JP2018113907A - Culture method for animal cells - Google Patents

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晃文 松山
Akibumi Matsuyama
晃文 松山
華雪 大倉
Hanayuki Okura
華雪 大倉
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Regene Pharm Co Ltd
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Abstract

PROBLEM TO BE SOLVED: To maintain the activity of cultured animal cells over a long period and produce many substances.SOLUTION: The culture method for animal cells involves adding to a culture medium before culturing and/or during culturing one or more bases or base derivatives selected from a purine base, a purine base derivative, a pyrimidine base, and a pyrimidine base derivative.SELECTED DRAWING: None

Description

本発明は、動物細胞の培養方法、動物細胞の培養のためのシステム、および動物細胞の培養のための培地の製造方法に関する。   The present invention relates to a method for culturing animal cells, a system for culturing animal cells, and a method for producing a medium for culturing animal cells.

インターフェロン、インターロイキン、ケモカイン、エリスロポエチン、造血因子、細胞傷害因子、様々な増殖因子、および抗体などの有用物質が動物細胞を用いて製造されている。動物細胞の培養用の培地はコストが高いので、連続培養を行うと有用物質のコストも高くなってしまう。そのため、動物細胞を用いた有用物質の生産には主に回分培養が用いられている。しかし、回分培養においては、細胞の増殖に伴って培地中の栄養源が減少し、有害な代謝産物が蓄積するので、細胞を長期間安定して高密度で増殖させ、有用物質を産生させることは困難である。   Useful substances such as interferon, interleukin, chemokine, erythropoietin, hematopoietic factor, cytotoxic factor, various growth factors, and antibodies are produced using animal cells. Since the medium for culturing animal cells is expensive, the cost of useful substances increases when continuous culture is performed. Therefore, batch culture is mainly used for production of useful substances using animal cells. However, in batch culture, as the cells grow, the nutrients in the medium decrease and harmful metabolites accumulate, so that the cells can grow stably and densely for a long time to produce useful substances. It is difficult.

上記のような問題を解決するために、培地中の炭素源やアミノ酸の濃度を制御することが検討されている(特許文献1、2)。また、栄養源を培養中に補充するために流下培養も行われている(特許文献1〜3)。しかしながら、依然として、動物細胞を用いて有用物質を大量かつ安価に製造することは困難である。   In order to solve the above problems, it has been studied to control the concentration of carbon source and amino acid in the medium (Patent Documents 1 and 2). Moreover, in order to supplement a nutrient source during culture | cultivation, flow-down culture is also performed (patent documents 1-3). However, it is still difficult to produce useful substances in large quantities at low cost using animal cells.

特表2004−532642号公報JP-T-2004-532642 特開2008−43301号公報JP 2008-43301 A 国際公開WO2011/093426A1公報International publication WO2011 / 093426A1

動物細胞を長期間安定して高密度で増殖させ、有用物質を大量かつ安価に製造することが本発明の解決すべき課題であった。   It was a problem to be solved by the present invention to proliferate animal cells stably for a long period of time at a high density and to produce useful substances in large quantities at low cost.

本発明者らは、上記課題を解決するために鋭意研究を重ねた結果、プリン塩基、プリン塩基誘導体、ピリミジン塩基、およびピリミジン塩基誘導体から選択される1種またはそれ以上の塩基または塩基誘導体を培養前および/または培養中に培地に添加することにより上記課題を解決できることを見出し、本発明を完成させるに至った。   As a result of intensive studies to solve the above problems, the present inventors have cultured one or more bases or base derivatives selected from purine bases, purine base derivatives, pyrimidine bases, and pyrimidine base derivatives. It has been found that the above-mentioned problems can be solved by adding to the medium before and / or during culture, and the present invention has been completed.

