 100 mg / mL. The concentration of citric acid and its salt is not particularly limited, and is, for example, 1 to 1000 mg / mL.

本実施形態のリン脂質含有物質安定化剤の温度は、特に制限されず、例えば、4〜40℃であればよい。 The temperature of the phospholipid-containing substance stabilizer of the present embodiment is not particularly limited, and may be, for example, 4 to 40 ° C.

本実施形態のリン脂質含有物質安定化剤のpHは、特に制限されず、例えば2〜11の範囲で適宜選択できる。pHは、酸(例えば、塩酸)および塩基(例えば、水酸化ナトリウム)を用いて適宜調整することができる。 The pH of the phospholipid-containing substance stabilizer of the present embodiment is not particularly limited and can be appropriately selected in the range of, for example, 2 to 11. The pH can be appropriately adjusted with an acid (eg, hydrochloric acid) and a base (eg, sodium hydroxide).

本実施形態のリン脂質含有物質安定化剤の浸透圧は、特に制限されず、例えばNaCl濃度が1〜2000mMに相当する浸透圧である。 The osmotic pressure of the phospholipid-containing substance stabilizer of the present embodiment is not particularly limited, and is, for example, an osmotic pressure corresponding to a NaCl concentration of 1 to 2000 mM.

なお、本実施形態において、リン脂質含有物質安定化剤は、固体のゲルの形態を含まない。 In this embodiment, the phospholipid-containing substance stabilizer does not include the form of a solid gel.

(リン脂質含有物質安定化剤の用途)
本発明のリン脂質含有物質安定化剤は、後述の体液検査キットなどに加えて、培養細胞の保護、iPS細胞の保存、生体から採取した細胞の保護、リポソーム製剤の保存、エクソソームの保存などに使用することができる。
(Use of phospholipid-containing substance stabilizer)
The phospholipid-containing substance stabilizer of the present invention is used for protecting cultured cells, preserving iPS cells, protecting cells collected from living organisms, preserving liposome preparations, preserving exosomes, etc., in addition to the body fluid test kit described later. Can be used.

<リン脂質含有物質安定化剤の調製方法>
本発明のリン脂質含有物質安定化剤の調製方法は、特に制限されない。リン脂質含有物質安定化剤が溶液の形態の場合、上述の直線状分子、γCyD、溶媒および必要に応じてその他の成分を混合することで、リン脂質含有物質安定化剤を調製することができる。例えば、リン脂質含有物質安定化剤の調製方法としては、直線状分子を含む溶液とγCyDを含む溶液とを混合する;γCyDを含む溶液に直線状分子を添加して混合する;直線状分子を含む溶液にγCyDを添加して混合する;直線状分子およびγCyDを一括して溶媒に添加して混合する、などが挙げられる。
<Preparation method of phospholipid-containing substance stabilizer>
The method for preparing the phospholipid-containing substance stabilizer of the present invention is not particularly limited. When the phospholipid-containing substance stabilizer is in the form of a solution, the phospholipid-containing substance stabilizer can be prepared by mixing the above-mentioned linear molecule, γCyD, a solvent and, if necessary, other components. .. For example, as a method for preparing a phospholipid-containing substance stabilizer, a solution containing a linear molecule and a solution containing γCyD are mixed; a linear molecule is added to a solution containing γCyD and mixed; the linear molecule is mixed. ΓCyD is added to the containing solution and mixed; linear molecules and γCyD are collectively added to the solvent and mixed, and the like.

混合する際の温度は、特に制限されず、例えば4〜40℃程度であればよい。 The temperature at the time of mixing is not particularly limited, and may be, for example, about 4 to 40 ° C.

<体液検査キット>
本発明の一形態は、上記リン脂質含有物質安定化剤を含む、体液検査キットである。
<Body fluid test kit>
One embodiment of the present invention is a body fluid test kit containing the above-mentioned phospholipid-containing substance stabilizer.

体液としては、例えば血液、尿、涙、唾液などが挙げられる。体液は、好ましくは血液である。 Examples of body fluids include blood, urine, tears, saliva and the like. The body fluid is preferably blood.

本発明の体液検査キットは、体液中のリン脂質含有物質(例えば、有核細胞)を保護するとの観点から、リン脂質含有物質安定化剤を体液1mLあたり3〜130mgとなるように含むことが好ましく、6〜100mgとなるように含むことがより好ましい。また、本発明の体液検査キットは、体液中のリン脂質含有物質(例えば、有核細胞)を保護するとの観点から、リン脂質含有物質安定化剤を、体液と直線状分子とγ−シクロデキストリンとの質量比(体液:直線状分子:γCyD)が1000:2:1〜1000:125:5となるように含むことが好ましく、1000:4:2〜1000:95:5となるように含むことがより好ましい。 The body fluid test kit of the present invention may contain a phospholipid-containing substance stabilizer in an amount of 3 to 130 mg per 1 mL of body fluid from the viewpoint of protecting phospholipid-containing substances (for example, nucleated cells) in the body fluid. It is preferably contained in an amount of 6 to 100 mg. Further, the body fluid test kit of the present invention uses a phospholipid-containing substance stabilizer as a body fluid, a linear molecule, and γ-cyclodextrin from the viewpoint of protecting a phospholipid-containing substance (for example, nucleated cells) in the body fluid. It is preferable to include it so that the mass ratio (body fluid: linear molecule: γCyD) with and to is 1000: 2: 1 to 1000: 125: 5, and it is contained so as to be 1000: 4: 2 to 1000: 95: 5. Is more preferable.

本発明の体液検査キットは、診断薬の分野、特にリキッドバイオプシーの分野において、好適に使用することができる。そのため、体液検査キットは、体液を収容する容器(例えば、採血管)を含んでもよい。この場合、リン脂質含有物質安定化剤は、体液を収容する容器に充填されていてもよく、体液を収容する容器とは別の容器に収容されていてもよい。 The body fluid test kit of the present invention can be suitably used in the field of diagnostic agents, particularly in the field of liquid biopsy. Therefore, the body fluid test kit may include a container (for example, a blood collection tube) for containing the body fluid. In this case, the phospholipid-containing substance stabilizer may be filled in a container containing the body fluid, or may be contained in a container different from the container containing the body fluid.

以下に具体例を用いて本発明を説明するが、本発明はこれらの例に限定されない。 The present invention will be described below with reference to specific examples, but the present invention is not limited to these examples.

[試薬等]
実施例では下記の化合物を用いた。試薬名と製品名が同一の場合は製品名を省略した。
[Reagents, etc.]
In the examples, the following compounds were used. If the reagent name and product name are the same, the product name is omitted.

(1)直線状分子、およびシクロデキストリン
・ポリエチレングリコールMw6,000(三洋化成工業株式会社製)
・ポリエチレングリコールMw35,000(ChemCraz社製)
・ポリエチレングリコールMw40,000(SERVA社製)
・ポリエチレングリコールMw100,000(AlfaAesar社製)
・ポリエチレングリコールMw200,000(Sigma aldrich社製)
・ポリプロピレングリコールMw2,000(Merck社製)
・ポリビニルアルコールMw1,500、けん化度78〜82%(富士フイルム和光純薬社製)
・α−シクロデキストリン(αCyD)(日本食品化工株式会社製:セルデックス A−100)
・γ−シクロデキストリン(塩水港精糖株式会社製:デキシパール γ−100)。
(1) Linear molecule and cyclodextrin / polyethylene glycol Mw6,000 (manufactured by Sanyo Chemical Industries, Ltd.)
-Polyethylene glycol Mw35,000 (manufactured by ChemCraz)
-Polyethylene glycol Mw40,000 (manufactured by SERVA)
-Polyethylene glycol Mw100,000 (manufactured by AlphaAesar)
-Polyethylene glycol Mw200,000 (manufactured by Sigma-Aldrich)
-Polypropylene glycol Mw2,000 (manufactured by Merck)
-Polyvinyl alcohol Mw 1,500, saponification degree 78-82% (manufactured by Fujifilm Wako Pure Chemical Industries, Ltd.)
-Α-Cyclodextrin (αCyD) (manufactured by Nihon Shokuhin Kako Co., Ltd .: Celdex A-100)
-Γ-Cyclodextrin (manufactured by Shiomizu Port Refinery Co., Ltd .: Dixipal γ-100).

(2)溶媒
・滅菌水(ナカライテスク株式会社製)
・生理食塩液(テルモ株式会社製)。
(2) Solvent / sterilized water (manufactured by Nacalai Tesque Co., Ltd.)
-Saline solution (manufactured by Terumo Corporation).

(3)その他試薬
・塩化ナトリウム(関東化学株式会社製)
・Triton X−100(富士フイルム和光純薬株式会社製)
・塩酸(ナカライテスク株式会社製:0.1mol/L塩酸)
・水酸化ナトリウム水溶液(ナカライテスク株式会社製:0.1mol/L水酸化ナトリウム)
・Pyranine(東京化成工業株式会社製)
・DPX(Molecular probes社製:p−xylene−bis−pyridinium bromide)。
(3) Other reagents ・ Sodium chloride (manufactured by Kanto Chemical Co., Inc.)
・ Triton X-100 (manufactured by Fujifilm Wako Pure Chemical Industries, Ltd.)
-Hydrochloric acid (manufactured by Nacalai Tesque Co., Ltd .: 0.1 mol / L hydrochloric acid)
-Sodium hydroxide aqueous solution (manufactured by Nacalai Tesque, Inc .: 0.1 mol / L sodium hydroxide)
・ Pyranine (manufactured by Tokyo Chemical Industry Co., Ltd.)
-DPX (manufactured by Molecular Probes: p-xylene-bis-pyridinium bromide).

[使用機器]
・遠心分離機(株式会社久保田製作所製:マイクロ冷却遠心機 3740)
・蛍光分光光度計(日本分光株式会社製:FP−6500)
・プレートリーダー(モレキュラーデバイスジャパン社製:SpectraMax M5)
・ローテーター(アズワン株式会社製:ATR280)
・サーモミキサーC(エッペンドルフ社製)
・pHメーター(東亜ディーケーケー株式会社製:HM−50G)。
[Used equipment]
・ Centrifuge (Made by Kubota Seisakusho Co., Ltd .: Micro-cooled centrifuge 3740)
・ Fluorescence spectrophotometer (manufactured by JASCO Corporation: FP-6500)
・ Plate reader (Made by Molecular Device Japan: SpectraMax M5)
・ Rotator (manufactured by AS ONE Corporation: ATR280)
・ Thermomixer C (manufactured by Eppendorf)
-PH meter (manufactured by DKK-TOA CORPORATION: HM-50G).

[試料の調製方法]
<PBS>
PBSは、10錠のPBS Tablets(タカラバイオ株式会社製)を1000mLの蒸留水に溶解して調製した。または、ダルベッコリン酸緩衝生理食塩水(ナカライテスク株式会社製)を使用した。
[Sample preparation method]
<PBS>
PBS was prepared by dissolving 10 tablets of PBS Tablets (manufactured by Takara Bio Inc.) in 1000 mL of distilled water. Alternatively, Dulbeccoline phosphate buffered saline (manufactured by Nacalai Tesque, Inc.) was used.

<クエン酸緩衝液>
クエン酸緩衝液は、58.8mgのクエン酸3Na(ナカライテスク株式会社製:クエン酸三ナトリウム二水和物)を10mLの滅菌水に溶した後、塩酸を用いてpHを7.4に調整して調製した。
<Citric acid buffer>
The citric acid buffer is prepared by dissolving 58.8 mg of 3Na citric acid (manufactured by Nakaraitesk Co., Ltd .: trisodium citrate dihydrate) in 10 mL of sterile water, and then adjusting the pH to 7.4 with hydrochloric acid. And prepared.

<トリス緩衝液>
トリス緩衝液は、24.2mgのトリス(ナカライテスク株式会社製:トリス(ヒドロキシ)アミノメタン)を10mLの滅菌水に溶した後、塩酸を用いてpHを7.4に調整して調製した。
<Tris buffer>
The Tris buffer was prepared by dissolving 24.2 mg of Tris (manufactured by Nacalai Tesque, Inc .: Tris (hydroxy) aminomethane) in 10 mL of sterilized water and then adjusting the pH to 7.4 with hydrochloric acid.

