JP2016023182A - Medicine for treating cancer - Google Patents

Medicine for treating cancer Download PDF

Info

Publication number
JP2016023182A
JP2016023182A JP2014151278A JP2014151278A JP2016023182A JP 2016023182 A JP2016023182 A JP 2016023182A JP 2014151278 A JP2014151278 A JP 2014151278A JP 2014151278 A JP2014151278 A JP 2014151278A JP 2016023182 A JP2016023182 A JP 2016023182A
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
shrna
cancer
dna
treatment
cells
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Pending
Application number
JP2014151278A
Other languages
Japanese (ja)
Inventor
雅史 井戸川
Masashi Idogawa
雅史 井戸川
智子 大箸
Tomoko Ohashi
智子 大箸
泰史 佐々木
Yasushi Sasaki
泰史 佐々木
隆至 時野
Takashi Tokino
隆至 時野
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Sapporo Medical University
Original Assignee
Sapporo Medical University
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Sapporo Medical University filed Critical Sapporo Medical University
Priority to JP2014151278A priority Critical patent/JP2016023182A/en
Publication of JP2016023182A publication Critical patent/JP2016023182A/en
Pending legal-status Critical Current

Links

Landscapes

  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)

Abstract

PROBLEM TO BE SOLVED: To reduce a resistance in cancer particularly cancer which is resistant to p53 treatment without sufficient therapeutic effect on the cancer where p53 is independently expressed, and to enhance the therapeutic effect on cancer of p53.SOLUTION: The invention provides a medicine for treating cancer which is resistant to the treatment by only p53, in order to be used in combination with p53 and/or agents inducing p53. The medicine contains a specific nucleic acid.SELECTED DRAWING: Figure 4

Description

本発明は、p53および/もしくはp53を誘導する物質と組み合わせて使用するための、またはp53および/もしくはp53を誘導する物質と組み合わせた、ある特定の核酸を含有する、がんを処置するための医薬に関する。   The present invention is for use in combination with a substance that induces p53 and / or p53, or for treating cancer containing certain nucleic acids in combination with a substance that induces p53 and / or p53. It relates to medicine.

腫瘍抑制因子として知られるp53は、ストレス条件下に置かれた細胞において細胞周期停止を引き起こし、アポトーシスを誘導する。ヒトに生じる全てのがんの約半数でp53遺伝子の突然変異に起因するp53タンパク質の異常が認められており(非特許文献1)、p53の欠失および活性を失った変異p53の存在はがんの進展や治療抵抗性に大きく関与すると考えられている。例えば、p53の欠失または変異が、発がんを引き起こすのみならず化学療法や放射線治療に対する抵抗性にも関与していることが報告されている(非特許文献2)。   P53, known as a tumor suppressor, causes cell cycle arrest and induces apoptosis in cells placed under stress conditions. About half of all cancers that occur in humans, p53 protein abnormalities due to mutations in the p53 gene have been observed (Non-patent Document 1). It is thought to be greatly involved in cancer development and treatment resistance. For example, it has been reported that deletion or mutation of p53 not only causes carcinogenesis, but is also involved in resistance to chemotherapy and radiotherapy (Non-patent Document 2).

ウイルスベクターを用いてp53を発現させることでがんを治療する遺伝子治療は、いくつかが臨床試験段階にあるものの、必ずしも全てのがんにおいて良好な治療成績を示すわけではない(非特許文献3および4)。   Gene therapy that treats cancer by expressing p53 using a viral vector, although some are in clinical trials, does not necessarily show good therapeutic results in all cancers (Non-patent Document 3). And 4).

近年、p53を用いたがんの遺伝子治療をより有効なものとするための技術開発が進められている。その1つとして、本発明者らは、p53の標的遺伝子であってアポトーシス阻害的に働くp21の発現を抑制する人工miRNAとp53とを共発現するアデノウイルスベクターを開発しており、p53を単独で発現させた場合よりも強いアポトーシス誘導効果および腫瘍退縮効果を有することを確認している(非特許文献5、特許文献1)。   In recent years, technological development for making cancer gene therapy using p53 more effective has been promoted. As one of them, the present inventors have developed an adenoviral vector that co-expresses p53 and an artificial miRNA that suppresses the expression of p21, which is a target gene of p53 and acts to inhibit apoptosis. It has been confirmed that it has a stronger apoptosis-inducing effect and tumor regression effect than when expressed in (Non-patent Document 5, Patent Document 1).

国際公開第2009/125607号パンフレットInternational Publication No. 2009/125607 Pamphlet

Vogelstein B.et al.,Nature.2000;408(6810):307−310Vogelstein B.E. et al. , Nature. 2000; 408 (6810): 307-310 Brosh R.et al.,Nature reviews Cancer.2009;9(10):701−713Brosh R.D. et al. , Nature reviews Cancer. 2009; 9 (10): 701-713 Roth J.A.et al.,Nat Med.1996;2(9):985−991Roth J.H. A. et al. Nat Med. 1996; 2 (9): 985-991. Tazawa H.et al.,Expert opinion on biological therapy.2013;13(11):1569−1583Tazawa H.M. et al. , Expert opinion on biologic therapy. 2013; 13 (11): 1569-1583 Idogawa M.et al.,Clin Cancer Res.2009;15(11):3725−3732Idogawa M. et al. et al. , Clin Cancer Res. 2009; 15 (11): 3725-3732

本発明は、がん、特にp53を単独で発現させた場合には十分な治療効果が認められないp53抵抗性を示すがんにおいて、その抵抗性を減弱させ、p53の有するがん治療効果を増強することを目的とする。   The present invention reduces the resistance of cancer, particularly cancer showing p53 resistance for which sufficient therapeutic effect is not observed when p53 is expressed alone, and has the cancer therapeutic effect of p53. The purpose is to strengthen.

本発明者らは、ある種の核酸が、p53抵抗性のがんにおいてもp53にアポトーシス誘導作用を発揮させることを見出し、下記の各発明を完成させた。   The present inventors have found that certain nucleic acids cause p53 to exert an apoptosis-inducing action even in p53-resistant cancer, and have completed the following inventions.

(1)p53および/またはp53を誘導する物質と組み合わせて使用するための、配列番号1〜28のいずれかに示される塩基配列を含むDNAおよび/または該DNAによりコードされるRNAを含有する、p53のみによる処置に抵抗性を有するがんを処置するための医薬。
(2)
p53および/またはp53を誘導する物質と、
配列番号1〜28のいずれかに示される塩基配列を含むDNAおよび/または該DNAによりコードされるRNA
とを含有する、p53のみによる処置に抵抗性を有するがんを処置するための医薬。
(3)p53および/またはp53を誘導する物質が、p53タンパク質およびその機能的等価物、これらをコードする核酸、ならびに変異p53の機能を回復させる物質よりなる群から選択される1以上の物質である、(1)または(2)に記載の医薬。
(4)前記DNAが、
siRNAを構成する二本鎖RNAのうちのいずれか一方のRNA鎖、または
該RNA鎖とその相補的RNA鎖とがヘアピンループを形成することができる一本鎖RNA部分によって連結された構造を有するshRNA
をコードする、(1)から(3)のいずれかに記載の医薬。
(5)前記DNAが配列番号1に示される塩基配列を含む、(1)から(4)のいずれかに記載の医薬。
(6)前記shRNAが、配列番号29に示される塩基配列を有するDNAによりコードされる、(4)に記載の医薬。
(7)p53を活性化する処置とさらに組み合わせて使用される、(1)から(6)のいずれかに記載の医薬。
(8)p53を活性化する処置が、がんの放射線治療または化学療法である、(7)に記載の医薬。
(9)p53を活性化する物質と、(1)から(6)のいずれかに記載の医薬とを組み合わせた、組み合わせ医薬。
(10)p53を活性化する物質が、化学療法のための抗がん剤である、(9)に記載の医薬。
(1) containing DNA containing the base sequence shown in any one of SEQ ID NOs: 1 to 28 and / or RNA encoded by the DNA for use in combination with p53 and / or a substance that induces p53. A medicament for treating cancer resistant to treatment with p53 alone.
(2)
a substance that induces p53 and / or p53;
DNA comprising the base sequence shown in any one of SEQ ID NOs: 1 to 28 and / or RNA encoded by the DNA
And a medicament for treating cancer resistant to treatment with p53 alone.
(3) The substance that induces p53 and / or p53 is one or more substances selected from the group consisting of p53 protein and functional equivalents thereof, nucleic acids encoding them, and substances that restore the function of mutant p53. The pharmaceutical according to (1) or (2).
(4) The DNA is
One of the double-stranded RNAs constituting the siRNA, or a structure in which the RNA strand and its complementary RNA strand are linked by a single-stranded RNA portion capable of forming a hairpin loop shRNA
The medicament according to any one of (1) to (3), which encodes
(5) The medicament according to any one of (1) to (4), wherein the DNA comprises the base sequence represented by SEQ ID NO: 1.
(6) The medicament according to (4), wherein the shRNA is encoded by a DNA having the base sequence represented by SEQ ID NO: 29.
(7) The medicament according to any one of (1) to (6), further used in combination with a treatment that activates p53.
(8) The medicament according to (7), wherein the treatment that activates p53 is cancer radiotherapy or chemotherapy.
(9) A combined medicine in which a substance that activates p53 and the medicine according to any one of (1) to (6) are combined.
(10) The medicament according to (9), wherein the substance that activates p53 is an anticancer agent for chemotherapy.

本発明によれば、がんのp53抵抗性を減弱させ、p53のがん治療効果を増強することができる。したがって、従来のp53単独療法では困難であったp53抵抗性がんを効果的に処置することが可能になる。さらに、本発明の医薬はウイルスベクターの使用を必須としないことから、ウイルス治療の欠点や副作用を回避し得るという利点も有する。   According to the present invention, p53 resistance of cancer can be attenuated and the cancer therapeutic effect of p53 can be enhanced. Therefore, it becomes possible to effectively treat p53 resistant cancer, which has been difficult with conventional p53 monotherapy. Furthermore, since the medicament of the present invention does not require the use of a viral vector, it has the advantage that the drawbacks and side effects of virus treatment can be avoided.

