JP2019158627A - Method and device for detecting peculiar antigen of mycoplasma pneumoniae - Google Patents

Method and device for detecting peculiar antigen of mycoplasma pneumoniae Download PDF

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花木 秀明
Hideaki Hanaki
秀明 花木
秀仁 松井
Hidehito Matsui
秀仁 松井
允 杉村
Mitsuru Sugimura
允 杉村
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Abstract

To provide a method and a device for measuring mycoplasma pneumoniae easily and rapidly by finding an antigen protein peculiar to mycoplasma pneumoniae of which antibody can detect mycoplasma pneumoniae sensitively and by preparing and using the antigen.SOLUTION: There are provided a method for detecting mycoplasma pneumoniae which detects one or at least two of proteins coded by at least one of mycoplasma pneumoniae genes MPN295, MPN314, MPN479, and MPN574, and a method for detecting mycoplasma pneumoniae using the antibody of the detected protein by an immunological technique. The immunological technique may include using ELISA or immunochromatographic assay. There is also provided a vaccine which uses the protein as an antigen.SELECTED DRAWING: None

Description

本発明は、新たに見出したマイコプラズマ・ニューモニエ特異抗原を利用したマイコプラズマ・ニューモニエの検出方法及び検出デバイスに関する。   The present invention relates to a detection method and a detection device for Mycoplasma pneumoniae using a newly found Mycoplasma pneumoniae-specific antigen.

近年、非定型肺炎患者からのマイコプラズマ・ニューモニエ(Mycoplasma pneumoniae:M. pneumoniae)の分離率が上昇している。マイコプラズマ・ニューモニエは、特に小児に対して肺炎や気管支炎を引き起こす起因菌の一種であり、培地上で自己増殖可能な最も小さい微生物である。この病原体は、細胞壁を持たないため細胞壁合成阻害剤であるβ-ラクタム系抗菌薬が効かない。小児の上気道感染症には頻繁に経口のβ-ラクタム系抗菌薬が使用されるが、上記のようにマイコプラズマ・ニューモニエには効果がなく、重症化・難治性化する場合も認められる。このことから、マイコプラズマ・ニューモニエを原因菌とする上気道感染症を診断することは非常に重要である。   In recent years, the separation rate of Mycoplasma pneumoniae (M. pneumoniae) from patients with atypical pneumonia has increased. Mycoplasma pneumoniae is one of the causative bacteria that cause pneumonia and bronchitis, especially in children, and is the smallest microorganism that can self-grow on the medium. Since this pathogen does not have a cell wall, β-lactam antibacterial agents, which are cell wall synthesis inhibitors, do not work. Oral β-lactam antibacterial drugs are frequently used for upper respiratory tract infections in children, but as described above, they are ineffective for Mycoplasma pneumoniae and may be severely refractory. Therefore, it is very important to diagnose upper respiratory tract infections caused by Mycoplasma pneumoniae.

マイコプラズマ肺炎の診断は、補体結合反応(CF)、受身凝集反応(PA)、蛍光抗体法や遺伝子的検査、そして培養法などが実施されている。しかし、抗体の上昇には数週間の時間を要するため、CFやPAの結果は治療終了後での確定診断でしかない。さらに、近年では遺伝子検出技術を用いた診断方法が実施されてきているが、特別な機器や熟練した操作技術が必要であることから、実施可能な医療施設は限られているのが現状である。また病原体自身の検出が最も確実な診断法であるが、その増殖には数週間の時間を要すため培養法は、治療を目的とした診断方法としては適していない。   Diagnosis of mycoplasma pneumonia includes complement binding reaction (CF), passive agglutination reaction (PA), fluorescent antibody method, genetic test, and culture method. However, since it takes several weeks for the antibody to rise, the result of CF or PA is only a definitive diagnosis after the end of treatment. Furthermore, in recent years, diagnostic methods using gene detection techniques have been implemented. However, since special equipment and skilled operation techniques are necessary, the number of medical facilities that can be implemented is limited. . In addition, detection of the pathogen itself is the most reliable diagnostic method, but it takes several weeks for its growth, so the culture method is not suitable as a diagnostic method for therapeutic purposes.

現在、上記問題点を解決するために、マイコプラズマ・ニューモニエ特異的な抗原を、抗原抗体反応を利用し検出することで、マイコプラズマ・ニューモニエを短時間で検出する方法が検討あるいは実用化されている。
例えば、GenBank(https://www.ncbi.nlm.nih.gov/nuccore/NC_000912.1)記載のマイコプラズマ・ニューモニエ遺伝子MPN1からMPN688のうちMPN141 (P1) より合成されるP1タンパクに特異的なモノクローナル抗体を使用した検出方法が特許文献1において記載されている。
また、特許文献2ではGenBank(https://www.ncbi.nlm.nih.gov/nuccore/NC_000912.1)記載のマイコプラズマ・ニューモニエ遺伝子MPN1からMPN688のうちMPN539 (rplL) より合成される50sリボソームタンパクL7/L12に特異的な抗体を用いた検出方法が記載されている。
At present, in order to solve the above problems, a method for detecting Mycoplasma pneumoniae in a short time by detecting an antigen specific to Mycoplasma pneumoniae using an antigen-antibody reaction has been studied or put into practical use.
For example, a monoclonal specific to P1 protein synthesized from MPN141 (P1) of MPN688 to Mycoplasma pneumoniae gene MPN1 described in GenBank (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/nuccore/NC_000912.1) A detection method using an antibody is described in Patent Document 1.
In Patent Document 2, 50s ribosomal protein synthesized from MPN539 (rplL) of MPN688 from Mycoplasma pneumoniae gene MPN1 described in GenBank (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/nuccore/NC_000912.1) A detection method using an antibody specific for L7 / L12 is described.

特開2013−72663号公報JP 2013-72663 A 特開2009−131174号公報JP 2009-131174 A

本発明の目的は、その抗体が高感度にマイコプラズマ・ニューモニエを検出できる、マイコプラズマ・ニューモニエ特異的な抗原タンパク質を発見し、その抗体を作成・利用して、簡便かつ迅速なマイコプラズマ・ニューモニエの測定方法と測定デバイスを提供することである。   An object of the present invention is to discover a Mycoplasma pneumoniae-specific antigen protein that can detect Mycoplasma pneumoniae with high sensitivity, and to prepare and use the antibody, thereby easily and quickly measuring the Mycoplasma pneumoniae. And to provide a measuring device.

本発明者は、上記目的を達成するために、マイコプラズマ・ニューモニエのゲノム情報を利用して、マイコプラズマ・ニューモニエ特異的な抗原タンパク質を見出すことで、本発明に到達した。すなわち、本発明は以下のとおりである。   In order to achieve the above object, the present inventor has arrived at the present invention by finding a mycoplasma pneumoniae-specific antigen protein using genomic information of mycoplasma pneumoniae. That is, the present invention is as follows.

