JP2020508053A - 操作されたポリペプチド - Google Patents
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Abstract
Description
血液脳関門(BBB)は、末梢から脳内への大部分の巨大分子の通過を遮断し、それによりこれらの巨大分子の治療用途を制限する。血液脳関門の内皮を含む内皮で発現する受容体は、受容体に結合するリガンドの血液脳関門を通過する送達を媒介することができる。
一態様において、本開示は、単量体のTfRアピカルドメインを含む単離された組換えトランスフェリン受容体(TfR)コンストラクトであって、TfRのプロテアーゼ様ドメインまたは螺旋ドメインを含まないコンストラクトを提供する。一実施形態では、コンストラクトは、保存されたエピトープまたは抗原を提示し、かつ/または天然のヒトTfRのアピカルドメインのおよその3次元構造を保持するか、もしくは約2未満の平均二乗偏差(RMSD)を有する。一実施形態では、3次元構造は、X線結晶解析によって測定される。一実施形態では、コンストラクトは、ヒトTfRアピカルドメインを含む。一実施形態では、本明細書に記載されるTfRアピカルドメインコンストラクトと天然の完全長TfRのアピカルドメインとの間のRMSDは、約4未満、約3未満、または約2未満であり、約1〜約2の範囲の間である。一実施形態では、SEQ ID NO:109、110、301、468、及び469のうちのいずれか1つ(例えば、109、110、及び301)の配列を有するTfRアピカルドメインコンストラクトのいずれか1つと、天然の完全長TfRのアピカルドメインとの間のRMSDは、約1.2である。
の配列に対して少なくとも90%の配列同一性(例えば、少なくとも91%、92%、93%、94%、95%、96%、97%、98%、99%、または100%の配列同一性)を有する配列を含む。いくつかの実施形態では、第1のポリペプチドは、SEQ ID NO:427の配列に対して最大7個のアミノ酸の変化(例えば、1個、2個、3個、4個、5個、6個または7個のアミノ酸の挿入、欠失及び/または置換)を有する配列を含む。いくつかの実施形態では、第2のポリペプチドは、
の配列に対して少なくとも90%の配列同一性(例えば、少なくとも91%、92%、93%、94%、95%、96%、97%、98%、99%、または100%の配列同一性)を有する配列を含む。いくつかの実施形態では、第1のポリペプチドは、SEQ ID NO:428の配列に対して最大16個のアミノ酸の変化(例えば、1個、2個、3個、4個、5個、6個、7個、8個、9個、10個、11個、12個、13個、14個、15個、または16個のアミノ酸の挿入、欠失及び/または置換)を有する配列を含む。
に対して少なくとも90%の配列同一性(例えば、少なくとも91%、92%、93%、94%、95%、96%、97%、98%、99%、または100%の配列同一性)または最大5個のアミノ酸の変化(例えば、1個、2個、3個、4個、または5個のアミノ酸の挿入、欠失及び/または置換)を有する配列、またはそのフラグメントを更に含む。いくつかの実施形態では、第2のポリペプチドはC末端において、配列
に対して少なくとも90%の配列同一性(例えば、少なくとも91%、92%、93%、94%、95%、96%、97%、98%、99%、または100%の配列同一性)または最大5個のアミノ酸の変化(例えば、1個、2個、3個、4個、または5個のアミノ酸の挿入、欠失及び/または置換)を有する配列、またはそのフラグメントを更に含む。いくつかの実施形態では、第1のポリペプチドはN末端において、配列
に対して少なくとも90%の配列同一性(例えば、少なくとも91%、92%、93%、94%、95%、96%、97%、98%、99%、または100%の配列同一性)または最大5個のアミノ酸の変化(例えば、1個、2個、3個、4個、または5個のアミノ酸の挿入、欠失及び/または置換)を有する配列、またはそのフラグメントを更に含む。いくつかの実施形態では、第2のポリペプチドはN末端において、配列
に対して少なくとも90%の配列同一性(例えば、少なくとも91%、92%、93%、94%、95%、96%、97%、98%、99%、または100%の配列同一性)または最大5個のアミノ酸の変化(例えば、1個、2個、3個、4個、または5個のアミノ酸の挿入、欠失及び/または置換)を有する配列、またはそのフラグメントを更に含む。
に対して少なくとも90%の配列同一性(例えば、少なくとも91%、92%、93%、94%、95%、96%、97%、98%、99%、または100%の配列同一性)または最大10個のアミノ酸の変化(例えば、1個、2個、3個、4個、5個、6個、7個、8個、9個、または10個のアミノ酸の挿入、欠失及び/または置換)を有する配列を含む。特定の実施形態では、第2のポリペプチドは、配列
に対して少なくとも90%の配列同一性(例えば、少なくとも91%、92%、93%、94%、95%、96%、97%、98%、99%、または100%の配列同一性)または最大20個のアミノ酸の変化(例えば、1個、2個、3個、4個、5個、6個、7個、8個、9個、10個、11個、12個、13個、14個、15個、16個、17個、18個、19個、または20個のアミノ酸の挿入、欠失及び/または置換)を有する配列を含む。
の配列を有する第1のポリペプチドと、
の配列を有する第2のポリペプチドとを含み、第1のポリペプチドのC末端は第2のポリペプチドのN末端に融合される。
I.序論
本発明では、血液脳関門(BBB)を通過して能動的に輸送され得るポリペプチドについて開示する。一態様では、本発明は、Fc領域内の特定のアミノ酸の組を改変することで血液脳関門受容体に結合することが可能なFcポリペプチドを作製することができるという発見に一部基づいたものである。本明細書に開示されるFcポリペプチドは、新生児Fc受容体(FcRn)に更に結合する。脳への送達が効果的である障害及び疾患を治療するためにこれらのポリペプチドを用いて治療剤(例えば、治療用ポリペプチド、抗体可変領域、及び小分子)を輸送することができる。本明細書では、単量体のTfRアピカルドメインまたは完全長のTfR配列に対して環状に並べ替えられたTfRアピカルドメインの1つ以上の部分を含むトランスフェリン受容体(TfR)コンストラクトについても記載する。TfRコンストラクトは、任意選択的なリンカーによって互いに直列に融合されたTfRアピカルドメインの2つの異なる部分で構成することができる。本明細書に記載されるTfRコンストラクトは、アレナウイルス(例えば、マチュポウイルス)に結合することができる。
本明細書で使用される単数形「a」、「an」、及び「the」には、内容によってそうでない旨が明確に示されない限り、複数の指示対象が含まれる。したがって、例えば、「ポリペプチド」と言った場合、2つ以上のそのような分子を含み得る、といった具合である。
一態様において、本明細書では、血液脳関門(BBB)受容体に結合し、BBBを通過して輸送されることが可能な改変ポリペプチドが提供される。BBB受容体はBBBの内皮、ならびに他の種類の細胞及び組織で発現する。BBB受容体への改変ポリペプチドの結合は、ポリペプチドの内在化を開始させ、BBBを通過して輸送することができる。かかる受容体としては、これらに限定されるものではないが、トランスフェリン受容体(TfR)、インスリン受容体、インスリン様成長因子受容体(IGF−R)、低密度リポタンパク質受容体(LDLR)、低密度リポタンパク質受容体関連タンパク質1(LRP1)、低密度リポタンパク質受容体関連タンパク質2(LRP2)、低密度リポタンパク質受容体関連タンパク質8(LRP8)、GLUT1、バシギン、ジフテリア毒素受容体、ヘパリン結合性上皮成長因子様成長因子(HB−EGF)の膜結合前駆体、メラノトランスフェリン、及びバソプレシン受容体が挙げられる。いくつかの実施形態では、BBB受容体はTfRまたはIGF−Rである。
特定の実施形態では、BBBを通過して輸送されることが可能な本明細書で提供されるポリペプチドは、BBB受容体結合部位を有するように改変された(例えば、天然Fcポリペプチドに対して1個以上のアミノ酸置換により)Fcポリペプチドを含む。特定の実施形態では、置換は、溶媒露出アミノ酸の置換である。溶媒露出アミノ酸とは、ポリペプチドがインビボで機能する水性の生理学的液体環境と接触可能なポリペプチドの表面または表面に近いアミノ酸のことを指す。通常、溶媒露出残基では、側鎖の50%よりも大きな部分が溶媒と接触するが、場合によっては側鎖の50%未満、例えば25%〜49%が露出している。溶媒露出アミノ酸としては、βシート、αヘリックス、及び/またはループ内に存在するものが挙げられる。
BBBを通過して輸送されることが可能な本発明のポリペプチドは、FcRn結合部位を更に含む。いくつかの実施形態では、FcRn結合部位は、改変Fcポリペプチドまたはそのフラグメント内にある。
このセクションでは、血液脳関門(BBB)受容体に結合し、トランスフェリン受容体を例示的なBBB受容体として用いてBBBを通過して輸送されることが可能な、本発明に基づく改変Fcポリペプチドの作製について述べる。
いくつかの実施形態では、改変されるドメインはIgGのCH3ドメインのようなヒトIgのCH3ドメインである。CH3ドメインは、いずれのIgGのサブタイプ、すなわち、IgG1、IgG2、IgG3、またはIgG4から得られるものであってもよい。IgG抗体との関連において、CH3ドメインとは、EU番号付けスキームに従って番号付けした場合に、約341位〜約447位までのアミノ酸のセグメントのことを指す。トランスフェリン受容体結合のための対応するアミノ酸位置の組を特定する目的でのCH3ドメイン内の位置は、特に指定されない限り、SEQ ID NO:3を基準として決められるか、またはSEQ ID NO:1のアミノ酸114〜220を基準として決められる。置換もまた、SEQ ID NO:1を基準として決められ、すなわち、あるアミノ酸は、SEQ ID NO:1の対応する位置のアミノ酸に対して置換であるとみなされる。SEQ ID NO:1は、部分的なヒンジ領域の配列であるPCPをアミノ酸1〜3として含んでいる。SEQ ID NO:1を基準としたCH3ドメイン内の位置の番号付けは、これらの最初の3個のアミノ酸を含む。
いくつかの実施形態では、本発明に基づく改変CH3ドメインポリペプチドは、157位、159位、160位、161位、162位、163位、186位、189位、及び194位(組i)を含むアミノ酸位置の組に少なくとも3個または少なくとも4個、一般的には5個、6個、7個、8個、または9個の置換を含む。これらの位置に導入することができる例示的な置換を表6に示す。いくつかの実施形態では、161及び/または194位のアミノ酸は芳香族アミノ酸(例えば、Trp、Phe、またはTyr)である。いくつかの実施形態では、161位のアミノ酸はTrpである。いくつかの実施形態では、161位のアミノ酸はGlyである。いくつかの実施形態では、194位の芳香族アミノ酸はTrpまたはPheである。
いくつかの実施形態では、本発明に基づく改変CH3ドメインポリペプチドは、118位、119位、120位、122位、210位、211位、212位、及び213位(組ii)を含むアミノ酸位置の組に少なくとも3個または少なくとも4個、一般的には5個、6個、7個、または8個の置換を含む。これらの位置に導入することができる例示的な置換を表5に示す。いくつかの実施形態では、改変CH3ドメインポリペプチドは、210位にGlyを、211位にPheを、及び/または213位にAspを含む。いくつかの実施形態では、213位にGluが存在してよい。特定の実施形態では、改変CH3ドメインポリペプチドは、以下の位置に少なくとも1つの置換を含む。すなわち、118位にPheまたはIle、119位にAsp、Glu、Gly、Ala、またはLys、120位にTyr、Met、Leu、Ile、またはAsp、122位にThrまたはAla、210位にGly、211位にPhe、212位にHis、Tyr、Ser、またはPhe、または213位にAsp。いくつかの実施形態では、118、119、120、122、210、211、212、及び213位のうちの2つ、3つ、4つ、5つ、6つ、7つ、または8つすべてがこのパラグラフで指定される置換を有する。いくつかの実施形態では、改変CH3ドメインポリペプチドは、上記の組の中の位置の1つ以上において特定のアミノ酸の保存的置換、例えば、同じ電荷に基づくグループ分け、疎水性に基づくグループ分け、側鎖の環構造に基づくグループ分け(例えば、芳香族アミノ酸)、またはサイズに基づくグループ分け、及び/または極性かまたは非極性かによるグループ分けの中のアミノ酸を含むことができる。
いくつかの実施形態では、改変されるドメインはIgGのCH2ドメインのようなヒトIgのCH2ドメインである。CH2ドメインは、いずれのIgGのサブタイプ、すなわち、IgG1、IgG2、IgG3、またはIgG4から得られるものであってもよい。IgG抗体との関連において、CH2ドメインとは、EU番号付けスキームに従って番号付けした場合に、約231位〜約340位までのアミノ酸のセグメントのことを指す。トランスフェリン受容体結合のための対応するアミノ酸位置の組を特定する目的でのCH2ドメイン内の位置は、SEQ ID NO:2を基準として決められるか、またはSEQ ID NO:1のアミノ酸4〜113を基準として決められる。置換もまた、SEQ ID NO:1を基準として決められ、すなわち、あるアミノ酸は、SEQ ID NO:1の対応する位置のアミノ酸に対して置換であるとみなされる。SEQ ID NO:1は、部分的なヒンジ領域の配列であるPCPをアミノ酸1〜3として含んでいる。これら3個の残基はFc領域の一部ではないが、SEQ ID NO:1を基準としたCH2ドメイン内の位置の番号付けは、これらの最初の3個のアミノ酸を含む。