shRNAライブラリーのスクリーニング工程を示す概略図である。It is the schematic which shows the screening process of shRNA library. shRNAライブラリーのスクリーニング結果を示す図である。(A)p53を導入したHuh−7細胞およびPanc−1細胞中のshRNA集団について、cDNAマイクロアレイによる定量を行った結果を示す図である。p53導入細胞における各shRNAの量を、LacZを導入したコントロール細胞におけるshRNAの量に対してプロットした。(B)Huh−7細胞およびPanc−1細胞において選択されたshRNAの重複を表すベン図である。It is a figure which shows the screening result of shRNA library. (A) It is a figure which shows the result of having quantified by cDNA microarray about the shRNA population in Huh-7 cell and Panc-1 cell which introduce | transduced p53. The amount of each shRNA in the p53-introduced cells was plotted against the amount of shRNA in the control cells into which LacZ had been introduced. (B) Venn diagram representing duplication of selected shRNAs in Huh-7 and Panc-1 cells. p53誘導性アポトーシスに対するshRNA−58335の効果を示す図である。(A)shRNA−58335またはshRNAコントロール配列を安定発現するHuh−7細胞にAd−p53またはAd−LacZを感染させ、アドリアマイシン処理を行った場合の、Sub−G期にある細胞のパーセンテージを示す図である。エラーバーは標準誤差を、*はt−検定でp値が<0.05であることを表す。(B)Ad−p53またはAd−LacZを感染させたHuh−7細胞の代表的なフローサイトメトリーを示す図である。Sub−G期にある細胞のパーセンテージが図中に示される。(C)shRNA−58335またはshRNAコントロール配列を安定発現するHuh−7細胞にAd−p53またはAd−LacZを感染させ、アドリアマイシン処理を行った場合の、全細胞溶解液を用いたウェスタンブロット分析の結果を示す図である。(D)shRNA−58335またはshRNAコントロール配列を安定発現するSW480細胞にAd−p53またはAd−LacZを感染させた場合の、全細胞溶解液を用いたウェスタンブロット分析の結果を示す図である。図中、左から、レーン1:shRNA−58335+Ad−p53、レーン2:shRNAコントロール配列+Ad−p53、レーン3:shRNA−58335+Ad−LacZ、レーン4:shRNAコントロール配列+Ad−LacZである。It is a figure which shows the effect of shRNA-58335 with respect to p53 induced apoptosis. (A) Shows the percentage of cells in Sub-G 1 phase when Huh-7 cells stably expressing shRNA-58335 or shRNA control sequences were infected with Ad-p53 or Ad-LacZ and treated with adriamycin. FIG. Error bars indicate standard error, * indicates p-value <0.05 in t-test. (B) Representative flow cytometry of Huh-7 cells infected with Ad-p53 or Ad-LacZ. The percentage of cells in the Sub-G 1 phase is shown in the figure. (C) Results of Western blot analysis using whole cell lysate when Huh-7 cells stably expressing shRNA-58335 or shRNA control sequence were infected with Ad-p53 or Ad-LacZ and treated with adriamycin FIG. (D) It is a figure which shows the result of the western blotting analysis using the whole cell lysate when SW480 cell which stably expresses shRNA-58335 or shRNA control sequence is infected with Ad-p53 or Ad-LacZ. From the left in the figure, lane 1: shRNA-58335 + Ad-p53, lane 2: shRNA control sequence + Ad-p53, lane 3: shRNA-58335 + Ad-LacZ, lane 4: shRNA control sequence + Ad-LacZ. shRNA−58335のがん治療効果を示す図である。shRNA−58335またはshRNAコントロール配列を安定発現するHuh−7細胞を移植して腫瘍を形成させたマウスに、Ad−p53またはAd−LacZを合計3回(図中の矢印)、腫瘍内注射した。第0日の腫瘍体積に対する相対的な腫瘍体積が図に示される。図中の白丸はAd−p53注射群、黒丸はAd−LacZ注射群である。データは3匹のマウスの平均値である。エラーバーは標準誤差を、*はt−検定でp値が<0.05であることを表す。It is a figure which shows the cancer treatment effect of shRNA-58335. Mice transplanted with Huh-7 cells stably expressing shRNA-58335 or shRNA control sequences to form tumors were injected intra-tumorally with Ad-p53 or Ad-LacZ three times in total (arrows in the figure). Tumor volume relative to day 0 tumor volume is shown in the figure. The white circle in the figure is the Ad-p53 injection group, and the black circle is the Ad-LacZ injection group. Data are average values of 3 mice. Error bars indicate standard error, * indicates p-value <0.05 in t-test. アデノウイルスによるp53導入に代えて、PRIMA−1を使用してp53の機能を回復させた場合の、p53誘導性アポトーシスに対するshRNA−58335の効果を示す図である。(A)shRNA−58335またはshRNAコントロール配列を安定発現するHuh−7細胞に対してPRIMA−1および/またはアドリアマイシン処理を行った場合の、Sub−G期にある細胞のパーセンテージを示す図である。(B)PRIMA−1および/またはアドリアマイシン処理を行ったHuh−7細胞の代表的なフローサイトメトリーを示す図である。Sub−G期にある細胞のパーセンテージが図中に示される。(C)shRNA−58335またはshRNAコントロール配列を安定発現するPanc−1細胞に対してPRIMA−1および/またはVP−16処理を行った場合の、Sub−G期にある細胞のパーセンテージを示す図である。(A)および(C)において、エラーバーは標準誤差を、*はt−検定でp値が<0.05であることを表す。It is a figure which shows the effect of shRNA-58335 with respect to p53 induced apoptosis when it replaces with p53 introduction | transduction by adenovirus, and the function of p53 is restored | restored using PRIMA-1. (A) shows the percentage of cells in the Sub-G 1 phase when Huma-7 cells stably expressing shRNA-58335 or shRNA control sequences were treated with PRIMA-1 and / or adriamycin. . (B) Representative flow cytometry of Huh-7 cells treated with PRIMA-1 and / or adriamycin. The percentage of cells in the Sub-G 1 phase is shown in the figure. (C) Percentage of cells in Sub-G 1 phase when Panc-1 cells stably expressing shRNA-58335 or shRNA control sequence were treated with PRIMA-1 and / or VP-16. It is. In (A) and (C), error bars indicate standard error, and * indicates that the p-value is <0.05 by t-test.

本発明の一実施形態は、p53および/またはp53を誘導する物質と組み合わせて使用するための、ある特定の核酸を含有する、p53のみによる処置に抵抗性を有するがんを処置するための医薬に関する。   One embodiment of the present invention is a medicament for treating cancer resistant to treatment with p53 alone, containing a specific nucleic acid, for use in combination with p53 and / or a substance that induces p53 About.

(1)p53
本発明におけるp53とは、正常な機能を有するp53タンパク質、すなわち、野生型のp53タンパク質をいう。かかる正常な機能を有するp53は、DNA損傷、低酸素状態などのストレス条件下で活性化され、四量体を形成する。その四量体が標的遺伝子の転写調節領域に特異的に結合することで、それらの遺伝子の発現を誘導し、細胞周期停止、アポトーシス誘導、DNA修復などの腫瘍抑制作用を引き起こす。
(1) p53
In the present invention, p53 refers to a p53 protein having a normal function, that is, a wild-type p53 protein. P53 having such a normal function is activated under stress conditions such as DNA damage and hypoxia to form a tetramer. The tetramer specifically binds to the transcriptional regulatory region of the target gene, thereby inducing the expression of those genes and causing tumor suppressive effects such as cell cycle arrest, apoptosis induction, and DNA repair.

また、本発明において用いられるp53は、上述の正常な機能を有するp53タンパク質に加えて、これらと機能的に等価である、すなわち細胞または生体内でp53と同等の機能を発揮することができる機能的等価物を包含する。p53の機能的等価物としては、具体的に、p53ファミリーのタンパク質、ならびにそれらのアイソフォーム、機能的断片およびキメラタンパク質、ならびにそれらの機能的変異体を挙げることができる。   Further, p53 used in the present invention is functionally equivalent to the above-described p53 protein having normal functions, that is, a function capable of exhibiting a function equivalent to p53 in cells or in vivo. Including the equivalents. Specific functional equivalents of p53 can include p53 family proteins, and isoforms, functional fragments and chimeric proteins thereof, and functional variants thereof.

p53ファミリーとしては、p53、p63およびp73が挙げられる。これらをコードする核酸の塩基配列は、公的に利用可能なデータベース、例えばGenBank(http://www.ncbi.nlm.nih.gov/)などにおいて開示されており、例えば、アクセッション番号NM_000546(ヒトp53)、NM_003722(ヒトp63)、NM_005427(ヒトp73)、NM_001003210(イヌp53)、NM_001009294(ネコp53)、XM_545249(イヌp63)、AY069989(イヌp73)などとして入手することができる。   Examples of the p53 family include p53, p63 and p73. Nucleotide sequences of nucleic acids encoding them are disclosed in publicly available databases, such as GenBank (http://www.ncbi.nlm.nih.gov/), for example, accession number NM_000546 ( Human p53), NM_003722 (human p63), NM_005427 (human p73), NM_001003210 (dog p53), NM_001009294 (cat p53), XM_545249 (dog p63), AY069989 (dog p73), and the like.

p53ファミリーのタンパク質には多数のアイソフォームが存在する。本発明におけるp53ファミリーのタンパク質のアイソフォームとしては、例えば、p53およびp63についてはα、βおよびγ、p73についてはα、β、γ、δ、ε、θ、ζ、ηおよびη1を挙げることができる。   There are many isoforms of the p53 family of proteins. Examples of isoforms of p53 family proteins in the present invention include α, β and γ for p53 and p63, and α, β, γ, δ, ε, θ, ζ, η and η1 for p73. it can.

さらに、p53ファミリーのタンパク質は、N末端側から順に、転写活性およびMDM2との結合を制御するトランス活性化ドメイン(Transactivation Domain,TAD)、標的遺伝子のプロモーター部位に結合するDNA結合ドメイン(DNA−binding Domain,DBD)ならびに四量体形成に関与するオリゴマー形成ドメイン(Oligomerization Domain,OD)という3つのドメイン構造を有している(例えば、Wei J.et al.,J Nucleic Acids.2012;2012:687359などを参照)。したがって、本発明において用いられるp53ファミリーの機能的断片は、これらのドメインを少なくとも1つ含むp53ファミリータンパク質の断片であって、p53タンパク質と機能的に等価である断片である。   Furthermore, proteins from the p53 family are, in order from the N-terminal side, a transactivation domain (Transactivation Domain, TAD) that controls transcriptional activity and binding to MDM2, and a DNA binding domain (DNA-binding) that binds to the promoter site of the target gene. (Domain, DBD) and an oligomerization domain involved in tetramer formation (Oligomerization Domain, OD) (see, for example, Wei J. et al., J Nucleic Acids. 2012; 2012: 687359). Etc.) Therefore, the functional fragment of the p53 family used in the present invention is a fragment of a p53 family protein containing at least one of these domains, and is a fragment functionally equivalent to the p53 protein.

さらに、本発明において用いられるp53ファミリーのキメラタンパク質は、2以上の異なるp53ファミリータンパク質に由来する、または2以上の異なる生物種に由来する上述のドメインを含むタンパク質であって、p53タンパク質と機能的に等価であるタンパク質である。   Furthermore, the p53 family chimeric protein used in the present invention is a protein comprising the above-mentioned domains derived from two or more different p53 family proteins or derived from two or more different species, and is functional with the p53 protein. Is a protein that is equivalent to

ここで、p53の機能的等価物であるそれぞれのタンパク質は、以下の機能的変異体を包含する。
1)かかるタンパク質のアミノ酸配列と少なくとも約80%以上、好ましくは少なくとも約85%以上、より好ましくは少なくとも約90%以上、最も好ましくは少なくとも約95%以上の同一性を有するアミノ酸配列からなり、p53タンパク質と機能的に等価であるタンパク質。
2)かかるタンパク質のアミノ酸配列において1または複数のアミノ酸残基を付加し、欠失させまたは置換したタンパク質であって、p53タンパク質と機能的に等価であるタンパク質。
3)かかるタンパク質をコードする核酸とストリンジェントな条件でハイブリダイズする核酸によってコードされるタンパク質であって、p53タンパク質と機能的に等価であるタンパク質。
Here, each protein which is a functional equivalent of p53 includes the following functional variants.
1) consisting of an amino acid sequence having at least about 80% or more, preferably at least about 85% or more, more preferably at least about 90% or more, most preferably at least about 95% or more identity with the amino acid sequence of such a protein, p53 A protein that is functionally equivalent to a protein.
2) A protein that has one or more amino acid residues added, deleted, or substituted in the amino acid sequence of such a protein, and is functionally equivalent to the p53 protein.
3) A protein encoded by a nucleic acid that hybridizes under stringent conditions with a nucleic acid encoding such a protein and is functionally equivalent to the p53 protein.

なお、本明細書におけるアミノ酸配列または塩基配列の同一性(%)は、当業者によって通常用いられる適当なソフトプログラム、例えばNCBI BLASTサーチ(http://blast.ncbi.nlm.nih.gov/)などを用い、比較される配列をアラインメントしたときに得られる最大のパーセント配列同一性を意味する。   The identity (%) of the amino acid sequence or base sequence in the present specification is determined by an appropriate software program usually used by those skilled in the art, such as NCBI BLAST search (http://blast.ncbi.nlm.nih.gov/). Is used to mean the maximum percent sequence identity obtained when the sequences being compared are aligned.

