JP2019508507A - 低酸素状態を処置するための材料および方法 - Google Patents
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Abstract
Description
本出願は、2016年3月14日に出願された米国仮出願第62/307,931号の優先権を主張する。この先願の開示は、本出願の開示の一部と見なされ、その全体が本出願中に組み入れられる。
本文書は、低酸素状態(例えば、組織虚血)を処置するための方法および材料に関する。例えば、本文書は、ミトコンドリア一酸化窒素(NO)形成を増加させるかまたは維持するための、ポテト多糖調製物と有機セレンとを含有する組成物に関する。いくつかの場合において、本明細書に提供される組成物はまた、無機ニトレートを含有しうる。
世界中で何百万もの人を苦しめている主な代謝障害の病因および持続は、全身的な炎症促進過程および組織低酸素の機能的病態生理学的カップリングを伴い、これは、酸素送達における虚血/低酸素撹乱が、全体的な細胞および多臓器系生存可能性に対して著しい生理学的攻撃を表すことを示す。機構的に、複数の虚血/低酸素および炎症促進事象の相互誘発は、修正されなければ、病態生理学的増幅を促し、生物老化細胞および分子シグナル伝達経路の有害なカスケードをもたらし、これは、ミトコンドリアのエネルギー利用およびATP産生を著しく害することへと向かう。
本文書は、低酸素状態(例えば、組織虚血)を処置するための方法および材料に関する。例えば、本文書は、ミトコンドリアNO形成を増加させるかまたは維持するための、ポテト多糖調製物と有機セレンとを含有する組成物に関する。いくつかの場合において、本明細書に提供する組成物はまた、無機ニトレートを含有しうる。
本文書は、低酸素状態(例えば、組織虚血)を処置するためにポテト多糖調製物および有機セレンを含有する組成物を使用することに関する方法および材料を提供する。例えば、本文書は、ポテト多糖調製物および有機セレンおよび任意で無機ニトレートを含有する組成物、ならびにそのような組成物を使用する方法を提供する。
モリブデン依存性亜硝酸還元酵素およびCOXヘム/銅依存性亜硝酸還元酵素の協調作用による無機ニトライトのリザーブからのミトコンドリアNO形成を増強するための製剤を設計した。遺伝性肥満であるZucker ZDFラットへの、本明細書においてポトサッカリドと呼ばれる、生ポテトから抽出された高純度でありかつ化学的に特徴付けられた多糖の低濃度のインビボ投与は、モリブデン依存性およびCOXヘム/銅依存性亜硝酸還元酵素の作用によるミトコンドリア酸素利用の臨床的に重要な調節と機能的に関連付けられた主要な血液白血球遺伝子の発現の協調変化を生じさせた。
ポトサッカリドの抽出および精製
典型的には、6 gのポテトを50 mL遠心分離管中の水20 mL中においてPolytronホモジナイザーでホモジナイズし、室温で1時間維持した。ホモジネートを4000 rpmで10分間遠心分離し、上清画分を保存した。10 mLの上清画分を、100%アセトニトリル(ACN)10 mLに続いて水中0.05%トリフルオロ酢酸10 mL(TFA水)で前もって活性化されたSep-Pak Plus C-18カートリッジによって濾過した。連続的な低ACN洗浄に続いて、半精製ポトサッカリドを、0.05% TFA水中10% ACN 10 mL中に溶出した。溶出剤画分を乾燥し、HPLCによるさらなる精製のために0.05% TFA水1 mL中に再構成した。