1. 以下の(i)又は(ii)のタンパク質のうち、1又は2以上を検出することを特徴とするマイコプラズマ・ニューモニエの検出方法。
(i)マイコプラズマ・ニューモニエ遺伝子MPN295、MPN314、MPN479、MPN574のいずれか1でコードされるタンパク質
(ii)(i)のタンパク質のアミノ酸配列において、1又は複数個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加され、かつマイコプラズマ・ニューモニエ特異的で、抗原性を有するタンパク質
2. 以下の(i)又は(ii)の抗体のうち、1種類又は2種類以上を用い、免疫学的手法でマイコプラズマ・ニューモニエを検出する方法。
(i)マイコプラズマ・ニューモニエ遺伝子MPN295、MPN314、MPN479、MPN574のいずれか1でコードされるタンパク質に対する抗体
(ii) マイコプラズマ・ニューモニエ遺伝子MPN295、MPN314、MPN479、MPN574のいずれか1でコードされるタンパク質のアミノ酸配列において、1又は複数個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加され、かつマイコプラズマ・ニューモニエ特異的で、抗原性を有するタンパク質に対する抗体
3. 免疫学的手法がEnzyme-Linked ImmunoSorbent Assay (ELISA) 又はイムノクロマトグラフィックアッセイである、前記2のマイコプラズマ・ニューモニエの検出方法。
4. 免疫学的手法が、サンドイッチ法を利用したものである、前記2又は3のマイコプラズマ・ニューモニエの検出方法。
5. 前記1〜4のいずれか1の検出方法で、マイコプラズマ・ニューモニエを検出する、マイコプラズマ・ニューモニエ検出デバイス。
6. マイコプラズマ・ニューモニエ遺伝子MPN295、MPN314、MPN479、MPN574のいずれか1でコードされるタンパク質、又はマイコプラズマ・ニューモニエ遺伝子MPN295、MPN314、MPN479、MPN574のいずれか1でコードされるタンパク質のアミノ酸配列において、1又は複数個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加され、かつマイコプラズマ・ニューモニエ特異的で、抗原性を有するタンパク質、又はこれらの部分ペプチド、を抗原とするワクチン。
1. A method for detecting Mycoplasma pneumoniae, comprising detecting one or more of the following proteins (i) or (ii):
(I) The protein encoded by any one of the Mycoplasma pneumoniae genes MPN295, MPN314, MPN479, and MPN574 (ii) In the amino acid sequence of the protein of (i), one or more amino acids are deleted, substituted or added A mycoplasma pneumoniae-specific and antigenic protein 2. Use one or more of the following antibodies (i) or (ii) to detect mycoplasma pneumoniae by an immunological technique Method.
(I) Antibody against a protein encoded by any one of the Mycoplasma pneumoniae genes MPN295, MPN314, MPN479, and MPN574 (ii) Amino acids of the protein encoded by any one of the Mycoplasma pneumoniae genes MPN295, MPN314, MPN479, and MPN574 An antibody against an antigenic protein that is specific for Mycoplasma pneumoniae and has one or more amino acids deleted, substituted or added in the sequence 3. The immunological technique is Enzyme-Linked ImmunoSorbent Assay (ELISA) or immunochromatography 2. The method for detecting Mycoplasma pneumoniae according to 2 above, which is a graphic assay.
4. The method for detecting Mycoplasma pneumoniae according to 2 or 3 above, wherein the immunological technique uses a sandwich method.
5. A Mycoplasma pneumoniae detection device that detects Mycoplasma pneumoniae by the detection method according to any one of 1 to 4 above.
6. In the amino acid sequence of the protein encoded by any one of the Mycoplasma pneumoniae genes MPN295, MPN314, MPN479, and MPN574, or the protein encoded by any one of the Mycoplasma pneumoniae genes MPN295, MPN314, MPN479, and MPN574, Alternatively, a vaccine in which a plurality of amino acids are deleted, substituted or added, and is Mycoplasma pneumoniae-specific protein having antigenicity, or a partial peptide thereof.

本発明のマイコプラズマ・ニューモニエの検出方法や検出デバイスを用いることで、今までと異なる抗原タンパク質、あるいはそれに対する抗体を用いて、マイコプラズマ・ニューモニエの検出を短時間で行うことが可能となる。   By using the detection method and detection device for Mycoplasma pneumoniae of the present invention, it becomes possible to detect Mycoplasma pneumoniae in a short time using a different antigen protein or an antibody against it.

新たに見出した4つの抗原に対する抗体を用い、ELISA法で各種菌体を測定して、各抗原のマイコプラズマ・ニューモニエ特異性を調べた結果を示している。The results of measuring the mycoplasma pneumoniae specificity of each antigen by measuring various microbial cells by ELISA using the antibodies against the newly found four antigens are shown. イムノクロマトグラフィックアッセイで測定する際の検出デバイスであるテストストリップの構成例を示している。The example of a structure of the test strip which is a detection device at the time of measuring by an immunochromatographic assay is shown.

以下に本発明を詳細に説明する。
本発明のタンパク質は、新たに見出された、マイコプラズマ・ニューモニエ特異的な抗原タンパク質で、GenBank(https://www.ncbi.nlm.nih.gov/nuccore/NC_000912.1)記載のMycoplasma pneumoniae M129株のMPN295、MPN314、MPN479、MPN574遺伝子でそれぞれコードされるタンパク質である。これらタンパク質を検出することで、マイコプラズマ・ニューモニエの有無を調べることができる。これらタンパク質は、抗原抗体反応を利用し免疫学的手法で検出するのが、簡便かつ迅速で好ましいが、質量分析などその他のタンパク質分析方法で検出することもできる。タンパク質の検出には、複数のペプチド断片や、特徴的なペプチド配列を検出することで、タンパク質の存在を明らかにする場合も、含まれる。検出されるタンパク質は、配列表と厳密に一致する必要はなく、同じマイコプラズマ・ニューモニエでも菌株ごとに配列がやや異なる可能性があり、菌株間の違いの範囲内で同一のタンパク質と判断できるのであれば、それらを検出することも含まれる。また、マイコプラズマ・ニューモニエの検出に使われる既存のタンパク質、例えばP1タンパク質やL7/L12リボソームタンパク質も合わせて測定・検出すれば、特異性や感度を高められる可能性がある。
The present invention is described in detail below.
The protein of the present invention is a newly discovered Mycoplasma pneumoniae-specific antigen protein, Mycoplasma pneumoniae M129 described in GenBank (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/nuccore/NC_000912.1). Proteins encoded by the strain MPN295, MPN314, MPN479, and MPN574 genes, respectively. By detecting these proteins, the presence or absence of Mycoplasma pneumoniae can be examined. These proteins are preferably detected by immunological techniques using an antigen-antibody reaction for convenience, rapidness, and detection, but they can also be detected by other protein analysis methods such as mass spectrometry. The detection of a protein includes a case where the presence of a protein is clarified by detecting a plurality of peptide fragments or characteristic peptide sequences. The detected protein does not need to match the sequence table exactly, and even in the same Mycoplasma pneumoniae, the sequence may be slightly different from strain to strain, and it can be determined that the protein is the same within the range of differences between strains. For example, detecting them is also included. Further, if an existing protein used for detection of Mycoplasma pneumoniae, for example, P1 protein or L7 / L12 ribosomal protein is also measured and detected, specificity and sensitivity may be improved.