すなわち、本発明は、以下のものを提供する。
(1)プリン塩基、プリン塩基誘導体、ピリミジン塩基、およびピリミジン塩基誘導体から選択される1種またはそれ以上の塩基または塩基誘導体を培養前および/または培養中に培地に添加することを特徴とする、動物細胞の培養方法。
(2)塩基または塩基誘導体がプリンヌクレオシド、プリンヌクレオシド誘導体、ヒポキサンチン、ピリミジンヌクレオシド、およびピリミジンヌクレオシド誘導体から選択される1種またはそれ以上のものである、(1)記載の方法。
(3)塩基または塩基誘導体がアデノシン、デオキシアデノシン、シチジン、デオキシシチジン、グアノシン、デオキシグアノシン、チミジン、デオキシチミジン、ウリジン、デオキシウリジン、およびヒポキサンチンから選択される1種またはそれ以上のものである、(1)記載の方法。
(4)塩基または塩基誘導体が培地中において約1mg/L〜約100mg/Lとなるように添加される、(1)〜(3)のいずれかに記載の方法。
(5)流加培養にて行われる(1)〜(4)のいずれかに記載の方法。
(6)(5)記載の方法を実施するための動物細胞培養用システムであって、プリン塩基、プリン塩基誘導体、ピリミジン塩基、およびピリミジン塩基誘導体から選択される1種またはそれ以上の塩基または塩基誘導体を含むフィード液を含む容器、培養容器、およびポンプを含むシステム。
(7)プリン塩基、プリン塩基誘導体、ピリミジン塩基、およびピリミジン塩基誘導体から選択される1種またはそれ以上の塩基または塩基誘導体を含む、動物細胞の液体培地に添加されるフィード液。
(8)プリン塩基、プリン塩基誘導体、ピリミジン塩基、およびピリミジン塩基誘導体から選択される1種またはそれ以上の塩基または塩基誘導体を添加することを特徴とする、動物細胞培養用培地の製造方法。
(9)塩基または塩基誘導体がプリンヌクレオシド、プリンヌクレオシド誘導体、ピリミジンヌクレオシド、およびピリミジンヌクレオシド誘導体から選択される1種またはそれ以上のものである、(8)記載の方法。
(10)塩基または塩基誘導体がアデノシン、デオキシアデノシン、シチジン、デオキシシチジン、グアノシン、デオキシグアノシン、チミジン、デオキシチミジン、ウリジン、デオキシウリジン、およびヒポキサンチンから選択される1種またはそれ以上のものである、(8)記載の方法。
(11)塩基または塩基誘導体を培地中において約1mg/L
〜約100mg/Lとなるように添加する、(8)〜(10)のいずれかに記載の方法。
(12)プリン塩基、プリン塩基誘導体、ピリミジン塩基、およびピリミジン塩基誘導体から選択される1種またはそれ以上の塩基または塩基誘導体を培養前および/または培養中に培地に添加して動物細胞を培養することを特徴とする、有用物質の製造方法。
That is, the present invention provides the following.
(1) One or more bases or base derivatives selected from purine bases, purine base derivatives, pyrimidine bases, and pyrimidine base derivatives are added to the medium before and / or during the culture, Animal cell culture method.
(2) The method according to (1), wherein the base or base derivative is one or more selected from purine nucleosides, purine nucleoside derivatives, hypoxanthine, pyrimidine nucleosides, and pyrimidine nucleoside derivatives.
(3) the base or base derivative is one or more selected from adenosine, deoxyadenosine, cytidine, deoxycytidine, guanosine, deoxyguanosine, thymidine, deoxythymidine, uridine, deoxyuridine, and hypoxanthine; (1) The method as described.
(4) The method according to any one of (1) to (3), wherein the base or the base derivative is added so as to be about 1 mg / L to about 100 mg / L in the medium.
(5) The method according to any one of (1) to (4), which is performed by fed-batch culture.
(6) An animal cell culture system for carrying out the method according to (5), wherein one or more bases or bases selected from purine bases, purine base derivatives, pyrimidine bases, and pyrimidine base derivatives A system comprising a vessel containing a feed solution containing a derivative, a culture vessel, and a pump.
(7) A feed solution added to a liquid medium of animal cells containing one or more bases or base derivatives selected from purine bases, purine base derivatives, pyrimidine bases, and pyrimidine base derivatives.
(8) A method for producing an animal cell culture medium, comprising adding one or more bases or base derivatives selected from purine bases, purine base derivatives, pyrimidine bases, and pyrimidine base derivatives.
(9) The method according to (8), wherein the base or base derivative is one or more selected from purine nucleosides, purine nucleoside derivatives, pyrimidine nucleosides, and pyrimidine nucleoside derivatives.
(10) The base or base derivative is one or more selected from adenosine, deoxyadenosine, cytidine, deoxycytidine, guanosine, deoxyguanosine, thymidine, deoxythymidine, uridine, deoxyuridine, and hypoxanthine. (8) The method described.
(11) About 1 mg / L of base or base derivative in the medium
The method according to any one of (8) to (10), which is added so as to be about 100 mg / L.
(12) Animal cells are cultured by adding one or more bases or base derivatives selected from purine bases, purine base derivatives, pyrimidine bases, and pyrimidine base derivatives to the medium before and / or during the culture. A method for producing a useful substance.

本発明によれば、動物細胞を長期間安定して高密度で増殖させ、有用物質を大量かつ安価に製造することができる。したがって、インターフェロン、インターロイキン、ケモカイン、エリスロポエチン、造血因子、増殖因子、ホルモン、および抗体などの有用物質を大量かつ安価に製造することができる。   According to the present invention, animal cells can be stably grown at a high density for a long period of time, and useful substances can be produced in large quantities at low cost. Therefore, useful substances such as interferon, interleukin, chemokine, erythropoietin, hematopoietic factor, growth factor, hormone, and antibody can be produced in large quantities and at low cost.

図1は、培地中のヌクレオシド、アミノ酸、有機酸および糖の濃度の経時変化を示すグラフである。各図の右の番号3−8はウイルスクリアランスしていないウシ胎児血清5%を含む培地で培養、9−14はγ線にてウイルスクリアランスしたウシ胎児血清5%を含む培地で培養、15−20はγ線にてウイルスクリアランスしたウシ胎児血清15%を含む培地で培養、21−26は電子線にてウイルスクリアランスしたウシ胎児血清5%を含む培地で培養、27−32は電子線にてウイルスクリアランスしたウシ胎児血清15%を含む培地で培養したことを示す。各図の横軸は培養日数、縦軸は相対量である。FIG. 1 is a graph showing changes over time in the concentrations of nucleosides, amino acids, organic acids and sugars in a medium. Numbers 3-8 on the right of each figure are cultured in a medium containing 5% fetal bovine serum not virus-cleared, 9-14 are cultured in a medium containing 5% fetal bovine serum cleared by γ-rays, 15- 20 is cultured in a medium containing 15% fetal bovine serum that has been virus-cleared by gamma rays, 21-26 is cultured in a medium that contains 5% fetal bovine serum that has been virus-cleared by electron beams, and 27-32 is an electron beam. It shows that it culture | cultivated in the culture medium containing the fetal calf serum 15% which carried out virus clearance. In each figure, the horizontal axis represents the number of culture days, and the vertical axis represents the relative amount.