22匹の7週齢の雄性ZDF(Zucker Diabetic Fatty)ラット(コード:370)および22匹の7〜8週齢の雄性ZDF Leanラット(コード:371)を、Charles Rivers Laboratories (Wilmington, MA)から購入した。研究動物に、ベースライン血液採取前に4日間の順応期間を与え、この時点で、ベースライン体重に基づいて、各株から2匹の余分な動物を研究から外した。PhysioGenix, Inc.に到着時に、ラットを1ケージ当たり2匹収容し、Innoviveケージングシステム(San Diego, CA)中に維持した。ケージを毎日モニターし、Innoviveシステムが1時間当たり80回の換気および陽圧を維持することを確認した。実験動物の管理と使用に関する指針、第8版(Guide for Care and Use of Laboratory Animals, Eighth Edition)に従って、ラットの部屋を、華氏66〜75度の温度および30%〜70%の相対湿度に維持した。部屋を毎日12時間人工光によって照らした(7:00 AM〜7:00 PM)。動物は、絶食実験中以外の研究期間中、水およびPurina 5008齧歯動物食(Waldschimdt’s, Madison, WI)へ自由にアクセスした。
精製ポトサッカリド(5 mg/mL濃度のストック溶液10 mL)を4℃で保管した。研究用のビヒクルは滅菌水(カタログ番号002488、Butler Schein)であった。毎週、ストック溶液を滅菌水中に1:100で希釈し(0.05 mg/mL)、日割りのアリコートへ分配した。全てのビヒクルおよび薬物溶液を4℃で保管し、1 mL/動物の体積で経口胃管栄養(PO)によって毎日室温で投与した(350グラムの推定体重に基づいて0.15 mg/kg用量)。
2タイプのラットを研究のために使用した:ホモ接合肥満ZDF/ZDFおよびヘテロ接合痩せ型同腹仔。次いで、群内のラットを無作為に選択し、10匹の群へ分割した。群1はビヒクル給餌されたホモ接合ZDF/ZDFラットであり、群2はポトサッカリド給餌されたホモ接合ZDF/ZDFであり、群3はビヒクル給餌された痩せ型ラットであり、群4はポトサッカリド給餌された痩せ型ラットであった。ビヒクルは蒸留水であり、ポトサッカリドを、動物1匹当たり0.05mgの投薬量で経口胃管栄養によって毎日毎朝提供した。用量は通常、水1 mL中に提供した。ラットを群でケージに入れ、12時間明/12時間暗(7 am-7pm)で維持した。研究を28日間継続し、研究の28日目に空腹時血糖データを収集した後、全ての動物をイソフルラン過剰投与および開胸によって安楽死させた。下行大静脈を介して血液を採取した。肝臓および腹部脂肪を採取し、計量し、肝左葉外側区および腹部脂肪の一部を個々の組織学カセット中へ置き、液体窒素中で急速凍結(snap freeze)させた。一般的な病理学的観察を記録した。
ニワトリの胚性腎細胞および肝細胞をCharles River Laboratories, Inc.から得た。細胞を75 ccフラスコ中で培養した。各フラスコは以下の通りの処理群を表した:対照、1 nMセレノメチオニン。処理は、セレノメチオニンでの24時間インキュベーションからなった。その期間後、サンプルをマイクロアレイ解析のために処理した。実験を三つ組で行った。
ラット組織サンプルから抽出された全RNAを、RNeasyミニキット(Qiagen, Valencia, CA)を使用して単離および精製した。典型的には、100 mgの組織を、1.8 mLのRLT溶解バッファー(Qiagen)中に再懸濁し、polytronホモジナイザーで30秒間ホモジナイズした。血液RNAを、PAX RNAキット(Qiagen)を使用して単離した。
