JP2015154769A - Method for producing protein by transient expression using plants - Google Patents
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Landscapes
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Abstract
Description
本発明は、医療用途等に有用なタンパク質を、植物を用いた一過性発現により効率よく製造する方法に関する。 The present invention relates to a method for efficiently producing a protein useful for medical use or the like by transient expression using a plant.
近年、植物を用いたタンパク質の製造方法は、複雑なタンパク質の発現が可能で、低コストでの大量生産ができ、分離精製が容易であり、かつ安全性が保障されている等の理由により注目されている。植物を用いたタンパク質の製造方法としては、以下に記載の方法が知られている。 In recent years, protein production methods using plants have attracted attention because they can express complex proteins, can be mass-produced at low cost, are easily separated and purified, and are safe. Has been. The following methods are known as protein production methods using plants.
例えば、特許文献１には形質転換アグロバクテリウムを感染させたベンサミアナタバコ（Nicotiana benthamiana）を温室で栽培することによってＨ１タンパク質などのインフルエンザウイルス様粒子（ＶＬＰ）を生産する方法が記載されている。また、特許文献２には植物に形質転換アグロバクテリウムを特定の圧力条件の下で感染させてペプチドまたはタンパク質を生産する方法が開示され、実施例１には、真空浸潤法及び過剰圧力により植物を処理する手順が具体的に記載されている。 For example, Patent Document 1 describes a method for producing influenza virus-like particles (VLP) such as H1 protein by cultivating Nicotiana benthamiana infected with transformed Agrobacterium in a greenhouse. Yes. Patent Document 2 discloses a method of producing a peptide or protein by infecting a plant with a transformed Agrobacterium under a specific pressure condition. Example 1 discloses a plant produced by vacuum infiltration and excessive pressure. The procedure for processing is specifically described.
特許文献３には、植物の組織を、感染性形質転換ベクター（アグロバクテリウム等）を含む培地中に浸す工程と、該組織に対する圧力を−１０から−１００ｋＰａゲージへ低下させる工程と、該圧力を１０〜６０分間保持した後、大気圧以上に上昇させて、該形質転換ベクター由来の配列により選抜することで該植物細胞又は組織のゲノム中へ該形質転換ベクター由来の配列が組み込まれた形質転換体を得る工程とを含む植物の形質転換方法が記載されている。 Patent Document 3 discloses a step of immersing a plant tissue in a medium containing an infectious transformation vector (eg, Agrobacterium), a step of reducing the pressure on the tissue from −10 to −100 kPa gauge, and the pressure. Is maintained for 10 to 60 minutes, then raised to atmospheric pressure or higher, and selected by the sequence derived from the transformation vector so that the transformant-derived sequence is incorporated into the genome of the plant cell or tissue. A method for transforming a plant comprising the step of obtaining a transformant is described.
上記のように、植物を用いてタンパク質を生産する技術は知られているが、その生産効率を向上させるための条件検討は未だ十分になされてはいない。
すなわち、特許文献１では、アグロバクテリウム浸透による植物におけるインフルエンザウイルスヘマグルチニンの一過性発現が検出されているものの、その詳細な発現効率については検討がなされていない。
特許文献２では、そのままの手を加えていない植物を、アグロバクテリウムを含む感染液と接触させているが、固形培地を用いて植物を栽培していることから、当該植物を処理する際に、地上部（葉、茎など）と地下部（根など）とに分けてチャンバーに収容することができ、水耕栽培時における根の取り扱いに関しては検討がなされていない。
特許文献３では、アグロバクテリウムを含む感染液に浸潤させる工程において、植物組織の過度の水潤化を避けるために、減圧度及び減圧時間を調整することが記載されているものの、植物での一過性発現における組織ごとの詳細な取り扱いについては検討されていない。
As described above, a technique for producing a protein using a plant is known, but conditions for improving the production efficiency have not been sufficiently studied yet.
That is, in Patent Document 1, although transient expression of influenza virus hemagglutinin in plants due to Agrobacterium permeation has been detected, the detailed expression efficiency has not been studied.
In Patent Document 2, a plant that is not touched as it is is brought into contact with an infectious solution containing Agrobacterium, but since the plant is cultivated using a solid medium, the plant is treated. In addition, it can be divided into above-ground parts (leaves, stems, etc.) and underground parts (roots, etc.) and accommodated in the chamber, and the handling of roots during hydroponics has not been studied.
Patent Document 3 describes that in the step of infiltrating an infectious solution containing Agrobacterium, the degree of decompression and the decompression time are adjusted in order to avoid excessive watering of the plant tissue. Detailed handling for each tissue in transient expression has not been studied.
本発明は、植物を用いて目的タンパク質を製造する際に、植物をアグロバクテリウムに感染させる工程で、アグロバクテリウムを含む感染液に浸漬させる根や葉の部分の取り扱いについて検討し、目的タンパク質の製造効率を向上させることを目的とする。 The present invention examines the handling of roots and leaves that are immersed in an infectious solution containing Agrobacterium in the step of infecting the plant with Agrobacterium when producing the target protein using the plant. The purpose is to improve the production efficiency.
本発明者らは上記課題を解決するために鋭意検討を行った結果、宿主となる植物の栽培方法及びアグロバクテリウムによる感染工程における植物の処理方法を改善することにより、従来法による植物を用いたタンパク質の一過性発現効率を著しく向上させる方法を見出し、本発明を完成させた。 As a result of intensive studies to solve the above-mentioned problems, the present inventors have improved the cultivation method of the plant as a host and the treatment method of the plant in the infection process by Agrobacterium, thereby using the plant by the conventional method. The present invention was completed by finding a method for significantly improving the transient expression efficiency of the protein.
すなわち、本発明の要旨は以下のとおりである。 That is, the gist of the present invention is as follows.
[１]アグロバクテリウムに感染し得る植物を水耕栽培法で栽培する工程、
前記水耕栽培にて生育した根及び葉を含む植物を、目的タンパク質をコードするポリヌクレオチドを有するアグロバクテリウムを含む感染液に接触させることにより感染させる工程、及び
前記感染後の植物をさらに栽培して、目的タンパク質を前記植物で発現させる工程を含む、植物によるタンパク質の製造方法であって、
前記感染工程は、
前記アグロバクテリウムを含む感染液に、前記植物の少なくとも一部を浸漬した状態で圧力を調節することにより行われ、当該工程において感染液に浸漬される根の割合が根全体の５０質量％以下であり、かつ前記圧力調節段階の少なくとも一部において、一つの葉全体を当該感染液の液面下に浸漬する工程を含むことを特徴とする、植物によるタンパク質の製造方法。
[２]前記感染工程が、真空浸潤法にて行われる[１]に記載のタンパク質の製造方法。
[３]前記真空浸潤法が、減圧された状態から復圧する段階において、前記一つの葉全体が当該感染液の液面下に浸漬された状態で行われる[２]に記載のタンパク質の製造方法。
[４]前記発現工程の後に、前記植物から目的タンパク質を精製し、及び／又は回収する工程を含む[１]から[３]の何れかに記載のタンパク質の製造方法。
[５]前記目的タンパク質が、医療用タンパク質である[１]から[４]の何れかに記載のタンパク質の製造方法。
[６]前記植物が、ベンサミアナタバコである[１]から[５]の何れかに記載のタンパク質の製造方法。
[1] A process of cultivating a plant that can be infected with Agrobacterium by hydroponics,
Infecting a plant containing roots and leaves grown in hydroponics with an infectious solution containing Agrobacterium having a polynucleotide encoding a target protein, and further cultivating the plant after infection A method for producing a protein by a plant, comprising the step of expressing the target protein in the plant,
The infection process includes
It is performed by adjusting the pressure in a state where at least a part of the plant is immersed in the infectious solution containing Agrobacterium, and the proportion of roots immersed in the infectious solution in this step is 50% by mass or less of the whole roots And at least a part of the pressure adjustment step, the method includes a step of immersing the entire leaf under the surface of the infectious solution, wherein the protein is produced by a plant.
[2] The method for producing a protein according to [1], wherein the infection step is performed by a vacuum infiltration method.
[3] The method for producing a protein according to [2], wherein the vacuum infiltration method is performed in a state in which the entire leaf is immersed under the surface of the infectious solution when the pressure is restored from the decompressed state. .
[4] The method for producing a protein according to any one of [1] to [3], comprising a step of purifying and / or recovering the target protein from the plant after the expression step.
[5] The method for producing a protein according to any one of [1] to [4], wherein the target protein is a medical protein.
[6] The method for producing a protein according to any one of [1] to [5], wherein the plant is benthamiana tobacco.
本発明の植物によるタンパク質の製造方法によれば、水耕栽培を行うことで、土耕栽培に比べて雑菌等の混入が抑制されることにより安全性が高く、かつ栽培速度が加速されるためタンパク質の発現量が向上する。また、感染工程において、根が感染液に浸漬する程度を制御することで、感染後の発現工程において植物が枯れて生産性が低下することを抑制できる。さらに、感染工程における葉の浸漬状態を制御することでアグロバクテリウムの感染効率を向上させてタンパク質の発現量を増加させることができる。 According to the method for producing a protein from a plant of the present invention, by performing hydroponics, safety is high and the cultivation speed is accelerated by suppressing contamination of bacteria and the like as compared with soil cultivation. Increased protein expression level. Moreover, in an infection process, it can control that a plant dies and a productivity falls by the expression process after infection by controlling the grade that a root immerses in an infection liquid. Furthermore, by controlling the immersion state of the leaves in the infection process, the infection efficiency of Agrobacterium can be improved and the expression level of the protein can be increased.
