JP2021119750A - Proliferation method for swine delta coronavirus - Google Patents

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Abstract

To provide a production method for swine delta coronavirus, and the like.SOLUTION: A method for producing swine delta coronavirus includes the steps of inoculating swine delta coronavirus into an embryonated egg within 8 days from incubation, culturing the embryonated egg to proliferate the virus, and recovering, from the embryonated egg, egg contents containing the virus.SELECTED DRAWING: None

Description

本発明は、豚デルタコロナウイルスの増殖方法に関し、より詳しくは、当該方法を用いた、該ウイルスの製造方法、該ウイルスを含むワクチンの製造方法、及び該ウイルスの検査方法に関する。 The present invention relates to a method for propagating porcine delta coronavirus, and more particularly to a method for producing the virus, a method for producing a vaccine containing the virus, and a method for testing the virus using the method.

豚デルタコロナウイルス(PDCoV)は、2014年から始まった北米における豚流行性下痢ウイルス(PEDV)の大流行の最中、PEDVに因らない下痢症個体から新たに分離されたことから注目を集めた。その後、日本を含めた多くの国で豚デルタコロナウイルスによる下痢症流行の報告が相次いでおり、豚デルタコロナウイルスに対するワクチン開発が世界的に希求されている。 Porcine epidemic diarrhea virus (PDCoV) attracted attention because it was newly isolated from individuals with diarrhea not caused by PEDV during the outbreak of Porcine Epidemic Diarrhea Virus (PEDV) in North America that began in 2014. rice field. Since then, reports of diarrhea epidemics due to porcine delta coronavirus have been reported one after another in many countries including Japan, and vaccine development against porcine delta coronavirus is being sought after worldwide.

豚デルタコロナウイルスは、豚に病原性を示すウイルスとして研究が開始されてから6年程度しか経過していない。そのため、当該ウイルスを扱う技術と呼べるべきものは殆どない。現在のところ、豚デルタコロナウイルスを豚に感染させることなくウイルスを増殖させる手法は、豚腎臓由来株化細胞であるLLC−Porcine Kideney(PK)細胞あるいは豚精巣由来株化細胞であるswine testicular細胞を用いる手法が報告されている(非特許文献1)。 The porcine delta coronavirus has only been studied for about 6 years since it was started as a virus that is pathogenic to pigs. Therefore, there is almost no technology that can handle the virus. At present, the method of propagating the virus without infecting pigs with swine delta coronavirus is the LLC-Pocine Kideney (PK) cell, which is a swine kidney-derived cell line, or the swing testicular cell, which is a swine testis-derived cell line. (Non-Patent Document 1) has been reported.

しかしながら、このような細胞の培養には高度な専門的技術(熟練した無菌操作技術等)が必要となる。さらに、かかる方法によるワクチン製造には、大量に細胞を培養する必要があるため、大規模な設備を要する。また、大量培養を実施する過程においては、株化細胞を増殖させるために、トリプシン処理に代表される細胞分散のための処理をすることが必要となる。しかしながら、細胞を培養するための培地にはトリプシンを不活化する牛胎仔由来の血清が含まれているため、それを洗浄する作業が発生する。さらに、培養に用いられ得る牛胎仔血清には、未知の病原体や有毒化学物質が混入している可能性もあり、安全性において問題視される。 However, culturing such cells requires highly specialized techniques (skilled aseptic technique, etc.). Furthermore, the production of a vaccine by such a method requires a large-scale facility because a large amount of cells need to be cultured. In addition, in the process of carrying out mass culture, in order to proliferate the established cells, it is necessary to carry out a treatment for cell dispersion represented by trypsin treatment. However, since the medium for culturing the cells contains serum derived from bovine fetal inactivating trypsin, the work of washing it is required. Furthermore, fetal bovine serum that can be used for culturing may contain unknown pathogens and toxic chemical substances, which poses a safety problem.

そのため、培養細胞を用いることなく、豚デルタコロナウイルスを効率よく増殖させる方法の開発が求められているが、そのような方法はまだない。 Therefore, there is a demand for the development of a method for efficiently propagating porcine delta coronavirus without using cultured cells, but there is no such method yet.

国際公開第2009/050390号International Publication No. 2009/050390

Hu H,et al.,J Clin Microbiol,53,1537−1548.(2015)Hu H, et al. , J Clin Microbiol, 53, 1537-1548. (2015)

本発明は、前記従来技術の有する課題に鑑みてなされたものであり、豚デルタコロナウイルスの増殖方法を提供することを目的とする。 The present invention has been made in view of the above-mentioned problems of the prior art, and an object of the present invention is to provide a method for multiplying a porcine delta coronavirus.

本発明者らは、前記目的を達成すべく鋭意研究を重ね、インフルエンザウイルスを増殖するために用いられる、発育鶏卵を用いた方法(例えば、特許文献1)に着目した。かかる方法は、インフルエンザウイルスを発育鶏卵に感染させ、培養後、尿膜腔液(漿尿液)から増殖した当該ウイルスを回収する方法であるが、インフルエンザウイルスと異なり、豚デルタコロナウイルスは鳥(ニワトリ等)への感染性が示されていない。そのため、当該ウイルスが発育鶏卵に感染し、増殖できるかは定かではなかった。 The present inventors have conducted intensive studies to achieve the above object, and have focused on a method using a developing chicken egg (for example, Patent Document 1), which is used for propagating an influenza virus. Such a method is a method of infecting a developing chicken egg with an influenza virus, culturing the virus, and then recovering the virus that has propagated from the urinary tract fluid (serum). Infectivity to chickens, etc.) has not been shown. Therefore, it was not clear whether the virus could infect the developing chicken eggs and propagate.

そこで、本発明者らは、発育鶏卵における豚デルタコロナウイルスの増殖性を検討した。その結果、インフルエンザウイルスの増殖に用いられる、孵卵10〜12日目の発育鶏卵では豚デルタコロナウイルスの増殖を検出することができなかった。一方、孵卵8日目以内の発育鶏卵であれば、豚デルタコロナウイルスを増殖できることを見出した。 Therefore, the present inventors investigated the proliferation of porcine delta coronavirus in embryonated chicken eggs. As a result, the growth of porcine delta coronavirus could not be detected in the embryonated chicken eggs used for the growth of influenza virus on the 10th to 12th days of incubation. On the other hand, it was found that porcine delta coronavirus can be propagated if the eggs are developed within the 8th day of incubation.

さらに、糞便試料を発育鶏卵に接種することで当該ウイルスも増殖させることが可能であることも明らかにした。糞便には、トリプシンを不活化する多量のタンパク質が含まれていることから、培養細胞を用いた方法では、糞便試料中の豚デルタコロナウイルスを増殖させ、ひいては検査することが極めて困難である。一方、糞便試料を発育鶏卵に接種することで当該ウイルスを増殖させることが可能となるため、当該試料を対象とした豚デルタコロナウイルスの検査も可能となることも見出し、本発明を完成するに至った。 Furthermore, it was clarified that the virus can also be propagated by inoculating a developing chicken egg with a fecal sample. Since feces contain a large amount of protein that inactivates trypsin, it is extremely difficult to proliferate the porcine delta coronavirus in the fecal sample by the method using cultured cells, and thus to test it. On the other hand, since it is possible to propagate the virus by inoculating a stool sample into a developing chicken egg, it is also possible to test the porcine delta coronavirus on the sample, and to complete the present invention. I arrived.