タンパク質に対する抗体は、それぞれのタンパク質の抗体であればどのようなものを用いてもよく、ポリクローナル抗体を用いても、モノクローナル抗体用いてもよいが、品質の均一性の観点から、モノクローナル抗体を用いることがより好ましい。抗体は、1種類または2種類以上用いてもよい。ここでの種類は、異なるタンパク質に対する抗体であれば、当然、異なる種類の抗体といえ、さらに同じタンパク質に対するものであっても、ものとして異なれば、異なる種類の抗体といえる。ポリクローナル抗体は免疫感作するごとに、異なる種類の抗体と考える。   As the antibody against the protein, any antibody may be used as long as it is an antibody of each protein. A polyclonal antibody or a monoclonal antibody may be used. From the viewpoint of quality uniformity, a monoclonal antibody is used. It is more preferable. One type or two or more types of antibodies may be used. Of course, if the type is an antibody against a different protein, it can be said that it is a different type of antibody, and even if it is against the same protein, it can be said that it is a different type of antibody if it is different. Polyclonal antibodies are considered different types of antibodies each time they are immunized.

マイコプラズマ・ニューモニエを、抗体を用いて、免疫学的手法で検出する方法としては、例えばELISA(Enzyme-Linked ImmunoSorbent Assay)やイムノクロマトグラフィックアッセイが挙げられる。   Examples of methods for detecting Mycoplasma pneumoniae by immunological techniques using antibodies include ELISA (Enzyme-Linked ImmunoSorbent Assay) and immunochromatographic assays.

ELISAやイムノクロマトグラフィックアッセイは、抗原を2つの抗体で挟みこむサンドイッチ法タイプのものを用いてもよい。この場合、挟み込む2つの抗体の組み合わせは、ともに、マイコプラズマ・ニューモニエ特異的であれば特に制限はないが、モノクローナル抗体を用いるときは、エピトープが重ならないか、近くにないような組み合わせとすることが好ましい。さらに、既存の、マイコプラズマ・ニューモニエ特異的タンパク質に対する抗体と組み合わせて用いてもよく、例えば、MPN295でコードされるタンパク質に対する抗体と、抗P1抗体を組み合わせて用いてもよい。   For the ELISA or immunochromatographic assay, a sandwich method in which an antigen is sandwiched between two antibodies may be used. In this case, the combination of the two antibodies to be sandwiched is not particularly limited as long as it is specific for Mycoplasma pneumoniae, but when a monoclonal antibody is used, the combination may be such that the epitopes do not overlap or are not close together. preferable. Furthermore, it may be used in combination with an existing antibody against Mycoplasma pneumoniae-specific protein. For example, an antibody against a protein encoded by MPN295 and an anti-P1 antibody may be used in combination.

検出デバイスは、例えば、あらかじめ固相化抗体がコーティングされたプレートのwellにサンプルを入れ1次反応を行い、次に洗浄後酵素標識第二抗体を入れ、酵素反応を行うELISA用のデバイスや、膜状にあらかじめ金属コロイド等で標識された抗体と、膜状の移動先にキャプチャー抗体が敷かれていて、検体の液滴を膜状の金属コロイド標識抗体上に滴下するのみで、マイコプラズマ・ニューモニエの有無を判定できる、イムノクロマトグラフィックアッセイを利用した検出デバイスが挙げられる。   The detection device is, for example, an ELISA device in which a sample is placed in a well of a plate that has been coated with a solid-phased antibody in advance and a primary reaction is performed, then an enzyme-labeled second antibody is added after washing, and an enzyme reaction is performed, An antibody pre-labeled with a metal colloid etc. in the form of a membrane and a capture antibody is laid on the membrane destination, and a sample droplet is simply dropped onto the membrane-like metal colloid-labeled antibody. And a detection device that uses an immunochromatographic assay.

本発明における、マイコプラズマ・ニューモニエ由来特異抗原に対する抗体を用いたイムノクロマトグラフィックアッセイは、抗原抗体反応の高い特異性や感度と、クロマトグラフィーの優れた分離技術が融合した方法である。そのデバイスは安価で操作も簡便であり、特別な装置も試薬も不要である。また、短時間で診断結果が得られるため外来診療の現場で検査する事ができ、その結果を用いて適切な抗菌薬治療を行うことが可能となる。   The immunochromatographic assay using an antibody against a Mycoplasma pneumoniae-derived specific antigen in the present invention is a method in which high specificity and sensitivity of an antigen-antibody reaction are combined with an excellent chromatographic separation technique. The device is inexpensive and easy to operate, and no special equipment or reagents are required. In addition, since the diagnosis result can be obtained in a short time, it can be examined in the outpatient clinic, and appropriate antibacterial treatment can be performed using the result.

本発明で見出された特異抗原を、マイコプラズマ・ニューモニエ予防のためのワクチンとして使用することもできる。本発明により見出された特異抗原を1ないし2以上用い、この抗原を不活化した後、アジュバントと組み合わせて免疫に使用できる。特異抗原の種類、組み合わせ等により、より免疫原性の高いものを選別して使用することが好ましい。   The specific antigen found in the present invention can also be used as a vaccine for preventing Mycoplasma pneumoniae. One or two or more specific antigens found by the present invention are used, and after inactivating this antigen, it can be used for immunization in combination with an adjuvant. It is preferable to select and use those having higher immunogenicity depending on the types and combinations of specific antigens.

次に、マイコプラズマ・ニューモニエ特異抗原を見出し、これに対する抗体を作成し、これを利用して抗原を検出して、マイコプラズマ・ニューモニエの有無を調べる方法を示す。   Next, a method for detecting the presence of Mycoplasma pneumoniae by detecting Mycoplasma pneumoniae-specific antigen, preparing an antibody against the antigen, and detecting the antigen using this antibody will be described.

マイコプラズマ・ニューモニエ特異抗原は、ゲノム情報を利用し他菌種と相同性が低いタンパク質で、かつ、マイコプラズマ・ニューモニエにおいて発現量が高いタンパク質を選定する。選定されたタンパク質を製造あるいは入手して、マウスに接種しポリクローナル抗体を作成し、これを用いたELISAにて他菌種との交差反応性およびマイコプラズマ・ニューモニエとの反応性を比較して、マイコプラズマ・ニューモニエに極めて特異性の高いタンパク質を絞り込み、最適候補を見出すことができる。   As the Mycoplasma pneumoniae-specific antigen, a protein having a low homology with other bacterial species and a high expression level in Mycoplasma pneumoniae is selected using genomic information. Manufacture or obtain selected proteins, inoculate mice and make polyclonal antibodies. Compare ELISA with other bacterial species and reactivity with Mycoplasma pneumoniae using Mycoplasma. -It is possible to narrow down proteins highly specific to pneumoniae and find the best candidates.