本発明の、植物を用いて目的タンパク質を製造する方法は、植物を水耕栽培法で栽培する工程（栽培工程）、次いで、該植物に目的タンパク質をコードするポリヌクレオチドを有するアグロバクテリウムを感染させる工程（感染工程）、及び、感染工程後の植物を栽培して前記目的タンパク質を発現させる工程（発現工程）を含む。 The method for producing a target protein using a plant according to the present invention includes a step of cultivating a plant by a hydroponics method (cultivation step), and then infecting the plant with Agrobacterium having a polynucleotide encoding the target protein. And a step of cultivating the plant after the infection step to express the target protein (expression step).
本発明で用いることのできる植物としては、アグロバクテリウムに感染し得る植物であり、目的タンパク質を発現する植物であればよく、特に限定されない。例えば、双子葉植物と単子葉植物が挙げられる。具体的には、双子葉植物ではナス科植物として、タバコ、ジャガイモ、トマト等が、アブラナ科植物として、ルッコラ、コマツナ、ミズナ、カラシナ、シロイズナズナ等が、キク科植物として、チコリ、エンダイブ、アーティチョーク等が、マメ科植物として、アルファルファ、リョクトウ、ダイズ等が、アカザ科植物としてホウレンソウ、テンサイ等が、シソ科植物としてシソ、バジル等が、セリ科植物としてミツバ等が例示される。単子葉植物としてはイネ科植物として、イネ、コムギ、オオムギ、トウモロコシ等が、アオイ科植物としてはワタ等が例示される。中でも、ナス科植物が好ましく、タバコがより好ましい。 The plant that can be used in the present invention is a plant that can infect Agrobacterium, and may be any plant that expresses the target protein, and is not particularly limited. Examples include dicotyledonous plants and monocotyledonous plants. Specifically, dicotyledonous plants include solanaceous plants such as tobacco, potato, tomato, etc., cruciferous plants such as arugula, komatsuna, mizuna, mustard, white lizards, etc. However, as a leguminous plant, alfalfa, mungbean, soybean and the like are exemplified, spinach, sugar beet and the like are used as a red crustaceae plant, perilla, basil and the like are exemplified as a family Lamiaceae, and bees and the like are exemplified as a celery family. Examples of monocotyledonous plants include gramineous plants such as rice, wheat, barley and corn, and examples of mallowaceae include cotton and the like. Among these, solanaceous plants are preferable, and tobacco is more preferable.
タバコとしては、タバコ（Nicotiana tabacum）、ベンサミアナアタバコ（N. benthamiana）、ハナタバコ（N. alata）、キダチタバコ（N. glauca）、ナガバナタバコ（N. longiflora）、ニコチアナ・ペルシア（N. persica）、ニコチアナ・ルスチカ（N. rustica）、ニコチアナ・シルベストシス（N. sylvestris）などが挙げられる。 Tobacco includes Nicotiana tabacum, N. benthamiana, H. tobacco (N. alata), N. glauca, N. longiflora, Nicotiana persica, Nicotiana rustica (N. rustica), Nicotiana sylvestris (N. sylvestris) and the like.
本発明において、目的タンパク質とは、医療用や産業用に用いられるタンパク質であれば特に限定はされない。
医療用タンパク質としては、治療用タンパク質と診断タンパク質に分類され、治療用タンパク質としては、ペプチド、ワクチン、抗体、酵素、ホルモン（好ましくはペプチドホルモン）などが例示され、より具体的には、ワクチンとして使用されるウイルスタンパク質、顆粒球コロニー刺激因子（Ｇ−ＣＳＦ）、顆粒球マクロファージコロニー刺激因子（ＧＭ−ＣＳＦ）、エリスロポエチン（ＥＰＯ）、トロンボポエチン等の造血因子、インターフェロン、インターロイキン（ＩＬ）−１やＩＬ−６等のサイトカイン、モノクローナル抗体またはその断片、組織プラスミノーゲン活性化因子（ＴＰＡ）、ウロキナーゼ、血清アルブミン、血液凝固第ＶＩＩＩ因子、レプチン、インシュリン、幹細胞成長因子（ＳＣＦ）などが例示される。また、診断タンパク質としては、抗体、酵素、ホルモン等が例示される。
In the present invention, the target protein is not particularly limited as long as it is a protein used for medical or industrial purposes.
Medical proteins are classified into therapeutic proteins and diagnostic proteins. Examples of therapeutic proteins include peptides, vaccines, antibodies, enzymes, hormones (preferably peptide hormones), and more specifically, as vaccines. Viral proteins used, granulocyte colony stimulating factor (G-CSF), granulocyte macrophage colony stimulating factor (GM-CSF), erythropoietin (EPO), thrombopoietin and other hematopoietic factors, interferon, interleukin (IL) -1, Examples include cytokines such as IL-6, monoclonal antibodies or fragments thereof, tissue plasminogen activator (TPA), urokinase, serum albumin, blood coagulation factor VIII, leptin, insulin, stem cell growth factor (SCF) and the like. . Examples of diagnostic proteins include antibodies, enzymes, hormones and the like.
ワクチンとして使用されるウイルスタンパク質として好ましくは、ウイルス様粒子（ＶＬＰ）の構成タンパク質が挙げられる。ＶＬＰの構成タンパク質は単一のタンパク質でもよいし、１つ以上のタンパク質を含んでもよい。ウイルスとしては、インフルエンザウイルス、ヒト免疫不全ウイルス（ＨＩＶ）、ヒトＣ型肝炎ウイルス（ＨＣＶ）、ヒトＢ型肝炎ウイルス（ＨＢＶ）などが挙げられ、インフルエンザウイルスのＶＬＰの構成タンパク質としてはインフルエンザヘマグルチニン（ＨＡ）タンパク質などが例示される。 The virus protein used as a vaccine is preferably a virus-like particle (VLP) constituent protein. A VLP component protein may be a single protein or may include one or more proteins. Examples of the virus include influenza virus, human immunodeficiency virus (HIV), human hepatitis C virus (HCV), human hepatitis B virus (HBV) and the like. As a constituent protein of influenza virus VLP, influenza hemagglutinin (HA) ) Proteins are exemplified.
産業用タンパク質とは、食品、飼料、化粧品、繊維、洗剤、化学品などに用いられるタンパク質であり、ペプチド、酵素、機能性タンパク質が例示される。具体的には、プロテアーゼ、リパーゼ、セルラーゼ、アミラーゼ、ペプチダーゼ、ルシフェラーゼ、ラクタマーゼ、コラーゲン、ゼラチン、ラクトフェリン、クラゲ緑色蛍光タンパク質（ＧＦＰ）などが例示される。 The industrial protein is a protein used for food, feed, cosmetics, fibers, detergents, chemicals, and the like, and examples thereof include peptides, enzymes, and functional proteins. Specific examples include protease, lipase, cellulase, amylase, peptidase, luciferase, lactamase, collagen, gelatin, lactoferrin, jellyfish green fluorescent protein (GFP) and the like.
以下、本発明の製造方法の各工程について説明する。 Hereinafter, each process of the manufacturing method of this invention is demonstrated.
＜栽培工程＞
本発明は、前記植物を水耕栽培法で栽培する工程を有することを特徴とする。
水耕栽培とは、養液栽培のことをいい、養液（液体肥料）が根域を流動する流動法と養液の動きが毛管現象に依存した静置法がある。流動法には緩傾斜の平面上に養液を薄く流下させる薄膜水耕法（ＮＦＴ：Nutrient Film Technique）と、溜めた養液中で栽培する湛液型水耕法（ＤＦＴ：Deep Flow Technique）等がある。湛液型水耕法（ＤＦＴ）は、液肥の流動により十分な酸素を根部に供給して養分吸収を促進し、さらに液肥の温度及び濃度を含む根圏環境も安定化し、栽培環境を一定に整えるという利点がある。
<Cultivation process>
The present invention is characterized by having a step of cultivating the plant by hydroponics.
Hydroponics refers to hydroponics, and there are a flow method in which the nutrient solution (liquid fertilizer) flows through the root area and a stationary method in which the movement of the nutrient solution depends on the capillary phenomenon. In the flow method, the thin film hydroponics method (NFT: Nutrient Film Technique) that allows the nutrient solution to flow thinly on a gently inclined plane, and the submerged hydroponics method (DFT: Deep Flow Technique) that grows in the accumulated nutrient solution. Etc. Drip-type hydroponics (DFT) promotes nutrient absorption by supplying sufficient oxygen to the roots by the flow of liquid fertilizer, further stabilizes the rhizosphere environment including the temperature and concentration of liquid fertilizer, and makes the cultivation environment constant There is an advantage of arranging.