<炭酸緩衝液>
炭酸緩衝液は、20mgの炭酸ナトリウム(関東化学株式会社製)を10mLの滅菌水に溶した後、塩酸を用いてpHを7.4に調整して調製した。
<Carbonate buffer>
The carbonate buffer was prepared by dissolving 20 mg of sodium carbonate (manufactured by Kanto Chemical Co., Inc.) in 10 mL of sterilized water and then adjusting the pH to 7.4 with hydrochloric acid.

<酢酸緩衝液>
酢酸緩衝液は、16.4mgの酢酸ナトリウム(関東化学株式会社製)を10mLの滅菌水に溶した後、塩酸を用いてpHを7.4に調整して調製した。
<Acetic acid buffer>
The acetate buffer was prepared by dissolving 16.4 mg of sodium acetate (manufactured by Kanto Chemical Co., Inc.) in 10 mL of sterilized water and then adjusting the pH to 7.4 with hydrochloric acid.

<EDTA溶液>
EDTA溶液は、EDTA濃度が1、5、10、50または100mg/mLとなるように、EDTA−2Na(ナカライテスク株式会社製:エチレンジアミン四酢酸二水素二ナトリウム)を生理食塩液に溶解して、調製した。
<EDTA solution>
The EDTA solution is prepared by dissolving EDTA-2Na (manufactured by Nakaraitesk Co., Ltd .: disodium ethylenediaminetetraacetate) in physiological saline so that the EDTA concentration is 1, 5, 10, 50 or 100 mg / mL. Prepared.

<クエン酸溶液>
クエン酸溶液は、クエン酸の濃度が1、10、100または1000mg/mLとなるように、クエン酸−3Na(ナカライテスク株式会社製:クエン酸三ナトリウム二水和物)を生理食塩液に溶解して、調製した。
<Citric acid solution>
In the citric acid solution, citric acid-3Na (manufactured by Nakaraitesk Co., Ltd .: trisodium citrate dihydrate) is dissolved in a physiological saline solution so that the concentration of citric acid becomes 1, 10, 100 or 1000 mg / mL. And prepared.

<MES緩衝液>
MES緩衝液は、533mgのMES−Na(メルク社製)と733mgのNaClとを秤量した後、滅菌水にて溶解し、塩酸にてpHを7.4に調整して調製した。
<MES buffer>
The MES buffer solution was prepared by weighing 533 mg of MES-Na (manufactured by Merck & Co., Inc.) and 733 mg of NaCl, dissolving it in sterilized water, and adjusting the pH to 7.4 with hydrochloric acid.

<TE緩衝液>
TE緩衝液は、20倍TE緩衝液(Promega社製:20×TE Buffer、pH7.5)を、滅菌水にて20倍希釈して調製した。
<TE buffer>
The TE buffer solution was prepared by diluting a 20-fold TE buffer solution (manufactured by Promega: 20 × TE Buffer, pH 7.5) 20-fold with sterilized water.

<SYTOX溶液>
SYTOX(Thermo Fisher Science社製:SYTOX dead cell staining)をPBSにて100倍希釈して、10μMのSYTOX溶液を調製した。
<SYSTOX solution>
SYSTEM (Thermo Fisher Science: SYSTEM: dead cell staining) was diluted 100-fold with PBS to prepare a 10 μM SYSTEM solution.

<10%血清含有RPMIメディウム>
10%血清含有RPMIメディウムは、RPMI培地(ナカライテスク株式会社製:RPMI1640培地(液体))に、抗生物質としてPenicillin−Streptamycin Mixed Solution(ナカライテスク株式会社製)をペニシリン(100unit/mL)およびストレプトマイシン(100mg/mL)となるように添加した後、FBS(Gibco社製:Fetal Bovine Serum,Centified,Heat Inactivatied,US Origin)を添加して調製した。
<RPMI medium containing 10% serum>
The 10% serum-containing RPMI medium is prepared by adding Penicillin-Streptamicin Mixed Solution (manufactured by Nakaraitesk Co., Ltd.) to RPMI medium (manufactured by Nakaraitesk Co., Ltd .: RPMI1640 medium (liquid)) with penicillin (100 unit / mL) and streptomycin (manufactured by Nakaraitesk Co., Ltd.). After addition to 100 mg / mL), FBS (manufactured by Gibco: Fetal Bovine Serum, Centified, Heat Inactive, US Origin) was added to prepare the medium.

[リン脂質含有物質安定化剤および比較組成物の調製方法]
溶媒は、滅菌水、PBS、生理食塩液または上記で調製した緩衝液を使用した。
[Method for preparing phospholipid-containing substance stabilizer and comparative composition]
As the solvent, sterile water, PBS, physiological saline or the buffer prepared above was used.

<Peg溶液の調製方法>
Pegを秤量した後、溶媒を用いて溶解して、Peg溶液を調製した。Peg溶液中のPeg濃度は、後述の試験例のリン脂質含有物質安定化剤または比較組成物の組成となるように適宜調整した。
<Preparation method of Peg solution>
After weighing Peg, it was dissolved with a solvent to prepare a Peg solution. The Peg concentration in the Peg solution was appropriately adjusted so as to have the composition of the phospholipid-containing substance stabilizer or the comparative composition of the test example described later.

<CyD溶液の調製方法>
γCyDを秤量した後、溶媒を用いて溶解して、γCyD溶液を調製した。γCyD溶液中のγCyD濃度は、後述の試験例のリン脂質含有物質安定化剤、比較組成物またはγCyD溶液の組成となるように適宜調整した。
<Preparation method of CyD solution>
After weighing γCyD, it was dissolved with a solvent to prepare a γCyD solution. The γCyD concentration in the γCyD solution was appropriately adjusted so as to be the composition of the phospholipid-containing substance stabilizer, the comparative composition, or the γCyD solution of the test example described later.

また、αCyDを秤量した後、溶媒を用いて溶解して、αCyD溶液を調製した。αCyD溶液中のαCyD濃度は、後述の試験例のαCyD溶液の組成となるように適宜調整した。 In addition, αCyD was weighed and then dissolved with a solvent to prepare an αCyD solution. The αCyD concentration in the αCyD solution was appropriately adjusted so as to have the composition of the αCyD solution of the test example described later.

<リン脂質含有物質安定化剤の調製方法>
上記で調製したPeg溶液とγCyD溶液とを混合した後、室温で一晩静置して、リン脂質含有物質安定化剤(可溶性)または比較組成物(固体)を調製した。所望の組成となるように、適宜溶媒を添加した。
<Preparation method of phospholipid-containing substance stabilizer>
After mixing the Peg solution prepared above and the γCyD solution, the mixture was allowed to stand overnight at room temperature to prepare a phospholipid-containing substance stabilizer (soluble) or a comparative composition (solid). A solvent was appropriately added so as to obtain a desired composition.

[リン脂質含有物質安定化剤の調製方法2]
直線状分子と上記で調製したγCyD溶液とを混合した後、室温で一晩撹拌して、リン脂質含有物質安定化剤を調製した。
[Method for preparing phospholipid-containing substance stabilizer 2]
After mixing the linear molecule and the γCyD solution prepared above, the mixture was stirred overnight at room temperature to prepare a phospholipid-containing substance stabilizer.

[血液]
血液として、体重40〜90kgのSPF家畜ブタ(株式会社サンエスブリーディングから購入)から採血した血液を使用した。採血は、テルモ株式会社における動物実験に関する指針に従って実施した。
[blood]
As blood, blood collected from SPF domestic pigs (purchased from Sanes Breeding Co., Ltd.) weighing 40 to 90 kg was used. Blood was collected according to the guidelines for animal experiments at Terumo Corporation.

[測定方法]
<血液中への溶出DNA量の測定方法>
後述の試験例で得られた評価物に対して、1000rpmの遠心を10分間かけ、上清と沈殿物とに分離した。さらに、上清を30μL回収した後、30μLのSYTOX溶液を添加し、5分間静置した。その後、上清とSYTOX溶液との混合液から20μLを採取し、2980μLのTE緩衝液中に添加し、蛍光強度を評価するサンプルとした。蛍光強度を、蛍光分光光度計を用いてEx444nm、Em480nmにて測定して、血液中への溶出DNA量を測定した。
[Measuring method]
<Method of measuring the amount of DNA eluted in blood>
The evaluation product obtained in the test example described later was centrifuged at 1000 rpm for 10 minutes to separate the supernatant and the precipitate. Further, after collecting 30 μL of the supernatant, 30 μL of the SYSTEM solution was added and allowed to stand for 5 minutes. Then, 20 μL was collected from the mixed solution of the supernatant and the SYSTEM solution and added to 2980 μL of TE buffer to prepare a sample for evaluating the fluorescence intensity. The fluorescence intensity was measured at Ex444 nm and Em480 nm using a fluorescence spectrophotometer, and the amount of DNA eluted in the blood was measured.

<血液上清中のヘモグロビン吸光度の測定方法>
後述の試験例で得られた評価物に対して、1000rpmの遠心を10分間かけ、上清と沈殿物とに分離した。上清を20μL採取し、2980μLのTE緩衝液中に添加して、サンプルとした。プレートリーダーを用いて、576nmの吸光度を測定することで、赤血球の破壊により血液上清中に溶出したヘモグロビン量を求めた。
<Measurement method of hemoglobin absorbance in blood supernatant>
The evaluation product obtained in the test example described later was centrifuged at 1000 rpm for 10 minutes to separate the supernatant and the precipitate. 20 μL of the supernatant was collected and added to 2980 μL of TE buffer to prepare a sample. By measuring the absorbance at 576 nm using a plate reader, the amount of hemoglobin eluted in the blood supernatant due to the destruction of red blood cells was determined.

<上清中への溶出DNA量の測定方法>
後述の試験例で得られた評価物に対して、3000rpmの遠心を10分間かけ、上清と沈殿物とに分離した。さらに、上清を30μL回収した後、30μLのSYTOX溶液を添加し、5分間静置した。その後、上清とSYTOX溶液との混合液から20μLを採取し、2980μLのTE緩衝液中に添加し、蛍光強度を評価するサンプルとした。蛍光強度を、蛍光分光光度計を用いてEx444nm、Em480nmにて測定して、上清中への溶出DNA量を測定した。
<Method of measuring the amount of DNA eluted in the supernatant>
The evaluation product obtained in the test example described later was centrifuged at 3000 rpm for 10 minutes to separate the supernatant and the precipitate. Further, after collecting 30 μL of the supernatant, 30 μL of the SYSTEM solution was added and allowed to stand for 5 minutes. Then, 20 μL was collected from the mixed solution of the supernatant and the SYSTEM solution and added to 2980 μL of TE buffer to prepare a sample for evaluating the fluorescence intensity. The fluorescence intensity was measured at Ex444 nm and Em480 nm using a fluorescence spectrophotometer, and the amount of DNA eluted in the supernatant was measured.

<リポソームからの溶出蛍光物質の測定方法>
後述の試験例で得られた評価物を20〜40μL採取した後、2960μLのMES緩衝液に添加した。その後、蛍光強度を、蛍光分光光度計を用いてEx416、Em512nmにて測定して、リポソームからの蛍光物質の溶出量を測定した。
<Measurement method of elution fluorescent substance from liposome>
After collecting 20 to 40 μL of the evaluation product obtained in the test example described later, it was added to 2960 μL of MES buffer. Then, the fluorescence intensity was measured at Ex416 and Em512 nm using a fluorescence spectrophotometer, and the amount of the fluorescent substance eluted from the liposome was measured.