この最適候補の抗原タンパク質の発現系を構築し、遺伝子組み換え抗原タンパク質を得て、これに対する抗体を作成し、その特異性、感度などを調べることができる。
抗体作成の際の免疫については、一般的な手法で実施できる。例えば、上記、遺伝子組み換え抗原タンパク質をPhosphate buffered saline(PBS)などの溶媒に溶解し、溶解後の抗原とアジュバンドをエマルジョン化し、免疫対象の皮下もしくは腹腔などに投与を行う。免疫の対象としては哺乳動物、鳥類などが適当であり、マウス、ラットなどが好ましい。さらに、アジュバンドとしては水酸化ナトリウム、水酸化アルミニウム、リン酸カルシウム、リン酸アルミニウム、流動パラフィンなどがあるが、フロイントの完全アジュバントもしくはフロイントの不完全アジュバントを用いるのが好ましい。投与量については免疫対象動物ごとに適宜選択することが望ましいが、10〜100μg/ml程度が好ましい。
なお、免疫感作に用いる抗原は必ずしも、抗原タンパク質に限らず、その部分ペプチドを用いることもできる。
By constructing an expression system for this optimal candidate antigen protein, a genetically engineered antigen protein can be obtained, an antibody against this can be prepared, and its specificity and sensitivity can be examined.
Immunization at the time of antibody production can be performed by a general method. For example, the above-mentioned recombinant antigen protein is dissolved in a solvent such as Phosphate buffered saline (PBS), and the dissolved antigen and adjuvant are emulsified and administered subcutaneously or peritoneally to the immunized subject. Mammals and birds are suitable as immunization targets, and mice and rats are preferred. Further, examples of the adjuvant include sodium hydroxide, aluminum hydroxide, calcium phosphate, aluminum phosphate, and liquid paraffin. Preferably, Freund's complete adjuvant or Freund's incomplete adjuvant is used. Although it is desirable to select the dose appropriately for each animal to be immunized, it is preferably about 10 to 100 μg / ml.
In addition, the antigen used for immunization is not necessarily limited to the antigen protein, and a partial peptide thereof can also be used.

免疫した動物の脾臓ないしリンパ節を取り出し、これらの細胞と、ミエローマ細胞を細胞融合させ、さらに所定の方法でスクリーニング、クローニングすることで、目的の抗体を産生するハイブリドーマを得ることができる。   The spleen or lymph node of the immunized animal is taken out, these cells and myeloma cells are fused, and further screened and cloned by a predetermined method, whereby a hybridoma producing the target antibody can be obtained.

クローニングされたハイブリドーマは、マウス腹水法で増殖させてもよいし、細胞培養で増殖させてもよい。増殖後の抗体はアフィニティークロマトグラフィーで精製純化することができる。   The cloned hybridoma may be grown by the mouse ascites method or by cell culture. The grown antibody can be purified and purified by affinity chromatography.

精製純化した抗体を使って、イムノクロマトグラフィックアッセイのデバイスを製造するには、標識抗体、クロマトグラフィー担体に相当するメンブレン、キャプチャー抗体などが必要となる。
標識抗体を製造する際の標識に用いる抗体担持体に特に制限はないが、着色ラテックス粒子、シリカ粒子、磁性粒子、金コロイド粒子、白金コロイド粒子などが好ましく、特に金コロイド粒子が好ましい。金コロイド粒子を用いる場合その粒径は20nm〜80nm程度が好ましく、30〜60nmがより好ましく、特に40nmが好ましい。
メンブレンとしては、ガラス繊維、ナイロン、ニトロセルロース、ポリビニリデンジフルオライド(PVDF)、セルロースアセテートなどの微多孔質物質が挙げられるが、特にニトロセルロースからなる微多孔質物質が好ましい。
In order to produce an immunochromatographic assay device using a purified and purified antibody, a labeled antibody, a membrane corresponding to a chromatography carrier, a capture antibody, and the like are required.
There are no particular restrictions on the antibody carrier used for labeling when producing labeled antibodies, but colored latex particles, silica particles, magnetic particles, colloidal gold particles, colloidal platinum particles and the like are preferred, and colloidal gold particles are particularly preferred. When gold colloidal particles are used, the particle size is preferably about 20 to 80 nm, more preferably 30 to 60 nm, and particularly preferably 40 nm.
Examples of the membrane include microporous materials such as glass fiber, nylon, nitrocellulose, polyvinylidene difluoride (PVDF), and cellulose acetate, and microporous materials made of nitrocellulose are particularly preferable.

本発明においては、サンプルである、検体浮遊液の処理については、患者などから採取された検体におけるマイコプラズマ・ニューモニエ菌体を単離し、抗原認識部位を露出、懸濁させるために、非イオン界面活性剤、緩衝液、無機塩類を含有させることが望ましい。   In the present invention, for treatment of the sample suspension, which is a sample, in order to isolate Mycoplasma pneumoniae cells in a sample collected from a patient and expose and suspend the antigen recognition site, It is desirable to contain an agent, a buffer solution, and inorganic salts.

非イオン界面活性剤としては、Tween20(ポリオキシエチレンソルビタンモノラウレート)、TritonX-100(ポリエチレングリコールモノ-p-イソオクチルフェニルエ‐テル)、Brij35(ポリオキシエチレン(23)ラウリルエーテル)、Brij58(ポリオキシエチレン(20)セチルエーテル)、NP-40(ノニデットP40)などが挙げられる。   Nonionic surfactants include Tween20 (polyoxyethylene sorbitan monolaurate), TritonX-100 (polyethylene glycol mono-p-isooctylphenyl ether), Brij35 (polyoxyethylene (23) lauryl ether), Brij58 (Polyoxyethylene (20) cetyl ether), NP-40 (Nonidet P40) and the like.

緩衝液としてはトリス塩酸緩衝液、トリシン緩衝液、ビシン緩衝液などを用いることが出来るがこれらに限定されない。また、濃度は10mMから200mM程度が好ましい。   Examples of the buffer solution include, but are not limited to, a Tris-HCl buffer solution, a Tricine buffer solution, and a Bicine buffer solution. The concentration is preferably about 10 mM to 200 mM.

含有させる無機塩類は特に限定されないが、例えば、ナトリウム塩、カリウム塩、マグネシウム塩、カルシウム塩などが挙げられる。さらに、その中では塩化ナトリウムがより好ましい。   The inorganic salts to be contained are not particularly limited, and examples thereof include sodium salts, potassium salts, magnesium salts, and calcium salts. Further, among them, sodium chloride is more preferable.

この、界面活性剤等で処理したサンプルを、イムノクロマトグラフィックアッセイ
のデバイスに供して、マイコプラズマ・ニューモニエの有無を調べることができる。
This sample treated with a surfactant or the like can be subjected to an immunochromatographic assay device to examine the presence or absence of Mycoplasma pneumoniae.

以下に、本発明を実施例で説明するが、本発明はこの実施例に限定されるものではない。   Hereinafter, the present invention will be described with reference to examples, but the present invention is not limited to these examples.

実施例1
1.マイコプラズマ・ニューモニエ特異的な抗原タンパク質の絞り込み
GenBank(https://www.ncbi.nlm.nih.gov/nuccore/NC_000912.1)記載のマイコプラズマ・ニューモニエ遺伝子MPN1からMPN688について、BLAST検索により、他菌種と配列の相同性を確認しその相同性が低く、かつ、参考資料1を参照しマイコプラズマ・ニューモニエで発現量が高いタンパク質を選定した。選定したタンパク質を製造し、マウスに接種し、抗体を作製した。それら抗体を用いELISAにて他菌種との交差反応性およびマイコプラズマ・ニューモニエとの反応性を比較した。その結果、マイコプラズマ・ニューモニエ特異性が極めて高かったMPN295、MPN314、MPN479、MPN574より合成されるタンパク質を抗原として見出した。
参考資料1:Tobias Maier, Alexander Schmidt et al., Molecular Systems Biology 511,(2011). Quantification of mRNA and protein and integration with protein turnover in a bacterium
Example 1
1. Narrowing down Mycoplasma pneumoniae-specific antigenic proteins
Concerning the mycoplasma pneumoniae genes MPN1 to MPN688 described in GenBank (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/nuccore/NC_000912.1), the homology of the sequence with other bacterial species was confirmed by BLAST search. A protein with low expression and a high expression level in Mycoplasma pneumoniae was selected with reference to Reference Material 1. The selected proteins were produced and inoculated into mice to produce antibodies. Using these antibodies, cross-reactivity with other bacterial species and reactivity with Mycoplasma pneumoniae were compared by ELISA. As a result, proteins synthesized from MPN295, MPN314, MPN479 and MPN574, which had extremely high Mycoplasma pneumoniae specificity, were found as antigens.
Reference 1: Tobias Maier, Alexander Schmidt et al., Molecular Systems Biology 511, (2011). Quantification of mRNA and protein and integration with protein turnover in a bacterium

