JP2020115787A - Cell culture apparatus and cell culture method - Google Patents
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Abstract
Description
本発明は、血液及び体液中の特定の細胞(血液・体液中に存在するがん細胞等)を捕捉、培養できる細胞培養装置及び細胞培養方法に関する。 The present invention relates to a cell culture device and a cell culture method capable of capturing and culturing specific cells in blood and body fluid (such as cancer cells present in blood and body fluid).
がん細胞等の特定の細胞を捕捉・培養できれば、病気等のメカニズム解明、それに基づく新薬の開発、治療方法の検討に役立てることが期待される。特に、がん細胞が発生するとやがて、血液・体液中に出て来ることが知られており、血液中に出て来たがん細胞は、血中循環腫瘍細胞(CTC)と呼ばれている。そして、この血中循環腫瘍細胞を調べることによるがんの治療効果の確認、予後寿命、投与前の抗がん剤の効果予測、がん細胞の遺伝子解析を用いた治療方法の検討、等が期待されている。 If specific cells such as cancer cells can be captured and cultured, it is expected to be useful for elucidating the mechanism of diseases, developing new drugs based on them, and examining treatment methods. In particular, it is known that when cancer cells occur, they will soon come out in the blood/body fluid, and the cancer cells that come out in the blood are called circulating tumor cells in the blood (CTC). .. And, confirming the therapeutic effect of cancer by examining this circulating tumor cell in the blood, prognosis lifespan, predicting the effect of anticancer drug before administration, examining the therapeutic method using gene analysis of cancer cells, etc. Is expected.
しかしながら、血中循環腫瘍細胞は非常に数が少なく(数個〜数百個/血液1mL)、がん細胞を捕捉することが難しいという問題がある。また、捕捉した細胞を培養して増やすことも難しいという問題がある。 However, circulating tumor cells in the blood are very small in number (several to several hundreds per 1 mL of blood), and there is a problem that it is difficult to capture cancer cells. There is also a problem that it is difficult to culture and increase the captured cells.
例えば、血中循環腫瘍細胞の捕捉技術として、Cell Searchシステムと呼ばれるものが知られているが、これは、抗原抗体反応(EpCAM抗体で捕捉)を用いる技術であるため、EpCAMを発現しているがん細胞しか捕捉できず、捕捉可能ながん細胞の種類に制限があり、また、捕捉したがん細胞を培養することにも制限がある(特許文献1等参照)。
For example, as a technique for capturing circulating tumor cells in the blood, a technique called Cell Search system is known. Since this is a technique that uses an antigen-antibody reaction (captured by EpCAM antibody), EpCAM is expressed. Only cancer cells can be captured, the types of cancer cells that can be captured are limited, and the culturing of the captured cancer cells is also limited (see
本発明は、前記課題を解決し、EpCAMを発現していないがん細胞も含め、多くのがん細胞を捕捉、培養できる細胞培養装置及び細胞培養方法を提供することを目的とする。 It is an object of the present invention to solve the above problems and provide a cell culture device and a cell culture method capable of capturing and culturing many cancer cells, including cancer cells that do not express EpCAM.
本発明は、装置表面の少なくとも一部に親水性ポリマー層が形成され、かつ前記親水性ポリマー層にフィブロネクチンが吸着されている細胞培養装置であって、前記親水性ポリマー層は、下記〔a〕、〔b〕及び〔c〕からなる群より選択される少なくとも1種の親水性ポリマーで形成されている細胞培養装置に関する。
〔a〕下記式(I)で表されるポリマー
〔b〕ポリ(メタ)アクリロイルモルホリン
〔c〕下記式(I−1)で表される化合物及び(メタ)アクリロイルモルホリンからなる群より選択される少なくとも1種の親水性モノマーと、他のモノマーとの共重合体
[A] Polymer represented by the following formula (I)
[B] poly(meth)acryloylmorpholine [c] at least one hydrophilic monomer selected from the group consisting of a compound represented by the following formula (I-1) and (meth)acryloylmorpholine, and another monomer: Copolymer of
前記細胞培養装置において、前記親水性ポリマー層の厚みが10〜800nmであることが好ましい。
前記細胞培養装置は、血液又は体液に含まれる細胞を培養する装置であることが好ましい。
In the cell culture device, the hydrophilic polymer layer preferably has a thickness of 10 to 800 nm.
The cell culture device is preferably a device for culturing cells contained in blood or body fluid.
本発明はまた、細胞を含む試料をフィブロネクチンが吸着している親水性ポリマー層に接触させて前記細胞を捕捉し、培養する細胞培養方法であって、前記親水性ポリマー層は、下記〔a〕、〔b〕及び〔c〕からなる群より選択される少なくとも1種の親水性ポリマーで形成されている細胞培養方法に関する。
〔a〕下記式(I)で表されるポリマー
〔b〕ポリ(メタ)アクリロイルモルホリン
〔c〕下記式(I−1)で表される化合物及び(メタ)アクリロイルモルホリンからなる群より選択される少なくとも1種の親水性モノマーと、他のモノマーとの共重合体
[A] Polymer represented by the following formula (I)
[B] poly(meth)acryloylmorpholine [c] at least one hydrophilic monomer selected from the group consisting of a compound represented by the following formula (I-1) and (meth)acryloylmorpholine, and another monomer: Copolymer of
前記細胞培養方法において、前記試料を前記親水性ポリマー層に接触させて特定細胞を接着及び/又は吸着させた後、前記特定細胞を培養することが好ましい。 In the cell culture method, it is preferable that the sample is brought into contact with the hydrophilic polymer layer to adhere and/or adsorb the specific cells, and then the specific cells are cultured.
前記細胞培養方法において、前記試料は、下記(1)、(2)及び(3)からなる群より選択される少なくとも1種であることが好ましい。
(1)血液又は体液
(2)血液又は体液から血液中又は体液中の特定細胞を分離及び/又は濃縮した試料
(3)血液又は体液から血液中又は体液中の特定細胞を分離及び/又は濃縮し、更に懸濁させた試料
In the cell culture method, the sample is preferably at least one selected from the group consisting of the following (1), (2) and (3).
(1) Blood or body fluid (2) Sample obtained by separating and/or concentrating specific cells in blood or body fluid from blood or body fluid (3) Separation and/or concentration of specific cells in blood or body fluid from blood or body fluid And suspended sample
前記分離及び/又は濃縮は、細胞の大きさによる分離及び/又は遠心分離により行われることが好ましい。
分離液を用いた前記遠心分離により前記特定細胞を分離及び/又は濃縮することが好ましい。
The separation and/or concentration is preferably performed by cell size separation and/or centrifugation.
It is preferable to separate and/or concentrate the specific cells by the centrifugation using a separation liquid.
前記分離及び/又は濃縮時に前記試料に溶血剤を混合することが好ましい。
前記分離及び/又は濃縮時に前記試料中の血球細胞同士を凝集させることが好ましい。
It is preferable to mix a hemolytic agent with the sample during the separation and/or concentration.