<電気泳動によるDNA量の測定方法>
後述の試験例で得られた評価物を遠心分離機を用いて4℃、1,900×gで10分間遠心した。遠心後、上清を3mL抜き取り、新しい15mL DNA LoBind Tube(Eppendorf社製)に回収し、遠心分離機を用いて4℃、16,000×gで10分間遠心した。遠心後、上清を2.4mL抜き取り、新しい15mL DNA LoBind Tube(Eppendorf社製)に回収した。回収した上清にQIAamp MinElute ccfDNA Kit(QIAGEN社製)に付属のMagnetic Bead Suspensionを72μL、Proteinase Kを132μL、Bead Binding Bufferを360μLを加えて混合した。混合液をローテーターを用いて20rpmで10分間転倒混和した。遠心分離機で200×g、30秒間遠心して、キャップに付いた液を落とした。その後、15mL用磁気ラックにサンプルをセットして、3分間静置した。静置後、ピペットを用いて磁気ビーズ以外を全て除去した。磁気ビーズに200μLのBead Elution bufferを加え、ピペッティングして壁をすすぎながら液200μLを回収し、QIAamp MinElute ccfDNA Kitに付属のBead Elution Tubeに移した。このBead Elution Tubeをサーモミキサーを用いて室温、300rpmで5分間撹拌した。2mL用磁気ラックに撹拌後のBead Elution Tubeをセットした後、1分間静置した。その後、上清185μLをQIAamp MinElute ccfDNA Kitに付属の新しいBead Elution Tubeに回収した。回収した上清にQIAamp MinElute ccfDNA Kitに付属のBuffer ACBを300μL添加し混合した。その混合液460μLをQIAamp MinElute ccfDNA Kitに付属のカラムチューブの中心に添加した。そのカラムチューブを遠心分離機を用いて4℃、6,000×gで1分間遠心した。その後、カラムチューブのカラム部品をQIAamp MinElute ccfDNA Kitに付属の新しい2mL Collection Tubeに付け替えた。このカラムチューブにQIAamp MinElute ccfDNA Kitに付属のBuffer ACW2を500μL添加し、遠心分離機を用いて4℃、6,000×gで1分間遠心した。その後、カラムチューブのカラム部品をQIAamp MinElute ccfDNA Kitに付属の新しい2mL Collection Tubeに付け替えた。このカラムチューブを遠心分離機を用いて4℃、20,000gで3分間遠心した。このカラムチューブのカラム部品をQIAamp MinElute ccfDNA Kitに付属の新しい1.5 mL Collection Tubeにセットし、フタを開けたままサーモミキサーにて56℃で3分間静置して、カラムを完全に乾燥させた。乾燥させたカラムの中心にQIAamp MinElute ccfDNA Kitに付属の滅菌水40μLを添加し、蓋を閉めて室温で1分間静置した。その後、遠心分離機を用いて室温下、20,000×gで1分間遠心した。遠心後に得られた液4μLをHighSensitivity D5000用試薬(アジレント・テクノロジー株式会社製)4μLと混合し、全自動ハイスループット電気泳動システム(アジレント・テクノロジー株式会社製:Ajilent 4200 TapeStation)を用いて液中に含有するDNA量を測定した。
<Method of measuring the amount of DNA by electrophoresis>
The evaluation product obtained in the test example described later was centrifuged at 1900 × g for 10 minutes at 4 ° C. using a centrifuge. After centrifugation, 3 mL of the supernatant was withdrawn, collected in a new 15 mL DNA LoBind Tube (manufactured by Eppendorf), and centrifuged at 4 ° C. and 16,000 × g for 10 minutes using a centrifuge. After centrifugation, 2.4 mL of the supernatant was withdrawn and collected in a new 15 mL DNA LoBind Tube (manufactured by Eppendorf). To the collected supernatant, 72 μL of Magnetic Bead Suspension attached to QIAamp MinElute ccfDNA Kit (manufactured by QIAGEN), 132 μL of Proteinase K, and 360 μL of Bed Binding Buffer were added and mixed. The mixture was inverted and mixed at 20 rpm for 10 minutes using a rotator. Centrifuge at 200 xg for 30 seconds to remove the liquid on the cap. Then, the sample was set in a magnetic rack for 15 mL and allowed to stand for 3 minutes. After standing, all but the magnetic beads were removed using a pipette. 200 μL of Bed Elution buffer was added to the magnetic beads, and 200 μL of the liquid was collected while rinsing the wall by pipetting, and transferred to the Bed Elution Tube attached to the QIAamp MinElute ccfDNA Kit. This Bead Elution Tube was stirred at room temperature and 300 rpm for 5 minutes using a thermomixer. The bead elution tube after stirring was set in a magnetic rack for 2 mL, and then allowed to stand for 1 minute. Then, 185 μL of the supernatant was collected in a new Bead Elution Tube attached to the QIAamp MinElute ccfDNA Kit. 300 μL of Buffer ACB attached to QIAamp MinElute ccfDNA Kit was added to the collected supernatant and mixed. 460 μL of the mixed solution was added to the center of the column tube attached to the QIAamp MinElute ccfDNA Kit. The column tube was centrifuged at 6,000 xg at 4 ° C. for 1 minute using a centrifuge. After that, the column parts of the column tube were replaced with the new 2 mL Collection Tube attached to the QIAamp MinElute ccfDNA Kit. To this column tube, 500 μL of Buffer ACW2 attached to the QIAamp MinElute ccfDNA Kit was added, and the mixture was centrifuged at 4 ° C. and 6,000 × g for 1 minute using a centrifuge. After that, the column parts of the column tube were replaced with the new 2 mL Collection Tube attached to the QIAamp MinElute ccfDNA Kit. The column tube was centrifuged at 4 ° C. and 20,000 g for 3 minutes using a centrifuge. The column parts of this column tube are set in the new 1.5 mL Collection Tube attached to the QIAamp MinElute ccfDNA Kit, and the column is allowed to stand at 56 ° C. for 3 minutes in a thermomixer with the lid open to completely dry the column. rice field. 40 μL of sterilized water attached to QIAamp MinElute ccfDNA Kit was added to the center of the dried column, the lid was closed, and the mixture was allowed to stand at room temperature for 1 minute. Then, it was centrifuged at 20,000 × g for 1 minute at room temperature using a centrifuge. 4 μL of the solution obtained after centrifugation is mixed with 4 μL of a reagent for High Sensitivity D5000 (manufactured by Agilent Technologies, Inc.) and put into the solution using a fully automatic high-throughput electrophoresis system (manufactured by Agilent Technologies, Ltd .: Agilent 4200 Tape Station). The amount of DNA contained was measured.

[試験例1]血液中の有核細胞を保護する効果の評価
上述のリン脂質含有物質安定化剤および比較組成物の調製方法により、下記表1の組成のリン脂質含有物質安定化剤1−1〜1−4および比較組成物1−5〜1−9を調製した。溶媒は、滅菌水を使用した。
[Test Example 1] Evaluation of Effect of Protecting Nucleated Cells in Blood According to the method for preparing the above-mentioned phospholipid-containing substance stabilizer and comparative composition, the phospholipid-containing substance stabilizer 1 of the composition shown in Table 1 below 1-1-4 and comparative compositions 1-5-1-9 were prepared. As the solvent, sterile water was used.

上記で調製した各リン脂質含有物質安定化剤または各比較組成物と血液とを体積比にて1:1で混合し、20℃にて1日、4日、7日または14日間静置して評価物を得た。また、血液(未処置)を20℃にて1日、4日、7日または14日間静置して評価物を得た。 Each phospholipid-containing substance stabilizer or comparative composition prepared above and blood are mixed at a volume ratio of 1: 1 and allowed to stand at 20 ° C. for 1, 4, 7 or 14 days. Obtained an evaluation product. In addition, blood (untreated) was allowed to stand at 20 ° C. for 1, 4, 7, or 14 days to obtain an evaluation product.

得られた評価物について、上述の血液中への溶出DNA量の測定方法により、蛍光強度を測定して、血液中への溶出DNA量を測定した。 With respect to the obtained evaluation product, the fluorescence intensity was measured by the above-mentioned method for measuring the amount of eluted DNA in blood, and the amount of eluted DNA in blood was measured.

結果を表1および図1に示す。表1に示す蛍光強度の値は、未処置(「No treat」)の評価物の蛍光強度を100とした場合の相対値である。 The results are shown in Table 1 and FIG. The fluorescence intensity values shown in Table 1 are relative values when the fluorescence intensity of the untreated (“No treat”) evaluation product is 100.

Figure 2021153464
Figure 2021153464

表1および図1に示すように、比較組成物1−6〜1−8(γCyD単独)では、いずれの濃度においても未処置(No treat)と同等の値を示しており、γCyD単独では有核細胞を保護する効果がないことが分かる。また、比較組成物1−5(Peg単独)も未処置と同等の値を示したことから、Peg単独では、有核細胞を保護する効果がないことが分かる。さらに、比較組成物1−9は、未処置よりも大きな値となり、有核細胞を破壊してしまうことが分かる。これは、比較組成物1−9において、Pegに対するγCyDの質量比が大きく、チキソトロピー性を有する固体のゲルが形成された(可溶性ではない)ため、ソフトマテリアルである細胞膜を物理的に破壊してしまったためと考えられる(図2)。 As shown in Table 1 and FIG. 1, the comparative compositions 1-6 to 1-8 (γCyD alone) showed values equivalent to those of untreated (Not treat) at any concentration, and γCyD alone had a value. It turns out that it has no effect on protecting nuclear cells. Moreover, since the comparative composition 1-5 (Peg alone) also showed the same value as that of the untreated, it can be seen that Peg alone has no effect of protecting nucleated cells. Furthermore, it can be seen that the comparative compositions 1-9 have a higher value than the untreated one and destroy the nucleated cells. This is because in the comparative composition 1-9, a solid gel having a large mass ratio of γCyD to Peg and thixotropy was formed (not soluble), so that the cell membrane, which is a soft material, was physically destroyed. This is probably because it has been closed (Fig. 2).

一方、リン脂質含有物質安定化剤1−1〜1−4は、未処置および比較組成物よりも小さな値であり、PegとγCyDとを組み合わせて使用することにより、有核細胞を保護する効果を有することが分かる。 On the other hand, the phospholipid-containing substance stabilizers 1-1 to 1-4 have smaller values than the untreated and comparative compositions, and the effect of protecting nucleated cells by using Peg and γCyD in combination is effective. It can be seen that it has.

[試験例2]CyD単独による血液中の有核細胞を保護する効果の評価
上述のリン脂質含有物質安定化剤および比較組成物の調製方法により、下記表2の組成のCyD溶液2−1〜2−10を調製した。溶媒は、滅菌水を使用した。
[Test Example 2] Evaluation of the effect of CyD alone on protecting nucleated cells in blood According to the method for preparing the above-mentioned phospholipid-containing substance stabilizer and comparative composition, the CyD solution 2-1 to the composition shown in Table 2 below 2-10 was prepared. As the solvent, sterile water was used.

上記で調製した各CyD溶液と血液とを体積比にて1:1で混合し、20℃にて14日間静置して評価物を得た。また、PBSで25倍に希釈したTritonX−100またはPBSと血液とを体積比にて1:1で混合し、20℃にて14日間静置して評価物を得た。さらに、血液(未処置)を20℃にて14日間静置して評価物を得た。 Each CyD solution prepared above and blood were mixed at a volume ratio of 1: 1 and allowed to stand at 20 ° C. for 14 days to obtain an evaluation product. In addition, Triton X-100 or PBS diluted 25-fold with PBS and blood were mixed at a volume ratio of 1: 1 and allowed to stand at 20 ° C. for 14 days to obtain an evaluation product. Further, blood (untreated) was allowed to stand at 20 ° C. for 14 days to obtain an evaluation product.

得られた評価物について、上述の血液中への溶出DNA量の測定方法により、蛍光強度を測定して、血液中への溶出DNA量を測定した。 With respect to the obtained evaluation product, the fluorescence intensity was measured by the above-mentioned method for measuring the amount of eluted DNA in blood, and the amount of eluted DNA in blood was measured.

結果を表2および図3に示す。表2に示す蛍光強度の値は、未処置(「No treat」)の評価物の蛍光強度を100とした場合の相対値である。 The results are shown in Table 2 and FIG. The fluorescence intensity values shown in Table 2 are relative values when the fluorescence intensity of the untreated (“No treat”) evaluation product is 100.

Figure 2021153464
Figure 2021153464

表2および図3に示すように、いずれの濃度においてもγCyDは、PBSおよび未処置(No treat)と同等の値を示し、血液中の有核細胞を保護する効果を有さないことが分かる。また、αCyDにおいては、PBSおよび未処置を、やや上回る値となる蛍光を示した。αCyDは、血液中の有核細胞を保護する効果を有していないのみならず、有核細胞を破壊する性質であることが分かる。 As shown in Table 2 and FIG. 3, γCyD showed a value equivalent to that of PBS and untreated (Not treat) at any concentration, indicating that it had no effect of protecting nucleated cells in blood. .. In addition, αCyD showed fluorescence that was slightly higher than that of PBS and untreated. It can be seen that αCyD not only has no effect of protecting nucleated cells in blood, but also has a property of destroying nucleated cells.

