JP2016155769A - Psf1 gene silencing agent - Google Patents

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Abstract

PROBLEM TO BE SOLVED: To provide more effective therapeutic means of cancer via PSF1 gene silencing activity.SOLUTION: The invention relates to a composition having PSF1 gene silencing activity and containing a component (I) with a peak at 11.1 minutes in retention time and/or a component (II) with a peak at 14.6 minutes in retention time on the basis of HPLC analyses in the conditions of the following (A)-(F): (A) HPLC column: the column filled with octadecyl silica gel support (particle diameter 3 μm) and having an inside diameter of 4.6 mm and a height of 150 mm; (B) HPLC column oven temperature: 40°C; (C) flow rate: 0.8 ml/minute; (D) detection: 190-400 nm; (E) mobile phase: (a) methanol and (b) 10 mM of ammonium formate aqueous solution; and (F) gradient condition: maintaining a mixed solvent of 85% of (a) and 15% of (b) for 5 minutes, subsequently linearly increasing the concentration of the (a) in the mixed solvent from 85% to 100% over 15 minutes, and then maintaining the concentration of the (a) 100%.SELECTED DRAWING: None

Description

本発明は、抗がん剤、より詳細には、がん幹細胞の増殖抑制に効果的な抗癌剤及びその利用等に関する。   The present invention relates to an anticancer agent, and more particularly, to an anticancer agent effective for suppressing the growth of cancer stem cells and use thereof.

従来、がん組織は、性質が一様ながん細胞集団によって構成されると考えられていた。しかし、近年、がん細胞の中には、他のがん細胞と比較して、高い浸潤能、転移能、及び放射線療法や化学療法に対する抵抗性を示す細胞が存在することが判明してきた。このような特徴を有するがん細胞は、胚性幹細胞のような未分化細胞と同様の遺伝子を発現し、遺伝子発現が異なる分化したがん細胞を産生することから、がん幹細胞と呼ばれるようになってきた(非特許文献1及び2)。   Traditionally, cancer tissues were thought to be composed of cancer cell populations with uniform properties. However, in recent years, it has been found that some cancer cells have higher invasion ability, metastasis ability, and resistance to radiation therapy and chemotherapy than other cancer cells. Cancer cells with these characteristics express the same genes as undifferentiated cells such as embryonic stem cells and produce differentiated cancer cells with different gene expression, so they are called cancer stem cells. (Non-Patent Documents 1 and 2).

がん幹細胞と他のがん細胞との大きな違いは、がん幹細胞は一つの細胞でもがん組織を形成することができるのに対して、がん細胞はがん組織を構築できないことである。よって、多くのがん細胞が治療によって死滅したとしても、がん幹細胞が残存すれば、再発の原因となる。また、がんの薬剤耐性に関して、継続的な治療の過程で、がん細胞は薬剤抵抗性を獲得すると考えられてきた。確かに、治療薬に対する反応として、そのような細胞が出現してくることも考えられる。しかし、近年、がんの原発巣において、予め治療抵抗性を有する細胞が存在することが明らかになり、これががん幹細胞であることが判明してきた(非特許文献3)。   The major difference between cancer stem cells and other cancer cells is that cancer stem cells can form cancer tissue with a single cell, whereas cancer cells cannot build cancer tissue. . Therefore, even if many cancer cells are killed by treatment, if cancer stem cells remain, they will cause recurrence. In addition, regarding cancer drug resistance, it has been considered that cancer cells acquire drug resistance in the course of continuous treatment. Certainly, such cells may appear as a response to a therapeutic agent. However, in recent years, it has been clarified that cells having treatment resistance exist in advance in the primary tumor focus, and this has been found to be cancer stem cells (Non-patent Document 3).

以上のような知見の下、がん幹細胞を効果的に制御するがんの治療法の開発が期待されている。がん幹細胞は、「様々な細胞内生存シグナルを活発にしていること」、「未分化性を維持する機構を有すること」、及び「自己複製能を有すること」という特徴を有する。特に、後者の二つは幹細胞性と呼ばれる。そこで、がん幹細胞を治療可能ながん細胞に分化誘導し、従来の抗がん剤でがん細胞を殺傷する方法や、がん幹細胞の自己複製を抑制して、がんの成長を抑制する方法等が検討されている。   Based on the above knowledge, development of a cancer treatment method that effectively controls cancer stem cells is expected. Cancer stem cells have the characteristics of “activating various intracellular survival signals”, “having a mechanism for maintaining undifferentiation”, and “having self-replication ability”. In particular, the latter two are called stem cell. Therefore, differentiation of cancer stem cells into treatable cancer cells, and killing cancer cells with conventional anticancer drugs, or suppressing cancer stem cell self-replication and suppressing cancer growth The method to do is examined.

現在開発中のがん幹細胞をターゲットとした治療薬として、例えば、cMyc経路、Stat3経路、βカテニン経路など様々な細胞内シグナルを抑制する、いわゆるマルチキナーゼ阻害剤がある。また、がん幹細胞の未分化性にnotch受容体の活性化が関与しているという知見から、notch受容体活性を抑制して、がん幹細胞をがん細胞に分化させる方法も提案されている(特許文献1)。更に、近年、Sonic hedgehog (shh) が胎児期の器官形成の際に、細胞増殖、分化、生存に関わる細胞シグナル伝達物質であり、様々ながん細胞(例えば、慢性白血病、肺がん、乳がん、膵がん、肝がんモデル、髄様がん)におけるがん幹細胞の維持に寄与していることが示唆され、Shhを阻害する化合物を用いた前立腺がんに対する治療有効性が提案されている(非特許文献4)。しかし、これらの手法によるがん幹細胞への作用は未だ確認されていない。   As therapeutic agents targeting cancer stem cells currently under development, for example, there are so-called multikinase inhibitors that suppress various intracellular signals such as cMyc pathway, Stat3 pathway, and β-catenin pathway. In addition, based on the finding that the activation of notch receptor is involved in the undifferentiation of cancer stem cells, a method for suppressing notch receptor activity and differentiating cancer stem cells into cancer cells has also been proposed. (Patent Document 1). Furthermore, in recent years, Sonic hedgehog (shh) is a cell signaling substance involved in cell proliferation, differentiation, and survival during fetal organogenesis, and various cancer cells (for example, chronic leukemia, lung cancer, breast cancer, pancreas) It is suggested that it contributes to the maintenance of cancer stem cells in cancer, liver cancer models, and medullary cancers, and treatment efficacy against prostate cancer using a compound that inhibits Shh has been proposed ( Non-patent document 4). However, the effect on cancer stem cells by these methods has not yet been confirmed.

がん幹細胞に特有な細胞生存に関わる細胞内シグナルは、今のところ見つかっていない。即ち、がん幹細胞で利用されている細胞生存シグナルは、がん幹細胞以外の正常細胞においても幹細胞の細胞生存に重要な分子である。よって、このような生存シグナルを遮断すれば、正常組織の幹細胞も死滅させることが考えられる。幹細胞の未分化性を維持する分子機序についても、がん幹細胞に特異的なものは見つかっていない。よって、がん幹細胞の未分化性維持分子の阻害は、正常組織の幹細胞の分化をも誘導してしまうため、正常の幹細胞の枯渇につながることが懸念される。   No intracellular signal related to cell survival specific to cancer stem cells has been found so far. That is, the cell survival signal used in cancer stem cells is an important molecule for cell survival of stem cells even in normal cells other than cancer stem cells. Therefore, if such a survival signal is blocked, it is considered that the stem cells of normal tissues are also killed. As for the molecular mechanism for maintaining the undifferentiated nature of stem cells, none specific to cancer stem cells has been found. Therefore, since inhibition of the undifferentiated maintenance molecule of cancer stem cells also induces differentiation of stem cells of normal tissues, there is a concern that normal stem cells may be depleted.

ところで、PSF1(partner of sld five 1)は、未分化幹細胞の急速な自己複製に機能していることが報告されており(非特許文献5及び6)、がん組織においてもその発現が報告されている(非特許文献7〜9)。近年、PSF1遺伝子をクローニングし、そのプロモーターの下流にEGFP蛍光蛋白をコードする遺伝子を機能的に連結させた肺癌細胞株(Lewis Lung Carcinoma; LLC)及び大腸がん細胞株(colon26)が作製された(非特許文献10)。そして、これらの細胞を用いた試験により、(1)PSF1の転写活性の高い高陽性細胞は、マウスに再移植すると、少数細胞でも造腫瘍能を有し、マトリックス成分を溶解して浸潤する能力が高く、強い転移活性を有すること、(2)マウス腫瘍組織のPSF1陽性がん幹細胞と、ヒト腫瘍組織のPSF1陽性がん細胞の局在が、腫瘍内血管の近傍に位置するという共通性があること、(3)ヒト細胞におけるPSF1遺伝子をRNAi法によってノックダウンすると、細胞周期が停止又は遅延すること、及び(4)PSF1転写活性が高い高陽性細胞は、低陽性細胞と比べ、胚性幹細胞に特有な遺伝子の発現が高いことが確認されている(非特許文献11)。更に、マウスへの抗がん剤の投与試験によって、PSF1高発現細胞が抗がん剤抵抗性を増強してくることが報告されている(非特許文献11)。   By the way, PSF1 (partner of sld five 1) has been reported to function in rapid self-renewal of undifferentiated stem cells (Non-patent Documents 5 and 6), and its expression has also been reported in cancer tissues. (Non-Patent Documents 7 to 9). In recent years, a lung cancer cell line (Lewis Lung Carcinoma; LLC) and a colon cancer cell line (colon26) in which the PSF1 gene has been cloned and a gene encoding an EGFP fluorescent protein operably linked downstream of the promoter have been produced. (Non-Patent Document 10). As a result of tests using these cells, (1) high-positive cells with high PSF1 transcriptional activity have tumorigenicity even when a small number of cells are re-implanted, and the ability to dissolve and infiltrate matrix components. And high metastatic activity, and (2) the common location that PSF1-positive cancer stem cells in mouse tumor tissue and PSF1-positive cancer cells in human tumor tissue are located in the vicinity of tumor blood vessels. (3) When the PSF1 gene in human cells is knocked down by RNAi method, the cell cycle is stopped or delayed. (4) High positive cells with high PSF1 transcriptional activity are more embryonic than low positive cells. It has been confirmed that the expression of genes unique to stem cells is high (Non-patent Document 11). Furthermore, it has been reported that PSF1 high-expressing cells enhance anticancer drug resistance by administration test of anticancer drugs to mice (Non-patent Document 11).

特表2012-501626Special table 2012-501626 特開2011−195530JP2011-195530 特開2011−195531JP20111955531 特開2011−195533JP2011-195533 特開2011−195534JP2011-195534

Ben-Porath I et al., Nat. Genet. 2008; 40: 499-507Ben-Porath I et al., Nat. Genet. 2008; 40: 499-507 Somervaille TC et al., Cell Stem Cell 2009; 4: 129-40Somervaille TC et al., Cell Stem Cell 2009; 4: 129-40 Visvader JE, Lindeman GJ, Nat Rev Cancer 2008; 8: 755-68Visvader JE, Lindeman GJ, Nat Rev Cancer 2008; 8: 755-68 Nanta R et al., Oncogenesis 2, e42,2013Nanta R et al., Oncogenesis 2, e42,2013 Ueno M et al., Mol Cell Biol 2005; 25: 10528-32Ueno M et al., Mol Cell Biol 2005; 25: 10528-32 Ueno M et al., Blood 2009; 113: 555-62Ueno M et al., Blood 2009; 113: 555-62 Obama Kら, Oncol Rep 2005; 14: 701-6Obama K et al., Oncol Rep 2005; 14: 701-6 Hayashi R et al, Genomics Proteomics Bioinformatics 2006; 4: 156-64;Hayashi R et al, Genomics Proteomics Bioinformatics 2006; 4: 156-64; Ryu B et al., PLoS One 2007; 2: e594Ryu B et al., PLoS One 2007; 2: e594 Nagahama Y et al., Cancer Res 70, 1215-1224, 2010Nagahama Y et al., Cancer Res 70, 1215-1224, 2010 Matsui T et al., Am J Pathol 182; 1790-1799, 2013Matsui T et al., Am J Pathol 182; 1790-1799, 2013

上記に加え、PSF1陽性細胞の遺伝子発現パターンは、がん幹細胞マーカーといわれているCD44強陽性細胞の遺伝子発現パターンと一致することを本発明者等は確認した。以上から、PSF1遺伝子の発現を抑制することにより、がん細胞の腫瘍形成能、浸潤能、及び転移能といった能力を抑え、がんを効果的に治療することが可能であることが分かる。これは、PSF1遺伝子は、がん細胞の中でもがん幹細胞において高い発現が見られることから、PSF1遺伝子を標的とすることにより、がん細胞の根源であるがん幹細胞の活動を封じ込めることができるためである。ところが、PSF1遺伝子の発現抑制を通じた抗癌剤は未だ報告されていない。そこで、本発明は、PSF1遺伝子の発現抑制活性を通じた、より効果的ながんの治療手段を提供することを一つの目的とする。   In addition to the above, the present inventors have confirmed that the gene expression pattern of PSF1-positive cells matches the gene expression pattern of CD44 strongly positive cells, which is said to be a cancer stem cell marker. From the above, it can be seen that by suppressing the expression of the PSF1 gene, it is possible to effectively treat cancer by suppressing the ability of cancer cells such as tumor forming ability, invasion ability, and metastasis ability. This is because PSF1 gene is highly expressed in cancer stem cells among cancer cells, and by targeting PSF1 gene, the activity of cancer stem cells that are the source of cancer cells can be contained. Because. However, an anticancer drug through suppression of PSF1 gene expression has not yet been reported. Accordingly, an object of the present invention is to provide a more effective cancer treatment means through PSF1 gene expression-suppressing activity.