It is preferable that the blood cells in the sample are aggregated during the separation and/or the concentration.
前記細胞培養方法において、培養に液体培地を用い、4日に1回以上培地交換をすることが好ましい。 In the cell culture method, it is preferable that a liquid medium is used for the culture and the medium is exchanged at least once every four days.
本発明によれば、装置表面の少なくとも一部に親水性ポリマー層が形成され、かつ前記親水性ポリマー層にフィブロネクチンが吸着されている細胞培養装置であって、前記親水性ポリマー層は、前記〔a〕、〔b〕及び〔c〕からなる群より選択される少なくとも1種の親水性ポリマーで形成されている細胞培養装置であるので、EpCAMを発現していないがん細胞も含め、多くのがん細胞を捕捉、培養できる。 According to the invention, a hydrophilic polymer layer is formed on at least a part of the device surface, and a cell culture device in which fibronectin is adsorbed to the hydrophilic polymer layer, wherein the hydrophilic polymer layer is Since it is a cell culture device formed of at least one hydrophilic polymer selected from the group consisting of a], [b] and [c], many cells including cancer cells not expressing EpCAM can be obtained. Can capture and culture cancer cells.
本発明は、装置表面の少なくとも一部に親水性ポリマー層が形成され、かつ前記親水性ポリマー層にフィブロネクチンが吸着されている細胞培養装置であって、前記親水性ポリマー層は、前記〔a〕、〔b〕及び〔c〕からなる群より選択される少なくとも1種の親水性ポリマーで形成されている細胞培養装置である。 The present invention is a cell culture device in which a hydrophilic polymer layer is formed on at least a part of the surface of the device, and fibronectin is adsorbed to the hydrophilic polymer layer, wherein the hydrophilic polymer layer comprises the above [a]. , [B] and [c], a cell culture device formed of at least one hydrophilic polymer selected from the group consisting of:
細胞培養装置の表面の少なくとも一部に親水性ポリマー層を形成するだけでなく、更にその親水性ポリマー層にフィブロネクチンも吸着させているので、親水性ポリマーの細胞(がん細胞等の特定細胞等)の接着(吸着)能力を顕著に向上できる。従って、がん細胞等の特定細胞の捕捉性が大きく向上すると共に、血小板等の捕捉性が低下し、たんぱく質が多い状態では到底発揮し得ない特定細胞の選択的な捕捉効果を奏する。また、細胞培養装置の表面の少なくとも一部に親水性ポリマー層を形成するだけでなく、更にその親水性ポリマー層にフィブロネクチンも吸着させているので、捕捉した細胞(特定細胞等)を好適に培養できる。 Not only is a hydrophilic polymer layer formed on at least a part of the surface of the cell culture device, but fibronectin is also adsorbed on the hydrophilic polymer layer, so that hydrophilic polymer cells (specific cells such as cancer cells, etc. It is possible to remarkably improve the adhesion (adsorption) ability of (1). Therefore, the ability to capture specific cells such as cancer cells is greatly improved, the ability to capture platelets and the like is lowered, and a selective capturing effect of specific cells that cannot be exerted at all in a protein-rich state is exerted. Further, not only the hydrophilic polymer layer is formed on at least a part of the surface of the cell culture device, but fibronectin is also adsorbed on the hydrophilic polymer layer, so that the trapped cells (specific cells etc.) are preferably cultured. it can.
具体的に説明すると、血中循環腫瘍細胞(数個〜数百個/血液1mL)等の体液中に出てきた腫瘍細胞(がん細胞等)は、非常に数が少なく、検査に供するには、採取した体液中に存在する腫瘍細胞をできる限り多く捕捉することが重要である。本発明では、親水性ポリマー層に加え、腫瘍細胞の接着(吸着)を促進するフィブロネクチンを該親水性ポリマー層の表面に更に吸着させているため、これに血液等の体液を接触させることで、体液中の腫瘍細胞等が親水性ポリマー層に、より多く吸着・接着される。また、吸着・接着した腫瘍細胞は、フィブロネクチンの存在により、分化が促進され、培養が進む。そして、その培養した細胞で抗がん剤等の効き目を確認することで、抗がん剤等の投与前に、体の外で、抗がん剤等の効き目を確認できると同時に、抗がん剤等の選定にも役立つ。更には、その培養した細胞で、がん細胞の増殖のメカニズム解明や、新薬(抗がん剤、分子標的薬等)の開発に使用することが出来る。 Specifically, the number of tumor cells (cancer cells, etc.) that have appeared in body fluids such as circulating tumor cells in the blood (several to several hundreds/1 mL of blood) is very small, and are suitable for testing. It is important to capture as much as possible the tumor cells present in the collected body fluid. In the present invention, in addition to the hydrophilic polymer layer, since fibronectin that promotes adhesion (adsorption) of tumor cells is further adsorbed on the surface of the hydrophilic polymer layer, by contacting it with a body fluid such as blood, Tumor cells and the like in body fluid are more adsorbed and adhered to the hydrophilic polymer layer. The presence of fibronectin promotes the differentiation of the adsorbed/adhered tumor cells and promotes the culture. Then, by confirming the effect of the anticancer drug or the like on the cultured cells, it is possible to confirm the effect of the anticancer drug or the like outside the body before administration of the anticancer drug or the like, and at the same time, It is also useful for selecting drugs. Furthermore, the cultured cells can be used to elucidate the mechanism of cancer cell growth and to develop new drugs (anticancer drugs, molecular target drugs, etc.).
以下、本発明の好ましい実施形態の一例を、図を用いて説明する。
図1の細胞培養装置1は、細胞を捕捉・培養する目的で使用される装置である。細胞としては、がん細胞(EpCAMを発現していないがん細胞を含む任意のがん細胞)等の特定細胞等が挙げられる。がん細胞としては、血中循環腫瘍細胞(CTC)等が挙げられる。
Hereinafter, an example of a preferred embodiment of the present invention will be described with reference to the drawings.