水耕栽培法は、栽培棚の多段化や、養液のリサイクル、肥料成分およびｐＨの管理が容易であることから好ましく、これらの中でも、根が養液中でむき出しの状態となるbare-root法が好ましい。bare-root法とは、根の全体またはその一部がそのまま養液に浸された状態で栽培する方法をいう。尚、根元はウレタン等の支持体で支えられていてもよい。根は水の中を自由に伸び、養液との接触面積が増大することで、十分な量の水分と養分を吸収できるため、一般に土壌栽培に比べ生育が旺盛になるからである。 Hydroponics is preferable because it facilitates multi-stage cultivation shelves, nutrient solution recycling, fertilizer components and pH management, and among these, the root-bare is exposed in the nutrient solution. The method is preferred. The bare-root method refers to a method of cultivating the whole or a part of the root as it is immersed in a nutrient solution. The root may be supported by a support such as urethane. This is because roots can freely grow in the water and increase the contact area with the nutrient solution, so that a sufficient amount of moisture and nutrients can be absorbed.
また、栽培工程における栽培日数は、通常５日以上、好ましくは７日以上、より好ましくは１０日以上であり、また、通常３５日以下、好ましくは２８日以下、より好ましくは２１日以下である。 Moreover, the cultivation days in the cultivation process are usually 5 days or more, preferably 7 days or more, more preferably 10 days or more, and usually 35 days or less, preferably 28 days or less, more preferably 21 days or less. .
栽培工程においては、必要に応じて、移植を行なってもよい。移植の時期としては、栽培後６日〜１５日の間に行なうことが好ましい。 In the cultivation process, transplantation may be performed as necessary. As the time of transplantation, it is preferable to carry out between 6 and 15 days after cultivation.
なお、本発明の製造方法においては、栽培工程の前に育苗工程を行うことが好ましい。育苗工程とは、植物の苗を一定期間人工的な環境下で発芽・育成させ、その後栽培工程に移植するまでの工程をいう。該育苗工程における温度、湿度等の条件は上記栽培工程における条件と同様の条件とすることができる。また、光照射の条件も太陽光、蛍光灯、ＬＥＤ、冷陰極蛍光ランプ（ＣＣＦＬ、ＨＥＦＬ）、無機・有機ＥＬ等を用いた通常の条件を採用することができるが、育苗工程においては、光照射の時間が一日当たり１２時間以上２４時間以下であるサイクル下で植物を育苗することが好ましい。なお、「光の照射時間が１日あたり１２時間以上２４時間以下」とは、必ずしも連続照射でなくてもよく、例えば、照射時間が１日あたり２０時間の場合、１０時間以上の連続照射を１日に２回行なってもよい。 In addition, in the manufacturing method of this invention, it is preferable to perform a seedling raising process before a cultivation process. The seedling raising process refers to a process until a plant seedling is germinated and grown in an artificial environment for a certain period of time and then transplanted to the cultivation process. Conditions such as temperature and humidity in the seedling raising process can be the same as the conditions in the cultivation process. In addition, light irradiation conditions may be normal conditions using sunlight, fluorescent lamps, LEDs, cold cathode fluorescent lamps (CCFL, HEFL), inorganic / organic EL, etc. It is preferable to grow plants under a cycle in which the irradiation time is 12 hours or more and 24 hours or less per day. The “light irradiation time of 12 hours or more and 24 hours or less per day” is not necessarily continuous irradiation. For example, when the irradiation time is 20 hours per day, continuous irradiation of 10 hours or more is performed. You may do it twice a day.
栽培工程では植物を、上記条件下で栽培することができれば、いずれの植物生産システムを用いてもよく、特に限定されない。栽培時の光の波長や強度の調整のしやすさから、半閉鎖型、または閉鎖型の植物工場が好ましく、閉鎖型植物工場がより好ましい。半閉鎖型としては、園芸施設、太陽光型植物工場などが例示される。 In the cultivation process, any plant production system may be used as long as the plant can be cultivated under the above conditions, and is not particularly limited. From the viewpoint of easy adjustment of the wavelength and intensity of light during cultivation, a semi-closed type or closed type plant factory is preferable, and a closed type plant factory is more preferable. Examples of the semi-closed type include horticultural facilities and solar type plant factories.
ここで、閉鎖型植物工場は、太陽光が当たらない植物工場を意味し、温度、湿度、二酸化炭素濃度、人工光の波長および照射時間などが制御された空間で植物を栽培するシステムである。閉鎖型植物工場を用いることにより、環境の制御が可能なので、植物およびそれが生産する物質の品質が安定するという効果や、外気に含まれる病原菌の感染を防ぐことができるという効果がある。 Here, the closed type plant factory means a plant factory not exposed to sunlight, and is a system for cultivating plants in a space in which temperature, humidity, carbon dioxide concentration, wavelength of artificial light, irradiation time, and the like are controlled. By using a closed plant factory, the environment can be controlled, so that the quality of the plant and the substance produced by the plant can be stabilized, and the infection of pathogenic bacteria contained in the outside air can be prevented.
閉鎖型植物工場としては、環境制御された部屋と、該環境制御された部屋内に設置され植物栽培容器を載置する植物栽培容器棚と、該植物栽培容器棚の近接部に配され植物に光を近接照射する照明を含むシステムが例示される。植物栽培容器棚は複数段に配置可能である。 The closed plant factory includes an environment-controlled room, a plant-cultivating container shelf installed in the environment-controlled room for placing a plant-cultivating container, and a plant disposed in the vicinity of the plant-cultivating container shelf. Illustrated is a system that includes illumination that provides close proximity illumination. Plant cultivation container shelves can be arranged in multiple stages.
栽培工程で栽培される植物は、その草丈（ｃｍ）が２ｃｍ以上であることが好ましく、３ｃｍ以上であることがより好ましく、また、２５ｃｍ以下であることが好ましく、１５ｃｍ以下であることがより好ましい。草丈が、上述の範囲内であると、栽培棚の多段化により閉鎖型植物工場のＳＴＹ（space time yield）向上に有利である。さらに、温度、湿度、気流などの栽培環境条件の精密制御が可能となり、栽培工程における植物の生長速度、及び発現工程における目的タンパク質の発現が向上するという効果が得られるので好ましい。なお、ここでいう「草丈」とは、地上部の下端から生長点までの長さを意味し、収穫直後の植物の地下部を切除した後、草丈の長さを測定することにより求めることができる。 The plant cultivated in the cultivation process preferably has a plant height (cm) of 2 cm or more, more preferably 3 cm or more, and preferably 25 cm or less, more preferably 15 cm or less. . When the plant height is within the above-mentioned range, it is advantageous for improving STY (space time yield) of the closed plant factory by increasing the number of cultivation shelves. Furthermore, it is possible to precisely control the cultivation environment conditions such as temperature, humidity, and air current, and this is preferable because the growth rate of the plant in the cultivation process and the expression of the target protein in the expression process are improved. In addition, the "plant height" here means the length from the lower end of the above-ground part to the growth point, and is obtained by measuring the length of the plant height after excising the underground part of the plant immediately after harvesting. it can.
栽培工程で栽培される植物は、その地上部新鮮重量（ｇ）が３ｇ以上であることが好ましく、１０ｇ以上であることがより好ましく、また、１００ｇ以下であることが好ましく、７０ｇ以下であることがより好ましい。地上部新鮮重量が、上述の範囲内である植物は生長速度が速く、このような生長速度の速い時期にある植物を用いると、目的タンパク質の生産効率が向上するので好ましい。 The plant cultivated in the cultivation process preferably has an above-ground fresh weight (g) of 3 g or more, more preferably 10 g or more, and preferably 100 g or less, and 70 g or less. Is more preferable. A plant having an above-ground fresh weight within the above-mentioned range has a high growth rate, and it is preferable to use a plant in such a high growth rate because the production efficiency of the target protein is improved.
栽培工程で栽培される植物は、その葉重量（ｇ）が２．５ｇ以上であることが好ましく、７．５ｇ以上であることがより好ましく、また、８０ｇ以下であることが好ましく、６０ｇ以下であることがより好ましい。葉重量が、上述の範囲内である植物は、生長速度が速く、このような生長速度の速い時期にある植物を用いると、目的タンパク質の生産効率が向上するので好ましい。 The plant cultivated in the cultivation process preferably has a leaf weight (g) of 2.5 g or more, more preferably 7.5 g or more, and preferably 80 g or less, and 60 g or less. More preferably. A plant having a leaf weight in the above-mentioned range has a high growth rate, and it is preferable to use a plant in such a high growth rate because the production efficiency of the target protein is improved.
栽培条件は、植物の生育および目的タンパク質の生産に適した条件であれば特に制限されないが、例えば、以下の条件で栽培することができる。 The cultivation conditions are not particularly limited as long as the conditions are suitable for plant growth and target protein production. For example, cultivation can be performed under the following conditions.
植物工場内の温度は、通常１０℃以上、好ましくは１５℃以上であり、また、通常４０℃以下、好ましくは３７℃以下である。 The temperature in the plant factory is usually 10 ° C. or higher, preferably 15 ° C. or higher, and is usually 40 ° C. or lower, preferably 37 ° C. or lower.
植物工場内の湿度は、通常４０％以上、好ましくは５０％以上であり、また、通常１００％以下、好ましくは９５％以下である。 The humidity in the plant factory is usually 40% or more, preferably 50% or more, and usually 100% or less, preferably 95% or less.