いくつかの実施形態では、本発明に基づく改変CH2ドメインポリペプチドは、47位、49位、56位、58位、59位、60位、61位、62位、及び63位(組iii)を含むアミノ酸位置の組に少なくとも3個または少なくとも4個、一般的には5個、6個、7個、8個、または9個の置換を含む。これらの位置に導入することができる例示的な置換を表1に示す。いくつかの実施形態では、改変CH2ドメインポリペプチドは、60位にGluを、及び/または61位にTrpを含む。いくつかの実施形態では、改変CH2ドメインポリペプチドは、以下の位置の少なくとも1つの置換、すなわち、47位にGlu、Gly、Gln、Ser、Ala、Asn、Tyr、またはTrp、49位にIle、Val、Asp、Glu、Thr、Ala、またはTyr、56位にAsp、Pro、Met、Leu、Ala、Asn、またはPhe、58位にArg、Ser、Ala、またはGly、59位にTyr、Trp、Arg、またはVal、60位にGlu、61位にTrpまたはTyr、62位にGln、Tyr、His、Ile、Phe、Val、またはAsp、または、63位にLeu、Trp、Arg、Asn、Tyr、またはValを含む。いくつかの実施形態では、47位、49位、56位、58位、59位、60位、61位、62位、及び63位のうちの2つ、3つ、4つ、5つ、6つ、7つ、8つ、または9つすべてがこのパラグラフで指定される置換を有する。いくつかの実施形態では、改変CH2ドメインポリペプチドは、上記の組の中の位置の1つ以上において特定のアミノ酸の保存的置換、例えば、同じ電荷に基づくグループ分け、疎水性に基づくグループ分け、側鎖の環構造に基づくグループ分け(例えば、芳香族アミノ酸)、またはサイズに基づくグループ分け、及び/または極性かまたは非極性かによるグループ分けの中のアミノ酸を含むことができる。
いくつかの実施形態では、本発明に基づく改変CH2ドメインポリペプチドは、39位、40位、41位、42位、43位、44位、68位、70位、71位、及び72位(組iv)を含むアミノ酸位置の組に少なくとも3個または少なくとも4個、一般的には5個、6個、7個、8個、9個、または10個の置換を含む。これらの位置に導入することができる例示的な置換を表2に示す。いくつかの実施形態では、改変CH2ドメインポリペプチドは、43位にProを、68位にGluを、及び/または70位にTyrを含む。いくつかの実施形態では、改変CH2ドメインポリペプチドは、以下の位置の少なくとも1つの置換、すなわち、39位のPro、Phe、Ala、Met、またはAsp、40位のGln、Pro、Arg、Lys、Ala、Ile、Leu、Glu、Asp、またはTyr、41位のThr、Ser、Gly、Met、Val、Phe、Trp、またはLeu、42位のPro、Val、Ala、Thr、またはAsp、43位のPro、Val、またはPhe、44位のTrp、Gln、Thr、またはGlu、68位のGlu、Val、Thr、Leu、またはTrp、70位のTyr、His、Val、またはAsp、71位のThr、His、Gln、Arg、Asn、またはVal、または72位のTyr、Asn、Asp、Ser、またはProを含む。いくつかの実施形態では、39位、40位、41位、42位、43位、44位、68位、70位、71位、及び72位のうちの2つ、3つ、4つ、5つ、6つ、7つ、8つ、9つ、または10個すべてがこのパラグラフで指定される置換を有する。いくつかの実施形態では、改変CH2ドメインポリペプチドは、上記の組の中の位置の1つ以上において特定のアミノ酸の保存的置換、例えば、同じ電荷に基づくグループ分け、疎水性に基づくグループ分け、側鎖の環構造に基づくグループ分け(例えば、芳香族アミノ酸)、またはサイズに基づくグループ分け、及び/または極性かまたは非極性かによるグループ分けの中のアミノ酸を含むことができる。
いくつかの実施形態では、本発明に基づく改変CH2ドメインポリペプチドは、41位、42位、43位、44位、45位、65位、66位、67位、69位、及び73位(組v)を含むアミノ酸位置の組に少なくとも3個または少なくとも4個、一般的には5個、6個、7個、8個、9個、または10個の置換を含む。これらの位置に導入することができる例示的な置換を表3に示す。いくつかの実施形態では、改変CH2ドメインポリペプチドは、以下の位置の少なくとも1つの置換、すなわち、41位のValまたはAsp、42位のPro、Met、またはAsp、43位のProまたはTrp、44位のArg、Trp、Glu、またはThr、45位のMet、Tyr、またはTrp、65位のLeuまたはTrp、66位のThr、Val、Ile、またはLys、67位のSer、Lys、Ala、またはLeu、69位のHis、Leu、またはPro、または、73位のValまたはTrpを含む。いくつかの実施形態では、41位、42位、43位、44位、45位、65位、66位、67位、69位、及び73位のうちの2つ、3つ、4つ、5つ、6つ、7つ、8つ、9つ、または10個すべてがこのパラグラフで指定される置換を有する。いくつかの実施形態では、改変CH2ドメインポリペプチドは、上記の組の中の位置の1つ以上において特定のアミノ酸の保存的置換、例えば、同じ電荷に基づくグループ分け、疎水性に基づくグループ分け、側鎖の環構造に基づくグループ分け(例えば、芳香族アミノ酸)、またはサイズに基づくグループ分け、及び/または極性かまたは非極性かによるグループ分けの中のアミノ酸を含むことができる。
いくつかの実施形態では、本発明に基づく改変CH2ドメインポリペプチドは、45位、47位、49位、95位、97位、99位、102位、103位、及び104位(組vi)を含むアミノ酸位置の組に少なくとも3個または少なくとも4個、一般的には5個、6個、7個、8個、または9個の置換を含む。これらの位置に導入することができる例示的な置換を表4に示す。いくつかの実施形態では、改変CH2ドメインポリペプチドは、103位にTrpを含む。いくつかの実施形態では、改変CH2ドメインポリペプチドは、以下の位置に少なくとも1つの置換、すなわち、45位にTrp、Val、Ile、またはAla;47位にTrpまたはGly;49位にTyr、Arg、またはGlu;95位にSer、Arg、またはGln;97位にVal、Ser、またはPhe;99位にIle、Ser、またはTrp;102位にTrp、Thr、Ser、Arg、またはAsp;103位にTrp;及び、104位にSer、Lys、Arg、またはValを含む。いくつかの実施形態では、45、47、49、95、97、99、102、103、及び104位のうちの2つ、3つ、4つ、5つ、6つ、7つ、8つ、または9つすべてがこのパラグラフで指定される置換を有する。いくつかの実施形態では、改変CH2ドメインポリペプチドは、上記の組の中の位置の1つ以上において特定のアミノ酸の保存的置換、例えば、同じ電荷に基づくグループ分け、疎水性に基づくグループ分け、側鎖の環構造に基づくグループ分け(例えば、芳香族アミノ酸)、またはサイズに基づくグループ分け、及び/または極性かまたは非極性かによるグループ分けの中のアミノ酸を含むことができる。
BBB受容体を結合してBBBを通過する輸送を開始するように改変された、本明細書で提供されるFcポリペプチドは、例えば、血清安定性を高めるため、エフェクター機能を調節するため、グリコシル化に影響を及ぼすため、ヒトにおける免疫原性を低下させるため、及び/または、Fcポリペプチドのノブ・アンド・ホール型のヘテロ二量化を可能とするためなど、更なる変異を含んでもよい。
いくつかの実施形態では、本明細書に記載される改変Fcポリペプチドは、エフェクター機能を有する(すなわち、これらのFc領域は、エフェクター機能を媒介するエフェクター細胞で発現されたFc受容体に結合する際に特定の生物学的機能を誘導する能力を有する)。エフェクター細胞としては、これらに限定されるものではないが、単核球、マクロファージ、好中球、樹状細胞、好酸球、マスト細胞、血小板、B細胞、大顆粒リンパ球、ランゲルハンス細胞、ナチュラルキラー(NK)細胞、及び細胞傷害性T細胞が挙げられる。
本明細書に記載される改変Fcポリペプチド(例えば、クローンCH3C.35.20.1、CH3C.35.23.2、CH3C.35.23.3、CH3C.35.23.4、CH3C.35.21.17.2、CH3C.35.23のうちのいずれか1つ)は、ノブ変異(例えば、SEQ ID NO:1を基準として番号付けした場合のT139W)、ホール変異(例えば、SEQ ID NO:1を基準として番号付けした場合のT139S、L141A、及びY180V)、エフェクター機能を調節する変異(例えば、SEQ ID NO:1を基準として番号付けした場合のL7A、L8A、及び/またはP102G(例えば、L7A及びL8A))、及び/または血清安定性を高める変異(例えば、(i)SEQ ID NO:1を基準として番号付けした場合のM25Y、S27T、及びT29E、または(ii)SEQ ID NO:1を基準として番号付けした場合の、M201Lを伴うかまたは伴わないN207S)を含む更なる変異を含むことができる。
いくつかの実施形態では、クローンCH3C.35.20.1は、ノブ変異(例えば、SEQ ID NO:1を基準として番号付けした場合のT139W)、及びSEQ ID NO:349の配列と少なくとも85%の同一性、少なくとも90%の同一性、または少なくとも95%の同一性を有することができる。いくつかの実施形態では、ノブ変異を有するクローンCH3C.35.20.1は、SEQ ID NO:349の配列を有する。
いくつかの実施形態では、クローンCH3C.35.23.2は、ノブ変異(例えば、SEQ ID NO:1を基準として番号付けした場合のT139W)、及びSEQ ID NO:361の配列と少なくとも85%の同一性、少なくとも90%の同一性、または少なくとも95%の同一性を有することができる。いくつかの実施形態では、ノブ変異を有するクローンCH3C.35.23.2は、SEQ ID NO:361の配列を有する。
いくつかの実施形態では、クローンCH3C.35.23.3は、ノブ変異(例えば、SEQ ID NO:1を基準として番号付けした場合のT139W)、及びSEQ ID NO:373の配列と少なくとも85%の同一性、少なくとも90%の同一性、または少なくとも95%の同一性を有することができる。いくつかの実施形態では、ノブ変異を有するクローンCH3C.35.23.3は、SEQ ID NO:373の配列を有する。
いくつかの実施形態では、クローンCH3C.35.23.4は、ノブ変異(例えば、SEQ ID NO:1を基準として番号付けした場合のT139W)、及びSEQ ID NO:385の配列と少なくとも85%の同一性、少なくとも90%の同一性、または少なくとも95%の同一性を有することができる。いくつかの実施形態では、ノブ変異を有するクローンCH3C.35.23.4は、SEQ ID NO:385の配列を有する。
いくつかの実施形態では、クローンCH3C.35.21.17.2は、ノブ変異(例えば、SEQ ID NO:1を基準として番号付けした場合のT139W)、及びSEQ ID NO:397の配列と少なくとも85%の同一性、少なくとも90%の同一性、または少なくとも95%の同一性を有することができる。いくつかの実施形態では、ノブ変異を有するクローンCH3C.35.21.17.2は、SEQ ID NO:397の配列を有する。
いくつかの実施形態では、クローンCH3C.35.23は、ノブ変異(例えば、SEQ ID NO:1を基準として番号付けした場合のT139W)、及びSEQ ID NO:409の配列と少なくとも85%の同一性、少なくとも90%の同一性、または少なくとも95%の同一性を有することができる。いくつかの実施形態では、ノブ変異を有するクローンCH3C.35.23は、SEQ ID NO:409の配列を有する。
いくつかの実施形態では、本明細書に記載される改変Fcポリペプチド及びFcRn結合部位を含む本発明の改変BBB受容体結合ポリペプチドは、タンパク質二量体のサブユニットである。いくつかの実施形態では、二量体はヘテロ二量体である。いくつかの実施形態では、二量体はホモ二量体である。いくつかの実施形態では、二量体は、BBB受容体に結合する1個のFcポリペプチドを含む(すなわちBBB受容体との結合について一価である)。いくつかの実施形態では、二量体は、BBB受容体に結合する第2のポリペプチドを含む。第2のポリペプチドは二価のホモ二量体タンパク質を与えるように同じ改変Fcポリペプチドを含むものでもよく、または本発明の第2の改変Fcポリペプチドが第2のBBB受容体結合部位を与えてもよい。
いくつかの実施形態では、BBBの受容体に結合してBBBを通過する輸送を開始する改変ポリペプチドは、本明細書に記載される改変Fcポリペプチドを含み、部分的または完全なヒンジ領域を更に含む。ヒンジ領域は、いずれの免疫グロブリンサブクラスまたはアイソタイプからのものであってもよい。例示的な免疫グロブリンのヒンジの1つとして、IgG1のヒンジ領域(例えば、ヒトIgG1のヒンジのアミノ酸配列EPKSCDKTHTCPPCP(SEQ ID NO:234))などのIgGヒンジ領域がある。更なる実施形態では、ヒンジまたは部分的なヒンジ領域を含むことができるポリペプチドを、別の部分、例えば免疫グロブリンの可変領域と更に連結することにより、BBB受容体結合ポリペプチド−可変領域融合ポリペプチドが作製される。可変領域は、対象となる任意の抗原、例えば治療用の神経学的標的、または診断用の神経学的標的と結合することができる。
操作方法の概略
更なる態様では、BBB受容体に対する結合特異性を有するようにFcポリペプチドを操作する方法を提供する。いくつかの実施形態では、Fcポリペプチドの改変は、溶媒露出アミノ酸残基の組、例えば、本明細書で述べたような組(i)及び/または組(ii)の様々なアミノ酸を置換することを含む。