DNAマイクロアレイ解析を、Agilentによって提供されたシステムを使用して行った。アレイは1チップ当たり4つのアレイを含んだ(Agilent 4X44Kチップ)。全RNAを、T7プライマーを使用して逆転写し(1000 ng)、シアニン-3色素を使用して標識および転写した。各アレイを、65℃で18時間、少なくとも1.65μgの標識cRNAとハイブリダイズさせた。Agilentアレイスキャナーを使用して、アレイをスキャンした。マイクロアレイプラットフォームは、最小で遺伝子発現の1.5倍の変化を決定することができる。28日間ポトサッカリドが給餌されたホモ接合ZDFラットと、等量のビヒクルが給餌されたホモ接合ZDFラット(対照)との間の変化倍率を調べた。さらに、ビヒクルのみが給餌されたヘテロ接合ZDF(痩せ型ラット)において遺伝子発現を測定し、ホモ接合ZDF対照ラットにおける遺伝子発現と比較した。変化倍率を使用して、ポトサッカリドが給餌されたホモ接合ZDFラットと痩せ型対照ラットとの間の変化倍率を使用することによって、パーセント回復を計算した。
表1に示すように、ZDFラット(n=7)への精製ポトサッカリドのインビボ投与は、ビヒクル対照ZDFラットに対して、モリブデン依存性亜硝酸還元酵素およびCOXヘム/銅依存性亜硝酸還元酵素の協調作用による無機ニトライトのリザーブからのミトコンドリアNO形成の相乗的増強に関与する4個の高プロフィール(high profile)候補遺伝子の統計的に有意な増強発現を生じさせた。4個の候補遺伝子は、XDH(キサンチンデヒドロゲナーゼ/キサンチンオキシドレダクターゼ)、NFE2L2(核因子、赤血球2様2)、ABCB6(ATP結合カセット、サブファミリーB、メンバー6)、およびSLC48A1(溶質担体ファミリー48[ヘム輸送体]、メンバー1)を含む。劇的な様式で、インビボポトサッカリド処置は、ホモ接合ZDFラットの異常な遺伝子発現を、高度の統計的有意性で、正常痩せ型対照値の近くまで回復させた(正常遺伝子機能の86〜100%回復)。
本明細書に記載されるように、低い非毒性濃度のL-セレノメチオニンと組み合わせたポトサッカリドの組成物は、無機ニトライトのリザーブからのミトコンドリアNO形成を増強した。細胞のニトライトリザーブを増強するための無機ニトレートの添加は、ミトコンドリアNOのさらなる産生を提供するために使用することができる。
調製物製剤化
精製調製物(5 mg/mL濃度でのストック溶液10 mL)を4℃で保管する。研究用のビヒクルは滅菌水である。毎週、ストック溶液を滅菌水中に1:100で希釈し(0.05 mg/mL)、日割りのアリコートへ分配する。1 mL当たり1μgセレノメチオニンおよび/または2 mg硝酸ナトリウムを含有するように、製剤を改変する。全てのビヒクルおよび薬物溶液を4℃で保管し、1 mL/動物の体積で経口胃管栄養(PO)によって毎日室温で投与する(350グラムの推定体重に基づいて0.15 mg/kg用量)。
2タイプのラットを研究のために使用する:ホモ接合肥満ZDF/ZDFおよびヘテロ接合痩せ型同腹仔。30匹の7週齢の雄性ZDF(Zucker Diabetic Fatty)ラット(コード:370)を、Charles Rivers Laboratories (Wilmington, MA)から購入する。15匹のヘテロ接合痩せ型ラットを同じ供給源から得る。研究動物に、ベースライン血液採取前に4日間の順応期間を与える。ラットを1ケージ当たり2匹収容し、Innoviveケージングシステム(San Diego, CA)中に維持し、そして毎日モニターし、Innoviveシステムが1時間当たり80回の換気および陽圧を維持することを確認する。実験動物の管理と使用に関する指針(第8版)に従って、ラットの部屋を66〜75°Fの温度および30%〜70%の相対湿度に維持する。部屋を毎日12時間人工光によって照らす(7:00 AM〜7:00 PM)。動物は、絶食実験中以外の研究期間中、水およびPurina 5008齧歯動物食へ自由にアクセスする。