すなわち、本発明は、発育鶏卵を用いた、豚デルタコロナウイルス、及び該ウイルスを含むワクチンの製造方法、並びに前記ウイルスの検査方法に関し、具体的には以下を提供する。
<1> 豚デルタコロナウイルスの製造方法であって、
豚デルタコロナウイルスを、孵卵8日以内の発育鶏卵に接種する工程、
前記発育鶏卵を培養して、前記ウイルスを増殖させる工程、及び
前記発育鶏卵から、前記ウイルスを含む卵内容物を回収する工程
を含む、方法。
<2> 豚デルタコロナウイルスを含むワクチンの製造方法であって、
豚デルタコロナウイルスを、孵卵8日以内の発育鶏卵に接種する工程、
前記発育鶏卵を培養して、前記ウイルスを増殖させる工程、
前記発育鶏卵から、前記ウイルスを含む卵内容物を回収する工程、
前記卵内容物から前記ウイルスを単離し、薬理学上許容される担体又は媒体と混合する工程
を含む、方法。
<3> 豚デルタコロナウイルスの検査方法であって、
被検試料を、孵卵8日以内の発育鶏卵に接種する工程、
前記発育鶏卵を培養する工程、
前記発育鶏卵における、豚デルタコロナウイルスを検出する工程、及び
前記工程にて、豚デルタコロナウイルスの増殖が検出された場合に、前記被検試料は当該ウイルスを含有していると判定する工程
を含む、方法。
<4> 豚デルタコロナウイルス又は被検試料の接種部位が、発育鶏卵の尿膜腔内である、<1>〜<3>のうちのいずれか一項に記載の方法。
<5> 豚デルタコロナウイルス又は被検試料を接種する発育鶏卵が、孵卵5〜7日の発育鶏卵である、<1>〜<4>のうちのいずれか一項に記載の方法。
That is, the present invention specifically provides the following with respect to a method for producing a porcine delta coronavirus using a developed chicken egg, a vaccine containing the virus, and a method for testing the virus.
<1> A method for producing porcine delta coronavirus.
The process of inoculating porcine delta coronavirus into embryonated chicken eggs within 8 days of incubation,
A method comprising a step of culturing the developed chicken egg to propagate the virus and a step of recovering the egg contents containing the virus from the developed chicken egg.
<2> A method for producing a vaccine containing porcine delta coronavirus.
The process of inoculating porcine delta coronavirus into embryonated chicken eggs within 8 days of incubation,
A step of culturing the developed chicken egg to propagate the virus,
A step of recovering the egg contents containing the virus from the growing chicken egg,
A method comprising the step of isolating the virus from the egg contents and mixing it with a pharmacologically acceptable carrier or vehicle.
<3> This is a test method for porcine delta coronavirus.
The process of inoculating a test sample into a developing chicken egg within 8 days of incubation,
The step of culturing the developed chicken egg,
A step of detecting the porcine delta coronavirus in the developed chicken egg, and a step of determining that the test sample contains the virus when the growth of the porcine delta coronavirus is detected in the step. Including, method.
<4> The method according to any one of <1> to <3>, wherein the inoculation site of the porcine delta coronavirus or the test sample is in the allantois cavity of the developing chicken egg.
<5> The method according to any one of <1> to <4>, wherein the growing chicken egg inoculated with the porcine delta coronavirus or the test sample is a growing chicken egg 5 to 7 days after incubation.

本発明によれば、豚デルタコロナウイルスの製造方法を提供することが可能となる。後述の実施例に示すとおり、発育鶏卵1個から回収される10mlの尿膜腔液に含まれるウイルス量を細胞培養によって得るためには、1700cmの細胞培養用ローラーボトル2.37個も必要となる。このように、本発明によれば、大規模な設備等を要せずとも、大量に豚デルタコロナウイルスを製造することが可能となる。 According to the present invention, it is possible to provide a method for producing a porcine delta coronavirus. As shown in Examples described later, in order to obtain the amount of virus contained in 10 ml of allantois cavity fluid recovered from one developing chicken egg by cell culture, 2.37 1700 cm 2 cell culture roller bottles are also required. It becomes. As described above, according to the present invention, it is possible to produce a large amount of porcine delta coronavirus without requiring large-scale equipment or the like.

また、LLC−PK細胞のような培養細胞を用いたウイルス増殖法においては、トリプシン処理及びそれに伴う洗浄処理等、煩雑な作業を要する。さらに、高度な細胞培養技術も要する。一方、本発明においては豚デルタコロナウイルスを含む試料を発育鶏卵に直接接種するのみで当該ウイルスを増殖させることが可能となる。さらに、発育鶏卵によるウイルス増殖法は、オートメーション化によって短時間に大量のウイルスを増殖させることを可能とする。このように、本発明によれば豚デルタコロナウイルスを効率良く製造することが可能となる。 Further, in the virus propagation method using cultured cells such as LLC-PK cells, complicated work such as trypsin treatment and associated washing treatment is required. Furthermore, advanced cell culture technology is also required. On the other hand, in the present invention, the virus can be propagated only by directly inoculating a developing chicken egg with a sample containing the porcine delta coronavirus. In addition, the virus propagation method using embryonated chicken eggs makes it possible to propagate a large amount of virus in a short time by automation. As described above, according to the present invention, porcine delta coronavirus can be efficiently produced.

また、豚デルタコロナウイルスを含み得る糞便には、トリプシンを不活化する多量のタンパク質が含まれていることから、培養細胞を用いた方法では、糞便中の当該ウイルスを増殖することが極めて困難となる。一方、本発明によれば、糞便を発育鶏卵に接種することで当該ウイルスを増殖させることが可能となる。そのため、当該試料を対象とした豚デルタコロナウイルスの検査も可能となる。 In addition, since feces that can contain porcine delta coronavirus contain a large amount of protein that inactivates trypsin, it is extremely difficult to propagate the virus in feces by the method using cultured cells. Become. On the other hand, according to the present invention, it is possible to propagate the virus by inoculating the developing chicken egg with feces. Therefore, it is possible to test the porcine delta coronavirus on the sample.

孵卵日数の違いによる発育鶏卵の豚デルタコロナウイルス(PDCoV)に対する感受性の違いを示すグラフである。3〜12日の孵卵期間の発育鶏卵にウイルス液を接種し、48時間の孵卵後に尿膜腔液を回収した。そして、回収液に含まれるウイルス由来遺伝子量をリアルタイムRT−PCRにより検出した。It is a graph which shows the difference in the susceptibility of a developing chicken egg to the pig delta coronavirus (PDCoV) by the difference in the number of incubation days. The virus solution was inoculated into the developing chicken eggs during the incubation period of 3 to 12 days, and the allantois cavity fluid was collected after 48 hours of incubation. Then, the amount of virus-derived gene contained in the recovered solution was detected by real-time RT-PCR. 孵卵日数の違いによる発育鶏卵の豚デルタコロナウイルス(PDCoV)に対する感受性の違いを示すグラフである。0〜2日の孵卵期間の発育鶏卵にウイルスを接種し、48時間あるいは120時間の孵卵後に尿膜腔液を回収した。It is a graph which shows the difference in the susceptibility of a developing chicken egg to the pig delta coronavirus (PDCoV) by the difference in the number of incubation days. The virus was inoculated into the developing chicken eggs during the incubation period of 0 to 2 days, and the allantois cavity fluid was collected after 48 hours or 120 hours of incubation. 発育鶏卵を用いた豚デルタコロナウイルス(PDCoV)の継代数とウイルスの増殖効率との関係を示すグラフである。2,000コピー/0.1mlのウイルスを発育鶏卵に接種することにより連続継代し、リアルタイムRT−PCRにより尿膜腔液10ml中に含まれるウイルス遺伝子量を算出した。It is a graph which shows the relationship between the passage number of the porcine delta coronavirus (PDCoV) using the developed chicken egg, and the growth efficiency of the virus. The embryonated chicken eggs were continuously passaged by inoculating 2,000 copies / 0.1 ml of virus, and the amount of virus gene contained in 10 ml of allantois cavity fluid was calculated by real-time RT-PCR.

(豚デルタコロナウイルスの製造方法)
後述の実施例に示すとおり、本発明者らが、発育鶏卵における豚デルタコロナウイルスの増殖性を検討した結果、インフルエンザウイルスの増殖に用いられる、孵卵10〜12日目の発育鶏卵では豚デルタコロナウイルスの増殖を検出することができなかった。一方、孵卵8日目以内の発育鶏卵を用いた場合には、豚デルタコロナウイルスを増殖できることを明らかにした。したがって、本発明は、
豚デルタコロナウイルスを、孵卵8日以内の発育鶏卵に接種する工程、
前記発育鶏卵を培養して、前記ウイルスを増殖させる工程、及び
前記発育鶏卵から、前記ウイルスを含む卵内容物を回収する工程
を含む、豚デルタコロナウイルスの製造方法を、提供する。
(Manufacturing method of porcine delta coronavirus)
As shown in Examples described later, as a result of examining the proliferative potential of porcine delta coronavirus in embryonated chicken eggs, the pig delta coronavirus was used in the embryonic chicken eggs on the 10th to 12th days of hatching, which is used for the growth of influenza virus. The virus growth could not be detected. On the other hand, it was clarified that the porcine delta coronavirus can be propagated when the embryonated chicken eggs within the 8th day of incubation are used. Therefore, the present invention
The process of inoculating porcine delta coronavirus into embryonated chicken eggs within 8 days of incubation,
Provided is a method for producing a porcine delta coronavirus, which comprises a step of culturing the developed chicken egg to propagate the virus and a step of recovering the egg contents containing the virus from the grown chicken egg.