本発明は、1の態様において、プリン塩基、プリン塩基誘導体、ピリミジン塩基、およびピリミジン塩基誘導体から選択される1種またはそれ以上の塩基または塩基誘導体を培養前および/または培養中に培地に添加することを特徴とする、動物細胞の培養方法を提供する。動物細胞の培養時に炭素源やアミノ酸類を培地に補充することは従来から行われているが、本発明者らは、プリン塩基、プリン塩基誘導体、ピリミジン塩基、および/またはピリミジン塩基誘導体を培地に補充することにより、動物細胞を長期にわたり活性化させ、増殖させることが可能であることを初めて見出した。   In one aspect, the present invention adds one or more bases or base derivatives selected from purine bases, purine base derivatives, pyrimidine bases, and pyrimidine base derivatives to a medium before and / or during culture. A method for culturing animal cells is provided. Although it has been conventionally performed to supplement a medium with a carbon source or amino acids during culture of animal cells, the present inventors have added purine base, purine base derivative, pyrimidine base, and / or pyrimidine base derivative to the medium. It has been found for the first time that animal cells can be activated and proliferated for a long time by supplementation.

本発明においてあらゆる動物細胞を培養することができる。好ましい動物細胞としてはヒト、サル、イヌ、ネコ、ウマ、ウシ、ウサギ、モルモット、ラット、マウス、ハムスターなどの哺乳動物に由来する細胞が挙げられるが、これらに限定されない。より好ましい動物細胞としてはヒト由来の細胞が挙げられる。昆虫細胞も動物細胞に包含される。有用物質の生産によく用いられる動物細胞の例としてはCHO、COS、CV−1、Sp20、NS0、Veroなどが挙げられるが、これらに限定されない。動物細胞は野生型であってもよく、遺伝子操作、変異操作あるいは細胞融合がなされたものであってもよい。動物細胞は、例えば所望のポリペプチドをコードする遺伝子を導入されたヒト細胞や、所望のモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマであってもよい。細胞は初代細胞であってもよく、継代細胞であってもよい。さらに本発明においてiPS細胞、ES細胞などの幹細胞、ADPMC(脂肪組織由来多系統前駆細胞)などの前駆細胞を培養してもよい。   Any animal cell can be cultured in the present invention. Preferred animal cells include, but are not limited to, cells derived from mammals such as humans, monkeys, dogs, cats, horses, cows, rabbits, guinea pigs, rats, mice, hamsters and the like. More preferred animal cells include human-derived cells. Insect cells are also encompassed by animal cells. Examples of animal cells often used for production of useful substances include, but are not limited to, CHO, COS, CV-1, Sp20, NS0, Vero and the like. Animal cells may be wild-type or genetically engineered, mutated or cell-fused. The animal cell may be, for example, a human cell into which a gene encoding a desired polypeptide has been introduced, or a hybridoma that produces a desired monoclonal antibody. The cell may be a primary cell or a passage cell. Furthermore, in the present invention, stem cells such as iPS cells and ES cells, and progenitor cells such as ADPMC (adipose tissue-derived multilineage progenitor cells) may be cultured.

本発明において、あらゆるプリン塩基またはプリン塩基誘導体を用いることができる。塩基は核酸を構成する物質であり、プリン塩基、ピリミジン塩基などが包含される。プリン塩基は、プリン骨格を有する塩基性物質であり、核酸の構成要素である。プリン塩基の例としてはプリン、アデニン、グアニン、ヒポキサンチン、キサンチン、テオブロミン、カフェイン、尿酸、イソグアニンなどが挙げられるが、これらに限定されない。本明細書において、誘導体は、元の化合物に官能基を導入、酸化、還元、原子置換などを行って得られる化合物であって、元の化合物の基本的な構造や性質を維持しているものをいう。プリン塩基誘導体の例としてはプリンヌクレオシド、プリンヌクレオチド、およびそれらの誘導体などが挙げられるが、これらに限定されない。本発明において好ましいプリン塩基またはプリン塩基誘導体の例としてはプリンヌクレオシド、プリンヌクレオシド誘導体、ヒポキサンチンなどが挙げられるが、これらに限定されない。本発明において好ましいプリンヌクレオシドまたはプリンヌクレオシド誘導体の例としてはアデノシン、デオキシアデノシン、グアノシン、デオキシグアノシン、およびそれらの誘導体などが挙げられるが、これらに限定されない。   Any purine base or purine base derivative can be used in the present invention. A base is a substance constituting a nucleic acid, and includes purine bases, pyrimidine bases, and the like. Purine base is a basic substance having a purine skeleton and is a constituent element of nucleic acid. Examples of purine bases include, but are not limited to, purine, adenine, guanine, hypoxanthine, xanthine, theobromine, caffeine, uric acid, isoguanine and the like. In this specification, a derivative is a compound obtained by introducing a functional group into an original compound, oxidation, reduction, atom substitution, etc., and maintaining the basic structure and properties of the original compound. Say. Examples of purine base derivatives include, but are not limited to, purine nucleosides, purine nucleotides, and derivatives thereof. Examples of preferred purine bases or purine base derivatives in the present invention include, but are not limited to, purine nucleosides, purine nucleoside derivatives, hypoxanthine and the like. Examples of preferred purine nucleosides or purine nucleoside derivatives in the present invention include, but are not limited to, adenosine, deoxyadenosine, guanosine, deoxyguanosine, and derivatives thereof.