[試験例3]血液中の有核細胞を保護する効果に及ぼす、Peg重量平均分子量の影響、およびPeg濃度の影響の評価
上述のリン脂質含有物質安定化剤および比較組成物の調製方法により、下記表3−1の組成のリン脂質含有物質安定化剤3−1〜3−9、3−13〜3−21、3−25〜3−33、3−37〜3−45および3−49〜3−57ならびに3−10〜3−12、3−22〜3−24、3−34〜3−36、3−46〜3−48および3−58〜3−60を調製した。溶媒は、滅菌水を使用した。
[Test Example 3] Evaluation of the effect of Peg weight average molecular weight and the effect of Peg concentration on the effect of protecting nucleated cells in blood According to the above-mentioned method for preparing a phospholipid-containing substance stabilizer and a comparative composition. Phospholipid-containing substance stabilizers having the compositions shown in Table 3-1 below, 3-13-9, 3-13 to 3-21, 3-25 to 3-33, 3-37 to 3-45 and 3-49. ~ 3-57 and 3-10-3-12, 3-22-3-24, 3-34-3-36, 3-46-3-48 and 3-58-3-60 were prepared. As the solvent, sterile water was used.

上記で調製した各リン脂質含有物質安定化剤または各比較組成物と血液とを体積比にて1:1で混合し、30℃にて14日間静置して評価物を得た。 Each phospholipid-containing substance stabilizer or each comparative composition prepared above and blood were mixed at a volume ratio of 1: 1 and allowed to stand at 30 ° C. for 14 days to obtain an evaluation product.

得られた評価物について、上述の血液中への溶出DNA量の測定方法により、蛍光強度を測定して、血液中への溶出DNA量を測定した。 With respect to the obtained evaluation product, the fluorescence intensity was measured by the above-mentioned method for measuring the amount of eluted DNA in blood, and the amount of eluted DNA in blood was measured.

結果を表3−1および表3−2ならびに図4に示す。表3−1に示す蛍光強度の値は、各比較組成物の評価物の蛍光強度を100とした場合の相対値である。表3−2に示す蛍光強度の値は、未処置(「No treat」)の評価物の蛍光強度を100とした場合の相対値である。図4は、リン脂質含有物質安定化剤の評価物の蛍光強度を示す。 The results are shown in Table 3-1 and Table 3-2 and FIG. The fluorescence intensity values shown in Table 3-1 are relative values when the fluorescence intensity of the evaluated product of each comparative composition is 100. The fluorescence intensity values shown in Table 3-2 are relative values when the fluorescence intensity of the untreated (“No treat”) evaluation product is 100. FIG. 4 shows the fluorescence intensity of the evaluated product of the phospholipid-containing substance stabilizer.

Figure 2021153464
Figure 2021153464

Figure 2021153464
Figure 2021153464

表3−1に示すように、重量平均分子量が6000、35000、40000、10万または20万であるPegを用いた場合、リン脂質含有物質安定化剤中のγCyDの濃度が46.4mg/mL、11.6mg/mLおよび2.9mg/mLのいずれであっても、溶出DNA量は、比較組成物(Peg単独)と比べて小さな値を示した。 As shown in Table 3-1 when Peg having a weight average molecular weight of 6000, 35,000, 40,000, 100,000 or 200,000 was used, the concentration of γCyD in the phospholipid-containing substance stabilizer was 46.4 mg / mL. At both 11.6 mg / mL and 2.9 mg / mL, the amount of eluted DNA showed a small value as compared with the comparative composition (Peg alone).

また、リン脂質含有物質安定化剤中のPegの濃度が40mg/mL、60mg/mLおよび80mg/mLのいずれであっても、溶出DNA量は、比較組成物と比べて小さな値を示した。 In addition, the amount of eluted DNA was smaller than that of the comparative composition regardless of whether the concentration of Peg in the phospholipid-containing substance stabilizer was 40 mg / mL, 60 mg / mL, or 80 mg / mL.

これらのことから、本発明のリン脂質含有物質安定化剤は、PegおよびγCyDを含むことにより、Peg単独と比べて、血液中の有核細胞を保護する効果を増強できることが分かる。 From these facts, it can be seen that the phospholipid-containing substance stabilizer of the present invention can enhance the effect of protecting nucleated cells in blood by containing Peg and γCyD as compared with Peg alone.

また、表3−2および図4に示すように、溶出DNA量は、Pegの濃度を高くするにつれて小さな値を示した。よって、リン脂質含有物質安定化剤の有核細胞を保護する効果は、リン脂質含有物質安定化剤中のPeg濃度を高くすることで、より高くできることが分かる。 Further, as shown in Table 3-2 and FIG. 4, the amount of eluted DNA showed a smaller value as the concentration of Peg was increased. Therefore, it can be seen that the effect of the phospholipid-containing substance stabilizer to protect nucleated cells can be further enhanced by increasing the Peg concentration in the phospholipid-containing substance stabilizer.

[試験例4]赤血球を保護する効果の評価
<リン脂質含有物質安定化剤の調製>
上述のリン脂質含有物質安定化剤および比較組成物の調製方法により、下記表4の組成のリン脂質含有物質安定化剤4−1〜4−3、4−6〜4−8、4−11〜4−13、4−16〜4−18および4−21〜4−23ならびに比較組成物4−4、4−5、4−9、4−10、4−14、4−15、4−19、4−20、4−24および4−25を調製した。溶媒は、滅菌水を使用した。
[Test Example 4] Evaluation of effect of protecting erythrocytes <Preparation of phospholipid-containing substance stabilizer>
According to the above-mentioned method for preparing the phospholipid-containing substance stabilizer and the comparative composition, the phospholipid-containing substance stabilizers having the compositions shown in Table 4 below are 4-1 to 4-3, 4-6 to 4-8, 4-11. To 4-13, 4-16 to 4-18 and 4-21 to 4-23 and Comparative Compositions 4-4, 4-5, 4-9, 4-10, 4-14, 4-15, 4- 19, 4-20, 4-24 and 4-25 were prepared. As the solvent, sterile water was used.

上記で調製した各リン脂質含有物質安定化剤または各比較組成物と血液とを体積比にて1:1で混合し、30℃にて14日間静置して評価物を得た。また、血液(未処置)を20℃にて14日間静置して評価物を得た。 Each phospholipid-containing substance stabilizer or each comparative composition prepared above and blood were mixed at a volume ratio of 1: 1 and allowed to stand at 30 ° C. for 14 days to obtain an evaluation product. In addition, blood (untreated) was allowed to stand at 20 ° C. for 14 days to obtain an evaluation product.

得られた評価物について、上述の血液上清中のヘモグロビン吸光度の測定方法により、吸光度を測定して、赤血球の破壊により血液上清中に溶出したヘモグロビン量を求めた。 The absorbance of the obtained evaluation product was measured by the above-mentioned method for measuring hemoglobin absorbance in blood supernatant, and the amount of hemoglobin eluted in blood supernatant due to destruction of red blood cells was determined.

結果を表4および図5に示す。表4に示す吸光度の値は、未処置(「No treat」)の評価物の吸光度を100とした場合の相対値である。 The results are shown in Table 4 and FIG. The absorbance values shown in Table 4 are relative values when the absorbance of the untreated (“No treat”) evaluation product is 100.

Figure 2021153464
Figure 2021153464

表4および図5に示すように、リン脂質含有物質安定化剤および比較組成物(Pegのみを含む)は、未処置(No treat)よりも小さい値を示した。すなわち、これらは赤血球を保護する効果を有していることが分かる。 As shown in Table 4 and FIG. 5, the phospholipid-containing substance stabilizer and the comparative composition (containing only Peg) showed smaller values than the untreated (Not treat). That is, it can be seen that these have the effect of protecting red blood cells.

リン脂質含有物質安定化剤と比較組成物(Pegのみを含む)とを比較すると、リン脂質含有物質安定化剤は、比較組成物(Pegのみを含む)よりも、小さい値を示した。このことから、PegとγCyDとを組み合わせて使用することにより、Peg単独と比較して、赤血球を保護する効果をより高くすることが分かる。 Comparing the phospholipid-containing substance stabilizer with the comparative composition (containing only Peg), the phospholipid-containing substance stabilizer showed a smaller value than the comparative composition (containing only Peg). From this, it can be seen that the combined use of Peg and γCyD enhances the effect of protecting erythrocytes as compared with Peg alone.

なお、チキソトロピー性を有する固体のゲルである比較組成物4−5、4−10、4−15、4−20および4−25は、比較組成物(Pegのみを含む)よりも、大きな値を示した。このことから、Pegに対するγCyDの質量比が所定の値より大きい場合、Peg単独に比べて、赤血球を保護する効果が低いことが分かる。 The comparative compositions 4-5, 4-10, 4-15, 4-20 and 4-25, which are solid gels having thixotropy, have larger values than the comparative compositions (including only Peg). Indicated. From this, it can be seen that when the mass ratio of γCyD to Peg is larger than a predetermined value, the effect of protecting erythrocytes is lower than that of Peg alone.

[試験例5]血液中の細胞に対して、増強された保護効果を有するリン脂質含有物質安定化剤の組成の検討
試験例1、3および4において、本発明のリン脂質含有物質安定化剤は、Peg単独と比べて有核細胞および赤血球を保護する効果がより高いことが確認された。また、本発明のリン脂質含有物質安定化剤の保護効果は、リン脂質含有物質安定化剤中のPeg濃度を高めることで、増大することも明らかとなった。そのため、試験例5では、リン脂質含有物質安定化剤の組成について、さらなる検討を行った。
[Test Example 5] Examination of composition of phospholipid-containing substance stabilizer having enhanced protective effect on cells in blood In Test Examples 1, 3 and 4, the phospholipid-containing substance stabilizer of the present invention. Was confirmed to be more effective in protecting nucleated cells and erythrocytes than Peg alone. It was also clarified that the protective effect of the phospholipid-containing substance stabilizer of the present invention is increased by increasing the Peg concentration in the phospholipid-containing substance stabilizer. Therefore, in Test Example 5, the composition of the phospholipid-containing substance stabilizer was further investigated.

上述のリン脂質含有物質安定化剤および比較組成物の調製方法により、下記表5の組成のリン脂質含有物質安定化剤5−1〜5−46を調製した。溶媒は、滅菌水を使用した。 The phospholipid-containing substance stabilizers 5-1 to 5-46 having the compositions shown in Table 5 below were prepared by the above-mentioned method for preparing the phospholipid-containing substance stabilizer and the comparative composition. As the solvent, sterile water was used.

上記で調製した各リン脂質含有物質安定化剤と血液とを体積比にて1:9で混合し、30℃にて7日間静置して評価物を得た。 Each phospholipid-containing substance stabilizer prepared above and blood were mixed at a volume ratio of 1: 9, and allowed to stand at 30 ° C. for 7 days to obtain an evaluation product.

得られた評価物について、上述の血液中への溶出DNA量の測定方法により、蛍光強度を測定して、血液中への溶出DNA量を測定した。 With respect to the obtained evaluation product, the fluorescence intensity was measured by the above-mentioned method for measuring the amount of eluted DNA in blood, and the amount of eluted DNA in blood was measured.

結果を表5および図6に示す。表5および図6に示す蛍光強度の値は、リン脂質含有物質安定化剤5−1の評価物の蛍光強度を100とした場合の相対値である。 The results are shown in Table 5 and FIG. The fluorescence intensity values shown in Table 5 and FIG. 6 are relative values when the fluorescence intensity of the evaluation product of the phospholipid-containing substance stabilizer 5-1 is set to 100.

Figure 2021153464
Figure 2021153464

表5および図6に示すように、リン脂質含有物質安定化剤中のPegの濃度を高めるほど、溶出DNA量を示す値は小さくなり、より強力に血液中の有核細胞を保護できることが分かる。 As shown in Table 5 and FIG. 6, it can be seen that the higher the concentration of Peg in the phospholipid-containing substance stabilizer, the smaller the value indicating the amount of eluted DNA, and the stronger the protection of nucleated cells in blood. ..

[試験例6]リン脂質含有物質安定化剤と血液との混合比率の検討−1
上述のリン脂質含有物質安定化剤および比較組成物の調製方法により、下記表6の組成のリン脂質含有物質安定化剤6−1および比較組成物6−2を調製した。溶媒は、滅菌水を使用した。
[Test Example 6] Examination of mixing ratio of phospholipid-containing substance stabilizer and blood-1
The phospholipid-containing substance stabilizer 6-1 and the comparative composition 6-2 having the compositions shown in Table 6 below were prepared by the above-mentioned method for preparing the phospholipid-containing substance stabilizer and the comparative composition. As the solvent, sterile water was used.