「豚デルタコロナウイルス(Porcine deltacoronavirus)は、PDCoV、PDCV、Swine Deltacoronavirus(SDCoV)とも称され、一本鎖(+)RNAウイルスのニドウイルス目のコロナウイルス科、コロナウイルス亜科、デルタコロナウイルス属に属する、豚由来のウイルスである。 "Pig Deltacoronavirus (Porcine Deltacoronavirus) is also called PDCoV, PDCV, Wine Deltacoronavirus (SDCoV), and is a single-stranded (+) RNA virus of the order Nidovirales, Coronaviridae, Deltacoronavirus. It is a virus derived from pigs belonging to.

本発明において発育鶏卵に接種する豚デルタコロナウイルスとしては、前述のとおりであるが、単離された当該ウイルス自体のみならず、前記ウイルスを含み得る試料であってもよい。かかる「試料」としては、豚の排泄物・分泌物(糞便、尿、口腔液、精液等)、豚由来の組織、豚由来の細胞、それらの培養物、洗浄液若しくは抽出物、又は豚の飼育環境(飼育施設等)の洗浄液若しくはその培養物が挙げられる。また、後述の実施例に示すとおり、かかる試料には、発育鶏卵に対して毒性を示す物質が含まれ得ることもあり、試料は適宜希釈、ろ過されていてもよい。希釈には、例えば、水、生理食塩水、緩衝液(リン酸緩衝液、リン酸緩衝生理食塩水(PBS)、Tris緩衝液等)、培地(イーグル培地、DMEM培地、RPMI1640培地、αMEM培地等)が適宜用いられる。また培地は、抗生物質、血清等の培地添加物を含むものであってもよい。希釈率は、特に制限はなく、当業者であれば試料の種類に合わせ適宜調整し得るが、例えば10〜10倍、好ましくは10〜10である。また、前記毒性を中和、減弱するという観点から、試料に該毒性物質を中和又は減弱できる物質(例えば、EDTA化合物等のキレート剤、カーボン構造を持つ粒子(ビーズ))を添加してもよい。 The porcine delta coronavirus to be inoculated into a developing chicken egg in the present invention is as described above, but it may be a sample containing not only the isolated virus itself but also the virus. Such "samples" include pig excrement / secretions (feces, urine, oral fluid, semen, etc.), pig-derived tissues, pig-derived cells, their cultures, lavage fluids or extracts, or pig breeding. Examples include cleaning solutions for the environment (breeding facilities, etc.) or cultures thereof. Further, as shown in Examples described later, such a sample may contain a substance showing toxicity to a growing chicken egg, and the sample may be appropriately diluted and filtered. For dilution, for example, water, physiological saline, buffer (phosphate buffer, phosphate buffered saline (PBS), Tris buffer, etc.), medium (Eagle's medium, DMEM medium, RPMI1640 medium, αMEM medium, etc.) ) Is used as appropriate. Further, the medium may contain a medium additive such as an antibiotic or serum. Dilution ratio is not particularly limited, those skilled in the art can appropriately adjusted according to the type of the sample. For example 10 to 10 4 times, preferably 10 2 to 10 3. Further, from the viewpoint of neutralizing and reducing the toxicity, a substance capable of neutralizing or reducing the toxic substance (for example, a chelating agent such as an EDTA compound, particles having a carbon structure (beads)) may be added to the sample. good.

前述の豚デルタコロナウイルスを接種する「発育鶏卵」は、交配させて得られたニワトリの卵を8日以内孵卵させたものを意味する。ニワトリの種類としては特に制限はなく、例えば、白色レグホン、茶色レグホン、バードロック、サセックス、ニューハンプシャー、ロードアイランド、オーストラロープ種、コーンウォール、ミノルカ、アムロクス、カリフォルニアグレー、イタリアパートリッジカラーが挙げられる。そして、このようなニワトリを交配させ、雌ニワトリから得られた卵は、通常10〜20℃に保存される。なお、当該卵は、後述の実施例に示すとおり、有精卵であることの確認がとれないものであってもよい。 The "developed chicken egg" inoculated with the above-mentioned pig delta coronavirus means a chicken egg obtained by mating and inoculated within 8 days. The type of chicken is not particularly limited, and examples thereof include white Leghorn, brown Leghorn, Bird Rock, Sussex, New Hampshire, Road Island, Australorp, Cornwall, Minorca, Amrox, California Gray, and Italian Partridge Color. Then, such chickens are bred, and the eggs obtained from the female chickens are usually stored at 10 to 20 ° C. As shown in Examples described later, the egg may not be confirmed to be a fertilized egg.

次に、36〜38℃の温度に移すことにより「孵卵」が開始される。本発明において、この温度条件下における孵卵期間は、後述の実施例に示すとおり、8日以内であればよく、好ましくは0〜7日目、より好ましくは3〜7日、さらに好ましくは5〜7日である。また、他の条件としては、通常湿度は60〜80%であり、また暗条件であることが好ましい。 The "incubation" is then initiated by transferring to a temperature of 36-38 ° C. In the present invention, the incubation period under this temperature condition may be 8 days or less, preferably 0 to 7 days, more preferably 3 to 7 days, still more preferably 5 to 5 days, as shown in Examples described later. It's 7 days. As other conditions, the humidity is usually 60 to 80%, and it is preferable that the humidity is dark.

次に、前記孵卵期間を経た発育鶏卵に豚デルタコロナウイルスを接種する。その接種部位としては、発育鶏卵内において、後述の培養後、豚デルタコロナウイルスが増殖し得る限り特に制限はないが、例えば、尿膜腔内、羊膜腔内、漿尿膜上、卵黄嚢内、血管内、胎仔内が挙げられる。これらの部位において、機械(自動接種機)による接種方法が確立しているという観点から、尿膜腔内に接種することが好ましい。 Next, pig delta coronavirus is inoculated into the embryonated chicken eggs that have passed the incubation period. The inoculation site is not particularly limited as long as the porcine delta coronavirus can proliferate in the developing chicken egg after the culture described later. Intravascular and fetal. From the viewpoint that a mechanical (automatic inoculation machine) inoculation method has been established at these sites, it is preferable to inoculate into the allantois cavity.

豚デルタコロナウイルスの接種量としては、特に制限はないが、1〜10 EID50、好ましくは10〜10 EID50、より好ましくは5×10〜5×10 EID50である。 The inoculation amount of porcine delta coronavirus is not particularly limited, but is 1 to 10 4 EID 50 , preferably 10 to 10 3 EID 50 , and more preferably 5 × 10 5 × 10 2 EID 50 .

なお、豚デルタコロナウイルスのEID50は、例えば次のようにして算出することができる。先ず、PBSを用いて、対象とする豚デルタコロナウイルスの10倍希釈系列を作製する。次いで、各希釈試料0.1mlを、上述の条件で管理された孵卵6日目の発育鶏卵の尿膜腔内に、各希釈系列につき6個以上接種する。48時間後に回収した尿膜腔液に含まれるウイルス量をリアルタイムPCRにより測定する。より具体的には、核酸抽出キット等を使用し、回収液に含まれるウイルス由来のRNAを抽出する。この時、発育鶏卵の尿膜腔内に接種したものと同じ0.1mlのウイルス液を用意し、同様にRNAを抽出する。発育鶏卵の尿膜腔から回収される液は概ね10mlであるため、リアルタイムPCRによって測定される発育鶏卵に接種した0.1ml中に含まれるRNA量に100倍した数値を孵卵前のウイルス量として仮定する。そして、この孵卵前のウイルス量よりも多いウイルスがリアルタイムPCRによって検出されたものを豚デルタコロナウイルスに感染した発育鶏卵として判定することによって、50%の卵が感染するウイルス量が算出される。あるいは、上述のLLC−PK細胞やswine testicular細胞を用いて算出することも可能である(非特許文献1におけるTCIDアッセイ 参照のほど)。 The EID 50 of the porcine delta coronavirus can be calculated as follows, for example. First, PBS is used to prepare a 10-fold dilution series of the porcine delta coronavirus of interest. Next, 0.1 ml of each diluted sample is inoculated into the allantois cavity of the developing chicken egg on the 6th day of incubation controlled under the above conditions, inoculating 6 or more for each dilution series. The amount of virus contained in the allantois cavity fluid collected after 48 hours is measured by real-time PCR. More specifically, a virus-derived RNA contained in the recovery solution is extracted using a nucleic acid extraction kit or the like. At this time, the same 0.1 ml virus solution as inoculated into the allantois cavity of the developing chicken egg is prepared, and RNA is extracted in the same manner. Since the amount of liquid recovered from the urinary membrane cavity of a growing chicken egg is approximately 10 ml, the amount of virus contained in 0.1 ml of the growing chicken egg measured by real-time PCR multiplied by 100 is used as the viral load before incubation. Assume. Then, the amount of virus infecting 50% of the eggs is calculated by determining that the virus detected by real-time PCR is larger than the amount of virus before hatching as a developing chicken egg infected with porcine delta coronavirus. Alternatively, it can be calculated using the above-mentioned LLC-PK cells or testicle cells (see TCID assay in Non-Patent Document 1).