本発明者らは、PSF1遺伝子の発現抑制活性を有する物質の探索を行ったところ、タネツケバナの抽出物及びその各種分画物にその活性があること、並びに、タネツケバナの抽出物及びその各種分画物は、PSF1遺伝子発現細胞の細胞死を即時に誘導することなくPSF1遺伝子の発現を抑制することを見出した。このような知見に基づき、本発明者等は更なる試験を重ね、タネツケバナの抽出物及びその各種分画物ががん幹細胞を含むがん細胞の細胞分裂周期を停止又は遅延させ、休眠させることにより、その腫瘍増殖を抑制することを確認した。   As a result of searching for a substance having PSF1 gene expression-inhibiting activity, the present inventors have found that the extract of rapeseed and its various fractions have its activity, and the extract of rapeseed and its various fractions. Has found that the expression of PSF1 gene is suppressed without immediately inducing cell death of PSF1 gene-expressing cells. Based on such findings, the present inventors have repeated further tests, and the extract of the seed moth and its various fractions stop or delay the cell division cycle of cancer cells including cancer stem cells, and make them rest. Was confirmed to suppress the tumor growth.

一方、タネツケバナの抽出物は、特許文献2〜5に開示されている。例えば、特許文献2及び3には、タネツケバナの抽出物にタンパク質糖化抑制作用があり、それに基づくしわ改善作用又はくすみ改善作用が期待されることが記載されている。特許文献4には、タネツケバナ由来抽出物に線維芽細胞増殖促進作用があり、それに基づく抗老化作用又はしわ改善作用が期待されることが記載されている。特許文献5には、タネツケバナ由来抽出物にヒアルロン酸産生促進作用があり、それに基づく抗老化作用又はしわ改善作用が期待されることが記載されている。   On the other hand, the extract of the seed sprout is disclosed in Patent Documents 2 to 5. For example, Patent Documents 2 and 3 describe that the extract of Solanum spp. Has a protein saccharification-inhibiting action, and a wrinkle improving action or dullness improving action based thereon is expected. Patent Document 4 describes that the extract derived from the seed moth has a fibroblast proliferation-promoting effect, and an anti-aging effect or a wrinkle-improving effect based thereon is expected. Patent Document 5 describes that the extract derived from the seed moth has a hyaluronic acid production promoting action, and an anti-aging action or wrinkle improving action based thereon is expected.

本発明者らは、上述するタネツケバナ抽出物の各種分画物には、特許文献2〜5に記載されるようなタンパク質糖化抑制作用、線維芽細胞増殖促進作用、及びヒアルロン酸産生促進作用は存在しないことを確認した。即ち、特許文献2〜5に記載される各種作用は、タネツケバナ抽出物の各種分画物には存在しない成分に起因することを確認した。   The present inventors have the protein saccharification inhibiting action, fibroblast proliferation promoting action, and hyaluronic acid production promoting action as described in Patent Documents 2 to 5 in the various fractions of the above-mentioned extract Confirmed not to. In other words, it was confirmed that the various actions described in Patent Documents 2 to 5 are caused by components that are not present in the various fractions of the extract of the seed moth.

以上のような知見に基づき、更なる検討と改良を重ね、下記に代表される発明が提供される。
項1.
下記(A)〜(F)の条件でのHPLC分析において、保持時間11.1分にピークを有する成分(I)、及び/又は、保持時間14.6分にピークを有する成分(II)を含有し、PSF1遺伝子発現抑制活性を有する組成物:
(A)HPLCカラム:オクタデシル化シリカゲル担体(粒子径3μm)を充填した内径4.6mm、長さ150mmのカラム
(B)HPLCカラムオーブン温度:40℃
(C)流速:0.8ml/分
(D)検出:190〜400nm
(E)移動相:(a)メタノール及び(b)10mMギ酸アンモニウム水溶液
(F)グラジエント条件:85%の(a)と15%の(b)との混合溶媒を5分間保持し、その後15分かけて混合溶媒中の(a)の濃度を85%から100%に直線的に上昇させ、その後(a)の濃度を100%に維持。
項2.
PSF1遺伝子発現抑制剤である、項1に記載の組成物。
項3.
がんの予防又は治療剤である、項1又は2に記載の組成物。
項4.
がんが、脳腫瘍、乳がん、呼吸器がん、消化器がん、泌尿器系腫瘍、女性性器腫瘍、及び血液腫瘍から成る群より選択される1種以上である、項3に記載の組成物。
項5.
タンパク質糖化抑制活性、線維芽細胞増殖促進活性、及びヒアルロン酸産生促進活性を有さない、項1〜4のいずれかに記載の組成物。
項6.
前記成分(I)及び(II)がタネツケバナに由来する、項1〜5のいずれかに記載の組成物。
項7.
タネツケバナを含水低級アルコールで抽出し、得られた抽出液を逆相カラムクロマトグラフィーに供して得られる画分である、項1〜6のいずれかに記載の組成物。
項8.
前記逆相ゲルカラムクロマトグラフィーの移動相として低級アルコール又はアセトニトリルを使用する、項7に記載の組成物。
項9.
下記(1)〜(3)を含む方法によって得られる、項1〜6のいずれかに記載の組成物:
(1)タネツケバナを低級アルコールで抽出し、抽出液を回収すること、
(2)(1)で得られた抽出液をヘキサンとの液々分配に供し、下層を回収すること、
(3)(2)で得られた下層をクロロホルムとの液々分配に供し、クロロホルム画分を回収すること。
項10.
前記方法が、更に下記(4)を含む、項9に記載の組成物:
(4)(3)で得られたクロロホルム画分を、移動相として低極性溶媒及び低級アルコールの混合液を用いたシリカゲルカラムクロマトグラフィーに供すること。
項11.
項1〜10のいずれかに記載の組成物が濃縮された食品。
項12.
PSF1遺伝子発現抑制させるための項1〜10のいずれかに記載の組成物の使用(但し、ヒトに対する医療行為を除く)。
Based on the above findings, further studies and improvements are made, and the inventions represented below are provided.
Item 1.
In HPLC analysis under the following conditions (A) to (F), component (I) having a peak at a retention time of 11.1 minutes and / or component (II) having a peak at a retention time of 14.6 minutes A composition containing and having PSF1 gene expression inhibitory activity:
(A) HPLC column: a column having an inner diameter of 4.6 mm and a length of 150 mm packed with an octadecylated silica gel carrier (particle diameter: 3 μm) (B) HPLC column oven temperature: 40 ° C.
(C) Flow rate: 0.8 ml / min (D) Detection: 190-400 nm
(E) Mobile phase: (a) Methanol and (b) 10 mM ammonium formate aqueous solution (F) Gradient condition: 85% of (a) and 15% of (b) mixed solvent is held for 5 minutes, then 15 minutes The concentration of (a) in the mixed solvent is increased linearly from 85% to 100%, and then the concentration of (a) is maintained at 100%.
Item 2.
Item 2. The composition according to Item 1, which is a PSF1 gene expression inhibitor.
Item 3.
Item 3. The composition according to Item 1 or 2, which is a preventive or therapeutic agent for cancer.
Item 4.
Item 4. The composition according to Item 3, wherein the cancer is one or more selected from the group consisting of brain tumor, breast cancer, respiratory cancer, gastrointestinal cancer, urological tumor, female genital tumor, and blood tumor.
Item 5.
Item 5. The composition according to any one of Items 1 to 4, which has no protein glycation-inhibiting activity, fibroblast proliferation promoting activity, and hyaluronic acid production promoting activity.
Item 6.
Item 6. The composition according to any one of Items 1 to 5, wherein the components (I) and (II) are derived from a spruce.
Item 7.
Item 7. The composition according to any one of Items 1 to 6, wherein the composition is a fraction obtained by extracting the seed moth with water-containing lower alcohol and subjecting the obtained extract to reverse phase column chromatography.
Item 8.
Item 8. The composition according to Item 7, wherein a lower alcohol or acetonitrile is used as a mobile phase in the reverse phase gel column chromatography.
Item 9.
Item 6. The composition according to any one of Items 1 to 6, obtained by a method comprising the following (1) to (3):
(1) Extracting the seedling with lower alcohol and recovering the extract,
(2) subjecting the extract obtained in (1) to liquid partition with hexane and collecting the lower layer;
(3) Subject the lower layer obtained in (2) to liquid-liquid partition with chloroform and collect the chloroform fraction.
Item 10.
Item 10. The composition according to Item 9, wherein the method further comprises (4) below:
(4) Use the chloroform fraction obtained in (3) for silica gel column chromatography using a mixture of a low polarity solvent and a lower alcohol as a mobile phase.
Item 11.
The foodstuff in which the composition in any one of claim | item 1 -10 was concentrated.
Item 12.
Use of the composition according to any one of Items 1 to 10 to suppress PSF1 gene expression (except for medical practice for humans).

本発明により、PSF1遺伝子の発現を抑制し、がんを効果的に治療することが可能となる。これは、PSF1遺伝子活性を抑制することにより、通常のがん細胞だけでなく、がん幹細胞の増殖を有意に抑制し(又はこれらの細胞を休眠させ)、がんの腫瘍形成能だけでなく、浸潤能及び転移能をも効果的に抑制することができる為である。従って、本発明により、がんの悪性化又は重篤化を予防することができる。また、PSF1遺伝子の発現抑制(特に、中程度の発現抑制)は、細胞増殖を起こさない又は細胞増殖速度が緩やかな正常な細胞には顕著な影響を示さない。それは、がん細胞は細胞の休眠化が誘導されても、細胞周期のチェックポイントが破綻しているために、分裂を休止せず、細胞分裂の為に必要な分子が準備されていなくても分裂を継続しようとするために、次の分裂で分裂死が誘導されるが、正常細胞の場合、休眠化が誘導されても、細胞分裂に十分な分子が準備できてから分裂するために分裂死は誘導されないためである。したがって、本発明は、より安全な、患者にとって負担の少ないがんの治療手段となる。   According to the present invention, it is possible to effectively treat cancer by suppressing the expression of PSF1 gene. This suppresses not only normal cancer cells but also cancer stem cell proliferation by suppressing PSF1 gene activity (or causing these cells to diapause), and not only the ability of cancer to form tumors. This is because invasive ability and metastatic ability can also be effectively suppressed. Therefore, according to the present invention, malignancy or seriousness of cancer can be prevented. In addition, suppression of PSF1 gene expression (particularly moderate suppression of expression) does not show a significant effect on normal cells that do not cause cell growth or have a slow cell growth rate. Even if cancer cells are induced to diapause, the cell cycle checkpoint is broken, so the cells do not pause division and the molecules necessary for cell division are not prepared. In order to continue division, division death is induced in the next division, but in the case of normal cells, even if dormancy is induced, division occurs after sufficient molecules are prepared for cell division. This is because death is not induced. Accordingly, the present invention provides a safer means of treating cancer that is less burdensome for the patient.