ホモ接合肥満ZDF/ZDFラットを無作為に選択し、15匹の2つの群へ分割する。群1はビヒクル給餌されたホモ接合ZDF/ZDFラットであり、群2は精製調製物給餌されたホモ接合ZDF/ZDFである。群3は15匹のヘテロ接合ビヒクル給餌された痩せ型ラットである。ビヒクルは蒸留水であり、補われた精製調製物を、動物1匹当たり0.05mg精製調製物、1μgセレノメチオニンおよび2 mg硝酸ナトリウムの投薬量で経口胃管栄養によって毎日毎朝提供する。用量を水1 mL中に提供する。ラットを群でケージに入れ、12時間明/12時間暗(7am〜7pm)で維持する。研究は最低12週間であり、終了は進行中のデータ収集および分析によって決定される。終了時に、空腹時血糖データの収集後、全ての動物をイソフルラン過剰投与および開胸によって安楽死させる。
血液を、投薬後2週間で開始して2週間毎に下行大静脈を介して採取し、糖分析および血清クレアチニン分析へ供する。尿を、投薬後3週間で開始して2週間毎に採取し、タンパク尿分析および尿クレアチニン分析へ供する。総クレアチニンおよびクレアチニンクリアランスも測定する。肝臓、腎臓、脳、および腹部脂肪を終了時に採取し、計量し、組織サンプルを個々の組織学カセット中へ置き、液体窒素中で急速凍結させる。一般的な病理学的観察を記録する。
全ゲノムマイクロアレイを、凍結組織サンプルを用いて行う。全血を、遺伝子発現解析のためにPAX RNA血液チューブ中に保存する。研究動物の認知を、Morris水迷路または同様の方法を使用して毎月評価する。あるいは、Biel水迷路またはラジアルアーム水迷路を使用することができる。Biel水迷路は、完了までの時間およびエラー回数を記録する。Morrisは、時間および経路長を記録する。
本開示をその詳細な説明と共に説明したが、上記の説明は例示を意図したものであり本開示の範囲を限定することは意図しておらず、本開示の範囲は添付の特許請求の範囲の範囲によって定義される。他の局面、利点および改変も、添付の特許請求の範囲の範囲内に包含される。
Claims (48)
- ポテト多糖調製物および有機セレンを含む、組成物。
- 約1 mg〜約250 mgのポテト多糖調製物を含む、請求項1に記載の組成物。
- 約5 mg〜約30 mgのポテト多糖調製物を含む、請求項2に記載の組成物。
- 約10 mgのポテト多糖調製物を含む、請求項3に記載の組成物。
- 有機セレンがL-セレノメチオニンである、請求項1に記載の組成物。
- 約10μg〜約650μgのL-セレノメチオニンを含む、請求項5に記載の組成物。
- 約160μg〜約180μgのL-セレノメチオニンを含む、請求項6に記載の組成物。
- 約175μgのL-セレノメチオニンを含む、請求項7に記載の組成物。
- 無機ニトレートを含む、請求項1に記載の組成物。
- 約10 mg〜約750 mgのニトレートを含む、請求項9に記載の組成物。
- 約250 mg〜約400 mgのニトレートを含む、請求項10に記載の組成物。
- 約350 mgのニトレートを含む、請求項11に記載の組成物。
- 錠剤の形態である、請求項1に記載の組成物。
- 栄養補助剤である、請求項1に記載の組成物。
- 哺乳動物の体重1 kg当たり、約0.15 mgのポテト多糖調製物、約2.9μgの有機セレン、および約5.7 mgの無機ニトレートを哺乳動物へ送達するように製剤化されている、請求項9に記載の組成物。