また、アミノ酸残基の置換は、好ましくは保存的置換である。本明細書中で用いられる用語「保存的置換」とは、アミノ酸残基を、類似の側鎖を有するアミノ酸残基で置換することをいう。類似の側鎖を有するアミノ酸残基の群としては、例えば、塩基性側鎖を有するアミノ酸(リジン、アルギニン、ヒスチジンなど)、酸性側鎖を有するアミノ酸(アスパラギン酸、グルタミン酸など)、非荷電性極性側鎖を有するアミノ酸(アスパラギン、グルタミン、セリン、スレオニン、チロシン、システインなど)、非極性側鎖を有するアミノ酸(グリシン、アラニン、バリン、ロイシン、イソロイシン、プロリン、フェニルアラニン、メチオニン、トリプトファンなど)、分岐側鎖を有するアミノ酸(バリン、ロイシン、イソロイシンなど)、芳香族側鎖を有するアミノ酸(チロシン、フェニルアラニン、トリプトファン、ヒスチジンなど)、ヒドロキシル基含有側鎖を有するアミノ酸(セリン、スレオニン、チロシンなど)、および硫黄含有側鎖を有するアミノ酸(システイン、メチオニンなど)が挙げられる。   The substitution of amino acid residues is preferably a conservative substitution. The term “conservative substitution” as used herein refers to substitution of an amino acid residue with an amino acid residue having a similar side chain. Examples of groups of amino acid residues having similar side chains include amino acids having basic side chains (lysine, arginine, histidine, etc.), amino acids having acidic side chains (aspartic acid, glutamic acid, etc.), uncharged polarity Amino acids with side chains (asparagine, glutamine, serine, threonine, tyrosine, cysteine, etc.), amino acids with nonpolar side chains (glycine, alanine, valine, leucine, isoleucine, proline, phenylalanine, methionine, tryptophan, etc.), branch side Amino acids with chains (valine, leucine, isoleucine, etc.), amino acids with aromatic side chains (tyrosine, phenylalanine, tryptophan, histidine, etc.), amino acids with hydroxyl group-containing side chains (serine, threonine, tyrosine, etc.), and Amino acids (cysteine, etc. methionine) with a yellow-containing side chains.

本明細書中で用いられる用語「ストリンジェントな条件」とは、核酸分子の間で特異的なハイブリッドが形成され、非特異的なハイブリッドが形成されない条件をいう。かかる条件は、例えば、Sambrook et al.,Molecular Cloning:A Laboratory Manual,3rd ed.,Cold Spring Harbor Press(2001)、AuSubel et al.,Current Protocols in Molecular Biology,Greene Publishing Associates(1992)などの標準的なプロトコルに記載されており、例えば、6×SSC(塩化ナトリウム/クエン酸ナトリウム)中、約45℃でのハイブリダイゼーション、続いて、0.2×SSC、0.1%SDS中、50〜65℃での1または2回以上の洗浄である。   As used herein, the term “stringent conditions” refers to conditions under which specific hybrids are formed between nucleic acid molecules and non-specific hybrids are not formed. Such conditions are described, for example, in Sambrook et al. , Molecular Cloning: A Laboratory Manual, 3rd ed. , Cold Spring Harbor Press (2001), AuSubel et al. , Current Protocols in Molecular Biology, Greene Publishing Associates (1992), eg, hybridization at about 45 ° C. in 6 × SSC (sodium chloride / sodium citrate), followed by , 0.2 × SSC, 0.1% SDS, one or more washes at 50-65 ° C.

上述のp53の機能的等価物は、腫瘍抑制、細胞周期停止、アポトーシス誘導などの活性を、正常なp53が有する活性と比較することで、p53と機能的に等価であることを確認することができる。かかる活性は、当業者に周知の方法で評価することができ、一例として、アポトーシス誘導活性は、カスパーゼ−3の遺伝子発現量、タンパク質発現量もしくは酵素活性を測定することにより、または細胞集団中のSub−G期細胞の割合をフローサイトメトリーで測定することにより、評価することができる。 It is possible to confirm that the functional equivalent of p53 described above is functionally equivalent to p53 by comparing activities such as tumor suppression, cell cycle arrest, and apoptosis induction with those of normal p53. it can. Such activity can be evaluated by methods well known to those skilled in the art. As an example, apoptosis-inducing activity can be determined by measuring the gene expression level, protein expression level or enzyme activity of caspase-3, or in a cell population. It can be evaluated by measuring the ratio of Sub-G 1 phase cells by flow cytometry.

または、p53による発現制御が知られている因子、例えば、p21、GADD45、XP−C、DDB2、Puma、Noxa、Bax、MDM2などの遺伝子またはタンパク質発現量を測定することによっても、p53との機能的等価性を確認することができる。   Alternatively, by measuring the expression level of a gene or protein such as p21, GADD45, XP-C, DDB2, Puma, Noxa, Bax, MDM2, etc. whose expression is regulated by p53, the function with p53 Can be confirmed.

(2)p53を誘導する物質
本発明におけるp53を誘導する物質は、生体内で正常なp53タンパク質またはその機能的等価物の発現および/または活性を誘導する能力を持つ物質であり、好ましくは、p53もしくはその機能的等価物をコードする核酸、または変異p53の機能を回復させる物質である。
(2) Substance that induces p53 The substance that induces p53 in the present invention is a substance capable of inducing the expression and / or activity of a normal p53 protein or a functional equivalent thereof in vivo, preferably, A nucleic acid that encodes p53 or a functional equivalent thereof, or a substance that restores the function of mutant p53.

p53またはその機能的等価物をコードする核酸は、かかる核酸とストリンジェントな条件でハイブリダイズする核酸を包含する。   Nucleic acids that encode p53 or functional equivalents thereof include nucleic acids that hybridize with such nucleic acids under stringent conditions.

本明細書中で用いられる用語「変異p53」とは、p53遺伝子の変異などに起因して、正常なp53が有する腫瘍抑制活性が喪失または低減したp53タンパク質をいい、これらの中には腫瘍増悪活性を有するものすら存在する。変異p53の多くは、野生型p53を構成するアミノ酸配列に1または複数のアミノ酸残基の置換を有しており、その結果、正常なp53が有する腫瘍抑制活性が損なわれるものと考えられている(例えば、Muller PA et al.,Cancer Cell.25(3):304−17;2014を参照)。   As used herein, the term “mutant p53” refers to a p53 protein in which tumor suppressor activity of normal p53 is lost or reduced due to mutations in the p53 gene, etc. Some have activity. Many of mutant p53 have substitution of one or more amino acid residues in the amino acid sequence constituting wild-type p53, and as a result, it is considered that the tumor suppressive activity of normal p53 is impaired. (See, eg, Muller PA et al., Cancer Cell. 25 (3): 304-17; 2014).

本発明において用いられる変異p53の機能を回復させる物質は、処置を受けたがんの細胞内で正常なp53が有する腫瘍抑制活性と同等の腫瘍抑制活性が発揮されるように変異p53および/またはそのシグナル伝達を変化させる物質であり、例えば、変異p53の野生型活性を回復させる剤、変異p53の分解を促進する剤および変異p53のシグナル伝達下流に作用する剤が知られている(前出のMuller PA et al.を参照)。これらとしては、例えば、p53C末端ペプチド(例えば、Galina Selivanova et al.,Mol Cell Biol.May 1999;19(5):3395−3402に記載されるペプチド46)およびこれをコードする核酸、PRIMA−1(CAS番号5608−24−2)、PRIMA−1MET(APR−246とも呼ばれる、CAS番号5291−32−7)、CP−31398(CAS番号259199−65−0)、SCH529074(CAS番号922150−11−6)、STIMA−1(CAS番号91634−12−7)、NSC31926(CAS番号6319−86−4)、PhiKan083(CAS番号880813−36−5)、PK7088、RETRA(CAS番号1036069−26−7)、Mira−3(CAS番号7450−68−2)、エリプチシン(CAS番号519−23−3)、WR1065(CAS番号14653−77−1)、およびこれらの誘導体、ならびにグリセロールおよびトリメチルアミンN−オキシドなどの化学シャペロンを限定することなく挙げることができる。当業者は、処置を受けるがんが有する変異p53の種類に応じて、これらの物質を適宜選択し、本発明におけるp53を誘導する物質として使用することができる。 The substance that restores the function of the mutant p53 used in the present invention is a mutant p53 and / or a tumor suppressor activity equivalent to that of normal p53 in the treated cancer cells. Substances that change the signal transduction, for example, agents that restore the wild-type activity of mutant p53, agents that promote degradation of mutant p53, and agents that act downstream of signal transduction of mutant p53 are known (see above). Muller PA et al.). These include, for example, p53 C-terminal peptide (eg, peptide 46 described in Galina Selibanova et al., Mol Cell Biol. May 1999; 19 (5): 3395-3402) and the nucleic acid encoding it, PRIMA-1. (CAS number 5608-24-2), PRIMA-1 MET (also called APR-246, CAS number 5291-32-7), CP-31398 (CAS number 259199-65-0), SCH529074 (CAS number 922150-11) -6), STIMA-1 (CAS number 91634-12-7), NSC 31926 (CAS number 6319-86-4), PhiKan083 (CAS number 880813-36-5), PK7088, RETRA (CAS number 103) 069-26-7), Mira-3 (CAS number 7450-68-2), ellipticine (CAS number 519-23-3), WR1065 (CAS number 14653-77-1), and derivatives thereof, and glycerol and A chemical chaperone such as trimethylamine N-oxide can be mentioned without limitation. Those skilled in the art can appropriately select these substances according to the type of mutant p53 possessed by the cancer to be treated, and use them as substances that induce p53 in the present invention.

本発明におけるp53を誘導する物質は、p53もしくはその機能的等価物または変異p53の機能を回復させる物質をコードする塩基配列を含む核酸を包含する。かかる核酸は、一般的な遺伝子工学的方法に従って作成し、適切な発現ベクターに組み込むことができる。発現ベクターは、転写発現を調節する任意の機能性塩基配列、例えばプロモーター配列、オペレーター配列、リボソーム結合部位、ポリアデニル化シグナル、エンハンサーなどをさらに含んでいてもよい。これらの機能性塩基配列は、上記核酸と機能的に連結され得る。   The substance that induces p53 in the present invention includes a nucleic acid containing a base sequence encoding a substance that restores the function of p53 or a functional equivalent thereof or mutant p53. Such a nucleic acid can be prepared according to a general genetic engineering method and incorporated into an appropriate expression vector. The expression vector may further contain any functional base sequence that regulates transcriptional expression, such as a promoter sequence, an operator sequence, a ribosome binding site, a polyadenylation signal, an enhancer, and the like. These functional base sequences can be operably linked to the nucleic acid.

遺伝子工学的方法としては、当業者に公知または周知の手法、例えば前出のSambrookらその他の、当該技術分野の教科書またはハンドブックに記載され、当業者に広く利用されている手法を挙げることができる。また市販のキットや試薬を使用するときは、当該キットや試薬の製造者が定めたプロトコルおよび/またはパラメータに従うことが好ましい。   Examples of genetic engineering methods include methods known or well known to those skilled in the art, such as those described in the above-mentioned Sambrook et al., Other textbooks or handbooks in the technical field, and widely used by those skilled in the art. . In addition, when using a commercially available kit or reagent, it is preferable to follow the protocol and / or parameters defined by the manufacturer of the kit or reagent.

本発明におけるp53および/またはp53を誘導する物質がタンパク質である場合、一般的な遺伝子工学的方法に従って、前述の発現ベクターを原核生物または真核生物内に導入して組換えタンパク質を発現させ、これを必要に応じて精製して用いることができる。また、本発明において用いるタンパク質は、Fmoc法(フルオレニルメチルオキシカルボニル法)、tBoc法(t−ブチルオキシカルボニル法)などの当業者に周知の化学合成法によって製造してもよい。   When the substance that induces p53 and / or p53 in the present invention is a protein, the expression vector is introduced into prokaryotic organisms or eukaryotic organisms according to a general genetic engineering method to express the recombinant protein, This can be purified and used as necessary. The protein used in the present invention may be produced by chemical synthesis methods well known to those skilled in the art, such as the Fmoc method (fluorenylmethyloxycarbonyl method) and the tBoc method (t-butyloxycarbonyl method).