タネツケバナ抽出物を液々分画して得られたクロロホルム分画物のHPLCクロマトグラフである。縦軸は検出波長(280nm)での吸光度を示し、横軸は保持時間(分)を示す。ここにおいて、特徴的な2つのピーク(I)(保持時間11.223分)と(II)(保持時間14.722分)の存在が示されている。It is a HPLC chromatograph of the chloroform fraction obtained by carrying out the liquid-fraction fractionation of the seed-crab extract. The vertical axis represents absorbance at the detection wavelength (280 nm), and the horizontal axis represents retention time (minutes). Here, the presence of two characteristic peaks (I) (retention time 11.223 minutes) and (II) (retention time 14.722 minutes) is shown. タネツケバナ抽出物を液々分画して得られたクロロホルム分画物を順相中圧分取カラムクロマトに付し、得られたタネツケバナの順相分画物(1)のHPLCクロマトグラフである。縦軸は検出波長(280nm)での吸光度を示し、横軸は保持時間(分)を示す。ここにおいて、特徴的な2つのピーク(I)(保持時間11.072分)と(II)(保持時間14.658分)の存在が示されている。It is a HPLC chromatograph of the normal phase fraction (1) obtained by subjecting the chloroform fraction obtained by liquid-fractionating the seed extract to the pressure phase to normal phase medium pressure fractionation column chromatography. The vertical axis represents absorbance at the detection wavelength (280 nm), and the horizontal axis represents retention time (minutes). Here, the presence of two characteristic peaks (I) (retention time 11.072 minutes) and (II) (retention time 14.658 minutes) is shown. タネツケバナ抽出物を逆相中圧分取カラムクロマトに付し、得られたタネツケバナの逆相分画物(2)のHPLCクロマトグラフである。縦軸は検出波長(280nm)での吸光度を示し、横軸は保持時間(分)を示す。ここにおいて、特徴的な2つのピーク(I)(保持時間10.948分)と(II)(保持時間14.546分)の存在が示されている。It is a HPLC chromatograph of the reverse-phase fraction (2) obtained by attaching | subjecting the extract of S. cerevisiae to reverse phase intermediate pressure preparative column chromatography. The vertical axis represents absorbance at the detection wavelength (280 nm), and the horizontal axis represents retention time (minutes). Here, the presence of two characteristic peaks (I) (retention time 10.948 minutes) and (II) (retention time 14.546 minutes) is shown. 各種抽出物(A)およびタネツケバナ抽出物の分画物(B)をLLC細胞に添加して16時間培養した後の、細胞の形態を示す顕微鏡写真である。Aの1はネガティブコントロール(DMSO)、Aの2はタネツケバナ抽出物、Aの3はポジティブコントロール(Rhus taitensis抽出物を添加した場合)である。Bの1はタネツケバナ抽出物のクロロホルム分画物、Bの2は順相分画物(1)、Bの3は逆相分画物(2)である。It is a microscope picture which shows the form of a cell, after adding various extracts (A) and the fraction (B) of the seed extract of Bush to LLC cells, and culturing for 16 hours. 1 of A is a negative control (DMSO), 2 of A is an extract of the radish, and 3 of A is a positive control (when Rhus taitensis extract is added). 1 of B is a chloroform fraction of the extract of S. cerevisiae, 2 of B is a normal phase fraction (1), and 3 of B is a reverse phase fraction (2). PSF1プロモーター制御下にEGFP蛍光蛋白を発現するLLC細胞に各種抽出物(A)及びタネツケバナ抽出物の分画物(B)を添加し、EGFPの発現強度及びPI染色強度をフローサイトメトリーで解析した結果を示す。Aの1はネガティブコントロール(DMSO)、Aの2はタネツケバナ抽出物、Aの3はポジティブコントロール(Rhus taitensis抽出物を添加した場合)である。Bの1はタネツケバナ抽出物のクロロホルム分画物、Bの2は順相分画物(1)、Bの3は逆相分画物(2)である。Various extracts (A) and fractions of B. edulis extract (B) were added to LLC cells expressing EGFP fluorescent protein under PSF1 promoter control, and EGFP expression intensity and PI staining intensity were analyzed by flow cytometry. Results are shown. 1 of A is a negative control (DMSO), 2 of A is an extract of the radish, and 3 of A is a positive control (when Rhus taitensis extract is added). 1 of B is a chloroform fraction of the extract of S. cerevisiae, 2 of B is a normal phase fraction (1), and 3 of B is a reverse phase fraction (2). タネツケバナ抽出物及びタネツケバナ抽出物を種々の方法によって分画した分画物をLLC細胞に添加し、細胞内のPSF1 mRNAの発現量をリアルタイムPCRで解析した結果を示す。DMSO添加に比べ、タネツケバナ抽出物及びタネツケバナ抽出物の分画物を添加した細胞ではPSF1遺伝子の発現が減弱している。横軸の1はネガティブコントロール(DMSOの添加)、2はタネツケバナ抽出物、3はタネツケバナ抽出物のクロロホルム分画物、4は順相分画物(1)、5は逆相分画物(2)を添加した場合である。縦軸は、コントロールを基準としたPSF1 RNAの相対発現量を示す。The result of having analyzed the expression level of intracellular PSF1 mRNA by real-time PCR is shown by adding the seed extract and the fraction obtained by fractionating the seed extract from various methods to LLC cells. Compared with DMSO addition, the expression of PSF1 gene is attenuated in cells to which the extract of rapeseed and the extract of rapeseed is added. 1 on the horizontal axis is negative control (addition of DMSO), 2 is extract of seedlings, 3 is chloroform fraction of extract of seedlings, 4 is normal phase fraction (1), 5 is reverse phase fraction (2 ) Is added. The vertical axis shows the relative expression level of PSF1 RNA based on the control. タネツケバナ抽出物及びタネツケバナ抽出物を種々の方法によって分画した分画物を種々のヒトがん細胞[glioma (U87MG), breast cancer (MCF7), lung cancer (EBC1), gastric cancer (HGC-27), colon cancer (HT29), prostate cancer (PC3), cervical cancer (HELA), leukemia (MEG01)[()内は細胞株名を示す]]に添加し、細胞内のPSF1 mRNAの発現量をリアルタイムPCRで解析した結果を示す。横軸の1はネガティブコントロール(DMSOの添加)、2はタネツケバナ抽出物、3はタネツケバナ抽出物のクロロホルム分画物、4は順相分画物(1)、5は逆相分画物(2)を添加した場合である。縦軸は、コントロールを基準としたPSF1 RNAの相対発現量を示す。Seeds of rapeseed extract and fractions obtained from various extracts of rapeseed extract by various methods. Various human cancer cells [glioma (U87MG), breast cancer (MCF7), lung cancer (EBC1), gastric cancer (HGC-27) , colon cancer (HT29), prostate cancer (PC3), cervical cancer (HELA), leukemia (MEG01) [() shows the cell line name]], and the expression level of intracellular PSF1 mRNA is real-time PCR The result of analysis is shown. 1 on the horizontal axis is negative control (addition of DMSO), 2 is extract of seedlings, 3 is chloroform fraction of extract of seedlings, 4 is normal phase fraction (1), 5 is reverse phase fraction (2 ) Is added. The vertical axis shows the relative expression level of PSF1 RNA based on the control. マウス肺がん細胞株(KLN205細胞株)を用いたがん発生モデルにおいて、マウスにタネツケバナ抽出物を投与した際に、肺に形成される腫瘍塊の数を計算した結果を示す。縦軸は、肺当たりに形成された腫瘍塊の数を示す。横軸の1はネガティブコントロール(DMSOの投与)であり、2はタネツケバナ抽出物を投与した場合を示す。The result of calculating the number of tumor masses that are formed in the lung when a rapeseed extract is administered to a mouse in a cancer development model using a mouse lung cancer cell line (KLN205 cell line) is shown. The vertical axis shows the number of tumor masses formed per lung. 1 on the horizontal axis is a negative control (administration of DMSO), and 2 is a case where the extract of rapeseed is administered. タネツケバナ抽出物の分画物が、タンパク質糖化に及ぼす影響を、CML [カルボキシメチルリジン(carboxymethyllysine)]の発現量により測定した結果を示す。CMLとは、終末糖化産物であるadvanced glycosylation end product (AGEs)のひとつであり、糖化のマーカーである。分画物を添加していないネガティブコントロールを100とした。横軸に関し、1はネガティブコントロール(DMSOの添加)、2はタネツケバナ抽出物のクロロホルム分画物、3は順相分画物(1)、4は逆相分画物(2)を添加した場合である。縦軸は、コントロールを基準としたAGEsの相対産生量を示す。いずれの分画物においても、糖化を促進する効果が観察された。The result of having measured the influence which the fraction of the extract of a rapeseed extract has on protein glycation by the expression level of CML [carboxymethyllysine] is shown. CML is one of advanced glycosylation end products (AGEs), which are end glycation products, and is a marker for glycation. Negative control to which no fraction was added was taken as 100. Regarding the horizontal axis, 1 is a negative control (DMSO added), 2 is a chloroform fraction of the extract of the seed moth, 3 is a normal phase fraction (1), and 4 is a reverse phase fraction (2). It is. A vertical axis | shaft shows the relative production amount of AGEs on the basis of control. In any fraction, an effect of promoting saccharification was observed. タネツケバナ抽出物の分画物が、線維芽細胞の増殖に及ぼす影響を、観察した際の結果を示す。分画物を添加していないネガティブコントロールでの線維芽細胞の増殖レベルを100とした。横軸に関し、1はネガティブコントロール(DMSOの添加)、2はタネツケバナ抽出物のクロロホルム分画物、3は順相分画物(1)、4は逆相分画物(2)を添加した場合である。縦軸は、コントロールを基準とした線維芽細胞の相対増殖量を示す。いずれの分画物においても、細胞増殖を抑制することが観察された。The result at the time of observing the influence which the fraction of the extract of a spruce on fibroblast proliferation shows is shown. The proliferation level of fibroblasts in a negative control to which no fraction was added was taken as 100. Regarding the horizontal axis, 1 is a negative control (DMSO added), 2 is a chloroform fraction of the extract of the seed moth, 3 is a normal phase fraction (1), and 4 is a reverse phase fraction (2). It is. The vertical axis represents the relative amount of fibroblast proliferation based on the control. In any fraction, it was observed that cell proliferation was suppressed. タネツケバナ抽出物の分画物が、線維芽細胞からのヒアルロン酸産生に及ぼす影響を測定した際の結果を示す。分画物を添加していないネガティブコントロールでのヒアルロン酸産生レベルを100とした。横軸に関し、1はネガティブコントロール(DMSOの添加)、2はタネツケバナ抽出物のクロロホルム分画物、3は順相分画物(1)、4は逆相分画物(2)を添加した場合である。縦軸は、コントロールを基準としたヒアルロン酸の相対産生量を示す。いずれの分画物においても、ヒアルロン酸産生の促進が認められないか、又は抑制的に作用することが観察された。The result at the time of measuring the influence which the fraction of the rapeseed extract extracts on the production of hyaluronic acid from fibroblasts is shown. Hyaluronic acid production level in a negative control to which no fraction was added was defined as 100. Regarding the horizontal axis, 1 is a negative control (DMSO added), 2 is a chloroform fraction of the extract of the seed moth, 3 is a normal phase fraction (1), and 4 is a reverse phase fraction (2). It is. A vertical axis | shaft shows the relative production amount of hyaluronic acid on the basis of control. In any fractions, it was observed that promotion of hyaluronic acid production was not observed or acted in a suppressive manner.

PSF1遺伝子発現抑制活性を有する組成物は、下記(A)〜(F)の条件でのHPLC分析において、保持時間11.1分にピークを有する成分(I)、及び/又は、保持時間14.6分にピークを有する成分(II)を含有することが好ましい。
(A)HPLCカラム:オクタデシル化シリカゲル担体(粒子径3μm)を充填した内径4.6mm、長さ150mmのカラム
(B)HPLCカラムオーブン温度:40℃
(C)流速:0.8ml/分
(D)検出:190〜400nm
(E)移動相:(a)メタノールと(b)10mMギ酸アンモニウム水溶液
(F)グラジエント条件:85%の(a)と15%の(b)との混合溶媒を5分間保持し、その後15分かけて混合溶媒中の(a)の濃度を85%から100%に直線的に上昇させ、その後(a)の濃度を100%に維持
保持時間に関して「保持時間11.1分」及び「保持時間14.6分」には、前後数秒(例えば、20秒、15秒、10秒、5秒、3秒、2秒、又は1秒)の範囲が含まれる。これは、同じ条件を採用してHPLC分析を行っても、ロット間で保持時間に若干の実験誤差が生じる為である。
The composition having PSF1 gene expression inhibitory activity has a component (I) having a peak at a retention time of 11.1 minutes and / or a retention time of 14.1 minutes in HPLC analysis under the following conditions (A) to (F). It is preferable to contain component (II) having a peak at 6 minutes.
(A) HPLC column: a column having an inner diameter of 4.6 mm and a length of 150 mm packed with an octadecylated silica gel carrier (particle diameter: 3 μm) (B) HPLC column oven temperature: 40 ° C.
(C) Flow rate: 0.8 ml / min (D) Detection: 190-400 nm
(E) Mobile phase: (a) Methanol and (b) 10 mM ammonium formate aqueous solution (F) Gradient condition: 85% (a) and 15% (b) mixed solvent is held for 5 minutes, then 15 minutes The concentration of (a) in the mixed solvent is increased linearly from 85% to 100%, and then the concentration of (a) is maintained at 100%. “Retention time 11.1 minutes” and “retention time” with respect to the retention time “14.6 minutes” includes a range of several seconds before and after (for example, 20 seconds, 15 seconds, 10 seconds, 5 seconds, 3 seconds, 2 seconds, or 1 second). This is because even if the HPLC analysis is performed under the same conditions, a slight experimental error occurs in the holding time between lots.

粒子径3μmのオクタデシル化シリカゲル担体は、商業的に入手可能であり、それらを適宜選択して使用することができるが、次の仕様を満たすことが好ましい。
(a)母体:高純度球状シリカゲル(ESシリカ)
(b)表面積:200m/g
(c)細孔径:200Å(20nm)
(d)細孔容積:1.00mL/g
(e)化学結合基:オクタデシル基
(f)エンドキャップ:あり
(g)炭素量:9%
(h)UPSコード:L1
上記仕様を満たす単体としては、例えば、後述する製造例2で使用したジーエルサイエンス株式会社製の「InertSustainSwift(登録商標) C18」を挙げることができる。「粒子径3μm」とは、平均粒子径が3μmであることを意味する。
Octadecylated silica gel carriers having a particle size of 3 μm are commercially available, and can be appropriately selected and used, but preferably satisfy the following specifications.
(A) Base material: high purity spherical silica gel (ES silica)
(B) Surface area: 200 m 2 / g
(C) Pore diameter: 200 mm (20 nm)
(D) Pore volume: 1.00 mL / g
(E) Chemical bonding group: octadecyl group (f) End cap: Yes (g) Carbon content: 9%
(H) UPS code: L1
As a simple substance satisfying the above specifications, for example, “InertSustainSwift (registered trademark) C18” manufactured by GL Science Co., Ltd. used in Production Example 2 described later can be cited. “Particle size 3 μm” means that the average particle size is 3 μm.