野生型Fcポリペプチド、またはそのフラグメント、例えばCH2またはCH3ドメインを有するDNA鋳型配列を作製することができる。いくつかの実施形態では、変異を導入した鋳型配列は、抗体可変領域を更にコードする。いくつかの実施形態では、鋳型配列は、所望の位置に変異を導入し、抗体可変領域なしで発現されるFCポリペプチドをコードする。
本開示は、単量体のTfRアピカルドメインを含む単離された組換えトランスフェリン受容体(TfR)コンストラクトであって、TfRのプロテアーゼ様ドメインまたは螺旋ドメインを含まないコンストラクトも特色とする。一実施形態では、コンストラクトは、保存されたエピトープまたは抗原を提示し、かつ/または天然のヒトTfRのアピカルドメインのおよその3次元構造を保持するか、もしくは約2未満のRMSDを有する。一実施形態では、3次元構造は、X線結晶解析によって測定される。一実施形態では、コンストラクトは、ヒトTfRアピカルドメインを含む。
の配列に対して少なくとも90%の配列同一性(例えば、少なくとも91%、92%、93%、94%、95%、96%、97%、98%、99%、または100%の配列同一性)を有する配列を含む第1のポリペプチドと、任意選択的なリンカーと、
の配列に対して少なくとも90%の配列同一性(例えば、少なくとも91%、92%、93%、94%、95%、96%、97%、98%、99%、または100%の配列同一性)を有する配列を含む第2のポリペプチドと、を含んでよく、第1のポリペプチド、任意選択的なリンカー、及び第2のポリペプチドは直列に融合されている。
に対して少なくとも90%の配列同一性(例えば、少なくとも91%、92%、93%、94%、95%、96%、97%、98%、99%、または100%の配列同一性)を有する配列、またはそのフラグメントを更に含む。非限定的な例として、第1のポリペプチドのC末端のフラグメントは、配列
を有する。いくつかの実施形態では、第1のポリペプチドはN末端において、配列
に対して少なくとも90%の配列同一性(例えば、少なくとも91%、92%、93%、94%、95%、96%、97%、98%、99%、または100%の配列同一性)を有する配列、またはそのフラグメントを更に含む。非限定的な例として、第1のポリペプチドのN末端のフラグメントは、配列
を有する。
に対して少なくとも90%の配列同一性(例えば、少なくとも91%、92%、93%、94%、95%、96%、97%、98%、99%、または100%の配列同一性)を有する配列、またはそのフラグメントを更に含む。非限定的な例として、第2のポリペプチドのC末端のフラグメントは、配列
を有する。いくつかの実施形態では、第2のポリペプチドはN末端において、配列
に対して少なくとも90%の配列同一性(例えば、少なくとも91%、92%、93%、94%、95%、96%、97%、98%、99%、または100%の配列同一性)を有する配列、またはそのフラグメントを更に含む。非限定的な例として、第2のポリペプチドのN末端のフラグメントは、配列
を有する。
に対して少なくとも90%の配列同一性(例えば、少なくとも91%、92%、93%、94%、95%、96%、97%、98%、99%、または100%の配列同一性)を有する配列を含む。いくつかの実施形態では、第2のポリペプチドは、配列
に対して少なくとも90%の配列同一性(例えば、少なくとも91%、92%、93%、94%、95%、96%、97%、98%、99%、または100%の配列同一性)を有する配列を含む。特定の実施形態では、TfRコンストラクトは、SEQ ID NO:449の配列を有する第1のポリペプチドと、SEQ ID NO:450の配列を有する第2のポリペプチドとを含み、第1のポリペプチドのC末端は第2のポリペプチドのN末端に融合される。特定の実施形態では、TfRコンストラクトは、
の配列を有する第1のポリペプチドと、
の配列を有する第2のポリペプチドとを含み、第1のポリペプチドのC末端は第2のポリペプチドのN末端に融合される。
本開示の別の態様は、単量体のTfRアピカルドメインを含む単離された組換えトランスフェリン受容体(TfR)コンストラクトであって、TfRのプロテアーゼ様ドメインまたは螺旋ドメインを含まないコンストラクトに関する。一実施形態では、コンストラクトは、保存されたエピトープまたは抗原を提示し、かつ/または天然のヒトTfRのアピカルドメイン(例えば、SEQ ID NO:107)のおよその3次元構造を保持するか、もしくは約2未満のRMSDを有する。別の実施形態では、3次元構造は、X線結晶解析によって測定される。3次元構造を決定するために用いられる方法の1つにX線結晶解析がある。結晶は、例えば20%(v/v)エチレングリコールのような極性溶媒を添加した結晶化母液を用いて液体窒素中に直接浸漬することによるフラッシュ冷却を用いて調製することができる。X線強度データは、高速検出器(Rayonix300)を使用してAPS(advanced photon source)(Advanced Photon Source,Argonne National LaboratoryのSER−CATビーム線)で収集することができる。収集されたデータは、HKL−2000(HKL Research,Inc.)プログラムを用いてインデックス付けし、積分し、スケーリングすることができる。複合体の結晶構造は、TfRアピカルドメイン単量体を初期探索モデルとして用いてPHASERによる分子置換により決定することができる。次いで、このモデルを、REFMACを用いて剛体精密化に続いて制限精密化を行って精密化することができる。結晶学的計算はすべて、CCP4プログラムのスイートを用いて行うことができる(Winn et al.,Acta.Cryst.D67:235−242(2011))。電子密度への複合体のモデル構築は、グラフィックプログラムCOOT を使用して行うことができる(Emsley et al.,Acta.Cryst.D66:486−501(2010))。
TfRコンストラクト内の2個のポリペプチド間のリンカーは、1〜10個のアミノ酸(例えば、1〜8個、1〜6個、1〜4個、または1個もしくは2個のアミノ酸、例えば、1、2、3、4、5、6、7、8、9、または10個のアミノ酸)を含むことができる。適当なリンカーとしては、例えば、グリシン及びセリンのような柔軟なアミノ酸残基を含むリンカーが挙げられる。リンカーの例としては、これらに限定されるものではないが、
が挙げられる。
TfRコンストラクトは、例えば、細胞(例えば、哺乳動物細胞などの真核細胞)内で発現される場合にコンストラクトの分泌を生じさせるシグナルペプチドなどのシグナルペプチドを更に含むことができる。当該技術分野では周知のいずれのシグナルペプチド(例えば、
)も本明細書に記載されるTfRコンストラクトと組み合わせて使用することができる。シグナルペプチドは、適宜、コンストラクトのN末端またはC末端に結合させることができる。
TfRコンストラクトは、例えば全細胞ライセート混合物からのTfRコンストラクトの精製及び単離を促進する1つ以上の精製ペプチドを含んでもよい。いくつかの実施形態では、精製ペプチドは、精製ペプチドに対して特異的親和性を有する別の部分と結合する。いくつかの実施形態では、精製ペプチドに特異的に結合するかかる部分は、マトリクス、樹脂、またはアガロースビーズなどの固体支持体に結合される。TfRコンストラクトと融合することができる精製ペプチドの例としては、これらに限定されるものではないが、ヒスチジンペプチド、Aviタグ、FLAGペプチド、mycペプチド、及びヘマグルチニン(HA)ペプチドが挙げられる。ヒスチジンペプチド(HHHHHH(SEQ ID NO:459)またはHHHHHHHHHH(SEQ ID NO:460))は、マイクロモル濃度の親和性でニッケル官能化アガロース親和性カラムに結合する。Aviタグ(GLNDIFEAQKIEWHE(SEQ ID NO:461))は、酵素BirAによりビオチン化することができる。次いでビオチン化したAviタグはストレプトアビジンに結合し、精製を行うことができる。いくつかの実施形態では、FLAGペプチドは、配列DYKDDDDK (SEQ ID NO:462)を有する。いくつかの実施形態では、mycペプチドは、配列EQKLISEEDL(SEQ ID NO:463)を有する。いくつかの実施形態では、HAペプチドは、配列YPYDVPDYA (SEQ ID NO:464)を有する。
切断ペプチドとは、特定のプロテアーゼにより認識されて切断され得るアミノ酸配列のことを指す。例えば、切断ペプチドを精製ペプチドとTfRコンストラクトの残りの部分との間に配置することにより、TfRコンストラクトが発現及び精製された後、切断ペプチドを切断して精製ペプチドを除去することができる。プロテアーゼが切断ペプチドに近接すると、プロテアーゼは切断ペプチドを認識して切断(すなわちペプチド主鎖の加水分解により)する。プロテアーゼ及び切断ペプチドのペアの例としては、これらに限定されるものではないが、ユビキチン様特異的プロテアーゼ1(Ulp1)及びその切断配列であるSmt3
、タバコエッチウイルス核封入体A(TEV)プロテアーゼ及びその切断配列であるENLYFQS(SEQ ID NO:466)、ならびにC型肝炎ウイルスの非構造タンパク質3プロテアーゼドメイン(NS3 HCV)及びその切断配列であるDEMEECSQ(SEQ ID NO:467)が挙げられる。
本明細書に記載される改変BBB受容体結合ポリペプチド及びTfRコンストラクトは、通常は組換え法を用いて調製される。したがって、いくつかの態様において、本発明は、本明細書に記載される改変FcポリペプチドまたはTfRコンストラクトのいずれかを含むポリペプチドのいずれかをコードする核酸配列を含む単離核酸、及び該ポリペプチドをコードする核酸を複製し、及び/または該ポリペプチドまたはTfRコンストラクトを発現させるために使用される核酸が導入された宿主細胞を提供するものである。いくつかの実施形態では、宿主細胞は、真核細胞、例えばヒト細胞である。
本発明に基づくBBB受容体結合ポリペプチドは、多くの適応症で治療的に使用することができる。いくつかの実施形態では、BBB受容体結合ポリペプチドは、BBB受容体を発現する標的細胞型に治療剤を送達するために使用される。典型的な実施形態では、BBB受容体結合ポリペプチドは、治療成分を、脳によって取り込まれるように例えば血液脳関門のような内皮を通過して輸送するために使用することができる。
別の態様では、本発明に基づくBBB受容体結合ポリペプチドを含む医薬組成物及びキットが提供される。
本発明で使用するための製剤を調製するためのガイダンスは、当業者には周知の医薬品及び製剤用の任意の数のハンドブックにみることができる。
いくつかの実施形態では、本明細書に記載されるBBB受容体結合ポリペプチドを含むキットが提供される。いくつかの実施形態では、キットは、脳または中枢神経系(CNS)の疾患などの神経疾患の予防または治療に使用される。
本発明を、特定の実施例によってより詳細に説明する。以下の実施例はあくまで例示の目的で示されるものにすぎず、本発明をいかなる形でも限定しようとするものではない。当業者には、実質的に同じ結果を生じるように変更または改変することができる様々な重要でないパラメータが容易に認識されよう。用いられる数値(例えば、量、温度など)に関して精度を確実とするべく努力に努めてはいるが、ある程度の実験的誤差及び偏差は存在し得る。本発明の実施では、特に断らない限りは、当該技術分野の技術の範囲内で、タンパク質化学、生化学、組換えDNA技術、及び薬理学の従来の方法を用いている。かかる技術は文献に充分な説明がなされている。更に、当業者には、特定のライブラリーに適用される操作の方法は、本明細書に記載される他のライブラリーにも適用できることが明らかなはずである。
トランスフェリン受容体(TfR)細胞外ドメイン(ECD)をコードするDNA(ヒト(SEQ ID NO:235)またはカニクイザル(SEQ ID NO:300)TfRの残基121〜760)を、C末端の切断可能なHis及びAviタグを有する哺乳動物発現ベクターにクローニングした。このプラスミドをHEK293細胞にトランスフェクトし、発現させた。細胞外ドメインをNi−NTAクロマトグラフィーを用いて回収した上清から精製した後、サイズ排除クロマトグラフィーにより凝集タンパク質を除去した。収率は培養物1L当たり約5mgであった。タンパク質を10mM K3PO4(pH6.7)、100mM KCl、100mM NaCl、及び20%グリセロール中で保存し、−20℃で凍結した。
本実施例は、本明細書のポリペプチドの設計、作製、及び特性分析について述べる。本実施例の目的、及びクローン配列において同じであるアミノ酸同士を比較する目的で、「保存的」変異とは、特定されたクローンのすべてに生じるものとみなされる(保存的アミノ酸置換ではない)のに対し、「半保存的」変異とは、クローンの50%超において生じるものである。
改変を行うための特定の溶媒露出表面パッチを選択し、選択されたパッチのアミノ酸組成をランダム化によって変化させた表面提示ライブラリーを構築し、次に標準的な発現提示技術を用いて表面に提示された配列変異体を所望の機能性についてスクリーニングすることにより、新たな分子認識手段をポリペプチドFc領域に組み込んだ。本明細書で使用するところの「ランダム化」なる用語には、部分ランダム化及び所定のヌクレオチドまたはアミノ酸混合比での配列変化が含まれる。ランダム化を行うために選択される一般的な表面露出パッチは、約600〜1500Å2の面積を有し、アミノ酸約7〜15個で構成されるものとした。
以下の各レジスターは、本明細書に記載される方法に従って設計及び作製した。本明細書で使用するところの「レジスター」なる用語は、変化させることが可能な(例えば、レジスター内の列記された位置におけるアミノ酸の置換、挿入、及び/または欠失を生じるペプチドコーディング遺伝子配列への変異の導入により)連続表面を形成する一連の表面露出アミノ酸残基のことを指す。