なお、本明細書における「タンパク質」は、「ポリペプチド」と交換可能に用いられる。   In the present specification, “protein” is used interchangeably with “polypeptide”.

(3)核酸
本発明において用いられる核酸は、がんのp53抵抗性を減弱させることができる核酸であり、具体的には、配列番号1〜29の少なくともいずれか1に示される塩基配列を含むDNAおよび/または該DNAによりコードされるRNAである。これらの核酸は、その塩基配列から、RNA干渉誘導性核酸であると推定される。
(3) Nucleic acid The nucleic acid used in the present invention is a nucleic acid that can attenuate p53 resistance of cancer, and specifically includes the base sequence shown in at least any one of SEQ ID NOs: 1 to 29. DNA and / or RNA encoded by the DNA. These nucleic acids are presumed to be RNA interference-inducing nucleic acids from their base sequences.

RNA干渉誘導性核酸とは、RNA干渉(RNAi)を誘導することができる核酸であり、好ましくはsiRNAもしくはshRNA、またはこれらをコードするDNAをいう。   An RNA interference-inducing nucleic acid is a nucleic acid capable of inducing RNA interference (RNAi), and preferably refers to siRNA or shRNA or DNA encoding them.

RNA干渉は、mRNAと同一の核酸配列またはその部分配列を含む二本鎖構造のRNAが当該mRNAの発現を抑制する現象である。siRNAは、相互に相補的な二本のRNA鎖から構成される。shRNAは、ヘアピンループ構造を取ることができる一本鎖RNAであり、二本鎖構造を形成した後、細胞内のDicerにより認識、切断されて対応するsiRNAを生じる。この二本鎖構造のRNAは、好ましくは少なくとも20以上の連続する標的mRNAと同一の核酸配列またはその部分配列を有する。   RNA interference is a phenomenon in which RNA having a double-stranded structure containing the same nucleic acid sequence as mRNA or a partial sequence thereof suppresses the expression of the mRNA. siRNA is composed of two RNA strands complementary to each other. shRNA is a single-stranded RNA that can take a hairpin loop structure. After forming a double-stranded structure, it is recognized and cleaved by Dicer in the cell to produce a corresponding siRNA. This double-stranded RNA preferably has at least 20 or more consecutive nucleic acid sequences identical to the target mRNA or a partial sequence thereof.

本発明における核酸がsiRNAである場合、このsiRNAは、配列番号1〜28の少なくともいずれか1に示される塩基配列を含むDNAによりコードされるRNA鎖と、このRNA鎖と相補的な塩基配列を有する相補的RNA鎖とがアニールして形成される。また、本発明における核酸がshRNAである場合、このshRNAは、配列番号1〜28の少なくともいずれか1に示される塩基配列を含むDNAによりコードされるRNA鎖と、このRNA鎖と相補的な塩基配列を有する相補的RNA鎖とが、ヘアピンループを形成することができる一本鎖RNA部分によって連結された構造を取り、その一例は配列番号29に示される塩基配列を有するDNAによりコードされるshRNAである。   When the nucleic acid in the present invention is siRNA, the siRNA has an RNA strand encoded by a DNA comprising the base sequence represented by at least any one of SEQ ID NOs: 1 to 28 and a base sequence complementary to the RNA strand. It is formed by annealing with a complementary RNA strand. Moreover, when the nucleic acid in the present invention is shRNA, the shRNA is composed of an RNA strand encoded by a DNA containing the base sequence represented by at least any one of SEQ ID NOs: 1 to 28 and a base complementary to the RNA strand. ShRNA encoded by a DNA having a base sequence shown in SEQ ID NO: 29, which has a structure in which a complementary RNA strand having a sequence is linked by a single-stranded RNA portion capable of forming a hairpin loop. It is.

ここで、配列番号1に示される塩基配列を含むDNAに由来するsiRNAまたはshRNAは、その配列に基づくNCBI BLASTサーチによると、AP−2γ(TFAP2C)を標的とし、そのmRNAを特異的にノックダウンすることができるものと推定される。したがって、本発明における核酸は、配列番号1に示される塩基配列を含むDNAおよびこれによりコードされるRNAのみならず、AP−2γを標的とするRNA干渉誘導性核酸をも包含し得るものと理解される。しかしながら、このことは、他の標的分子の存在を排除するものではない。   Here, siRNA or shRNA derived from DNA containing the base sequence shown in SEQ ID NO: 1 targets AP-2γ (TFAP2C) and specifically knocks down its mRNA according to NCBI BLAST search based on that sequence. It is estimated that it can be done. Therefore, it is understood that the nucleic acid in the present invention can include not only DNA containing the nucleotide sequence shown in SEQ ID NO: 1 and RNA encoded thereby, but also RNA interference-inducing nucleic acid targeting AP-2γ. Is done. However, this does not exclude the presence of other target molecules.

siRNAおよびshRNAの二本鎖RNA部分は、RNA干渉を誘導できる限り長さに特に制限はないが、例えば、15〜45塩基の長さ、好ましくは19〜40塩基の長さ、より好ましくは21〜30塩基の長さである。   The length of the double-stranded RNA portion of siRNA and shRNA is not particularly limited as long as RNA interference can be induced. For example, the length is 15 to 45 bases, preferably 19 to 40 bases, more preferably 21. It is ~ 30 bases long.

RNA干渉誘導性核酸は、センス鎖およびアンチセンス鎖の一方または双方の5’末端および/または3’末端において、1または数個(例として1、2または3個)の塩基の付加により形成されるオーバーハング配列を有していてもよい。   RNA interference-inducing nucleic acids are formed by the addition of one or several (eg, 1, 2 or 3) bases at the 5 ′ end and / or 3 ′ end of one or both of the sense strand and the antisense strand. May have an overhang arrangement.

上記のように、本発明における核酸は、好ましくは、RNA干渉誘導性核酸である。しかしながら、配列番号1〜29の少なくともいずれか1に示される塩基配列を含むDNAおよび/または該DNAによりコードされるRNAであるかぎり、RNA干渉を誘導しない核酸もまた本発明に包含される。   As described above, the nucleic acid in the present invention is preferably an RNA interference-inducing nucleic acid. However, a nucleic acid that does not induce RNA interference is also encompassed by the present invention as long as it is DNA comprising the base sequence shown in at least any one of SEQ ID NOs: 1 to 29 and / or RNA encoded by the DNA.

さらに、本発明における核酸は、以下のDNA、および該DNAによりコードされるRNAを包含する。
1)配列番号1〜29の少なくともいずれか1に示される塩基配列と少なくとも約80%以上、好ましくは少なくとも約85%以上、より好ましくは少なくとも約90%以上、最も好ましくは少なくとも約95%以上の同一性を有する塩基配列を含むDNAであって、がんのp53抵抗性を減弱させることができるDNA。
2)配列番号1〜29の少なくともいずれか1に示される塩基配列において1または複数の塩基を付加し、欠失させまたは置換した塩基配列を含むDNAであって、がんのp53抵抗性を減弱させることができるDNA。
3)配列番号1〜29の少なくともいずれか1に示される塩基配列を含むDNAとストリンジェントな条件でハイブリダイズするDNAであって、がんのp53抵抗性を減弱させることができるDNA。
Furthermore, the nucleic acid in the present invention includes the following DNA and RNA encoded by the DNA.
1) at least about 80% or more, preferably at least about 85% or more, more preferably at least about 90% or more, and most preferably at least about 95% or more with the nucleotide sequence shown in at least any one of SEQ ID NOs: 1 to 29 DNA comprising a nucleotide sequence having identity, which can attenuate p53 resistance of cancer.
2) DNA comprising a base sequence in which one or more bases are added, deleted or substituted in at least any one of SEQ ID NOs: 1 to 29, and attenuates p53 resistance of cancer DNA that can be allowed to.
3) A DNA that hybridizes under stringent conditions with a DNA comprising the base sequence represented by at least any one of SEQ ID NOs: 1 to 29, and that can attenuate the p53 resistance of cancer.

本発明において用いられる核酸は、ヌクレアーゼによる分解に対する安定性を向上させるため、2’O−メチル化、2’−F化、4’−チオ化などの修飾を行ってもよい。また、RNA鎖を構成するリボヌクレオチドの一部が、対応するデオキシリボヌクレオチドまたはヌクレオチド類似体に置き換えられたキメラRNAもまた、本発明の範囲内にある。ヌクレオチド類似体としては、例えば、5位修飾ウリジンまたはシチジン、例えば5‐(2‐アミノ)プロピルウリジン、5‐ブロモウリジンなど;8位修飾アデノシンまたはグアノシン、例えば8‐ブロモグアノシンなど;デアザヌクレオチド、例えば7−デアザ−アデノシンなど;O−またはN−アルキル化ヌクレオチド、例えばN6−メチルアデノシンなどを挙げることができる。   The nucleic acid used in the present invention may be modified such as 2'O-methylation, 2'-F formation, 4'-thiolation, etc. in order to improve stability against degradation by nuclease. Also within the scope of the invention are chimeric RNAs in which a portion of the ribonucleotides that make up the RNA strand are replaced by corresponding deoxyribonucleotides or nucleotide analogs. Nucleotide analogs include, for example, 5-position modified uridine or cytidine, such as 5- (2-amino) propyluridine, 5-bromouridine, etc .; 8-position modified adenosine or guanosine, such as 8-bromoguanosine; Mention may be made, for example, of 7-deaza-adenosine; O- or N-alkylated nucleotides, such as N6-methyladenosine.

本発明において用いられる核酸がDNAである場合、かかるDNAは、一般的な遺伝子工学的方法に従って作成して、適切な発現ベクターに組み込むことができる。発現ベクターは、転写発現を調節する任意の機能性塩基配列、例えばPol IIIプロモーターなどのプロモーター配列、オペレーター配列、リボソーム結合部位、ポリアデニル化シグナル、エンハンサーなどをさらに含んでいてもよい。これらの機能性塩基配列は、上記核酸と機能的に連結され得る。   When the nucleic acid used in the present invention is DNA, such DNA can be prepared according to a general genetic engineering method and incorporated into an appropriate expression vector. The expression vector may further contain any functional base sequence that regulates transcriptional expression, for example, a promoter sequence such as a Pol III promoter, an operator sequence, a ribosome binding site, a polyadenylation signal, an enhancer, and the like. These functional base sequences can be operably linked to the nucleic acid.

かかるDNAは生体に投与された後、生体内での転写により生じた2本のRNA鎖がハイブリダイズしてsiRNAを形成するか、または一本のRNA鎖がヘアピンループ構造を有するshRNAを形成する。   After such DNA is administered to a living body, two RNA strands generated by transcription in the living body hybridize to form siRNA, or one RNA strand forms shRNA having a hairpin loop structure. .

本発明において用いられる核酸を含む核酸構築物、およびこれを含むベクターもまた、本発明の範囲内にある。また、本発明において2以上の核酸を用いる場合、これらの核酸は単一の発現ベクターに組み込んでもよく、2以上のベクターに別々に組み込んでもよい。   Nucleic acid constructs containing the nucleic acids used in the present invention and vectors containing the same are also within the scope of the invention. Further, when two or more nucleic acids are used in the present invention, these nucleic acids may be incorporated into a single expression vector or separately into two or more vectors.