上記で調製したリン脂質含有物質安定化剤または比較組成物と血液とを体積比にて1:1、1:2、1:4、1:7または1:19で混合し、30℃にて7日間静置して評価物を得た。また、PBSと血液とを体積比にて1:1、1:2、1:4、1:7または1:19で混合し、30℃にて7日間静置して評価物を得た。 The phospholipid-containing substance stabilizer or comparative composition prepared above and blood are mixed in a volume ratio of 1: 1, 1: 2, 1: 4, 1: 7 or 1:19 and at 30 ° C. The product was allowed to stand for 7 days to obtain an evaluation product. Further, PBS and blood were mixed at a volume ratio of 1: 1, 1: 2, 1: 4, 1: 7 or 1:19 and allowed to stand at 30 ° C. for 7 days to obtain an evaluation product.

得られた評価物について、上述の血液中への溶出DNA量の測定方法により、蛍光強度を測定して、血液中への溶出DNA量を測定した。 With respect to the obtained evaluation product, the fluorescence intensity was measured by the above-mentioned method for measuring the amount of eluted DNA in blood, and the amount of eluted DNA in blood was measured.

結果を表6および図7に示す。表6に示す蛍光強度の値は、PBSの評価物の蛍光強度を100とした場合の相対値である。 The results are shown in Table 6 and FIG. The fluorescence intensity values shown in Table 6 are relative values when the fluorescence intensity of the PBS evaluation product is 100.

Figure 2021153464
Figure 2021153464

表6および図7に示すように、本発明のリン脂質含有物質安定化剤は、血液との混合比1:1〜1:19(リン脂質含有物質安定化剤:血液)において、比較組成物およびPBSよりも小さい値を示し、有核細胞を保護する増強された効果を有することが分かる。 As shown in Table 6 and FIG. 7, the phospholipid-containing substance stabilizer of the present invention has a comparative composition at a mixing ratio of 1: 1 to 1:19 with blood (phospholipid-containing substance stabilizer: blood). And it shows a value smaller than PBS, and it can be seen that it has an enhanced effect of protecting nucleated cells.

[試験例7]リン脂質含有物質安定化剤と血液との混合比率の検討−2
上述のリン脂質含有物質安定化剤および比較組成物の調製方法により、下記表7の組成のリン脂質含有物質安定化剤7−1〜7−4および比較組成物7−5〜7−8を調製した。溶媒は、滅菌水を使用した。
[Test Example 7] Examination of mixing ratio of phospholipid-containing substance stabilizer and blood-2
According to the method for preparing the phospholipid-containing substance stabilizer and the comparative composition described above, the phospholipid-containing substance stabilizers 7-1 to 7-4 and the comparative compositions 7-5 to 7-8 having the compositions shown in Table 7 below were added. Prepared. As the solvent, sterile water was used.

上記で調製した各リン脂質含有物質安定化剤または各比較組成物と血液とを体積比にて1:1、1:2、1:4、1:8、1:16または1:32で混合し、30℃にて7日間静置して評価物を得た。また、PBSと血液とを体積比にて1:1、1:2、1:4、1:8、1:16または1:32で混合し、30℃にて7日間静置して評価物を得た。 Each phospholipid-containing substance stabilizer or comparative composition prepared above and blood are mixed in a volume ratio of 1: 1, 1: 2, 1: 4, 1: 8, 1:16 or 1:32. Then, it was allowed to stand at 30 ° C. for 7 days to obtain an evaluation product. In addition, PBS and blood are mixed at a volume ratio of 1: 1, 1: 2, 1: 4, 1: 8, 1:16 or 1:32, and allowed to stand at 30 ° C. for 7 days for evaluation. Got

得られた評価物について、上述の血液中への溶出DNA量の測定方法により、蛍光強度を測定して、血液中への溶出DNA量を測定した。 With respect to the obtained evaluation product, the fluorescence intensity was measured by the above-mentioned method for measuring the amount of eluted DNA in blood, and the amount of eluted DNA in blood was measured.

結果を表7および図8に示す。表7に示す蛍光強度の値は、PBSの評価物の蛍光強度を100とした場合の相対値である。 The results are shown in Table 7 and FIG. The fluorescence intensity values shown in Table 7 are relative values when the fluorescence intensity of the PBS evaluation product is 100.

Figure 2021153464
Figure 2021153464

表7および図8に示すように、リン脂質含有物質安定化剤7−1〜7−4は、血液との混合比1:1〜1:19(リン脂質含有物質安定化剤:血液)において、血液中の有核細胞を保護する効果を有することが分かる。 As shown in Table 7 and FIG. 8, the phospholipid-containing substance stabilizers 7-1 to 7-4 have a mixing ratio of 1: 1 to 1:19 with blood (phospholipid-containing substance stabilizer: blood). , It can be seen that it has the effect of protecting nucleated cells in blood.

また、リン脂質含有物質安定化剤中のPegおよびCyDの濃度を増大させることで、溶出DNA量を低く抑えることができ、血液中の有核細胞をより強力に保護可能であることが分かる。 Further, it can be seen that by increasing the concentrations of Peg and CyD in the phospholipid-containing substance stabilizer, the amount of eluted DNA can be suppressed to a low level, and nucleated cells in the blood can be more strongly protected.

[試験例8]リン脂質含有物質安定化剤の保護効果に及ぼす、溶媒の影響の評価
上述のリン脂質含有物質安定化剤および比較組成物の調製方法により、異なる溶媒を使用した下記表8の組成のリン脂質含有物質安定化剤8−1および比較組成物8−2〜8−3を調製した。溶媒は、滅菌水、PBS、生理食塩液、クエン酸緩衝液、トリス緩衝液、炭酸緩衝液または酢酸緩衝液を使用した。
[Test Example 8] Evaluation of Effect of Solvent on Protective Effect of Phospholipid-Containing Substance Stabilizer Table 8 below shows that different solvents were used depending on the method for preparing the above-mentioned phospholipid-containing substance stabilizer and comparative composition. A phospholipid-containing substance stabilizer 8-1 having a composition and comparative compositions 8-2 to 8-3 were prepared. As the solvent, sterile water, PBS, physiological saline, citric acid buffer, Tris buffer, carbonate buffer or acetate buffer was used.

上記で調製したリン脂質含有物質安定化剤または各比較組成物と血液とを体積比にて1:9で混合し、30℃にて14日間静置して評価物を得た。 The phospholipid-containing substance stabilizer or comparative composition prepared above and blood were mixed at a volume ratio of 1: 9 and allowed to stand at 30 ° C. for 14 days to obtain an evaluation product.

得られた評価物について、上述の血液中への溶出DNA量の測定方法により、蛍光強度を測定して、血液中への溶出DNA量を測定した。 With respect to the obtained evaluation product, the fluorescence intensity was measured by the above-mentioned method for measuring the amount of eluted DNA in blood, and the amount of eluted DNA in blood was measured.

結果を表8および図9に示す。表8に示す蛍光強度の値は、滅菌水を使用した比較組成物8−2の評価物の蛍光強度を100とした場合の相対値である。 The results are shown in Table 8 and FIG. The fluorescence intensity values shown in Table 8 are relative values when the fluorescence intensity of the evaluation product of the comparative composition 8-2 using sterile water is set to 100.

Figure 2021153464
Figure 2021153464

表8および図9に示すように、本発明のリン脂質含有物質安定化剤は、調整に用いる溶媒に影響されることなく、いずれの溶媒を用いた場合においても高い保護効果を発現することが分かる。 As shown in Table 8 and FIG. 9, the phospholipid-containing substance stabilizer of the present invention can exhibit a high protective effect regardless of the solvent used for preparation, regardless of which solvent is used. I understand.

[試験例9]pHの影響の評価
<リン脂質含有物質安定化剤の調製>
上述のリン脂質含有物質安定化剤および比較組成物の調製方法により、下記表9の組成のリン脂質含有物質安定化剤9−1および比較組成物9−2〜9−3を調製した。その後、リン脂質含有物質安定化剤および比較組成物は、塩酸または水酸化ナトリウムを用いて、pHを2、3、4、6、9、10または11に調整した。溶媒は、生理食塩液を使用した。
[Test Example 9] Evaluation of the effect of pH <Preparation of phospholipid-containing substance stabilizer>
The phospholipid-containing substance stabilizer 9-1 and the comparative compositions 9-2 to 9-3 having the compositions shown in Table 9 below were prepared by the above-mentioned method for preparing the phospholipid-containing substance stabilizer and the comparative composition. The phospholipid-containing material stabilizer and comparative composition were then adjusted to pH 2, 3, 4, 6, 9, 10 or 11 with hydrochloric acid or sodium hydroxide. A physiological saline solution was used as the solvent.

上記で調製したリン脂質含有物質安定化剤または各比較組成物と血液とを体積比にて1:9で混合し、30℃にて14日間静置して評価物を得た。また、pH6.0に調整した生理食塩液と血液とを体積比にて1:9で混合し、30℃にて14日間静置して評価物を得た。 The phospholipid-containing substance stabilizer or comparative composition prepared above and blood were mixed at a volume ratio of 1: 9 and allowed to stand at 30 ° C. for 14 days to obtain an evaluation product. Further, a physiological saline solution adjusted to pH 6.0 and blood were mixed at a volume ratio of 1: 9, and allowed to stand at 30 ° C. for 14 days to obtain an evaluation product.

得られた評価物について、上述の血液中への溶出DNA量の測定方法により、蛍光強度を測定して、血液中への溶出DNA量を測定した。 With respect to the obtained evaluation product, the fluorescence intensity was measured by the above-mentioned method for measuring the amount of eluted DNA in blood, and the amount of eluted DNA in blood was measured.

結果を表9および図10に示す。表9に示す蛍光強度の値は、生理食塩液の評価物の蛍光強度を100とした場合の相対値である。 The results are shown in Table 9 and FIG. The fluorescence intensity values shown in Table 9 are relative values when the fluorescence intensity of the evaluation product of the physiological saline solution is 100.

Figure 2021153464
Figure 2021153464

表9および図10に示すように、pH2〜11のいずれにおいても、リン脂質含有物質安定化剤9−1は、比較組成物(Peg単独またはγCyD単独)よりもDNAの溶出を低く抑えたことが分かる。したがって、本発明のリン脂質含有物質安定化剤は、調製時のpHに影響されることなく、有核細胞を保護する高い効果を発現することが分かる。 As shown in Table 9 and FIG. 10, the phospholipid-containing substance stabilizer 9-1 suppressed the elution of DNA lower than that of the comparative composition (Peg alone or γCyD alone) at both pHs 2 to 11. I understand. Therefore, it can be seen that the phospholipid-containing substance stabilizer of the present invention exhibits a high effect of protecting nucleated cells without being affected by the pH at the time of preparation.

[試験例10]浸透圧の影響の評価
<リン脂質含有物質安定化剤の調製>
上述のリン脂質含有物質安定化剤および比較組成物の調製方法により、異なる濃度のNaClを含む下記表10の組成のリン脂質含有物質安定化剤10−1および比較組成物10−2〜10−3を調製した。溶媒は、滅菌水または塩化ナトリウム(200、500または1000mM)を含む生理食塩液を使用した。
[Test Example 10] Evaluation of the effect of osmotic pressure <Preparation of phospholipid-containing substance stabilizer>
Depending on the method for preparing the phospholipid-containing substance stabilizer and the comparative composition described above, the phospholipid-containing substance stabilizer 10-1 and the comparative composition 10-2 to 10- having the compositions shown in Table 10 below, which contain different concentrations of NaCl. 3 was prepared. As the solvent, sterile water or physiological saline containing sodium chloride (200, 500 or 1000 mM) was used.

上記で調製したリン脂質含有物質安定化剤または各比較組成物と血液とを体積比にて1:9で混合し、30℃にて14日間静置して評価物を得た。 The phospholipid-containing substance stabilizer or comparative composition prepared above and blood were mixed at a volume ratio of 1: 9 and allowed to stand at 30 ° C. for 14 days to obtain an evaluation product.

