JP2016202063A - Screening method of molecular targeted drug for treating neuroblastoma, and kit for screening molecular targeted drug for treating neuroblastoma - Google Patents

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健治 門松
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Abstract

PROBLEM TO BE SOLVED: To provide a screening method and a screening kit of a molecular targeted drug for treating neuroblastoma.SOLUTION: There are provided a screening method of a molecular targeted drug for treating neuroblastoma includes a process of selecting a candidate substance by using suppression of VRK1 function as an indicator, and a kit for screening a molecular targeted drug for treating neuroblastoma in which the kit includes a cell expressing VRK1 and at least one selected from the group consisting of a primer for quantitative PCR for measuring suppression of VRK1 function, an anti-VRK1 antibody, and an antibody that specifically recognizes natural or synthetic peptide being a substrate of VRK1 and a phosphorylation site on the natural or synthetic peptide.SELECTED DRAWING: Figure 2

Description

本発明は、神経芽腫を治療するための分子標的薬のスクリーニング方法、及び神経芽腫を治療するための分子標的薬をスクリーニングするためのキットに関する。特に、(1)VRK1を発現している細胞、好ましくはVRK1を強く発現している細胞を用い、VRK1の機能の抑制を指標、又は(2)単離したVRK1との結合の有無を指標、とした神経芽腫を治療するための分子標的薬のスクリーニング方法、及び該スクリーニング方法に用いるためのキットに関する。   The present invention relates to a screening method for a molecular target drug for treating neuroblastoma and a kit for screening a molecular target drug for treating neuroblastoma. In particular, (1) a cell expressing VRK1, preferably a cell that strongly expresses VRK1, is used as an indicator for suppressing the function of VRK1, or (2) the presence or absence of binding to isolated VRK1, The present invention relates to a method for screening a molecular target drug for treating neuroblastoma, and a kit for use in the screening method.

神経芽腫は小児がんの一種であり、小児の腹部にできる代表的ながんである。神経芽腫の約20%の症例においてMYCファミリーに属するMYCN遺伝子の増幅(50−100コピー)が認められており、このMYCN遺伝子の増幅は患者の予後不良と強く相関することが知られている。   Neuroblastoma is a type of childhood cancer and is a typical cancer that forms in the abdomen of children. Amplification (50-100 copies) of the MYCN gene belonging to the MYC family is observed in about 20% of cases of neuroblastoma, and this MYCN gene amplification is known to strongly correlate with poor prognosis of patients. .

MYCN遺伝子を直接ノックダウン等により発現抑制をすると、ガン細胞のみならず正常細胞にも作用してしまう可能性があり、MYCN遺伝子に対して直接作用する薬剤は、副作用を生じるおそれがあると考えられる。そのため、2つの遺伝子の組み合わせで両方に異常があるときにのみ死に至る生命現象である「合成致死」に着目し、治療のための標的となる新たな遺伝子や分子標的の探索をすることが知られている(特許文献1参照)。   If the expression of the MYCN gene is directly suppressed by knockdown or the like, it may act not only on cancer cells but also on normal cells, and a drug that acts directly on the MYCN gene may cause side effects. It is done. Therefore, we focus on the “synthetic lethality”, which is a life phenomenon that results in death only when there is an abnormality in both of the combinations of the two genes, and we know that we will search for new genes and molecular targets that are targets for treatment. (See Patent Document 1).

特開2013−230130号公報JP2013-230130A

神経芽腫の治療薬としては、現状では成人がんに対する抗癌剤として開発されたシスプラチンなどが用いられている。ところで、神経芽腫は小児がんという性質上、他の疾患に対する治療薬よりも高い安全性が要求される。そのため、創薬の標的となり得る様々な遺伝子・タンパク質の探索、そして、当該遺伝子・タンパク質を用いた低毒性かつ治療効果の高い分子標的薬の開発が望まれている。   As a therapeutic agent for neuroblastoma, cisplatin developed as an anticancer agent for adult cancer is currently used. By the way, neuroblastoma is required to be safer than therapeutic drugs for other diseases due to the nature of childhood cancer. Therefore, it is desired to search for various genes / proteins that can be targets for drug discovery, and to develop molecular target drugs with low toxicity and high therapeutic effect using the genes / proteins.

また、上市されている治療薬は、酵素、受容体(GPCR)、イオンチャンネルなどの限られたクラスの分子種を標的としているケースが多く見られるが、上記特許文献1に記載されているSmc2やCAP−D2等は酵素活性を有するタンパク質ではない。そのため、神経芽腫の治療薬の標的となり得る様々な遺伝子・タンパク質の探索をする際には、創薬標的として好ましい酵素、受容体(GPCR)、イオンチャンネル等に関連する遺伝子・タンパク質を探索することが望ましい。   In addition, there are many cases where therapeutic drugs on the market target a limited class of molecular species such as enzymes, receptors (GPCRs), ion channels, etc., but Smc2 described in Patent Document 1 above. And CAP-D2 etc. are not proteins having enzyme activity. Therefore, when searching for various genes / proteins that can be targets for therapeutic drugs for neuroblastoma, search for genes / proteins related to enzymes, receptors (GPCRs), ion channels, etc. that are preferred as drug targets. It is desirable.

本発明は、上記従来の問題を解決するためになされた発明であり、鋭意研究を行ったところ、MYCN増幅型と単コピー型の二種類の神経芽腫細胞に対して並列で遺伝子ノックダウンスクリーニングを実施することによって、合成致死によりMYCN増幅型の細胞増殖を特異的に抑制することのできる指標としてVRK1(Vaccinia−related kinase 1)を新たに見出した。そして、VRK1の機能の抑制を指標又は単離したVRK1との結合の有無を指標とすることで、神経芽腫を治療するための分子標的薬をスクリーニングできること、及びスクリーニングするためのキットを提供できることを見出し、本発明を完成した。   The present invention has been made in order to solve the above-described conventional problems, and as a result of extensive research, gene knockdown screening was performed in parallel on two types of neuroblastoma cells of MYCN amplification type and single copy type. By carrying out the above, VRK1 (Vaccinia-related kinase 1) was newly found as an index capable of specifically suppressing MYCN-amplified cell growth by synthetic lethality. And, it is possible to screen a molecular target drug for treating neuroblastoma by using inhibition of VRK1 function as an index or presence or absence of binding to isolated VRK1, and to provide a kit for screening The present invention has been completed.