検出波長は、190nm〜400nmの範囲から任意に選択した波長を用いることができる。例えば、検出波長は、254nm、280nm又は365nmに設定することができる。   As the detection wavelength, a wavelength arbitrarily selected from the range of 190 nm to 400 nm can be used. For example, the detection wavelength can be set to 254 nm, 280 nm, or 365 nm.

PSF1遺伝子発現抑制活性を有する組成物を取得するための手段、及び、原料等は特に制限されない。好適な一実施形態において、PSF1遺伝子発現抑制活性を有する組成物は、植物を原料として抽出することによって得ることができる。好ましい植物としては、タネツケバナを挙げることができる。「タネツケバナ」とは、アブラナ科タネツケバナ属の植物であり、タネツケバナ(Cardamine scutata)及びオオバタネツケバナ(Cardamine regeliana)が含まれる。   Means for obtaining a composition having PSF1 gene expression inhibitory activity, raw materials, and the like are not particularly limited. In a preferred embodiment, the composition having PSF1 gene expression suppressing activity can be obtained by extracting a plant as a raw material. Preferable plants include radish. “Tanetsukibana” is a plant belonging to the genus Brassicaceae, and includes Cardamine scutata and Cardamine regeliana.

抽出に供される植物の部位は、特に限定されず、全草、地上部、葉、樹皮、茎、根、果実、種子、種皮、及び花等から適宜選択することができる。より高いPSF1遺伝子の発現阻害活性を有する抽出物を得るという観点から、タネツケバナの抽出物は、その全草の抽出物であることが好ましい。   The part of the plant subjected to the extraction is not particularly limited, and can be appropriately selected from whole grass, aerial parts, leaves, bark, stems, roots, fruits, seeds, seed coats, flowers, and the like. From the standpoint of obtaining an extract having a higher PSF1 gene expression inhibitory activity, the extract of Solanum spp. Is preferably the whole plant extract.

植物の抽出物は、公知の抽出方法を任意に選択し、組み合わせて実施することにより得ることができる。例えば、植物又はその一部をそのまま又は乾燥後、粉砕又は細切し、溶媒を用いてバッチ式又は連続式で抽出することができる。   The plant extract can be obtained by arbitrarily selecting known extraction methods and combining them. For example, a plant or a part thereof can be directly or after drying, pulverized or chopped, and extracted in a batch or continuous manner using a solvent.

抽出溶媒は、任意の溶媒を選択して使用することができる。例えば、水;メタノール、エタノール、プロパノール、イソプロパノール等の低級アルコール溶媒;1,3−ブチレングリコール、プロピレングリコール、ジプロピレングリコール、グリセリン等の多価アルコール溶媒;エチルエーテル、プロピルエーテル等のエーテル溶媒;酢酸メチル、酢酸エチル、酢酸ブチル等のエステル溶媒;アセトン、メチルエチルケトン等のケトン溶媒;ジクロロメタン、クロロホルムのようなメタン誘導体、1,1,1−トリクロロエタンのようなエタン誘導体、あるいはテトラクロロエチレンのようなエチレン誘導体である塩化脂肪族炭化水素溶媒等を挙げることができる。これらの溶媒は、単独、混合、又は組み合わせて用いることができる。タネツケバナの抽出物を得る為の好ましい溶媒としては、上記と同様の観点から、低極性溶媒(例えば、酢酸エチル及びクロロホルム等)及びアルコール溶媒が上げられ、より好ましくはエステル溶媒、塩化脂肪族炭化水素溶媒、及び低級アルコール溶媒(例えば、含水低級アルコール溶媒)、更に好ましくは脂肪酸低級アルキルエステル溶媒、塩化脂肪族低級炭化水素溶媒、及びメタノール、エタノールである。   As the extraction solvent, any solvent can be selected and used. For example, water; lower alcohol solvents such as methanol, ethanol, propanol and isopropanol; polyhydric alcohol solvents such as 1,3-butylene glycol, propylene glycol, dipropylene glycol and glycerin; ether solvents such as ethyl ether and propyl ether; acetic acid Ester solvents such as methyl, ethyl acetate and butyl acetate; ketone solvents such as acetone and methyl ethyl ketone; methane derivatives such as dichloromethane and chloroform; ethane derivatives such as 1,1,1-trichloroethane; and ethylene derivatives such as tetrachloroethylene There may be mentioned certain chlorinated aliphatic hydrocarbon solvents. These solvents can be used alone, in combination or in combination. As a preferable solvent for obtaining the extract of Solanum spp., A low polarity solvent (for example, ethyl acetate and chloroform) and an alcohol solvent are raised from the same viewpoint as described above, and more preferably an ester solvent and an aliphatic chloride chloride. Solvents and lower alcohol solvents (for example, hydrous lower alcohol solvents), more preferably fatty acid lower alkyl ester solvents, chlorinated aliphatic lower hydrocarbon solvents, and methanol and ethanol.

抽出に使用する溶媒の量は適宜選択することができ、通常、原料に対し、好ましくは1〜100倍量の抽出溶媒を使用すればよい。抽出温度も適宜、目的に応じて決定すればよいが、水抽出の場合は通常、好ましくは4〜130℃、より好ましくは25〜100℃である。溶媒中に低級アルコールが含まれる場合は4〜70℃の範囲が好適である。非アルコール系有機溶媒を用いる場合は、4℃〜還流温度で抽出を行うことが好ましい。   The amount of the solvent used for the extraction can be appropriately selected. Usually, the extraction solvent is preferably used in an amount of 1 to 100 times that of the raw material. The extraction temperature may be appropriately determined according to the purpose, but in the case of water extraction, it is usually preferably 4 to 130 ° C, more preferably 25 to 100 ° C. When the lower alcohol is contained in the solvent, the range of 4 to 70 ° C. is preferable. When using a non-alcohol organic solvent, it is preferable to perform extraction at 4 ° C. to reflux temperature.

抽出時間は、抽出効率を考慮して設定することができる。例えば、数分〜数日、好ましくは30分〜1日の範囲となるように、原料、抽出溶媒、抽出温度を設定することができる。抽出操作は、例えば、攪拌しながら又は静置して行えばよく、必要に応じて数回繰り返してもよい。更に、必要に応じて、ろ過、遠心分離、濃縮、限外ろ過等の処理を組み合わせて、PSF1遺伝子発現阻害活性を有する抽出物を得ることができる。   The extraction time can be set in consideration of extraction efficiency. For example, the raw material, the extraction solvent, and the extraction temperature can be set to be in the range of several minutes to several days, preferably 30 minutes to 1 day. The extraction operation may be performed, for example, while stirring or standing, and may be repeated several times as necessary. Furthermore, if necessary, an extract having PSF1 gene expression inhibitory activity can be obtained by combining treatments such as filtration, centrifugation, concentration, and ultrafiltration.

上述する抽出物をそのままPSF1遺伝子発現抑制活性を有する組成物とすることができるが、必要に応じて、抽出物を濃縮、乾固した物を水、極性溶媒、又は非極性溶媒に再度溶解してPSF1遺伝子発現抑制活性を有する組成物とすることもできる。PSF1遺伝子発現抑制活性を有する組成物は、生理作用を損なわない範囲で、抽出物を脱色、脱臭、脱塩、液々分配、及びカラムクロマトグラフィー(順相及び/又は逆相等のクロマトグラフィー)等による分画・精製処理を行って得られる精製物(又は分画物)として得ることが好ましい。   The above-described extract can be used as a composition having PSF1 gene expression inhibitory activity as it is, but if necessary, the extract is concentrated and dried to dissolve again in water, a polar solvent, or a nonpolar solvent. Thus, a composition having PSF1 gene expression inhibitory activity can also be obtained. A composition having PSF1 gene expression inhibitory activity can be used to decolorize, deodorize, desalinate, distribute liquid, column chromatography (chromatography such as normal phase and / or reverse phase), etc., as long as physiological effects are not impaired. It is preferable to obtain it as a purified product (or a fraction) obtained by performing the fractionation / purification treatment according to 1.

一実施形態において、PSF1遺伝子発現抑制活性を有する組成物は、上述する抽出物を液々分配に供して得ることが好ましい。液々分配は、ヘキサン、クロロホルム、酢酸エチル、n-ブタノール、及び水等から選択される互いに混じり合わない2種類の液体溶媒を用いて、使用した溶媒により形成される上下2層の各溶媒に転溶する成分ごとに分画する方法である。これを繰り返すことにより、例えば、ヘキサン可溶画分、クロロホルム可溶画分、酢酸エチル可溶画分、n-ブタノール可溶画分、水可溶画分に分画することができる。好ましい使用溶媒は、ヘキサン、クロロホルム、含水アルコール(例えば、80%メタノール、80%エタノール)、及び水である。一実施形態において、ヘキサンと水(又は含水アルコール)とを用いて液々分配に供し、下層である水層(又は含水アルコール層)を回収し、更にクロロホルムを用いた液々分配に供し、下層であるクロロホルム層を回収することが好ましい。得られたクロロホルム層は水を用いて洗浄するのが好ましい。各液々分配は、複数回繰り返すことができ、例えば、2〜5回繰り返すことができる。   In one embodiment, the composition having PSF1 gene expression inhibitory activity is preferably obtained by subjecting the above-described extract to liquid-liquid distribution. Liquid-liquid distribution uses two kinds of liquid solvents that are not mixed with each other, selected from hexane, chloroform, ethyl acetate, n-butanol, water, etc., in each of the upper and lower layers formed by the solvent used. It is a method of fractionating each component to be dissolved. By repeating this, for example, it is possible to fractionate into a hexane soluble fraction, a chloroform soluble fraction, an ethyl acetate soluble fraction, an n-butanol soluble fraction, and a water soluble fraction. Preferred solvents used are hexane, chloroform, hydrous alcohol (eg, 80% methanol, 80% ethanol), and water. In one embodiment, hexane and water (or hydrous alcohol) are used for liquid partitioning, the lower aqueous layer (or hydrous alcohol layer) is recovered, and further used for liquid-liquid partitioning using chloroform. It is preferable to recover the chloroform layer. The obtained chloroform layer is preferably washed with water. Each liquid distribution can be repeated a plurality of times, for example, 2-5 times.

一実施形態において、PSF1遺伝子発現抑制活性を有する組成物は、上述する抽出物を順相クロマトグラフィーに供して得ることが好ましい。順相クロマトグラフィーでは、固定相にシリカゲルを用いることが好ましい。移動相(溶出溶媒)としては、低極性溶媒(例えば、トルエン、ヘキサン、クロロホルム、酢酸エチル、等)、アセトン及び低級アルコール(例えば、メタノール等)等の有機溶媒を用いることができる。単一溶媒、又は、2〜3種の混合溶媒を適宜使用し、低極性溶媒から高極性溶媒へと使用溶媒の極性を上げることにより、シリカゲルに吸着させた物質(抽出物等)を低極性物質から順次溶出して分画することができる。移動相としては、クロロホルム−メタノール系溶媒、又は、酢酸エチル−メタノール系溶媒の使用が好ましい。順相クロマトグラフィーを用いてPSF1遺伝子発現抑制活性を有する組成物を得る場合、上述する液々分配によって得られた画分(例えば、クロロホルム画分)をその試料として用いることが好ましい。   In one embodiment, the composition having PSF1 gene expression suppression activity is preferably obtained by subjecting the above-described extract to normal phase chromatography. In normal phase chromatography, it is preferable to use silica gel as the stationary phase. As the mobile phase (elution solvent), an organic solvent such as a low polarity solvent (for example, toluene, hexane, chloroform, ethyl acetate, etc.), acetone and a lower alcohol (for example, methanol, etc.) can be used. Use a single solvent or a mixed solvent of 2 to 3 types as appropriate, and increase the polarity of the solvent used from low to high polarity to lower the polarity of substances adsorbed on silica gel (extracts, etc.) Fractions can be eluted and eluted sequentially from the substance. As the mobile phase, use of a chloroform-methanol solvent or an ethyl acetate-methanol solvent is preferred. When obtaining a composition having PSF1 gene expression inhibitory activity using normal phase chromatography, it is preferable to use the fraction obtained by the liquid-liquid partition described above (for example, the chloroform fraction) as the sample.