得られた評価物について、上述の血液中への溶出DNA量の測定方法により、蛍光強度を測定して、血液中への溶出DNA量を測定した。 With respect to the obtained evaluation product, the fluorescence intensity was measured by the above-mentioned method for measuring the amount of eluted DNA in blood, and the amount of eluted DNA in blood was measured.

結果を表10および図11に示す。表10に示す蛍光強度の値は、滅菌水を用いて調製した比較組成物10−2(NaCl濃度:0mM)の評価物の蛍光強度を100とした場合の相対値である。 The results are shown in Table 10 and FIG. The fluorescence intensity values shown in Table 10 are relative values when the fluorescence intensity of the evaluation product of the comparative composition 10-2 (NaCl concentration: 0 mM) prepared using sterile water is set to 100.

Figure 2021153464
Figure 2021153464

表10および図11に示すように、200〜1000mMのNaCl濃度に相当する浸透圧であっても、リン脂質含有物質安定化剤10−1は、比較組成物(Peg単独またはγCyD単独)よりもDNAの溶出を低く抑えたことが分かる。したがって、本発明のリン脂質含有物質安定化剤は、少なくとも1000mMのNaCl濃度に相当する浸透圧において、有核細胞を保護する高い効果を発現することが分かる。 As shown in Table 10 and FIG. 11, the phospholipid-containing substance stabilizer 10-1 is more than the comparative composition (Peg alone or γCyD alone) even at an osmotic pressure corresponding to a NaCl concentration of 200 to 1000 mM. It can be seen that the elution of DNA was suppressed to a low level. Therefore, it can be seen that the phospholipid-containing substance stabilizer of the present invention exerts a high effect of protecting nucleated cells at an osmotic pressure corresponding to a NaCl concentration of at least 1000 mM.

[試験例11]調製時の温度の影響の評価
上述のリン脂質含有物質安定化剤および比較組成物の調製方法により、下記表11の組成のリン脂質含有物質安定化剤11−1および比較組成物11−2〜11−3を、異なる温度で調製した。リン脂質含有物質安定化剤は、室温の代わりに4℃、20℃または40℃で一晩静置して調製した。また、比較組成物は、4℃、20℃または40℃となるように調製した。溶媒は、生理食塩液を使用した。
[Test Example 11] Evaluation of the effect of temperature during preparation According to the method for preparing the above-mentioned phospholipid-containing substance stabilizer and comparative composition, the phospholipid-containing substance stabilizer 11-1 and the comparative composition having the compositions shown in Table 11 below Objects 11-2 to 11-3 were prepared at different temperatures. The phospholipid-containing substance stabilizer was prepared by allowing it to stand overnight at 4 ° C., 20 ° C. or 40 ° C. instead of room temperature. Moreover, the comparative composition was prepared so as to be 4 degreeC, 20 degreeC or 40 degreeC. A physiological saline solution was used as the solvent.

上記で調製した各リン脂質含有物質安定化剤または各比較組成物と血液とを体積比にて1:9で混合し、30℃にて14日間静置して評価物を得た。 Each phospholipid-containing substance stabilizer or each comparative composition prepared above was mixed with blood at a volume ratio of 1: 9, and allowed to stand at 30 ° C. for 14 days to obtain an evaluation product.

得られた評価物について、上述の血液中への溶出DNA量の測定方法により、蛍光強度を測定して、血液中への溶出DNA量を測定した。 With respect to the obtained evaluation product, the fluorescence intensity was measured by the above-mentioned method for measuring the amount of eluted DNA in blood, and the amount of eluted DNA in blood was measured.

結果を表11および図12に示す。表11に示す蛍光強度の値は、20℃の比較組成物11−2の評価物の蛍光強度を100とした場合の相対値である。 The results are shown in Table 11 and FIG. The fluorescence intensity values shown in Table 11 are relative values when the fluorescence intensity of the evaluation product of the comparative composition 11-2 at 20 ° C. is set to 100.

Figure 2021153464
Figure 2021153464

表11および図12に示すように、調製時の温度が4〜40℃であっても、リン脂質含有物質安定化剤11−1は、比較組成物(Peg単独またはγCyD単独)よりもDNAの溶出を低く抑えたことが分かる。したがって、本発明のリン脂質含有物質安定化剤は、調製時の温度に影響されることなく、4〜40℃において、有核細胞を保護する高い効果を発現することが分かる。 As shown in Table 11 and FIG. 12, even when the temperature at the time of preparation was 4 to 40 ° C., the phospholipid-containing substance stabilizer 11-1 was more DNA than the comparative composition (Peg alone or γCyD alone). It can be seen that the elution was suppressed to a low level. Therefore, it can be seen that the phospholipid-containing substance stabilizer of the present invention exhibits a high effect of protecting nucleated cells at 4 to 40 ° C. without being affected by the temperature at the time of preparation.

[試験例12]EDTA濃度の影響の評価
上述のリン脂質含有物質安定化剤および比較組成物の調製方法により、下記表12の組成のリン脂質含有物質安定化剤12−1〜12−6および比較組成物12−7〜12−18を調製した。溶媒は、滅菌水またはEDTA溶液(EDTA濃度:1、5、10、50または100mg/mL)を使用した。
[Test Example 12] Evaluation of Effect of EDTA Concentration According to the method for preparing the above-mentioned phospholipid-containing substance stabilizer and comparative composition, the phospholipid-containing substance stabilizers 12-1 to 12-6 having the compositions shown in Table 12 below and Comparative compositions 12-7-12-18 were prepared. As the solvent, sterilized water or an EDTA solution (EDTA concentration: 1, 5, 10, 50 or 100 mg / mL) was used.

また、滅菌水およびEDTA溶液(EDTA濃度:1、5、10、50または100mg/mL)を比較組成物12−19〜12−24とした。 In addition, sterile water and an EDTA solution (EDTA concentration: 1, 5, 10, 50 or 100 mg / mL) were used as comparative compositions 12-19 to 12-24.

上記で調製したリン脂質含有物質安定化剤または各比較組成物と血液とを体積比にて1:9で混合し、30℃にて7日間静置して評価物を得た。なお、使用した血液は、採血管ではなくシリンジを用いて採取し、EDTAが含まれないよう留意した。 The phospholipid-containing substance stabilizer or comparative composition prepared above was mixed with blood at a volume ratio of 1: 9, and allowed to stand at 30 ° C. for 7 days to obtain an evaluation product. The blood used was collected using a syringe instead of a blood collection tube, and care was taken not to contain EDTA.

得られた評価物について、上述の血液中への溶出DNA量の測定方法により、蛍光強度を測定して、血液中への溶出DNA量を測定した。 With respect to the obtained evaluation product, the fluorescence intensity was measured by the above-mentioned method for measuring the amount of eluted DNA in blood, and the amount of eluted DNA in blood was measured.

各EDTA濃度での結果を表12および図13に示す。表12に示す蛍光強度の値は、比較組成物12−7〜12−12の評価物の蛍光強度をそれぞれ100とした場合の相対値である。 The results at each EDTA concentration are shown in Table 12 and FIG. The fluorescence intensity values shown in Table 12 are relative values when the fluorescence intensities of the evaluation products of the comparative compositions 12-7 to 12-12 are set to 100, respectively.

Figure 2021153464
Figure 2021153464

EDTAは、血液の抗凝固剤として多用されている。 EDTA is often used as an anticoagulant for blood.

表12および図13に示すように、1〜100mg/mLのEDTA濃度においても、リン脂質含有物質安定化剤は、比較組成物(γCyD単独およびPeg単独)よりも低い値を示し、DNAの溶出を低く抑えたことがわかる。したがって、本発明のリン脂質含有物質安定化剤は、EDTAの濃度に関わらず、有核細胞を保護する高い効果を有することが分かる。 As shown in Table 12 and FIG. 13, even at an EDTA concentration of 1 to 100 mg / mL, the phospholipid-containing substance stabilizer showed a lower value than the comparative composition (γCyD alone and Peg alone), and the elution of DNA. It can be seen that was kept low. Therefore, it can be seen that the phospholipid-containing substance stabilizer of the present invention has a high effect of protecting nucleated cells regardless of the concentration of EDTA.

[試験例13]クエン酸濃度の影響の評価
<リン脂質含有物質安定化剤の調製>
上述のリン脂質含有物質安定化剤および比較組成物の調製方法により、下記表13の組成のリン脂質含有物質安定化剤13−1〜13−4および比較組成物13−5〜13−12を調製した。溶媒は、クエン酸溶液(クエン酸濃度:1、10、100または1000mg/mL)を使用した。
[Test Example 13] Evaluation of the effect of citric acid concentration <Preparation of phospholipid-containing substance stabilizer>
According to the method for preparing the phospholipid-containing substance stabilizer and the comparative composition described above, the phospholipid-containing substance stabilizer 13-1 to 13-4 and the comparative composition 13-5 to 13-12 having the compositions shown in Table 13 below were added. Prepared. As the solvent, a citric acid solution (citric acid concentration: 1, 10, 100 or 1000 mg / mL) was used.

また、クエン酸溶液(クエン酸濃度:1、10、100または1000mg/mL)を比較組成物13−13〜13−16とした。 Further, a citric acid solution (citric acid concentration: 1, 10, 100 or 1000 mg / mL) was used as a comparative composition 13-13 to 13-16.

上記で調製した各リン脂質含有物質安定化剤または各比較組成物と血液とを体積比にて1:9で混合し、30℃にて7日間静置して評価物を得た。 Each phospholipid-containing substance stabilizer or each comparative composition prepared above was mixed with blood at a volume ratio of 1: 9, and allowed to stand at 30 ° C. for 7 days to obtain an evaluation product.

得られた評価物について、上述の血液中への溶出DNA量の測定方法により、蛍光強度を測定して、血液中への溶出DNA量を測定した。 With respect to the obtained evaluation product, the fluorescence intensity was measured by the above-mentioned method for measuring the amount of eluted DNA in blood, and the amount of eluted DNA in blood was measured.

各クエン酸濃度での結果を表13および図14に示す。表13に示す蛍光強度の値は、比較組成物12−5〜12−8の評価物の蛍光強度をそれぞれ100とした場合の相対値である。 The results at each citric acid concentration are shown in Table 13 and FIG. The fluorescence intensity values shown in Table 13 are relative values when the fluorescence intensities of the evaluation products of the comparative compositions 12-5 to 12-8 are set to 100, respectively.

Figure 2021153464
Figure 2021153464

クエン酸は、血液の抗凝固剤として多用されている。 Citric acid is often used as an anticoagulant for blood.

表13および図14に示すように、1〜1000mg/mLのクエン酸濃度においても、リン脂質含有物質安定化剤は、比較組成物(γCyD単独およびPeg単独)よりも低い値を示し、DNAの溶出を低く抑えたことが分かる。したがって、本発明のリン脂質含有物質安定化剤は、クエン酸の濃度に関わらず、有核細胞を保護する高い効果を有することが分かる。 As shown in Table 13 and FIG. 14, even at a citric acid concentration of 1 to 1000 mg / mL, the phospholipid-containing substance stabilizer showed a lower value than that of the comparative composition (γCyD alone and Peg alone), and showed a value of DNA. It can be seen that the elution was suppressed to a low level. Therefore, it can be seen that the phospholipid-containing substance stabilizer of the present invention has a high effect of protecting nucleated cells regardless of the concentration of citric acid.

[試験例14]外部負荷の影響の評価
上述のリン脂質含有物質安定化剤および比較組成物の調製方法により、下記表14の組成のリン脂質含有物質安定化剤14−1および比較組成物14−2〜14−3を調製した。溶媒は、滅菌水を使用した。
[Test Example 14] Evaluation of Effect of External Load According to the method for preparing the phospholipid-containing substance stabilizer and the comparative composition described above, the phospholipid-containing substance stabilizer 14-1 and the comparative composition 14 having the compositions shown in Table 14 below −2 to 14-3 were prepared. As the solvent, sterile water was used.