2.抗原タンパク質の作製
M. pneumoniaeからDNAを抽出し、PCRにて前記タンパク質抗原をコードする目的の遺伝子を増幅した。その増幅産物をpETBlue2プラスミドベクターに組込み、これを大腸菌NovaBlueに導入し発現プラスミドを構築した。この大腸菌を培養し、構築したプラスミドを抽出し、大腸菌Tuner(DE3)pLacIに導入しEschelichia coliでのタンパク質発現系を構築した。さらに、この大腸菌を培養して、抗原タンパク質を生産し、そのタンパク質をアフィニティーカラムで精製し遺伝子組み換え抗原タンパク質を得た。
2. Production of antigenic protein
DNA was extracted from M. pneumoniae, and the gene of interest encoding the protein antigen was amplified by PCR. The amplified product was incorporated into pETBlue2 plasmid vector and introduced into E. coli NovaBlue to construct an expression plasmid. This Escherichia coli was cultured, the constructed plasmid was extracted and introduced into Escherichia coli Tuner (DE3) pLacI to construct a protein expression system in Eschelichia coli. Furthermore, this E. coli was cultured to produce an antigen protein, and the protein was purified with an affinity column to obtain a recombinant antigen protein.

3.マウスへの免疫感作
0.2から1.0mg/mLに調製した遺伝子組み換え抗原タンパク質とFreund's Complete Adjuvant (FCA)を等量混合し、vortexした後、超音波破砕機 (sonics vibracell VC-505)でエマルジョンを作製した。その免疫源をBALB/cAJcl (日本クレア)のマウス皮下に100から500μlを2週間空けて2回投与し、その2週間後に1回の計3回投与を行った。その1週間後に、このマウスの抗体を含む血液を使ったELISAで抗体価が上昇していることを確認し、脾臓もしくはリンパ節を採取した。
3. Immunization to mice
Equal amounts of the recombinant antigen protein prepared at 0.2 to 1.0 mg / mL and Freund's Complete Adjuvant (FCA) were mixed and vortexed, and then an emulsion was prepared with an ultrasonic crusher (sonics vibracell VC-505). 100-500 μl of the immunogen was subcutaneously administered to the mice under BALB / cAJcl (Claire Japan) twice for 2 weeks, and then 2 times later, once for a total of 3 times. One week later, it was confirmed that the antibody titer was elevated by ELISA using blood containing antibody of this mouse, and spleen or lymph nodes were collected.

4.ミエローマ細胞の培養
ペニシリン、ストレプトマイシン、アンホテリシンBを添加したRoswell Park Memorial Institute1640(RPMI1640)培地に、Fetal Bovine Serum(FBS)を10%の割合で添加した培地でマウスミエローマ細胞(P3X63-Ag8.653)の培養を行った。
4). Culture of myeloma cells Roswell Park Memorial Institute 1640 (RPMI1640) medium supplemented with penicillin, streptomycin, amphotericin B, Fetal Bovine Serum (FBS) added at a rate of 10% of mouse myeloma cells (P3X63-Ag8.653) Culture was performed.

5.ミエローマ細胞及びマウス由来細胞の調製
マウスから採取した脾臓ないしリンパ節をハサミで細断し、無血清培地で洗いながらラバーポリスマンで75μmのメッシュを通した。1,000rpm、5分間遠心処理し洗浄を行い、細胞数をカウントした。その後、脾臓細胞ないしリンパ節細胞:ミエローマ細胞を5:1程度に調製し、1,000rpm、5分間遠心処理を行い、細胞ペレットを37℃温水中で2分間インキュベートした。
5). Preparation of Myeloma Cells and Mouse-Derived Cells Spleens or lymph nodes collected from mice were shredded with scissors and passed through a 75 μm mesh with a rubber policeman while washing with serum-free medium. After washing at 1,000 rpm for 5 minutes, the cells were counted. Thereafter, spleen cells or lymph node cells: myeloma cells were prepared at about 5: 1, centrifuged at 1,000 rpm for 5 minutes, and the cell pellet was incubated at 37 ° C. in warm water for 2 minutes.

6.細胞融合
37℃に保温した1mLのポリエチレングリコール1500(PEG1500;Roche)を調製した細胞ペレットに1分かけてゆっくりと撹拌するように加え、その後1分間撹拌を継続した。さらに37℃に保温したペニシリン、ストレプトマイシン、アンホテリシンB添加RPMI1640培地4.5mLを3分間穏やかに撹拌しながら加え、さらに同培地4.5mLを2分間穏やかに撹拌しながら加えた。1,000rpm、5分間遠心処理を行い細胞ペレットにペニシリン、ストレプトマイシン、アンホテリシンBと、10%の割合でFBSを添加したGIT培地20mLを加え懸濁した後、1,000rpm、5分間遠心処理を行った。そして、hypoxanthine-aminopterin-thymidine (HAT)サプリメント(SIGMA)を添加した10%FBSを含むGIT培地にBM condimedH1(Roche)を加えた培地に細胞を浮遊させ、96wellプレートに分注し、37℃、5%CO2下で7日間から10日間程度培養を行った。
6). Cell fusion
1 mL of polyethylene glycol 1500 (PEG1500; Roche) kept at 37 ° C. was added to the prepared cell pellet with slow stirring over 1 minute, and then stirring was continued for 1 minute. Furthermore, 4.5 mL of RPMI1640 medium supplemented with penicillin, streptomycin and amphotericin B kept at 37 ° C. was added with gentle stirring for 3 minutes, and further 4.5 mL of the same medium was added with gentle stirring for 2 minutes. Centrifugation was performed at 1,000 rpm for 5 minutes, penicillin, streptomycin, amphotericin B and 20 mL of GIT medium supplemented with 10% FBS were added to the cell pellet and suspended, followed by centrifugation at 1,000 rpm for 5 minutes. Then, cells were suspended in a GIT medium containing 10% FBS supplemented with hypoxanthine-aminopterin-thymidine (HAT) supplement (SIGMA) in a medium containing BM condimedH1 (Roche), dispensed into a 96-well plate, 37 ° C, Cultivation was performed for 7 to 10 days under 5% CO 2 .