すなわち、本発明の目的は、神経芽腫を治療するための分子標的薬のスクリーニング方法、及び神経芽腫を治療するための分子標的薬をスクリーニングするためのキットを提供することである。   That is, an object of the present invention is to provide a screening method for a molecular target drug for treating neuroblastoma and a kit for screening a molecular target drug for treating neuroblastoma.

本発明は、以下に示す、神経芽腫を治療するための分子標的薬のスクリーニング方法、及び神経芽腫を治療するための分子標的薬をスクリーニングするためのキットに関する。   The present invention relates to a screening method for a molecular target drug for treating neuroblastoma and a kit for screening a molecular target drug for treating neuroblastoma, as described below.

(1)神経芽腫を治療するための分子標的薬のスクリーニング方法であって、
前記スクリーニング方法が、
VRK1の機能の抑制を指標として候補物質を選択する工程、
を含むスクリーニング方法。
(2)前記VRK1の機能の抑制を指標として候補物質を選択する工程が、
MYCN増幅型の神経芽腫細胞に候補物質を投与し、前記MYCN増幅型の神経芽腫細胞のVRK1の機能の抑制を測定する、上記(1)に記載のスクリーニング方法。
(3)前記候補物質を選択する工程が、VRK1の機能の抑制に代え、単離したVRK1と候補物質との結合の有無を指標とする、上記(1)に記載のスクリーニング方法。
(4)神経芽腫を治療するための分子標的薬をスクリーニングするためのキットであって、
前記キットが、
VRK1を発現している細胞、及び、
VRK1の機能の抑制を測定するための定量的PCR用のプライマー、抗VRK1抗体、並びに、VRK1の基質となる天然又は合成ペプチド及び該天然又は合成ペプチド上のリン酸化部位を特異的に認識する抗体、から選択される少なくとも1種、
を含むキット。
(5)前記VRK1を発現している細胞がMYCN増幅型の神経芽腫細胞である上記(4)に記載のキット。
(6)前記キットが、
酵素活性を有するVRK1タンパク質、VRK1の基質となる天然又は合成ペプチド、及び該天然又は合成ペプチド上のリン酸化部位を特異的に認識する抗体、を含む上記(4)に記載のキット。
(7)神経芽腫を治療するための分子標的薬をスクリーニングするためのキットであって、
前記キットが、
標識したVRK1を少なくとも含むキット。
(8)前記標識したVRK1に代え、
単離したVRK1タンパク質、及び候補物質を標識するための標識試薬を少なくとも含む上記(7)に記載のキット。
(1) A screening method for a molecular target drug for treating neuroblastoma,
The screening method comprises:
A step of selecting a candidate substance using suppression of the function of VRK1 as an index,
A screening method comprising:
(2) The step of selecting candidate substances using the inhibition of the function of VRK1 as an index,
The screening method according to (1) above, wherein a candidate substance is administered to a MYCN-amplified neuroblastoma cell, and the inhibition of VRK1 function of the MYCN-amplified neuroblastoma cell is measured.
(3) The screening method according to (1) above, wherein the step of selecting the candidate substance replaces suppression of the function of VRK1 and uses the presence or absence of binding between the isolated VRK1 and the candidate substance as an index.
(4) A kit for screening a molecular targeted drug for treating neuroblastoma,
The kit is
Cells expressing VRK1, and
Primers for quantitative PCR for measuring suppression of VRK1 function, anti-VRK1 antibody, and natural or synthetic peptide serving as a substrate for VRK1 and an antibody that specifically recognizes a phosphorylation site on the natural or synthetic peptide At least one selected from
Including kit.
(5) The kit according to (4), wherein the cell expressing VRK1 is a MYCN-amplified neuroblastoma cell.
(6) The kit is
The kit according to (4) above, comprising a VRK1 protein having an enzymatic activity, a natural or synthetic peptide that serves as a substrate for VRK1, and an antibody that specifically recognizes a phosphorylation site on the natural or synthetic peptide.
(7) A kit for screening a molecular targeted drug for treating neuroblastoma,
The kit is
A kit comprising at least labeled VRK1.
(8) In place of the labeled VRK1,
The kit according to (7) above, comprising at least the isolated VRK1 protein and a labeling reagent for labeling the candidate substance.

本発明によれば、VRK1の機能の抑制を指標又は単離したVRK1との結合の有無を指標とすることで、MYCN増幅型の細胞増殖を特異的に抑制(死滅)することのできる分子標的薬をスクリーニングすることが可能となり、また、当該スクリーニングに用いるキットを提供することができる。したがって、神経芽腫を治療する分子標的薬を開発することができる。   According to the present invention, a molecular target capable of specifically suppressing (killing) MYCN-amplified cell proliferation by using inhibition of VRK1 function as an indicator or presence or absence of binding to isolated VRK1 as an indicator. Drugs can be screened, and kits used for the screening can be provided. Therefore, molecular targeted drugs for treating neuroblastoma can be developed.

また、VRK1は創薬標的として好ましい酵素(キナーゼ)であるため、VRK1の機能の抑制を指標とすることで分子標的薬をスクリーニングすることができる。   Moreover, since VRK1 is a preferable enzyme (kinase) as a drug discovery target, a molecular target drug can be screened using suppression of the function of VRK1 as an index.

図1Aは、MYCN単コピー(single copy)型細胞であるSH−SY5Y、MYCN増幅(amplification)型細胞であるIMR32及びNB39細胞のVRK1遺伝子をノックダウンした後、3日間放置した時の各細胞の生存率を示すグラフで、図1Bは5日間放置した時のSH−SY5Y及びIMR32の生存率を示すグラフである。FIG. 1A shows SH-SY5Y, a MYCN single copy type cell, IMR32, an MYCN amplification type cell, and VRK1 gene of NB39 cell, after knocking down the VRK1 gene for 3 days. FIG. 1B is a graph showing the survival rate of SH-SY5Y and IMR32 when left for 5 days. 図2は、実施例2におけるSH−SY5Y及びIMR32のVRK1遺伝子の発現量を示すグラフである。2 is a graph showing the expression levels of VRK1 genes of SH-SY5Y and IMR32 in Example 2. FIG. 図3は、実施例3におけるウェスタンブロッティングの結果を示している。FIG. 3 shows the results of Western blotting in Example 3.