また、接種後の培養温度としては、豚デルタコロナウイルスが増殖できる温度であれば特に制限はなく、例えば28〜40℃、好ましくは30〜39℃、より好ましくは36〜38℃の温度である。接種後の培養期間としては、例えば24〜240時間、好ましくは48〜120時間である。 The culture temperature after inoculation is not particularly limited as long as the porcine delta coronavirus can grow, and is, for example, 28 to 40 ° C, preferably 30 to 39 ° C, and more preferably 36 to 38 ° C. .. The culture period after inoculation is, for example, 24-240 hours, preferably 48-120 hours.

そして、本発明においては、かかる培養後の発育鶏卵から、卵内容物を回収することにより、増殖した豚デルタコロナウイルスを得ることができる。回収する卵内容物としては、増殖した豚デルタコロナウイルスを含有する限り、特に制限はなく、卵内容物の全部であってもよく、一部であってもよい。卵内容物の一部としては、例えば、尿膜腔液(漿尿液)、卵黄、胎仔が挙げられるが、機械(自動採液機)による回収方法が確立しているという観点から、尿膜腔液を回収することが好ましい。 Then, in the present invention, the propagated porcine delta coronavirus can be obtained by recovering the egg contents from the developed chicken eggs after such culturing. The egg contents to be recovered are not particularly limited as long as they contain the propagated porcine delta coronavirus, and may be all or a part of the egg contents. Examples of a part of the egg contents include allantois cavity fluid (serous fluid), egg yolk, and fetus, but from the viewpoint that a collection method by a machine (automatic fluid collector) has been established, the allantois membrane. It is preferable to collect the cavity fluid.

(豚デルタコロナウイルスを含むワクチンの製造方法)
後述の実施例に示すとおり、本発明によれば、発育鶏卵において、効率よく大量に豚デルタコロナウイルスを増殖させることが可能である。そして、このように増殖させた豚デルタコロナウイルスはワクチンの材料として有用である。したがって、本発明は、
豚デルタコロナウイルスを、孵卵8日以内の発育鶏卵に接種する工程、
前記発育鶏卵を培養して、前記ウイルスを増殖させる工程、
前記発育鶏卵から、前記ウイルスを含む卵内容物を回収する工程、
前記卵内容物から前記ウイルスを単離し、薬理学上許容される担体又は媒体と混合する工程
を含む、豚デルタコロナウイルスを含むワクチンの製造方法を、提供する。
(Manufacturing method of vaccine containing porcine delta coronavirus)
As shown in Examples described later, according to the present invention, it is possible to efficiently propagate a large amount of porcine delta coronavirus in a developing chicken egg. The porcine delta coronavirus propagated in this way is useful as a vaccine material. Therefore, the present invention
The process of inoculating porcine delta coronavirus into embryonated chicken eggs within 8 days of incubation,
A step of culturing the developed chicken egg to propagate the virus,
A step of recovering the egg contents containing the virus from the growing chicken egg,
Provided is a method for producing a vaccine containing porcine delta coronavirus, which comprises the step of isolating the virus from the egg contents and mixing it with a pharmacologically acceptable carrier or vehicle.

発育鶏卵において豚デルタコロナウイルスを増殖させる迄の工程については、上述の(豚デルタコロナウイルスの製造方法)に記載のとおりである。増殖した豚デルタコロナウイルスの「単離」は、前記卵内容物からの分離、精製及び/又は濃縮を意味する。前記ウイルスの単離方法としては、例えば、卵内容物のろ過、遠心分離(超遠心法、密度勾配遠心法等)、クロマトグラフィー法(例えば、サイズ排除クロマトグラフィー、イオン交換クロマトグラフィー、アフィニティークロマトグラフィー)、濃縮(硫酸アンモニウム、樹脂カラム、ポリエチレングリコール塩析等)が挙げられる。 The steps up to the propagation of porcine delta coronavirus in a developing chicken egg are as described in (Method for producing porcine delta coronavirus) described above. "Isolation" of the propagated porcine delta coronavirus means isolation, purification and / or concentration from the egg contents. Examples of the virus isolation method include filtration of egg contents, centrifugation (ultracentrifugation, density gradient centrifugation, etc.), and chromatography (eg, size exclusion chromatography, ion exchange chromatography, affinity chromatography, etc.). ), Concentration (ammonium sulfate, resin column, polyethylene glycol salting out, etc.).

このようにして単離された豚デルタコロナウイルスは、そのままワクチン(所謂、生ワクチン)として用いてもよく、弱毒化生形態(所謂、生弱毒化ウイルス)にて用いてよく、不活化形態にてワクチンとして用いてもよい。さらに、免疫原性を有する限り、これら単離された豚デルタコロナウイルスの一部(タンパク質、ポリペプチド、糖、糖タンパク質、脂質、核酸等)をワクチンとして用いてもよい。 The porcine delta coronavirus isolated in this way may be used as it is as a vaccine (so-called live vaccine), may be used in an attenuated live form (so-called live attenuated virus), and may be used in an inactivated form. May be used as a vaccine. Furthermore, some of these isolated porcine delta coronaviruses (proteins, polypeptides, sugars, glycoproteins, lipids, nucleic acids, etc.) may be used as vaccines as long as they are immunogenic.

生弱毒化ウイルスは、野外から分離されたウイルスと比較して低減した毒性レベルを有するウイルスを意味する。弱毒化ウイルスは、公知の方法、例えば、突然変異誘発物質の存在下での増殖、インビトロでの連続〈長期間)継代による培養細胞への馴化、自然生育環境から逸脱した条件下(例えば、高温条件下)での増殖に豚デルタコロナウイルスを供することによって得ることができる。また、ゲノム編集、遺伝子改変技術等を用いて、ウイルスの特定遺伝子を欠損又は組み換えることによっても、生弱毒化ウイルスを得ることができる。 Live attenuated virus means a virus with a reduced level of virulence compared to a virus isolated from the field. Attenuated viruses are produced by known methods, such as growth in the presence of mutagens, acclimation to cultured cells by continuous (long-term) passage in vitro, and conditions deviating from the natural growth environment (eg,). It can be obtained by subjecting porcine delta coronavirus to growth under high temperature conditions). A live attenuated virus can also be obtained by deleting or recombining a specific gene of a virus by using genome editing, gene modification technology, or the like.

ウイルスの不活化も、当業者であれば、公知の方法を用いて行うことができる、かかる不活化の方法としては、ホルムアルデヒド処理、UV照射、X線照射、電子線照射、ガンマ線照射、アルキル化処理、エチレン−イミン処理、チメロサール処理、β−プロピオラクトン処理、グルタルアルデヒド処理が挙げられる。 Virus inactivation can also be performed by a known method by those skilled in the art. Examples of such inactivation methods include formaldehyde treatment, UV irradiation, X-ray irradiation, electron beam irradiation, gamma ray irradiation, and alkylation. Treatments include treatment, ethylene-imine treatment, timerosal treatment, β-propiolactone treatment, and glutaraldehyde treatment.

ワクチン製造において、単離した豚デルタコロナウイルスに混合する「薬理学上許容される担体」としては、例えば、安定剤、賦形剤、防腐剤、界面活性剤、キレート剤、結合剤が挙げられる。「薬理学上許容される媒体」としては、例えば、水、生理食塩水、緩衝液(リン酸緩衝液、リン酸緩衝生理食塩水(PBS)、Tris緩衝液等)が挙げられる。これら担体及び媒体は、当業者であれば、ワクチンの剤型、使用方法に応じて、当該分野に用いられる公知の物を適宜又は組み合わせて選択して用いることができる。また、ワクチンの形態としては、特に制限はなく、例えば、懸濁液の形態であってもよく、凍結乾燥された形態であってもよい。 Examples of "pharmaceutically acceptable carriers" to be mixed with the isolated porcine delta coronavirus in vaccine production include stabilizers, excipients, preservatives, surfactants, chelators and binders. .. Examples of the "pharmacologically acceptable medium" include water, physiological saline, and a buffer solution (phosphate buffer solution, phosphate buffered saline solution (PBS), Tris buffer solution, etc.). Those skilled in the art can select and use these carriers and vehicles as appropriate or in combination with known substances used in the art, depending on the dosage form and method of use of the vaccine. The form of the vaccine is not particularly limited, and may be, for example, a suspension form or a freeze-dried form.