- ポテト多糖調製物および有機セレンを含む組成物を、低酸素状態を有する哺乳動物へ投与する工程であって、低酸素状態の症状が軽減される、工程
を含む、低酸素状態を処置するための方法。 - 低酸素状態が組織虚血を含む、請求項16に記載の方法。
- 前記組成物が無機ニトレートを含む、請求項16に記載の方法。
- 前記組成物が、哺乳動物の体重1 kg当たり約0.10 mg〜約0.2 mgのポテト多糖調製物が哺乳動物へ投与されることをもたらす量のポテト多糖調製物を含み、前記組成物が、哺乳動物の体重1 kg当たり約2.5μg〜約3.5μgの有機セレンが哺乳動物へ投与されることをもたらす量の有機セレンを含み、かつ、前記組成物が、哺乳動物の体重1 kg当たり約3 mg〜約9 mgの無機ニトレートが哺乳動物へ投与されることをもたらす量の無機ニトレートを含む、請求項18に記載の方法。
- 前記組成物が、哺乳動物の体重1 kg当たり約0.15 mgのポテト多糖調製物が哺乳動物へ投与されることをもたらす量のポテト多糖調製物を含み、前記組成物が、哺乳動物の体重1 kg当たり約2.9μgの有機セレンが哺乳動物へ投与されることをもたらす量の有機セレンを含み、かつ、前記組成物が、哺乳動物の体重1 kg当たり約5.7 mgの無機ニトレートが哺乳動物へ投与されることをもたらす量の無機ニトレートを含む、請求項19に記載の方法。
- 前記組成物が錠剤の形態である、請求項16に記載の方法。
- 前記哺乳動物がヒトである、請求項16に記載の方法。
- ポテト多糖調製物および有機セレンを含む組成物を、低酸素状態と関連する疾患を有する哺乳動物へ投与する工程であって、該低酸素状態と関連する疾患の症状が軽減される、工程
を含む、低酸素状態と関連する疾患を処置するための方法。 - 低酸素状態と関連する疾患が、組織虚血、2型糖尿病、心血管疾患、慢性閉塞性肺疾患(COPD)、末期腎疾患、脂肪肝疾患、およびアルツハイマー病(AD)からなる群より選択される、請求項23に記載の方法。
- 前記組成物が無機ニトレートを含む、請求項23に記載の方法。
- 前記組成物が、哺乳動物の体重1 kg当たり約0.10 mg〜約0.2 mgのポテト多糖調製物が哺乳動物へ投与されることをもたらす量のポテト多糖調製物を含み、前記組成物が、哺乳動物の体重1 kg当たり約2.5μg〜約3.5μgの有機セレンが哺乳動物へ投与されることをもたらす量の有機セレンを含み、かつ、前記組成物が、哺乳動物の体重1 kg当たり約3 mg〜約9 mgの無機ニトレートが哺乳動物へ投与されることをもたらす量の無機ニトレートを含む、請求項25に記載の方法。
- 前記組成物が、哺乳動物の体重1 kg当たり約0.15 mgのポテト多糖調製物が哺乳動物へ投与されることをもたらす量のポテト多糖調製物を含み、前記組成物が、哺乳動物の体重1 kg当たり約2.9μgの有機セレンが哺乳動物へ投与されることをもたらす量の有機セレンを含み、かつ、前記組成物が、哺乳動物の体重1 kg当たり約5.7 mgの無機ニトレートが哺乳動物へ投与されることをもたらす量の無機ニトレートを含む、請求項26に記載の方法。
- 前記組成物が錠剤の形態である、請求項23に記載の方法。
- 前記哺乳動物がヒトである、請求項23に記載の方法。
- 細胞を、ポテト多糖調製物および有機セレンを含む組成物と接触させる工程であって、細胞中のミトコンドリア一酸化窒素(NO)形成が増加する、工程
を含む、細胞中のミトコンドリアNO形成を増加させるための方法。 - 前記組成物が無機ニトレートを含む、請求項30に記載の方法。
- 前記細胞が、神経細胞、血管細胞、心臓細胞、腎細胞、皮膚細胞、筋肉細胞、脂肪細胞、および消化細胞からなる群より選択される、請求項30に記載の方法。
