JP2016119915A - 肝実質細胞中のp450タンパク質のアイソフォームの質量分析による定量 - Google Patents
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Abstract
【解決手段】この方法は、薬物を、ミクロソームを含む生物学的サンプルとインキュベートし、次いで少なくとも1つのチトクロームP450アイソフォームを定量することを含んでもよい。アイソフォームは、2B6アイソフォーム、3A4アイソフォーム、1A2アイソフォームおよび3A5アイソフォームから選択することができる。いくつかの実施形態では、この方法は、液体クロマトグラフィー/タンデム質量分析法(LC−MSMS)を使用する。定量された値は、閾値と比較してもよく、定量された値が閾値を超えない場合、薬物を許容可能なCYP誘導能を示すものと決定することができる。また、単離されたペプチドも提供する。
【選択図】なし
Description
この出願は、2009年10月17日に出願された米国仮特許出願第61/252,648号および2009年10月16日に出願された同第61/252,430号(これらの両方は、それらの全体が参考として本明細書に援用される)の最先出願日の利益を主張する。
特定の実施形態では、例えば以下が提供される:
(項目1)
配列番号1、配列番号2、配列番号3または配列番号4のアミノ酸配列を含む、チトクロームP450(CYP)アイソフォームCYP2B6に特異的な単離されたペプチド。
(項目2)
配列番号5、配列番号6または配列番号7のアミノ酸配列を含む、チトクロームP450(CYP)アイソフォームCYP3A4に特異的な単離されたペプチド。
(項目3)
配列番号8、配列番号9、配列番号10、配列番号11、配列番号12、配列番号13または配列番号14のアミノ酸配列を含む、チトクロームP450(CYP)アイソフォームCYP1A2に特異的な単離されたペプチド。
(項目4)
配列番号15、配列番号16または配列番号17のアミノ酸配列を含む、チトクロームP450(CYP)アイソフォームCYP3A5に特異的な単離されたペプチド。
(項目5)
サンプル中のチトクロームP450(CYP)の少なくとも1つのアイソフォームの量を決定するための方法であって、質量分析法技術の使用を含み、チトクロームP450の前記少なくとも1つのアイソフォームはCYP2B6、CYP3A4、CYP1A2およびCYP3A5の少なくとも1つを含む、方法。
(項目6)
前記質量分析法技術はタンデム質量分析法(MS/MS)技術を含む、項目5に記載の方法。
(項目7)
前記質量分析法技術は液体クロマトグラフィー/タンデム質量分析法(LC−MS/MS)技術を含む、項目5に記載の方法。
(項目8)
前記LC−MS/MS技術は三連四重極型装置、および多重反応モニタリング(MRM)の使用を含む、項目7に記載の方法。
(項目9)
前記決定は、三連四重極型装置および多重反応モニタリング(MRM)を用いて、配列番号1、配列番号2または配列番号3のアミノ酸配列を含むチトクロームP450(CYP)アイソフォームCYP2B6に特異的な単離されたペプチドを検出することにより、前記サンプル中のCYP2B6の量を決定することを含む、項目5に記載の方法。
(項目10)
前記単離されたペプチドは配列番号1のアミノ酸配列を含み、前記方法は約548/911、約548/681または約548/566のm/z値を有するプレカーサー−プロダクトイオン対トランジションをモニターすることを含む、項目9に記載の方法。
(項目11)
前記単離されたペプチドは配列番号2のアミノ酸配列を含み、前記方法は約494/777、約494/437または約494/874のm/z値を有するプレカーサー−プロダクトイオン対トランジションをモニターすることを含む、項目9に記載の方法。
(項目12)
前記単離されたペプチドは配列番号3のアミノ酸配列を含み、前記方法は約421/508、約421/607または約421/694のm/z値を有するプレカーサー−プロダクトイオン対トランジションをモニターすることを含む、項目9に記載の方法。
(項目13)
前記単離されたペプチドは配列番号4のアミノ酸配列を含み、前記方法は約479/499、約479/614または約479/727のm/z値を有するプレカーサー−プロダクトイオン対トランジションをモニターすることを含む、項目9に記載の方法。
(項目14)
前記決定は、三連四重極型装置および多重反応モニタリング(MRM)を用いて、配列番号5、配列番号6または配列番号7のアミノ酸配列を含むチトクロームP450(CYP)アイソフォームCYP3A4に特異的な単離されたペプチドを検出することにより、前記サンプル中のCYP3A4の量を決定することを含む、項目5に記載の方法。
(項目15)