ワクチン効果を増強するという観点から、更にアジュバントを混合してもよい。アジュバントとしては、例えば、アルミニウムゲルアジュバント等の無機物質、微生物若しくは微生物由来物質(BCG、ムラミルジペプチド、百日せき菌、百日せきトキシン、コレラトキシン等)、界面活性作用物質(サポニン、デオキシコール酸等)、油性物質(鉱油、植物油、動物油等)のエマルジョン、ミョウバン等が挙げられる。 From the viewpoint of enhancing the vaccine effect, an adjuvant may be further mixed. Examples of the adjuvant include inorganic substances such as aluminum gel adjuvant, microorganisms or substances derived from microorganisms (BCG, muramyl dipeptide, alum, pertussis toxin, choleratoxin, etc.), and surfactant substances (saponin, deoxycol). Acids, etc.), emulsions of oily substances (mineral oil, vegetable oil, animal oil, etc.), alum, etc.

(豚デルタコロナウイルスの検査方法)
後述の実施例に示すとおり、本発明によれば、発育鶏卵において、効率良く大量に豚デルタコロナウイルスを増殖させることが可能である。特に、豚デルタコロナウイルスを含み得る糞便には、トリプシンを不活化する多量のタンパク質が含まれていることから、培養細胞を用いた方法では、糞便中の当該ウイルスを増殖させることが極めて困難となる。一方、本発明によれば、糞便を発育鶏卵に接種することで当該ウイルスを増殖させることが可能となるため、このような試料も対象とした豚デルタコロナウイルスの検査も可能となる。したがって、本発明は、
被検試料を、孵卵8日以内の発育鶏卵に接種する工程、
前記発育鶏卵を培養する工程、
前記発育鶏卵における、豚デルタコロナウイルスを検出する工程、及び
前記工程にて、豚デルタコロナウイルスの増殖が検出された場合に、前記被検試料は当該ウイルスを含有していると判定する工程
を含む、豚デルタコロナウイルスの検査方法を、提供する。
(Inspection method for pig delta coronavirus)
As shown in Examples described later, according to the present invention, it is possible to efficiently propagate a large amount of porcine delta coronavirus in a developing chicken egg. In particular, since feces that can contain porcine delta coronavirus contain a large amount of protein that inactivates trypsin, it is extremely difficult to propagate the virus in feces by the method using cultured cells. Become. On the other hand, according to the present invention, since the virus can be propagated by inoculating the developed chicken egg with feces, it is possible to test the porcine delta coronavirus on such a sample as well. Therefore, the present invention
The process of inoculating a test sample into a developing chicken egg within 8 days of incubation,
The step of culturing the developed chicken egg,
A step of detecting the porcine delta coronavirus in the developed chicken egg, and a step of determining that the test sample contains the virus when the growth of the porcine delta coronavirus is detected in the step. Provided are methods of testing for porcine delta coronavirus, including.

発育鶏卵において豚デルタコロナウイルスを増殖させる迄の工程については、上述の(豚デルタコロナウイルスの製造方法)に記載のとおりである。また「被検試料」としては、豚デルタコロナウイルスが存在し得る試料であれば特に制限はなく、上述の豚の糞便等が挙げられる。 The steps up to the propagation of porcine delta coronavirus in a developing chicken egg are as described in (Method for producing porcine delta coronavirus) described above. The "test sample" is not particularly limited as long as it is a sample in which pig delta coronavirus can be present, and examples thereof include the above-mentioned pig feces.

豚デルタコロナウイルスの検出対象については、上記同様に、発育鶏卵の卵内容物の全部であってもよく、一部であってもよい。卵内容物の一部としては、例えば、尿膜腔液(漿尿液)、卵黄、胎仔が挙げられるが、上述のとおり、発育鶏卵からの機械による尿膜腔液の回収が確立しているという観点から、尿膜腔液を検出対象とすることが好ましい。 Similar to the above, the detection target of the porcine delta coronavirus may be all or a part of the egg contents of the developing chicken egg. Examples of a part of the egg contents include allantois cavity fluid (sero-urinary fluid), egg yolk, and fetus. As described above, mechanical recovery of allantois cavity fluid from a developing chicken egg has been established. From this point of view, it is preferable to target the allantois cavity fluid as a detection target.

発育鶏卵における豚デルタコロナウイルスの検出は、当業者であれば適宜公知のウイルス検出方法を用い行なうことができる。かかる方法としては、後述の実施例に示すとおり、例えば、細胞変性効果(CPE)を指標とするCPE試験が挙げられる。また、豚デルタコロナウイルスに由来する遺伝子又はその発現を検出する方法も利用することができる。ここで、遺伝子の発現は、転写レベル(mRNAレベル)であっても翻訳レベル(タンパク質レベル)であってもよい。遺伝子(ゲノムRNA)又はmRNAを検出する方法としては、例えば、PCR(RT−PCR、リアルタイムPCR、定量PCR)、DNAマイクロアレイ解析法、ノーザンブロッティング又はサザンブロッティング、in situ ハイブリダイゼーション、ドットブロット、RNaseプロテクションアッセイ法、質量分析法が挙げられる。また、所謂次世代シークエンシング法においてリード数をカウントすることにより、遺伝子又はmRNAレベルを定量的に検出することができる。また、タンパク質を検出する方法としては、例えば、ELISA法、抗体アレイ、イムノブロッティング、イメージングサイトメトリー、フローサイトメトリー、ラジオイムノアッセイ、免疫沈降法、免疫組織化学的染色法等の抗体を用いて検出する方法(免疫学的手法)や、質量分析法が挙げられる。 Detection of porcine delta coronavirus in embryonated chicken eggs can be carried out by a person skilled in the art using a known virus detection method as appropriate. Examples of such a method include a CPE test using the cytopathic effect (CPE) as an index, as shown in Examples described later. In addition, a method for detecting a gene derived from porcine delta coronavirus or its expression can also be used. Here, gene expression may be at the transcriptional level (mRNA level) or the translational level (protein level). Examples of methods for detecting a gene (genomic RNA) or mRNA include PCR (RT-PCR, real-time PCR, quantitative PCR), DNA microarray analysis, Northern blotting or Southern blotting, in situ hybridization, dot blot, and RNase protection. Examples include an assay method and a mass analysis method. In addition, the gene or mRNA level can be quantitatively detected by counting the number of reads in the so-called next-generation sequencing method. Further, as a method for detecting a protein, for example, an antibody such as ELISA method, antibody array, immunoblotting, imaging cytometry, flow cytometry, radioimmunoassay, immunoprecipitation method, immunohistochemical staining method or the like is used for detection. Methods (immunological methods) and mass analysis methods can be mentioned.

なお、当業者であれば、ウイルス検出方法の種類に応じ、適宜統計学的手法を用い、また必要に応じ閾値(カットオフ)を設け、得られた結果に基づき、豚デルタコロナウイルスの増殖の有無を判断することができる。そして、該ウイルスの増殖が認められた場合には、被検試料が当該ウイルスを含有していると判定される。 If a person skilled in the art is a person skilled in the art, a statistical method is appropriately used according to the type of virus detection method, and a threshold value (cutoff) is set as necessary, and based on the obtained results, the growth of porcine delta coronavirus is carried out. The presence or absence can be determined. Then, when the growth of the virus is observed, it is determined that the test sample contains the virus.

以下、実施例に基づいて本発明をより具体的に説明するが、本発明は以下の実施例に限定されるものではない。また本実施例は、下記材料及び方法を用いて行なった。 Hereinafter, the present invention will be described in more detail based on Examples, but the present invention is not limited to the following Examples. Moreover, this Example was carried out using the following materials and methods.

(孵卵日数の異なる発育鶏卵へのウイルス接種)
豚デルタコロナウイルスは、2017年に山形県の豚から分離されたYGT株を用いた。発育鶏卵(孵化鶏卵と同義)は、コンベンショナルグレードのものを使用し、孵卵するまでの期間は10℃で保管した。孵卵0〜12日目までの各日について、0.1ml(10 50%卵感染量(Egg Infectious Dose:EID50)/ml)のウイルス液を発育鶏卵の尿膜腔内に接種し、37℃で48時間孵卵した後に4℃に移動した。また、孵卵0〜2日後の発育鶏卵については、ウイルス液接種後、120時間孵卵した後に回収した群も設定した。回収した尿膜腔液(漿尿液と同義)は、細胞に接種、あるいは核酸を抽出するまで−80℃で保存した。
(Virus inoculation of growing chicken eggs with different incubation days)
For the porcine delta coronavirus, a YGT strain isolated from pigs in Yamagata Prefecture in 2017 was used. As the developed chicken egg (synonymous with the hatched chicken egg), a conventional grade egg was used, and the egg was stored at 10 ° C. until hatching. For each day until incubation 0-12 days, 0.1ml (10 3 50% egg infectious dose (Egg Infectious Dose: EID 50) / ml) virus solution was inoculated into the allantoic cavity of embryonated chicken eggs, 37 After incubating at ° C for 48 hours, the cells were moved to 4 ° C. In addition, for the embryonated chicken eggs 0 to 2 days after incubation, a group was also set in which the eggs were collected after incubation for 120 hours after inoculation with the virus solution. The collected allantois cavity fluid (synonymous with serous fluid) was stored at −80 ° C. until cells were inoculated or nucleic acids were extracted.