植物工場内の二酸化炭素濃度は、通常３００ｐｐｍ以上、好ましくは５００ｐｐｍ以上であり、また、通常５０００ｐｐｍ以下、好ましくは３０００ｐｐｍ以下である。 The carbon dioxide concentration in the plant factory is usually 300 ppm or more, preferably 500 ppm or more, and usually 5000 ppm or less, preferably 3000 ppm or less.
栽培工程において使用される光源としては、特に制限されないが、太陽光、蛍光灯、ＬＥＤ、冷陰極蛍光ランプ（ＣＣＦＬ、ＨＥＦＬ）、無機・有機ＥＬ等を例示することができる。好ましくは、蛍光灯、ＬＥＤ、冷陰極蛍光ランプが挙げられ、さらに好ましくはＬＥＤが挙げられる。ＬＥＤは、白熱電球、ＨＩＤランプと比較して、光変換効率が高く省電力であるので好ましい。また、植物に葉焼け障害を引き起こす熱線の放出量が小さい点でも好ましい。 Although it does not restrict | limit especially as a light source used in a cultivation process, Sunlight, a fluorescent lamp, LED, a cold cathode fluorescent lamp (CCFL, HEFL), inorganic, organic EL, etc. can be illustrated. Preferably, a fluorescent lamp, LED, and a cold cathode fluorescent lamp are mentioned, More preferably, LED is mentioned. The LED is preferable because it has high light conversion efficiency and power saving as compared with an incandescent bulb and an HID lamp. It is also preferable in that the amount of heat rays that cause leaf burning damage to plants is small.
栽培工程における光強度としては、光合成有効光量子束密度（ＰＰＦＤ）等を測定することで評価できる。ＰＰＦＤとは、光合成に有効な可視領域４００〜７００ｎｍの光の単位時間、単面積当たりの光量子数で表され、単位は、μｍｏｌ・ｍ−２・ｓ−１である。ＰＰＦＤは、通常３０μｍｏｌ・ｍ−２・ｓ−１以上から６００μｍｏｌ・ｍ−２・ｓ−１以下、好ましくは、５０μｍｏｌ・ｍ−２・ｓ−１以上から５００μｍｏｌ・ｍ−２・ｓ−１以下、さらに好ましくは、７０μｍｏｌ・ｍ−２・ｓ−１以上４００μｍｏｌ・ｍ−２・ｓ−１以下で栽培される。ここで、ＰＰＦＤは、光量子計などを用いて測定することができる。 The light intensity in the cultivation process can be evaluated by measuring photosynthetic effective photon flux density (PPFD) and the like. PPFD is represented by the unit time of light in the visible region of 400 to 700 nm effective for photosynthesis and the number of photons per unit area, and the unit is μmol · m −2 · s −1 . PPFD is usually 30μmol · m -2 · s -1 or from 600μmol · m -2 · s -1 or less, preferably, 500μmol · m -2 · s -1 or less from 50μmol · m -2 · s -1 or More preferably, it is cultivated at 70 μmol · m −2 · s −1 or more and 400 μmol · m −2 · s −1 or less. Here, PPFD can be measured using an optical quantum meter or the like.
なお、栽培工程の全期間にわたって、光強度の条件を上記の条件とする必要はなく、例えば、栽培工程を前半と後半に分けて後半のみ強度の条件を上記の条件とするなど、栽培工程のうちの一定期間のみ上記の条件下で植物を栽培してもよい。この場合、上記の条件下とする期間としては、全栽培期間の１％以上の期間が好ましく、２０％以上の期間がより好ましい。
栽培工程の全期間のうち、光強度の条件を上記の条件としない期間の光強度の条件については特に制限はなく、この期間は開放型植物工場で太陽光のもと、栽培してもよい。
In addition, it is not necessary for the conditions of light intensity to be the above-mentioned conditions over the entire period of the cultivation process. For example, the cultivation process is divided into the first half and the second half, and the conditions of the intensity of the second half are the above conditions. You may grow a plant on the said conditions only for the fixed period of them. In this case, as a period set as said conditions, the period of 1% or more of the whole cultivation period is preferable, and the period of 20% or more is more preferable.
There is no particular limitation on the light intensity condition in the period when the light intensity condition is not the above condition among the entire period of the cultivation process, and this period may be cultivated under sunlight in an open plant factory. .
また、栽培工程において、植物は、光照射の時間が一日当たり１０時間以上２４時間未満であるサイクル下で栽培されるか、または、連続光下により栽培されることが好ましい。中でも、連続光下により栽培されることがより好ましい。上述の範囲にすると、植物生速度が加速され、収穫までの栽培期間が短縮されるので好ましい。なお、「光の照射時間が１日あたり１０時間以上２４時間未満」とは、必ずしも連続照射でなくてもよく、例えば、照射時間が１日あたり２０時間の場合、１０時間以上の連続照射を１日に２回行なってもよい。
なお、ここで照射する光は、パルス光であってもよい。パルス光は、１マイクロ秒〜１秒間の短い間隔でＬＥＤ等を点滅させることにより得られるものであり、このようなパルス光を用いることにより、生理学上植物が光を必要としない時間には光を当てず、光を必要とする時間だけ光を当てることができるので光合成速度を上昇させ、電力コストを抑えることができる。この場合の照射時間は、ＬＥＤが点灯していない時間も照射時間に含むこととし、1日当たりのパルス光照射した時間の合計とする。
Moreover, in a cultivation process, it is preferable that a plant is cultivated under the cycle whose light irradiation time is 10 hours or more and less than 24 hours per day, or is cultivated under continuous light. Among these, it is more preferable to grow under continuous light. The above range is preferable because the plant growth rate is accelerated and the cultivation period until harvesting is shortened. Note that “the irradiation time of light is 10 hours or more and less than 24 hours per day” is not necessarily continuous irradiation. For example, when the irradiation time is 20 hours per day, continuous irradiation of 10 hours or more is performed. You may do it twice a day.
Note that the light irradiated here may be pulsed light. Pulsed light is obtained by blinking an LED or the like at short intervals of 1 microsecond to 1 second. By using such pulsed light, light is emitted at a time when a plant does not need light physiologically. Since the light can be applied only for the time required for light, the photosynthesis speed can be increased and the power cost can be reduced. In this case, the irradiation time includes the time when the LED is not turned on, and is the total of the irradiation time of the pulsed light per day.
＜感染工程＞
感染工程では、前記栽培工程で得られた植物に、目的タンパク質をコードするポリヌクレオチドを有するアグロバクテリウムを感染させる。
目的タンパク質をコードするポリヌクレオチドとは、前述した目的とする医療用又は産業用タンパク質をコードするポリヌクレオチドのことである。ポリヌクレオチドとしては、天然型の配列に、目的とする目的タンパク質が得られる範囲内で、適宜、変異や改変を加えたものを用いてもよい。
<Infectious process>
In the infection process, the plant obtained in the cultivation process is infected with Agrobacterium having a polynucleotide encoding the target protein.
The polynucleotide encoding the target protein is a polynucleotide encoding the target medical or industrial protein described above. As the polynucleotide, a natural sequence that has been appropriately mutated or modified within a range in which the target protein of interest can be obtained may be used.
目的タンパク質をコードするポリヌクレオチドを植物内で過剰発現させるには、該ポリヌクレオチドを適当なプロモーターの下流に機能的に連結し、得られたポリヌクレオチド構築物をアグロバクテリウム法によって植物細胞に導入すればよい。上記プロモーターは、例えば、カリフラワーモザイクウイルス（ＣａＭＶ）の３５Ｓプロモーター、イネのアクチンプロモーターやElongation factor 1βプロモーター、トウモロコシのユビキチンプロモーターなどを挙げることができるが、これらに限定されない。 In order to overexpress a polynucleotide encoding a target protein in a plant, the polynucleotide is operably linked downstream of an appropriate promoter, and the resulting polynucleotide construct is introduced into a plant cell by the Agrobacterium method. That's fine. Examples of the promoter include, but are not limited to, the cauliflower mosaic virus (CaMV) 35S promoter, the rice actin promoter, the elongation factor 1β promoter, and the corn ubiquitin promoter.
アグロバクテリウム法を行う際は、アグロバクテリウムのＴｉプラスミドやＲｉプラスミド由来のＴ−ＤＮＡ（transfer DNA）を含むバイナリーベクターまたは中間ベクターを用いることができる（Nucl. Acids Res. 12(22):8711-8721 (1984), Plasmid, 7, 15-29 (1982)）。バイナリーベクターの具体例として、ｐＢＩ系ベクター（例えば、ｐＲｉｃｅＦＯＸ）、ｐＰＺＰ系ベクター（Plant Molecular Biology 25(6): 989-94. (1994)）、ｐＣＡＭＢＩＡ系ベクター（ベクター骨格：ｐＰＺＰベクター）、ｐＳＭＡ系ベクター（Plant Cell Reports 19: 448-453. (2000)）を挙げることができるが、これらに限定されない。 When performing the Agrobacterium method, a binary vector or an intermediate vector containing T-DNA (transfer DNA) derived from Agrobacterium Ti plasmid or Ri plasmid can be used (Nucl. Acids Res. 12 (22): 8711-8721 (1984), Plasmid, 7, 15-29 (1982)). Specific examples of binary vectors include pBI vectors (for example, pRiceFOX), pPZP vectors (Plant Molecular Biology 25 (6): 989-94. (1994)), pCAMBIA vectors (vector backbone: pPZP vector), pSMA systems A vector (Plant Cell Reports 19: 448-453. (2000)) can be mentioned, but is not limited thereto.