The
ウェル状の凹部に細胞の入った溶液を注入して、細胞の捕捉を行い、その後、細胞の培養を行うための形状を有している。ウェル11はシングルウェルでも、マトリクス状にウェルが配置されたマルチウェル(プレート)でもよい。また、ウェル部の形状は特に限定されず、円形、楕円形、四角形等の多角形等の形状の凹み(凹部)等が挙げられる。更にウェル部の横壁が、底部と外れる構造になっていてもよい。ウェルは、細胞(特定細胞等)の有無の確認(観察)、細胞数(特定細胞数等)の計測、細胞(特定細胞等)の培養、薬の効き目の確認・選定等を実施できる。また、ウェル部の横壁が外れる方が、観察、計測、確認・選定等がしやすい場合があり、更には培養した細胞等を取り出しやすくなる。
It has a shape for injecting a solution containing cells into well-shaped recesses to capture the cells and then culturing the cells. The
ウェル11の構成材料としては、細胞の観察では透明性が高いものがよく、ポリアクリル酸メチル、ポリメタクリル酸メチル、ポリアクリル酸、ポリメタクリル酸等のアクリル樹脂(ポリアクリル樹脂)、シクロオレフィン樹脂(ポリシクロオレフィン)、カーボネート樹脂(ポリカーボネート)、スチレン樹脂(ポリスチレン)、ポリエチレンテレフタレート(PET)等のポリエステル樹脂、ポリジメチルシロキサン及びガラス(ホウけい酸ガラス、ソーダ石灰ガラス等)等が挙げられる。親水性ポリマーのコーティングには、構成材料が親水性が高い方が好ましく、ポリアクリル樹脂やソーダ石灰ガラスが好ましい。
As a constituent material of the
ウェル11は非貫通孔であり、上部は開口されている。ウェル11には、開口から、細胞の入った溶液(試料(特定細胞を含む血液、体液等))が注入される。また、がん細胞等の特定細胞の存在を確認した場合、特定細胞を培養するための培養液を注入することも可能である。
The
ウェル11の開口の長さL(開口が矩形状の場合の各辺等)、直径R(開口が円形状の場合の直径等)、深さDは、特に限定されない。溶液(試料)を入れるという観点からは、深さD(高さ)は3〜25mmが好ましい。図1では、ウェル11の表面及び裏面に対して、ウェル11の内側面が略垂直であるが、ウェル11は、内側面が傾斜し、開口から底面にかけて窄まる形状でも良い。また、内側面が傾斜し、開口から底面にかけて拡がる形状でも良い。また、底部は平面でもよいし、凹凸があってもよい。凹型のへこみでは細胞が集まりやすく、培養に有利になる。それは、細胞が1個でいるより、複数の塊でいる方が何らかのシグナルを出しあい培養が促進されるからである。
The length L (each side when the opening is rectangular), the diameter R (diameter when the opening is circular), and the depth D of the opening of the
マルチウェルの場合、複数のウェルが分離可能なものでもよい。複数のウェルを有する場合、細胞数(特定細胞数等)計測用ウェルと、細胞(特定細胞等)培養用ウェルとに分離使用でき、例えば、計測用ウェルでがん細胞の存在の有無を確認した上で、存在が確認された場合に培養用ウェルでがん細胞を培養し、その細胞で薬の効き目を確認できる。 In the case of a multi-well, a plurality of wells may be separable. If you have multiple wells, you can separate and use them for cell number (specific cell number etc.) measurement wells and cell (specific cell etc.) culture wells. For example, check the presence or absence of cancer cells in the measurement wells. Then, if the presence is confirmed, the cancer cells are cultured in a culture well, and the efficacy of the drug can be confirmed in the cells.
細胞培養装置1において、装置の表面(ウェル11の表面)は、少なくとも一部に親水性ポリマー層21が形成され、かつ、該親水性ポリマー層21にフィブロネクチン31が吸着されている。装置の表面は、ウェル11の場合、その内表面であることが好ましい。図1は、ウェル11の底面及び側面の一部に親水性ポリマー層21が形成され、更に該親水性ポリマー層21にフィブロネクチン31を吸着させている例を示している。
In the
ウェル11内に、血液や体液を導入すると、これらに含まれるがん細胞等の特定細胞は、フィブロネクチン31を吸着させた親水性ポリマー層21に吸着・接着されると共に、血小板等の血球細胞の吸着が抑制される。そのため、血液や体液の導入後に所定時間保持し、次いで、洗浄することで、特定細胞を親水性ポリマー層21に吸着・接着できる。そして、吸着・接着された特定細胞の数を測定することで、血液や体液中のがん細胞数が判る。更に特定細胞は、親水性ポリマー層にフィブロネクチンも吸着させた層に吸着・接着しているので、特定細胞を効率的に培養できる。従って、培養した特定細胞を用いることで、がん治療効果の確認等が期待される。
When blood or body fluid is introduced into the well 11, specific cells such as cancer cells contained therein are adsorbed and adhered to the
親水性ポリマー層21(親水性ポリマーにより形成される層)の膜厚は、好ましくは10〜800nm、より好ましくは30〜550nmである。上記範囲内に調整することで、良好なタンパク質や細胞に対する低吸着性、がん細胞に対する選択的吸着性・接着性が得られる。また、がん細胞を効率的に培養できる。 The film thickness of the hydrophilic polymer layer 21 (layer formed of a hydrophilic polymer) is preferably 10 to 800 nm, more preferably 30 to 550 nm. By adjusting the amount within the above range, good low adsorptivity for proteins and cells, and selective adsorptivity/adhesiveness for cancer cells can be obtained. Moreover, cancer cells can be efficiently cultured.
親水性ポリマー層21を形成する親水性ポリマーは、下記〔a〕、〔b〕及び〔c〕からなる群より選択される少なくとも1種のである。
〔a〕下記式(I)で表されるポリマー
〔b〕ポリ(メタ)アクリロイルモルホリン
〔c〕下記式(I−1)で表される化合物及び(メタ)アクリロイルモルホリンからなる群より選択される少なくとも1種の親水性モノマーと、他のモノマーとの共重合体
[A] Polymer represented by the following formula (I)
[B] poly(meth)acryloylmorpholine [c] at least one hydrophilic monomer selected from the group consisting of a compound represented by the following formula (I-1) and (meth)acryloylmorpholine, and another monomer: Copolymer of
式(I)、(I−1)において、R2のアルキル基の炭素数は、1〜10が好ましく、1〜5がより好ましい。なかでも、R2は、メチル基又はエチル基が特に好ましい。mは、1〜3が好ましい。n(繰り返し単位数)は、15〜1000が好ましく、30〜500がより好ましい。 In formulas (I) and (I-1), the carbon number of the alkyl group of R 2 is preferably 1 to 10, and more preferably 1 to 5. Of these, R 2 is particularly preferably a methyl group or an ethyl group. 1-3 are preferable as m. 15-1000 are preferable and, as for n (number of repeating units), 30-500 are more preferable.
〔c〕の共重合体において、他のモノマーは、親水性ポリマーの作用効果を阻害しない範囲内で適宜選択すれば良い。例えば、スチレン等の芳香族モノマー、酢酸ビニル、温度応答性を付与できるN−イソプロピルアクリルアミドなどが挙げられる。 In the copolymer [c], the other monomer may be appropriately selected within a range that does not impair the action and effect of the hydrophilic polymer. Examples thereof include aromatic monomers such as styrene, vinyl acetate, and N-isopropylacrylamide capable of imparting temperature response.