以下に、本発明の神経芽腫を治療するための分子標的薬のスクリーニング方法、及び神経芽腫を治療するための分子標的薬をスクリーニングするためのキットについて詳しく説明する。   Hereinafter, a screening method for a molecular target drug for treating neuroblastoma of the present invention and a kit for screening a molecular target drug for treating neuroblastoma will be described in detail.

本発明の神経芽腫を治療するための分子標的薬のスクリーニング方法は、MYCN増幅型の細胞増殖を特異的に抑制(死滅)するが、MYCN単コピー型の細胞には大きな影響を与えないVRK1に着目している。VRK1は、セリン・スレオニンキナーゼの一種であり、これまでの基礎研究からヒストンH3やATF2などの転写因子をリン酸化することによって細胞周期の進行を制御していることが明らかとなっている。また、天然物化合物ライブラリーからVRK1阻害剤をスクリーニングした論文(Kim YS et al.,PLoS One, 9(10), e109655, 2014)などが報告されている。しかしながら、VRK1の発現抑制がMYCN増幅型細胞の合成致死に関与することは、本発明者が初めて見出したものである。   The method for screening a molecular target drug for treating neuroblastoma of the present invention specifically suppresses (kills) MYCN-amplified cell proliferation, but does not significantly affect MYCN single-copy cells. Is focused on. VRK1 is a kind of serine / threonine kinase, and it has been clarified from previous basic studies that cell cycle progression is regulated by phosphorylating transcription factors such as histone H3 and ATF2. In addition, papers (Kim YS et al., PLoS One, 9 (10), e109655, 2014) that screened VRK1 inhibitors from natural product compound libraries have been reported. However, the present inventors have found for the first time that the suppression of VRK1 expression is involved in the synthetic lethality of MYCN-amplified cells.

本発明において、「機能の抑制」とはVRK1の発現自体を抑制することでVRK1の機能を抑制すること、及びVRK1は発現するが発現したVRK1の機能を抑制することを意味する。また、「抑制」とは完全に抑制すること(すなわち、阻害すること)のみならず、部分的に抑制することをも含むことを意味する。なお、VRK1の「発現」とは、特に断りのない限り遺伝子及び/又はタンパク質の発現を意味する。   In the present invention, “inhibition of function” means to suppress the function of VRK1 by suppressing the expression of VRK1 itself, and to suppress the function of VRK1 that is expressed but VRK1 is expressed. Moreover, "suppression" means not only complete suppression (that is, inhibition) but also partial suppression. Note that “expression” of VRK1 means gene and / or protein expression unless otherwise specified.

本発明のスクリーニング方法は、VRK1の機能の抑制を指標として候補物質を選択する工程を含んでいる。候補物質としては、例えば、天然化合物、有機化合物、無機化合物、タンパク質、抗体、ペプチドなどの単一化合物、並びに、化合物ライブラリー、遺伝子ライブラリーの発現産物、細胞抽出物、細胞培養上清、発酵微生物産生物、海洋生物抽出物、植物抽出物等を挙げることができる。   The screening method of the present invention includes a step of selecting a candidate substance using inhibition of VRK1 function as an index. Candidate substances include, for example, natural compounds, organic compounds, inorganic compounds, single compounds such as proteins, antibodies, peptides, etc., as well as compound libraries, gene library expression products, cell extracts, cell culture supernatants, fermentations Examples include microbial products, marine organism extracts, plant extracts, and the like.

VRK1の遺伝子情報、cDNA配列およびアミノ酸配列は公知であり、例えば、NCBI Reference Sequence Gene ID:7443の遺伝子情報、NCBI Reference Sequence:NM_003384.2に記載のmRNA、及びNCBI Reference Sequence:NP_003375.1に記載のアミノ酸配列情報を入手することができる。   The gene information, cDNA sequence and amino acid sequence of VRK1 are known, for example, NCBI Reference Sequence Gene ID: 7443 gene information, NCBI Reference Sequence: NM_003384.2 mRNA, and NCBI Reference Sequence_N The amino acid sequence information of can be obtained.

本発明のスクリーニング方法は、VRK1の機能の抑制をすることができるか否かを、直接又は間接的に検出しうる系に候補物質を接触させ、接触前後のVRK1の機能の変化を検出できれば特に制限は無い。例えば、VRK1が発現している細胞に候補物質を接触させ、次いで、VRK1の機能の抑制を測定すればよい。   The screening method of the present invention is particularly effective if the candidate substance is brought into contact with a system capable of directly or indirectly detecting whether or not the function of VRK1 can be suppressed, and changes in the function of VRK1 before and after the contact can be detected. There is no limit. For example, a candidate substance may be brought into contact with a cell expressing VRK1, and then inhibition of the function of VRK1 may be measured.

VRK1が強く発現している細胞としては、IMR32、NB39、TNB1、LA−N−1等のMYCN増幅型の細胞が挙げられる。また、VRK1が発現している細胞としては、SH−SY5Y、SH−EP、SK−N−SH、SK−N−AS等のMYCN単コピー型の細胞;VRK1遺伝子を形質転換した細胞、等が挙げられる。また、VRK1が発現している細胞に代え、単離したVRK1に候補物質を接触させ結合の有無を検出してもよい。なお、候補物質のスクリーニングの観点からは、前記のMYCN増幅型の細胞、MYCN単コピー型の細胞、VRK1遺伝子を形質転換した細胞、単離したVRK1の何れでも問題は無いが、MYCN増幅型の細胞を用いるとVRK1の機能の抑制に加え最終的に細胞の死滅も確認できることから好ましい。   Examples of cells in which VRK1 is strongly expressed include MYCN-amplified cells such as IMR32, NB39, TNB1, and LA-N-1. Examples of cells expressing VRK1 include MYCN single copy cells such as SH-SY5Y, SH-EP, SK-N-SH, and SK-N-AS; cells transformed with the VRK1 gene, and the like. Can be mentioned. Alternatively, instead of cells expressing VRK1, a candidate substance may be contacted with isolated VRK1 to detect the presence or absence of binding. From the viewpoint of screening for candidate substances, any of the above-mentioned MYCN-amplified cells, MYCN single-copy cells, cells transformed with VRK1 gene, and isolated VRK1 is not a problem, but MYCN-amplified cells When cells are used, it is preferable because cell death can be finally confirmed in addition to suppression of the function of VRK1.