CH2A2レジスター(表1)は、SEQ ID NO:1に記載されるヒトIgG1のFc領域のアミノ酸配列を基準として番号付けした場合にアミノ酸位置47、49、56、58、59、60、61、62、及び63を含むものであった。CH2A2レジスターは、βシートに沿った表面、隣接した捻れ、及びこれに続くループを形成するように設計した。CH2A2レジスターは、FcγR及びFcRn結合部位から効果的に取り除かれる。
CH2Cレジスター(表2)は、SEQ ID NO:1に記載されるヒトIgG1のFc領域のアミノ酸配列を基準として番号付けした場合にアミノ酸位置39、40、41、42、43、44、68、70、71、及び72を含むものであった。CH2Cレジスターは、ヒンジの近くの一連のループに沿った、CH2領域のFcγR結合部位に近接した溶媒露出残基を用いている。
CH2Dレジスター(表3)は、SEQ ID NO:1に記載されるヒトIgG1のFc領域のアミノ酸配列を基準として番号付けした場合にアミノ酸位置41、42、43、44、45、65、66、66、69、及び73を含むものであった。CH2Dレジスターは、CH2Cレジスターと似ており、CH2領域の上部の一連のループに沿った、FcγR結合部位に近接した溶媒露出残基を用いている。CH2CとCH2Dレジスターは主に、1個のループを共有しており、結合に用いられる第2のループが異なっている。
CH2E3レジスター(表4)は、SEQ ID NO:1に記載されるヒトIgG1のFc領域のアミノ酸配列を基準として番号付けした場合にアミノ酸位置45、47、49、95、97、99、102、103、及び104を含むものであった。CH2E3レジスターの各位置はやはりFcγR結合部位の近くにあるが、ループ残基の一部に加えてFcγR結合部位の近くのループに隣接したβシート上の溶媒露出残基も用いている。
このCH3Bレジスター(表5)は、SEQ ID NO:1に記載されるヒトIgG1のFc領域のアミノ酸配列を基準として番号付けした場合にアミノ酸位置118、119、120、122、210、211、212、及び213を含むものであった。CH3Bレジスターは、2個の平行なβシート上の溶媒露出残基、及びCH3領域のC末端の近くのいくつかのそれほど構造化されていない残基で大部分が構成されている。CH3Bレジスターは、FcγR及びFcRn結合部位から離れている。
CH3Cレジスター(表6)は、SEQ ID NO:1に記載されるヒトIgG1のFc領域のアミノ酸配列を基準として番号付けした場合にアミノ酸位置157、159、160、161、162、163、186、189、及び194を含むものであった。CH3Cレジスターの各位置は、いずれもFcγR及びFcRn結合部位から離れている2個のループの溶媒露出残基を含むことにより、連続表面を形成している。
野生型ヒトFc配列(SEQ ID NO:1)をコードする鋳型DNAを合成し、ファージミドベクターに組み込んだ。ファージミドベクターは、ompAまたはpelBリーダー配列、c−Myc及び6xHisエピトープタグに融合されたFcインサート、ならびにアンバー終止コドンに続くM13コートタンパク質pIIIを含むものであった。
野生型ヒトFc配列をコードする鋳型DNAを合成し、酵母ディスプレイベクターに組み込んだ。CH2及びCH3ライブラリーについて、FcポリペプチドをAga2p細胞壁タンパク質上に提示させた。いずれのベクターも、Kex2切断配列を有するプレプロリーダーペプチド、及びFcの末端に融合されたc−Mycエピトープタグを含んでいた。
ファージ法は、Phage Display:A Laboratory Manual(Barbas,2001)より採用した。更なるプロトコールの詳細は、この参照文献より入手することができる。
ヒトTfR標的をMaxiSorp(登録商標)マイクロタイタープレート(通常、1〜10μg/mLのPBS溶液を200μL)に4℃で一晩コーティングした。特に断らない限り、すべての結合は室温で行った。ファージライブラリーを各ウェルに加え、一晩インキュベートして結合を行った。マイクロタイターウェルを0.05%のTween(登録商標)20(PBST)を含むPBSでよく洗い、各ウェルを酸(通常、500mM KCl、または100mM グリシン、pH2.7を含む50mM HCl)と30分間インキュベートとすることにより結合したファージを溶出した。溶出されたファージを1M Tris(pH8)で中和し、TG1細胞及びM13/KO7ヘルパーファージを用いて増幅し、50μg/mLのカルベニシリン及び50μg/mLのカナマイシンを含んだ2YT培地中、37℃で一晩増殖させた。標的の入ったウェルから溶出されたファージの力価を、標的の入っていないウェルから回収されたファージの力価と比較して濃縮度を評価した。次に結合の際のインキュベーション時間を短縮し、洗浄時間及び洗浄の回数を増やすことによって選択のストリンジェンシーを高めた。
ヒトTfRの標的を、NHS−PEG4−ビオチン(Pierce(商標)より入手したもの)を用いて遊離アミンを介してビオチン化した。ビオチン化反応には、3〜5倍モル過剰のビオチン試薬をPBS中で用いた。反応をTrisで停止した後、PBS中に重点的に透析した。ビオチン化された標的をストレプトアビジンでコーティングした磁気ビーズ(すなわち、Thermo Fisherより入手したM280ストレプトアビジンビーズ)上に固定した。ファージディスプレイライブラリーを、標的をコーティングしたビーズと室温で1時間インキュベートした。この後、結合しなかったファージを除去し、ビーズをPBSTで洗浄した。結合したファージを、500mM KCl(または0.1Mグリシン、pH2.7)を含む50mM HClと30分間インキュベートすることにより溶出した後、プレート分取について上記に述べたように中和して、増殖させた。
ビーズ分取(磁気細胞分離(MACS))法
Ackerman,et al.2009 Biotechnol.Prog.25(3),774に記載されるのと同様にしてMACS及びFACS選択を行った。ストレプトアビジン磁気ビーズ(例えば、ThermoFisherより販売されるM−280ストレプトアビジンビーズ)を、ビオチン化標的で標識し、酵母とインキュベートした(通常5〜10xのライブラリー多様性)。結合しなかった酵母を除去し、ビーズを洗浄し、結合した酵母を選択培地中で増殖させ、後の選択のラウンド用に誘導した。
酵母を抗c−Myc抗体で標識して発現及びビオチン化標的(分取ラウンドに応じて濃度が変化する)を監視した。一部の実験では、標的をストレプトアビジン−Alexa Fluor(登録商標)647と予め混合して相互作用のアビディティーを高めた。他の実験では、結合後のビオチン化標的を検出し、ストレプトアビジン−Alexa Fluor(登録商標)647で洗浄した。結合を有するシングレットの酵母をFACS Aria III細胞分取装置を使用して分取した。分取した酵母を選択培地中で増殖させた後、後の選択ラウンド用に誘導した。
ELISAによるスクリーニング
クローンをパニングの結果産物から選択し、96ウェルディープウェルプレートの個々のウェル中で増殖させた。各クローンに、自己誘導培地(EMD Milliporeより入手したもの)を用いてペリプラズムでの発現を誘導するか、またはファージ上における個々のFc変異体のファージディスプレイのためにヘルパーファージを感染させた。培地を一晩増殖させ、遠心して大腸菌をペレット化した。ファージELISAでは、ファージを含む上清を直接使用した。ペリプラズムでの発現では、ペレットを20%スクロースに再懸濁した後、水で4:1に希釈し、4℃で1時間振盪した。プレートを遠心して固形物をペレット化し、上清をELISAに使用した。
Fc変異体ポリペプチド(ファージ上で、ペリプラズム抽出物中で、またはFabフラグメントとの可溶性の融合体として発現させたもの)を、96ウェルV底プレート中で細胞に加え(PBS+1%BSA(PBSA)中、ウェル当たり約100,000細胞)、4℃で1時間インキュベートした。この後、各プレートを遠心し、培地を除去してから細胞をPBSAで1回洗浄した。二次抗体(典型的には、ヤギ抗ヒトIgG−Alexa Fluor(登録商標)647(Thermo Fisherより入手したもの))を含むPBSA中に細胞を再懸濁した。30分後、プレートを遠心し、培地を除去し、細胞をPBSAで1〜2回洗浄した後、プレートをフローサイトメーター(すなわち、FACSCanto(商標)IIフローサイトメーター)で読み取った。FlowJoソフトウェアを使用して各条件について蛍光の中央値を計算し、結合曲線をPrismソフトウェアを用いてプロットした。
トランスフェリン受容体(TfR)に対するCH2A2ライブラリーによる選択
CH2A2に対するファージ及び酵母ライブラリーを上記に述べたようにしてTfRに対してパニングし、分取した。上記の「ELISAによるスクリーニング」と題したセクションで述べたように、ELISAアッセイにおいて4ラウンドのファージパニング後に、ヒト及び/またはカニクイザル(cyno)TfRに結合するクローンが特定された。代表的なクローンの配列は、15個の固有の配列を含むグループ1(すなわち、SEQ ID NO:47〜61)、及び1個の固有の配列(すなわち、SEQ ID NO:62)を含むグループ2の2つのグループに分類された。グループ1の配列は、60〜61位に保存されたGlu−Trpモチーフを有していた。他のいずれの位置にもコンセンサスはみられなかったが、58位にはArgが高頻度でみられ、59位にはTrpまたはTyrが高頻度でみられた。
個々のCH2A2変異体をファージの表面に発現させ、ELISAによりヒトTfR、カニクイザルTfR、または無関連の対照に対する結合についてアッセイした。Fcの発現を、C末端のc−Mycエピトープタグに結合する抗Myc抗体9E10に対してELISAにより確認した。図1(A)〜(D)に示される4つの代表的クローンについてのデータは、これらのクローンはいずれもよく発現され、ヒトTfRに結合したのに対して、いずれも無関連の対照には結合しなかったことを示した。グループ1の3つのクローンはカニクイザルTfRにも結合したが、グループ2の1つのクローン(すなわち、クローン2A2.16)はヒトTfRに特異的であった。
ヒト及びカニクイザルTfRに対する初期ヒットの結合親和性を高めるために2つの二次ライブラリーを構築した。第1のライブラリーは、グループ1のクローンに基づいて作製した。60及び61位の保存されたEWモチーフを不変に保ち、58位の半保存的Rをソフトランダム化を用いて変異させた。その他のライブラリー位置(すなわち、47位、49位、56位、59位、62位、及び63位)は飽和突然変異導入によって変異させた。第2のライブラリーは、グループ2のクローンに基づいて構築した。このライブラリーは、最初のCH2A2ライブラリー位置のソフトランダム化により作製したが、クローン2A2.16(SEQ ID NO:62)を鋳型として用いた(野生型Fc(SEQ ID NO:1)の代わりに)。どちらのライブラリーも、上記に述べた方法を用いてファージ及び酵母ディスプレイについて構築した。
トランスフェリン受容体(TfR)に対するCH2Cライブラリーによる選択
CH2Cに対するファージ及び酵母ライブラリーを上記に述べたようにしてTfRに対してパニングし、分取した。上記の「ELISAによるスクリーニング」と題したセクションで述べたように、ELISAアッセイにおいて4ラウンドのファージパニング(すなわち、グループ1及び4のクローン)後に、ヒト及び/またはカニクイザル(cyno)TfRに結合するクローンが特定され、上記の「酵母選択の一般的方法」と題したセクションで述べたような酵母結合アッセイにより、4回または5回の酵母分取ラウンド(すなわち、グループ2及び3のクローン)後に更なるクローンが特定された。代表的なクローンの配列は、16個の固有の配列を含むグループ1(すなわちSEQ ID NO:63〜78)、4個の固有の配列を含むグループ2(すなわちSEQ ID NO:79〜82)、2個の固有の配列を含むグループ3(すなわちSEQ ID NO:83〜84)、1個の固有の配列を含むグループ4(すなわちSEQ ID NO:85)の4つのグループに分類された。グループ1の配列は、39位に半保存的Proを、42位に半保存的Proを、43位に保存的Proを、44位に半保存的Trpを、68位に半保存的Gluを、70位に保存的Tyrを有し、他のライブラリー位置では特定の傾向がほとんどなかった。グループ2の配列は、39位に保存的Metを、40位に半保存的Lを、42位に保存的Proを、43位に保存的Valを、44位に半保存的Proを、68位に半保存的Thrを、70位に保存的Hisを、72位に保存的Proを有していた。2個のグループ3の配列同士は、位置68においてのみ異なり、この位置にはValまたはLeuが存在していた。グループ4は、SEQ ID NO:85に示される配列を有する1種類のクローン(すなわちCH2C.23)からなるものであった。
CH2C変異体は、抗BACE1ベンチマーク可変領域配列を含む発現ベクターにクローニングすることにより、FabフラグメントとのFc融合体として発現させた。293またはCHO細胞で発現させた後、得られたポリペプチド−Fab融合体をProtein A及びサイズ排除クロマトグラフィーによって精製してから、ヒトまたはカニクイザルTfRに対する結合についてアッセイした。図3(A)に示されるように、グループ4のクローンCH2C.23はホロトランスフェリンと競合した。配列グループ1に属するクローンが、図3(B)にヒト及びカニクイザルTfRに対する結合滴定で示されている。他の配列グループからの代表的なクローンを、ホロTfの存在下または非存在下での結合についてファージ上で試験し(図3(C)を参照)、クローンCH2C.7を、バイオレイヤー干渉法によりホロトランスフェリンの存在下でヒトTfRに対する結合について試験した(すなわち、Octet(登録商標)REDシステムを使用。図3(D)を参照)。ほとんどのクローンはカニクイザルTfRにある程度の交差反応性を示し、クローンCH2C.23を除いて、試験したクローンはホロTfと競合しなかった。