親水性ポリマーの数平均分子量(Mn)は、がん細胞に対する選択的吸着性・接着性、がん細胞の培養性の観点から、好ましくは8000〜150000、より好ましくは10000〜60000、更に好ましくは12000〜50000である。なお、本明細書において、Mnは、ゲルパーミエーションクロマトグラフィー(GPC)(東ソー(株)製GPC−8000シリーズ、検出器:示差屈折計、カラム:東ソー(株)製のTSKGEL SUPERMALTPORE HZ−M)による測定値を基に標準ポリスチレン換算により求めることができる。 The number average molecular weight (Mn) of the hydrophilic polymer is preferably 8000 to 150,000, more preferably 10,000 to 60,000, and further preferably from the viewpoint of selective adsorption/adhesiveness to cancer cells and culturing properties of cancer cells. It is 12,000 to 50,000. In the present specification, Mn means gel permeation chromatography (GPC) (GPC-8000 series manufactured by Tosoh Corporation, detector: differential refractometer, column: TSKGEL SUPERMALPTORE HZ-M manufactured by Tosoh Corporation). It can be determined by standard polystyrene conversion based on the measured value by.
親水性ポリマー層21上にフィブロネクチン31を吸着させるという点から、フィブロネクチン濃度を、好ましくは0.5〜500μg/ml、より好ましくは1〜250μg/mlに調整した溶液、分散液等を用いることが好適である。上記範囲内の濃度に調整することで、良好なタンパク質や細胞に対する低吸着性、がん細胞に対する選択的吸着性・接着性、がん細胞の培養性が得られる。
From the viewpoint of adsorbing the
細胞培養装置1は、例えば、図1の内面にフィブロネクチン31を吸着させた親水性ポリマー層21が形成されているウェル11、複数のウェル11を備えたマルチウェルプレート、更に必要に応じて他の部材(部品)を付加することにより、製造できる。
The
具体的には、親水性ポリマー層21が形成されたウェル11を有する装置の場合、(1)親水性ポリマーを各種溶剤に溶解・分散した親水性ポリマー溶液・分散液を、ウェル11の内部に注入し、所定時間保持する方法、(2)該親水性ポリマー溶液・分散液をウェル11の内面に塗工(噴霧)する方法、等、公知の手法により、ウェル11の内面の全部又は一部に親水性ポリマー溶液・分散液をコーティングすることで、親水性ポリマーにより形成されるポリマー層が形成されたウェル11を製造できる。
Specifically, in the case of a device having a well 11 in which a
溶剤、注入方法、塗工(噴霧)方法などは、従来公知の材料及び方法を適用できる。
(1)、(2)の保持時間は、ウェル11の大きさ、導入する液種、等により適宜設定すれば良いが、5分〜10時間が好ましく、10分〜5時間がより好ましく、15分〜2時間が更に好ましい。保持後、適宜、余分な親水性ポリマー溶液・分散液を排出し、または排出せずに、乾燥してもよい。
Conventionally known materials and methods can be applied to the solvent, the injection method, the coating (spraying) method, and the like.
The holding time of (1) and (2) may be appropriately set depending on the size of the well 11, the type of liquid to be introduced, etc., but 5 minutes to 10 hours is preferable, 10 minutes to 5 hours is more preferable, and 15 Minutes to 2 hours are more preferable. After the holding, the excess hydrophilic polymer solution/dispersion may be appropriately discharged or may be dried without being discharged.
次いで、形成された親水性ポリマー層21にフィブロネクチン31を吸着させる方法は特に限定されず、公知の方法を適用できる。例えば、親水性ポリマー層21にフィブロネクチン31の緩衝溶液(リン酸緩衝生理食塩水PBS等)を公知の方法で接触させ、所定温度で所定時間放置し、必要に応じて洗浄する方法、等で吸着させることができる。温度、時間は適宜設定すればよく、例えば、10〜50℃、0.1〜24時間程度で実施できる。
Next, the method of adsorbing the
そして、作製されたフィブロネクチン31が吸着された親水性ポリマー層21をウェル11の内面の一部に形成したものに、必要に応じて他の部品を追加することで、細胞培養装置を製造できる。
Then, the
本発明の細胞培養方法は、細胞を含む試料(特定細胞を含む血液又は体液等)を親水性ポリマー層に接触させて前記細胞を捕捉し、培養する細胞培養方法で、該親水性ポリマー層が前記〔a〕、〔b〕及び〔c〕からなる群より選択される少なくとも1種の親水性ポリマーで形成されている方法である。 The cell culture method of the present invention is a cell culture method in which a cell-containing sample (such as blood or body fluid containing specific cells) is brought into contact with the hydrophilic polymer layer to capture the cells, and the hydrophilic polymer layer is cultivated. It is a method of forming with at least one hydrophilic polymer selected from the group consisting of the above [a], [b] and [c].
前記のとおり、前記細胞培養装置は、がん細胞等の捕捉性が向上すると共に、血小板等の血球細胞の捕捉性が低下し、がん細胞等の選択的な捕捉効果が得られ、更にがん細胞等を効率的に培養できる。そのため、例えば、該装置を用いて、血液又は体液(細胞を含む試料)をフィブロネクチンを吸着させた親水性ポリマー層に接触させてがん細胞等の特定細胞を接着及び/又は吸着させた後、該特定細胞を培養し、培養した特定細胞を調べることで、前述のがん治療効果の確認、体の外での抗がん剤等の効き目の確認、抗がん剤等の選定、新薬の開発、病気にメカニズム解明等が期待できる。 As described above, the cell culture device has an improved ability to capture cancer cells and the like, has a reduced ability to capture blood cells such as platelets, and has a selective capture effect on cancer cells and the like. Cancer cells can be efficiently cultured. Therefore, for example, using the device, blood or body fluid (sample containing cells) is brought into contact with a hydrophilic polymer layer having adsorbed fibronectin to adhere and/or adsorb specific cells such as cancer cells, By culturing the specific cells and examining the cultivated specific cells, confirmation of the above-mentioned cancer treatment effect, confirmation of the efficacy of anticancer agents etc. outside the body, selection of anticancer agents, etc. Expected to elucidate the mechanism of development and disease.
細胞を含む試料としては、(1)血液又は体液(血液自体又は体液自体)、(2)血液又は体液から血液中又は体液中の特定細胞を分離及び/又は濃縮した試料、(3)血液又は体液から血液中又は体液中の特定細胞を分離及び/又は濃縮し、更に懸濁させた試料、等を好適に使用できる。 Examples of the sample containing cells include (1) blood or body fluid (blood itself or body fluid itself), (2) sample obtained by separating and/or concentrating blood or body fluid from blood or specific cells in body fluid, (3) blood or A sample obtained by separating and/or concentrating specific cells in the blood or body fluid from the body fluid and further suspending it can be preferably used.
前記(2)、(3)において、がん細胞等の特定細胞の分離及び/又は濃縮は、細胞の大きさによる分離・濃縮、遠心分離による分離・濃縮、等により実施可能である。細胞の大きさによる分離、濃縮としては、例えば、フィルター等を用いる方法等が挙げられる。 In the above (2) and (3), separation and/or concentration of specific cells such as cancer cells can be carried out by separation/concentration according to cell size, separation/concentration by centrifugation and the like. Examples of separation and concentration according to cell size include a method using a filter and the like.