7.ハイブリドーマのスクリーニング(ELISA)
炭酸-重炭酸緩衝液 (pH9.3)で5μg/mlに希釈したM. pneumoniae (ATCC29342)菌体破砕液を、ELISA用96wellプレートに50μl/well分注し冷蔵で一晩反応させた。そして、炭酸-重炭酸緩衝液 (pH9.3)で2回洗浄を行い、0.5%Bovine Serum Albumin(BSA)添加炭酸-重炭酸緩衝液(pH9.3)を100μl/well添加し、室温で1時間反応させブロッキングを行った。続いて、ハイブリドーマを7日間から10日間程度培養後の培養上清を0.1%TritonX-100添加緩衝液で2倍希釈し、50μl/well分注後室温で2時間反応させた。次に0.1%TritonX-100添加緩衝液にて4回洗浄を行い、同緩衝液で5,000倍希釈した酵素標識抗マウスIg抗体を室温で1.5時間反応させた。再度0.1%TritonX-100添加緩衝液にて4回洗浄を行い、TMB基質溶液を50μl/well分注し15分反応後1Mリン酸を50μl/well添加し反応を停止させた。続いてマイクロプレートリーダーにて450nmの吸光度を測定した。
7). Hybridoma screening (ELISA)
M. pneumoniae (ATCC29342) bacterial cell disruption solution diluted to 5 μg / ml with carbonate-bicarbonate buffer (pH 9.3) was dispensed into a 96-well plate for ELISA at 50 μl / well and allowed to react overnight by refrigeration. After washing twice with carbonate-bicarbonate buffer (pH 9.3), 100 μl / well of 0.5% Bovine Serum Albumin (BSA) -added carbonate-bicarbonate buffer (pH 9.3) was added, and the mixture was added at room temperature. The reaction was allowed to proceed for blocking. Subsequently, the culture supernatant after culturing the hybridoma for about 7 days to 10 days was diluted 2-fold with a 0.1% Triton X-100 added buffer, dispensed at 50 μl / well, and reacted at room temperature for 2 hours. Next, the plate was washed 4 times with 0.1% Triton X-100 added buffer, and enzyme-labeled anti-mouse Ig antibody diluted 5,000 times with the same buffer was reacted at room temperature for 1.5 hours. The plate was washed again with 0.1% Triton X-100 addition buffer, and the TMB substrate solution was dispensed at 50 μl / well. After 15 minutes of reaction, 1 M phosphoric acid was added at 50 μl / well to stop the reaction. Subsequently, the absorbance at 450 nm was measured with a microplate reader.

8.ハイブリドーマのクローニング
ELISAで抗体産生の確認されたハイブリドーマは、限界希釈法によりクローニングを実施した。なお、培地は10%FBS、hypoxanthine-thymidine (HT)サプリメント(SIGMA)添加GIT培地を使用した。
8). Hybridoma cloning
Hybridomas for which antibody production was confirmed by ELISA were cloned by the limiting dilution method. The medium used was a GIT medium supplemented with 10% FBS and hypoxanthine-thymidine (HT) supplement (SIGMA).

9.マウス腹水化
0.5mlの腹水誘導試薬プリスタンをハイブリドーマ接種の10日前および3日前にマウス腹腔内に接種し、1×106から107個のハイブリドーマ細胞を接種した。そして、1から2週間後に腹水を回収した。
9. Mouse ascites
0.5 ml of ascites inducing reagent pristane was inoculated intraperitoneally into mice 10 days and 3 days before hybridoma inoculation, and 1 × 10 6 to 10 7 hybridoma cells were inoculated. And ascites was collected after 1-2 weeks.

10.抗体精製
抗体の精製にはAb-Rapid SPiN EX(Protenova)を使用した。カラムへの結合と洗浄にはPBSを、抗体の溶出には0.1M クエン酸ナトリウム緩衝液 pH4.0を、溶出したIgG抗体の中和には1MTrisを使用した。精製後のIgG抗体はPBSにて透析後-20℃で保存した。
10. Antibody purification Ab-Rapid SPiN EX (Protenova) was used for antibody purification. PBS was used for binding to the column and washing, 0.1 M sodium citrate buffer pH 4.0 was used for antibody elution, and 1 MTris was used for neutralization of the eluted IgG antibody. The purified IgG antibody was dialyzed with PBS and stored at -20 ° C.

11.ELISA法におけるマイコプラズマ・ニューモニエの検出
菌体破砕抗原は5μg/ml(ここで、菌体破砕液のタンパク質濃度を菌体破砕抗原の濃度とする。以下同じ)、リコンビナントタンパク抗原は1μg/mlとなるように炭酸-重炭酸緩衝液(pH9.3)で希釈し、1ウェルあたり50μl分注し、4℃で一晩静置した後室温で4時間振盪した炭酸-重炭酸緩衝液(pH9.3)を1ウェルあたり100μl分注し、室温で1分間振盪することを2回繰り返した。0.5%BSA添加炭酸-重炭酸緩衝液(pH9.3)を1ウェルあたり100μl分注し、室温で1時間振盪後、マイコプラズマ・ニューモニエ特異抗体を0.1%TritonX-100+1%BSA添加トリス緩衝液で500倍希釈し、1ウェルあたり50μl分注し2時間反応させた。反応後、0.1%TritonX-100添加トリス緩衝液を1ウェルあたり100μl分注し、室温で1分間振盪を4回繰り返し洗浄を行った。そして、HRP標識抗マウス抗体を0.1%TritonX-100+1%BSA添加トリス緩衝液で5,000倍希釈し、1ウェルあたり50μl分注後室温で1.5時間反応させた。0.1%TritonX-100添加トリス緩衝液を1ウェルあたり100μl分注し、室温で1分間振盪を4回繰り返す事で洗浄を行った。TMB試薬溶液を1ウェルあたり50μl分注し室温で10〜15分後、1Mリン酸を1ウェルあたり50μl分注し反応を停止させ、マイクロプレートリーダー(BIO-TEK社製)にて450nm の吸光度を測定した。これらの結果を図1に示した。
11. Detection of Mycoplasma pneumoniae by ELISA method Cell disruption antigen is 5 μg / ml (Here, the protein concentration in the cell disruption solution is the concentration of the cell disruption antigen. The same shall apply hereinafter.) Recombinant protein antigen is 1 μg / ml. Diluted with carbonate-bicarbonate buffer (pH 9.3), dispensed 50 μl per well, left at 4 ° C. overnight, and then shaken at room temperature for 4 hours, carbonate-bicarbonate buffer (pH 9.3). ) Was dispensed 100 μl per well and shaken for 1 minute at room temperature twice. Dispense 100 μl of 0.5% BSA-added carbonate-bicarbonate buffer (pH 9.3) per well, shake for 1 hour at room temperature, and add Mycoplasma pneumoniae-specific antibody to 0.1% TritonX-100 + 1% BSA-added Tris buffer. The diluted solution was diluted 50 μl per well and allowed to react for 2 hours. After the reaction, 100 μl of 0.1% TritonX-100-added Tris buffer was dispensed per well, and washing was repeated 4 times at room temperature for 1 minute. The HRP-labeled anti-mouse antibody was diluted 5,000-fold with 0.1% TritonX-100 + 1% BSA-added Tris buffer, dispensed at 50 μl per well, and allowed to react at room temperature for 1.5 hours. Washing was performed by dispensing 100 μl of 0.1% TritonX-100-added Tris buffer per well and repeating shaking four times for 1 minute at room temperature. Dispense 50 μl of TMB reagent solution per well, and after 10-15 minutes at room temperature, dispense 50 μl of 1M phosphoric acid per well to stop the reaction. Absorbance at 450 nm using a microplate reader (BIO-TEK) Was measured. These results are shown in FIG.