更なるライブラリーの設計及びスクリーニングについてCH2A2に関して上記に述べたのと同様の更なる操作方法を用いて、CH2Cクローンの親和性を高める。
トランスフェリン受容体(TfR)に対するCH3Bライブラリーによる選択
CH3Bに対するファージ及び酵母ライブラリーを上記に述べたようにしてTfRに対してパニングし、分取した。上記の「ELISAによるスクリーニング」と題したセクションで述べたように、ELISAアッセイにおいて4ラウンドのファージパニング後に、ヒト及び/またはカニクイザルTfRに結合するクローンが特定され、上記の「酵母選択の一般的方法」と題したセクションで述べたような酵母結合アッセイにより、4回または5回の酵母分取ラウンド後に更なるクローンが特定された。ファージ及び酵素の両方から特定された17種類のクローン(すなわちSEQ ID NO:30〜46)のすべては、関連した配列を有していた。すなわち、配列は、118位に半保存的Pheを、119位に半保存的な負に帯電したAspまたはGluを、122位に半保存的Thrを、210位に保存的Gを、211位に保存的Pheを、212位に半保存的Hisを、213位に保存的Aspを有していた。いくつかのクローンが、T123I変異を有していたが、この位置はライブラリーの設計で意図的に変異させておらず、組換えまたはPCRのエラーによって導入されたものと考えられる。
2種類の代表的なクローンCH3B.11(SEQ ID NO:40)及びCH3B.12(SEQ ID NO:41)をファージの表面に発現させ、ホロTfの存在下または非存在下でヒト及びカニクイザルTfRに対する結合について試験した。いずれのクローンも、ホロTfの添加によって影響されなかった(図4(A))。更に、CH3B変異体を、抗BACE1可変領域配列を含む発現ベクターにクローニングすることにより、Fabフラグメントとの融合体として発現させた。293またはCHO細胞で発現させた後、得られたポリペプチド−Fab融合体をProtein A及びサイズ排除クロマトグラフィーによって精製してから、ヒトまたはカニクイザルTfRに対する結合についてアッセイした(図4(B))。いずれも両方のオーソログに対して特異的な結合を示した。
更なるライブラリーの設計及びスクリーニングについてCH2A2に関して上記に述べたものと同様の更なる操作方法を用いて、CH3Bクローンの親和性を高めることを行った。詳細には、パラトープの近くのいくつかの4〜7個の一連の残基パッチを、図5に示されるような更なる多様化を行うために選択した(暗い表面は元のライブラリーのレジスターを表し、明るいパッチは新たに変異を導入した位置を表す)。クローンCH3B.12(SEQ ID NO:41)を開始点として使用した。飽和(すなわちNNK)変異導入について選択した残基は以下の通りである。
CH3Bパッチ1(SEQ ID NO:101):アミノ酸位置127、128、129、131、132、133、及び134;
CH3Bパッチ2(SEQ ID NO:102):アミノ酸位置121、206、207、及び209;
CH3Bパッチ3(SEQ ID NO:103):アミノ酸位置125、214、217、218、219、及び220;
CH3Bパッチ4(SEQ ID NO:104):アミノ酸位置115、117、143、174、及び176;ならびに
CH3Bパッチ5(SEQ ID NO:105):アミノ酸位置155、157、158、193、194、及び195。
トランスフェリン受容体(TfR)に対するCH2Dライブラリーによる選択
CH2Dに対するファージライブラリーを上記に述べたようにしてTfRに対してパニングした。上記の「ELISAによるスクリーニング」と題したセクションで述べたように、ELISAアッセイにおいてヒト及び/またはカニクイザルTfRに結合するクローンが特定された。5種類の固有のクローンが特定され、それぞれ2個及び3個の配列からなる2つの配列群に分類された(表3)。配列グループ1(すなわち、クローンCH2D.1(SEQ ID NO:86)及びCH2D.2(SEQ ID NO:87))は、40〜45位に保存的VPPXM(SEQ ID NO:111)モチーフを、64〜67位にSLTS(SEQ ID NO:112)モチーフを、73位にVを有していた。40位における変異は設計に含まれておらず、恐らくPCRエラーまたは組換えによるものと思われる。配列グループ2(すなわち、クローンCH2D.3(SEQ ID NO:88)、CH2D.4(SEQ ID NO:89)、及びCH2D.5(SEQ ID NO:90))は、41位に保存的Dを、42位に半保存的Dを、43位に保存的Wを、44位に半保存的Eを、45位に保存的芳香族(WまたはY)を、64〜65位に保存的PWモチーフを、73位に保存的Wを有していた。
更に、CH2D変異体を、抗BACE1可変領域配列を含む発現ベクターにクローニングすることにより、Fabフラグメントとの融合体として発現させた。293またはCHO細胞で発現させた後、得られたポリペプチド−Fab融合体をProtein A及びサイズ排除クロマトグラフィーによって精製してから、本明細書で上記に述べた方法を用いてホロTfの存在下または非存在下でカニクイザル及びヒトTfRに対する結合についてアッセイした。
トランスフェリン受容体(TfR)に対するCH2E3ライブラリーによる選択
CH2E3に対するファージライブラリーを上記に述べたようにしてTfRに対してパニングした。上記の「ELISAによるスクリーニング」と題したセクションで述べたように、ELISAアッセイにおいてヒト及び/またはカニクイザルTfRに結合するクローンが特定された。5個の配列から3つの配列グループが特定されたが、これらのグループのうちの2つはそれぞれ1個の固有の配列のみで構成されるものであった(表4)。配列グループ2は、3個の固有の配列(すなわち、クローンCH2E3.2(SEQ ID NO:92)、CH2E3.3(SEQ ID NO:93)、及びCH2E3.4(SEQ ID NO:94))を有し、45位に半保存的Valを、47位に保存的Glyを、49位に保存的Argを、95位に保存的Argを、97及び99位に保存的Serを、103位に保存的Trpを、104位にArgまたはLysを有していた。
CH2E3変異体を、抗BACE1ベンチマーク可変領域配列を含む発現ベクターにクローニングすることにより、Fabフラグメントとの融合体として発現させた。293またはCHO細胞で発現させた後、得られたポリペプチド−Fab融合体をProtein A及びサイズ排除クロマトグラフィーによって精製してから、本明細書で上記に述べた結合の方法を用いてホロTfの存在下または非存在下でカニクイザル及びヒトTfRに対する結合についてアッセイした。
トランスフェリン受容体(TfR)に対するCH3Cライブラリーによる選択
CH3Cに対する酵母ライブラリーを上記に述べたようにしてTfRに対してパニングし、分取した。最初の3回の分取ラウンドの集団濃縮FACSプロットを図6に示す。更なる2ラウンドの分取後、1種類のクローンをシークエンシングし、4個の固有の配列(すなわち、クローンCH3C.1(SEQ ID NO:4)、CH3C.2(SEQ ID NO:5)、CH3C.3(SEQ ID NO:6)、及びCH3C.4(SEQ ID NO:7))を特定した。これらの配列は、161位に保存的Trpを有し、いずれも194位に芳香族残基(すなわち、Trp、Tyr、またはHis)を有していた。他の位置では高い多様性がみられた。
CH3Cライブラリーから選択した4種類のクローンを、CHOまたは293細胞でFabフラグメントとのFc融合体として発現させ、Protein A及びサイズ排除クロマトグラフィーにより精製した後、ELISAによりホロTfの存在下または非存在下でカニクイザル及びヒトTfRに対する結合についてスクリーニングした。図7に示されるように、各クローンはいずれもヒトTfRに結合し、結合は過剰量(5μM)のホロTfの添加によって影響されなかった。しかしながら、各クローンはカニクイザルTfRにはそれほど結合しなかった。各クローンをヒトTfRを内因性に発現する293F細胞に対する結合についても試験した。図8は、各クローンは293F細胞に結合したものの、全体的な結合は高親和性の陽性対照と比較して大幅に弱かったことを示している。
ヒトTfRに対する初期のCH3Cのヒットの親和性を改善し、カニクイザルTfRに対する結合を導入する試みとして更なるライブラリーを作製した。ソフトランダム化のアプローチを用い、DNAオリゴを作製して最初の4つのヒットのそれぞれに基づいてソフト突然変異誘発を導入した。レジスターの第1の部分(WESXGXXXXXYK;SEQ ID NO:113)とレジスターの第2の部分(TVXKXXWQQGXV;SEQ ID NO:114)を別々のフラグメントにより構築することにより、ソフトランダム化された各レジスターをPCR増幅でシャッフルした(例えば、クローンCH3C.1からのレジスターの第1の部分が、クローンCH3C.1、CH3C.2、CH3C.3、及びCH3C.4からのレジスターの第2の部分と混合される、といった具合)。各フラグメントをすべて混合してから、表面発現及び選択を行うために酵母に導入した。
ソフト突然変異誘発ライブラリーからの各クローンをFc−Fab融合ポリペプチドとして再フォーマット化し、上記に述べたようにして発現させ、精製した。図12に示されるように、これらの変異体は、最初のライブラリーセレクションからの最も上のクローン(CH3C.3)と比較してヒトTfRに対する改善されたELISA結合を有し、また、ホロTfと競合もしなかった。下記表7に示されるEC50値は、ホロTfの存在または非存在によって実験の誤差の範囲を超えて大きく影響されなかった。
操作されたCH3C Fc領域がTfRのアピカルドメインに結合するかを調べるため、TfRアピカルドメイン(ヒト及びカニクイザルについてそれぞれSEQ ID NO:107及び108)をファージの表面で発現させた。アピカルドメインを適正にフォールディングして提示するには、ループの1つを短縮する必要があり、配列を環状に並び替える必要がある(ファージ上で発現された配列は、ヒト及びカニクイザルでそれぞれSEQ ID NO:109及び110として特定される)。クローンCH3C.18及びCH3C.35をELISAプレートにコーティングし、上記に述べたファージELISAプロトコールに従った。要約すると、1%PBSAによる洗浄及びブロッキング後、ファージディスプレイの各希釈液を加え、室温で1時間インキュベートした。次いで各プレートを洗浄し、抗M13−HRPを加え、更なる洗浄後、各プレートをTMB基質で発色させ、2NのH2SO4でクエンチした。このアッセイではCH3C.18及びCH3C.35の両方ともアピカルドメインに結合した。
Fcドメイン内のどの残基がTfRへの結合に最も重要であるかを理解するため、各変異体のTfR結合レジスター内の1個の位置を野生型に復帰変異させた変異体CH3C.18及びCH3C.35の一連のクローンを作製した。得られた変異体を組換えによりCH3C Fc−Fab融合体として発現させ、ヒトまたはカニクイザルTfRに対する結合について試験した(図17)。CH3C.35では、161及び194位は結合に絶対的に重要であり、これらのいずれかの野生型への復帰変異はヒトTfRに対する結合を完全に消失させた。驚くべきことに、163位を野生型に復帰変異させることで、カニクイザルTfRへの結合が顕著に上昇したのに対して、ヒトへの結合に影響はほとんどなかった。これに対して、残基163の野生型への復帰変異はCH3C.18ではほとんど影響がなかったが、この変異体では189及び194位の復帰変異がヒトTfRへの結合を完全に消失させた。どちらの変異体においても、他の単一の復帰変異はヒトTfRへの結合に若干の(負の)影響を示したのに対して、多くの場合でカニクイザルTfRに対する結合は消失した。
カニクイザルTfRに対するCH3C変異体の親和性を更に高めるために更なるライブラリーを調製した。これらのライブラリーは、理論上の多様性に関しておよそ107種類よりも少ないクローンとなるように設計されており、酵母表面ディスプレイを用いて多様性空間全体を網羅することが可能なものであった。これらのライブラリーの設計を図18に示す。4つのライブラリーの設計を用い、すべてのライブラリーはNNKまたは他の縮重コドン位置で縮重オリゴを使用して作製し、上記に述べたようにしてオーバーラップPCRにより増幅した。
上記に述べたようにして、精製したCH3C Fc−Fab融合変異体と、プレートにコーティングしたヒトまたはカニクイザルTfRとの結合ELISAを行った。CH3C.18成熟ライブラリーからの変異体であるCH3C3.2−1、CH3C.3.2−5、及びCH3C.3.2−19がヒト及びカニクイザルTfRとおおよそ等しいEC50値で結合したのに対して、親クローンのCH3C.18及びCH3C.35は、カニクイザルTfRに対してヒトTfRに、10倍よりも高い結合を示した(図19)。