遠心分離は、公知の方法を採用でき、例えば、公知の遠心分離装置で実施できる。遠心分離における遠心力、遠心分離の時間、温度は、血球細胞、がん細胞等の分離性等の観点から、適宜設定すれば良い。採取した血液又は体液に遠心分離を施し、中間の単核球層を分離することで、血小板、赤血球や多核の白血球が分離、除去され、がん細胞等の特定細胞の濃度を高めた試料を作製できる。 A known method can be adopted for the centrifugation, and for example, it can be carried out by a known centrifugation device. The centrifugal force in centrifugation, the time and temperature of centrifugation may be appropriately set from the viewpoint of separability of blood cells, cancer cells and the like. By centrifuging the collected blood or body fluid and separating the intermediate mononuclear cell layer, platelets, erythrocytes and polynuclear leukocytes are separated and removed, and a sample with an increased concentration of specific cells such as cancer cells is obtained. Can be made.
なお、遠心分離を行う前に、血液又は体液中のたんぱく質濃度を減少させる他の処理を施してもよい。血液又は体液中のたんぱく質濃度を減少させる他の処理方法としては、例えば、採取した血液又は体液を希釈する方法が挙げられる。ここで、希釈方法としては、ヒト血液のpH(約7.4)リン酸緩衝生理食塩水(PBS)等の緩衝溶液や、DMEM(ダルベッコ改変イーグル培地)等の液体培地、を用いる方法があり、具体的には、採取した血液又は体液に緩衝溶液を加えて希釈することや、液体培地に採取した血液又は体液を加えて希釈することで、採取した血液又は体液に比べて、たんぱく質濃度を減少させることが可能である。 It should be noted that before the centrifugation, other treatments for reducing the protein concentration in blood or body fluid may be performed. Other treatment methods for decreasing the protein concentration in blood or body fluid include, for example, a method of diluting the collected blood or body fluid. Here, as a method of dilution, there is a method of using a buffer solution such as human blood pH (about 7.4) phosphate buffered saline (PBS) or a liquid medium such as DMEM (Dulbecco's modified Eagle medium). Specifically, by adding a buffer solution to the collected blood or body fluid to dilute it, or by adding the collected blood or body fluid to a liquid medium and diluting it, the protein concentration can be increased compared to the collected blood or body fluid. It can be reduced.
遠心分離においては、分離液を用いた遠心分離により特定細胞を分離及び/又は濃縮することが好ましい。これにより、特定細胞(がん細胞等)等を含む単核球層、赤血球等を含む層、等に好適に分離できる。そして、単核球層を分離し、層中の特定細胞をフィブロネクチンを吸着させた親水性ポリマー層に捕捉し、次いで培養することにより、特定細胞を好適に培養できる。 In centrifugation, it is preferable to separate and/or concentrate specific cells by centrifugation using a separation liquid. Thereby, it is possible to preferably separate into a mononuclear cell layer containing specific cells (cancer cells and the like), a layer containing red blood cells and the like. Then, the mononuclear cell layer is separated, the specific cells in the layer are captured by the hydrophilic polymer layer having adsorbed fibronectin, and then the cells are cultured, whereby the specific cells can be suitably cultured.
密度勾配遠心法に用いられる分離液は、血液中の細胞の分画に適した比重を有し、また細胞を破壊することのない浸透圧及びpHを有するよう調製したものであればよい。媒体としては、密度勾配遠心分離法に使用可能な媒体を使用できる。分離液は、20℃での比重が1.076〜1.078g/mlであることが好ましい。また、分離液のpHは、4.5〜7.5が好ましい。 The separation liquid used in the density gradient centrifugation method may be one prepared so as to have a specific gravity suitable for fractionating cells in blood, and an osmotic pressure and a pH that do not destroy cells. As the medium, a medium that can be used in the density gradient centrifugation method can be used. The separated liquid preferably has a specific gravity at 20° C. of 1.076 to 1.078 g/ml. The pH of the separated liquid is preferably 4.5 to 7.5.
代表的な媒体(分離液)としては、スクロース、フィコール(スクロースとエピクロロヒドリンの共重合物)、パーコール(ポリビニルピロリドンの被膜を有するコロイド状シリカ製品)が挙げられる。フィコールは、Ficoll−Paque PLUS(ファルマシアバイオテク(株))、Histopaque−1077(シグマ アルドリッチ ジャパン(株))、リンフォプレップ(Lymphoprep)(ニコメッド、オスロ(ノルウェー))等;パーコールは、Percoll(シグマ アルドリッチ ジャパン(株))等;の製品が市販されている。 Representative media (separation liquids) include sucrose, ficoll (copolymer of sucrose and epichlorohydrin), and percoll (colloidal silica product having a polyvinylpyrrolidone coating). Ficoll is Ficoll-Paque PLUS (Pharmacia Biotech Co., Ltd.), Histopaque-1077 (Sigma Aldrich Japan Co., Ltd.), Lymphoprep (Lymphoprep) (Nikomed, Oslo (Norway)), etc.; Percoll is Percoll (Sigma Aldrich). Japan Co., Ltd.; products are commercially available.
前記(3)において、懸濁処理は、液体培地を用いる方法等を採用できる。 In the above (3), for the suspension treatment, a method using a liquid medium or the like can be adopted.
前記(2)、(3)において、試料中の赤血球の少なくとも一部を除去できる点から、特定細胞の分離及び/又は濃縮時に試料に溶血剤を混合(添加)することが好ましい。溶血剤は、物理的又は化学的に赤血球に作用し、赤血球を溶解する試薬である。溶血剤としては、従来使用されているものを使用でき、例えば、塩化アンモニウム、合成界面活性剤及びアルコールが挙げられる。 In the above (2) and (3), it is preferable to mix (add) a hemolytic agent to the sample at the time of separating and/or concentrating the specific cells, since at least a part of the red blood cells in the sample can be removed. A hemolytic agent is a reagent that physically or chemically acts on red blood cells to lyse them. As the hemolytic agent, those conventionally used can be used, and examples thereof include ammonium chloride, synthetic surfactants and alcohols.
前記(2)、(3)において、特定細胞の分離及び/又は濃縮時に試料に血球細胞同士を凝集させることが好ましい。血球細胞同士を凝集させる方法は、このような凝集が可能な方法であれば、特に限定されないが、なかでも、抗原抗体反応を利用する方法を好適に使用できる。具体的には、血球凝集反応等の凝集反応法を好適に利用できる。 In the above (2) and (3), it is preferable that the blood cells are aggregated in the sample when the specific cells are separated and/or concentrated. The method for aggregating blood cells is not particularly limited as long as it is a method capable of such aggregation, and among them, a method utilizing an antigen-antibody reaction can be preferably used. Specifically, an agglutination reaction method such as a hemagglutination reaction can be preferably used.