VRK1の機能の抑制の検出方法(発現の抑制)としては、例えば、mRNAやタンパク質の定量が挙げられる。mRNAは定量的PCR法によって定量することができ、定量的PCR法としては、SYBR Green法、TaqManプローブ法、RT-PCR法等、公知の方法を用いることができる。また、タンパク質の定量は、抗VRK1抗体を用いて、ELISA法(酵素免疫測定法)、ウェスタンブロット(WB)、免疫沈降−ウェスタンブロット(IP−WB)法、LC−MS等の公知の方法を用いることができる。また、単離したVRK1と候補物質との結合の有無の検出方法も公知の方法を用いることができ、例えば、ELISA法、VRK1又は候補物質に標識を付けて結合の有無を検出する方法が挙げられる。   Examples of the detection method (suppression of expression) for suppressing the function of VRK1 include quantification of mRNA and protein. mRNA can be quantified by a quantitative PCR method. As the quantitative PCR method, a known method such as SYBR Green method, TaqMan probe method, RT-PCR method or the like can be used. In addition, protein quantification is performed using known methods such as ELISA (enzyme immunoassay), Western blot (WB), immunoprecipitation-western blot (IP-WB), LC-MS, etc. using anti-VRK1 antibody. Can be used. A known method can also be used as a method for detecting the presence or absence of binding between the isolated VRK1 and the candidate substance, for example, ELISA, VRK1 or a method for detecting the presence or absence of binding by labeling the candidate substance. It is done.

VRK1の機能の抑制の検出方法(発現したVRK1の機能の抑制)としては、精製したVRK1酵素を用いてもよいし、VRK1が発現している細胞を用いてもよい。精製したVRK1酵素を用いる場合は、先ず、酵素活性を有するVRK1タンパク質とVRK1の基質となることが明らかとなっているタンパク質、例えばヒストンH3のリン酸化部位付近のアミノ酸配列からなる合成ペプチドを混合する。次に、ペプチド上のリン酸化部位を特異的に認識する抗体を用いてELISA法あるいは時間分解FRET法等を用いてVRK1によるリン酸化反応を検出する。この系を用いて候補物質のVRK1の機能の抑制を検出することができる。なお、酵素活性を有するVRK1タンパク質は市販されているものを用いればよい。また、VRK1の基質は上記のとおり合成ペプチドを用いると効率的であるが、天然ペプチドを用いてもよい。   As a method for detecting suppression of the function of VRK1 (inhibition of the function of expressed VRK1), purified VRK1 enzyme may be used, or cells expressing VRK1 may be used. When using a purified VRK1 enzyme, first, a VRK1 protein having enzyme activity and a protein that has been shown to be a substrate of VRK1, for example, a synthetic peptide consisting of an amino acid sequence near the phosphorylation site of histone H3, are mixed. . Next, the phosphorylation reaction by VRK1 is detected using an ELISA method or a time-resolved FRET method using an antibody that specifically recognizes a phosphorylation site on the peptide. This system can be used to detect inhibition of VRK1 function as a candidate substance. A commercially available VRK1 protein may be used. Further, as described above, it is efficient to use a synthetic peptide as a substrate for VRK1, but a natural peptide may be used.

VRK1が発現している細胞を用いる場合は、先ず、VRK1を発現している細胞に候補物質を処理し、細胞抽出液を用いたWBによってVRK1の基質となることが明らかとなっているタンパク質、例えばヒストンH3のリン酸化部位を特異的に認識する抗体を用いてVRK1によるリン酸化反応を検出する。あるいは細胞を固定してVRK1の基質となることが明らかとなっているタンパク質に対するリン酸化抗体を用いてフローサイトメトリーなどの手法によってリン酸化を受けている割合の高い細胞集団を同定、定量化する。これらの系を用いて候補物質のVRK1の機能抑制を検出することができる。なお、上記と同様、VRK1の基質は天然ペプチドを用いてもよい。   When cells expressing VRK1 are used, first, a candidate substance is treated in cells expressing VRK1, and a protein that has been clarified to become a substrate of VRK1 by WB using a cell extract, For example, the phosphorylation reaction by VRK1 is detected using an antibody that specifically recognizes the phosphorylation site of histone H3. Alternatively, a cell population with a high rate of phosphorylation by a technique such as flow cytometry is identified and quantified using a phosphorylated antibody against a protein that has been fixed and becomes a substrate of VRK1. . These systems can be used to detect inhibition of VRK1 function as a candidate substance. As described above, a natural peptide may be used as the substrate for VRK1.

後述する実施例のとおり、VRK1の機能を抑制することでMYCN増幅型の細胞を効果的に死滅できたことから、VRK1遺伝子を検出可能なPCRプライマー、VRK1タンパク質を検出可能な抗体、VRK1に特異的な基質等を含んだVRK1の機能を抑制するための分子標的薬をスクリーニングするためのキットを提供することができる。   Since the MYCN-amplified cells could be effectively killed by suppressing the function of VRK1, as described in the examples described later, PCR primers capable of detecting the VRK1 gene, antibodies capable of detecting the VRK1 protein, specific to VRK1 A kit for screening a molecular target drug for suppressing the function of VRK1 containing a typical substrate or the like can be provided.

VRK1遺伝子を検出するキットの場合、VRK1を発現している細胞、VRK1遺伝子の発現量を定量可能なPCRプライマーセットの他に、定量に最適な酵素、試薬等を含んだ構成とすることができる。プライマーはVRK1を定量的に測定することができれば、どのような配列を用いてもよい。また、発現量を正規化するために、GAPDHを増幅するプライマーのようなコントロールプライマーを含めてもよい。   In the case of a kit for detecting the VRK1 gene, in addition to the PCR primer set that can quantify the expression level of the VRK1 gene and the expression level of the VRK1 gene, the kit can be configured to include enzymes, reagents, etc. that are optimal for quantification . As the primer, any sequence may be used as long as VRK1 can be quantitatively measured. In order to normalize the expression level, a control primer such as a primer for amplifying GAPDH may be included.

VRK1タンパク質を検出するキットの場合は、VRK1を発現している細胞、VRK1タンパク質を検出するための抗体の他、アプタマー等のVRK1タンパク質と結合する分子、検出に必要な試薬を含む構成とすればよい。   In the case of a kit for detecting the VRK1 protein, it is possible to include a cell that expresses the VRK1, an antibody for detecting the VRK1 protein, a molecule that binds to the VRK1 protein such as an aptamer, and a reagent necessary for detection. Good.