(4)p53のみによる処置に抵抗性を有するがんを処置するための医薬
本発明の医薬は、任意の腫瘍およびがんの処置に用いることが可能であるが、特に好ましくはp53のみによる処置に抵抗性を有するがんの処置に用いられる。
(4) Medicament for treating cancer resistant to treatment with p53 alone The medicament of the present invention can be used for the treatment of any tumor and cancer, particularly preferably treatment with p53 alone Used to treat cancer that is resistant to.

本明細書中で用いられる「p53のみによる処置に抵抗性を有するがん」とは、p53もしくはその機能的等価物またはこれらをコードする核酸による処置によって、治療効果が全く認められないか、または治療効果が不十分であるがんをいう。かかる抵抗性は、細胞内でMDM2が正常なp53を分解するため、または変異p53が有するドミナントネガティブ効果により正常なp53の活性が抑制されるために生ずるものと推測されている。したがって、p53のみによる処置に抵抗性を有するがんは、p53の分解が亢進されているがん、および変異p53を有するがんを包含する。   As used herein, “cancer resistant to treatment with p53 alone” means that no therapeutic effect is observed by treatment with p53 or a functional equivalent thereof or a nucleic acid encoding them, or Refers to cancer that has insufficient therapeutic effect. Such resistance is presumed to occur because MDM2 degrades normal p53 in cells or because normal p53 activity is suppressed by the dominant negative effect of mutant p53. Thus, cancers that are resistant to treatment with p53 alone include cancers with enhanced p53 degradation and cancers with mutant p53.

なお、本明細書において「p53のみによる処置に抵抗性を有するがん」および「p53抵抗性のがん」は交換可能に用いられる。   In the present specification, “cancer resistant to treatment with p53 alone” and “cancer resistant to p53” are used interchangeably.

本発明の医薬がp53のみによる処置に抵抗性を有するがんの処置に用いられる場合、上述の核酸が抵抗性に関与する遺伝子をノックダウンして抵抗性を減弱させ、その結果、p53の活性が増強されて、がんの治療が達成されるものと考えられる。   When the medicament of the present invention is used for the treatment of cancer having resistance to treatment with p53 alone, the above-mentioned nucleic acid knocks down the gene involved in the resistance to attenuate the resistance, and as a result, the activity of p53 It is thought that cancer treatment will be achieved.

本明細書において用いられる「処置」は、疾患の治癒、一時的寛解または予防などを目的とする医学的に許容される全てのタイプの予防的および/または治療的介入を包含する。すなわちがんの処置とは、がんの進行の遅延または停止、病変の退縮または消失、発症の予防または再発の防止などを含む、種々の目的の医学的に許容される介入を包含する。   “Treatment” as used herein encompasses all types of medically acceptable prophylactic and / or therapeutic interventions intended to cure, temporarily ameliorate or prevent disease. That is, cancer treatment includes medically acceptable interventions for various purposes, including delaying or stopping cancer progression, regression or disappearance of lesions, prevention of onset or prevention of recurrence, and the like.

なお、本明細書における「がん」は、「悪性腫瘍」「腫瘍」と交換可能に用いられる。   In the present specification, “cancer” is used interchangeably with “malignant tumor” and “tumor”.

本発明の別の実施形態は、p53および/またはp53を誘導する物質と上述の核酸とを含有する、p53のみによる処置に抵抗性を有するがんを処置するための医薬を提供する。   Another embodiment of the present invention provides a medicament for treating cancer resistant to treatment with p53 alone, comprising p53 and / or a substance that induces p53 and the nucleic acid described above.

処置を受けるがんがp53を十分に発現している場合、核酸は単独で対象に投与することができる。投与された核酸は、対象内でかかる内因性p53と組み合わされて、がんを処置するための医薬としての効果を発揮する。一方、p53が存在しないもしくは発現量が減少している、または変異p53を発現しているがんを処置する場合、核酸は、好ましくは、外因性のp53および/またはp53を誘導する物質と組み合わせて対象に投与される。   A nucleic acid can be administered to a subject alone if the cancer being treated fully expresses p53. The administered nucleic acid is combined with such endogenous p53 in the subject to exert a pharmaceutical effect for treating cancer. On the other hand, when treating cancers in which p53 is absent or expressed in a reduced amount, or expressing mutant p53, the nucleic acid is preferably combined with exogenous p53 and / or a substance that induces p53. Administered to the subject.

本発明の医薬は、p53を活性化する処置とさらに組み合わせて使用することもできる。p53の活性化は、DNA損傷、がん遺伝子の活性化、紡錘体損傷および低酸素状態などの様々な細胞ストレスにより誘導されることが知られている。したがって、かかる処置は、細胞にこのようなストレスを付与する処置であり、例えば放射線治療および抗がん剤を用いた化学療法を挙げることができる。   The medicament of the present invention can also be used in combination with a treatment that activates p53. It is known that p53 activation is induced by various cellular stresses such as DNA damage, oncogene activation, spindle damage and hypoxia. Therefore, such treatment is treatment that imparts such stress to cells, and examples thereof include radiotherapy and chemotherapy using an anticancer agent.

本発明の医薬と組み合わせることができる放射線治療は、例えば、X線、γ線、重粒子線、陽子線などの放射線を用いたものである。   The radiotherapy that can be combined with the medicament of the present invention uses, for example, radiation such as X-rays, γ-rays, heavy particle beams, and proton beams.

また、本発明の医薬と組み合わせることができる化学療法に用いられる抗がん剤は、例えば、アルキル化剤、例えばシクロホスファミド、イホスファミド、メルファラン、ブスルファン、チオテパ、ニムスチン、ラニムスチン、ダカルバシン、プロカルバシン、テモゾロマイド、ベンダムスチンなど;白金製剤、例えばシスプラチン、カルボプラチン、オキサリプラチン、ネダプラチンなど;代謝拮抗剤、例えば5−フルオロウラシル、フルシトシン、メソトレキセート、6−メルカプトプリン、アザチオプリン、ヒドロキシウレア、チオグアニン、リン酸フルダラビン、クラドリビン、シタラビン、ゲムシタビンなど;トポイソメラーゼ阻害剤、例えばカンプトテシン、イリノテカン、ノギテカン、アドリアマイシン(ドキソルビシン)、エトポシド(VP−16)、レボフロキサシン、シプロフロキサシンなど;微小管重合阻害剤、例えばビンブラスチン、ビンクリスチン、ビンデシンなど;微小管脱重合阻害剤、例えばパクリタキセル、ドセタキセルなど;抗腫瘍性抗生物質、例えばマイトマイシンC、エピルビシン、ダウノルビシン、ブレオマイシンなどである。   Anticancer agents used for chemotherapy that can be combined with the medicament of the present invention include, for example, alkylating agents such as cyclophosphamide, ifosfamide, melphalan, busulfan, thiotepa, nimustine, ranimustine, dacarbacin, procarbacin , Temozolomide, bendamustine, etc .; platinum preparations such as cisplatin, carboplatin, oxaliplatin, nedaplatin, etc .; antimetabolites such as 5-fluorouracil, flucytosine, methotrexate, 6-mercaptopurine, azathioprine, hydroxyurea, thioguanine, fludarabine phosphate, cladribine , Cytarabine, gemcitabine, etc .; topoisomerase inhibitors such as camptothecin, irinotecan, nogitecan, adriamycin (doxorubicin), Toposide (VP-16), levofloxacin, ciprofloxacin and the like; microtubule polymerization inhibitors such as vinblastine, vincristine and vindesine; microtubule depolymerization inhibitors such as paclitaxel and docetaxel; antitumor antibiotics such as mitomycin C, epirubicin, daunorubicin, bleomycin and the like.

当業者は、p53を十分に活性化できる処置の条件を、p53のみによる処置が有効ながんの場合の処置条件を参照することなどにより、適宜設定することができ、例えば、化学療法の場合は使用する抗がん剤の種類、投与量、投与回数などを、放射線治療の場合は使用する核種、照射線量、照射スケジュールなどを、適宜決定することができる。   Those skilled in the art can appropriately set treatment conditions that can sufficiently activate p53 by referring to treatment conditions in the case of cancer for which treatment with p53 alone is effective. For example, in the case of chemotherapy Can appropriately determine the type, dose, number of doses, and the like of the anticancer agent to be used, and in the case of radiotherapy, the nuclide to be used, the irradiation dose, the irradiation schedule, etc.

本発明の医薬は、これらの処置によりp53が活性化されている状態のがんに対して用いられ、その結果、より強い効果が発揮される。   The medicament of the present invention is used for cancer in which p53 is activated by these treatments, and as a result, a stronger effect is exhibited.

なお、本明細書中で、医薬または処置を組み合わせて投与または使用すると表現する場合、それぞれの医薬または処置を同時に投与または使用すること、および逐次的に投与または使用することのいずれもが包含される。   In addition, in this specification, when it is expressed that a medicine or treatment is administered or used in combination, it includes both simultaneous administration or use of each medicine or treatment and sequential administration or use. The

本発明の他の実施形態は、p53および/またはp53を誘導する物質と核酸とを組み合わせた医薬の有効量を対象に投与することを含む、p53のみによる処置に抵抗性を有するがんを処置する方法も提供する。   Another embodiment of the present invention treats cancer resistant to treatment with p53 alone, comprising administering to a subject an effective amount of a pharmaceutical agent comprising a combination of p53 and / or a substance that induces p53 and a nucleic acid. It also provides a way to do this.

本明細書中で用いられる「対象」とは、がんに罹患し得る任意の動物を意味し、好ましくは哺乳動物の個体、例えば、ヒト、チンパンジーなどの霊長類、マウス、ラット、モルモット、ハムスターなどの齧歯類、ウシ、ヤギ、ヒツジなどの偶蹄目、ウマなどの奇蹄目、ウサギ、イヌ、ネコなどの個体であり、さらに好ましくはヒトの個体である。   As used herein, “subject” means any animal that can suffer from cancer, preferably a mammal individual, for example, a human, a primate such as a chimpanzee, a mouse, a rat, a guinea pig, a hamster. Rodents such as cattle, goats and sheep, cloven hoofed eyes such as horses, individuals such as rabbits, dogs and cats, and more preferably human individuals.

また「有効量」とは、p53のみによる処置に抵抗性を有するがんを処置するのに効果的な量を意味する。かかる有効量はがんの種類、症状の重症度、患者その他の医学的要因によって適宜調節される。   “Effective amount” means an amount effective to treat cancer resistant to treatment with p53 alone. The effective amount is appropriately adjusted according to the type of cancer, the severity of symptoms, the patient and other medical factors.

本発明の医薬は、経口製剤または非経口製剤のいずれの形態であってもよいが、注射剤、点滴剤などの非経口製剤の形態で用いるのが好ましい。非経口製剤に用いることができる担体としては、例えば、生理食塩水や、ブドウ糖、D−ソルビトールなどを含む等張液といった細胞製剤において通常用いられる水性担体が挙げられる。   The medicament of the present invention may be in the form of an oral preparation or a parenteral preparation, but is preferably used in the form of a parenteral preparation such as an injection or infusion. Examples of carriers that can be used in parenteral preparations include aqueous carriers that are usually used in cell preparations such as physiological saline, isotonic solutions containing glucose, D-sorbitol, and the like.

本発明の医薬はさらに、薬学的に許容される緩衝剤、安定剤、保存剤その他の成分を含んでもよい。薬学的に許容される成分は当業者において周知であり、当業者が通常の実施能力の範囲内で、例えば第十六改正日本薬局方その他の規格書に記載された成分から製剤の形態に応じて適宜選択して使用することができる。   The medicament of the present invention may further contain pharmaceutically acceptable buffers, stabilizers, preservatives and other components. Pharmaceutically acceptable ingredients are well known to those skilled in the art, and those skilled in the art can use the ingredients from the ingredients described in the 16th revised Japanese Pharmacopoeia and other standards within the scope of their normal performance. Can be selected and used as appropriate.