- 前記細胞がヒト細胞である、請求項30に記載の方法。
- 細胞を、ポテト多糖調製物、有機セレン、および無機ニトレートを含む組成物と接触させる工程であって、ミトコンドリアNO形成に関与する1つまたは複数のポリペプチドの発現が増加する、工程
を含む、細胞中のポリペプチド発現を増加させるための方法。 - 前記組成物が無機ニトレートを含む、請求項34に記載の方法。
- 前記組成物が、哺乳動物の体重1 kg当たり約0.10 mg〜約0.2 mgのポテト多糖調製物が哺乳動物へ投与されることをもたらす量のポテト多糖調製物を含み、前記組成物が、哺乳動物の体重1 kg当たり約2.5μg〜約3.5μgの有機セレンが哺乳動物へ投与されることをもたらす量の有機セレンを含み、かつ、前記組成物が、哺乳動物の体重1 kg当たり約3 mg〜約9 mgの無機ニトレートが哺乳動物へ投与されることをもたらす量の無機ニトレートを含む、請求項35に記載の方法。
- 前記組成物が、哺乳動物の体重1 kg当たり約0.15 mgのポテト多糖調製物が哺乳動物へ投与されることをもたらす量のポテト多糖調製物を含み、前記組成物が、哺乳動物の体重1 kg当たり約2.9μgの有機セレンが哺乳動物へ投与されることをもたらす量の有機セレンを含み、かつ、前記組成物が、哺乳動物の体重1 kg当たり約5.7 mgの無機ニトレートが哺乳動物へ投与されることをもたらす量の無機ニトレートを含む、請求項36に記載の方法。
- 前記細胞が、神経細胞、血管細胞、心臓細胞、腎細胞、皮膚細胞、筋肉細胞、脂肪細胞、および消化細胞からなる群より選択される、請求項34に記載の方法。
- 前記細胞がヒト細胞である、請求項34に記載の方法。
- 前記ミトコンドリアNO形成に関与する1つまたは複数のポリペプチドが、1つまたは複数の硝酸還元酵素である、請求項34に記載の方法。
- 前記ミトコンドリアNO形成に関与する1つまたは複数のポリペプチドが、XDH、NFE2L2、ABCB6、SLC48A1、COA3、COA4、COX17、COX6C、COX7A2、COX7B、ATP7B、CCS、ATOX1、MOCS2、COX10、COX19、およびCOX8Aからなる群より選択される、請求項34に記載の方法。
- ポテト多糖調製物、L-セレノメチオニン、および無機ニトレートを含む、栄養補助剤。
- 錠剤の形態である、請求項42に記載の栄養補助剤。
- 哺乳動物の体重1 kg当たり約0.10 mg〜約0.2 mgのポテト多糖調製物が哺乳動物へ投与されることをもたらす量のポテト多糖調製物を含み、哺乳動物の体重1 kg当たり約2.5μg〜約3.5μgの有機セレンが哺乳動物へ投与されることをもたらす量の有機セレンを含み、かつ、哺乳動物の体重1 kg当たり約3 mg〜約9 mgの無機ニトレートが哺乳動物へ投与されることをもたらす量の無機ニトレートを含む、請求項42に記載の栄養補助剤。
- 哺乳動物の体重1 kg当たり約0.15 mgのポテト多糖調製物が哺乳動物へ投与されることをもたらす量のポテト多糖調製物を含み、哺乳動物の体重1 kg当たり約2.9μgの有機セレンが哺乳動物へ投与されることをもたらす量の有機セレンを含み、かつ、哺乳動物の体重1 kg当たり約5.7 mgの無機ニトレートが哺乳動物へ投与されることをもたらす量の無機ニトレートを含む、請求項44に記載の栄養補助剤。
- 約10 mgのポテト多糖調製物を含む、請求項42に記載の栄養補助剤。
- 約175μgのL-セレノメチオニンを含む、請求項42に記載の栄養補助剤。
- 約350 mgの無機ニトレートを含む、請求項42に記載の栄養補助剤。
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