精製したVRK1酵素を用いて発現したVRK1の機能の抑制を検出するキットの場合は、酵素活性を有するVRK1タンパク質、VRK1の基質となる天然又は合成ペプチド、天然又は合成ペプチド上のリン酸化部位を特異的に認識する抗体の他、検出に必要な試薬を含む構成とすればよい。   In the case of a kit that detects inhibition of the function of VRK1 expressed using purified VRK1 enzyme, a VRK1 protein having an enzyme activity, a natural or synthetic peptide that serves as a substrate for VRK1, and a phosphorylation site on the natural or synthetic peptide are specified. In addition to the antibody to be recognized, a configuration including a reagent necessary for detection may be used.

VRK1を発現している細胞を用いて発現したVRK1の機能の抑制を検出するキットの場合は、VRK1を発現している細胞、VRK1の基質となる天然又は合成ペプチド、天然又は合成ペプチド上のリン酸化部位を特異的に認識する抗体の他、検出に必要な試薬を含む構成とすればよい。   In the case of a kit for detecting inhibition of the function of VRK1 expressed using cells expressing VRK1, cells expressing VRK1, natural or synthetic peptides serving as substrates for VRK1, and phosphorus on natural or synthetic peptides What is necessary is just to set it as the structure containing the reagent required for a detection other than the antibody which recognizes an oxidation site | part specifically.

また、単離したVRK1タンパク質と候補物質との結合の有無を検出する場合は、単離したVRK1、及びVRK1と候補物質との結合を検出するための試薬を少なくとも含んでいればよい。例えば、
(1)蛍光物質、酵素等で標識した標識VRK1タンパク質、及び必要に応じて標識したVRK1を検出するための試薬、又は、
(2)候補物質を標識するための蛍光、酵素等の標識試薬、単離したVRK1タンパク質、更に必要に応じて標識を検出するための試薬、
を含んだ構成とすればよい。
In addition, when detecting the presence or absence of binding between the isolated VRK1 protein and the candidate substance, it is sufficient to include at least a reagent for detecting the isolated VRK1 and the binding between VRK1 and the candidate substance. For example,
(1) a reagent for detecting a labeled VRK1 protein labeled with a fluorescent substance, an enzyme, etc., and a labeled VRK1 as necessary, or
(2) Fluorescence for labeling candidate substances, labeling reagents such as enzymes, isolated VRK1 protein, and reagents for detecting the label as necessary,
May be included.

以下に実施例を掲げ、本発明を具体的に説明するが、この実施例は単に本発明の説明のため、その具体的な態様の参考のために提供されているものである。これらの例示は本発明の特定の具体的な態様を説明するためのものであるが、本願で開示する発明の範囲を限定したり、あるいは制限することを表すものではない。   The present invention will be described in detail with reference to the following examples, which are provided merely for the purpose of illustrating the present invention and for reference to specific embodiments thereof. These exemplifications are for explaining specific specific embodiments of the present invention, but are not intended to limit or limit the scope of the invention disclosed in the present application.

〔合成致死によりMYCN増幅型の細胞増殖を特異的に抑制する遺伝子の探索〕
MYCN増幅型の細胞であるIMR32は、独立行政法人 医薬基盤研究所のJCRB細胞バンクから入手した。MYCN単コピー型の細胞であるSH−SY5Yは、イタリアのFIRC Institute of Molecular Oncologyから入手した。IMR32及びSH−SY5YをゲノムワイドshRNAライブラリー(SIGMA社製:SHPH01)により網羅的に遺伝子をノックダウンした。次いで、次世代シークエンス技術(NGS analysis)を用いて、MYCN増幅型の細胞であるIMR32は細胞死する、あるいは細胞増殖が抑制されるが、MYCN単コピー型の細胞であるSH−SY5Yの生存には大きな影響を与えない遺伝子の探索を行った結果、候補遺伝子としてVRK1を選択した。
[Search for genes that specifically suppress cell growth of MYCN amplification by synthetic lethality]
IMR32, a MYCN-amplified cell, was obtained from the JCRB cell bank of the Pharmaceutical Research Institute. SH-SY5Y, a MYCN single-copy cell, was obtained from FIRC Institute of Molecular Oncology, Italy. IMR32 and SH-SY5Y were comprehensively knocked down using a genome-wide shRNA library (manufactured by SIGMA: SHPH01). Next, using next-generation sequencing technology (NGS analysis), IMR32, which is a MYCN-amplified cell, dies or cell growth is suppressed, but the survival of SH-SY5Y, which is a MYCN single-copy cell, is suppressed. As a result of searching for genes that do not have a significant effect, VRK1 was selected as a candidate gene.

〔ヒト神経芽腫細胞内におけるVRK1遺伝子のノックダウンと細胞生存率の測定〕
<実施例1>
選択したVRK1の発現を抑制することで、MYCN増幅型の細胞を合成致死することができるのか、以下の手順により確認を行った。
[Measurement of VRK1 gene knockdown and cell viability in human neuroblastoma cells]
<Example 1>
It was confirmed by the following procedure whether MYCN-amplified cells could be synthetically killed by suppressing the expression of the selected VRK1.

(1)細胞株及び試薬
・NB39:東北大学加齢医学研究所の医用細胞資源センターから入手した。
・VRK1に対するsiRNA:Stealth RNAi siRNA(Life Technologies,HSS111308)
・siRNA導入試薬:Lipofectamine RNAiMAX Transfection Reagent(Life Technologies,13778150)
・siRNA希釈用培地:Opti−MEM(Life Technologies,31985−070)
・IMR32用培地:MEM(Sigma−Aldrich,M4655)
・SH−SY5Y用培地:MEM+Ham’s F12(1:1) ※Ham’s F12(Life Technologies,11765−054)
・NB39用培地:RPMI−1640(Sigma−Aldrich,R8758)
・FBS:Biosera,515−99055
・組織培養用プレート:6 well(IWAKI,3810−006)
・蛍光試薬:Resazurin sodium salt(Sigma−Aldrich,R7017)
(1) Cell lines and reagents NB39: Obtained from the Medical Cell Resource Center of Tohoku University Institute of Aging Medicine.
-SiRNA against VRK1: Stealth RNAi siRNA (Life Technologies, HSS111308)
SiRNA introduction reagent: Lipofectamine RNAiMAX Transfection Reagent (Life Technologies, 13778150)
SiRNA dilution medium: Opti-MEM (Life Technologies, 31985-070)
-Medium for IMR32: MEM (Sigma-Aldrich, M4655)
-Medium for SH-SY5Y: MEM + Ham's F12 (1: 1) * Ham's F12 (Life Technologies, 11765-054)
-Medium for NB39: RPMI-1640 (Sigma-Aldrich, R8758)
・ FBS: Biosera, 515-99055
-Tissue culture plate: 6 well (IWAKI, 3810-006)
Fluorescent reagent: Resazurin sodium salt (Sigma-Aldrich, R7017)