図1の結果から、MPN295、314、479、574におけるマイコプラズマ・ニューモニエ特異抗体は、マイコプラズマ・ニューモニエ菌体抗原およびリコンビナントタンパク質に対して陽性反応を示した。マイコプラズマ・ニューモニエを除く他のマイコプラズマおよび一般細菌、真菌の菌体抗原などにはいずれも交差反応は示さなかった。すなわち、今回見出したタンパク質抗原は、マイコプラズマ・ニューモニエ特異性が極めて高いことが分かった。   From the results shown in FIG. 1, the Mycoplasma pneumoniae-specific antibody in MPN295, 314, 479, and 574 showed a positive reaction to Mycoplasma pneumoniae cell antigen and recombinant protein. None of the mycoplasma other than Mycoplasma pneumoniae, general bacteria, fungal cell antigens, etc. showed any cross reaction. That is, the protein antigen found this time was found to be extremely high in Mycoplasma pneumoniae specificity.

12.抗体固相化メンブレンの作製
メンブレンはニトロセルロース膜(MILLIPORE; HF180)を使用した。5%の2-プロパノールを含む10mM リン酸ナトリウム緩衝液 (pH7.0)で、モノクローナル抗体を終濃度1mg/mlに調製したものをメンブレン上に線状に塗布し、室温で1時間乾燥させた。乾燥後、0.5%のカゼインナトリウムを含む20mMリン酸ナトリウム緩衝液(pH7.8)200mlにメンブレンを浸し、20分ゆっくりと振盪し、溶液を破棄した後洗浄操作(精製水で5分ゆっくりと振盪)を2回行った。その後3%スクロース溶液に浸し、10分ゆっくりと振盪させ、溶液をしっかりと落とし室温で一晩乾燥させた。
12 Preparation of antibody-immobilized membrane A nitrocellulose membrane (MILLIPORE; HF180) was used as the membrane. A 10 mM sodium phosphate buffer solution (pH 7.0) containing 5% 2-propanol and a monoclonal antibody prepared to a final concentration of 1 mg / ml was applied linearly on the membrane and dried at room temperature for 1 hour. . After drying, immerse the membrane in 200 ml of 20 mM sodium phosphate buffer (pH 7.8) containing 0.5% sodium caseinate, shake gently for 20 minutes, discard the solution, and then wash (purify gently with purified water for 5 minutes) ) Was performed twice. Then, it was immersed in a 3% sucrose solution, shaken slowly for 10 minutes, the solution was dropped firmly and dried overnight at room temperature.

13.検出デバイスであるテストストリップの作製(図2)
上記ニトロセルロース膜担体の抗体を塗布した側と反対側に、基材となるバッキングシートを張り合わせた。次に、ニトロセルロース膜の上流側(コントロールライン側)に5mm重なるように吸収パッドを貼り付け、ニトロセルロース膜と吸収パッドの接合部をセロハンテープで固定した。最後に縦方向に沿って5mm幅に切断し、イムノクロマトグラフィックアッセイ用テストストリップとした。
13. Production of test strip as detection device (Figure 2)
A backing sheet as a base material was bonded to the side of the nitrocellulose membrane carrier opposite to the side on which the antibody was applied. Next, an absorbent pad was attached so as to overlap 5 mm on the upstream side (control line side) of the nitrocellulose membrane, and the joint between the nitrocellulose membrane and the absorbent pad was fixed with cellophane tape. Finally, it was cut to a width of 5 mm along the longitudinal direction to obtain a test strip for immunochromatographic assay.

14.金コロイド標識抗体の作製
精製後のモノクローナル抗体を20mM MOPS(pH7.0)で60μg/mLに調製した。金コロイド溶液(田中貴金属工業:平均粒子径40nm)900μlに0.2M MOPS(pH7.0)を100μl加え混和した後、前記精製後のモノクローナル抗体を100μl加え混和後、室温で20分静置した。次に5%カゼインナトリウムを加えた20mM MOPS(pH7.0)を250μl加え室温で20分間静置し、12,000×gで5分間遠心分離した。上清を除去後、0.1%カゼインNaを加えた10mM トリス塩酸緩衝液 (pH8.2)を1ml加え、12,000×gで5分間遠心分離した。この操作を2回繰り返した後、0.1%カゼインNa添加10mM トリス塩酸緩衝液 (pH8.2)を200μl加えしっかりと分散させ、金コロイド標識抗体溶液とした。
14 Preparation of colloidal gold-labeled antibody A purified monoclonal antibody was prepared at 60 μg / mL with 20 mM MOPS (pH 7.0). 100 μl of 0.2M MOPS (pH 7.0) was added to and mixed with 900 μl of a gold colloid solution (Tanaka Kikinzoku Kogyo: average particle size 40 nm), and then 100 μl of the purified monoclonal antibody was added and mixed, and then allowed to stand at room temperature for 20 minutes. Next, 250 μl of 20 mM MOPS (pH 7.0) to which 5% sodium caseinate was added was added and left at room temperature for 20 minutes, followed by centrifugation at 12,000 × g for 5 minutes. After removing the supernatant, 1 ml of 10 mM Tris-HCl buffer (pH 8.2) supplemented with 0.1% casein Na was added and centrifuged at 12,000 × g for 5 minutes. After repeating this operation twice, 200 μl of 0.1% casein Na-added 10 mM Tris-HCl buffer (pH 8.2) was added and dispersed well to obtain a colloidal gold labeled antibody solution.

15.イムノクロマトグラフィックアッセイによるマイコプラズマ・ニューモニエ抗原の検出
[抗原調製]
PPLO培地にstock菌液を加え、37℃、好気条件下で約10日間培養を実施した。培養液を10,000×g、20分遠心し上清を除去後、PBSで再浮遊させ25,000×g、20分で遠心した。遠心後再度少量のPBSで再浮遊させた後、マイクロチューブに移し20,000×g、20分遠心した。遠心後、菌体湿重量の9倍量程度のPBSで再浮遊させ、超音波破砕機 (sonics vibracell VC-505)で菌体を破砕し抗原とした。菌体は、感染患者(105〜108CFU/mL)と同程度のマイコプラズマ・ニューモニエ濃度となるよう実験時に調製し使用した。
15. Detection of Mycoplasma pneumoniae antigen by immunochromatographic assay [antigen preparation]
The stock bacterial solution was added to PPLO medium and cultured for about 10 days under an aerobic condition at 37 ° C. The culture solution was centrifuged at 10,000 × g for 20 minutes, the supernatant was removed, resuspended in PBS, and centrifuged at 25,000 × g for 20 minutes. After centrifugation, the suspension was resuspended in a small amount of PBS, transferred to a microtube, and centrifuged at 20,000 × g for 20 minutes. After centrifugation, the cells were resuspended in PBS about 9 times the wet weight of the cells, and the cells were crushed with an ultrasonic crusher (sonics vibracell VC-505) to obtain an antigen. The cells were prepared and used at the time of the experiment so that the mycoplasma pneumoniae concentration was about the same as that of infected patients (10 5 to 10 8 CFU / mL).