一実施形態において、PSF1遺伝子発現抑制活性を有する組成物は、上述する抽出物を逆相クロマトグラフィーに供して得ることが好ましい。逆相クロマトグラフィーでは、固定相に低極性のもの(例えば、シリカゲルに炭素鎖数8のオクチル基、又は炭素鎖数18のオクタデシル基を結合させたもの。後者はODSと呼ばれる)を用いることが好ましい。移動相(溶出溶媒)としては、高極性のもの(例えば、水又は塩類含有水溶液、低級アルコール、及びアセトニトリル等の有機溶媒)を単一若しくは混合溶媒として用いることができる。例えば、移動相として、水−アルコール系を使用する場合、アルコール含量を順次上げることにより、高極性の物質から順に溶出し始め、分画物を得ることができる。移動相としては、水−メタノール系溶媒、又は、水−エタノール系溶媒の使用が好ましい。   In one embodiment, the composition having PSF1 gene expression inhibitory activity is preferably obtained by subjecting the above-described extract to reverse phase chromatography. In reverse-phase chromatography, a stationary phase having a low polarity (for example, an octyl group having 8 carbon chains or an octadecyl group having 18 carbon chains bonded to silica gel, the latter being called ODS) should be used. preferable. As the mobile phase (elution solvent), a highly polar one (for example, water or a salt-containing aqueous solution, a lower alcohol, and an organic solvent such as acetonitrile) can be used as a single or mixed solvent. For example, when a water-alcohol system is used as the mobile phase, it is possible to obtain a fraction by starting to elute from a highly polar substance in order by sequentially increasing the alcohol content. As the mobile phase, it is preferable to use a water-methanol solvent or a water-ethanol solvent.

順相クロマトグラフィーのバリエーションとして、親水性相互作用クロマトグラフィー等を用いることができる。固定相に表面を極性基(ジオール、アミド、スルホベタインなど)で修飾したシリカゲルを用い、移動相に水を含む溶媒を用いることにより、逆相クロマトグラフィーでは分離が困難な極性化合物を分離することが可能である。その他、混合物をその分子サイズにより分離する、分子ふるいクロマトグラフィーや、無機イオンや高極性分子をその電荷を利用して分離するイオン交換クロマトグラフィー等を利用してPSF1遺伝子発現抑制活性を有する組成物を得ることも可能である。   As a variation of normal phase chromatography, hydrophilic interaction chromatography or the like can be used. Separation of polar compounds that are difficult to separate by reversed-phase chromatography by using silica gel whose surface is modified with polar groups (diol, amide, sulfobetaine, etc.) for the stationary phase and a solvent containing water for the mobile phase Is possible. In addition, a composition having PSF1 gene expression inhibitory activity using molecular sieve chromatography that separates a mixture according to its molecular size, ion exchange chromatography that separates inorganic ions or highly polar molecules using their charge, and the like It is also possible to obtain

PSF1遺伝子発現の抑制活性は、任意の手法で測定することができるが、例えば、後述する実施例に示すように、PSF1遺伝子プロモーター制御下にEGFPを発現するように構築された株化細胞(例えば、LLC細胞)を用いて測定することができる。   The inhibitory activity of PSF1 gene expression can be measured by any technique. For example, as shown in the Examples described later, a cell line constructed to express EGFP under the control of the PSF1 gene promoter (for example, , LLC cells).

一実施形態において、PSF1遺伝子発現抑制活性を有する組成物は、タンパク質糖化抑制活性、線維芽細胞増殖促進活性、及びヒアルロン酸産生促進活性から成る群から選択される少なくとも1種の活性を有さないことが好ましく、好ましくは前記の群から選択される2種以上の活性を有さず、より好ましくは前記群に属する全ての活性を有さない。タンパク質糖化抑制活性は、後述する試験例5に記載される方法で測定することができる。線維芽細胞増殖促進活性は、後述する試験例6に記載される方法で測定することができる。ヒアルロン酸産生促進活性は、後述する試験例7に記載される方法で測定することができる。   In one embodiment, the composition having PSF1 gene expression inhibitory activity does not have at least one activity selected from the group consisting of protein saccharification inhibitory activity, fibroblast proliferation promoting activity, and hyaluronic acid production promoting activity. Preferably, it does not have two or more activities selected from said group, more preferably it does not have all the activities belonging to said group. Protein saccharification inhibiting activity can be measured by the method described in Test Example 5 described later. The fibroblast proliferation promoting activity can be measured by the method described in Test Example 6 described later. Hyaluronic acid production promoting activity can be measured by the method described in Test Example 7 described later.

一実施形態において、PSF1遺伝子発現抑制活性を有する組成物は、成分(I)及び成分(II)を含み、他の任意の成分を含むことができるが、実質的に成分(I)及び成分(II)のみを含むことが好ましい。他の実施形態において、PSF1遺伝子発現抑制活性を有する組成物は、成分(I)又は成分(II)を含むことが好ましい。   In one embodiment, the composition having PSF1 gene expression inhibitory activity comprises component (I) and component (II), and can comprise any other component, but substantially comprises component (I) and component ( It is preferable to include only II). In another embodiment, the composition having PSF1 gene expression inhibitory activity preferably contains component (I) or component (II).

タネツケバナの抽出物及びその各種分画物は、PSF1遺伝子発現抑制活性を有するため、PSF1遺伝子発現抑制剤、或いは、がんの予防又は治療剤として利用することが出来る。PSF1遺伝子発現抑制剤は、タネツケバナの抽出物またはその各種分画物自体(例えば、生薬)であっても、タネツケバナの抽出物またはその各種分画物と他の成分とを組み合わせた製剤(例えば、漢方薬)であっても良い。また、PSF1遺伝子発現抑制剤は、食品の形態であってもよい。食品には、一般食品及び機能性食品(例えば、健康食品、健康補助食品、病者用食品、栄養補助食品、保健機能食品、特定保健用食品、栄養機能食品等)が含まれる。   Since the extract of Solanum spp. And its various fractions have PSF1 gene expression inhibitory activity, they can be used as PSF1 gene expression inhibitors or cancer preventive or therapeutic agents. Even if PSF1 gene expression inhibitor is an extract of rapeseed or various fractions thereof (for example, herbal medicine), a combination of the extract of rapeseed or various fractions thereof and other components (for example, Chinese medicine). Further, the PSF1 gene expression inhibitor may be in the form of food. The food includes general foods and functional foods (for example, health foods, health supplements, sick foods, nutritional supplements, health functional foods, foods for specified health, and nutritional functional foods).

PSF1遺伝子発現抑制剤をがんの予防又は治療剤として利用する場合、がんの種類は特に制限されず、任意に選択することができる。例えば、がんは、脳腫瘍(例えば、神経膠腫)、乳がん、呼吸器がん(例えば、肺がん)、消化器がん(例えば、大腸がん、胃がん)、泌尿器系腫瘍(例えば、前立腺がん)、女性性器腫瘍(例えば、子宮頸がん)、及び血液腫瘍(例えば、白血病)から成る群より選択される1種以上であり得る。一実施形態において、予防又は治療の対象として好ましいがんの種類は、肺がん、子宮頸がん、大腸がん、胃がん、及び神経膠腫である。   When a PSF1 gene expression inhibitor is used as a preventive or therapeutic agent for cancer, the type of cancer is not particularly limited and can be arbitrarily selected. For example, cancer is brain tumor (eg, glioma), breast cancer, respiratory cancer (eg, lung cancer), digestive organ cancer (eg, colon cancer, stomach cancer), urinary system tumor (eg, prostate cancer). ), Female genital tumors (eg, cervical cancer), and blood tumors (eg, leukemia). In one embodiment, preferred cancer types for prevention or treatment are lung cancer, cervical cancer, colon cancer, gastric cancer, and glioma.

PSF1遺伝子発現抑制剤、或いは、がんの予防又は治療剤の形態は特に制限されず、例えば、液状、ペースト状、ゲル状、固体状、粉末状等の任意の形態とすることが出来る。使用目的に応じて、タネツケバナの抽出物またはその各種分画物は薬学的に許容可能な各種の担体と配合し、所望により溶剤、分散剤、乳化剤、緩衝剤、安定剤、賦形剤、結合剤、崩壊剤、滑沢剤等を加えて、錠剤、顆粒剤、散剤、粉末剤、カプセル剤等の固形剤、通常液剤、懸濁剤、乳剤等の液剤とすることができる。   The form of the PSF1 gene expression inhibitor or the preventive or therapeutic agent for cancer is not particularly limited, and can be any form such as liquid, paste, gel, solid, and powder. Depending on the purpose of use, the extract of spinach or its various fractions is blended with various pharmaceutically acceptable carriers, and optionally, a solvent, a dispersant, an emulsifier, a buffer, a stabilizer, an excipient, a binding Additives, disintegrants, lubricants, etc. can be added to form solids such as tablets, granules, powders, powders and capsules, and liquids such as normal solutions, suspensions and emulsions.

薬学的に許容可能な担体は、特に制限されないが、例えば、デンプン、乳糖、ショ糖、マンニトール、コーンスターチ、結晶セルロース、カルボキシメチルセルロース、ポリビニルアルコール、ポリビニルピロリドン、ポリビニルエーテル、エチルセルロース、アラビアゴム、トラガント、ゼラチン、ヒドロキシプロピルセルロース、デキストリン、ペクチン、ステアリン酸マグネシウム、タルク、ポリエチレングリコール、水、エチルアルコール、エチレングリコール、グリセリン等を挙げることが出来る。これらの1種又は2種以上の組合せを適宜選択して使用することが出来る。   The pharmaceutically acceptable carrier is not particularly limited. For example, starch, lactose, sucrose, mannitol, corn starch, crystalline cellulose, carboxymethyl cellulose, polyvinyl alcohol, polyvinyl pyrrolidone, polyvinyl ether, ethyl cellulose, gum arabic, tragacanth, gelatin , Hydroxypropylcellulose, dextrin, pectin, magnesium stearate, talc, polyethylene glycol, water, ethyl alcohol, ethylene glycol, glycerin and the like. One or a combination of two or more of these can be appropriately selected and used.

PSF1遺伝子発現抑制活性を有するタネツケバナの抽出物またはその各種分画物を医薬とする場合の配合量は、疾患の程度、患者年齢等によって相違し、実験的に定めることが好ましい。例えば、PSF1遺伝子発現抑制活性を有する抽出物を有効成分とする経口製剤の場合は、大人一人(60kg体重)当たり一日量として、5mg〜30g程度であり、20mgないし10g程度とすることが好ましく、1日1回ないし数回に分けて投与することができる。また、血管内投与の場合は、0.5mg〜3g程度、又は2mg〜1g程度とすることが好ましく、この場合も1日1回ないし数回に分けて注射により、または輸液とともに投与することができる。   The compounding amount in the case of using the extract of rapeseed having PSF1 gene expression inhibitory activity or various fractions thereof as a medicine varies depending on the degree of disease, patient age, etc., and is preferably determined experimentally. For example, in the case of an oral preparation containing an extract having PSF1 gene expression inhibitory activity as an active ingredient, the daily dose per adult (60 kg body weight) is about 5 mg to 30 g, preferably about 20 mg to 10 g. It can be administered once to several times a day. In addition, in the case of intravascular administration, it is preferably about 0.5 mg to 3 g, or about 2 mg to 1 g. In this case as well, it may be administered once or several times a day by injection or with an infusion solution. it can.

PSF1遺伝子発現抑制活性を有するタネツケバナの抽出物またはその各種分画物は、それを食品に配合することにより、当該抽出物またはその各種分画物が濃縮された食品とすることが出来る。食品中に濃縮した状態で配合される当該抽出物またはその各種分画物の量は、目的に応じて適宜設定することができ、例えば、抽出物またはその各種分画物の乾燥重量換算で、大人1日の摂取量が、0.1〜30gとなるように設定することが出来る。   The extract of the seed moth or the various fractions thereof having PSF1 gene expression inhibitory activity can be made into a food product in which the extract or the various fractions thereof are concentrated by blending it with the food. The amount of the extract or its various fractions blended in a concentrated state in the food can be appropriately set according to the purpose, for example, in terms of dry weight of the extract or its various fractions, Adult daily intake can be set to be 0.1-30 g.

以下、実施例により本発明についてさらに詳細に説明するが、本発明はこれらに制限されるものではない。   EXAMPLES Hereinafter, although an Example demonstrates this invention further in detail, this invention is not restrict | limited to these.

製造例1:タネツケバナの抽出物の調製
タネツケバナの全草の乾燥物500gに80%エタノール5Lを加え、50℃で8時間時々振盪し、次いで室温で一晩静置した。これを濾過し、濾液を減圧濃縮し、次いで一晩凍結乾燥させて、タネツケバナの抽出物96.6gを得た。
Production Example 1: Preparation of extract of radish seeds 5 L of 80% ethanol was added to 500 g of dried radish whole plant, shaken occasionally at 50 ° C. for 8 hours, and then allowed to stand overnight at room temperature. This was filtered, and the filtrate was concentrated under reduced pressure, and then freeze-dried overnight to obtain 96.6 g of the extract of Sedum.