具体的な感染工程としては、前記アグロバクテリウムを含む感染液に、前記植物の少なくとも一部を浸漬した状態で圧力を調節することによって行う。アグロバクテリウムを含む感染液は、上記ベクターにて形質転換されたアグロバクテリウムを培養して得られた菌体を、植物組織への浸潤に適した緩衝液に懸濁したものを用いることができ、好ましくは感染液の濁度がＯＤ６００で０．０５〜５、より好ましくは０．１〜２、さらに好ましくは０．２〜１程度のものを用いることができる。 A specific infection step is performed by adjusting the pressure in a state in which at least a part of the plant is immersed in an infectious solution containing Agrobacterium. For the infectious solution containing Agrobacterium, a cell obtained by culturing Agrobacterium transformed with the above vector and suspended in a buffer suitable for infiltration into plant tissues should be used. Preferably, the turbidity of the infectious solution is OD600 of 0.05 to 5, more preferably 0.1 to 2, and still more preferably about 0.2 to 1.
植物を浸漬した状態とは、植物全体が感染液に浸漬している必要はなく、例えば、茎、根等の一部が感染液から露出していてもよい。
感染液に植物を浸漬した状態で圧力を調節するとは、当該植物の一部を前記アグロバクテリウム含む感染液に浸漬した状態で、加圧又は減圧処理を含む圧力サイクル処理によってアグロバクテリウムを植物細胞に感染させることをいう。大気圧（通常は、１気圧＝１０１．３２５ｋＰａ＝約０．１ＭＰａ）よりも高い圧力で処理する加圧処理を行なう場合、少なくとも１．１気圧（１１２ｋＰａ）、１．５気圧（１５２ｋＰａ）、２気圧（２０３ｋＰａ）、２．５気圧（２５３ｋＰａ）、３気圧（３０４ｋＰａ）、４気圧（４０５ｋＰａ）若しくは５気圧（５０７ｋＰａ）又は任意の中間値又はこれを超える任意の値で処理する。好ましくは１．７気圧（１７２ｋＰａ）〜１０気圧（１０１３ｋＰａ）の範囲であり、より好ましくは４気圧（４０５ｋＰａ）〜８気圧の範囲である。大気圧よりも低い圧力で処理する減圧処理を行なう場合、０．００５気圧（０．５ｋＰａ）〜０．３気圧（３０ｋＰａ）の範囲が好ましく、０．０１気圧（１．０ｋＰａ）〜０．１気圧（１０．１ｋＰａ）の範囲がより好ましく、０．０２気圧（２．０ｋＰａ）〜０．０６気圧（６．１ｋＰａ）の範囲がさらに好ましい。減圧の圧力が高すぎる場合は、感染液の浸潤が不十分になるため好ましくない。逆に圧力が低すぎる場合は、液体が沸点に達し著しく蒸発して液体が減少し浸潤が不十分になることや、製造プロセスや設備が大がかりになるためやはり好ましくない。したがって、これらの加圧処理又は減圧処理する時間は、植物の種類や処理する組織に応じて適宜設定することができるが、１０秒〜１０分であり、好ましくは２０秒〜５分であり、さらに好ましくは３０秒〜３分程度である。
The state in which the plant is immersed does not require the entire plant to be immersed in the infectious solution. For example, a part of the stem, root, etc. may be exposed from the infectious solution.
Adjusting the pressure in a state where the plant is immersed in the infectious liquid means that the Agrobacterium is planted by pressure cycle processing including pressure or decompression in a state where a part of the plant is immersed in the infectious liquid containing the Agrobacterium. Infecting cells. In the case of performing a pressure treatment that is performed at a pressure higher than atmospheric pressure (usually 1 atm = 101.325 kPa = about 0.1 MPa), at least 1.1 atm (112 kPa), 1.5 atm (152 kPa), 2 It is processed at atmospheric pressure (203 kPa), 2.5 atmospheric pressure (253 kPa), 3 atmospheric pressure (304 kPa), 4 atmospheric pressure (405 kPa) or 5 atmospheric pressure (507 kPa) or any intermediate value or any value exceeding this. It is preferably in the range of 1.7 atmospheres (172 kPa) to 10 atmospheres (1013 kPa), more preferably in the range of 4 atmospheres (405 kPa) to 8 atmospheres. In the case of performing a pressure reduction treatment at a pressure lower than the atmospheric pressure, a range of 0.005 atm (0.5 kPa) to 0.3 atm (30 kPa) is preferable, and 0.01 atm (1.0 kPa) to 0.1 The range of atmospheric pressure (10.1 kPa) is more preferable, and the range of 0.02 atmospheric pressure (2.0 kPa) to 0.06 atmospheric pressure (6.1 kPa) is more preferable. When the pressure of decompression is too high, infiltration of the infectious solution becomes insufficient, which is not preferable. On the other hand, when the pressure is too low, the liquid reaches the boiling point and remarkably evaporates to decrease the liquid, resulting in insufficient infiltration and a large manufacturing process and equipment, which is also not preferable. Therefore, the time for these pressure treatments or pressure reduction treatments can be appropriately set according to the type of plant and the tissue to be treated, but is 10 seconds to 10 minutes, preferably 20 seconds to 5 minutes, More preferably, it is about 30 seconds to 3 minutes.
感染液に植物を浸漬した状態で圧力を調節する際、装置が比較的簡素である等、利便性の点で優れていることから、加圧処理よりも減圧処理が好ましい。減圧処理の一形態として、真空浸潤法（vacuum infiltration）が挙げられ、この真空浸潤法によりアグロバクテリウムを植物に感染させることが好ましく、中でも、Plant Science, 122, 1: 101-108 (1997)によって記載された真空に基づく一過性発現方法を使用することがより好ましい。真空浸潤法（vacuum infiltration）とは、植物の細胞間または間質腔の中へアグロバクテリウムの浸透を可能にする方法であり、物理的に、真空は、植物の組織における細胞の間の空気空間を減少させる陰性の大気圧を生成する。継続期間が長いほどおよび真空の圧力が低いほど、植物の組織内の空気空間は少ない。増加した圧力により、感染液（形質転換ベクターを有するアグロバクテリウムを含む）が植物の組織の中へ移動することが可能になる。植物の感染のために、アグロバクテリウムの存在下において植物部分に一定の期間で真空を適用することができる。真空状態とするために減圧にした後、通常の圧力に復帰（復圧）することで、植物の感染が可能となる。感染により、ポリヌクレオチド構築物を含むアグロバクテリウムは、組織、例えば、葉、植物の地上構造の一部（茎、葉および花を含む）、植物の他の一部（茎、根、花）、または全草の細胞間の空間に入り込む。表皮の通過後に、アグロバクテリウムは感染し、細胞へとポリヌクレオチドを移行させる。ポリヌクレオチドはエピソームとして転写され、ｍＲＮＡは翻訳され、感染した細胞中で対象となるタンパク質の産生をもたらすが、核の内部でのポリヌクレオチドの継代は一過性である。 When adjusting the pressure in a state where the plant is immersed in the infectious solution, the pressure reduction treatment is preferable to the pressure treatment because it is superior in terms of convenience such as a relatively simple apparatus. One form of decompression treatment is vacuum infiltration, and it is preferable to infect plants with Agrobacterium by this vacuum infiltration method. Among them, Plant Science, 122, 1: 101-108 (1997) It is more preferred to use the vacuum-based transient expression method described by. Vacuum infiltration is a method that allows Agrobacterium to penetrate between plant cells or into the interstitial space. Physically, vacuum is the air between cells in plant tissue. Generates negative atmospheric pressure that reduces space. The longer the duration and the lower the vacuum pressure, the less air space in the plant tissue. The increased pressure allows the infectious fluid (including Agrobacterium with the transformation vector) to move into the plant tissue. For plant infection, a vacuum can be applied to the plant parts in the presence of Agrobacterium for a period of time. After reducing the pressure to obtain a vacuum state, the plant can be infected by returning to normal pressure (returning pressure). Due to the infection, Agrobacterium containing the polynucleotide construct becomes tissue, eg leaves, parts of the plant's ground structure (including stems, leaves and flowers), other parts of the plant (stems, roots, flowers), Or enter the space between the cells of the whole plant. After passage through the epidermis, Agrobacterium infects and transfers the polynucleotide into the cell. The polynucleotide is transcribed as an episome and the mRNA is translated, resulting in production of the protein of interest in the infected cell, but passage of the polynucleotide within the nucleus is transient.