[抗原の検出]
抗原は上記調製法に従い調製した。テストストリップは前記に記載の方法で作製したものを使用した。金コロイド標識抗体は前記で記載した方法で作製したものを使用した。抗原は0.1%Triton-X100、0.1MNaClを含む50mMのTris-HCl(pH8.0)緩衝液にて50μg/mLに調製した。調製した抗原液を96wellマイクロプレートに50μl/well加え、金コロイド標識抗体を10μl/well添加後よく混和し、テストストリップの液体固相化メンブレン側の一端(図2左側)を浸し15分反応させた。反応後、メンブレン上の抗体固相化ライン部(図2テストライン)に赤い線が目視で確認出来たものを「+」、確認出来なかったものを「−」と判定した。
結果を表1に示した。
[Detection of antigen]
The antigen was prepared according to the above preparation method. The test strip prepared by the method described above was used. The colloidal gold labeled antibody was prepared by the method described above. The antigen was prepared to 50 μg / mL with 50 mM Tris-HCl (pH 8.0) buffer containing 0.1% Triton-X100 and 0.1 M NaCl. Add 50 μl / well of the prepared antigen solution to a 96-well microplate, add 10 μl / well of gold colloid-labeled antibody, mix well, and immerse one end of the test strip on the liquid-immobilized membrane side (left side of FIG. 2) for 15 minutes to react. It was. After the reaction, it was determined that “+” indicates that the red line was visually confirmed in the antibody-immobilized line part (FIG. 2 test line) on the membrane, and “−” indicates that it was not confirmed.
The results are shown in Table 1.

表1の結果から、MP314およびMPN574のコードするマイコプラズマ・ニューモニエ特異抗原に対する抗体は、いずれのマイコプラズマ・ニューモニエに対しても陽性反応を示した。マイコプラズマ・ニューモニエを除く他のマイコプラズマおよび一般細菌、真菌などにはいずれも交差反応は示さなかった。
すなわち、今回見出したタンパク質抗原を用いて、イムノクロマトグラフィックアッセイで測定すれば、短時間に、きわめて特異的にマイコプラズマ・ニューモニエを検出できることが分かった。
From the results shown in Table 1, antibodies against Mycoplasma pneumoniae-specific antigen encoded by MP314 and MPN574 showed a positive reaction against any Mycoplasma pneumoniae. No other cross-reactions were observed with other mycoplasmas except for Mycoplasma pneumoniae and general bacteria and fungi.
That is, it was found that Mycoplasma pneumoniae can be detected very specifically in a short time by measuring the protein antigen found this time using an immunochromatographic assay.

また、抗MPN574タンパク質抗体を用いたイムノクロマト法で、菌体破砕抗原濃度を振って抗原を検出し、感度を調べた結果を表2に示した。   In addition, Table 2 shows the results of detecting the antigen by immunochromatography using an anti-MPN574 protein antibody and detecting the antigen by varying the cell disruption antigen concentration and examining the sensitivity.

表2の結果から、菌体破砕抗原濃度0.0024μg/mL(およそ4×104CFU/mLに相当)で検出できていることから、マイコプラズマ・ニューモニエ感染患者(105〜108CFU/mL)の検体中濃度より十分に低い濃度で検出できており、感度についても、十分に高いことがわかった。 From the results shown in Table 2, mycoplasma pneumoniae-infected patients (10 5 to 10 8 CFU / mL) can be detected at a cell disruption antigen concentration of 0.0024 μg / mL (equivalent to approximately 4 × 10 4 CFU / mL). It was found that the detection was possible at a concentration sufficiently lower than the concentration in the sample, and the sensitivity was sufficiently high.

本発明によれば簡便かつ迅速にマイコプラズマ・ニューモニエを検出することができ、
外来診療の現場で検査可能で、その結果を用いて適切な抗菌薬治療を行うことが可能になる。

According to the present invention, Mycoplasma pneumoniae can be detected simply and quickly,
Examination can be performed at the outpatient clinic, and appropriate antibacterial therapy can be performed using the results.

Claims (6)

以下の(i)又は(ii)のタンパク質のうち、1又は2以上を検出することを特徴とするマイコプラズマ・ニューモニエの検出方法。
(i)マイコプラズマ・ニューモニエ遺伝子MPN295、MPN314、MPN479、MPN574のいずれか1でコードされるタンパク質
(ii)(i)のタンパク質のアミノ酸配列において、1又は複数個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加され、かつマイコプラズマ・ニューモニエ特異的で、抗原性を有するタンパク質
A method for detecting Mycoplasma pneumoniae, wherein one or more of the following proteins (i) or (ii) are detected.
(I) The protein encoded by any one of the Mycoplasma pneumoniae genes MPN295, MPN314, MPN479, and MPN574 (ii) In the amino acid sequence of the protein of (i), one or more amino acids are deleted, substituted or added And Mycoplasma pneumoniae specific and antigenic protein
以下の(i)又は(ii)の抗体のうち、1種類又は2種類以上を用い、免疫学的手法でマイコプラズマ・ニューモニエを検出する方法。
(i)マイコプラズマ・ニューモニエ遺伝子MPN295、MPN314、MPN479、MPN574のいずれか1でコードされるタンパク質に対する抗体
(ii) マイコプラズマ・ニューモニエ遺伝子MPN295、MPN314、MPN479、MPN574のいずれか1でコードされるタンパク質のアミノ酸配列において、1又は複数個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加され、かつマイコプラズマ・ニューモニエ特異的で、抗原性を有するタンパク質に対する抗体
A method for detecting Mycoplasma pneumoniae by an immunological technique using one or more of the following antibodies (i) or (ii).
(I) Antibody against a protein encoded by any one of the Mycoplasma pneumoniae genes MPN295, MPN314, MPN479, and MPN574 (ii) Amino acids of the protein encoded by any one of the Mycoplasma pneumoniae genes MPN295, MPN314, MPN479, and MPN574 An antibody against a protein having antigenicity, wherein one or a plurality of amino acids are deleted, substituted or added in the sequence, and are mycoplasma pneumoniae-specific
免疫学的手法がEnzyme-Linked ImmunoSorbent Assay (ELISA) 又はイムノクロマトグラフィックアッセイである、請求項2のマイコプラズマ・ニューモニエの検出方法。   The method for detecting Mycoplasma pneumoniae according to claim 2, wherein the immunological technique is Enzyme-Linked ImmunoSorbent Assay (ELISA) or immunochromatographic assay. 免疫学的手法が、サンドイッチ法を利用したものである、請求項2又は3のマイコプラズマ・ニューモニエの検出方法。   The method for detecting Mycoplasma pneumoniae according to claim 2 or 3, wherein the immunological technique uses a sandwich method. 請求項1〜4のいずれか1の検出方法で、マイコプラズマ・ニューモニエを検出する、マイコプラズマ・ニューモニエ検出デバイス。 A mycoplasma pneumoniae detection device for detecting mycoplasma pneumoniae by the detection method according to claim 1. マイコプラズマ・ニューモニエ遺伝子MPN295、MPN314、MPN479、MPN574のいずれか1でコードされるタンパク質、又はマイコプラズマ・ニューモニエ遺伝子MPN295、MPN314、MPN479、MPN574のいずれか1でコードされるタンパク質のアミノ酸配列において、1又は複数個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加され、かつマイコプラズマ・ニューモニエ特異的で、抗原性を有するタンパク質、又はこれらの部分ペプチド、を抗原とするワクチン。
One or more amino acid sequences of the protein encoded by any one of the Mycoplasma pneumoniae genes MPN295, MPN314, MPN479, MPN574, or the protein encoded by any one of the Mycoplasma pneumoniae genes MPN295, MPN314, MPN479, MPN574 A vaccine in which a single amino acid is deleted, substituted or added, and is Mycoplasma pneumoniae-specific, antigenic protein, or a partial peptide thereof.
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