このような凝集工程で、血液又は体液に血球凝集反応を利用して細胞同士を凝集させると、その後、作製された凝集物を含むサンプルに遠心分離処理を施した際に、血球細胞を含む凝集物が除去される。従って、親水性ポリマー層に対し、サンプル中に高濃度で残存する特定細胞(がん細胞等)を効果的に捕捉できる。 In such an aggregating step, when cells are aggregated in blood or body fluid by utilizing a hemagglutination reaction, when the sample containing the produced aggregate is then subjected to a centrifugal separation treatment, the agglutinates containing the blood cells are aggregated. Things are removed. Therefore, specific cells (such as cancer cells) remaining at a high concentration in the sample can be effectively captured by the hydrophilic polymer layer.
血球細胞同士の凝集には、例えば、血球細胞同士を凝集させる化合物を混合(添加)する方法を採用できる。具体的には、赤血球及び白血球凝集抗体試薬(赤血球及び白血球凝集抗体組成物)が使用可能である。遠心分離処理時に、比重ががん細胞等の特定細胞に近い一部の白血球の分離が悪くなるが、上記抗体組成物を用いて抗原抗体反応を利用し、赤血球と白血球を結合・凝集させると、特定細胞と比重の異なる赤血球、血小板等だけでなく、白血球と特定細胞の分離も良好になり、特定細胞の接着・捕捉性が向上する。 For aggregation of blood cells, for example, a method of mixing (adding) a compound that aggregates blood cells can be adopted. Specifically, a red blood cell and white blood cell agglutinating antibody reagent (a red blood cell and a white blood cell agglutinating antibody composition) can be used. During centrifugation, the separation of some leukocytes whose specific gravity is close to that of specific cells such as cancer cells becomes poor. However, when the antigen-antibody reaction is used using the above antibody composition, erythrocytes and leukocytes are bound and aggregated. Also, not only erythrocytes and platelets having a specific gravity different from that of the specific cells, but also the separation of the white blood cells and the specific cells is improved, and the adhesion/capturing property of the specific cells is improved.
前記細胞培養方法において、細胞を含む試料をフィブロネクチンが吸着している親水性ポリマー層に接触させて前記細胞を捕捉する方法は、該試料と該親水性ポリマー層が接触可能な任意の方法を適用できる。例えば、親水性ポリマー層が形成されたウェルを有する装置を用いる場合、試料をウェルの内部に注入する方法等が挙げられる。接触後(注入後)、所定条件で保持することで、細胞を該親水性ポリマー層に捕捉(吸着、接着)させることができる。該所定条件は適宜設定すれば良く、例えば、34〜40℃で10分〜15時間保持すれば良い。 In the cell culture method, a method of contacting a sample containing cells with a hydrophilic polymer layer on which fibronectin is adsorbed to capture the cells is any method capable of contacting the sample and the hydrophilic polymer layer. it can. For example, when an apparatus having a well in which a hydrophilic polymer layer is formed is used, a method of injecting a sample into the well may be mentioned. After contact (after injection), cells can be trapped (adsorbed or adhered) to the hydrophilic polymer layer by holding the cells under predetermined conditions. The predetermined condition may be set appropriately, and for example, it may be held at 34 to 40° C. for 10 minutes to 15 hours.
前記細胞培養方法において、捕捉した細胞を培養する方法としては細胞を培養する方法を適宜採用すれば良い。例えば、特定細胞等の細胞が捕捉されているフィブロネクチン吸着親水性ポリマー層に、液体培地を添加し、所定条件で保持することで、細胞を好適に培養できる。該所定条件は適宜設定すれば良く、例えば、34〜40℃で1〜10週間保持すれば良い。 In the cell culture method, a method of culturing the cells may be appropriately adopted as a method of culturing the captured cells. For example, cells can be suitably cultured by adding a liquid medium to the fibronectin-adsorbing hydrophilic polymer layer in which cells such as specific cells are trapped and maintaining it under predetermined conditions. The predetermined condition may be set appropriately, and for example, it may be held at 34 to 40° C. for 1 to 10 weeks.
前記細胞培養方法は、培養に液体培地を用い、4日に1回以上培地交換をすることが好ましい。これにより、特定細胞等の細胞の培養を好適に実施できる。 In the cell culturing method, it is preferable to use a liquid medium for culturing and exchange the medium once or more every four days. Thereby, it is possible to preferably carry out the culturing of cells such as specific cells.
実施例に基づいて、本発明を具体的に説明するが、本発明はこれらのみに限定されるものではない。 The present invention will be specifically described based on Examples, but the present invention is not limited thereto.
(実施例1)
AIBN(アゾビスイソブチロニトリル)を用いて、2−メトキシエチルアクリレートを80℃で6時間熱重合し、ポリ2−メトキシエチルアクリレートを作製した(分子量Mn:約15000、Mw:約50000)。そして、得られたポリ2−メトキシエチルアクリレートの2.5W/V%メタノール溶液を作製した。
市販PMMA製プレート(深さD(高さ)17.5mm)内に、作製したポリ2−メトキシエチルアクリレート溶液(2.5W/V%)を注入し、30分室温放置した後、液をピペットで吸出し、乾燥することで、親水性ポリマー層を作製した。
更に、ポリ2−メトキシエチルアクリレートがコーティングされた部分(親水性ポリマー層)にフィブロネクチンを吸着させた。具体的にはフィブロネクチンのPBS溶液(リン酸緩衝生理食塩水)100μg/mlを作製し、40℃1時間放置した後、PBS溶液で洗浄することで、図1のようなフィブロネクチン吸着親水性ポリマー層が形成されたマルチウェルプレートを有する細胞培養装置を作製した。
(Example 1)
Using AIBN (azobisisobutyronitrile), 2-methoxyethyl acrylate was thermally polymerized at 80° C. for 6 hours to prepare poly-2-methoxyethyl acrylate (molecular weight Mn: about 15,000, Mw: about 50,000). Then, a 2.5 W/V% methanol solution of the obtained poly-2-methoxyethyl acrylate was prepared.
The prepared poly-2-methoxyethyl acrylate solution (2.5 W/V%) was injected into a commercially available PMMA plate (depth D (height) 17.5 mm), left at room temperature for 30 minutes, and then the solution was pipetted. Then, the hydrophilic polymer layer was prepared by sucking it out and drying it.
Furthermore, fibronectin was adsorbed to the portion (hydrophilic polymer layer) coated with poly 2-methoxyethyl acrylate. Specifically, 100 μg/ml of fibronectin PBS solution (phosphate buffered saline) was prepared, left at 40° C. for 1 hour, and then washed with PBS solution to obtain a fibronectin-adsorbed hydrophilic polymer layer as shown in FIG. A cell culture device having a multi-well plate in which cells were formed was produced.
(実施例2)
ポリ2−メトキシエチルアクリレート(分子量Mn:約30000、Mw:約95000)に変更した以外は、実施例1と同様に細胞培養装置を作製した。
(Example 2)
A cell culture device was produced in the same manner as in Example 1 except that poly-2-methoxyethyl acrylate (molecular weight Mn: about 30,000, Mw: about 95,000) was used.