本発明の方法において、上記感染工程において感染液に浸漬される根の割合が根全体の新鮮質量の５０質量％以下であることを特徴とする。ここで、根の新鮮質量の５０質量％を超える割合で感染液に浸漬された状態で上記圧力調節を行うと、その後の発現工程において植物の生育が阻害されるため好ましくない。後述する比較例でも例示されるように、根の新鮮質量の５０質量％を超える割合で感染液に浸漬されたまま真空浸潤処理を行うと、その後の発現工程において植物が枯れてしまうことにより植物自体の重量が減少し、その結果、目的とするタンパク質量も著しく低下するからである。
前述のとおり、本発明の好ましい実施形態ではbare-root法による水耕栽培を行うが、bare-root法で栽培された植物は根の全体または一部がむき出しの状態となっているため、上記感染工程において感染液に根が浸漬されやすい傾向がある。そのため、感染工程において根を保護する手段を適用することが好ましい。根を保護する手段としては、例えば、次のような方法が挙げられる。
（１）植物の地上部と地下部の間に仕切り板を設けることにより、根が感染液中に落下しないようにする。
（２）根の一部をクリップなどで植物を保持する容器の外側等に固定し、根が感染液中に落下しないようにする。
（３）根の少なくとも一部をプラスチック袋に納めることにより感染液の浸漬を防ぐ。
一方で、水耕栽培、特にbare-root法で栽培された植物を用いる場合には、根の周辺に土壌などの汚染物質を伴う可能性が少ないことから、上記感染工程において取り扱いが容易となるメリットがある。特に、感染液に浸漬して圧力調整を行う場合、圧力装置内に根を含む植物全体を配置したとしてもコンタミネーションなどの問題が発生しにくく好ましい。
In the method of the present invention, the ratio of roots immersed in the infectious solution in the infection step is 50% by mass or less of the fresh mass of the whole roots. Here, when the pressure adjustment is performed in a state of being immersed in the infectious liquid at a ratio exceeding 50% by mass of the fresh mass of the root, the growth of the plant is inhibited in the subsequent expression step, which is not preferable. As illustrated in a comparative example to be described later, when the vacuum infiltration treatment is performed while being immersed in the infectious liquid at a ratio exceeding 50 mass% of the fresh mass of the root, the plant is withered in the subsequent expression process. This is because the weight of the protein itself is reduced, and as a result, the target protein amount is significantly reduced.
As described above, in a preferred embodiment of the present invention, hydroponics is performed by the bare-root method, but since the plant cultivated by the bare-root method has a whole or part of the roots exposed, In the infection process, the roots tend to be immersed in the infectious solution. Therefore, it is preferable to apply means for protecting the root in the infection process. Examples of means for protecting the root include the following methods.
(1) A partition plate is provided between the above-ground part and the underground part of the plant so that the root does not fall into the infectious solution.
(2) A part of the root is fixed to the outside of the container holding the plant with a clip or the like so that the root does not fall into the infection liquid.
(3) Prevent immersion of the infectious solution by placing at least part of the roots in a plastic bag.
On the other hand, when using hydroponics, especially plants cultivated by the bare-root method, it is less likely to be accompanied by pollutants such as soil around the roots, which makes handling easier in the infection process. There are benefits. In particular, when adjusting the pressure by immersing in an infectious solution, it is preferable that problems such as contamination hardly occur even if the entire plant including roots is arranged in the pressure device.
したがって、好ましい実施形態では、感染工程における根の浸漬割合は、根全体の新鮮質量に対して４０質量％以下であり、さらに好ましくは３５質量％以下であり、最も好ましくは０質量％、すなわち、実質的に根を感染液に浸漬しないことが望まれる。この原因は必ずしも明らかではないが、水耕栽培された根は物理的な刺激に弱く、感染液に浸漬した状態で圧力変化を受けると根の有する吸収機能が阻害されるからではないかと考えられる。 Therefore, in a preferred embodiment, the root immersion rate in the infection process is 40% by weight or less, more preferably 35% by weight or less, most preferably 0% by weight, based on the fresh weight of the whole root, ie, It is desirable not to substantially immerse the root in the infectious solution. The cause of this is not necessarily clear, but hydroponically grown roots are vulnerable to physical irritation, and it is thought that the absorption function of the roots is hindered when subjected to pressure changes while immersed in the infectious solution .
一方、葉については前記の圧力を調節する段階において、葉全体が当該感染液の液面下に浸漬された状態で圧力を調節されることが好ましい。ここで、一つの葉全体が感染液の液面下に浸漬されていることが必要な理由は必ずしも明らかではないが、葉の一部でも感染液の液面より露出していると、そのような葉においては、一つの葉全体の感染液の浸潤がほとんど見られないという本発明者らの知見に基づくものである。したがって、葉の新鮮質量を基準として、感染させる植物に存在する葉において、葉の全体が感染液の液面下に浸漬している割合が１０質量％以上であることが好ましく、２０質量％以上であることがより好ましく、５０質量％以上であることがさらに好ましく６５質量％以上であることがさらに好ましく、７０質量％以上であることが特に好ましく、８０質量％以上であることがさらにより好ましい。最も好ましくは、ほとんど全ての葉が感染液の液面下に浸漬した状態で、上記圧力調節を受けることが望まれる。ここで、圧力調節方法のうち、真空浸潤法が適用される場合には、減圧下におかれた葉が、通常の圧力に復帰する復圧段階において、上記所定の割合で１つの葉全体が感染液の液面下にあることが好ましい。すなわち、復圧段階における葉の浸漬状態を管理することによって、安定的かつ効率的に感染液を浸潤させて目的タンパク質の発現を促進することができる。なお、本発明の方法おいて用いる植物は特に限定されるものではないが、「１つの葉」を識別するために、根、茎、および葉の区別が可能である植物を用いることが好ましい。 On the other hand, regarding the leaves, it is preferable that the pressure is adjusted in a state where the whole leaves are immersed under the surface of the infectious solution in the step of adjusting the pressure. Here, the reason why it is necessary for one whole leaf to be immersed under the liquid surface of the infectious solution is not necessarily clear, but if even a part of the leaf is exposed from the liquid surface of the infectious solution, This is based on the findings of the present inventors that almost no infiltration of the infectious solution is observed in one leaf. Therefore, based on the fresh mass of the leaf, in the leaves present in the plant to be infected, the ratio of the entire leaf immersed in the liquid surface of the infecting liquid is preferably 10% by mass or more, and 20% by mass or more. Is more preferably 50% by mass or more, further preferably 65% by mass or more, particularly preferably 70% by mass or more, and further preferably 80% by mass or more. . Most preferably, it is desired that the pressure adjustment is performed in a state where almost all leaves are immersed under the surface of the infectious solution. Here, among the pressure control methods, when the vacuum infiltration method is applied, in the return pressure stage in which the leaves placed under reduced pressure return to normal pressure, the entire one leaf is in the predetermined ratio. It is preferably below the surface of the infectious solution. That is, by managing the soaking state of the leaves in the restoring pressure stage, the infectious solution can be infiltrated stably and efficiently to promote the expression of the target protein. In addition, although the plant used in the method of this invention is not specifically limited, In order to identify "one leaf", it is preferable to use the plant which can distinguish a root, a stem, and a leaf.
＜発現工程＞
発現工程では感染工程後の植物を栽培して該目的タンパク質を発現させる。発現工程での栽培条件は目的タンパク質が効率よく発現できる条件であれば特に制限されないが、該発現工程における温度、湿度等の条件は上記栽培工程における条件と同様の条件とすることができる。また、光照射の条件も太陽光、蛍光灯、ＬＥＤ、冷陰極蛍光ランプ（ＣＣＦＬ、ＨＥＦＬ）、無機・有機ＥＬ等を用いた通常の条件を採用することができる。発現工程における栽培日数は、好ましくは３日以上、より好ましくは４日以上であり、また、好ましくは１４日以下、より好ましくは１０日以下である。
<Expression process>
In the expression process, the plant after the infection process is cultivated to express the target protein. The cultivation conditions in the expression step are not particularly limited as long as the target protein can be efficiently expressed. Conditions such as temperature and humidity in the expression step can be the same as the conditions in the cultivation step. Moreover, the normal conditions using sunlight, a fluorescent lamp, LED, a cold cathode fluorescent lamp (CCFL, HEFL), inorganic / organic EL, etc. are employable as light irradiation conditions. The cultivation days in the expression step are preferably 3 days or more, more preferably 4 days or more, and preferably 14 days or less, more preferably 10 days or less.
＜目的タンパク質回収工程＞
発現工程において、植物内に蓄積した目的タンパク質は植物から回収されることが好ましい。植物から目的タンパク質を含む画分を取得し、目的タンパク質を適当な方法により精製することが好ましい。なお、目的タンパク質をコードするポリヌクレオチドは精製のためのタグ配列を含んでもよい。
<Target protein recovery process>
In the expression step, the target protein accumulated in the plant is preferably recovered from the plant. It is preferable to obtain a fraction containing the target protein from the plant and purify the target protein by an appropriate method. The polynucleotide encoding the target protein may include a tag sequence for purification.
以下、実施例を挙げて本発明をさらに詳細に説明するが、本発明はこれら実施例により何ら限定されるものではない。 EXAMPLES Hereinafter, although an Example is given and this invention is demonstrated further in detail, this invention is not limited at all by these Examples.