本発明において、あらゆるピリミジン塩基またはピリミジン塩基誘導体を用いることができる。ピリミジン塩基は、ピリミジン骨格を有する塩基性物質であり、核酸の構成要素である。ピリミジン塩基の例としてはチミン、シトシン、ウラシル、5−メチイルシトシン、5−(ヒドロキシメチル)シトシンなどが挙げられるが、これらに限定されない。ピリミジン塩基誘導体の例としてはピリミジンヌクレオシド、ピリミジンヌクレオチド、およびそれらの誘導体などが挙げられるが、これらに限定されない。本発明において好ましいピリミジン塩基またはピリミジン塩基誘導体の例としてはピリミジンヌクレオシド、ピリミジンヌクレオシド誘導体などが挙げられるが、これらに限定されない。本発明において好ましいピリミジンヌクレオシドまたはピリミジンヌクレオシド誘導体の例としてはシチジン、デオキシシチジン、チミジン、デオキシチミジン、ウリジン、デオキシウリジン、およびそれらの誘導体などが挙げられるが、これらに限定されない。   Any pyrimidine base or pyrimidine base derivative can be used in the present invention. A pyrimidine base is a basic substance having a pyrimidine skeleton and is a constituent element of a nucleic acid. Examples of pyrimidine bases include, but are not limited to, thymine, cytosine, uracil, 5-methyylcytosine, 5- (hydroxymethyl) cytosine and the like. Examples of pyrimidine base derivatives include, but are not limited to, pyrimidine nucleosides, pyrimidine nucleotides, and derivatives thereof. Examples of preferred pyrimidine bases or pyrimidine base derivatives in the present invention include, but are not limited to, pyrimidine nucleosides and pyrimidine nucleoside derivatives. Examples of preferred pyrimidine nucleosides or pyrimidine nucleoside derivatives in the present invention include, but are not limited to, cytidine, deoxycytidine, thymidine, deoxythymidine, uridine, deoxyuridine, and derivatives thereof.

本発明において、プリン塩基、プリン塩基誘導体、ピリミジン塩基、ピリミジン塩基誘導体から選択される1種またはそれ以上の塩基または塩基誘導体を、動物細胞の培養前および/または培養中に培地に添加する。上記物質を添加することにより、動物細胞を長期間安定して高密度で増殖させ、有用物質を大量かつ安価に製造することができる。したがって、インターフェロン、インターロイキン、ケモカイン、エリスロポエチン、造血因子、増殖因子、ホルモン、および抗体などの有用物質を大量かつ安価に製造することができる。上記物質以外にも細胞の増殖や活性を向上させる物質、例えばグルコースなどの炭素源やアミノ酸類などの窒素源、ビタミン類、微量金属類などを培地に添加してもよい。   In the present invention, one or more bases or base derivatives selected from purine bases, purine base derivatives, pyrimidine bases, and pyrimidine base derivatives are added to the medium before and / or during the cultivation of animal cells. By adding the above substances, animal cells can be stably grown at a high density for a long period of time, and useful substances can be produced in large quantities and at low cost. Therefore, useful substances such as interferon, interleukin, chemokine, erythropoietin, hematopoietic factor, growth factor, hormone, and antibody can be produced in large quantities and at low cost. In addition to the above substances, substances that improve cell growth and activity, for example, carbon sources such as glucose, nitrogen sources such as amino acids, vitamins, and trace metals may be added to the medium.

塩基または塩基誘導体を動物細胞の培養前に培地に添加してもよく、培養途中で培地に添加してもよい。また、塩基または塩基誘導体を動物細胞の培養前および培養途中で培地に添加してもよい。添加の回数は1回であってもよく、複数回であってもよい。塩基または塩基誘導体の添加形態は、固体のままであってもよく、溶液にしてから添加してもよい。好ましくは、塩基または塩基誘導体を濃厚溶液として培地に添加する。これらの物質の添加量、添加回数、添加期間は、培地中のこれらの物質の濃度、細胞量、細胞の生存率、目的物質の産生量などを適時あるいは連続的にモニターし、これらのデータを考慮して決定することができる。   The base or base derivative may be added to the medium before culturing animal cells, or may be added to the medium during the culture. Further, a base or a base derivative may be added to the medium before and during the cultivation of animal cells. The number of times of addition may be one time or a plurality of times. The base or base derivative may be added in the form of a solid, or may be added after making a solution. Preferably, the base or base derivative is added to the medium as a concentrated solution. The amount of these substances added, the number of additions, and the duration of addition are monitored in a timely or continuous manner, such as the concentration of these substances in the medium, the amount of cells, the viability of the cells, and the amount of the target substance produced. It can be determined in consideration.

塩基または塩基誘導体の添加量は、動物細胞の増殖促進、活性増強、あるいは目的物質の収量増加が見られるように決定する。かかる添加量は、当業者が予備試験を行う等により容易に決定することができる。塩基または塩基誘導体の添加量は細胞の種類、培地の種類、その他の培養条件などにもよるが、例えば、培地中の濃度が約1000mg/Lを下回らないようにしてもよく、例えば約0.1mg/l〜約1000mg/Lであってもよく、好ましくは約1mg/L〜約100mg/Lであってもよく、例えば、約2mg/L〜約50mg/L、約5mg/L〜約20mg/Lなどであってもよい。本明細書において、塩基または塩基誘導体の培地中の濃度は、添加する各塩基または各塩基誘導体の濃度である。   The amount of the base or base derivative added is determined so that the growth of animal cells, the enhancement of activity, or the increase in the yield of the target substance can be observed. Such an addition amount can be easily determined by a person skilled in the art by conducting a preliminary test. The amount of the base or base derivative added depends on the type of cell, the type of medium, other culture conditions, and the like. For example, the concentration in the medium may not be less than about 1000 mg / L. 1 mg / l to about 1000 mg / L, preferably about 1 mg / L to about 100 mg / L, such as about 2 mg / L to about 50 mg / L, about 5 mg / L to about 20 mg / L may be used. In this specification, the concentration of the base or base derivative in the medium is the concentration of each base or each base derivative to be added.