更なる親和性成熟クローンであるCH3C.18及びCH3C.35に対する更なる操作において、骨格(すなわちレジスター以外の)位置に更なる変異を加えて、直接的相互作用、第2水和殻相互作用、または構造的安定化を介して結合を向上させた。これは、「NNKウォーク」または「NNKパッチ」ライブラリーの作製、及びこれらのライブラリーからの選択を行うことによって実現された。NNKウォークライブラリーでは、パラトープの近傍の残基に1つずつNNK変異を導入した。FcgRIに結合したFc(PDB ID:4W4O)の構造をみることにより、図21に示されるように、元のライブラリーレジスターの近くの44個の残基が調査の候補として特定された。詳細には、以下の残基、すなわち、K21、R28、Q115、R117、E118、Q120、T132、K133、N134、Q135、S137、K143、E153、E155、S156、G158、Y164、K165、T166、D172、S173、D174、S176、K182、L183、T184、V185、K187、S188、Q191、Q192、G193、V195、F196、S197、S199、Q211、S213、S215、L216、S217、P218、G219、及びK220をNNK突然変異誘発の標的とした。Kunkel突然変異誘発を用いてこれらの44種類のシングルポイントNNKライブラリーを作製し、他の酵母ライブラリーについて上記に述べたように各産物をプールして電気穿孔法により酵母に導入した。
CH3Cパッチ1:アミノ酸位置:K21、R28、Y164、K165、及びT166。
CH3Cパッチ2:アミノ酸位置:Q115、R117、E118、Q120、及びK143。
CH3Cパッチ3:アミノ酸位置:T132、K133、N134、Q135、及びS137。
CH3Cパッチ4:アミノ酸位置:E153、E155、S156、及びG158。
CH3Cパッチ5:アミノ酸位置:D172、S173、D174、S176、及びK182。
CH3Cパッチ6:アミノ酸位置:L183、T184、V185、K187、及びS188。
CH3Cパッチ7:アミノ酸位置:Q191、Q192、G193、V195、及びF196。
CH3Cパッチ8:アミノ酸位置:S197、S199、Q211、S213、及びS215;ならびに
CH3Cパッチ9:アミノ酸位置:L216、S217、P218、G219、及びK220。
TfRアピカルドメインタンパク質を用い、上記に述べたようにして選択を行った。しかしながら、結合が向上したクローンは特定されなかった。
NNKウォークライブラリーから変異の組み合わせを特定する一方でこれらの周辺にいくつかの更なる位置を追加するための更なるライブラリーを、上記の酵母ライブラリーについて述べたようにして作製した。このライブラリーでは、YxTEWSS及びTxxExxxxFモチーフを一定に保ち、以下の6つの位置、すなわちE153、K165、K187、S188、S197、及びS199を完全にランダム化した。位置E153及びS188は、これらの位置がNNKウォークライブラリーにおいて「ホットスポット」であったことから含めた。位置K165、S197、及びS199は、これらの位置が結合領域の位置を決定し得るコアの部分を構成することから含め、K187は、188位に隣接していることから選択した。
次のライブラリーは、主要な結合パラトープ内の許容される多様性の全体像を調べるために設計した。用いたアプローチは、NNKウォークライブラリーと同様のものであった。元のレジスター位置(157、159、160、161、162、163、186、189、及び194)のそれぞれ、ならびに2個のホットスポット(153及び188)をNNKコドンで個々にランダム化することにより、酵母上で一連の単一位置飽和突然変異誘発ライブラリーを作製した。更に、それぞれの位置を個々に野生型残基に復帰変異させ、これらの個々のクローンを酵母上に提示させた。図23は、野生型復帰変異及び単一位置のNNKライブラリーと比較した親クローンCH3C.35.21の結合を示す。153、162、163、及び188位は、野生型残基に復帰変異させた際にTfRに対する相当の結合を維持した唯一の位置であった点が着目された(186位の野生型への復帰変異で若干の残留はあるものの大幅に消失した結合が認められた)。
位置153:Trp、Leu、またはGlu;
位置157:TyrまたはPhe;
位置159:Thrのみ;
位置160:Gluのみ;
位置161:Trpのみ;
位置162:Ser、Ala、またはVal(野生型のAsn残基は若干の結合を維持するようにみえたが、その後のライブラリー分取ではそのようにみえなかった点が着目された);
位置163:SerまたはAsn;
位置186:ThrまたはSer;
位置188:GluまたはSer;
位置189:Gluのみ;及び
位置194:Pheのみ
一価のTfR結合ポリペプチド−Fab融合体の作製
Fcドメインは自然でホモ二量体を形成するが、一方のFc単位がT139Wのノブ変異(EU番号付けスキームを用いた場合に366位に相当)を有し、他方のFc単位がT139S、L141A、及びY180Vのホール変異(EU番号付けスキームを用いた場合にそれぞれ366、368、及び407位に相当)を有する「ノブ・イン・ホール」として知られる一連の非対称的変異によって2個のFcフラグメントの選択的ヘテロ二量体化を生じ得る。いくつかの実施形態では、本発明の改変CH3ドメインは、139位にTrpを含む。いくつかの実施形態では、本発明の改変CH3ドメインは、139位にSerを、141位にAlaを、180位にValを含む。ヘテロ二量体のTfR結合ポリペプチドを、2種類のプラスミド(すなわち、ノブFcとホールFc)の一過性の同時トランスフェクションにより293またはCHO細胞で発現させる一方で、ポリペプチド−Fab融合体を3種類のプラスミド(すなわち、ノブ−Fc−Fab重鎖、ホール−Fc−Fab−重鎖、及び一般的な軽鎖)の一過性の同時トランスフェクションにより発現させた。分泌されたヘテロ二量体ポリペプチドまたはポリペプチド−Fab融合体の精製を、ホモ二量体におけるのと同じようにして行った(すなわち、Protein Aを使用した2カラム精製に続いてサイズ排除クロマトグラフィーを行い、その後、必要に応じて濃縮及びバッファー交換を行う)。質量分析または疎水性相互作用クロマトグラフィーを用いて形成されたホモ二量体(例えば、ノブ−ノブ、またはホール−ホールで対合したFc)に対するヘテロ二量体の量を決定した。典型的な調製物では、ポリペプチドの95%超、しばしば98%超がヘテロ二量体であった。明確さのため、この方法で作製されたすべての一価TfR結合物(Fcホモ二量体)を、ZZがポリペプチドの名前であるものとし、「.一価」が一価のTfR結合を示すものとして「ZZ.一価」と命名した。特に断らない限り、ヘテロ二量体ポリペプチド及びポリペプチド−Fab融合体において、TfR結合を与える変異には「ノブ」変異が含まれたのに対して、TfRに結合しないFc領域は「ホール」領域とともに用いた。ある場合では、これらのコンストラクトには、L7A/L8A、M25Y/S27T/T29E、N207S、または改変されたFcγRもしくはFcRn結合に対してそれぞれN207S/M201Lなど、Fcの特性を変化させる更なる変異も含まれていた。
一価のCH3Cポリペプチドの結合を、上記に述べた方法の改法を用いてELISAで測定した。ストレプトアビジンをPBS中、1μg/mLで一晩、96ウェルELISAプレートにコーティングした。洗浄後、プレートをPBS中、1%BSAでブロッキングした後、ビオチン化したヒトまたはカニクイザルTfRを1μg/mLで加え、30分間インキュベートした。更に洗浄した後、ポリペプチドを各プレートに連続希釈で加え、1時間インキュベートした。各プレートを洗浄し、二次抗体(すなわち、抗κ−HRP、1:5000)を30分間加え、プレートを再び洗浄した。各プレートをTMB基質で発色させ、2N H2SO4でクエンチした後、BioTek(登録商標)プレートリーダーで450nmの吸光度を読み取った。結果を図24に示すが、これはスタンダード(すなわち、二価のTfR結合)と一価のTfR結合ポリペプチドとを直接比較したものである。Ab204は、高親和性の抗TfR対照抗体である。
結合速度論を、抗BACE1 Fabに融合されたいくつかの一価及び二価CH3Cポリペプチド変異体について測定し、バイオレイヤー干渉法を用いてそれらの二価の相当物と比較した(すなわち、Octet(登録商標)REDシステムを用いた)。TfRをストレプトアビジンセンサー上に捕捉し、次いでCH3Cポリペプチドを結合させて洗い流した。センサーグラムを1:1の結合モデルにフィッティングしたところ、二価ポリペプチドのKD(app)値は、TfR二量体に対する強い結合を示した。結果を、表10ならびに図27及び28に示す。
組換えTfRのアピカルドメインのクローン変異体の親和性をBiacore(商標)T200装置を使用して表面プラズモン共鳴により測定した。Biacore(商標)シリーズS CM5のセンサーチップを抗ヒトFabとともに固定化した(GE Healthcareより販売されるヒトFab捕捉キット)。5μg/mLのポリペプチド−Fab融合体を各フローセル上に1分間捕捉させ、ヒトまたはカニクイザルアピカルドメインの連続3倍希釈液を流速30μL/分で室温で注入した。各試料を45秒間の結合及び3分間の解離により分析した。それぞれの注入後、10mMグリシン−HCl(pH2.1)を用いてチップを再生した。結合応答を、無関連のIgGを同様の密度で捕捉させたフローセルからのRUを引くことによって補正した。Biacore(商標)T200 Evaluation Software v3.1.を用いて平衡状態の応答を濃度に対してフィッティングすることによって、安定状態の親和性を得た。
ForteBio(登録商標)ストレプトアビジンバイオセンサーを用いたForteBio(登録商標)Octet(登録商標)RED384装置を使用してFcRn結合アッセイを行った。ビオチン化した組換えBACE1をカイネティックバッファー(ForteBio(登録商標)より入手したもの)中で10μg/mLの濃度に希釈し、個々のバイオセンサー上に1分間捕捉させた。次にベースラインをカイネティックバッファー中で1分間、確立した。10μg/mLのポリペプチド−Fab融合体(抗BACE1 Fabアームを含むもの)を、1μMのヒトTfRのECDの存在下または非存在下でセンサーチップに結合させた。固定化したポリペプチド−Fab融合体に対する組換えヒトFcRn(pH5.5)の結合を、3分間の結合及び3分間の分離を行って分析した。
本実施例では、マウスの血漿及び脳組織中での本発明のCH3C変異体ポリペプチドの薬物動態学的/薬力学的(PK/PD)特性分析について述べる。
ポリペプチド−Fab融合体はヒトTfRにのみ結合し、マウスTfRには結合しないことから、TfR介在性クリアランスを有さないモデルにおけるインビボ安定性を示すために野生型マウスでいくつかのCH3C変異体の薬物動態学(PK)を試験した。実験計画を下記表12に示す。6〜8週齢のC57Bl6マウスに静脈内投与し、表12に示される時点において顎下瀉血により生存中瀉血が行われた。血液をEDTA血漿チューブに採取し、14,000rpmで5分間遠心した後、血漿を後の分析用に単離した。
下記表14の実験計画に従って野生型マウスで第2のPK実験を行った(すべてのポリペプチド−Fab融合体はAb153 Fabと融合させたもの)。
マウスTfrc遺伝子内でヒトTfrcアピカルドメインを発現するトランスジェニックマウスを、CRISPR/Cas9技術を用いて作製した。得られたキメラTfRを内因性プロモーターの制御下でインビボで発現させた。
表16の実験計画に示されるようにして、ホモ接合体hTfRアピカル+/+マウスに50mg/kgの抗BACE1抗体Ab153、抗TfR/BACE1二重特異性抗体Ab116、Ab153のFabと融合したCH3C.35.21.一価、またはAb153のFabと融合したCH3C.35.N153.一価のいずれかを静脈内注射した。この実験では、すべてのFcはエフェクター機能を除去するためのLALAPG変異を有していた。
PK及び脳での取り込みに対するTfR結合親和性の影響を評価するため、Biacoreによって測定されるアピカルヒトTfRに対する結合親和性の異なる抗BACE1 Ab153及びTfR結合ポリペプチド融合体(CH3C.35.21:Ab153、CH3C.35.20:Ab153、CH3C.35:Ab153融合体)を作製した。ヒトTfRに対するCH3C.35.21:Ab153、CH3C.35.20:Ab153、CH3C.35:Ab153融合体の結合親和性はそれぞれ、100nM、170nM、及び620nMである。hTfRアピカル+/+マウスノックインマウスに、50mg/kgのAb153または各ポリペプチド−Fab融合体を全身投与し、血漿PK及び脳PKPDを投与の1、3、及び7日後に評価した。脳及び血漿PKPD分析を上記のセクションで述べたようにして行った。末梢組織でのTfRの発現により、CH3C.35.21:Ab153、CH3C.35.20:Ab153、及びCH3C.35:Ab153融合体は、Ab153単独と比較して血漿中のより速やかなクリアランスを示したが、これは、標的介在性のクリアランスと一致し、インビボでのTfR結合を示すものである(図44(A))。印象的な点として、CH3C.35.21:Ab153、CH3C.35.20:Ab153、及びCH3C.35:Ab153融合体の脳内濃度は、Ab153と比較して有意に増大し、同じ時点におけるAb153がわずかに約3nMであったのと比較して投与後1日目に30nMよりも高い最大脳内濃度が得られた(図44(B))。CH3C.35.21:Ab153、CH3C.35.20:Ab153、及びCH3C.35:Ab153融合体の脳曝露の増大は、Ab153を投与したマウスにおけるAβ濃度と比較して、マウスの脳で約55〜60%低い内因性のマウスAβ濃度を生じた(図44(C))。CH3C.35.21:Ab153、CH3C.35.20:Ab153、及びCH3C.35:Ab153融合体の濃度が脳で高い状態に保たれた一方で、このようなより低い脳のAβ濃度は維持され、7日目までに曝露が低減された際にAb153で処置したマウスと同様の濃度に戻った。経時的な脳曝露の低下は、CH3C.35.21:Ab153、CH3C.35.20:Ab153、及びCH3C.35:Ab153融合体の末梢曝露の低下と相関しており、インビボでの明確なPK/PDの関係を示した(図44(A)と44(C)とを比較)。更に、全体の脳のTfR濃度は、この単回の高用量の投与後にAb153処理マウスとポリペプチド−Fab融合体処理マウスとで同等であり、脳におけるTfR発現に対して、ポリペプチド−Fab融合体の脳曝露の増加が有意な影響を及ぼさないことを示している(図44(D))。