(2)実験方法
(a)siRNAの希釈、siRNA導入試薬との複合体形成
先ず、6 wellの組織培養用プレートの各々のwellに、Opti−MEMを500μl加えた。次に、各々のwellに5μMのsiRNAを2μl加え、更に、各々のwellにsiRNA導入用試薬(RNAiMAX)を4μl加えた。試薬の添加後、プレートを室温で15分間放置した。
(b)細胞の準備、VRK1遺伝子のノックダウン
ヒト神経芽腫細胞株SH−SY5Y(MYCN単コピー型)、IMR32(MYCN増幅型)、NB39(MYCN増幅型)を、それぞれの適合培地中(10%FBS含有)で、0.08×106 cells/mlとなるように調製した。
次に、上記(a)で準備したVRK1に対するsiRNAとsiRNA導入試薬を含むOpti−MEMに対して、0.08×106 cells/mlに調製した細胞懸濁液を2.5mlずつ加えた。組織培養用プレートをCO2インキュベーター内で72時間(3日間)放置した。また、SH−SY5Y及びIMR32については、120時間(5日間)放置したものも実施した。
(c)細胞生存率の測定
Resazurin sodium saltをリン酸緩衝生理食塩水に溶かして1200μMの溶液を調製した。次に、Resazurin溶液を6 wellの組織培養用プレートの各々のwellに600μlずつ加えた後、組織培養用プレートをCO2インキュベーター内で1時間放置した。次に、Resazurin溶液と培地の混合物を120μlずつ取り、POWERSCAN4(DS PHARMA BIOMEDICAL)を用い、励起波長560nm、検出波長590nmの条件で蛍光強度を測定した。生存細胞ではResazurinが蛍光物質に変換されることから、蛍光強度は生存細胞数に比例する。測定した蛍光強度から、細胞生存率を求めた。
(2) Experimental method (a) Dilution of siRNA and complex formation with siRNA introduction reagent First, 500 μl of Opti-MEM was added to each well of a 6-well tissue culture plate. Next, 2 μl of 5 μM siRNA was added to each well, and further 4 μl of siRNA introduction reagent (RNAiMAX) was added to each well. After the reagent addition, the plate was left at room temperature for 15 minutes.
(B) Cell preparation, knockdown of VRK1 gene Human neuroblastoma cell lines SH-SY5Y (MYCN single copy type), IMR32 (MYCN amplification type), and NB39 (MYCN amplification type) were added in their respective compatible media (10 % FBS) and 0.08 × 10 6 cells / ml.
Next, 2.5 ml of the cell suspension prepared to 0.08 × 10 6 cells / ml was added to Opti-MEM containing siRNA and siRNA introduction reagent for VRK1 prepared in (a) above. The tissue culture plate was left in a CO 2 incubator for 72 hours (3 days). Moreover, about SH-SY5Y and IMR32, what was left to stand for 120 hours (5 days) was also implemented.
(C) Measurement of cell viability Resazurin sodium salt was dissolved in phosphate buffered saline to prepare a 1200 μM solution. Next, 600 μl of Resazurin solution was added to each well of a 6-well tissue culture plate, and then the tissue culture plate was left in a CO 2 incubator for 1 hour. Next, 120 μl each of the resazurin solution and medium mixture was taken, and the fluorescence intensity was measured using POWERSCAN4 (DS PHARMA BIOMEDICAL) under conditions of an excitation wavelength of 560 nm and a detection wavelength of 590 nm. Since resazurin is converted into a fluorescent substance in viable cells, the fluorescence intensity is proportional to the number of viable cells. Cell viability was determined from the measured fluorescence intensity.

図1Aは、MYCN単コピー(single copy)型細胞であるSH−SY5Y、MYCN増幅(amplification)型細胞であるIMR32及びNB39細胞のVRK1遺伝子をノックダウンした後、3日間放置した時の各細胞の生存率を示すグラフで、図1Bは5日間放置した時のSH−SY5Y及びIMR32の生存率を示すグラフである。図1A及び図1Bに示すように、VRK1をノックダウンすることで、MYCN増幅型の細胞の生存率を下げることができた。また、図1A及び図1BのIMR32の生存率から、VRK1をノックダウンしても直ぐに細胞が死滅するのではなく、時間をかけて徐々に死滅することが明らかとなった。   FIG. 1A shows SH-SY5Y, a MYCN single copy type cell, IMR32, an MYCN amplification type cell, and VRK1 gene of NB39 cell, after knocking down the VRK1 gene for 3 days. FIG. 1B is a graph showing the survival rate of SH-SY5Y and IMR32 when left for 5 days. As shown in FIG. 1A and FIG. 1B, the survival rate of MYCN-amplified cells could be reduced by knocking down VRK1. Moreover, from the survival rate of IMR32 in FIG. 1A and FIG. 1B, it became clear that even when VRK1 is knocked down, cells do not die immediately but gradually die over time.

なお、MYCN単コピー型のSH−SY5YでもVRK1をノックダウンすることで細胞の死滅が確認できた。VRK1は活発に増殖する細胞では発現しており、細胞周期の進行において何らかの役割を果たしていると考えられるので、VRK1抑制によってMYCN単コピー型のSH−SY5Yに多少なりとも影響が出たと考えられる。また、MYCN増幅型の細胞の生存率が0%にならなかった理由は、細胞培養時間が72〜120時間ではVRK1をノックダウンしても死滅するに至らなかった細胞もある、また、siVRK1がトランスフェクションしなかった細胞があったためと考えられる。以上の結果より、VRK1が合成致死によりMYCN増幅型の細胞増殖を特異的に抑制する指標となり得ることが明らかとなった。   In addition, even in MYCN single copy type SH-SY5Y, cell death could be confirmed by knocking down VRK1. Since VRK1 is expressed in actively proliferating cells and is thought to play some role in the progression of the cell cycle, it is considered that the inhibition of VRK1 has somewhat affected MYCN single-copy SH-SY5Y. In addition, the reason why the survival rate of MYCN-amplified cells did not reach 0% was that some cells were not killed even when VRK1 was knocked down when the cell culture time was 72 to 120 hours, and siVRK1 This is probably because some cells were not transfected. From the above results, it has been clarified that VRK1 can be an index for specifically suppressing the growth of MYCN-amplified cells by synthetic lethality.