本発明に用いられる培地は動物細胞培養用であればいずれの培地であってもよい。動物細胞培養用培地の例としてはD−MEM、E−MEM、G−MEM、MEMα、RPMI−1640、Ham’s F−12、IMEM、Leibovitz’s L−15培地、およびこれらの培地の改変培地、ならびにこれらの培地の混合培地などが挙げられるが、これらの培地に限定されない。当業者は、使用する細胞、所望の有用物質などに応じて適宜培地を選択し使用することができる。また培養温度、pH、培養時間、培地中の各成分の濃度、撹拌条件などの培養条件についても当業者が容易に定めうる。培養中に培地交換を行ってもよく、行わなくてもよい。   The medium used in the present invention may be any medium as long as it is for animal cell culture. Examples of animal cell culture media include D-MEM, E-MEM, G-MEM, MEMα, RPMI-1640, Ham's F-12, IMEM, Leibovitz's L-15 media, and modifications of these media Examples thereof include, but are not limited to, a medium and a mixed medium of these mediums. Those skilled in the art can appropriately select and use a medium according to the cells to be used, desired useful substances, and the like. Those skilled in the art can also easily determine the culture conditions such as culture temperature, pH, culture time, concentration of each component in the medium, and stirring conditions. The medium may or may not be changed during the culture.

培養容器についても特に限定はなく、所望の有用物質の量、有用物質の種類、細胞の種類などの因子に合わせて適宜選択することができる。様々な種類およびサイズの培養容器が知られており、ディッシュ、プレート、チューブ、フラスコ、ボトル、タンク、バッグなどが例示されるが、これらに限定されない。   The culture vessel is not particularly limited, and can be appropriately selected according to factors such as a desired amount of useful substance, useful substance type, cell type and the like. Various types and sizes of culture vessels are known, including but not limited to dishes, plates, tubes, flasks, bottles, tanks, bags, and the like.

本発明の動物細胞の培養方法を流下培養にて実施してもよい。流下培養は当業者によく知られた液体培養方法であり、培養中に特定の基質を培養容器に供給するが、培地(細胞および培地を含む)を抜き取らない培養方法である。本発明においては、動物細胞を液体培養する際に、上で説明した塩基または塩基誘導体を培養容器に供給する。好ましくは、塩基または塩基誘導体を含むフィード液を培地に供給する。通常は、フィード液は高濃度の塩基または塩基誘導体を含み、添加時に培地体積の変化を抑制することが好ましい。本発明の流下培養において、培地中の塩基または塩基誘導体の濃度が、約1000mg/Lを下回らないように維持してもよく、例えば約0.1mg/l〜約1000mg/Lに維持してもよく、好ましくは約1mg/L〜約100mg/Lに維持してもよく、例えば、約2mg/L〜約50mg/L、約5mg/L〜約20mg/Lなどに維持してもよい。   You may implement the culture | cultivation method of the animal cell of this invention by falling-down culture. Flow culture is a liquid culture method well known to those skilled in the art, and is a culture method in which a specific substrate is supplied to a culture container during culture, but the medium (including cells and medium) is not drawn. In the present invention, when animal cells are subjected to liquid culture, the base or base derivative described above is supplied to the culture vessel. Preferably, a feed solution containing a base or a base derivative is supplied to the medium. Usually, the feed liquid contains a high concentration of base or base derivative, and it is preferable to suppress changes in the medium volume when added. In the flow-down culture of the present invention, the concentration of the base or base derivative in the medium may be maintained so as not to fall below about 1000 mg / L, for example, from about 0.1 mg / l to about 1000 mg / L. Well, preferably it may be maintained at about 1 mg / L to about 100 mg / L, such as about 2 mg / L to about 50 mg / L, about 5 mg / L to about 20 mg / L, etc.

本発明の流下培養の具体例において、フィード液はポンプを介して培養容器に接続される。培地中の塩基または塩基誘導体の濃度、および/または細胞数、所望有用物質濃度などを適時測定し、必要に応じてポンプを作動させて塩基または塩基誘導体を培地に供給してもよい。また、1個または複数個のセンサー(検出器および/またはコンピューターに接続されている)を培養容器に設けて培地中の塩基または塩基誘導体の濃度、および/または細胞数、所望有用物質濃度などを測定し、センサーおよび/またはコンピューターを介してポンプを作動させて塩基または塩基誘導体を培地に供給してもよい。従って、本発明は、さらなる態様において、プリン塩基、プリン塩基誘導体、ピリミジン塩基、およびピリミジン塩基誘導体から選択される1種またはそれ以上の塩基または塩基誘導体を含むフィード液を含む容器、培養容器、およびポンプを含む、動物細胞培養用システムを提供する。   In the flow-down culture embodiment of the present invention, the feed solution is connected to the culture vessel via a pump. The concentration of the base or base derivative in the medium and / or the number of cells, the desired useful substance concentration, etc. may be measured at appropriate times, and the pump may be operated as necessary to supply the base or base derivative to the medium. In addition, one or more sensors (connected to a detector and / or a computer) are provided in the culture vessel to determine the concentration of the base or base derivative in the culture medium and / or the number of cells, the concentration of desired useful substances, etc. The base or base derivative may be supplied to the medium by measuring and operating the pump via a sensor and / or computer. Accordingly, the present invention, in a further aspect, comprises a container comprising a feed liquid comprising one or more bases or base derivatives selected from purine bases, purine base derivatives, pyrimidine bases, and pyrimidine base derivatives, culture vessels, and An animal cell culture system including a pump is provided.

本発明はさらなる態様において、プリン塩基、プリン塩基誘導体、ピリミジン塩基、およびピリミジン塩基誘導体から選択される1種またはそれ以上の塩基または塩基誘導体を含む、動物細胞の液体培地に添加されるフィード液を提供する。   In a further aspect, the present invention provides, in a further aspect, a feed solution added to a liquid medium of animal cells, comprising one or more bases or base derivatives selected from purine bases, purine base derivatives, pyrimidine bases, and pyrimidine base derivatives. provide.