前記単離されたペプチドは配列番号5のアミノ酸配列を含み、前記方法は約440/549、約440/650または約440/532のm/z値を有するプレカーサー−プロダクトイオン対トランジションをモニターすることを含む、項目14に記載の方法。
(項目16)
前記単離されたペプチドは配列番号6のアミノ酸配列を含み、前記方法は、約704/794、約704/929、約564/689、約564/745または約564/790のm/z値を有するプレカーサー−プロダクトイオン対トランジションをモニターすることを含む、項目14に記載の方法。
(項目17)
前記単離されたペプチドは配列番号7のアミノ酸配列を含み、前記方法は、約798/819、約798/932または約798/1004のm/z値を有するプレカーサー−プロダクトイオン対トランジションをモニターすることを含む、項目14に記載の方法。
(項目18)
前記決定は、三連四重極型装置および多重反応モニタリング(MRM)を用いて、配列番号8、配列番号9、配列番号10、配列番号11、配列番号12、配列番号13または配列番号14のアミノ酸配列を含むチトクロームP450(CYP)アイソフォームCYP1A2に特異的な単離されたペプチドを検出することにより、前記サンプル中のCYP1A2の量を決定することを含む、項目5に記載の方法。
(項目19)
前記単離されたペプチドは配列番号8のアミノ酸配列を含み、前記方法は、約432/636、約432/535または約432/478のm/z値を有するプレカーサー−プロダクトイオン対トランジションをモニターすることを含む、項目18に記載の方法。
(項目20)
前記単離されたペプチドは配列番号9のアミノ酸配列を含み、前記方法は、約482/800、約482/628または約482/743のm/z値を有するプレカーサー−プロダクトイオン対トランジションをモニターすることを含む、項目18に記載の方法。
(項目21)
前記単離されたペプチドは配列番号10のアミノ酸配列を含み、前記方法は、約491/721、約491/834または約491/535のm/z値を有するプレカーサー−プロダクトイオン対トランジションをモニターすることを含む、項目18に記載の方法。
(項目22)
前記単離されたペプチドは配列番号11のアミノ酸配列を含み、前記方法は、約528/501、約528/614または約528/727のm/z値を有するプレカーサー−プロダクトイオン対トランジションをモニターすることを含む、項目18に記載の方法。
(項目23)
前記単離されたペプチドは配列番号12のアミノ酸配列を含み、前記方法は、約571/783、約571/971、約571/1028、約381/587、約381/474または約381/375のm/z値を有するプレカーサー−プロダクトイオン対トランジションをモニターすることを含む、項目18に記載の方法。
(項目24)
前記単離されたペプチドは配列番号13のアミノ酸配列を含み、前記方法は、約695/695、約695/837または約695/950のm/z値を有するプレカーサー−プロダクトイオン対トランジションをモニターすることを含む、項目18に記載の方法。
(項目25)
前記単離されたペプチドは配列番号14のアミノ酸配列を含み、前記方法は、約536/795、約536/584または約536/698のm/z値を有するプレカーサー−プロダクトイオン対トランジションをモニターすることを含む、項目18に記載の方法。
(項目26)
前記決定は、三連四重極型装置および多重反応モニタリング(MRM)を用いて、配列番号15、配列番号16または配列番号17のアミノ酸配列を含むチトクロームP450(CYP)アイソフォームCYP3A5に特異的な単離されたペプチドを検出することにより、前記サンプル中のCYP3A5の量を決定することを含む、項目5に記載の方法。
(項目27)
前記単離されたペプチドは配列番号15のアミノ酸配列を含み、前記方法は約468/581、約468/679または約468/736のm/z値を有するプレカーサー−プロダクトイオン対トランジションをモニターすることを含む、項目26に記載の方法。
(項目28)
前記単離されたペプチドは配列番号16のアミノ酸配列を含み、前記方法は約470/494、約470/608または約470/722のm/z値を有するプレカーサー−プロダクトイオン対トランジションをモニターすることを含む、項目26に記載の方法。
(項目29)
前記単離されたペプチドは配列番号17のアミノ酸配列を含み、前記方法は約589/747、約589/696または約589/647のm/z値を有するプレカーサー−プロダクトイオン対トランジションをモニターすることを含む、項目26に記載の方法。
(項目30)
チトクロームP450(CYP)誘導について薬物をスクリーニングするための方法であって、
前記薬物を、ミクロソームを含む生物学的サンプルとインキュベートすること、
液体クロマトグラフィー/タンデム質量分析法(LC−MSMS)を用いて2B6アイソフォーム、3A4アイソフォーム、1A2アイソフォームおよび3A5アイソフォームの群から選択される少なくとも1つのチトクロームP450アイソフォームを定量すること、