製造例2:タネツケバナ抽出物からのクロロホルム分画物及び順相分画物(1)の調製
製造例1で得たタネツケバナ抽出物の一部(20.31g)を、メタノール1440mLに溶解(不溶物あり)させ、水360mLを追加し、撹拌し、ほぼ溶解させた。450mL, 360mL, 及び360mLのヘキサンを用い合計3回液々分配に付した。下層を、2700mL,及び 200mLのクロロホルムを用い合計2回液々分配に付した。得られたクロロホルム層を合し、水500mLを用いて洗浄、次いで減圧濃縮し、タネツケバナのクロロホルム分画物(1793mg)を得た。本クロロホルム分画物を、クロロホルムに少量のメタノールを加えた溶媒に溶解し、珪藻土約15mlを加え、濃縮乾固した。本分画物担持珪藻土を25mlの注射筒に入れ、下記カラムの手前に連結し、次の条件で中圧分取カラムクロマトに付した。カラム:Biotage ZIPTM80g Si (40-63μm) (シリカゲル80g、容積102ml)(バイオタージ・ジャパン株式会社製)、
流速:50ml/min、分画容量:25ml、検出:UV254nm
タイムモード:W 3分 クロロホルム:メタノール=100:0 (Fr.1〜6)
G 21分 クロロホルム:メタノール=100:0 → 90:10 (Fr.7〜48)
T 5分 クロロホルム:メタノール=90:10 (Fr.49〜58)
Fr.24〜29を合し、減圧濃縮し、タネツケバナの順相分画物(1)128mgを得た。
Production Example 2: Preparation of Chloroform Fraction and Normal Phase Fraction (1) from Seedling Extracts Dissolve a part (20.31 g) of Seedling extract obtained in Preparation Example 1 in 1440 mL of methanol (with insolubles) ), 360 mL of water was added, stirred and almost dissolved. 450 mL, 360 mL, and 360 mL of hexane were used for a total of three liquid-liquid distributions. The lower layer was subjected to liquid-liquid partitioning using 2700 mL and 200 mL of chloroform in total. The obtained chloroform layers were combined, washed with 500 mL of water, and then concentrated under reduced pressure, to obtain a chloroform fraction (1793 mg) of Solanum spp. This chloroform fraction was dissolved in a solvent obtained by adding a small amount of methanol to chloroform, and about 15 ml of diatomaceous earth was added and concentrated to dryness. This fraction-supporting diatomaceous earth was placed in a 25 ml syringe, connected in front of the following column, and subjected to medium pressure preparative column chromatography under the following conditions. Column: Biotage ZIP 80 g Si (40-63 μm) (silica gel 80 g, volume 102 ml) (manufactured by Biotage Japan KK),
Flow rate: 50ml / min, Fraction volume: 25ml, Detection: UV254nm
Time mode: W 3 minutes Chloroform: Methanol = 100: 0 (Fr.1-6)
G 21 minutes Chloroform: methanol = 100: 0 → 90:10 (Fr.7 ~ 48)
T 5 min Chloroform: methanol = 90: 10 (Fr.49-58)
Fr. 24-29 were combined and concentrated under reduced pressure to obtain 128 mg of a normal phase fraction (1) of Spodoptera spp.

このようにして得られたタネツケバナのクロロホルム分画物及び順相分画物(1)は、HPLC分析において、各々図1及び図2のクロマトグラムを示した。いずれのクロマトグラムにおいても、特徴的な2つのピーク(I)(保持時間11.1分付近)と(II)(保持時間14.6分付近)が確認された。HPLC測定条件は以下通りである。
カラム:InertSustainSwift C18( 3μm、4.6φX150mm) (ジーエルサイエンス株式会社製)
LCシステム:Shimadzu LC-6A system(株式会社島津製作所製)
カラムオーブン温度:40℃
流量:0.8 mL/min
検出:UV280nm
移動相:メタノール(A)、10mMギ酸アンモニウム溶液(B)
グラジエントプログラム:0→5min A(85%)、B(15%)、
5→20min A(85→100%)、B(15→0%)、
20→40min A(100%)、B(0%)、
40→45min A(100→85%)、B(0→15%)
The thus obtained chloroform fraction and normal-phase fraction (1) of Spodoptera spp. Showed the chromatograms of FIGS. 1 and 2, respectively, in HPLC analysis. In any chromatogram, two characteristic peaks (I) (retention time around 11.1 minutes) and (II) (retention time around 14.6 minutes) were confirmed. The HPLC measurement conditions are as follows.
Column: InertSustainSwift C18 (3μm, 4.6φX150mm) (manufactured by GL Sciences Inc.)
LC system: Shimadzu LC-6A system (manufactured by Shimadzu Corporation)
Column oven temperature: 40 ° C
Flow rate: 0.8 mL / min
Detection: UV280nm
Mobile phase: Methanol (A), 10 mM ammonium formate solution (B)
Gradient program: 0 → 5min A (85%), B (15%),
5 → 20min A (85 → 100%), B (15 → 0%),
20 → 40min A (100%), B (0%),
40 → 45min A (100 → 85%), B (0 → 15%)

製造例3:タネツケバナ抽出物の逆相分画物(2)の調製 タネツケバナの全草の乾燥物17gに80%メタノール170mlを加え、50℃で8時間時々振盪し、次いで室温で一晩静置した。これを濾過し、得られた濾液をODSカラムを用いたフラッシュカラムクロマトに付した。カラム(YMC-DispoPack AT(ODS-25: 40g)株式会社ワイエムシィ製) を80%メタノールで予め浸潤させた後、上記濾液を全量カラムに流し入れた。次いで、移動相として90%メタノールを120ml流した後、100%メタノールで溶出を続けた。100%メタノールに切り替えた時点から各60ml づつ分画し、画分3〜5を合して濃縮乾固し、タネツケバナの逆相分画物(2)66mgを得た。 Production Example 3: Preparation of reverse-phase fraction (2) of the extract of the radish seedling Add 170 ml of 80% methanol to 17 g of the dried plant of the vinegar, and shake it occasionally at 50 ° C for 8 hours, and then leave it overnight at room temperature. did. This was filtered, and the obtained filtrate was subjected to flash column chromatography using an ODS column. A column (YMC-DispoPack AT (ODS-25: 40 g), manufactured by YMC Co., Ltd.) was preinfiltrated with 80% methanol in advance, and the filtrate was poured into the column. Next, 120 ml of 90% methanol was passed as a mobile phase, and elution was continued with 100% methanol. Fractions were fractionated 60 ml each from the time of switching to 100% methanol, and fractions 3 to 5 were combined and concentrated to dryness to obtain 66 mg of reverse-phase fraction (2) of Satsuma vaginalis.

このようにして得られたタネツケバナの逆相分画物(2)は、HPLC分析の結果、図3のクロマトグラムを示した。上述のクロロホルム分画物及び順送分画物と同様に、特徴的な2つのピーク(I)(保持時間11.1分付近)と(II)(保持時間14.6分付近)が確認された。HPLC条件は上記製造例2における分析条件と同じである。   As a result of the HPLC analysis, the reverse phase fraction (2) of S. cerevisiae thus obtained showed the chromatogram of FIG. Two characteristic peaks (I) (retention time around 11.1 minutes) and (II) (retention time around 14.6 minutes) were confirmed in the same manner as the above-mentioned chloroform fraction and progressive fraction. It was. The HPLC conditions are the same as the analysis conditions in Production Example 2.

試験例1:細胞形態に基づく細胞死誘導性の検討
PSF1遺伝子プロモーター制御下にEGFPを発現する肺がん細胞株 LLC (Cancer Res 70, 1215-1224, 2010)を、大阪大学から入手した。この細胞株を10%胎仔牛由来血清(FCS)、100 units/mlのペニシリン、100 μg/mlのストレプトマイシンを添加したDMEM中で、5% CO2、37℃の条件下で培養した。このようにして培養したLLCを10細胞ずつ6well培養皿に播種し、2mlの上記培養液中で24時間培養した。上記製造例1、2及び3で得たタネツケバナ抽出物、そのクロロホルム分画物、順相分画物(1)及び逆相分画物(2)をdimethyl sulfoxide (DMSO; ナカライ テスク社製)に溶解し、最終濃度が100μg/mlとなるようにLLCを培養したウェルに添加した。なお、順相分画物(1)のみ最終濃度を30μg/mlとした。ネガティブコントロールには、DMSOのみを2μl添加した。ポジティブコントロールには、製造例1と同様の方法でRhus taitensisの葉から得た抽出物を最終濃度が100μg/mlとなるように添加した。その後、前記培養条件で16時間培養し、細胞の形態を顕微鏡で観察した。結果を図4に示す。ネガティブコントロールの細胞像と同様に、タネツケバナ抽出物を添加した細胞の形態は特に変化なく、細胞死が誘導されていないことが示された(図4Aの1、及び2)。一方、Rhus taitensisの抽出物を添加した細胞では、細胞死特有の形態の変化が見られ、細胞死の誘導が確認された(図4Aの3)。また、タネツケバナ抽出物のクロロホルム分画物、順相分画物(1)及び逆相分画物(2)によっても細胞死は誘導されないことが確認された (図4Bの1〜3)。
Test Example 1: Examination of cell death induction based on cell morphology
A lung cancer cell line LLC (Cancer Res 70, 1215-1224, 2010) expressing EGFP under the control of the PSF1 gene promoter was obtained from Osaka University. This cell line was cultured in DMEM supplemented with 10% fetal calf serum (FCS), 100 units / ml penicillin, and 100 μg / ml streptomycin under conditions of 5% CO 2 and 37 ° C. The LLC cultured in this manner was seeded in a 6-well culture dish by 10 4 cells, and cultured in 2 ml of the above culture medium for 24 hours. Extracts from the seed crabs obtained in Production Examples 1, 2, and 3 above, their chloroform fractions, normal phase fractions (1) and reverse phase fractions (2) into dimethyl sulfoxide (DMSO; manufactured by Nacalai Tesque) Dissolved and added to wells where LLC was cultured to a final concentration of 100 μg / ml. Only the normal phase fraction (1) had a final concentration of 30 μg / ml. As a negative control, 2 μl of DMSO alone was added. For the positive control, an extract obtained from leaves of Rhus taitensis was added in the same manner as in Production Example 1 so that the final concentration was 100 μg / ml. Thereafter, the cells were cultured for 16 hours under the above culture conditions, and the morphology of the cells was observed with a microscope. The results are shown in FIG. Similar to the cell image of the negative control, the morphology of the cells to which the extract of S. cerevisiae was added was not particularly changed, indicating that cell death was not induced (1 and 2 in FIG. 4A). On the other hand, in the cells to which the extract of Rhus taitensis was added, a change in morphology peculiar to cell death was observed, and induction of cell death was confirmed (3 in FIG. 4A). It was also confirmed that cell death was not induced by the chloroform fraction, normal phase fraction (1), and reverse phase fraction (2) of the extract of the seed moth (Fig. 4B, 1 to 3).

試験例2:PSF1遺伝子発現抑制作用の検討
試験例1と同じ条件で培養したLLC細胞を5%FCSを含むリン酸緩衝液(PBS)で1回洗浄した後、500μlの5%FCSを含むPBSに分散させた。そこに、propidium iodide(PI:BD Bioscience社製)を2μl加えて穏やかに混和し、室温、暗所で15分間反応させた。その後、細胞をフローサイトメーター(FACS Calibur:Becton Dickinson社製)に供し、GFP蛍光強度及びPI蛍光強度についてフローサイトメトリー法を用いて解析した(図5)。ネガティブコントロールの細胞ではほとんどがGFP陽性PI陰性である(図5Aの1)。これは、細胞が生存しており、PSF1の遺伝子が転写され続けていることを意味する。一方、ポジティブコントロールであるRhus taitensisの抽出物を添加した細胞では、PI強度が103を越えるまで上昇し、細胞死が誘導されたことが確認された(図5Aの3)。これらと比較して、タネツケバナの抽出物を添加した細胞では、PIの強度はさほど上昇せず、GFP強度は低下することが確認された(図5Aの2)。また、タネツケバナ抽出物のクロロホルム分画物、順相分画物(1)及び逆相分画物(2)においても、若干PI強度は高くなったが、103を越えるまでには至らず、タネツケバナ抽出物と同様の結果が得られた(図5Bの1〜3)。これらの結果から、タネツケバナ抽出物、そのクロロホルム分画物、順相分画物(1)及び逆相分画物(2)によって、16時間という培養時間内では細胞死は誘導されないがPSF1遺伝子のプロモーター活性が抑制されることが判明した。
Test Example 2: Examination of PSF1 gene expression inhibitory action LLC cells cultured under the same conditions as in Test Example 1 were washed once with a phosphate buffer solution (PBS) containing 5% FCS, and then PBS containing 500 μl of 5% FCS. Dispersed. Thereto, 2 μl of propidium iodide (PI: manufactured by BD Bioscience) was added and gently mixed, and allowed to react at room temperature in the dark for 15 minutes. Thereafter, the cells were subjected to a flow cytometer (FACS Calibur: manufactured by Becton Dickinson), and analyzed for GFP fluorescence intensity and PI fluorescence intensity using a flow cytometry method (FIG. 5). Most of the negative control cells are GFP positive PI negative (1 in FIG. 5A). This means that the cells are alive and the PSF1 gene continues to be transcribed. On the other hand, in cells to which an extract of Rhus taitensis, which is a positive control, was added, the PI intensity increased until exceeding 10 3 , confirming that cell death was induced (3 in FIG. 5A). Compared with these, it was confirmed that in the cells to which the extract of Aedes spp. Was added, the PI intensity did not increase so much and the GFP intensity decreased (2 in FIG. 5A). Also, in the chloroform fraction, the normal phase fraction (1) and the reverse phase fraction (2) of the extract of Solanum spp., The PI intensity was slightly higher, but did not reach 10 3 , The same result as that of the extract of the spider was obtained (1 to 3 in FIG. 5B). From these results, cell death was not induced in the culture time of 16 hours, but the PSF1 gene was not induced in the culture time of 16 hours by the extract of Rhizoma spp., Its chloroform fraction, normal phase fraction (1) and reverse phase fraction (2). It was found that promoter activity was suppressed.