本発明は、さらにもう1つの態様において、プリン塩基、プリン塩基誘導体、ピリミジン塩基、およびピリミジン塩基誘導体から選択される1種またはそれ以上の塩基または塩基誘導体を添加することを特徴とする、動物細胞培養用培地の製造方法を提供する。通常は、塩基または塩基誘導体と培地成分とを公知の手段/方法にて混合することにより培地を製造する。塩基または塩基誘導体については上で説明したとおりである。本発明の方法により得られる培地は粉末であってもよく、液体であってもよい。培地が粉末の場合は、これを水などの媒体で希釈して使用する。培地製造時の塩基または塩基誘導体の添加量は、調製した液体培地中において動物細胞の増殖促進、活性増強、あるいは目的物質の収量増加が見られる程度とする。かかる添加量は、当業者が予備試験を行う等により容易に決定することができる。塩基または塩基誘導体の添加量は細胞の種類、培地の種類、その他の培養条件などにもよるが、例えば、培地中の濃度が約1000mg/Lを下回らないようにしてもよく、例えば約0.1mg/l〜約1000mg/Lであってもよく、好ましくは約1mg/L〜約100mg/Lであってもよく、例えば、約2mg/L〜約50mg/L、約5mg/L〜約20mg/Lなどであってもよい。本明細書において、塩基または塩基誘導体の培地中の濃度は、添加する塩基または塩基誘導体のそれぞれの濃度の合計である。   In yet another aspect, the present invention provides an animal cell characterized in that one or more bases or base derivatives selected from purine bases, purine base derivatives, pyrimidine bases, and pyrimidine base derivatives are added. A method for producing a culture medium is provided. Usually, a medium is produced by mixing a base or a base derivative and a medium component by a known means / method. The base or base derivative is as described above. The medium obtained by the method of the present invention may be a powder or a liquid. When the medium is a powder, it is diluted with a medium such as water. The amount of the base or base derivative added during the production of the medium is such that the growth of animal cells, enhanced activity, or increased yield of the target substance can be observed in the prepared liquid medium. Such an addition amount can be easily determined by a person skilled in the art by conducting a preliminary test. The amount of the base or base derivative added depends on the type of cell, the type of medium, other culture conditions, and the like. For example, the concentration in the medium may not be less than about 1000 mg / L. 1 mg / l to about 1000 mg / L, preferably about 1 mg / L to about 100 mg / L, such as about 2 mg / L to about 50 mg / L, about 5 mg / L to about 20 mg / L may be used. In the present specification, the concentration of the base or base derivative in the medium is the sum of the concentrations of the base or base derivative to be added.

本発明は、さらにもう1つの態様において、プリン塩基、プリン塩基誘導体、ピリミジン塩基、およびピリミジン塩基誘導体から選択される1種またはそれ以上の塩基または塩基誘導体を培養前および/または培養中に培地に添加して動物細胞を培養することを特徴とする、有用物質の製造方法を提供する。有用物質は、ヒトにとって役に立つ物質をいい、ポリペプチドなどの高分子化合物であってもよく、中〜低分子化合物であってもよい。有用物質の例として、例えばバイオ医薬品の成分などが挙げられるが、これに限定されない。有用物質の具体例としてインターフェロン、インターロイキン、ケモカイン、エリスロポエチン、造血因子、増殖因子、ホルモン、および抗体などが挙げられるが、これらに限定されない。   In yet another aspect, the present invention provides, in another embodiment, one or more bases or base derivatives selected from purine bases, purine base derivatives, pyrimidine bases, and pyrimidine base derivatives in a medium before and / or during culture. A method for producing a useful substance is provided, which comprises culturing animal cells by addition. The useful substance refers to a substance useful for humans, and may be a high molecular compound such as a polypeptide or a medium to low molecular compound. Examples of useful substances include, but are not limited to, biopharmaceutical components. Specific examples of useful substances include, but are not limited to, interferon, interleukin, chemokine, erythropoietin, hematopoietic factor, growth factor, hormone, and antibody.

以上、本発明について説明したが、以下に実施例を示して本発明をより詳細かつ具体的に説明するが、実施例は本発明を限定するものではない。なお、本明細書中の用語は、特に説明しないかぎり、細胞培養や医薬品の分野で通常理解されている意味に解される。   As mentioned above, although this invention was demonstrated, an Example is shown below and this invention is demonstrated in more detail and concretely, An Example does not limit this invention. The terms in the present specification are understood to have the meanings usually understood in the field of cell culture and pharmaceuticals unless otherwise specified.

表1に示す組成の培地(ITSの組成を表2に示す)にウシ胎児血清を添加して調製した培地にて
ヒト脂肪組織由来多系統前駆細胞を5日間培養し、培地中のヌクレオシド、アミノ酸、有機酸および糖の濃度の経時変化を調べた。結果を図1に示す。調べた物質はいずれも培養時間とともに減少したが、ウリジン、シチジン、デオキシシチジン、ヒポキサンチンは培養3〜5日目でほとんど消失あるいは完全に消失したことがわかった。

Human adipose tissue-derived multilineage progenitor cells are cultured for 5 days in a medium prepared by adding fetal calf serum to a medium having the composition shown in Table 1 (ITS composition is shown in Table 2), and the nucleosides and amino acids in the medium are cultured. The time course of the concentration of organic acids and sugars was examined. The results are shown in FIG. Although all the substances examined decreased with the culture time, it was found that uridine, cytidine, deoxycytidine, and hypoxanthine almost disappeared or disappeared completely on the 3rd to 5th day of culture.

上の試験にてほとんど消失あるいは完全に消失した物質はヌクレオシド類であったので、表3に示すヌクレオシド類を含む溶液(溶液A)(1000倍濃度)を調製し、培地に添加して表3に示す最終濃度として培養を行い、培地中の細胞の生存率および細胞数を調べた。
Since the substances almost disappeared or completely disappeared in the above test were nucleosides, a solution (solution A) (1000-fold concentration) containing the nucleosides shown in Table 3 was prepared and added to the medium. Culturing was performed at the final concentration shown in Fig. 1, and the viability and the number of cells in the medium were examined.