上記で調製したリン脂質含有物質安定化剤、各比較組成物または滅菌水と血液とを体積比にて1:9で混合し、(A)振動に対する評価の場合、振動試験機(アズワン株式会社製:Enviromental Vibration Tester CV−101M)を用いて、スイープモード、10〜100Hz、加速度2G、の振動を3、5または24時間、30℃にて加えて、評価物を得た;および(B)衝撃に対する評価の場合、振とう機(タイテック株式会社製:BioSnaker VBR−36)を用いて、450rpm、0〜3時間、30℃にて加えて、評価物を得た。 The phospholipid-containing substance stabilizer prepared above, each comparative composition or sterilized water and blood are mixed at a volume ratio of 1: 9, and in the case of (A) evaluation for vibration, a vibration tester (AS ONE Co., Ltd.) Manufactured by: Environmental Vibration Tester CV-101M), vibration in sweep mode, 10-100 Hz, acceleration 2 G, was applied at 30 ° C. for 3, 5 or 24 hours; and (B). In the case of evaluation for impact, a shaker (manufactured by Taitec Co., Ltd .: BioSnaker VBR-36) was used to add an evaluation product at 450 rpm for 0 to 3 hours at 30 ° C.

得られた評価物について、上述の血液中への溶出DNA量の測定方法により、蛍光強度を測定して、血液中への溶出DNA量を測定した。 With respect to the obtained evaluation product, the fluorescence intensity was measured by the above-mentioned method for measuring the amount of eluted DNA in blood, and the amount of eluted DNA in blood was measured.

結果を表14ならびに図15(振動)および図16(衝撃)に示す。表14に示す蛍光強度の値は、滅菌水を添加した評価物の蛍光強度を100とした場合の相対値である。 The results are shown in Table 14, FIG. 15 (vibration) and FIG. 16 (impact). The fluorescence intensity values shown in Table 14 are relative values when the fluorescence intensity of the evaluated product to which sterilized water is added is 100.

Figure 2021153464
Figure 2021153464

(振動に対する評価)
表14および図15に示すように、リン脂質含有物質安定化剤14−1は、比較組成物14−2および14−3(Peg単独およびγCyD単独)よりも低い値を示し、DNAの溶出を低く抑えたことが分かる。したがって、本発明のリン脂質含有物質安定化剤は、振動の外部負荷から、有核細胞を保護する高い効果を有することが分かる。
(Evaluation for vibration)
As shown in Table 14 and FIG. 15, the phospholipid-containing substance stabilizer 14-1 showed lower values than the comparative compositions 14-2 and 14-3 (Peg alone and γCyD alone), causing DNA elution. You can see that it was kept low. Therefore, it can be seen that the phospholipid-containing substance stabilizer of the present invention has a high effect of protecting nucleated cells from an external load of vibration.

(衝撃に対する評価)
表14および図16に示すように、リン脂質含有物質安定化剤14−1は、比較組成物14−2および14−3(Peg単独およびγCyD単独)よりも低い値を示し、DNAの溶出を低く抑えたことが分かる。したがって、本発明のリン脂質含有物質安定化剤は、衝撃の外部負荷から、有核細胞を保護する高い効果を有することが分かる。
(Evaluation for impact)
As shown in Table 14 and FIG. 16, the phospholipid-containing substance stabilizer 14-1 showed lower values than the comparative compositions 14-2 and 14-3 (Peg alone and γCyD alone), causing DNA elution. You can see that it was kept low. Therefore, it can be seen that the phospholipid-containing substance stabilizer of the present invention has a high effect of protecting nucleated cells from an external load of impact.

[試験例15]培養細胞を保護する効果の評価
上述のリン脂質含有物質安定化剤および比較組成物の調製方法により、下記表15の組成のリン脂質含有物質安定化剤15−1および比較組成物15−2〜15−3を調製した。溶媒は、滅菌水を使用した。
[Test Example 15] Evaluation of Effect of Protecting Cultured Cells According to the method for preparing the above-mentioned phospholipid-containing substance stabilizer and comparative composition, the phospholipid-containing substance stabilizer 15-1 and the comparative composition having the compositions shown in Table 15 below are used. Objects 15-2 to 15-3 were prepared. As the solvent, sterile water was used.

培養細胞は、ATCCより購入したEG7細胞を使用した。EG7細胞の培養は、10%血清含有RPMIメディウムを用いて行った。また、EG7細胞の培養は、5%CO、37℃に設定したインキュベーター(MCO20AIC、三菱電機エンジニアリング株式会社製)を用いて実施した。 As the cultured cells, EG7 cells purchased from ATCC were used. Culturing of EG7 cells was performed using RPMI medium containing 10% serum. In addition, EG7 cells were cultured using an incubator (MCO20AIC, manufactured by Mitsubishi Electric Engineering Co., Ltd.) set at 5% CO 2 and 37 ° C.

培養したEG7細胞を回収した後、PBSにて2回洗浄した。その後、細胞の密度が20万cells/mLとなるように、PBSを用いて細胞を分散させ、細胞懸濁液を得た。 After collecting the cultured EG7 cells, the cells were washed twice with PBS. Then, the cells were dispersed using PBS so that the cell density was 200,000 cells / mL, and a cell suspension was obtained.

上記で調製したリン脂質含有物質安定化剤または各比較組成物と細胞懸濁液とを体積比にて1:1で混合し、30℃にて1または5時間静置して、評価物を得た。また、細胞懸濁液(未処置)を30℃にて1または5時間静置して、評価物を得た。 The phospholipid-containing substance stabilizer or comparative composition prepared above and the cell suspension are mixed at a volume ratio of 1: 1 and allowed to stand at 30 ° C. for 1 or 5 hours to prepare the evaluation product. Obtained. In addition, the cell suspension (untreated) was allowed to stand at 30 ° C. for 1 or 5 hours to obtain an evaluation product.

得られた評価物について、上述の上清中への溶出DNA量の測定方法により、蛍光強度を測定して、上清中への溶出DNA量を測定した。 With respect to the obtained evaluation product, the fluorescence intensity was measured by the above-mentioned method for measuring the amount of eluted DNA in the supernatant, and the amount of eluted DNA in the supernatant was measured.

結果を表15および図17に示す。表15に示す蛍光強度の値は、未処置(「Cell only」)の評価物の蛍光強度を100とした場合の相対値である。 The results are shown in Table 15 and FIG. The fluorescence intensity values shown in Table 15 are relative values when the fluorescence intensity of the untreated (“Cell only”) evaluation product is 100.

Figure 2021153464
Figure 2021153464

表15および図17に示すように、リン脂質含有物質安定化剤15−1は、未処置および比較組成物よりも低い値を示し、培養細胞の破壊に伴うDNAの遊離が少ないことが分かる。したがって、本発明のリン脂質含有物質安定化剤は、培養細胞を保護する高い効果を有することが分かる。また、本発明のリン脂質含有物質安定化剤は、細胞治療、iPS細胞の保存などへの応用が期待できる。 As shown in Table 15 and FIG. 17, the phospholipid-containing substance stabilizer 15-1 showed a lower value than the untreated and comparative compositions, indicating that DNA release associated with the destruction of cultured cells was small. Therefore, it can be seen that the phospholipid-containing substance stabilizer of the present invention has a high effect of protecting cultured cells. Further, the phospholipid-containing substance stabilizer of the present invention is expected to be applied to cell therapy, preservation of iPS cells, and the like.

[試験例16]リポソームを保護する効果の評価
上述のリン脂質含有物質安定化剤および比較組成物の調製方法により、下記表16の組成のリン脂質含有物質安定化剤16−1〜16−2および比較組成物16−3〜16−4を調製した。溶媒は、生理食塩水を使用した。
[Test Example 16] Evaluation of Effect of Protecting Liposomes According to the method for preparing the above-mentioned phospholipid-containing substance stabilizer and comparative composition, the phospholipid-containing substance stabilizer 16-1 to 16-2 having the composition shown in Table 16 below And comparative compositions 16-3 to 16-4 were prepared. The solvent used was physiological saline.

クロロホルム(富士フイルム和光純薬株式会社製)に溶解させた3000nmolのEYPC(卵黄ホスファチジルコリン)(日油株式会社製:COATSOME NC−50)を10mLナスフラスコに測り入れ、ロータリーエバポレーターを用いて薄膜とした。500μLのPyranine溶液(Pyranine:35mM、DPX:50mM、MES:25mM、pH7.4)を加えた後、超音波照射装置(USC−J)を用いて分散させた。さらに、分散液をエクストルーダーによって孔径100nmのポリカーボネート膜に通し、粒子径を揃えた。MES緩衝液とG100カラムを用いて外水層の置換を行い、蛍光物質であるPyraineを内包したEYPCリポソーム分散液を得た。その後、リン脂質C−テストワコー(富士フイルム和光純薬株式会社)を用いてリン脂質の濃度を求め、リン脂質が1.0mmol/LとなるようにMES緩衝液にて濃度を調整して、リポソーム懸濁液を調製した。 3000 nmol EYPC (egg yolk phosphatidylcholine) (manufactured by NOF Corporation: COATSOME NC-50) dissolved in chloroform (manufactured by Fujifilm Wako Pure Chemical Industries, Ltd.) was measured in a 10 mL eggplant flask and made into a thin film using a rotary evaporator. .. After adding 500 μL of Pyranine solution (Pyranine: 35 mM, DPX: 50 mM, MES: 25 mM, pH 7.4), it was dispersed using an ultrasonic irradiation device (USC-J). Further, the dispersion liquid was passed through a polycarbonate film having a pore size of 100 nm by an extruder to make the particle size uniform. The outer aqueous layer was replaced with a MES buffer solution and a G100 column to obtain an EYPC liposome dispersion liquid containing Pyraine, which is a fluorescent substance. Then, the concentration of phospholipid was determined using phospholipid C-Test Wako (Fujifilm Wako Pure Chemical Industries, Ltd.), and the concentration was adjusted with MES buffer so that the phospholipid was 1.0 mmol / L. Lipid suspensions were prepared.

上記で調製したリン脂質含有物質安定化剤または各比較組成物とリポソーム懸濁液とを体積比にて1:1で混合して、混合液を得た。 The phospholipid-containing substance stabilizer or comparative composition prepared above was mixed with the liposome suspension at a volume ratio of 1: 1 to obtain a mixed solution.

高浸透圧負荷の実験では、混合液と4000mMのNaCl溶液とを体積比にて1:1で混合し、30℃にて1時間静置して、評価物を得た。また、リポソーム懸濁液(未処置)を30℃にて1時間静置して、評価物を得た。 In the experiment with high osmotic pressure load, the mixed solution and 4000 mM NaCl solution were mixed at a volume ratio of 1: 1 and allowed to stand at 30 ° C. for 1 hour to obtain an evaluation product. In addition, the liposome suspension (untreated) was allowed to stand at 30 ° C. for 1 hour to obtain an evaluation product.

熱負荷の実験では、混合液を30℃にて2時間、4時間、3日、7日または14日静置して、評価物を得た。また、リポソーム懸濁液(未処置)を30℃にて2時間、4時間、3日、7日または14日静置して、評価物を得た。 In the heat loading experiment, the mixed solution was allowed to stand at 30 ° C. for 2 hours, 4 hours, 3 days, 7 days or 14 days to obtain an evaluation product. In addition, the liposome suspension (untreated) was allowed to stand at 30 ° C. for 2 hours, 4 hours, 3 days, 7 days or 14 days to obtain an evaluation product.

得られた評価物について、上述のリポソームからの溶出蛍光物質の測定方法により、蛍光強度を測定して、リポソームからの蛍光物質の溶出量を測定した。 With respect to the obtained evaluation product, the fluorescence intensity was measured by the above-mentioned method for measuring the fluorescent substance eluted from the liposome, and the amount of the fluorescent substance eluted from the liposome was measured.

結果を表16ならびに図18(高浸透圧負荷)および図19(熱負荷)に示す。表16に示す蛍光強度の値は、未処置(「liposome only」)の評価物の蛍光強度を100とした場合の相対値である。 The results are shown in Table 16 and FIG. 18 (high osmotic load) and FIG. 19 (heat load). The fluorescence intensity values shown in Table 16 are relative values when the fluorescence intensity of the untreated (“liposomes only”) evaluation product is 100.

Figure 2021153464
Figure 2021153464

表16ならびに図18および図19に示すように、リン脂質含有物質安定化剤16−1は、比較組成物16−3および16−4(Peg単独およびγCyD単独)よりも低い値を示し、リポソームからの蛍光物質の溶出を低く抑えたことが分かる。したがって、本発明のリン脂質含有物質安定化剤は、リポソームを保護する高い効果を有し、さらに高浸透圧負荷および熱負荷からもリポソームを保護する高い効果を有することが分かる。 As shown in Table 16 and FIGS. 18 and 19, the phospholipid-containing substance stabilizer 16-1 showed lower values than the comparative compositions 16-3 and 16-4 (Peg alone and γCyD alone), and liposomes. It can be seen that the elution of the fluorescent substance from the above was suppressed to a low level. Therefore, it can be seen that the phospholipid-containing substance stabilizer of the present invention has a high effect of protecting liposomes, and further has a high effect of protecting liposomes from high osmotic load and heat load.