(発育鶏卵を用いた豚デルタコロナウイルスの連続継代)
孵卵6日目の発育鶏卵4〜6個を用いて、0.1ml(2×10コピー)のウイルス液を発育鶏卵の尿膜腔内に接種し、37℃で48時間孵卵した後に4℃に移動した。回収した尿膜腔液は、細胞に接種、あるいは核酸を抽出するまで−80℃で保存した。回収した尿膜腔液に含まれるウイルス量をリアルタイムRT−PCRを用いて測定し、PBSを用いて希釈した同量のウイルスを孵卵6日目の発育鶏卵に接種することを6代まで継続して行った。
(Continuous passage of porcine delta coronavirus using embryonated chicken eggs)
With 4-6 embryonated chicken eggs incubation day 6, the virus solution of 0.1ml (2 × 10 3 copies) was inoculated into the allantoic cavity of embryonated chicken eggs, 4 ° C. After 48 hours incubation at 37 ° C. Moved to. The collected allantois cavity fluid was stored at −80 ° C. until cells were inoculated or nucleic acids were extracted. The amount of virus contained in the collected urinary tract fluid was measured using real-time RT-PCR, and the same amount of virus diluted with PBS was continuously inoculated into the developing chicken eggs on the 6th day of incubation until the 6th generation. I went.

(発育鶏卵を用いた豚10%糞乳剤からの豚デルタコロナウイルスの分離)
約110日齢の健康豚の糞を、その10倍量の培地に混合した。培地は、イーグル培地(シグマ社製)にペニシリン(10,000 ユニット/ml)、ストレプトマイシン(10,000μg/ml)及びゲンタマイシン(30μg/ml)を添加して調製したものを用いた。得られた10%豚糞含有培地を、室温で10分間の遠心分離(3,000rpm)処理に供し、上清を0.45μmフィルターでろ過したものを10%糞乳剤として使用した。10%糞乳剤を用いて豚デルタコロナウイルス(10 EID50/ml)を10〜10倍まで階段希釈し、それぞれのウイルス希釈液を孵卵6日目の発育鶏卵6個ずつの尿膜腔内に0.1ml接種し、37℃で48時間孵卵した後に4℃に移動した。回収した尿膜腔液は、細胞に接種、あるいは核酸を抽出するまで−20℃で保存した。
(Separation of porcine delta coronavirus from 10% porcine fecal emulsion using grown chicken eggs)
Feces of healthy pigs about 110 days old were mixed with 10 times the amount of the medium. As the medium, a medium prepared by adding penicillin (10,000 units / ml), streptomycin (10,000 μg / ml) and gentamicin (30 μg / ml) to Eagle's medium (manufactured by Sigma) was used. The obtained 10% pig manure-containing medium was subjected to centrifugation (3,000 rpm) for 10 minutes at room temperature, and the supernatant was filtered through a 0.45 μm filter and used as a 10% manure emulsion. Porcine delta coronavirus with 10% fecal emulsion (10 4 EID50 / ml) was serially diluted up to 10 to 10 6 times, allantoic cavity of each virus dilution by embryonated eggs six incubation day 6 Was inoculated with 0.1 ml and incubated at 37 ° C. for 48 hours and then moved to 4 ° C. The collected allantois cavity fluid was stored at −20 ° C. until cells were inoculated or nucleic acids were extracted.

(ウイルス力価の測定)
発育鶏卵あるいは豚糞乳剤に含まれる豚デルタコロナウイルスの力価測定には細胞変性効果(CPE)を指標とした。豚腎臓由来株化細胞(LLC−PK1細胞(国立研究開発法人 医薬基盤・健康・栄養研究所 JCRB細胞バンク 細胞番号;JCRB0060)(Hull RN,et al.,Thromb Res,10,669−677.(1977))の培養には、イーグル培地(シグマ)に8%牛胎子血清(FBS)、ペニシリン(10,000 unit/mL)、ストレプトマイシン(10,000μg/mL)を添加した培地を使用した(Hu H,et al.,J Clin Microbiol,53,1537−1548.(2015))。ウイルス接種は、単層に培養した細胞に発育鶏卵から回収した尿膜腔液、あるいは10%糞乳剤を接種した。37℃で2時間ウイルスを吸着させた後、細胞をPBSで洗浄し、培養液を添加して5日間静置培養を行った。吸着及び培養には培養液にトリプシン(製品名:GIBCO(登録商標)Trypsin、Thermo Fisher Scientific Inc.,(U.S.A.)社製)10μg/mlを添加した。
(Measurement of virus titer)
The cytopathic effect (CPE) was used as an index to measure the titer of porcine delta coronavirus contained in the developed chicken egg or porcine feces emulsion. Pigney kidney-derived cell line (LLC-PK1 cell (National Institutes of Biomedical Innovation, Health and Nutrition, JCRB Cell Bank Cell Number; JCRB0060) (Hull RN, et al., Thromb Res, 10, 669-677. ( For the culture of 1977)), a medium obtained by adding 8% bovine fetal serum (FBS), penicillin (10,000 unit / mL), and streptomycin (10,000 μg / mL) to an eagle medium (sigma) was used (Hu). H, et al., J Clin Microbiol, 53, 1537-1548. (2015)). For virus inoculation, cells cultured in a single layer were inoculated with urinary cavities recovered from developing chicken eggs or 10% fecal emulsion. After adsorbing the virus at 37 ° C. for 2 hours, the cells were washed with PBS, the culture solution was added, and the cells were allowed to stand for 5 days. For adsorption and culture, trypsin (product name: GIBCO (product name: GIBCO)) was added to the culture solution. Registered trademark) Trypin, Thermo Fisher Scientific Inc., (USA)) 10 μg / ml was added.

(リアルタイムRT−PCRによる豚デルタコロナウイルス遺伝子量の測定)
発育鶏卵から回収された漿尿液あるいは培養細胞の上清に含まれるウイルス量は、リアルタイムPCRによって測定した。材料からのウイルスRNAの抽出は、ウイルスRNA精製用キット(製品名:QIAamp Viral RNA Mini Kit、QIAGEN(Germany)社製)を用い、One Step PrimeScript RT−PCR Kit (Perfect Real Time)(TAKARA BIO INC(Japan)社製)を用いてリアルタイムRT−PCRを行った。豚デルタコロナウイルスの核酸を増幅する手法は、Marthaler et alらの報告(Marthaler D. et al.,Emerg Infect Dis,20(8):1347−50.(2014))に従い、豚デルタコロナウイルスの膜蛋白質をコードする遺伝子の一部を増幅するプライマーを使用した。
フォワードプライマー:ATGACCACATGGCTCCAA(配列番号:1)
リバースプライマー:CAGCTCTTGCCCATGTAGCTT(配列番号:2)
プローブ:FAM−CACACCAGTCGTTAAGCATGGCAAGCT−BHQ(配列番号:3、「FAM」及び「BHQ」は、各々標識物質 フルオレセイン及びブラックホールクエンチャーを示す)。
(Measurement of porcine delta coronavirus gene amount by real-time RT-PCR)
The amount of virus contained in the serum or the supernatant of the cultured cells collected from the developing chicken eggs was measured by real-time PCR. Virus RNA is extracted from the material using a virus RNA purification kit (product name: QIAamp Viral RNA Mini Kit, manufactured by QIAGEN (Germany)), One Step PrimeScript RT-PCR Kit (Perfect Real Time) (TAKARAB). Real-time RT-PCR was performed using (manufactured by Japan). The method for amplifying the nucleic acid of porcine delta coronavirus is according to the report of Marthaler et al. (Marthaler D. et al., Emerging Infectious, 20 (8): 1347-50. (2014)). Primers were used to amplify some of the genes encoding membrane proteins.
Forward primer: AT C GACCACATAGGCTCCAA (SEQ ID NO: 1)
Reverse primer: CAGCCTTGCCCATGTAGCTT (SEQ ID NO: 2)
Probe: FAM-CACACCAGTCGTTAAGCATGGCAAGCT-BHQ (SEQ ID NO: 3, "FAM" and "BHQ" indicate the labeling substances fluorescein and black hole quencher, respectively).