第5継代のヒト脂肪組織由来多系統前駆細胞(ADMPC)をフィブロネクチンコート10cm培養ディッシュに2x10個/ディッシュで播種し、播種3日目、5日目に培地交換を行い、7日目に細胞を回収し細胞数をカウントした。溶液A添加系と無添加系の2サンプルで試験した。基礎培地は15%FBS、ITS含有SteMediaであった。結果を表4に示す。溶液A添加系(試料2)では、溶液A無添加系(試料1)に比べて細胞増殖率・速度が高く、培地に溶液Aを添加してから培養に供することで、効率よい細胞の増殖が得られることがわかった。
The 5th passage human adipose tissue-derived multilineage progenitor cells (ADMPC) were seeded in a fibronectin-coated 10 cm culture dish at 2 × 10 5 cells / dish, the medium was changed on the 3rd and 5th days of seeding, and on the 7th day. Cells were collected and counted. The test was conducted with two samples of the solution A added system and the non-added system. The basal medium was SteMedia containing 15% FBS and ITS. The results are shown in Table 4. The solution A addition system (sample 2) has a higher cell growth rate and speed than the solution A non-addition system (sample 1). By adding the solution A to the medium and using it for culture, efficient cell growth Was found to be obtained.

第5継代のADMPCをフィブロネクチンコート10cm培養ディッシュに2x10個/ディッシュで播種した。播種後3日目、5日目に培地交換を行い、7日目に細胞を回収し細胞数をカウントした。基礎培地は、15%FBS、ITS含有SteMediaであった。結果を表5に示す。溶液A無添加の培地(試料1および2)で培養した場合において、7日間培地交換していない場合(試料2)は、3日目および5日目に培地交換した場合(試料1)と比較して細胞増殖率・速度は低下していた。このように、培地交換を行わないと細胞増殖が悪くなる。溶液Aをあらかじめ基礎培地に添加した培地を用い、培地交換を行った場合には(試料3)、溶液A無添加培地(試料2)に比べて遜色のない細胞増殖・速度の向上を示していた。あらかじめ基礎培地に溶液Aを添加した培地を用いることで、培地交換の間隔を延長し、培地交換回数を低減させることが可能であることがわかった。
The 5th passage of ADMPC was seeded in a fibronectin-coated 10 cm culture dish at 2 × 10 5 cells / dish. The medium was changed on the third and fifth days after seeding, and the cells were collected and counted on the seventh day. The basal medium was SteMedia containing 15% FBS and ITS. The results are shown in Table 5. In the case where the medium was not added for Solution A (Samples 1 and 2), when the medium was not changed for 7 days (Sample 2), compared with the case where the medium was changed on Days 3 and 5 (Sample 1) As a result, the cell growth rate and speed were decreased. As described above, cell growth is deteriorated unless the medium is exchanged. When the medium was exchanged using the medium in which the solution A was added to the basal medium in advance (Sample 3), the cell growth / speed improvement comparable to the medium without the Solution A (Sample 2) was shown. It was. It was found that by using a medium in which the solution A was added to the basal medium in advance, it was possible to extend the interval between medium exchanges and reduce the number of medium exchanges.

第5継代のADMPCをフィブロネクチンコート10cm培養ディッシュ2x10個/ディッシュで播種した。播種後3日目、5日目に培地交換を行い、7日目に細胞を回収し細胞数をカウントした。基礎培地は、15%FBS、ITS含有SteMediaであった。結果を表6に示す。溶液A無添加の培地で培養し、かつ3日以内(培養3日目および5日目)に培地交換を行った場合(試料1)と比較して、培養3日目および5日目に溶液Aを追加添加した場合(試料2)でも、細胞増殖率・速度は向上していた。溶液Aを培養途中に追加添加することで、培地交換の間隔を延長し、培地交換回数を低減させることが可能であることがわかった。
The fifth passage of ADMPC was seeded at 2 × 10 5 fibronectin-coated 10 cm culture dishes / dish. The medium was changed on the third and fifth days after seeding, and the cells were collected and counted on the seventh day. The basal medium was SteMedia containing 15% FBS and ITS. The results are shown in Table 6. Compared to the case of culturing in the medium without addition of Solution A and changing the medium within 3 days (3rd day and 5th day of culture) (Sample 1), the solution was found on the 3rd and 5th day of culture. Even when A was additionally added (sample 2), the cell growth rate and speed were improved. It was found that the addition of solution A during the culture can extend the interval between medium exchanges and reduce the number of medium exchanges.

本発明は、動物細胞からの有用物質生産において利用可能である。本発明は、バイオ医薬品の分野などにおいて利用可能である。   The present invention can be used in the production of useful substances from animal cells. The present invention can be used in the field of biopharmaceuticals.