[試験例17]電気泳動によるDNA量の測定
上述のリン脂質含有物質安定化剤の調製方法2および比較組成物の調製方法により、下記表17の組成のリン脂質含有物質安定化剤17−1〜17−7および比較組成物17−8〜17−9を調製した。溶媒は、滅菌水を使用した。
[Test Example 17] Measurement of DNA amount by electrophoresis According to the above-mentioned method 2 for preparing a phospholipid-containing substance stabilizer and the method for preparing a comparative composition, the phospholipid-containing substance stabilizer 17-1 having the composition shown in Table 17 below. ~ 17-7 and comparative compositions 17-8-17-9 were prepared. As the solvent, sterile water was used.

リン脂質含有物質安定化剤または比較組成物0.86mLを採血管に加えた。その採血管に血液6mLを加え、栓をした後転倒混和した。転倒混和したサンプルを25℃の恒温槽に入れ、7日間保管して、評価物とした。 0.86 mL of a phospholipid-containing substance stabilizer or comparative composition was added to the blood collection tube. 6 mL of blood was added to the blood collection tube, and the mixture was overturned and mixed after being plugged. The overturned mixed sample was placed in a constant temperature bath at 25 ° C. and stored for 7 days to prepare an evaluation product.

また、0.9w/v%の生理食塩液(参考組成物17−10)0.86mLを採血管に加えた。その採血管に血液6mLを加え、栓をした後転倒混和した。転倒混和したサンプルを4℃の恒温槽に入れ、7日間保管して、評価物とした。 In addition, 0.86 mL of 0.9 w / v% physiological saline (reference composition 17-10) was added to the blood collection tube. 6 mL of blood was added to the blood collection tube, and the mixture was overturned and mixed after being plugged. The overturned mixed sample was placed in a constant temperature bath at 4 ° C. and stored for 7 days to prepare an evaluation product.

得られた評価物について、上述の電気泳動によるDNA量の測定方法により、DNA量を測定した。 The amount of DNA of the obtained evaluation product was measured by the above-mentioned method for measuring the amount of DNA by electrophoresis.

結果を図20および表17に示す。図20の横軸はDNAの塩基対数、図20の縦軸はDNA量を示す。また、図20中の15bpおよび10,000bpのピークは、それぞれLowerマーカーおよびUpperマーカーを意味し、DNAのピークではない。 The results are shown in FIG. 20 and Table 17. The horizontal axis of FIG. 20 shows the number of base pairs of DNA, and the vertical axis of FIG. 20 shows the amount of DNA. Further, the peaks of 15 bp and 10,000 bp in FIG. 20 mean the Lower marker and the Upper marker, respectively, and are not DNA peaks.

Figure 2021153464
Figure 2021153464

図20に示すように、リン脂質含有物質安定化剤17−1のピーク高さは、比較組成物17−8および17−9よりも低かった。よって、本発明のリン脂質含有物質安定化剤は、白血球由来のDNAの放出を抑制できることが分かる。 As shown in FIG. 20, the peak height of the phospholipid-containing substance stabilizer 17-1 was lower than that of the comparative compositions 17-8 and 17-9. Therefore, it can be seen that the phospholipid-containing substance stabilizer of the present invention can suppress the release of DNA derived from leukocytes.

また、表17に示すように、リン脂質含有物質安定化剤17−5〜17−7を使用した場合のDNA量は、4℃で保管した参考組成物17−10を使用した場合のDNA量よりも低かった。よって、本発明のリン脂質含有物質安定化剤は、白血球由来のDNAの放出を抑制できることが分かる。 Further, as shown in Table 17, the amount of DNA when the phospholipid-containing substance stabilizer 17-5 to 17-7 was used was the amount of DNA when the reference composition 17-10 stored at 4 ° C. was used. Was lower than. Therefore, it can be seen that the phospholipid-containing substance stabilizer of the present invention can suppress the release of DNA derived from leukocytes.

[試験例18]赤血球を保護する効果の評価
<リン脂質含有物質安定化剤の調製>
上述のリン脂質含有物質安定化剤の調製方法2および比較組成物の調製方法により、下記表18の組成のリン脂質含有物質安定化剤18−1および18−3ならびに比較組成物18−2および18−4を調製した。溶媒は、滅菌水を使用した。
[Test Example 18] Evaluation of effect of protecting erythrocytes <Preparation of phospholipid-containing substance stabilizer>
According to the above-mentioned method 2 for preparing the phospholipid-containing substance stabilizer and the method for preparing the comparative composition, the phospholipid-containing substance stabilizers 18-1 and 18-3 having the compositions shown in Table 18 below and the comparative composition 18-2 and 18-4 was prepared. As the solvent, sterile water was used.

上記で調製した各リン脂質含有物質安定化剤または各比較組成物と血液とを体積比にて1:1で混合し、25℃にて7日間静置して評価物を得た。また、血液(未処置)を4℃にて7日間静置して評価物を得た。 Each phospholipid-containing substance stabilizer or each comparative composition prepared above and blood were mixed at a volume ratio of 1: 1 and allowed to stand at 25 ° C. for 7 days to obtain an evaluation product. In addition, blood (untreated) was allowed to stand at 4 ° C. for 7 days to obtain an evaluation product.

得られた評価物について、上述の血液上清中のヘモグロビン吸光度の測定方法により、吸光度を測定して、赤血球の破壊により血液上清中に溶出したヘモグロビン量を求めた。 The absorbance of the obtained evaluation product was measured by the above-mentioned method for measuring hemoglobin absorbance in blood supernatant, and the amount of hemoglobin eluted in blood supernatant due to destruction of red blood cells was determined.

結果を表18に示す。 The results are shown in Table 18.

Figure 2021153464
Figure 2021153464

表18に示すように、リン脂質含有物質安定化剤18−1および18−3は、それぞれ比較組成物18−2(PPGのみ)および18−4(PVAのみ)よりも小さい値を示した。このことから、直線状分子とγCyDとを組み合わせて使用することにより、直線状分子単独と比較して、赤血球を保護する効果をより高くすることが分かる。 As shown in Table 18, the phospholipid-containing substance stabilizers 18-1 and 18-3 showed smaller values than the comparative compositions 18-2 (PPG only) and 18-4 (PVA only), respectively. From this, it can be seen that the combined use of the linear molecule and γCyD enhances the effect of protecting erythrocytes as compared with the linear molecule alone.

[試験例19]エクソソームを保護する効果の評価
上述のリン脂質含有物質安定化剤の調製方法2および比較組成物の調製方法により、下記表19の組成のリン脂質含有物質安定化剤19−1および比較組成物19−2(滅菌水のみ)を調製した。溶媒は、滅菌水を使用した。また、30μgのLyophilized exosomes from Plasma of Healthy donors(HansaBioMed社製)を滅菌水100μLで希釈した。これをエクソソーム溶液とした。
[Test Example 19] Evaluation of exosome-protecting effect According to the above-mentioned method 2 for preparing a phospholipid-containing substance stabilizer and the method for preparing a comparative composition, the phospholipid-containing substance stabilizer 19-1 having the composition shown in Table 19 below. And comparative composition 19-2 (sterile water only) was prepared. As the solvent, sterile water was used. In addition, 30 μg of Lyophilized exosomes from Plasma of Health donors (manufactured by HansaBioMed) was diluted with 100 μL of sterile water. This was used as an exosome solution.

上記で調製したリン脂質含有物質安定化剤または比較組成物とエクソソーム溶液とを体積比にて1:1で混合した。これらを2mLのポリプロピレン製チューブに80μL加えた。その後、3分間撹拌し、新しい2mLのポリプロピレン製チューブに全量移した。これを20回まで繰り返した。その後、CD9/CD63 Exosome ELISA Kit,Human(コスモ・バイオ株式会社製)を用いて残存するエクソソーム量を定量した。 The phospholipid-containing substance stabilizer or comparative composition prepared above and the exosome solution were mixed at a volume ratio of 1: 1. 80 μL of these was added to a 2 mL polypropylene tube. Then, the mixture was stirred for 3 minutes, and the whole amount was transferred to a new 2 mL polypropylene tube. This was repeated up to 20 times. Then, the amount of remaining exosomes was quantified using CD9 / CD63 Exosome ELISA Kit, Human (manufactured by Cosmo Bio Co., Ltd.).

結果を表19に示す。 The results are shown in Table 19.

Figure 2021153464
Figure 2021153464

表19に示すように、リン脂質安定化剤は、比較組成物よりも大きな値を示した。このことから、本発明のリン脂質含有物質安定化剤は、エクソソームを保護する高い効果を有することが分かる。 As shown in Table 19, the phospholipid stabilizer showed a larger value than the comparative composition. From this, it can be seen that the phospholipid-containing substance stabilizer of the present invention has a high effect of protecting exosomes.

Claims (10)

直線状分子とγ−シクロデキストリンとを含み、前記直線状分子に対する前記γ−シクロデキストリンの質量比が9未満である、リン脂質含有物質安定化剤。 A phospholipid-containing substance stabilizer containing a linear molecule and γ-cyclodextrin, wherein the mass ratio of the γ-cyclodextrin to the linear molecule is less than 9. 前記直線状分子に対する前記γ−シクロデキストリンの質量比が0.0002〜2.5である、請求項1に記載のリン脂質含有物質安定化剤。 The phospholipid-containing substance stabilizer according to claim 1, wherein the mass ratio of the γ-cyclodextrin to the linear molecule is 0.0002 to 2.5. 直線状分子とγ−シクロデキストリンとを有する可溶性の複合体を含む、リン脂質含有物質安定化剤。 A phospholipid-containing substance stabilizer comprising a soluble complex having a linear molecule and γ-cyclodextrin. 前記直線状分子がポリエチレングリコールおよびポリプロピレングリコールおよびポリビニルアルコールから選択される少なくとも一つである、請求項1〜3のいずれか1項に記載のリン脂質含有物質安定化剤。 The phospholipid-containing substance stabilizer according to any one of claims 1 to 3, wherein the linear molecule is at least one selected from polyethylene glycol, polypropylene glycol, and polyvinyl alcohol. 前記直線状分子の重量平均分子量が1000〜200000である、請求項1〜4のいずれか1項に記載のリン脂質含有物質安定化剤。 The phospholipid-containing substance stabilizer according to any one of claims 1 to 4, wherein the linear molecule has a weight average molecular weight of 1000 to 200,000. 前記リン脂質含有物質が白血球、赤血球、培養細胞、リポソームおよびエクソソームからなる群から選択される少なくとも一種である、請求項1〜5のいずれか1項に記載のリン脂質含有物質安定化剤。 The phospholipid-containing substance stabilizer according to any one of claims 1 to 5, wherein the phospholipid-containing substance is at least one selected from the group consisting of leukocytes, erythrocytes, cultured cells, liposomes and exosomes. 請求項1〜6のいずれか1項に記載のリン脂質含有物質安定化剤を含む、体液検査キット。 A body fluid test kit comprising the phospholipid-containing substance stabilizer according to any one of claims 1 to 6. 前記体液が血液である、請求項7に記載の体液検査キット。 The body fluid test kit according to claim 7, wherein the body fluid is blood. 前記リン脂質含有物質安定化剤を前記体液1mLあたり3〜130mgとなるように含む、請求項7または8に記載の体液検査キット。 The body fluid test kit according to claim 7 or 8, wherein the phospholipid-containing substance stabilizer is contained in an amount of 3 to 130 mg per 1 mL of the body fluid. 前記リン脂質含有物質安定化剤を、前記体液と前記直線状分子と前記γ−シクロデキストリンとの質量比が1000:2:1〜1000:125:5となるように含む、請求項7〜9のいずれか1項に記載の体液検査キット。 Claims 7 to 9 include the phospholipid-containing substance stabilizer so that the mass ratio of the body fluid, the linear molecule, and the γ-cyclodextrin is 1000: 2: 1 to 1000: 125: 5. The body fluid test kit according to any one of the above.
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