１．植物バイオマスの調製
（１）播種
播種用液体肥料（大塚ハウスＳ１号（大塚アグリテクノ株式会社）０．７８ｇ／Ｌ、大塚ハウス２号（大塚アグリテクノ株式会社）０．２５ｇ／Ｌ、ｐＨ５．０）を、水耕栽培用ウレタンマット（江松化成 Ｗ５８７．５ｍｍ×Ｄ２８２ｍｍ×Ｈ２８ｍｍ：１２×２マス 穴径φ９ｍｍ）にしみこませ、育苗トレー（Ｗ６００ｍｍ×Ｄ３００ｍｍ×Ｈ３００ｍｍ）に収め、ベンサミアナタバコ（Nicotiana benthamiana）種子を播種した。
1. Preparation of plant biomass (1) Sowing Liquid fertilizer for sowing (Otsuka House S1 (Otsuka Agritechno Co., Ltd.) 0.78 g / L, Otsuka House 2 (Otsuka Agritechno Co., Ltd.) 0.25 g / L, pH 5.0 ) In a hydroponics urethane mat (Ematsu Kasei W587.5mm x D282mm x H28mm: 12 x 2 trout hole diameter φ9mm) and placed in a seedling tray (W600mm x D300mm x H300mm) Nicotiana benthamiana) seeds were sown.
（２）育苗
播種後の植物を人工気象器（ＮＣ−４１０ＨＣ）（日本医化器械製作所）にて室温２８℃、１６時間昼／８時間夜の光サイクルにて１２日間生育させた。
(2) Raising seedlings Plants after sowing were grown for 12 days in an artificial weather apparatus (NC-410HC) (Nippon Medical Instruments Co., Ltd.) in a light cycle of room temperature 28 ° C., 16 hours day / 8 hours night.
（３）栽培（水耕、前期）
（２）で育苗に用いたウレタンマットを１マスずつ分離し、栽培（前期）用パネル（Ｗ６００ｍｍ×Ｄ３００ｍｍ、３０穴）に移植した。移植後の栽培（前期）用パネルを栽培装置にセットし、湛液方式（deep flow technique、ＤＦＴ方式）にて９日間栽培した。
環境条件および液体肥料条件は以下のとおりに制御した。
(3) Cultivation (hydroponic, previous term)
The urethane mat used for raising seedlings in (2) was separated one by one and transplanted to a cultivation (previous term) panel (W600 mm × D300 mm, 30 holes). A panel for cultivation (first term) after transplanting was set in a cultivation apparatus and cultivated for 9 days by a deep flow technique (DFT system).
Environmental conditions and liquid fertilizer conditions were controlled as follows.
《環境条件》
−温度：２８℃
−相対湿度：６０〜８０％
−ＣＯ２濃度：４００ｐｐｍ
−照明：平均光合成光量子束密度（ＰＰＦＤ）：１４０μｍｏｌ／ｍ２・秒、２４ｈ連続照射、三波長蛍光灯「ルピカライン」（三菱電機株式会社）
"Environmental condition"
-Temperature: 28 ° C
-Relative humidity: 60-80%
-CO 2 concentration: 400ppm
Illumination: Average photosynthetic photon flux density (PPFD): 140 μmol / m 2 · second, 24 h continuous irradiation, three-wavelength fluorescent lamp “Lupica Line” (Mitsubishi Electric Corporation)
《液体肥料条件》
液体肥料は、肥料Ａ液（大塚ハウスＳ１号１５０ｇ／Ｌ、大塚ハウス５号（大塚アグリテクノ株式会社）２．５ｇ／Ｌ）、肥料Ｂ液（大塚ハウス２号１００ｇ／Ｌ）をそれぞれ脱塩素水に溶解し、等量に混合して使用した。ｐＨ調整にはｐＨ調整剤ダウン（大塚アグリテクノ株式会社）および４％ＫＯＨ水溶液を用いた。液体肥料の電気伝導度（electrical conductivity、ＥＣ）およびｐＨは「らくらく肥料管理機３」（株式会社セムコーポレーション）を用いてＥＣ：２．３ｍＳ／ｃｍ、ｐＨ６．０になるように調整した。
《Liquid fertilizer conditions》
Liquid fertilizers are dechlorinated from fertilizer A liquid (Otsuka House S1 150g / L, Otsuka House 5 (Otsuka Agritechno Co., Ltd.) 2.5g / L) and Fertilizer B liquid (Otsuka House 2 100g / L). Dissolved in water and mixed in equal amounts. A pH adjuster down (Otsuka Agritechno Co., Ltd.) and a 4% KOH aqueous solution were used for pH adjustment. The electrical conductivity (EC) and pH of the liquid fertilizer were adjusted to EC: 2.3 mS / cm and pH 6.0 using “Easy Fertilizer Manager 3” (Sem Corporation).
（４）栽培（水耕、後期）
栽培（前期）用パネルより植物を取り出し、栽培（後期）用パネル（Ｗ６００ｍｍ×Ｄ３００ｍｍ、６穴）に定植した。移植後の栽培（後期）用パネルを栽培装置にセットし、ＤＦＴ方式にて７日間（播種後２８日間）栽培した。液体肥料条件は、液体肥料条件のうち電気伝導度（ＥＣ）を４．０ｍＳ／ｃｍに変更したこと以外は、栽培（前期）と同様の条件に制御した。
(4) Cultivation (hydroponic, late)
The plant was taken out from the cultivation (first half) panel and planted in a cultivation (late stage) panel (W600 mm × D300 mm, 6 holes). A panel for cultivation (late stage) after transplantation was set in a cultivation apparatus and cultivated for 7 days (28 days after sowing) by the DFT method. The liquid fertilizer conditions were controlled to the same conditions as the cultivation (previous term) except that the electrical conductivity (EC) was changed to 4.0 mS / cm among the liquid fertilizer conditions.
《環境条件》
−温度：２８℃
−相対湿度：６０〜８０％
−ＣＯ２濃度：４００ｐｐｍ
−照明：平均光合成光量子束密度（ＰＰＦＤ）：１４０μｍｏｌ／ｍ２・秒、２４ｈ連続照射、三波長蛍光灯「ルピカライン」（三菱電機株式会社）
"Environmental condition"
-Temperature: 28 ° C
-Relative humidity: 60-80%
-CO 2 concentration: 400ppm
Illumination: Average photosynthetic photon flux density (PPFD): 140 μmol / m 2 · second, 24 h continuous irradiation, three-wavelength fluorescent lamp “Lupica Line” (Mitsubishi Electric Corporation)
（５）栽培（固形培地耕）
市販の泥炭ゴケ基質（ピートモスＢＭ１）と水を１：３の割合で混ぜ合わせた。その水を含んだ泥炭ゴケ基質１７０ｇを底に穴の開いたポリポットに入れた。１（２）で育苗に用いたウレタンマットから１マス分を分離し、ポリポットに移植した。上記１（３）の栽培装置の栽培槽にポリポットを置いて、９日間栽培した。環境条件および液体肥料条件は１（３）と同様に制御した。
(5) Cultivation (solid medium cultivation)
A commercial peat moss substrate (Peat Moss BM1) and water were mixed in a ratio of 1: 3. 170 g of peat moss substrate containing the water was placed in a polypot with a hole in the bottom. One square was separated from the urethane mat used for raising seedlings in 1 (2) and transplanted to a polypot. A polypot was placed in the cultivation tank of the cultivation apparatus of 1 (3) above and cultivated for 9 days. Environmental conditions and liquid fertilizer conditions were controlled as in 1 (3).
２．形質転換アグロバクテリウムの調製
（１）発現プラスミド
ＧＦＰ（クラゲ緑色蛍光タンパク質）発現の検討には、以下の２種類の発現プラスミドを用いた。植物バイナリーベクターｐＭＭ４４４（特開平９−３１３０５９号公報）のノパリンシンターゼ遺伝子を、カリフラワーモザイクウィルスの３５Ｓプロモーター、ヒマのカタラーゼ遺伝子の第一イントロン、及びノパリンシンターゼ遺伝子のターミネーターからなる発現カセット（ｐＩＧ２２１：Plant Cell Physiol.,p19/MM444 31, 805(1990)）にＥＧＦＰ遺伝子（ｐＥＧＦＰ−Ｎ３：クローンテック社製）を組み込んだＥＧＦＰ発現カセットに置換し、ＥＧＦＰ遺伝子発現プラスミドを作製した（以下、このプラスミドを「ｐＧＦＰ／ＭＭ４４４」と称する。その構造を図１に示す）。
また、ｐＧＦＰ／ＭＭ４４４におけるＥＧＦＰ発現カセットを、３５Ｓプロモーター及びβ−グルクロニダーゼ遺伝子のターミネーターからなる発現カセット（pBI221:Plant Mol. Biol. Rep. 5:387-405(1987)）にＰ１９遺伝子を組み込んだＰ１９遺伝子発現カセットに置換し、プラスミドを作製した（以下、このプラスミドを「ｐ１９／ＭＭ４４４」と称する。その構造を図２に示す）。なお、Ｐ１９遺伝子はＥＧＦＰ遺伝子の発現を強化する働きがあり、このｐ１９／ＭＭ４４４は、ｐＧＦＰ／ＭＭ４４４との共発現に供した。
2. Preparation of transformed Agrobacterium (1) Expression plasmid The following two types of expression plasmids were used for the examination of GFP (jellyfish green fluorescent protein) expression. An expression cassette (pIG221: a nopaline synthase gene of plant binary vector pMM444 (Japanese Patent Laid-Open No. 9-313059) comprising a cauliflower mosaic virus 35S promoter, a first intron of a castor catalase gene, and a terminator of a nopaline synthase gene. Plant Cell Physiol., P19 / MM444 31, 805 (1990)) was replaced with an EGFP expression cassette in which an EGFP gene (pEGFP-N3: manufactured by Clontech) was incorporated to prepare an EGFP gene expression plasmid (hereinafter referred to as this plasmid). Is referred to as “pGFP / MM444.” The structure is shown in FIG.