また、本発明の医薬は、高分子ミセル、リポソーム、エマルジョン、マイクロスフェアおよびナノスフェアなどの適切なDDSに封入および/または固定することもできる。   The medicament of the present invention can also be encapsulated and / or fixed in a suitable DDS such as polymer micelles, liposomes, emulsions, microspheres and nanospheres.

本発明の医薬の投与方法は、特に制限されないが、非経口製剤である場合は、例えば血管内投与(好ましくは静脈内投与)、腹腔内投与、腸管内投与、腫瘍内またはその近傍への局所投与などを挙げることができる。好ましい態様の一つにおいて、本発明の医薬は、静脈内投与または腫瘍内もしくはその近傍への局所投与により対象に投与される。また、本発明の医薬は、処置されるがんに応じて、その他の医薬と併用して使用してもよい。   The administration method of the pharmaceutical agent of the present invention is not particularly limited. However, in the case of a parenteral preparation, for example, intravascular administration (preferably intravenous administration), intraperitoneal administration, intestinal administration, local in the tumor or in the vicinity thereof. Administration etc. can be mentioned. In one of the preferred embodiments, the medicament of the present invention is administered to a subject by intravenous administration or local administration in or near a tumor. The medicament of the present invention may be used in combination with other medicaments depending on the cancer to be treated.

また、本発明の医薬に含まれる核酸は、任意の既知の細胞導入手法、例えばリン酸カルシウム法、リポフェクション法、超音波導入法、エレクトロポレーション法、パーティクルガン法、ウイルスベクター(例えば、アデノウイルスベクターまたはレトロウイルスベクターなど)を利用する方法、またはマイクロインジェクション法などを用いることによって、処置されるがんの細胞内に導入され得る。   The nucleic acid contained in the medicament of the present invention may be any known cell introduction method such as calcium phosphate method, lipofection method, ultrasonic introduction method, electroporation method, particle gun method, virus vector (for example, adenovirus vector or It can be introduced into the cancer cells to be treated by using a retroviral vector or the like, or using a microinjection method or the like.

ウイルスベクターを利用する場合、その用量範囲は、例えば、ヒト対象1人あたり、1×10〜1×1014、好ましくは1×10〜1×1012、より好ましくは1×10〜1×1011、最も好ましくは1×10〜1×1010のプラーク形成単位(p.f.u.)であることができる。 When viral vectors are utilized, the dosage range is, for example, 1 × 10 3 to 1 × 10 14 , preferably 1 × 10 5 to 1 × 10 12 , more preferably 1 × 10 6 to 1 per human subject. It may be 1 × 10 11 , most preferably 1 × 10 7 to 1 × 10 10 plaque forming units (pf).

以下、非限定的な実施例によって本発明をさらに詳細に説明するが、本発明は、本明細
書に記載の特定の方法論、プロトコル、細胞株、動物種および属、コンストラクトならびに試薬に限定されるものではなく、これらは適宜変更することができるものであることは当業者に容易に理解されるものである。
The invention will now be described in more detail by way of non-limiting examples, but the invention is limited to the specific methodologies, protocols, cell lines, animal species and genera, constructs and reagents described herein. However, those skilled in the art can easily understand that these can be appropriately changed.

<方法および材料>
細胞培養
ヒト肝がん細胞株Huh−7、膵がん細胞株Panc−1および大腸がん細胞株SW480は、American Type Culture Collectionから購入した。Huh−7細胞、Panc−1細胞およびSW480細胞は、それぞれ、10% FCSを添加したDMEM、RPMI−1640およびLeibovitz L−15培地中で培養した。
<Method and Material>
Cell culture human liver cancer cell line Huh-7, pancreatic cancer cell line Panc-1 and colon cancer cell line SW480 were purchased from American Type Culture Collection. Huh-7 cells, Panc-1 cells and SW480 cells were cultured in DMEM, RPMI-1640 and Leibovitz L-15 medium supplemented with 10% FCS, respectively.

組換えアデノウイルス
p53遺伝子またはlacZ遺伝子を組み込んだ複製欠損組換えアデノウイルス(それぞれAd−p53、Ad−LacZ)の構築、精製および感染は、非特許文献5に記載されるように行った。簡潔には、組換えアデノウイルスは、ViraPower Adenoviral Expression System(Invitrogen)を用いて、製造者のプロトコルに従って作製した。pDONR221の組換え領域を、in vitro組換え反応で、Gateway Vector pAd/CMV/V5−DESTにトランスファーした。このようにしてpAd/CMV/V5−DESTから生成した組換えアデノウイルスプラスミドで、コンピテントDH5α(TOYOBO)を形質転換した。選択後、DH5αの単一のクローンを単離し、拡張した。組換えアデノウイルスプラスミドを精製し、次いで293A細胞にトランスフェクトした。293A細胞に十分な細胞変性効果が認められた後、アデノウイルスをAdeno−X Virus Purification Kit(クロンテック)を用いて精製した。p.f.u.表示でのアデノウイルス力価は、HEK293細胞の感染後のプラーク形成アッセイで決定した。感染多重度(Multiplicity of Infection;MOI)は、感染した細胞の総数に対する、p.f.u.の総数の比率として定義した。実験の再現性を確認するために、重複サンプルからアデノウイルスを滴定した。
Construction, purification, and infection of replication-deficient recombinant adenoviruses incorporating Adenovirus p53 gene or lacZ gene (Ad-p53 and Ad-LacZ, respectively) were performed as described in Non-Patent Document 5. Briefly, recombinant adenoviruses were generated using the ViraPower Adenoviral Expression System (Invitrogen) according to the manufacturer's protocol. The recombination region of pDONR221 was transferred to Gateway Vector pAd / CMV / V5-DEST in an in vitro recombination reaction. Competent DH5α (TOYOBO) was transformed with the recombinant adenovirus plasmid thus generated from pAd / CMV / V5-DEST. After selection, a single clone of DH5α was isolated and expanded. The recombinant adenoviral plasmid was purified and then transfected into 293A cells. Adenovirus was purified using Adeno-X Virus Purification Kit (Clontech) after sufficient cytopathic effect was observed in 293A cells. p. f. u. The indicated adenovirus titer was determined in a plaque formation assay after infection of HEK293 cells. The multiplicity of infection (MOI) is the p. f. u. Defined as the ratio of the total number of. To confirm the reproducibility of the experiment, adenovirus was titrated from duplicate samples.

<実施例1 p53抵抗性がん細胞におけるゲノム網羅的スクリーニングによるp53誘導性アポトーシスを増強するshRNAの取得>
がん細胞におけるp53誘導性アポトーシスへの抵抗性を減弱させ得るshRNAを同定するため、肝がん細胞株Huh−7および膵がん細胞株Panc−1においてアレイべースのゲノム網羅的レンチウイルスshRNAライブラリースクリーニングを行った。スクリーニングの概要を図1に示す。Huh−7細胞株およびPanc−1細胞株は変異p53を有し、野生型p53導入によって弱いアポトーシス応答を示す。ヒトshRNAライブラリーは、47,400個のヒトmRNA転写産物を標的とする約200,000個のshRNA配列を含んでおり、レンチウイルス粒子内にパッケージングされ、プールされたものであった。このshRNAライブラリーにおいて、各レンチウイルスベクターshRNA配列は、Affymetrixマイクロアレイ(GeneChip)上のプローブ配列に対応する。したがって、shRNA集団をcDNAマイクロアレイで定量することで、各shRNAの発現レベルを決定することができる。
<Example 1 Acquisition of shRNA that enhances p53-induced apoptosis by genome-wide screening in p53-resistant cancer cells>
To identify shRNA that can attenuate resistance to p53-induced apoptosis in cancer cells, an array-based genome-wide lentivirus in the hepatoma cell line Huh-7 and pancreatic cancer cell line Panc-1 shRNA library screening was performed. The outline of screening is shown in FIG. Huh-7 and Panc-1 cell lines have a mutant p53 and show a weak apoptotic response upon introduction of wild-type p53. The human shRNA library contained approximately 200,000 shRNA sequences targeting 47,400 human mRNA transcripts and was packaged and pooled within lentiviral particles. In this shRNA library, each lentiviral vector shRNA sequence corresponds to a probe sequence on an Affymetrix microarray (GeneChip). Therefore, the expression level of each shRNA can be determined by quantifying the shRNA population with a cDNA microarray.

shRNAライブラリーのスクリーニングは、製造者のプロトコルに従って行った。簡潔には、10cmプレートに3×10個のHuh−7細胞およびPanc−1細胞を播種し、24時間後、GeneNet siRNA Library(System Biosciences)のレンチウイルス粒子を細胞に感染させた。レンチウイルス感染から72時間後、Ad−p53またはAd−LacZをMOI50で細胞に感染させた。アデノウイルス感染から48時間後、TRIZol(Invitrogen)を使用して全RNAを抽出し、抽出したRNAからcDNAを合成した。ビオチン標識したプライマーを用いてPCRを2ラウンド行って、siRNAインサートをcDNAから増幅した。次いでλエキソヌクレアーゼでPCR産物を処理し、ビオチン標識されていないセンス鎖を除去した。10μgのビオチン標識試料をAffymetrix GeneChipマイクロアレイ(HG−U133+2.0)にハイブリダイズさせた。取得したデータは、GeneNet siRNA Library Data Analysis Software(System Biosciences)を使用して解析した。 Screening of the shRNA library was performed according to the manufacturer's protocol. Briefly, 3 × 10 6 Huh-7 and Panc-1 cells were seeded in 10 cm plates, and 24 hours later, the cells were infected with lentiviral particles from GeneNet siRNA Library (System Biosciences). 72 hours after lentiviral infection, cells were infected with MO-50 with Ad-p53 or Ad-LacZ. 48 hours after infection with adenovirus, total RNA was extracted using TRIZol (Invitrogen), and cDNA was synthesized from the extracted RNA. Two rounds of PCR were performed using biotin-labeled primers to amplify siRNA inserts from cDNA. The PCR product was then treated with λ exonuclease to remove the sense strand not labeled with biotin. 10 μg of biotin labeled sample was hybridized to an Affymetrix GeneChip microarray (HG-U133 + 2.0). The acquired data was analyzed using GeneNet siRNA Library Data Analysis Software (System Biosciences).

マイクロアレイでの定量によって、コントロール細胞と比較してp53導入細胞において顕著に減少したshRNAを同定した。いくつかのshRNAが、p53誘導性アポトーシスに抵抗性のがん細胞へのp53導入によりアポトーシス性応答を引き起こした。Huh−7細胞では、コントロール細胞と比較してp53導入細胞において4倍より大きく減少したshRNAが547個あった。Panc−1細胞では、コントロール細胞と比較してp53導入細胞において16倍より大きく減少したshRNAが1418個あった(図2A、破線で囲まれた領域)。両細胞株で共通して減少していた28個のshRNA(図2B)について、そのsiRNAセンス鎖をコードする塩基配列を表1に示す。
Microarray quantification identified shRNAs that were significantly reduced in p53 transfected cells compared to control cells. Several shRNAs caused an apoptotic response by introducing p53 into cancer cells resistant to p53-induced apoptosis. In Huh-7 cells, there were 547 shRNAs that were decreased more than 4-fold in p53-introduced cells compared to control cells. In Panc-1 cells, there were 1418 shRNAs that were reduced more than 16-fold in p53-introduced cells compared to control cells (FIG. 2A, region surrounded by a broken line). Table 1 shows the nucleotide sequences encoding the siRNA sense strands of 28 shRNAs (Fig. 2B) that were decreased in common in both cell lines.

これらのshRNAのうち、shRNA−58335がp53存在下で著しく減少していた(Huh−7細胞で66倍、Panc−1細胞で436倍)。以下、このshRNA−58335についてさらなる評価を行った。   Of these shRNAs, shRNA-58335 was markedly reduced in the presence of p53 (66-fold for Huh-7 cells and 436-fold for Panc-1 cells). Hereinafter, this shRNA-58335 was further evaluated.