なお、本発明者らが使用したYGT株の膜蛋白質遺伝子に既報の配列と1塩基の置換が認められたため、下線を付した配列をCからTに変更したフォワードプライマーを利用した。定量解析のために、標的遺伝子を含む2本鎖DNAを人工合成し(Thermo Fisher Scientific Inc.,U.S.A.)、それを鋳型としてリアルタイムRT−PCRを行い、検量線(標準曲線)を作成した。解析には、リアルタイムPCRシステム(製品名:Quant Studio 5 Real−Time PCR system、Thermo Fisher Scientific Inc.,USA社製)を用いた。 Since the membrane protein gene of the YGT strain used by the present inventors was found to have a 1-base substitution with the previously reported sequence, a forward primer in which the underlined sequence was changed from C to T was used. For quantitative analysis, double-stranded DNA containing the target gene was artificially synthesized (Thermo Fisher Scientific Inc., USA), and real-time RT-PCR was performed using it as a template, and a calibration curve (standard curve). It was created. A real-time PCR system (product name: Quant Studio 5 Real-Time PCR system, Thermo Fisher Scientific Inc., manufactured by USA) was used for the analysis.

(統計解析)
2群間における統計処理にはStudent’s t−testを用い、統計的有意差をP<0.05とした。また、図1及び2(グラフ)においては平均値±標準誤差で示した。リアルタイムRT−PCRによる遺伝子量の解析では、ウイルスが増殖していなくても発育鶏卵に接種したウイルス遺伝子を検出してしまうことから、Cut off lineを設定した。6個の発育鶏卵に他の試験群と同様の孵卵日数、投与量でウイルスを接種し、孵卵器に戻さずに4℃で鶏胚を死亡させて、全量の尿膜腔液を回収した。尿膜腔液はよく混和した後に試験群と同様の手法で核酸を抽出し、リアルタイムRT−PCRで遺伝子量を測定し、計測値に3×標準偏差値で最大誤差範囲をCut off lineとして陽性の基準とした。
(Statistical analysis)
Student's t-test was used for statistical processing between the two groups, and the statistically significant difference was P <0.05. Further, in FIGS. 1 and 2 (graph), the average value ± standard error is shown. In the analysis of the gene amount by real-time RT-PCR, the virus gene inoculated into the developing chicken egg was detected even if the virus was not propagated, so Cut off line was set. Six developing chicken eggs were inoculated with the virus at the same number of incubation days and doses as in the other test groups, and the chicken embryos were killed at 4 ° C. without returning to the incubator, and the entire amount of allantois cavity fluid was collected. After the urinary pelvic fluid is well mixed, nucleic acid is extracted by the same method as in the test group, the gene amount is measured by real-time RT-PCR, and the measured value is 3 × standard deviation and the maximum error range is positive as Cut off line. Was used as the standard.

(実施例1) 豚デルタコロナウイルスの発育鶏卵に対する感受性
下記表1に示すとおり、豚デルタコロナウイルスは、孵卵期間が2日から8日の発育鶏卵で増殖した。一方、通常、インフルエンザウイルスの培養に用いられる10日から12日の孵卵日数では豚デルタコロナウイルスの増殖は認められなかった。孵卵期間2日と8日では、それぞれ30.0%及び11.1%の発育鶏卵でウイルスの増殖を認めたのみであったが、3日から7日の発育鶏卵では、試験個数が異なっていても75.0%以上の発育鶏卵でウイルスの増殖が認められた。
(Example 1) Sensitivity of porcine delta coronavirus to embryonated chicken eggs As shown in Table 1 below, porcine delta coronavirus propagated in embryonated chicken eggs with an incubation period of 2 to 8 days. On the other hand, no growth of porcine delta coronavirus was observed in the incubation days of 10 to 12 days, which are usually used for culturing influenza virus. During the incubation period of 2 days and 8 days, only 30.0% and 11.1% of the embryonic eggs showed virus growth, but the number of tested eggs was different between the 3 to 7 days of incubation. However, virus growth was observed in 75.0% or more of the embryonated chicken eggs.

Figure 2021119750
Figure 2021119750

さらに、図1に示すとおり、回収されたウイルス量の違いを比較したところ、孵卵日数が5日及び7日の発育鶏卵で特に多くのウイルスが回収されたが、孵卵日数が3日及び6日の発育鶏卵で得られたウイルス量との間に有意差は認められなかった。 Furthermore, as shown in FIG. 1, when the difference in the amount of recovered virus was compared, a particularly large amount of virus was recovered in the embryonic chicken eggs having incubation days of 5 days and 7 days, but the incubation days were 3 days and 6 days. No significant difference was observed between the viral load and the viral load obtained in the embryonated chicken eggs.

また、図2に示すとおり、尿膜腔液を回収するまでに有精卵であることを確認できない孵卵期間が0、1、2日の発育鶏卵についても同様の試験を行った結果、孵卵期間が2日の発育鶏卵では3/10個でウイルスの増殖が確認されたが、孵卵期間が0日及び1日の発育鶏卵ではウイルスの増殖が認められなかった。 In addition, as shown in FIG. 2, as a result of conducting the same test for embryonated chicken eggs having an incubation period of 0, 1 or 2 days for which it cannot be confirmed that they are fertilized eggs by the time the urinary membrane cavity fluid is collected, the incubation period However, the growth of the virus was confirmed in 3/10 of the eggs grown on the 2nd day, but the growth of the virus was not observed in the eggs grown on the 0th and 1st day of incubation.

しかしながら、ウイルス接種後の培養期間を48時間から120時間に延長することによって、発育鶏卵が豚デルタコロナウイルスに対する感受性を獲得し、尿膜液内に残存するウイルスが発育鶏卵内の細胞に感染するかどうかを確認したところ、孵卵期間が0日の発育鶏卵であってもウイルスの増殖が認められた(図2 参照)。一方、48時間の判定ではウイルスの増殖が確認されなかった孵卵期間9、10、11日の発育鶏卵について、観察期間を168時間まで延長した群を設定したが(n=6)、ウイルスの増殖は確認されなかった(データ未掲載)。 However, by extending the culture period after virus inoculation from 48 hours to 120 hours, the developing chicken eggs acquire susceptibility to the porcine delta coronavirus, and the virus remaining in the urinary membrane infects the cells in the developing chicken eggs. When it was confirmed whether or not the virus was propagated even in the embryonated chicken egg whose hatching period was 0 day (see FIG. 2). On the other hand, for the embryonic chicken eggs with incubation periods 9, 10 and 11 days in which virus growth was not confirmed by the judgment of 48 hours, a group was set in which the observation period was extended to 168 hours (n = 6), but virus growth. Was not confirmed (data not posted).

(実施例2) 豚デルタコロナウイルスの発育鶏卵を用いた連続継代による増殖効率の変化
リアルタイムRT−PCRの結果を元に、2,000コピーの遺伝子量の豚デルタコロナウイルスを含むように希釈した尿膜腔液を発育鶏卵に接種することにより連続継代したところ、図3に示すとおり、6代目までに尿膜腔液10mlに含まれると推定されるウイルス量に減少傾向が認められた(R=0.439)。しかし、最も平均値の差が大きくなった2代目及び4代目の間にも有意差が認められなかったことから、6代までの継代ではウイルスの増殖効率に変化はないと推定された。また、発育鶏卵を用いて継代した豚デルタコロナウイルスが孵卵日数の進んだ発育鶏卵に対して感染性を獲得するかどうかを検証するため、孵卵期間が9日の発育鶏卵12個に、2,000コピーの遺伝子量の3〜6代目の豚デルタコロナウイルスを接種したところ、ウイルスの増殖は認められなかった(データ未掲載)。
(Example 2) Development of porcine delta coronavirus Changes in proliferation efficiency by continuous passage using chicken eggs Diluted to contain 2,000 copies of porcine delta coronavirus based on the results of real-time RT-PCR. When the developed urinary cavities were continuously passaged by inoculating the developed chicken eggs, as shown in FIG. 3, the amount of virus estimated to be contained in 10 ml of urinary tract fluid by the 6th generation tended to decrease. (R 2 = 0.439). However, no significant difference was observed between the 2nd and 4th generations, which had the largest difference in average values, so it was estimated that there was no change in virus growth efficiency in the passages up to the 6th generation. In addition, in order to verify whether the pig delta coronavirus passaged using the embryonated chicken eggs acquires infectivity to the embryonated chicken eggs with advanced incubation days, the incubation period was reduced to 12 embryonic chicken eggs with 9 days. When the 3rd to 6th generation porcine delta coronavirus with a gene amount of 1,000 copies was inoculated, no virus growth was observed (data not shown).