本実施例では、CH3C.18とトランスフェリン受容体のアピカルドメイン(TfR−AD)との間の結合界面の結晶化及び分析について述べる。
ヒトトランスフェリン受容体のアピカルドメイン(TfR−AD)及び操作されたヒトFc(CH3C.18 Fc)を、Expi293細胞内で、2.5x106細胞/mLの初期細胞密度で発現させた(それぞれSEQ ID NO:301及び302)。必要に応じて、200mL以上の体積中で発現を行った。グリコシル化阻害剤であるキフネンシンをトランスフェクションの20時間後に25μMの最終濃度で加えた。発現培養物を、細胞生存率が顕著に低下するトランスフェクションの3〜4日後に回収した。
発現させたTfR−AD及びCH3C.18 Fcを、それぞれProtein A及びNi−NTA樹脂を用いて精製した後、Superdex200 26/60ゲル濾過カラムでサイズ排除クロマトグラフィーにかけた。以下のバッファーを使用した。
Protein A洗浄バッファー:20mM Hepes pH7.4、100mM NaCl;
Protein A溶出バッファー:30mMグリシン、pH2.5(溶出液を1M Tris、pH9.0の入ったチューブに回収して溶出液を直ちに中和した);
Ni−NTA洗浄バッファー:30mM TrispH、10mMイミダゾール、及び200mM NaCl;
Ni−NTA溶出バッファー:30mM Tris pH8.0、200mM NaCl、及び250mMイミダゾール;ならびに
サイズ排除バッファー(SEC):30mM HEPES pH7.5、200mM NaCl、及び3%グリセロール。
精製したTfR−AD及びCH3C.18 Fcを過剰量のアピカルドメインと混合し、室温で1時間インキュベートし、上記に述べたSECバッファーを使用してSuperdex200 26/60ゲル濾過カラムでサイズ排除クロマトグラフィーを用いて複合体を精製した。サイジングによって、一方が複合体(保持容量=180ml)に対応し、他方が過剰のアピカルドメイン(保持容量=240ml)に対応した、2つの主要なピークが予想通り得られた。ピーク画分をクマシー染色したSDS−PAGEゲルによって分析した(図34)。
シッティングドロップ蒸気拡散法により、15℃及び室温(RT)で、8.5mg/mlのタンパク質濃度で複合体の初期結晶化スクリーニングを行った。25%PEG3350、0.1M Tris pH8.5、及び0.2M MgCl2を含む条件で細い針状の結晶のシャワーが観察された。これらの結晶を、20%PEG3350を用いた以外は同じ条件で種結晶として用いてマウントできるサイズの単一の細い針結晶を生成させた。
20%(v/v)エチレングリコールを添加した結晶化母液を用いて液体窒素中に直接浸漬することによって結晶をフラッシュ冷却した。Rayonix300高速検出器を用い、Advanced Photon Source(APS)のSER−CATのビームラインでX線強度のデータを収集した。結晶は3.6Åに回折し、2個の複合体分子が非対称単位中にある六角形の空間群P64に属した(表17)。データをHKL2000プログラムを使用してインデックス付けし、積分して、スケーリングした。2個の結晶から収集したデータをマージして3.6Åのデータを生成した。
1Rマージ =Σj(|Ih-<I>h|)/ΣIh、式中、<Ih>は、対称等価(symmetry equivalent)上の平均強度。
2R因子 =Σ|F観測値-F計算値|/Σ|F観測値|
複合体の結晶構造を、CH3C.18 Fcの二量体及びTfR−ADの単量体を初期探索モデルとして用いてPHASERによる分子置換により決定した。このモデルを、REFMACを用いて剛体精密化に続いて制限精密化を行って精密化した。結晶学的計算はすべて、CCP4プログラムスイートを用いて実行した(www.ccp4.ac.uk/)。グラフィックプログラムCOOTを使用して複合体の電子密度へのモデル構築を行った。複合体分子の電子密度は、特にCH3C.18 Fc−TfR−ADの界面において良好であった(2Fo−Fcマップを1.2シグマレベルに合わせた)。モデル構築及び精密化を繰り返し行った後、データの低い分解能及び無秩序化したCH2ドメインのため、高いR及びfreeRが認められた(R/freeR=0.30/0.39)。他の利用可能なFc構造に見られたCH2の無秩序は、CH2とCH3ドメインとの間の柔軟なエルボー角によるものであった。
CH3C.18 FcとTfR−ADとの結合界面が図35(A)及び図35(B)ならびに図36(A)及び36(B)に示されている。図37(A)及び図37(B)に示されるように、
CH3C.18のTrp154と、TfR−ADのArg208;
CH3C.18のGlu155と、TfR−ADのArg208;
CH3C.18のSer156と、TfR−ADのArg208及びLeu212;
CH3C.18のLeu157と、TfR−ADのSer199及びAsn215;
CH3C.18のHis159と、TfR−ADのLys188、Ser199、及びArg208;
CH3C.18のVal160と、TfR−ADのGly207及びArg208;
CH3C.18のTrp161と、TfR−ADのArg208、Val210、及びLeu212;
CH3C.18のAla162と、TfR−ADのArg208;
CH3C.18のVal163と、TfR−ADのLeu209;
CH3C.18のSer188と、TfR−ADのTyr211;
CH3C.18のThr189と、TfR−ADのTyr211及びLeu212;
CH3C.18のGln192と、TfR−ADのLys158及びGlu294;
CH3C.18のTrp194と、TfR−ADのLeu212、Val213、Glu214、及びAsn215;ならびに
CH3C.18のPhe196と、TfR−ADのArg208
の間で相互作用が認められた。
並べ替えを行ったTfRアピカルドメイン(SEQ ID NO:301)に結合したCH3C.18 Fcポリペプチドの3.6ÅのX線結晶構造を上記に述べたようにして解析した。並べ替えを行ったTfRアピカルドメインと代表的な完全長TfR構造(PDBコード:3KAS)のアピカルドメインとの構造アラインメントによって、保存されたフォールド(並べ替えを行ったアミノ酸の外側)が明らかとなった。2つの構造間の平均二乗偏差(RMSD)は1.24Åであった。TfRの残基194〜297及び326〜379を、並べ替えを行った構造中の対応する残基とアラインしてRMSDを計算した。構造アラインメント及びRMSDの計算は、MOE v2016.0802(Chemical Computing Group)で行った。1.24Åの低いRMSDは保存されたアピカルドメインの3次元構造を反映しており、並べ替えを行った構造が天然のフォールドを維持し、結合のための保存されたエピトープまたは抗原を提示することができたことを示す。
本実施例では、CH3C.35とトランスフェリン受容体のアピカルドメイン(TfR−AD)との間の結合界面の結晶化及び分析について述べる。
ヒトトランスフェリン受容体のアピカルドメイン(TfR−AD)及び操作されたヒトFc(CH3C.35 Fc)を、CHO細胞内で、2.5x106細胞/mLの初期細胞密度で発現させた(それぞれSEQ ID NO:301及び421)。必要に応じて、500mL以上の体積中で発現を行った。発現培養物を、細胞生存率が顕著に低下するトランスフェクションの3〜4日後に回収した。
発現させたTfR−AD及びCH3C.35 Fcを、それぞれProtein A(Genscript)及びNi−NTA(Sigma)樹脂を用いて精製した後、Superdex200 26/60ゲル濾過カラムでサイズ排除クロマトグラフィーにかけた。以下のバッファーを使用した。
Protein A溶出バッファー:30mMグリシン、pH2.5(溶出液を1M Tris、pH9.0の入ったチューブに回収して溶出液を直ちに中和した);
Ni−NTA溶出バッファー:30mM Tris pH8.0、200mM NaCl、及び250mMイミダゾール;ならびに
サイズ排除バッファー(SEC):30mM HEPES pH7.5、150mM NaCl、50mM KCl、3%グリセロール、及び0.01%アジ化ナトリウム。
精製したTfR−AD及びCH3C.35 Fcを過剰量のアピカルドメインと混合し、室温で1時間インキュベートし、上記に述べたSECバッファーを使用してSuperdex200 26/60ゲル濾過カラムでサイズ排除クロマトグラフィーを用いて複合体を精製した。
シッティングドロップ蒸気拡散法により、4℃、15℃、及び室温(RT)で、複合体の初期結晶化スクリーニングを行った。25%PEG3350、0.1M Bis−Tris pH6.5、及び0.2M LiSO4を含む条件で細い針状の結晶のシャワーが観察された。これらの結晶を、20%PEG3350を用いた以外は同じ条件で種結晶として用いて単一の細い針結晶を生成させ、シーディングを連続して4回繰り返してマウントできるサイズの結晶を生成させた。
20%(v/v)エチレングリコールを添加した結晶化母液を用いて液体窒素中に直接浸漬することによって結晶をフラッシュ冷却した。PILATUS検出器を用い、Diamond Light Source(DLS)のIO4ビームラインでX線強度のデータを収集した。5ミクロンのサイズのマイクロフォーカスビームをデータ収集に使用した。結晶は3.38Åに回折し、2個の複合体分子が非対称単位中にある六角形の空間群P64に属した(表18)。CCP4スイートプログラム(Xia2−XDS及びXSCALE)を使用してデータをインデックス付けし、積分して、スケーリングした。
1Rマージ =Σj(|Ih-<I>h|)/ΣIh、式中、<Ih>は、対称等価(symmetry equivalent)上の平均強度。
2R因子 =Σ|F観測値-F計算値|/Σ|F観測値|
複合体の結晶構造を、CH3C.35Fc−AD TfR複合体を探索モデルとして用いてPHASERによる分子置換により決定した。このモデルを、REFMACを用いて剛体精密化に続いて制限精密化を行って精密化した。結晶学的計算はすべて、CCP4プログラムスイートを用いて実行した。グラフィックプログラムCOOTを使用して複合体の電子密度へのモデル構築を行った。複合体分子の電子密度は、特にCH3C.35 Fc−TfR−ADの界面において良好であった。
CH3C.35 FcとTfR−ADとの結合界面が図39(A)〜39(C)に示されている。図39(A)は、3.4ÅにおけるCH3C.35 FcとTfR−ADとの複合体を示す。図39(B)は、CH3C.35 Fc内の残基W161がTfR−AD内の残基L209、L212、及びY211によって安定化されていることを示す。図39(C)は、CH3C.35 Fc内の残基E160とTfR−AD内の残基R208間の中心的結合相互作用としての塩橋を示す。この相互作用は、改変FcポリペプチドのヒトTfRに対する結合親和性(208位のArg)とカニクイザルTfRに対する結合親和性(208位のGly)との差を一部説明し得る。図40(A)は、CH3C.35 FcとTfR−ADとの複合体と、CH3C.18 FcとTfR−ADとの複合体(実施例6で述べたもの)とを重ね合わせた構造を示し、CH3C.18とCH3C.35との間で大きなFc骨格のコンフォメーション変化がみられないことを示している。図40(B)は、図40(A)の重ね合わせ構造の拡大図を示す。CH3C.35 Fc/TfR−AD複合体のTfR−AD内の残基206〜212は、CH3C.18 Fc/TfR−AD複合体のTfR−AD内の残基とは異なるコンフォメーションを取っていた。TfR−AD内の残基R208は、CH3C.18 Fc/TfR−AD複合体の表面内に埋もれているようにみえるが、CH3C.35 Fc/TfR−AD複合体では溶媒に露出しているようにみえる。更に、CH3C.35 Fc/TfR−AD複合体のTfR−ADの残基L209は、180°回転されて表面に結合しているようにみえるが、CH3C.18 Fc/TfR−AD複合体では表面から離れているようにみえる。
CH3C.35のThr159と、TfR−ADのGly207、Arg208、Lys188、及びLeu209;
CH3C.35のGlu160と、TfR−ADのArg208及びLeu209;
CH3C.35のSer162と、TfR−ADのArg208及びLeu209;
CH3C.35のSer156と、TfR−ADのLeu209;
CH3C.35のTrp161と、TfR−ADのLeu209、Tyr211、及びLeu212;
CH3C.35のGlu189と、TfR−ADのTyr211及びLeu212;
CH3C.35のPhe194と、TfR−ADのLeu212、Asn215、及びVal213;
CH3C.35のTyr157と、TfR−ADのLeu212、Asn215、及びSer199;
CH3C.35のGln192と、TfR−ADのVal213及びLys158;ならびに
CH3C.35のPhe196と、TfR−ADのVal213及びLeu212
との間で相互作用が認められた。
本実施例では、カニクイザルにおける本発明のCH3C変異体ポリペプチドを含むFc−Fab融合体の薬物動態学的/薬力学的実験(PK/PD)特性分析について述べる。