Claims (12)

プリン塩基、プリン塩基誘導体、ピリミジン塩基、およびピリミジン塩基誘導体から選択される1種またはそれ以上の塩基または塩基誘導体を培養前および/または培養中に培地に添加することを特徴とする、動物細胞の培養方法。   An animal cell characterized in that one or more bases or base derivatives selected from purine bases, purine base derivatives, pyrimidine bases, and pyrimidine base derivatives are added to a medium before and / or during culture. Culture method. 塩基または塩基誘導体がプリンヌクレオシド、プリンヌクレオシド誘導体、ピリミジンヌクレオシド、およびピリミジンヌクレオシド誘導体から選択される1種またはそれ以上のものである、請求項1記載の方法。   The method of claim 1, wherein the base or base derivative is one or more selected from purine nucleosides, purine nucleoside derivatives, pyrimidine nucleosides, and pyrimidine nucleoside derivatives. 塩基または塩基誘導体がアデノシン、デオキシアデノシン、シチジン、デオキシシチジン、グアノシン、デオキシグアノシン、チミジン、デオキシチミジン、ウリジン、デオキシウリジン、およびヒポキサンチンから選択される1種またはそれ以上のものである、請求項1記載の方法。   2. The base or base derivative is one or more selected from adenosine, deoxyadenosine, cytidine, deoxycytidine, guanosine, deoxyguanosine, thymidine, deoxythymidine, uridine, deoxyuridine, and hypoxanthine. The method described. 塩基または塩基誘導体が培地中において1mg/L〜100mg/Lとなるように添加される、請求項1〜3のいずれか1項記載の方法。   The method according to any one of claims 1 to 3, wherein the base or the base derivative is added so as to be 1 mg / L to 100 mg / L in the medium. 流加培養にて行われる請求項1〜4のいずれか1項記載の方法。   The method according to any one of claims 1 to 4, which is performed by fed-batch culture. 請求項5記載の方法を実施するための動物細胞培養用システムであって、プリン塩基、プリン塩基誘導体、ピリミジン塩基、およびピリミジン塩基誘導体から選択される1種またはそれ以上の塩基または塩基誘導体を含むフィード液を含む容器、培養容器、およびポンプを含むシステム。   6. A system for animal cell culture for performing the method of claim 5, comprising one or more bases or base derivatives selected from purine bases, purine base derivatives, pyrimidine bases, and pyrimidine base derivatives. A system comprising a container containing a feed solution, a culture container, and a pump. プリン塩基、プリン塩基誘導体、ピリミジン塩基、およびピリミジン塩基誘導体から選択される1種またはそれ以上の塩基または塩基誘導体を含む、動物細胞の液体培地に添加されるフィード液。   A feed solution added to a liquid medium of animal cells containing one or more bases or base derivatives selected from purine bases, purine base derivatives, pyrimidine bases, and pyrimidine base derivatives. プリン塩基、プリン塩基誘導体、ピリミジン塩基、およびピリミジン塩基誘導体から選択される1種またはそれ以上の塩基または塩基誘導体を添加することを特徴とする、動物細胞培養用培地の製造方法。   A method for producing an animal cell culture medium, comprising adding one or more bases or base derivatives selected from purine bases, purine base derivatives, pyrimidine bases, and pyrimidine base derivatives. 塩基または塩基誘導体がプリンヌクレオシド、プリンヌクレオシド誘導体、ピリミジンヌクレオシド、およびピリミジンヌクレオシド誘導体から選択される1種またはそれ以上のものである、請求項8記載の方法。   9. The method of claim 8, wherein the base or base derivative is one or more selected from purine nucleosides, purine nucleoside derivatives, pyrimidine nucleosides, and pyrimidine nucleoside derivatives. 塩基または塩基誘導体がアデノシン、デオキシアデノシン、シチジン、デオキシシチジン、グアノシン、デオキシグアノシン、チミジン、デオキシチミジン、ウリジン、デオキシウリジン、およびヒポキサンチンから選択される1種またはそれ以上のものである、請求項8記載の方法。   9. The base or base derivative is one or more selected from adenosine, deoxyadenosine, cytidine, deoxycytidine, guanosine, deoxyguanosine, thymidine, deoxythymidine, uridine, deoxyuridine, and hypoxanthine. The method described. 塩基または塩基誘導体を培地中において1mg/L〜100mg/Lとなるように添加する、請求項8〜10のいずれか1項記載の方法。   The method of any one of Claims 8-10 which adds a base or a base derivative so that it may become 1 mg / L-100 mg / L in a culture medium. プリン塩基、プリン塩基誘導体、ピリミジン塩基、およびピリミジン塩基誘導体から選択される1種またはそれ以上の塩基または塩基誘導体を培養前および/または培養中に培地に添加して動物細胞を培養することを特徴とする、有用物質の製造方法。   Animal cells are cultured by adding one or more bases or base derivatives selected from purine bases, purine base derivatives, pyrimidine bases, and pyrimidine base derivatives to a medium before and / or during culture. And a method for producing a useful substance.
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Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS5863385A (en) * 1981-10-02 1983-04-15 ハナ・バイオロジツクス・インコ−ポレ−テツド Culture medium for cell derived from immune system
JPH05502379A (en) * 1990-01-22 1993-04-28 アメリカ合衆国 Carbon dioxide-independent growth media for cell preservation and growth
WO2011093426A1 (en) * 2010-01-29 2011-08-04 中外製薬株式会社 Novel fed-batch culture method
JP2012503487A (en) * 2008-09-26 2012-02-09 シェーリング コーポレイション High titer antibody production
JP2016028596A (en) * 2010-12-07 2016-03-03 エフ.ホフマン−ラ ロシュ アーゲーF. Hoffmann−La Roche Aktiengesellschaft Feed mixing device and its use

Patent Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS5863385A (en) * 1981-10-02 1983-04-15 ハナ・バイオロジツクス・インコ−ポレ−テツド Culture medium for cell derived from immune system
JPH05502379A (en) * 1990-01-22 1993-04-28 アメリカ合衆国 Carbon dioxide-independent growth media for cell preservation and growth
JP2012503487A (en) * 2008-09-26 2012-02-09 シェーリング コーポレイション High titer antibody production
WO2011093426A1 (en) * 2010-01-29 2011-08-04 中外製薬株式会社 Novel fed-batch culture method
JP2016028596A (en) * 2010-12-07 2016-03-03 エフ.ホフマン−ラ ロシュ アーゲーF. Hoffmann−La Roche Aktiengesellschaft Feed mixing device and its use

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