定量された値を閾値と比較すること、
前記定量された値が前記閾値を超えない場合、前記薬物が許容可能なCYP誘導能を有するものと決定すること
を含む、方法。
(項目31)
前記ミクロソームを含む生物学的サンプルはヒトに由来する、項目28に記載の方法。
(項目32)
配列番号1〜17のアミノ酸配列の1つまたは複数を含む、CYPアイソフォームCYP2B6、CYP3A4、CYP1A2またはCYP3A5に特異的な1つまたは複数の単離されたペプチドを含む、キット。
(項目33)
配列番号1、配列番号2、配列番号3または配列番号4の1つまたは複数のアミノ酸配列を含む、項目32に記載のキット。
(項目34)
配列番号5、配列番号6または配列番号7の1つまたは複数のアミノ酸配列を含む、項目32に記載のキット。
(項目35)
配列番号8、配列番号9、配列番号10、配列番号11、配列番号12、配列番号13または配列番号14の1つまたは複数のアミノ酸配列を含む、項目32に記載のキット。
(項目36)
配列番号15、配列番号16または配列番号17の1つまたは複数のアミノ酸配列を含む、項目32に記載のキット。
(項目37)
ホモジニアスアッセイを含む、項目32に記載のキット。
(項目38)
前記キットを用いてアッセイを実施するための質量分析機器の設定として使用されるトランジション対に関する情報を含む、項目32に記載のキット。
CYP1A2、CYP2B6およびCYP3A4の発現および活性を高めるため、それぞれ原型肝酵素誘導剤3−メチルコラントレン(3−MC、2μM)、フェノバルビタール(PB、1mM)またはリファンピシン(RIF、10μM)でヒト肝実質細胞の初代培養を72時間処理した。本教示のCYPの定量法を用いて、肝酵素誘導剤による処理後にサンプル中のCYPの量を決定した。さらに、選択的基質(それぞれフェナセチン、ブプロピオンおよびテストステロン)の代謝産物生成によりCYP活性を測定し、qRT−PCR(Taqman(登録商標)、Applied Biosystems)によりmRNAを測定した。
ミクロソームの細胞下画分を、処理した肝実質細胞をホモジナイゼーション緩衝液(50mMのトリス−HCl、pH7.0、150mMのKCl、2mMのEDTA)に溶解し、続いて9,000×g、4℃で20分間遠心分離することにより調製した。次いで上清(S9画分)を100,000×g、4℃で60分間遠心した。得られたミクロソームのペレットを0.25Mのスクロースに懸濁し、解析まで−80℃で保存した。
100ulのミクロソーム調製物それぞれに2%SDS5ul、続いて50mMのTCEP10ulを加え、60℃で1時間インキュベートした。0.1MのMMTS5ulを加え、室温で10分間インキュベートした。次いで100mMのトリス(pH=8.50)100ul、続いて50ugのトリプシンを加え、得られた溶液を37℃で一晩消化した。消化物に1ngの同位体標識された合成ペプチドをそれぞれ加え、LC−MSにより解析した。
C18 Jupiter Proteo 50×2.0mmカラム(Phenomenex of Torrance,California)と連結したAgilent 1100システム(Agilent of Santa Clara,California)を用いて、クロマトグラフィーを行った。グラジエントは、15分かけて5〜40%Bとし、Aは、2%ACN、0.1%ギ酸からなり、Bは、90%ACN、10%H2O、0.1%ギ酸からなっていた。流量は、700μL/minであった。
サンプルは、Turbo VTMソースおよびAnalyst 1.5を用いて、Applied Biosystems MDS SCIEX 4000 QTRAPTM LC/MS/MSシステムで解析した。定量には、各トランジションのデュエルタイムを最大にするため、スケジュールドMRM(sMRM)を使用した。
定量データは、Applied Biosystems,LLC of Foster
City,California.から入手することができるMultiQuantTM 1.2ソフトウェアを用いて処理した。
図6は、RNAアッセイ、CYP活性アッセイ(図中では「酵素活性アッセイ」と記載)、および本教示のCYP定量法(図中では「タンパク質アッセイ」と記載)により観察されたCYP2B6の発現の変化を比較したグラフを示す。3−MCは、ビヒクル対照であり、基礎レベルのCYP2B6を誘導する。PBは、核内受容体CARの活性化によるCYP2B6の原型誘導剤である。RIFも、CYP2B6の周知の誘導剤である。図示したように、CYP活性アッセイおよびRNAアッセイで観察されたタンパク質発現の変化は、本教示のCYP定量法により観察された発現の変化に概ね似ている。
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