<実施例2 shRNA−58335によるp53誘導性アポトーシスの増強>
shRNA−58335を発現するレンチウイルスまたはコントロール配列を発現するレンチウイルスをHuh−7細胞に感染させて安定発現させ、Sub−G期の細胞集団を評価することでp53誘導性アポトーシスを定量化した。
<Example 2 Enhancement of p53-induced apoptosis by shRNA-58335>
p53-induced apoptosis was quantified by infecting Huh-7 cells stably with lentivirus expressing shRNA-58335 or lentivirus expressing control sequences, and evaluating sub-G 1 phase cell populations. .

Huh−7細胞に、shRNA−58335(5’−TGGCGGCCCAGCAACTGTGTAAAGAATCTTCCTGTCAGAATTCTTTACACAGTTGCTGGGCCGCCA−3’(配列番号29))またはルシフェラーゼコントロールshRNA(5’−GTGCGTTGTTAGTACTAATCCTATTTGTGAAGCAGATGAAATAGGGTTGGTACTAGCAACGCAC−3’(配列番号30))を発現するレンチウイルス(pSIH−H1−puro)を感染させた。感染から24時間後、ピューロマイシン(2μg/ml)を含有する培地で細胞を培養し、選択されたピューロマイシン抵抗性細胞をshRNA安定発現Huh−7細胞として、以下の試験に用いた。   In Huh-7 cells, shRNA-58335 (5'-TGGCGGCCCAGCAACTGTGTAAAGAATCTTCCTGTCAGAATTCTTTACACAGTTGCTGGGCCGCCA-3 '(SEQ ID NO: 29)) or luciferase control shRNA (5'-GTGCGTTGTTAGTACTAATCCTATTTGTGAAGCAGATGAAATAGGGTTGGTACTAGCAACGCAC-3' (SEQ ID NO: 30)) lentiviruses expressing (pSIH-H1 -Puro). Twenty-four hours after infection, the cells were cultured in a medium containing puromycin (2 μg / ml), and the selected puromycin-resistant cells were used as shRNA stably expressing Huh-7 cells in the following tests.

shRNA安定発現Huh−7細胞にAd−p53またはAd−LacZをMOI200で感染させた。感染から24時間後、細胞を0.5μg/mlのアドリアマイシン(Sigma)で処理した。処理から48時間後、細胞をウェスタンブロットまたはフローサイトメトリーによる分析に供した。   shRNA stable expression Huh-7 cells were infected with Ad-p53 or Ad-LacZ at MOI200. Twenty-four hours after infection, the cells were treated with 0.5 μg / ml adriamycin (Sigma). 48 hours after treatment, cells were subjected to analysis by Western blot or flow cytometry.

ウェスタンブロット分析のため、アドリアマイシン処理後の細胞を、RIPAバッファー(150mM NaCl、1% NP40、0.5%デオキシコール酸ナトリウム、0.1% SDSおよび50mM Tris HCl、pH8.0)を使用して4℃で抽出し、全細胞溶解液を調製した。試料をSDS−PAGEで分画し、Immobilon−Pメンブレン(Millipore)にトランスファーして、ウェスタンブロット分析を行った。p53、MDM2、p21、カスパーゼ−3(切断型)およびアクチンのそれぞれについて、一次抗体として、Santa Cruz Biotechnologyから購入した抗p53マウス抗体(DO−1)、抗MDM2マウス抗体(SMP14)および抗p21マウス抗体(F−5)、Milliporeから購入した抗アクチンマウス抗体、Cell Signaling Technologyから購入した抗カスパーゼ−3ウサギ抗体(8G10)を使用して、増強化学発光(ECL)(GE Healthcare)を用いて、検出を行った。   For Western blot analysis, cells after adriamycin treatment were used using RIPA buffer (150 mM NaCl, 1% NP40, 0.5% sodium deoxycholate, 0.1% SDS and 50 mM Tris HCl, pH 8.0). Extraction was performed at 4 ° C. to prepare a whole cell lysate. Samples were fractionated by SDS-PAGE, transferred to Immobilon-P membrane (Millipore), and subjected to Western blot analysis. Anti-p53 mouse antibody (DO-1), anti-MDM2 mouse antibody (SMP14) and anti-p21 mouse purchased from Santa Cruz Biotechnology as primary antibodies for each of p53, MDM2, p21, caspase-3 (cleaved type) and actin Using antibody (F-5), anti-actin mouse antibody purchased from Millipore, anti-caspase-3 rabbit antibody (8G10) purchased from Cell Signaling Technology, using enhanced chemiluminescence (ECL) (GE Healthcare), Detection was performed.

フローサイトメトリーによる分析のため、アドリアマイシン処理後の細胞をトリプシン処理により回収し、遠心分離によりペレット化した。ペレット化した細胞を90%の冷エタノールで固定し、RNアーゼA(500単位/ml)で処理し、次いでヨウ化プロピジウム(50mg/ml)で染色した。試料を、FACSCaliburフローサイトメーター(BD Bioscience)で分析した。実験は少なくとも3反復し、各試料について50,000イベントを分析した。データはFlowJoソフトウェア(Tree Star)を用いて分析した。   For analysis by flow cytometry, cells after treatment with adriamycin were collected by trypsinization and pelleted by centrifugation. Pelleted cells were fixed with 90% cold ethanol, treated with RNase A (500 units / ml) and then stained with propidium iodide (50 mg / ml). Samples were analyzed on a FACSCalibur flow cytometer (BD Bioscience). The experiment was repeated at least 3 times and 50,000 events were analyzed for each sample. Data was analyzed using FlowJo software (Tree Star).

結果を図3に示す。p53導入によってshRNA−58335感染細胞ではコントロール細胞と比べて強いアポトーシス応答が誘導され、さらにアドリアマイシンで処理するとアポトーシス応答は顕著に増強された(図3AおよびB)。ウェスタンブロッティングにより、別のアポトーシス指標であるカスパーゼ−3切断の増大も観察された(図3C)。同じく変異p53を有し、p53導入によって弱いアポトーシス応答を示す大腸がん細胞株SW480においても、shRNA−58335はp53誘導性アポトーシス応答を感作した(図3D)。したがって、shRNA−58335はがん細胞株においてアポトーシス応答を改善することが示された。   The results are shown in FIG. The introduction of p53 induced a strong apoptotic response in shRNA-58335-infected cells as compared to control cells, and when treated with adriamycin, the apoptotic response was significantly enhanced (FIGS. 3A and B). Western blotting also observed an increase in caspase-3 cleavage, another indicator of apoptosis (FIG. 3C). ShRNA-58335 also sensitized the p53-induced apoptotic response in colorectal cancer cell line SW480, which also has mutation p53 and shows a weak apoptotic response upon introduction of p53 (FIG. 3D). Thus, shRNA-58335 was shown to improve the apoptotic response in cancer cell lines.

なお、p53の下流に存在するMDM2およびp21のタンパク質量は、p53のタンパク質量に対応して増減しており、shRNA−58335による影響は観察されなかった。   Note that the amounts of MDM2 and p21 proteins present downstream of p53 increased or decreased in accordance with the amount of p53 protein, and no effect of shRNA-58335 was observed.

<実施例3 shRNA−58335存在下でのp53による腫瘍増殖阻害>
腫瘍形成の異種移植モデルにおいて、p53導入の腫瘍抑制効果を試験した。
<Example 3 Tumor growth inhibition by p53 in the presence of shRNA-58335>
The tumor-suppressing effect of p53 introduction was tested in a xenograft model of tumorigenesis.

全ての動物は、SPF条件下で維持し、札幌医科大学の動物実験委員会によって定められたガイドラインに従って取り扱った。定着腫瘍を処置する効果を評価するため、24匹の雌性BALB/cヌードマウスに、shRNA−58335またはコントロールのレトロウイルスベクターを感染させた2×10個のHuh−7細胞を両脇腹に皮下注射した(s.c.)。腫瘍サイズが100mmに達したら、マウスに1×10p.f.u(100マイクロリットルのPBS中)のAd−p53またはAd−LacZを、第0日、第1日および第2日(図4中の矢印)の合計3回、直接腫瘍内に注射した。各処置群あたり3匹のマウスを用いた。マウスにおける腫瘍形成を2週までモニターした。腫瘍体積は、式V(mm)=a×b2/2(式中、「a」は最長径を示し、「b」は垂直直径である)で計算した。 All animals were maintained under SPF conditions and handled according to the guidelines established by the Animal Care Committee of Sapporo Medical University. To evaluate the effect of treating established tumors, 24 female BALB / c nude mice were subcutaneously injected on both flank with 2 × 10 6 Huh-7 cells infected with shRNA-58335 or control retroviral vector. Injected (sc). When the tumor size reached 100 mm 3 , the mice were given 1 × 10 9 p. f. u (in 100 microliters of PBS) of Ad-p53 or Ad-LacZ were injected directly into the tumor three times on day 0, day 1 and day 2 (arrows in FIG. 4). Three mice were used for each treatment group. Tumor formation in mice was monitored for up to 2 weeks. Tumor volume was calculated by the formula V (mm 3 ) = a × b 2/2 (where “a” indicates the longest diameter and “b” is the vertical diameter).

結果を図4に示す。コントロールshRNAを感染させたHuh−7細胞ではAd−p53注射は腫瘍体積に影響を及ぼさなかった一方(図4左)、shRNA−58335を感染させたHuh−7細胞ではAd−p53注射によって腫瘍体積の顕著な減少が認められた(図4右)。したがって、p53と特定のshRNAとを組み合わせた処置がin vivoでのがん治療に効果的であることが示された。   The results are shown in FIG. In Huh-7 cells infected with control shRNA, Ad-p53 injection did not affect tumor volume (FIG. 4 left), whereas in Huh-7 cells infected with shRNA-58335, tumor volume was increased by Ad-p53 injection. A marked decrease was observed (right side of FIG. 4). Therefore, it was shown that the treatment combining p53 and a specific shRNA is effective for cancer treatment in vivo.

<実施例4 shRNA−58335によるPRIMA−1誘導性アポトーシスの増強>
アデノウイルスでのp53導入の代わりに、変異p53タンパク質の配列特異的DNA結合能および活性構造を回復させることが知られているPRIMA−1を用いて、実施例2と同様の試験を行った。
<Example 4 Enhancement of PRIMA-1-induced apoptosis by shRNA-58335>
The same test as in Example 2 was performed using PRIMA-1, which is known to restore the sequence-specific DNA binding ability and active structure of the mutant p53 protein, instead of introducing p53 with adenovirus.

shRNA安定発現Huh−7細胞を、200μMのPRIMA−1(Cayman Chemical)および/または0.5μg/mlのアドリアマイシンで処理し、処理から72時間後にフローサイトメトリーに供した。また、選択培地として4μg/mlのピューロマイシンを含有する培地を用いて選抜したshRNA安定発現Panc−1細胞を、200μMのPRIMA−1(Cayman Chemical)および/または300μMのVP−16(Sigma)で処理し、処理から48時間後にフローサイトメトリーに供した。その他の点は実施例2と同様の方法で試験を行った。   shRNA stably expressing Huh-7 cells were treated with 200 μM PRIMA-1 (Cayman Chemical) and / or 0.5 μg / ml adriamycin and subjected to flow cytometry 72 hours after treatment. In addition, stable shRNA-expressing Panc-1 cells selected using a medium containing 4 μg / ml puromycin as a selective medium were added with 200 μM PRIMA-1 (Cayman Chemical) and / or 300 μM VP-16 (Sigma). Treated and subjected to flow cytometry 48 hours after treatment. The other points were tested in the same manner as in Example 2.

結果を図5に示す。Huh−7細胞の場合、PRIMA−1とアドリアマイシンとを組み合わせた処理により、コントロールshRNA感染細胞と比べてshRNA−58335感染細胞において強いアポトーシス応答が誘導された(図5AおよびB)。   The results are shown in FIG. In the case of Huh-7 cells, treatment with a combination of PRIMA-1 and adriamycin induced a strong apoptotic response in shRNA-58335 infected cells compared to control shRNA infected cells (FIGS. 5A and B).