(実施例3)
AIBN(アゾビスイソブチロニトリル)を用いて、2−メトキシエチルアクリレートを80℃で6時間熱重合し、ポリ2−メトキシエチルアクリレートを作製した(分子量Mn:約15000、Mw:約50000)。そして、得られたポリ2−メトキシエチルアクリレートの0.25W/V%メタノール溶液を作製した。
市販チャンバースライド(2チャンバータイプ、ウェル部側面のチャンバーが外せるタイプで底面がガラス基材(ソーダ石灰ガラス)、深さD(高さ)12mm)内に、作製したポリ2−メトキシエチルアクリレート溶液(0.25W/V%)を注入し、5分室温放置した後、40℃で真空乾燥することで、親水性ポリマー層を作製した。
更に、ポリ2−メトキシエチルアクリレートがコーティングされた部分(親水性ポリマー層)にフィブロネクチンを吸着させた。具体的にはフィブロネクチンのPBS溶液(リン酸緩衝生理食塩水)200μg/mlを作製し、40℃1時間放置した後、PBS溶液で洗浄することで、図1のようなフィブロネクチン吸着親水性ポリマー層が形成された細胞培養装置を作製した。
(Example 3)
Using AIBN (azobisisobutyronitrile), 2-methoxyethyl acrylate was thermally polymerized at 80° C. for 6 hours to prepare poly-2-methoxyethyl acrylate (molecular weight Mn: about 15,000, Mw: about 50,000). Then, a 0.25 W/V% methanol solution of the obtained poly-2-methoxyethyl acrylate was prepared.
A commercially available chamber slide (2 chamber type, a type in which the chamber on the side of the well part can be removed and the bottom surface is a glass substrate (soda lime glass), depth D (height) 12 mm), the prepared poly 2-methoxyethyl acrylate solution ( 0.25 W/V%) was injected, and the mixture was allowed to stand at room temperature for 5 minutes and then vacuum dried at 40° C. to prepare a hydrophilic polymer layer.
Furthermore, fibronectin was adsorbed to the portion (hydrophilic polymer layer) coated with poly 2-methoxyethyl acrylate. Specifically, 200 μg/ml of a PBS solution (phosphate buffered saline) of fibronectin was prepared, left at 40° C. for 1 hour, and then washed with the PBS solution to obtain a fibronectin-adsorbed hydrophilic polymer layer as shown in FIG. A cell culture device in which the cells were formed was produced.
(実施例4)
ポリ2−メトキシエチルアクリレート(分子量Mn:約30000、Mw:約95000)に変更した以外は、実施例3と同様に細胞培養装置を作製した。
(Example 4)
A cell culture device was produced in the same manner as in Example 3 except that poly-2-methoxyethyl acrylate (molecular weight Mn: about 30,000, Mw: about 95,000) was used.
(比較例1)
市販チャンバースライド(2チャンバータイプ、ウェル部側面のチャンバーが外せるタイプで底面がガラス基材(ソーダ石灰ガラス))を用いた。
(Comparative Example 1)
A commercially available chamber slide (2 chamber type, a type in which the chamber on the side of the well can be removed and the bottom surface is a glass substrate (soda lime glass)) was used.
(比較例2)
市販チャンバースライド(2チャンバータイプ、ウェル部側面のチャンバーが外せるタイプで底面がガラス基材(ソーダ石灰ガラス))にフィブロネクチンを吸着させた。具体的にはフィブロネクチンのPBS溶液(リン酸緩衝生理食塩水)200μg/mlを作製し、40℃1時間放置した後、PBS溶液で洗浄することで、フィブロネクチン吸着層が形成された細胞培養装置を作製した。
(Comparative example 2)
Fibronectin was adsorbed on a commercially available chamber slide (two-chamber type, a type in which the chamber on the side of the well can be removed and the bottom surface was a glass substrate (soda lime glass)). Specifically, a cell culture device in which a fibronectin adsorption layer was formed by preparing 200 μg/ml of a fibronectin PBS solution (phosphate buffered saline), leaving it at 40° C. for 1 hour, and then washing with a PBS solution It was made.
実施例、比較例で作製した細胞培養装置を以下の方法で評価した。 The cell culture devices produced in Examples and Comparative Examples were evaluated by the following methods.
〔親水性ポリマー層(コーティング層)の膜厚〕
ウェル内面の親水性ポリマー層の膜厚は、TEMを使用し、加速電圧15kV、1000倍で測定(撮影)した。
[Film Thickness of Hydrophilic Polymer Layer (Coating Layer)]
The film thickness of the hydrophilic polymer layer on the inner surface of the well was measured (photographed) using a TEM at an acceleration voltage of 15 kV and 1000 times.
〔全血にがん細胞を添加したスパイク血試験:接着細胞数の計測〕
染色をしたヒト結腸癌由来上皮細胞(HT−29)を全血に100個/血液1mLになる様に懸濁させた(スパイク血)。これに等量の液体培地を入れて希釈した(希釈スパイク血)。次に15mLの遠心分離管に、分離液(LymphoPrep:密度1.077±0.001g/mL)を入れて、その上に上記希釈スパイク血を入れて、800g20分の条件で遠心分離を行った。そして単核球層を分離した。分離した単核球層にリン酸バッファー(PBS)溶液を添加して、遠心分離を再度行い、濃縮を行った。遠心分離後の最下層にできた塊をFBS(ウシ胎児血清)10%添加液体培地(最初の全血量と同じ液量)で懸濁させた。この懸濁液を用いて、ウェルに1mlずつ注入し、37℃で1時間接着させた。その後、PBS溶液で未接着の細胞を洗浄した。次いで、蛍光顕微鏡で接着したがん細胞数をカウントトした。
なお、比較例1のがん細胞接着数を1.00として、相対値で比較した。
[Spike blood test in which cancer cells are added to whole blood: measurement of the number of adherent cells]
The stained human colon cancer-derived epithelial cells (HT-29) were suspended in whole blood at 100 cells/blood (1 mL) (spike blood). An equal amount of liquid medium was added to this and diluted (diluted spiked blood). Next, the separated liquid (LymphoPrep: density 1.077±0.001 g/mL) was put into a 15 mL centrifuge tube, the diluted spiked blood was put thereon, and centrifugation was carried out under the condition of 800 g for 20 minutes. .. Then, the mononuclear cell layer was separated. A phosphate buffer (PBS) solution was added to the separated mononuclear cell layer, centrifugation was performed again, and concentration was performed. The clot formed in the lowermost layer after centrifugation was suspended in a liquid medium containing 10% FBS (fetal bovine serum) (the same amount as the initial whole blood amount). Using this suspension, 1 ml was injected into each well, and adhered at 37° C. for 1 hour. Then, the PBS solution was used to wash the non-adherent cells. Then, the number of adhered cancer cells was counted with a fluorescence microscope.
In addition, the cancer cell adhesion number of Comparative Example 1 was set to 1.00 and compared by the relative value.