〔ヒト神経芽腫細胞内におけるVRK1遺伝子のノックダウンと遺伝子発現量の測定〕
<実施例2>
次に、ヒト神経芽腫細胞内におけるVRK1遺伝子をノックダウンした際の遺伝子発現量を、リアルタイムPCR法を用いて測定した。
[VRK1 gene knockdown and measurement of gene expression level in human neuroblastoma cells]
<Example 2>
Next, the gene expression level when the VRK1 gene was knocked down in human neuroblastoma cells was measured using a real-time PCR method.

(1)試薬等
・RNA精製試薬:ISOGEN(NIPPON GENE,311−02501)
・cDNA合成試薬:ReverTra Ace qPCR RT Master Mix with gDNA Remover(TOYOBO, FSQ−301)
・rPCR用試薬:THUNDERBIRD SYBR qPCR Mix (TOYOBO, QPS−201)
なお、実施例2の実験方法に用いる細胞株及び試薬に関し、上記以外は実施例1と同様である。
(1) Reagents, etc./RNA purification reagent: ISOGEN (NIPPON GENE, 311-02501)
CDNA synthesis reagent: ReverseTra Ace qPCR RT Master Mix with gDNA Remover (TOYOBO, FSQ-301)
-Reagent for rPCR: THUNDERBIRD SYBR qPCR Mix (TOYOBO, QPS-201)
The cell lines and reagents used in the experimental method of Example 2 are the same as in Example 1 except for the above.

(2)実験方法
細胞株としてSH−SY5YとIMR32のみを用いた以外は、実施例1の(2)実験方法の(a)及び(b)と同様の手順で細胞のVRK1遺伝子のノックダウンを行った。
次に、1 wellあたり500μlのISOGENを加えて細胞を溶解し、マニュアルに従ってtotal RNAを精製した。ReverTra Ace qPCR RT Master Mix with gDNA Removerを用いて0.5μgのtotal RNAから、cDNA合成を行った。このcDNAサンプルをテンプレートとしてTHUNDERBIRD SYBR qPCR Mixを用いてリアルタイムPCRを実施し、コントロールサンプルに対するsiVRK1サンプルの遺伝子量を算出した。測定機器はAgilent Technologies社のMx3005Pを用いた。遺伝子検出用のプライマー配列は以下の通り。
VRK1_Fw: 5’−GCCTCGTGTAAAAGCAGCTC(配列番号:1)
VRK1_Rv: 5’−GTGCATCACTGCCAACTGAC(配列番号:2)
GAPDH_Fw: 5’−ATCATCCCTGCCTCTACTGG(配列番号:3)
GAPDH_Rv: 5’−CCCTCCGACGCCTGCTTCAC(配列番号:4)
(2) Experimental method Knockdown of the VRK1 gene of the cell was carried out in the same procedure as in (2) Experimental method (a) and (b) of Example 1 except that only SH-SY5Y and IMR32 were used as cell lines. went.
Next, 500 μl of ISOGEN per well was added to lyse the cells, and total RNA was purified according to the manual. CDNA synthesis was performed from 0.5 μg of total RNA using RiverTra Ace qPCR RT Master Mix with gDNA Remover. Using this cDNA sample as a template, real-time PCR was performed using THUNDERBIRD SYBR qPCR Mix, and the gene amount of the siVRK1 sample relative to the control sample was calculated. The measuring instrument used was Mx3005P manufactured by Agilent Technologies. Primer sequences for gene detection are as follows.
VRK1_Fw: 5′-GCCTCGTGTAAAAGCAGCTC (SEQ ID NO: 1)
VRK1_Rv: 5′-GTGCATCACTGCCAACTGAC (SEQ ID NO: 2)
GAPDH_Fw: 5′-ATCATCCCTGCCCTCACTGG (SEQ ID NO: 3)
GAPDH_Rv: 5′-CCCTCCGACGCCCTCTTCAC (SEQ ID NO: 4)

図2は、実施例2におけるSH−SY5Y及びIMR32のVRK1遺伝子の発現量を示すグラフである。図2に示すように、コントロール(siNC)と比較して、siVRK1をトランスフェクションしたSH−SY5Y及びIMR32では、何れもVRK1遺伝子の発現が抑制されていたことが明らかとなった。   2 is a graph showing the expression levels of VRK1 genes of SH-SY5Y and IMR32 in Example 2. FIG. As shown in FIG. 2, it was revealed that the expression of the VRK1 gene was suppressed in both SH-SY5Y and IMR32 transfected with siVRK1, as compared with the control (siNC).

〔ヒト神経芽腫細胞内におけるVRK1遺伝子のノックダウンとタンパク質量の測定〕
<実施例3>
次に、ヒト神経芽腫細胞内におけるVRK1遺伝子をノックダウンした際のVRK1のタンパク質量を、ウェスタンブロット法を用いて測定した。
[VRK1 gene knockdown and measurement of protein content in human neuroblastoma cells]
<Example 3>
Next, the amount of VRK1 protein when the VRK1 gene was knocked down in human neuroblastoma cells was measured using Western blotting.

(1)試薬等
・NET−Nバッファー:20mM Tris−HCl pH=8.0, 150mM NaCl, 1mM EDTA, 0.5% NP−40
・タンパク質濃度測定キット:Pierce BCA Protein Assay Kit(Thermo Scientific,23225)
なお、実施例3の実験方法に用いる細胞株及び試薬に関し、上記以外は実施例1及び2と同様である。
(1) Reagents, etc. NET-N buffer: 20 mM Tris-HCl pH = 8.0, 150 mM NaCl, 1 mM EDTA, 0.5% NP-40
Protein concentration measurement kit: Pierce BCA Protein Assay Kit (Thermo Scientific, 23225)
The cell lines and reagents used in the experimental method of Example 3 are the same as in Examples 1 and 2 except for the above.