発育鶏卵を用いて5代目まで継代した2,000コピーの遺伝子量の豚デルタコロナウイルスを含むように希釈した豚デルタコロナウイルスをLLC−PK細胞に接種し、回収された遺伝子量を元に細胞培養によるウイルスの増殖効率について発育鶏卵を用いた場合と比較した。なお、ウイルス接種後の培養時間は、どちらも48時間に設定した。その結果、LLC−PK細胞において、96ウェル マイクロプレートの1ウェルからは、平均1.3×10コピー/100μlのウイルス遺伝子が検出された。一方、同じ量のウイルスを接種した発育鶏卵一個からは、平均1.7×10コピー/10mlのウイルス遺伝子が検出された。発育鶏卵1個から回収される10mlの尿膜腔液に含まれるウイルス量を細胞培養によって得るためには、1.2×10倍の面積が必要になるため、1700cmの細胞培養用ローラーボトル2.37個が必要になることが明らかとなった。 LLC-PK cells were inoculated with porcine delta coronavirus diluted to contain 2,000 copies of porcine delta coronavirus passaged up to the 5th generation using developed chicken eggs, and based on the recovered gene amount. The virus growth efficiency by cell culture was compared with the case of using a developed chicken egg. The culture time after virus inoculation was set to 48 hours in both cases. As a result, in the LLC-PK cells, from one well of 96-well microplates, viral genes mean 1.3 × 10 5 copies / 100 [mu] l were detected. On the other hand, from the embryonated eggs one inoculated with the same amount of virus, viral genes mean 1.7 × 10 9 copies / 10 ml were detected. In order to obtain the amount of virus contained in 10 ml of urinary membrane cavity fluid recovered from one developing chicken egg by cell culture, an area of 1.2 × 10 4 times is required, so a 1700 cm 2 cell culture roller. It became clear that 2.37 bottles would be needed.

(実施例3) 豚10%糞乳剤からのウイルス分離
豚10%糞乳剤を用いて作製した豚デルタコロナウイルスの10倍階段希釈液を発育鶏卵に接種したものは、リアルタイムRT−PCRによって、LLC−PK細胞に接種したものは細胞変性効果(CPE)によって、各々ウイルスの増殖を判定した。
(Example 3) Virus isolation from pig 10% feces emulsion A 10-fold stepwise diluted solution of pig delta coronavirus prepared using pig 10% feces emulsion was inoculated into a growing chicken egg by real-time RT-PCR. -The virus inoculated into PK cells was determined by the cytopathic effect (CPE).

Figure 2021119750
Figure 2021119750

その結果、表2に示すとおり、培養細胞であるLLC−PK細胞では、希釈倍率に依存してCPEの確認できた検体が6/6個から2/6まで減り、10及び10希釈液からは検出できなくなった。一方、発育鶏卵では、10及び10希釈液から検出できなかった点では同様であったが、10希釈液においても83.3%の発育鶏卵でウイルスの増殖を認めた。しかし、10及び10希釈液を接種した試験群において、接種翌日にそれぞれ3個及び1個の胚が死亡しており、ウイルスの増殖が確認されなかったことから、胚の死亡はウイルスの増殖に起因するものではなく、糞乳剤の毒性によるものと推察された。このことから、発育鶏卵を用いた豚デルタコロナウイルスのウイルス分離手法は、培養細胞を用いた手法よりも高効率であるが、糞の成分によっては10倍以上に希釈することや、糞乳剤に含まれる毒性成分を中和、あるいは減弱する成分の添加が必要であることが示された。 As a result, as shown in Table 2, in the LLC-PK cells are cultured cells, specimens confirmed the CPE depending on the dilution ratio is reduced from 6/6 and up to 2/6, 10 5 and 10 6 dilutions Can no longer be detected from. On the other hand, in embryonated chicken eggs, but it was similar in that could not be detected from the 10 5 and 10 6 dilutions showed a growth of the virus in 83.3% of chicken embryonic eggs even 10 4 dilution. However, at 10 2 and 10 3 dilutions inoculated test group the inoculation and the next day to three pieces and one embryo each death, since the proliferation of the virus was not confirmed, died embryos virus It was speculated that it was not due to proliferation but due to the toxicity of the fecal emulsion. For this reason, the virus isolation method for porcine delta coronavirus using developed chicken eggs is more efficient than the method using cultured cells, but depending on the components of the feces, it can be diluted 10 times or more, or it can be used as a fecal emulsion. It has been shown that it is necessary to add components that neutralize or dilute the toxic components contained.

以上説明したように、本発明によれば、豚デルタコロナウイルスを効率よく増殖させることが可能となり、当該ウイルスに対するワクチンの製造、開発が可能となる。また、豚デルタコロナウイルスを検出(検査、診断)することも可能となる。 As described above, according to the present invention, the porcine delta coronavirus can be efficiently propagated, and a vaccine against the virus can be produced and developed. It also makes it possible to detect (test, diagnose) porcine delta coronavirus.

Claims (5)

豚デルタコロナウイルスの製造方法であって、
豚デルタコロナウイルスを、孵卵8日以内の発育鶏卵に接種する工程、
前記発育鶏卵を培養して、前記ウイルスを増殖させる工程、及び
前記発育鶏卵から、前記ウイルスを含む卵内容物を回収する工程
を含む、方法。
A method for producing porcine delta coronavirus.
The process of inoculating porcine delta coronavirus into embryonated chicken eggs within 8 days of incubation,
A method comprising a step of culturing the developed chicken egg to propagate the virus and a step of recovering the egg contents containing the virus from the developed chicken egg.
豚デルタコロナウイルスを含むワクチンの製造方法であって、
豚デルタコロナウイルスを、孵卵8日以内の発育鶏卵に接種する工程、
前記発育鶏卵を培養して、前記ウイルスを増殖させる工程、
前記発育鶏卵から、前記ウイルスを含む卵内容物を回収する工程、
前記卵内容物から前記ウイルスを単離し、薬理学上許容される担体又は媒体と混合する工程
を含む、方法。
A method for producing a vaccine containing porcine delta coronavirus.
The process of inoculating porcine delta coronavirus into embryonated chicken eggs within 8 days of incubation,
A step of culturing the developed chicken egg to propagate the virus,
A step of recovering the egg contents containing the virus from the growing chicken egg,
A method comprising the step of isolating the virus from the egg contents and mixing it with a pharmacologically acceptable carrier or vehicle.
豚デルタコロナウイルスの検査方法であって、
被検試料を、孵卵8日以内の発育鶏卵に接種する工程、
前記発育鶏卵を培養する工程、
前記発育鶏卵における、豚デルタコロナウイルスを検出する工程、及び
前記工程にて、豚デルタコロナウイルスの増殖が検出された場合に、前記被検試料は当該ウイルスを含有していると判定する工程
を含む、方法。
It is a test method for porcine delta coronavirus.
The process of inoculating a test sample into a developing chicken egg within 8 days of incubation,
The step of culturing the developed chicken egg,
A step of detecting the porcine delta coronavirus in the developed chicken egg, and a step of determining that the test sample contains the virus when the growth of the porcine delta coronavirus is detected in the step. Including, method.
豚デルタコロナウイルス又は被検試料の接種部位が、発育鶏卵の尿膜腔内である、請求項1〜3のうちのいずれか一項に記載の方法。 The method according to any one of claims 1 to 3, wherein the inoculation site of the porcine delta coronavirus or the test sample is in the allantois cavity of the developing chicken egg. 豚デルタコロナウイルス又は被検試料を接種する発育鶏卵が、孵卵5〜7日の発育鶏卵である、請求項1〜4のうちのいずれか一項に記載の方法。 The method according to any one of claims 1 to 4, wherein the growing chicken egg inoculated with the porcine delta coronavirus or the test sample is a growing chicken egg 5 to 7 days after incubation.
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* Cited by examiner, † Cited by third party
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Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
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JP2014036654A (en) * 1998-06-12 2014-02-27 Icahn School Of Medicine At Mount Sinai New method for virus propagation and interferon-deficient substrate for it

Non-Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
JPN. J. MED. SCI. BIOL., vol. 9, no. 6, JPN6022042062, 1956, pages 293 - 302, ISSN: 0004889024 *
METHODS MOL. BIOL., vol. 1282, JPN6022042060, 2015, pages 63 - 71, ISSN: 0004889023 *
VIRUSES, vol. Vol. 11, Issue 6, JPN7022004722, 2019, pages 573, ISSN: 0004889022 *

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