〔全血にがん細胞を添加したスパイク血試験:培養した細胞数の計測〕
ヒト結腸癌由来上皮細胞(HT−29)(未染色)を全血に100個/血液1mLになる様に懸濁させた(スパイク血)。これに等量の液体培地を入れて希釈した(希釈スパイク血)。次に15mLの遠心分離管に、分離液(LymphoPrep:密度1.077±0.001g/mL)を入れて、その上に上記希釈スパイク血を入れて、800g20分の条件で遠心分離を行った。そして単核球層を分離した。分離した単核球層にリン酸バッファー(PBS)溶液を添加して、遠心分離を再度行い、濃縮を行った。遠心分離後の最下層にできた塊をFBS(ウシ胎児血清)10%添加液体培地(最初の全血量と同じ液量)で懸濁させた。この懸濁液を用いて、ウェルに1mlずつ注入し、37℃で1時間接着させた。その後、PBS溶液で未接着の細胞を洗浄した。次いで、液体培地を添加して、37℃で3週間培養した。また培養中2日に1度液体培地を交換した。培養終了後、トリプシンで細胞を剥がし、血球計算盤で細胞をカウントした。
なお、比較例1の培養がん細胞増加数を1.00として、相対値で比較した。
[Spike blood test in which cancer cells are added to whole blood: measurement of number of cultured cells]
Human colon cancer-derived epithelial cells (HT-29) (unstained) were suspended in whole blood at 100 cells/1 mL of blood (spike blood). An equal amount of liquid medium was added to this and diluted (diluted spiked blood). Next, the separated liquid (LymphoPrep: density 1.077±0.001 g/mL) was put into a 15 mL centrifuge tube, the diluted spiked blood was put thereon, and centrifugation was carried out under the condition of 800 g for 20 minutes. .. Then, the mononuclear cell layer was separated. A phosphate buffer (PBS) solution was added to the separated mononuclear cell layer, centrifugation was performed again, and concentration was performed. The clot formed in the lowermost layer after centrifugation was suspended in a liquid medium containing 10% FBS (fetal bovine serum) (the same amount as the initial whole blood amount). Using this suspension, 1 ml was injected into each well, and adhered at 37° C. for 1 hour. Then, the PBS solution was used to wash the non-adherent cells. Then, a liquid medium was added and the cells were cultured at 37°C for 3 weeks. Also, the liquid medium was changed once every two days during the culture. After the culture was completed, the cells were detached with trypsin, and the cells were counted with a hemocytometer.
In addition, the number of cultured cancer cells increased in Comparative Example 1 was set to 1.00, and comparison was made by relative values.
フィブロネクチンを吸着させた親水性ポリマー層を形成した実施例1〜4は、比較例1に比べ、がん細胞の接着量が大幅に向上した。これは、ポリ2−メトキシエチルアクリレート層上に、がん細胞の接着に関連するたんぱく質のフィブロネクチンを吸着させていたため、がん細胞が優先的に接着したものと推察された。 In Examples 1 to 4 in which the hydrophilic polymer layer having fibronectin adsorbed was formed, the adhesion amount of cancer cells was significantly improved as compared with Comparative Example 1. It was speculated that the cancer cells were preferentially adhered because the fibronectin, which is a protein associated with adhesion of cancer cells, was adsorbed on the poly-2-methoxyethyl acrylate layer.
フィブロネクチンを吸着させた親水性ポリマー層を形成した実施例1〜4は、比較例1に比べ、がん細胞の培養で増えた細胞数が大幅に向上した。これは、ポリ2−メトキシエチルアクリレート層上に、がん細胞の接着・培養促進に関連するたんぱく質のフィブロネクチンを吸着させていたため、がん細胞が培養が促進されたものと推察された。 In Examples 1 to 4 in which the hydrophilic polymer layer adsorbing fibronectin was formed, the number of cells increased in the culture of cancer cells was significantly improved as compared with Comparative Example 1. This was presumed to be because the culture of cancer cells was promoted because fibronectin, a protein associated with the adhesion and culture promotion of cancer cells, was adsorbed on the poly-2-methoxyethyl acrylate layer.
1 細胞培養装置
11 ウェル
21 親水性ポリマー層
31 フィブロネクチン
1
Claims (11)
前記親水性ポリマー層は、下記〔a〕、〔b〕及び〔c〕からなる群より選択される少なくとも1種の親水性ポリマーで形成されている細胞培養装置。
〔a〕下記式(I)で表されるポリマー
〔b〕ポリ(メタ)アクリロイルモルホリン
〔c〕下記式(I−1)で表される化合物及び(メタ)アクリロイルモルホリンからなる群より選択される少なくとも1種の親水性モノマーと、他のモノマーとの共重合体
The cell culture device in which the hydrophilic polymer layer is formed of at least one hydrophilic polymer selected from the group consisting of the following [a], [b] and [c].
[A] Polymer represented by the following formula (I)
[B] poly(meth)acryloylmorpholine [c] at least one hydrophilic monomer selected from the group consisting of a compound represented by the following formula (I-1) and (meth)acryloylmorpholine, and another monomer: Copolymer of
前記親水性ポリマー層は、下記〔a〕、〔b〕及び〔c〕からなる群より選択される少なくとも1種の親水性ポリマーで形成されている細胞培養方法。
〔a〕下記式(I)で表されるポリマー
〔b〕ポリ(メタ)アクリロイルモルホリン
〔c〕下記式(I−1)で表される化合物及び(メタ)アクリロイルモルホリンからなる群より選択される少なくとも1種の親水性モノマーと、他のモノマーとの共重合体
The cell culture method, wherein the hydrophilic polymer layer is formed of at least one hydrophilic polymer selected from the group consisting of the following [a], [b] and [c].
[A] Polymer represented by the following formula (I)
[B] poly(meth)acryloylmorpholine [c] at least one hydrophilic monomer selected from the group consisting of a compound represented by the following formula (I-1) and (meth)acryloylmorpholine, and another monomer: Copolymer of
(1)血液又は体液
(2)血液又は体液から血液中又は体液中の特定細胞を分離及び/又は濃縮した試料
(3)血液又は体液から血液中又は体液中の特定細胞を分離及び/又は濃縮し、更に懸濁させた試料 The cell culture method according to claim 4 or 5, wherein the sample is at least one selected from the group consisting of the following (1), (2), and (3).
(1) Blood or body fluid (2) Sample obtained by separating and/or concentrating specific cells in blood or body fluid from blood or body fluid (3) Separation and/or concentration of specific cells in blood or body fluid from blood or body fluid And suspended sample
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Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: C60 Effective date: 20230203 |
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A911 | Transfer to examiner for re-examination before appeal (zenchi) |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A911 Effective date: 20230209 |
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C21 | Notice of transfer of a case for reconsideration by examiners before appeal proceedings |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: C21 Effective date: 20230214 |
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A912 | Re-examination (zenchi) completed and case transferred to appeal board |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A912 Effective date: 20230421 |
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C211 | Notice of termination of reconsideration by examiners before appeal proceedings |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: C211 Effective date: 20230425 |