なお、図1〜3のクロマトグラムで確認された2つのピーク(I)と(II)の化合物は、それぞれ、単独で3μg/mlの濃度で細胞障害性を与えることなく、PSF1遺伝子発現抑制作用(80〜90%抑制)を示すことが確認された。   The compounds of the two peaks (I) and (II) confirmed in the chromatograms of FIGS. 1 to 3 each inhibit PSF1 gene expression without causing cytotoxicity alone at a concentration of 3 μg / ml. (80-90% suppression) was confirmed.

試験例3:リアルタイムPCRを用いたPSF1発現抑制作用の検討
定量リアルタイムPCR を用いて、LLC細胞,ヒトglioma細胞 (U87MG), breast cancer細胞 (MCF7), lung cancer細胞 (EBC1), gastric cancer細胞 (HGC-27), colon cancer細胞 (HT29), prostate cancer細胞 (PC3), cervical cancer細胞 (HELA),及びleukemia細胞 (MEG01)におけるPSF1遺伝子の発現に対する抽出物及び各分画物の影響を検討した。試験例1と同様の条件で各細胞を培養し、タネツケバナ抽出物、そのクロロホルム分画物、順相分画物(1)及び逆相分画物(2)で処理したがん細胞から、kit (Qiagen社製)を用いて、トータルRNAを得た。尚、LLC細胞については、クロロホルム分画物のみ最終濃度は300μg/mlとした。次に、ExScript RT reagent Kit(タカラ社製)を用いて、回収した各全RNAからcDNAをそれぞれ合成し、得られたcDNAを用いて、PSF1の発現をリアルタイムPCR法によって解析した。比較対照として解糖系酵素であるGAPDH(Glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase)のmRNAの発現量も測定した。リアルタイムPCRは、Stratagene Mx300P (Stratagene社製)を用いて実施した。マウスPSF1をPCRで合成する際のプライマーとして、以下の配列を用いた。
Test Example 3: Examination of PSF1 expression inhibitory action using real-time PCR Using quantitative real-time PCR, LLC cells, human glioma cells (U87MG), breast cancer cells (MCF7), lung cancer cells (EBC1), gastric cancer cells ( HGC-27), colon cancer cells (HT29), prostate cancer cells (PC3), cervical cancer cells (HELA), and leukemia cells (MEG01) were examined for the effects of extracts and fractions on the expression of PSF1 gene. . Each cell was cultured under the same conditions as in Test Example 1, and from the cancer cells treated with the extract of Solanum spp., Its chloroform fraction, normal phase fraction (1) and reverse phase fraction (2), kit Total RNA was obtained using Qiagen. For LLC cells, only the chloroform fraction had a final concentration of 300 μg / ml. Next, cDNA was synthesized from each collected RNA using ExScript RT reagent Kit (manufactured by Takara), and the expression of PSF1 was analyzed by real-time PCR using the obtained cDNA. As a comparative control, the expression level of GAPDH (Glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase) mRNA, which is a glycolytic enzyme, was also measured. Real-time PCR was performed using Stratagene Mx300P (Stratagene). The following sequences were used as primers when synthesizing mouse PSF1 by PCR.

5´- CCGGTTGCTTCGGATTAGAG -3´(配列番号1)
5´- CTCCCAGCGACCTCATGTAA -3´(配列番号2)
マウスGAPDHをPCRで合成するためのプライマーとして以下の配列を用いた。
5'- CCGGTTGCTTCGGATTAGAG-3 '(SEQ ID NO: 1)
5'- CTCCCAGCGACCTCATGTAA-3 '(SEQ ID NO: 2)
The following sequences were used as primers for synthesizing mouse GAPDH by PCR.

5´- AACTTTGGCATTGTGGAAGG -3´(配列番号3)
5´- GGATGCAGGGATGATGTTCT -3´(配列番号4)
ヒトPSF1をPCRで合成する際のプライマーとして、以下の配列を用いた。
5′-AACTTTGGCATTGTGGAAGG-3 ′ (SEQ ID NO: 3)
5'- GGATGCAGGGATGATGTTCT -3 '(SEQ ID NO: 4)
The following sequences were used as primers for the synthesis of human PSF1 by PCR.

5´- ACCTGTATGACCGCTTGCTTC -3´(配列番号5)
5´- TTCATCTCCTCCCAGTGAC-3´(配列番号6)
ヒトGAPDHをPCRで合成する際のプライマーとして、以下の配列を用いた。
5′-ACCTGTATGACCGCTTGCTTC-3 ′ (SEQ ID NO: 5)
5'-TTCATCTCCTCCCAGTGAC-3 '(SEQ ID NO: 6)
The following sequences were used as primers for the synthesis of human GAPDH by PCR.

5´- ACCCAGAAGACTGTGGATGG -3´(配列番号7)
5´- CCCTGTTGCTGTAGCCAAAT -3´(配列番号8)
5'-ACCCAGAAGACTGTGGATGG-3 '(SEQ ID NO: 7)
5'- CCCTGTTGCTGTAGCCAAAT-3 '(SEQ ID NO: 8)

測定結果を図6(マウスLLC細胞)及び図7(ヒトがん細胞)に示す。図6及び7に示される結果から、タネツケバナの抽出物、そのクロロホルム分画物、順相分画物(1)及び逆相分画物(2)は、マウス及びヒトのがん細胞におけるPSF1の発現を抑制することが確認された。特に、ヒトがん細胞を用いた解析結果から、タネツケバナの抽出物及びこれらの分画物は、脳腫瘍、乳がん、呼吸器がん、消化器がん、泌尿器系腫瘍、女性性器腫瘍、そして血液腫瘍などへの効果が確認され、あらゆる種類のがん種に対してPSF1発現抑制効果を有することが判明した。この結果は、タネツケバナの抽出物、そのクロロホルム分画物、順相分画物(1)及び逆相分画物(2)は、がん細胞及びがん幹細胞においてPSF1の発現を抑制し、細胞周期を停止させることでがんの休眠化を誘導することを意味する。これまでの解析によれば、PSF1の遺伝子はがんの種類に関係なく発現が亢進しているため、タネツケバナの抽出物、そのクロロホルム分画物、順相分画物(1)及び逆相分画物(2)はあらゆるがんの治療に有効であると考えられる。また、がんの悪性化及び重篤化の予防にも有効であることが期待される。   The measurement results are shown in FIG. 6 (mouse LLC cells) and FIG. 7 (human cancer cells). From the results shown in FIGS. 6 and 7, the extract of Solanum spp., Its chloroform fraction, normal-phase fraction (1) and reverse-phase fraction (2) showed that PSF1 in mouse and human cancer cells. It was confirmed that the expression was suppressed. In particular, from the results of analysis using human cancer cells, the extract of Spodoptera and its fractions are brain tumor, breast cancer, respiratory cancer, digestive cancer, urological tumor, female genital tumor, and blood tumor. As a result, it was found that PSF1 expression was suppressed against all types of cancer. This result shows that the extract of Spodoptera, its chloroform fraction, normal phase fraction (1) and reverse phase fraction (2) suppresses the expression of PSF1 in cancer cells and cancer stem cells. It means to induce the dormancy of cancer by stopping the cycle. According to the analysis so far, the expression of PSF1 gene is enhanced regardless of the type of cancer, so that the extract of Solanum spp., Its chloroform fraction, normal-phase fraction (1) and reverse-phase fraction The painting (2) is considered effective for the treatment of all types of cancer. It is also expected to be effective in preventing malignant and serious cancer.

試験例4:マウス肺がん発生モデルを用いたin vivo活性評価の検討
KLN205細胞(マウス扁平上皮肺癌細胞)は独立行政法人理化学研究所から入手した。この細胞を、10%FBS (Hyclon社製)、Non-Essential Amino Acids (Lonza社製)、ペニシリン(100units/ml ;Invitrogen社製)、及びストレプトマイシン (100μg/ml; Invitrogen社製)を含有するEagle MEM(日水製薬社)を用いて培養した。80%コンフレントまで培養後、Trypsin/EDTA (Invitrogen社製)により回収し、PBSにて2.0x106細胞/mLに調製した。
Test Example 4: Examination of in vivo activity evaluation using mouse lung cancer development model
KLN205 cells (mouse squamous lung cancer cells) were obtained from RIKEN. The cells were treated with Eagle containing 10% FBS (Hyclon), Non-Essential Amino Acids (Lonza), penicillin (100 units / ml; Invitrogen), and streptomycin (100 μg / ml; Invitrogen). Culture was performed using MEM (Nissui Pharmaceutical). After culturing to 80% confluent, the cells were collected with Trypsin / EDTA (Invitrogen) and adjusted to 2.0 × 10 6 cells / mL with PBS.

7週齢のDBA/2雌性マウス(日本SLC社製)を清水実験材料株式会社より購入し、3日間予備飼育を行い馴化させた。マウスは、温度22±3℃、湿度55±15%、常時オールフレッシュ方式換気、照明12hr/day(午前6時より午後6時)に設定した飼育室にて、プラスチック製飼育ケージに3匹ずつ収容し飼育した。また、飼料はラボMRストック(日本農産工業)、水は水道水を自動給水装置で自由摂取させた。   Seven week old DBA / 2 female mice (Japan SLC) were purchased from Shimizu Experimental Materials Co., Ltd. Three mice in plastic breeding cages in a breeding room set at a temperature of 22 ± 3 ° C, humidity of 55 ± 15%, all-fresh ventilation, and 12hr / day lighting (6am to 6pm) Housed and raised. In addition, the feed was freely ingested by laboratory MR stock (Nippon Agricultural Industry), and tap water was automatically consumed by water using an automatic water supply device.

ソムノペンチル(共立製薬株式会社)にて麻酔を施したマウスの尾静脈より、調製したKLN205細胞を100μL(2.0x105細胞)注射した。注射5日後からDMSOおよびPBSにて10mg/mLに調製したタネツケバナの抽出物を腹腔内へマウス1匹あたり200μL投与した。なおDMSOの終濃度は5%であった。各抽出物は1日おきに7回投与し、最終投与から2日後にソムノペンチルにて麻酔を施した後、肺を摘出しパラホルムアルデヒド(和光純薬株式会社)にて組織の固定をおこなった。肺がん発症の評価は、固定した肺を実体顕微鏡下で観察し、1肺表面に確認できる腫瘍塊を合計することで行った。 100 μL (2.0 × 10 5 cells) of the prepared KLN205 cells were injected from the tail vein of a mouse that had been anesthetized with Somnopentyl (Kyoritsu Pharmaceutical Co., Ltd.). From 5 days after the injection, 200 μL of a perennial extract of DM was prepared intraperitoneally with DMSO and PBS at 10 mg / mL. The final concentration of DMSO was 5%. Each extract was administered 7 times every other day, and anesthesia was performed with somnopentyl two days after the final administration, and then the lungs were removed and the tissues were fixed with paraformaldehyde (Wako Pure Chemical Industries, Ltd.). Evaluation of the onset of lung cancer was performed by observing the fixed lung under a stereomicroscope and totaling the tumor mass that can be confirmed on the surface of one lung.

評価結果を図8に示す。図8に示される結果から明らかなように、コントロールと比べてタネツケバナの抽出物により肺に形成される腫瘍塊の数が減少することが判明した。この解析系では、一個のがん細胞が一つの腫瘍塊を形成することが予想される、がん幹細胞による腫瘍形成のモデルと考えられている(T. Kaneko et al., : KLN205 - a murine lung carcinoma cell line. In Vitro, 16 (1980), pp. 884-892)。つまり、PSF1の発現を抑制する抽出物は、がん幹細胞の旺盛な自己複製を抑制し、がんの発症を抑制することが示唆された。また、がんがすでに発症していたとしても、がん幹細胞の自己複製を抑制すればがん細胞の増殖を抑制できることから、がんの予防だけでなくがんの治療にもタネツケバナ抽出物を利用できることが示唆された。   The evaluation results are shown in FIG. As is clear from the results shown in FIG. 8, it was found that the number of tumor masses formed in the lung is reduced by the extract of S. cerevisiae as compared with the control. This analysis system is considered to be a model of tumor formation by cancer stem cells in which one cancer cell is expected to form one tumor mass (T. Kaneko et al.,: KLN205-a murine lung carcinoma cell line. In Vitro, 16 (1980), pp. 884-892). That is, it was suggested that the extract which suppresses the expression of PSF1 suppresses active self-renewal of cancer stem cells and suppresses the onset of cancer. In addition, even if cancer has already developed, suppression of cancer stem cell self-renewal can suppress the growth of cancer cells. It was suggested that it could be used.