Panc−1細胞の場合、アドリアマイシン処理ではアポトーシス応答が誘導されなかったことから、アドリアマイシンの代わりにVP−16(エポキシド)を用いて同様の試験を行った。PRIMA−1とVP−16とを組み合わせた処理により、コントロールshRNA感染細胞と比べてshRNA−58335感染細胞においてアポトーシス応答の顕著な増強が認められた(図5C)。   In the case of Panc-1 cells, the apoptotic response was not induced by treatment with adriamycin. Therefore, a similar test was performed using VP-16 (epoxide) instead of adriamycin. Treatment with combination of PRIMA-1 and VP-16 resulted in a marked enhancement of the apoptotic response in shRNA-58335 infected cells compared to control shRNA infected cells (FIG. 5C).

したがって、shRNA−58335は、p53導入によるアポトーシス応答だけでなく、p53の機能回復によるアポトーシス応答も効果的に増強することが明らかになった。   Therefore, it was revealed that shRNA-58335 effectively enhances not only apoptotic response due to p53 introduction but also apoptotic response due to functional recovery of p53.

<実施例5 shRNA−58335による遺伝子発現パターンの変化>
さらに、p53誘導性アポトーシスに対するshRNA−58335の効果を評価するため、以下のマイクロアレイ分析を行って、遺伝子発現パターンの変化を観察した。
<Example 5 Change of gene expression pattern by shRNA-58335>
Furthermore, in order to evaluate the effect of shRNA-58335 on p53-induced apoptosis, the following microarray analysis was performed to observe changes in gene expression patterns.

shRNA−58335またはコントロールshRNAを安定発現するHuh−7細胞に、Ad−p53をMOI200で感染させた。感染から24時間後、全RNAをRNeasy miniキット(QIAGEN)により、製造者のプロトコルに従って抽出した。全RNAをCy3で標識し、cDNAマイクロアレイ(Agilent SurePrint G3 Human GE)にハイブリダイズさせて、Agilent SureScanにより製造者のプロトコルに従ってスキャンした。取得したデータはLimma(R package)を用いて正規化した。マイクロアレイデータはNCBI Gene Expression Omnibus(GEO)に登録した(アクセッション番号GSE56156)。   Huh-7 cells stably expressing shRNA-58335 or control shRNA were infected with Ad-p53 at MOI200. Twenty-four hours after infection, total RNA was extracted with the RNeasy mini kit (QIAGEN) according to the manufacturer's protocol. Total RNA was labeled with Cy3, hybridized to a cDNA microarray (Agilent SurePrint G3 Human GE) and scanned by Agilent SureScan according to the manufacturer's protocol. The acquired data was normalized using Limma (R package). The microarray data was registered in NCBI Gene Expression Omnibus (GEO) (accession number GSE56156).

マイクロアレイ分析の結果、コントロール細胞と比較してshRNA−58335感染細胞において2倍以上の発現量の減少が認められた350個の遺伝子の一覧を表2に、これらについての遺伝子オントロジー解析の結果を表3に示す。

As a result of the microarray analysis, Table 2 shows a list of 350 genes in which the expression level of the shRNA-58335-infected cells was more than doubled as compared to the control cells, and Table 2 shows the results of gene ontology analysis for these genes. 3 shows.

遺伝子オントロジー解析により、shRNA−58335は、細胞周期進行および細胞分裂に関与する遺伝子群と関連することが明らかになった。この結果は、shRNA−58335が細胞分裂プロセスに関連する遺伝子の発現を調節することでp53導入後のアポトーシス応答を引き起こし得ることを示唆するものである。   Gene ontology analysis revealed that shRNA-58335 is associated with a group of genes involved in cell cycle progression and cell division. This result suggests that shRNA-58335 may trigger an apoptotic response after introduction of p53 by regulating the expression of genes associated with the cell division process.

本発明の医薬は、がんのp53抵抗性を減弱させ、p53のがん治療効果を増強することから、従来のp53単独治療では困難であったp53抵抗性がんに対する効果的な処置を提供する。さらに、本発明の医薬は、ウイルスベクターの使用を必須とせず、また従来の放射線治療および化学療法との併用によって一層効果が高められて、多様ながんの処置に用いることができる。   Since the medicament of the present invention attenuates p53 resistance of cancer and enhances the cancer therapeutic effect of p53, it provides an effective treatment for p53 resistant cancer that has been difficult with conventional p53 monotherapy. To do. Furthermore, the medicament of the present invention does not require the use of a viral vector, and the effect is further enhanced by the combined use with conventional radiotherapy and chemotherapy, and can be used for treatment of various cancers.

Claims (10)

p53および/またはp53を誘導する物質と組み合わせて使用するための、配列番号1〜28のいずれかに示される塩基配列を含むDNAおよび/または該DNAによりコードされるRNAを含有する、p53のみによる処置に抵抗性を有するがんを処置するための医薬。   p53 and / or p53 alone containing DNA containing the nucleotide sequence shown in any of SEQ ID NOs: 1 to 28 and / or RNA encoded by the DNA for use in combination with a substance that induces p53 A medicament for treating cancer that is resistant to treatment. p53および/またはp53を誘導する物質と、
配列番号1〜28のいずれかに示される塩基配列を含むDNAおよび/または該DNAによりコードされるRNA
とを含有する、p53のみによる処置に抵抗性を有するがんを処置するための医薬。
a substance that induces p53 and / or p53;
DNA comprising the base sequence shown in any one of SEQ ID NOs: 1 to 28 and / or RNA encoded by the DNA
And a medicament for treating cancer resistant to treatment with p53 alone.
p53および/またはp53を誘導する物質が、p53タンパク質およびその機能的等価物、これらをコードする核酸、ならびに変異p53の機能を回復させる物質よりなる群から選択される1以上の物質である、請求項1または2に記載の医薬。   The substance that induces p53 and / or p53 is one or more substances selected from the group consisting of p53 protein and functional equivalents thereof, nucleic acids encoding them, and substances that restore the function of mutant p53. Item 3. The medicine according to Item 1 or 2. 前記DNAが、
siRNAを構成する二本鎖RNAのうちのいずれか一方のRNA鎖、または
該RNA鎖とその相補的RNA鎖とがヘアピンループを形成することができる一本鎖RNA部分によって連結された構造を有するshRNA
をコードする、請求項1から3のいずれかに記載の医薬。
The DNA is
One of the double-stranded RNAs constituting the siRNA, or a structure in which the RNA strand and its complementary RNA strand are linked by a single-stranded RNA portion capable of forming a hairpin loop shRNA
The medicament according to any one of claims 1 to 3, which encodes.
前記DNAが配列番号1に示される塩基配列を含む、請求項1から4のいずれかに記載の医薬。   The pharmaceutical according to any one of claims 1 to 4, wherein the DNA comprises the base sequence represented by SEQ ID NO: 1. 前記shRNAが、配列番号29に示される塩基配列を有するDNAによりコードされる、請求項4に記載の医薬。   The medicament according to claim 4, wherein the shRNA is encoded by a DNA having the base sequence represented by SEQ ID NO: 29. p53を活性化する処置とさらに組み合わせて使用される、請求項1から6のいずれかに記載の医薬。   The medicament according to any one of claims 1 to 6, which is further used in combination with a treatment for activating p53. p53を活性化する処置が、がんの放射線治療または化学療法である、請求項7に記載の医薬。   The medicament according to claim 7, wherein the treatment for activating p53 is radiotherapy or chemotherapy for cancer. p53を活性化する物質と、請求項1から6のいずれかに記載の医薬とを組み合わせた、組み合わせ医薬。   A combination drug comprising a combination of a substance that activates p53 and the drug according to any one of claims 1 to 6. p53を活性化する物質が、化学療法のための抗がん剤である、請求項9に記載の医薬。

The medicament according to claim 9, wherein the substance that activates p53 is an anticancer agent for chemotherapy.

JP2014151278A 2014-07-24 2014-07-24 Medicine for treating cancer Pending JP2016023182A (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2014151278A JP2016023182A (en) 2014-07-24 2014-07-24 Medicine for treating cancer

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2014151278A JP2016023182A (en) 2014-07-24 2014-07-24 Medicine for treating cancer

Publications (1)

Publication Number Publication Date
JP2016023182A true JP2016023182A (en) 2016-02-08

Family

ID=55270271

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP2014151278A Pending JP2016023182A (en) 2014-07-24 2014-07-24 Medicine for treating cancer

Country Status (1)

Country Link
JP (1) JP2016023182A (en)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2021516214A (en) * 2018-01-02 2021-07-01 ルイ ジン ホスピタル,シャンハイ ジアオ トン ユニバーシティ スクール オブ メディスン How to treat MP53 rescue compounds and P53 disorders

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2021516214A (en) * 2018-01-02 2021-07-01 ルイ ジン ホスピタル,シャンハイ ジアオ トン ユニバーシティ スクール オブ メディスン How to treat MP53 rescue compounds and P53 disorders

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Topper et al. Epigenetic therapy ties MYC depletion to reversing immune evasion and treating lung cancer
JP2021063120A (en) Combination method for treatment of cancer
JP2024069537A (en) Combination Vectors and Methods for Treating Cancer
EP3430143B1 (en) Inhibitors of srsf1 to treat neurodegenerative disorders
US20210324384A1 (en) SILENCING TGF-BETA 1 and COX2 USING siRNAs DELIVERED in a POLYPEPTIDE NANOPARTICLE ALONE and in COMBINATION with IMMUNE CHECKPOINT INHIBITORS to TREAT CANCER
US20210220417A1 (en) Hsv-1 oncolytic virus therapies that specifically kill alt dependent cancers
WO2019083971A1 (en) Methods of treating cancer using lsd1 inhibitors in combination with immunotherapy
CN115297868B (en) Compositions and methods for organ protective expression and modulation of ribonucleic acids
Zhou et al. Targeting RPTPσ with lentiviral shRNA promotes neurites outgrowth of cortical neurons and improves functional recovery in a rat spinal cord contusion model
Kwan et al. Macrophages mediate the antitumor effects of the oncolytic virus HSV1716 in mammary tumors
JP2020533414A (en) Methods and Compositions for Enhancer Tumor Immunogenicity
Liang et al. Targeting matrix metalloproteinase MMP3 greatly enhances oncolytic virus mediated tumor therapy
WO2020146345A1 (en) Methods of treating cancer using lsd1 inhibitors and/or tgf-beta inhibitors in combination with immunotherapy
Jiang et al. Artificial microRNA-mediated Tgfbr2 and Pdgfrb co-silencing ameliorates carbon tetrachloride–induced hepatic fibrosis in mice
Guo et al. siRNA-mediated inhibition of hTERT enhances chemosensitivity of hepatocellular carcinoma
US20100260718A1 (en) Irf-4 as a tumor suppressor and uses thereof
JP7362156B2 (en) Pharmaceutical compositions, kits and methods for treating tumors
JP2016023182A (en) Medicine for treating cancer
KR101858128B1 (en) Pharmaceutical composition for treating cancer having radioresistant phenotype comprising SULF2 inhibitor
WO2019209704A1 (en) Microrna 584-5p compositions and methods for treating cancer
US20200038440A1 (en) Short-term activated dc1s and methods for their production and use
US20230270881A1 (en) Oncogenic trim37 is a targetable epigenetic driver of metastasis and links chemoresistance and metastatic fate in triple-negative breast cancer
Malik et al. Antitumor efficacy of a sequence-specific DNA-targeted γPNA-based c-Myc inhibitor
US20220347180A1 (en) Enhancing cancer therapy treatment with bh3 mimetics
JP2020517580A (en) Methods and compositions for treating ionizing radiation resistant tumors