(2)実験方法
実施例2と同様の手順で、細胞のVRK1遺伝子のノックダウンを行った。次に、回収した細胞をNET−Nバッファーに溶解し、Pierce BCA Protein Assay Kitを用いてタンパク質濃度を測定した。10%ポリアクリルアミドゲルの1 wellあたりの総タンパク質量が10μgとなるようにして電気泳動を行った。抗体として、
・Anti−VRK1 antibody:SIGMA,HPA000660
・Monoclonal Anti−・−Actin antibody:SIGMA,A5441
を用い、定法によりウェスタンブロッティングを行った。また、コントロールとしてβ―actinを用いた。
次に、イメージアナライザー LAS−4010(GE Healthcare)を用いて、得られた画像のバンド強度を付属のImageQuant TLにより定量化した。
(2) Experimental method In the same procedure as in Example 2, knockdown of the VRK1 gene of the cells was performed. Next, the collected cells were dissolved in NET-N buffer, and the protein concentration was measured using Pierce BCA Protein Assay Kit. Electrophoresis was performed such that the total protein amount per well of a 10% polyacrylamide gel was 10 μg. As an antibody,
Anti-VRK1 antibody: SIGMA, HPA000660
Monoclonal Anti --- Actin antibody: SIGMA, A5441
Western blotting was performed by a conventional method. Further, β-actin was used as a control.
Next, using an image analyzer LAS-4010 (GE Healthcare), the band intensity of the obtained image was quantified by the attached ImageQuant TL.

図3は、実施例3におけるウェスタンブロッティングの結果を示している。図3から明らかなように、コントロール(siNC)と比較して、siVRK1をトランスフェクションしたSH−SY5Y及びIMR32では、何れもVRK1タンパク質量が約半減していた。   FIG. 3 shows the results of Western blotting in Example 3. As is clear from FIG. 3, compared to the control (siNC), the SH-SY5Y and IMR32 transfected with siVRK1 both had about half the amount of VRK1 protein.

上記実施例1〜3の結果より、VRK1の発現を抑制することで、MYCN増幅型の細胞のみを特異的に死滅できることが明らかとなった。したがって、VRK1の機能の抑制を指標とすることで、神経芽腫を治療するための分子標的薬のスクリーニングをすることができる。   From the results of Examples 1 to 3, it was revealed that only MYCN-amplified cells can be specifically killed by suppressing the expression of VRK1. Therefore, by using inhibition of VRK1 function as an index, it is possible to screen for a molecular target drug for treating neuroblastoma.

本発明の神経芽腫を治療するための分子標的薬のスクリーニング方法、及び神経芽腫を治療するための分子標的薬をスクリーニングするためのキットを用いることで、神経芽腫を特異的に抑制できる分子標的薬をスクリーニングすることができる。したがって、創薬産業にとって有用である。   By using the method for screening a molecular target drug for treating neuroblastoma of the present invention and a kit for screening a molecular target drug for treating neuroblastoma, neuroblastoma can be specifically suppressed. Molecular targeted drugs can be screened. Therefore, it is useful for the drug discovery industry.

Claims (8)

神経芽腫を治療するための分子標的薬のスクリーニング方法であって、
前記スクリーニング方法が、
VRK1の機能の抑制を指標として候補物質を選択する工程、
を含むスクリーニング方法。
A screening method for a molecular targeted drug for treating neuroblastoma, comprising:
The screening method comprises:
A step of selecting a candidate substance using suppression of the function of VRK1 as an index,
A screening method comprising:
前記VRK1の機能の抑制を指標として候補物質を選択する工程が、
MYCN増幅型の神経芽腫細胞に候補物質を投与し、前記MYCN増幅型の神経芽腫細胞のVRK1の機能の抑制を測定する、請求項1に記載のスクリーニング方法。
The step of selecting candidate substances using the inhibition of the function of VRK1 as an index,
The screening method according to claim 1, wherein a candidate substance is administered to MYCN-amplified neuroblastoma cells, and inhibition of VRK1 function of the MYCN-amplified neuroblastoma cells is measured.
前記候補物質を選択する工程が、VRK1の機能の抑制に代え、単離したVRK1と候補物質との結合の有無を指標とする、請求項1に記載のスクリーニング方法。   The screening method according to claim 1, wherein the step of selecting the candidate substance uses, as an index, the presence or absence of binding between the isolated VRK1 and the candidate substance instead of suppressing the function of VRK1. 神経芽腫を治療するための分子標的薬をスクリーニングするためのキットであって、
前記キットが、
VRK1を発現している細胞、及び、
VRK1の機能の抑制を測定するための定量的PCR用のプライマー、抗VRK1抗体、並びに、VRK1の基質となる天然又は合成ペプチド及び該天然又は合成ペプチド上のリン酸化部位を特異的に認識する抗体、から選択される少なくとも1種、
を含むキット。
A kit for screening a molecular targeted drug for treating neuroblastoma,
The kit is
Cells expressing VRK1, and
Primers for quantitative PCR for measuring suppression of VRK1 function, anti-VRK1 antibody, and natural or synthetic peptide serving as a substrate for VRK1 and an antibody that specifically recognizes a phosphorylation site on the natural or synthetic peptide At least one selected from
Including kit.
前記VRK1を発現している細胞がMYCN増幅型の神経芽腫細胞である請求項4に記載のキット。   The kit according to claim 4, wherein the cell expressing VRK1 is a MYCN-amplified neuroblastoma cell. 前記キットが、
酵素活性を有するVRK1タンパク質、VRK1の基質となる天然又は合成ペプチド、及び該天然又は合成ペプチド上のリン酸化部位を特異的に認識する抗体、を含む請求項4に記載のキット。
The kit is
The kit according to claim 4, comprising a VRK1 protein having enzyme activity, a natural or synthetic peptide that serves as a substrate for VRK1, and an antibody that specifically recognizes a phosphorylation site on the natural or synthetic peptide.
神経芽腫を治療するための分子標的薬をスクリーニングするためのキットであって、
前記キットが、
標識したVRK1を少なくとも含むキット。
A kit for screening a molecular targeted drug for treating neuroblastoma,
The kit is
A kit comprising at least labeled VRK1.
前記標識したVRK1に代え、
単離したVRK1タンパク質、及び候補物質を標識するための標識試薬を少なくとも含む請求項7に記載のキット。
Instead of the labeled VRK1,
The kit according to claim 7, comprising at least the isolated VRK1 protein and a labeling reagent for labeling the candidate substance.
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