Ab122(対照IgGとしての抗RSV抗体)、Ab153(抗BACE1抗体)、Ab210(抗TfR/BACE1二重特異性抗体)、または、Ab153のFabドメインに融合させたCH3C変異体ポリペプチドを含むFc−Fab融合ポリペプチドの単一の30mg/kg用量を、2〜4歳の雄のカニクイザルに静脈内投与して血漿中PK、血漿中PD(Aβ40)、及び脳脊髄液(CSF)中PD(Aβ40)を29日間にわたって評価した(n=4/群)。ベースラインを確立するため、投与前のCSF及び血液試料を投与7日前に各動物から採取した。投与後、CSFをIT−Lカテーテルにより、投与の12、24、48、72、及び96時間後に、また、実験日の8、11、15、18、22、25、及び29日目にPD分析用に採取した。血液試料を、血漿及び血清中PK用に投与の0.25、1、6、12、24、72時間後、また、実験日の8、11、15、18、22、25、及び29日目に採取した。
ヒトIgGのPKアッセイ
カニクイザル血清中の抗体またはFc−Fab融合ポリペプチドの濃度を、ヒトIgG特異的サンドイッチELISAを用いて定量した。384ウェルMaxiSorpプレートに、ヒトIgGのFcに特異的な抗体を一晩コーティングした。血清試料を1:100、1:1,000、1:10,000、及び1:100,000に希釈し、ブロッキングしたプレートに加えた。検出抗体は、ポリクローナル抗ヒトIgGサル吸収抗体とした。各抗体またはFc−Fab融合ポリペプチドに対して個々に標準曲線を作成し(48〜200000pg/mLのIgG)、アッセイの血清中の定量下限(LLOQ)は20ng/mLである。
カニクイザルCSF中の可溶性のAPPα/β濃度を、MesoScale Discovery(MSD)multiplexキット(MSD#K15120E)を使用して測定した。2種類の異なる抗体がsAPPαまたはsAPPβのいずれかを特異的に捕捉し、次に、両方の被検物質を、SULFOタグで標識した抗APPマウスモノクローナル抗体で検出した。カニクイザルのAβ40濃度を、MSD ultra−sensitiveキット(MSD#K151FTE)を使用して測定した。このアッセイではhuAβ特異的6E10抗体を捕捉分子として使用し、ペプチドのC末端に対して特異的な抗Aβ40抗体を検出分子として用いた。いずれのアッセイも製造者の指示に従って行った。要約すると、予めコーティングしたプレートをMSD Blocker Aで1時間ブロッキングした。CSF試料を1:5に希釈し、ブロッキングしたプレートに二重で加えた後、4℃で一晩インキュベートした。次に、それぞれの検出抗体を加え、各プレートをSector S600装置で読み取った。標準曲線として0.92〜3750pg/mLのhuAβ40及び0.1〜100ng/mLのsAPPα/βの両方を、4パラメータロジスティック回帰を用いてフィッティングした。このアッセイでは、Aβ40のLLOQは73pg/mLであり、sAPPα/βでは0.5ng/mLであった。
投与後最初の7日間からの中間の血漿PKは、Ab210及びCH3C.35.9:Ab153で、それらの末梢におけるTfRに対する結合のため、予想された標的介在性クリアランスを示した(図42(A))。Ab153及びAb210抗体の両方、ならびにCH3C.35.9:Ab153は、対照IgGと比較して血漿中Aβ40の顕著で持続的な低下をもたらし(図42(B))、これら3種類の分子のすべてが同程度にインビボのBACE1活性を阻害する能力を有することが確認された。CSF中では、Ab210及びCH3C.35.9:Ab153の両方が、対照IgGと比較してCSF中のAβ40及びsAPPβ/sAPPα比を、それぞれ約70%及び約75%にまで低下させる能力を有した(図43(A)及び43(B))。TfRに結合しない抗BACE1抗体であるAb153は、対照IgGと比較してCSF中のAβ40及びsAPPβ/sAPPα比に与えた影響は最小であった。これらの結果は、CH3C変異体ポリペプチド(例えば、クローンCH3C.35.9)によるTfRへの結合が、抗BACE1抗体のFabドメインに融合させたCH3C変異体ポリペプチドを含むFc−Fab融合体(例えば、CH3C.35.9:Ab153)のCNS中への浸透量を高めることによってCSF中のAβ40及びsAPPβ/sAPPαの生成を阻害することを示すものである。
本実施例では、変異M201L及びN207SがCH3C.35と両立することについて述べる。
本実施例では、配列449の配列を有する第1のポリペプチドと、SEQ ID NO:450の配列を有する第2のポリペプチドとを含むTfRコンストラクトの発現及び精製について述べる。
本明細書で開示される主題に従って提供される例示的な実施形態には、これらに限定されるものではないが、請求項及び以下の各実施形態が含まれる。
(a)改変Fcポリペプチド、またはそのフラグメントと、
(b)BBB受容体に特異的に結合する前記改変Fcポリペプチドまたはフラグメント内の第1の部位と、
(c)新生児Fc受容体(FcRn)に結合する第2の部位と
を含む、前記ポリペプチド。
(a)残基47、49、56、58、59、60、61、62、及び63、
(b)残基39、40、41、42、43、44、68、70、71、及び72、
(c)残基41、42、43、44、45、65、66、67、69、及び73、ならびに、
(d)残基45、47、49、95、97、99、102、103、及び104
からなる群から選択されるアミノ酸の組の中の少なくとも2個のアミノ酸の置換を含み、前記残基の位置がSEQ ID NO:1を基準として決められる、実施形態15または16に記載のポリペプチド。
(a)残基157、159、160、161、162、163、186、189、及び194、ならびに
(b)残基118、119、120、122、210、211、212、及び213
からなる群から選択されるアミノ酸の組の中の少なくとも2個のアミノ酸の置換を含み、前記残基の位置がSEQ ID NO:1を基準として決められる、実施形態18または19に記載のポリペプチド。
(a)抗原に結合することが可能な抗体可変領域配列、またはその抗原結合フラグメントと、
(b)改変Fcポリペプチドを含むポリペプチド、またはそのフラグメントと
を含み、前記改変Fcポリペプチドまたはフラグメントが、BBB受容体に特異的に結合する第1の結合部位と、新生児Fc受容体(FcRn)に結合する第2の結合部位とを有する、前記タンパク質。
Claims (47)
- 単量体のトランスフェリン受容体(TfR)アピカルドメインを含む単離された組換えTfRコンストラクトであって、前記TfRのプロテアーゼ様ドメインまたは螺旋ドメインを含まない、前記TfRコンストラクト。
- 保存されたエピトープまたは抗原を提示し、かつ/または天然のヒトTfRのアピカルドメインのおよその3次元構造を保持するか、もしくは約2未満の平均二乗偏差(RMSD)を有する、請求項1に記載のTfRコンストラクト。
- 前記3次元構造がX線結晶解析により測定される、請求項1または2に記載のTfRコンストラクト。
- (a)TfRアピカルドメインの第1の部分の配列を含む第1のポリペプチドと、
(b)任意選択的なリンカーと、
(c)前記TfRアピカルドメインの第2の部分の配列を含む第2のポリペプチドと
を含み、
完全長のTfR配列に対して、前記TfRアピカルドメインの前記第1の部分の配列が前記TfRアピカルドメインの前記第2の部分の配列のC末端側であり、
前記第1のポリペプチド、前記任意選択的なリンカー、及び前記第2のポリペプチドが直列に融合されている、
TfRコンストラクト。 - 前記第2の部分の最後のアミノ酸が前記第1の部分の最初のアミノ酸と融合されている、請求項4に記載のTfRコンストラクト。
- 前記第1のポリペプチドが、完全長TfRアピカルドメインのC末端フラグメントを含み、前記第2のポリペプチドが、前記完全長TfRアピカルドメインのN末端フラグメントを含む、請求項4または5に記載のTfRコンストラクト。
- 前記第1のポリペプチドが、SEQ ID NO:427の配列に対して最大7個のアミノ酸の変化を有する配列を含む、請求項4〜6のいずれか1項に記載のTfRコンストラクト。
- 前記第2のポリペプチドが、SEQ ID NO:428の配列に対して最大16個のアミノ酸の変化を有する配列を含む、請求項4〜8のいずれか1項に記載のTfRコンストラクト。
- 前記TfRアピカルドメインが、SEQ ID NO:107または108の配列を含む、請求項1〜10のいずれか1項に記載のTfRコンストラクト。
- アレナウイルスに結合する、請求項1〜11のいずれか1項に記載のTfRコンストラクト。
- (a)SEQ ID NO:427の配列に対して少なくとも90%の配列同一性を有する配列を含む前記第1のポリペプチドと、
(b)前記任意選択的なリンカーと、
(c)SEQ ID NO:428の配列に対して少なくとも90%の配列同一性を有する配列を含む前記第2のポリペプチドと
を含む、請求項4〜12のいずれか1項に記載のTfRコンストラクト。 - (a)SEQ ID NO:427の配列に対して最大7個のアミノ酸の変化を有する配列を含む前記第1のポリペプチドと、
(b)前記任意選択的なリンカーと、
(c)SEQ ID NO:428の配列に対して最大16個のアミノ酸の変化を有する配列を含む前記第2のポリペプチドと
を含む、請求項4〜12のいずれか1項に記載のTfRコンストラクト。 - 前記第1のポリペプチドが前記第2のポリペプチドと直列に直接融合されている、請求項4〜20のいずれか1項に記載のTfRコンストラクト。
- SEQ ID NO:449の配列を有する前記第1のポリペプチドと、SEQ ID NO:450の配列を有する前記第2のポリペプチドとを含み、前記第1のポリペプチドのC末端が前記第2のポリペプチドのN末端に融合されている、請求項4〜21のいずれか1項に記載のTfRコンストラクト。
- 前記リンカーがアミノ酸1〜10個の長さである、請求項4〜20、22、及び23のいずれか1項に記載のTfRコンストラクト。
- 前記リンカーが、G、GG、GGG、またはGGGG(SEQ ID NO:453)である、請求項24に記載のTfRコンストラクト。
- 前記リンカーがタンパク質のループドメインを含む、請求項4〜20、22、及び23のいずれか1項に記載のTfRコンストラクト。
- 前記タンパク質のループドメインのN末端とC末端との間の距離が5Å未満である、請求項26に記載のTfRコンストラクト。
- 精製ペプチドを更に含む、請求項1〜27のいずれか1項に記載のTfRコンストラクト。
- 前記精製ペプチドが、前記TfRコンストラクトのN末端またはC末端に融合されている、請求項28に記載のTfRコンストラクト。
- 切断ペプチドを更に含む、請求項1〜29のいずれか1項に記載のTfRコンストラクト。
- 前記切断ペプチドが、前記TfRコンストラクトのN末端またはC末端に融合されている、請求項30に記載のTfRコンストラクト。
- 請求項1〜31のいずれか1項に記載のTfRコンストラクトをコードするヌクレオチド配列を含む、単離ポリヌクレオチド。
- 請求項32に記載のポリヌクレオチドを含むベクター。
- 請求項32に記載のポリヌクレオチドまたは請求項33に記載のベクターを含む宿主細胞。
- TfRのアピカルドメインに結合する物質を同定する方法であって、
(a)請求項1〜31のいずれか1項に記載のTfRコンストラクトを前記物質と接触させる工程と、
(b)前記物質が前記TfRコンストラクトに結合するかどうかを決定する工程と
を含む、前記方法。 - 前記物質が、ポリペプチドまたはタンパク質である、請求項35に記載の方法。
- 前記物質が、改変Fcポリペプチドまたは改変Fcポリペプチド二量体である、請求項35または36に記載の方法。
- 前記物質が抗体である、請求項35または36に記載の方法。
- 前記決定する工程(b)が、ELISAまたは表面プラズモン共鳴によって行われる、請求項35〜38のいずれか1項に記載の方法。
- 組換えTfRアピカルドメインコンストラクトを作製する方法であって、直列に融合された第1のポリヌクレオチドと第2のポリヌクレオチドとを含む遺伝子を発現させることを含み、前記第1のポリヌクレオチドが完全長のTfRアピカルドメインのC末端フラグメントをコードし、前記第2のポリヌクレオチドが前記完全長のTfRアピカルドメインのN末端フラグメントをコードする、前記方法。
- 発現されると、前記ドメインのN末端フラグメントの最初のアミノ酸が前記ドメインのC末端フラグメントの最後のアミノ酸と一次配列で連結されるように、前記第1のポリヌクレオチドと前記第2のポリヌクレオチドとが直列に融合される、請求項40に記載の方法。
- 前記遺伝子が、任意選択的なタンパク質リンカーをコードする任意選択的なリンカーポリヌクレオチドを更に含み、発現されると、前記ドメインのN末端フラグメントの最初のアミノ酸が前記リンカーの最後のアミノ酸と一次配列で連結され、前記リンカーの最初のアミノ酸が前記ドメインのC末端フラグメントの最後のアミノ酸と一次配列で連結される、請求項40または41に記載の方法。
- 発現されると、発現されたタンパク質が環状構造の形となるように、前記遺伝子が、直列な前記第1のポリヌクレオチド、前記任意選択的なリンカーポリヌクレオチド、及び前記第2のポリヌクレオチドをコードする、請求項40〜42のいずれか1項に記載の方法。
- 前記発現されたタンパク質を精製して前記単離された組換えTfRアピカルドメインコンストラクトを得ることを更に含む、請求項40〜43のいずれか1項に記載の方法。
- 請求項40〜44のいずれか1項に記載の方法に従って作製された、単離された組換えヒトTfRアピカルドメインコンストラクト。
- SEQ ID NO:109、110、及び301のうちのいずれか1つのアミノ酸配列を含む、単離された組換えTfRアピカルドメインコンストラクト。
- SEQ ID NO:109、110、及び301のうちのいずれか1つと少なくとも約90%の同一性を有するアミノ酸配列を含む、単離された組換えTfRアピカルドメインコンストラクト。
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