試験例5:蛋白質の糖化抑制作用の検討
96ウエルプレートにリン酸緩衝生理食塩水(PBS;phosphate buffer saline)で調製した1/6Mグルコース6-リン酸二ナトリウム水和物、10mg/mLヒト血清アルブミンおよびDMSOで調整した試験物質[タネツケバナ抽出物のクロロホルム分画物、順相分画物(1)及び逆相分画物(2)] を最終濃度4mg/mlで添加し、11日間、37℃でインキュベートした。インキュベート後、ELISA法により、最終糖化産物のひとつであるCML[Ne-(carboxymethyl)lysine]産生量をCircuLexTM CML/Ne (carboxymethyl) lysine ELISA Kit (CycLex社製)で測定した。試験物質溶液を添加していない対照(コントロール)のCML [カルボキシメチルリジン(carboxymethyllysine)]を100としたときの各試料溶液のCML量を図9に示す。ここで、CMLとは、終末糖化産物であるadvanced glycosylation end product (AGEs)のひとつであり、糖化のマーカーとなるものである。
Test Example 5: Examination of protein glycation-inhibiting action
Test substance prepared with 1 / 6M glucose 6-phosphate disodium hydrate, 10mg / mL human serum albumin and DMSO prepared in phosphate buffer saline (PBS) in a 96-well plate The chloroform fraction, normal phase fraction (1), and reverse phase fraction (2)] were added at a final concentration of 4 mg / ml and incubated at 37 ° C. for 11 days. After the incubation, the production amount of CML [Ne- (carboxymethyl) lysine], which is one of the final glycation products, was measured by ELISA method using a CircuitLexTM CML / Ne (carboxymethyl) lysine ELISA Kit (CycLex). FIG. 9 shows the amount of CML in each sample solution when the control CML [carboxymethyllysine] to which no test substance solution is added is 100. Here, CML is one of advanced glycosylation end products (AGEs), which are end glycation products, and serves as a glycation marker.

図9に示される結果から明らかなように、タネツケバナ抽出物のクロロホルム分画物、順相分画物(1)及び逆相分画物(2)にはCML産生を抑制する作用はなく、むしろその産生を促進することが判明した。   As is clear from the results shown in FIG. 9, the chloroform fraction, normal phase fraction (1) and reverse phase fraction (2) of the extract of Sedumella do not have the effect of suppressing CML production, but rather It was found to promote its production.

試験例6:線維芽細胞増殖作用の検討
ヒト0才児包皮由来真皮線維芽細胞を24ウエルプレートに6X104細胞/ウエルで播種した。0.5%牛血清を添加したDMEM培地(Sigma社製)1mlで一晩培養後、試験物質 [タネツケバナ抽出物のクロロホルム分画物、順相分画物(1)及び逆相分画物(2)]をDMSOに溶解した溶液を最終濃度0.003質量%となるように添加し、2日間培養後に細胞数を計測した。図10は、試験物質溶液を添加していない対照(コントロール)を100としたときの相対値を算定して示した。図10に示される結果から明らかなように、本発明のPSF1の発現を抑制する分画物である、タネツケバナ抽出物のクロロホルム分画物、順相分画物(1)及び逆相分画物(2)には、線維芽細胞を増殖させる効果はないことが判明した。
Test Example 6: Examination of fibroblast proliferation action Human 0-year-old foreskin-derived dermal fibroblasts were seeded in a 24-well plate at 6 × 10 4 cells / well. After overnight culture in 1 ml of DMEM medium (manufactured by Sigma) supplemented with 0.5% bovine serum, the test substance [chloroform fraction, normal phase fraction (1) and reverse phase fraction (2) Was dissolved in DMSO to a final concentration of 0.003% by mass, and the number of cells was counted after 2 days of culture. FIG. 10 shows the relative values calculated when the control (control) to which no test substance solution is added is taken as 100. As is clear from the results shown in FIG. 10, the chloroform fraction, normal phase fraction (1) and reverse phase fraction of the extract of the seed moth, which are fractions that suppress the expression of PSF1 of the present invention. It was found that (2) had no effect of growing fibroblasts.

試験例7:ヒアルロン酸産生促進作用の検討
24ウエルプレートに、5X104細胞/ウエルの濃度でヒト真皮線維芽細胞を播種し、コンフレントになった時点で、試験物質 [タネツケバナ抽出物のクロロホルム分画物、順相分画物(1)及び逆相分画物(2)]をDMSOに溶解した溶液を10μg/mlの濃度で含む、DMEM(0.5%牛血清含有)培地で培養した。試験物質添加2時間後に、培養上清を回収し、ELISA法にてヒアルロン酸産生量を測定した。対照群はDMSOのみを添加した培養上清を用いた。測定にはHyaluronan assay kit (生化学バイオビジネス社製)を用いた。結果は、試験物質溶液を添加していない対照(コントロール)について測定されたヒアルロナン(ヒアルロン酸と同義)の量に対する各試験物質を添加した場合の相対値を算定して図11に示した。図11に示される結果から明らかなように、タネツケバナ抽出物のクロロホルム分画物、順相分画物(1)及び逆相分画物(2)には、ヒアルロン酸産生を促進させる効果はないか、若しくは逆に抑制的に作用することが判明した。
Test Example 7: Examination of hyaluronic acid production promoting action
When 24-well plates were seeded with human dermal fibroblasts at a concentration of 5 × 10 4 cells / well and became confluent, the test substance [chloroform fraction, extract of normal phase (1) and normal phase fraction (1) and The reverse phase fraction (2)] was dissolved in DMSO at a concentration of 10 μg / ml and cultured in a DMEM (containing 0.5% bovine serum) medium. Two hours after the addition of the test substance, the culture supernatant was collected and the amount of hyaluronic acid produced was measured by ELISA. As a control group, a culture supernatant to which only DMSO was added was used. Hyaluronan assay kit (manufactured by Seikagaku Biobusiness) was used for the measurement. The results are shown in FIG. 11 by calculating the relative value when each test substance was added to the amount of hyaluronan (synonymous with hyaluronic acid) measured for the control to which no test substance solution was added. As is clear from the results shown in FIG. 11, the chloroform fraction, normal phase fraction (1) and reverse phase fraction (2) of the extract of Solanum spp. Have no effect of promoting hyaluronic acid production. Or, conversely, it was found to act in a suppressive manner.

試験例8:タネツケバナの抽出条件の検討
下記の表1に示す各種の抽出溶媒10mlを用い、上記製造例1と同様の手順で、タネツケバナの葉1g(乾燥重量)から抽出物を調製した。但し、「還流」の記載があるものは、還流温度で1時間還流抽出を行った。各抽出物について、試験例1及び2と同様の試験を行い、細胞死誘導活性はなく、PSF1遺伝子発現抑制活性を有するものについて、活性ありと判断した。その結果を表に示す。
Test Example 8: Examination of Extraction Conditions for Seeds of Seedling An extract was prepared from 1 g (dry weight) of Seedling leaves using the same procedure as in Production Example 1 using 10 ml of various extraction solvents shown in Table 1 below. However, what is described as “reflux” was subjected to reflux extraction for 1 hour at the reflux temperature. About each extract, the test similar to Test Example 1 and 2 was done, and there was no cell death induction activity and it was judged that there was activity about what has PSF1 gene expression suppression activity. The results are shown in the table.

試験例9:オオバタネツケバナを用いた試験
上記製造例1と同様の方法により、80%エタノール20mlを用いて、オオバタネツケバナ(Cardamine regeliana)の全草の乾燥物2グラムから得られた濾液の一部10mlを乾固させ、抽出物267mgを得た。この抽出物を用いて、上記試験例1及び2と同様の試験を行ったところ、即時の細胞死誘導活性はなく、PSF1遺伝子の発現抑制活性が確認された。
Test Example 9: Test using Aedes crispana Part of filtrate obtained from 2 grams of dried plant of Cardamine regeliana using 20 ml of 80% ethanol by the same method as in Production Example 1 above. 10 ml was dried and 267 mg of extract was obtained. Using this extract, the same test as in Test Examples 1 and 2 was performed. As a result, there was no immediate cell death inducing activity, and PSF1 gene expression suppression activity was confirmed.

Claims (12)

下記(A)〜(F)の条件でのHPLC分析において、保持時間11.1分にピークを有する成分(I)、及び/又は、保持時間14.6分にピークを有する成分(II)を含有し、PSF1遺伝子発現抑制活性を有する組成物:
(A)HPLCカラム:オクタデシル化シリカゲル担体(粒子径3μm)を充填した内径4.6mm、長さ150mmのカラム
(B)HPLCカラムオーブン温度:40℃
(C)流速:0.8ml/分
(D)検出:190〜400nm
(E)移動相:(a)メタノール及び(b)10mMギ酸アンモニウム水溶液
(F)グラジエント条件:85%の(a)と15%の(b)との混合溶媒を5分間保持し、その後15分かけて混合溶媒中の(a)の濃度を85%から100%に直線的に上昇させ、その後(a)の濃度を100%に維持。
In HPLC analysis under the following conditions (A) to (F), component (I) having a peak at a retention time of 11.1 minutes and / or component (II) having a peak at a retention time of 14.6 minutes A composition containing and having PSF1 gene expression inhibitory activity:
(A) HPLC column: a column having an inner diameter of 4.6 mm and a length of 150 mm packed with an octadecylated silica gel carrier (particle diameter: 3 μm) (B) HPLC column oven temperature: 40 ° C.
(C) Flow rate: 0.8 ml / min (D) Detection: 190-400 nm
(E) Mobile phase: (a) Methanol and (b) 10 mM ammonium formate aqueous solution (F) Gradient condition: 85% of (a) and 15% of (b) mixed solvent is held for 5 minutes, then 15 minutes The concentration of (a) in the mixed solvent is increased linearly from 85% to 100%, and then the concentration of (a) is maintained at 100%.
PSF1遺伝子発現抑制剤である、請求項1に記載の組成物。 The composition according to claim 1, which is a PSF1 gene expression inhibitor. がんの予防又は治療剤である、請求項1又は2に記載の組成物。 The composition according to claim 1 or 2, which is a preventive or therapeutic agent for cancer. がんが、脳腫瘍、乳がん、呼吸器がん、消化器がん、泌尿器系腫瘍、女性性器腫瘍、及び血液腫瘍から成る群より選択される1種以上である、請求項3に記載の組成物。 The composition according to claim 3, wherein the cancer is one or more selected from the group consisting of brain tumor, breast cancer, respiratory cancer, digestive organ cancer, urological tumor, female genital tumor, and blood tumor. . タンパク質糖化抑制活性、線維芽細胞増殖促進活性、及びヒアルロン酸産生促進活性を有さない、請求項1〜4のいずれかに記載の組成物。 The composition according to any one of claims 1 to 4, which has no protein glycation-inhibiting activity, fibroblast proliferation promoting activity, and hyaluronic acid production promoting activity. 前記成分(I)及び(II)がタネツケバナに由来する、請求項1〜5のいずれかに記載の組成物。 The composition in any one of Claims 1-5 in which the said component (I) and (II) originates in a spruce. タネツケバナを含水低級アルコールで抽出し、得られた抽出液を逆相カラムクロマトグラフィーに供して得られる画分である、請求項1〜6のいずれかに記載の組成物。 The composition according to any one of claims 1 to 6, wherein the composition is a fraction obtained by extracting Satsuma vaginalis with hydrous lower alcohol and subjecting the obtained extract to reverse phase column chromatography. 前記逆相ゲルカラムクロマトグラフィーの移動相として低級アルコール又はアセトニトリルを使用する、請求項7に記載の組成物。 The composition according to claim 7, wherein a lower alcohol or acetonitrile is used as a mobile phase of the reverse phase gel column chromatography. 下記(1)〜(3)を含む方法によって得られる、請求項1〜6のいずれかに記載の組成物:
(1)タネツケバナを低級アルコールで抽出し、抽出液を回収すること、
(2)(1)で得られた抽出液をヘキサンとの液々分配に供し、下層を回収すること、
(3)(2)で得られた下層をクロロホルムとの液々分配に供し、クロロホルム画分を回収すること。
The composition in any one of Claims 1-6 obtained by the method containing following (1)-(3):
(1) Extracting the seedling with lower alcohol and recovering the extract,
(2) subjecting the extract obtained in (1) to liquid partition with hexane and collecting the lower layer;
(3) Subject the lower layer obtained in (2) to liquid-liquid partition with chloroform and collect the chloroform fraction.
前記方法が、更に下記(4)を含む、請求項9に記載の組成物:
(4)(3)で得られたクロロホルム画分を、移動相として低極性溶媒及び低級アルコールの混合液を用いたシリカゲルカラムクロマトグラフィーに供すること。
The composition according to claim 9, wherein the method further comprises:
(4) Use the chloroform fraction obtained in (3) for silica gel column chromatography using a mixture of a low polarity solvent and a lower alcohol as a mobile phase.
請求項1〜10のいずれかに記載の組成物が濃縮された食品。 The foodstuff in which the composition in any one of Claims 1-10 was concentrated. PSF1遺伝子を発現抑制させるための請求項1〜10のいずれかに記載の組成物の使用(但し、ヒトに対する医療行為を除く)。 Use of the composition according to any one of claims 1 to 10 for suppressing expression of PSF1 gene (except for medical practice for humans).
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