In addition, an EGFP expression cassette in pGFP / MM444 was used as an expression cassette (pBI221: Plant Mol. Biol. Rep. 5: 387-405 (1987)) comprising a 35S promoter and a β-glucuronidase gene terminator. The plasmid was replaced with a gene expression cassette (hereinafter, this plasmid is referred to as “p19 / MM444”. The structure is shown in FIG. 2). The P19 gene has a function of enhancing the expression of the EGFP gene, and this p19 / MM444 was subjected to co-expression with pGFP / MM444.
（２）アグロバクテリウムの形質転換と形質転換アグロバクテリウムグリセロールストックの調製
上述のプラスミド（ｐＧＦＰ／ＭＭ４４４、ｐ１９／ＭＭ４４４）をそれぞれ、エレクトロポレーション法（Mattanovich et al.1989）によってアグロバクテリウム（Agrobacterium tumefaciens AGL1: Rhizobium radiobacter ATCC BAA-101; American Type Culture Collection (ATCC), Manassas, VA20108,USA）株に導入した（得られた形質転換アグロバクテリウムを、以下、それぞれ、ＧＦＰ−アグロバクテリウム、Ｐ１９−アグロバクテリウムと称する）。
(2) Transformation of Agrobacterium and preparation of transformed Agrobacterium glycerol stock Each of the above plasmids (pGFP / MM444, p19 / MM444) was transformed into Agrobacterium (Mattanovich et al. 1989) by electroporation (Mattanovich et al. 1989). Agrobacterium tumefaciens AGL1: Rhizobium radiobacter ATCC BAA-101; American Type Culture Collection (ATCC), Manassas, VA20108, USA) strain (obtained transformed Agrobacterium, GFP-Agrobacterium, Called P19-Agrobacterium).
形質転換アグロバクテリム（ＧＦＰ−アグロバクテリウム、Ｐ１９−アグロバクテリウム）を、カルベニシリン２５μｇ／ｍｌとスペクチノマイシン５０μｇ／ｍｌを含有するＬＢ培地（ＳＩＧＭＡ−ＡＬＤＲＩＣＨ社製）にて培養後、グリセロールを加えて最終的にグリセロール濃度を３０％となるよう調整し、−８０℃で保存することで各形質転換アグロバクテリウムグリセロールストックとした。 After transforming Agrobacterium (GFP-Agrobacterium, P19-Agrobacterium) in LB medium (SIGMA-ALDRICH) containing carbenicillin 25 μg / ml and spectinomycin 50 μg / ml, glycerol was added. In addition, the glycerol concentration was finally adjusted to 30% and stored at −80 ° C. to obtain each transformed Agrobacterium glycerol stock.
（３）感染工程用形質転換アグロバクテリウムの調製
上記（２）で作成した形質転換アグロバクテリウム（ＧＦＰ−アグロバクテリウム、Ｐ１９−アグロバクテリウム）のグリセロールストックをＬＢ培地に植菌して、培養を行った。
培養後、遠心することで集菌し、得られた菌体をインフィルトレーションｂｕｆｆｅｒ［５ｍＭのＭＥＳ、１０ｍＭのＭｇＣｌ２、ｐＨ５．６］に懸濁して濃縮菌液を得た。得られた濃縮菌体をＧＦＰ−アグロバクテリウムとＰ１９−アグロバクテリウムの１：１混合菌液のＯＤ６００が０．８となるように４Ｌのインフィルトレーションｂｕｆｆｅｒに加えて、ｐＨ５．６に調整し、感染工程用アグロバクテリウム菌液とした。
(3) Preparation of transformed Agrobacterium for infection process The glycerol stock of transformed Agrobacterium (GFP-Agrobacterium, P19-Agrobacterium) prepared in (2) above was inoculated in LB medium, Culture was performed.
After culturing, the cells were collected by centrifugation, and the obtained cells were suspended in an infiltration buffer [5 mM MES, 10 mM MgCl 2 , pH 5.6] to obtain a concentrated bacterial solution. The obtained concentrated bacterial cells were adjusted to pH 5.6 by adding 4 L of infiltration buffer so that OD600 of 1: 1 mixed bacterial solution of GFP-Agrobacterium and P19-Agrobacterium was 0.8. Agrobacterium solution for infection process was used.
[実施例１、比較例１]
３．Vacuum Infiltration（真空浸潤法）による感染（感染工程）
上記１（３）と（５）で得られた播種後２１日目のベンサミアナタバコを逆さにして、全ての葉について、一つ一つの葉全体が浸潤するように、ビーカー中のアグロバクテリウム菌液（上述の２．（１）で調製したもの）中に浸るように沈めた。尚、（５）については、植物を逆さにした際に泥炭ゴケ基質が落ちないようするため、ビニールシートで泥炭ゴケ基質の箇所を覆った。
その後、該ビーカーを真空デシケーター（ＦＶ−３Ｐ）（東京硝子器械株式会社）に入れ、１９Ｔｏｒｒ（２．５ｋＰａ）〜４０Ｔｏｒｒ（５．３ｋＰａ）に１分間静置し、減圧した。その後、バルブを一気に開放して復圧をおこなった。
[Example 1, Comparative Example 1]
3. Infection (infectious process) by vacuum infiltration
Agrobacterium in the beaker so that all the leaves infiltrate one by one for all leaves by inverting the benthamiana tobacco on day 21 after sowing obtained in 1 (3) and (5) above. It was submerged so as to be immersed in the um fungus solution (prepared in 2. (1) above). In addition, about (5), in order to prevent a peat moss substrate from falling when a plant was turned upside down, the peat moss substrate was covered with a vinyl sheet.
Thereafter, the beaker was placed in a vacuum desiccator (FV-3P) (Tokyo Glass Instrument Co., Ltd.), left still at 19 Torr (2.5 kPa) to 40 Torr (5.3 kPa) for 1 minute, and the pressure was reduced. After that, the valve was opened at once to restore the pressure.
４．感染葉の栽培（発現工程）
感染後の栽培は人工気象器(日本医化器械製作所) を用いて行った。光源として、三波長蛍光灯「ルピカライン」（三菱電機株式会社）を用い、１６時間昼／８時間夜の光サイクルで、平均ＰＰＦＤ１５０μｍｏｌ／ｍ２・秒にて栽培した。液体肥料は、ＥＣ：２．１〜２．２ｍＳ／ｃｍ、ｐＨ５．５とした。温度は、２５℃昼／２０℃夜のサイクルとした。また、相対湿度は６０〜８５％とした。
4). Cultivation of infected leaves (expression process)
Cultivation after infection was carried out using an artificial meteorological instrument (Nippon Medical Instruments Co., Ltd.). Using a three-wavelength fluorescent lamp “Lupica Line” (Mitsubishi Electric Corporation) as a light source, the light was cultivated at an average PPFD of 150 μmol / m 2 · sec with a light cycle of 16 hours day / 8 hours. The liquid fertilizer was EC: 2.1 to 2.2 mS / cm, pH 5.5. The temperature was a cycle of 25 ° C. day / 20 ° C. night. The relative humidity was 60 to 85%.
５．栽培された感染葉の採集
６日間かけて上述の栽培工程を行ったアグロバクテリウム感染ベンサミアナタバコは、葉柄を含めずに全ての葉を収穫した。１株当たりの葉の総重量を測定し、その後、−８０℃にて保管した。尚、葉の総重量については、３株の測定結果を平均し、固形培地耕栽培した植物の場合を１００％として表１に示した。
表１に示したように、水耕栽培した葉の総質量は、固形培地で栽培した葉の総質量の約３倍であり、有意に成長速度が速いことが分る。
5. Collection of cultivated infected leaves The Agrobacterium-infected Bensamiana tobacco that had been subjected to the above cultivation process over 6 days harvested all leaves without including the petiole. The total weight of leaves per strain was measured and then stored at -80 ° C. In addition, about the total weight of a leaf, the measurement result of three strains was averaged, and the case of the plant cultivated by solid medium culture was shown in Table 1 as 100%.
As shown in Table 1, the total mass of hydroponically cultivated leaves is about 3 times the total mass of leaves cultivated on a solid medium, and it can be seen that the growth rate is significantly faster.
６．ＧＦＰ発現量の測定
（１）粗抽出液の調製
５．で凍結保存したＧＦＰおよびＰ１９発現用アグロバクテリウム感染葉を乳鉢に移し、液体窒素中で磨砕した。その後、サンプル新鮮重量の６倍量のＧＦＰアッセイ用抽出バッファー（５０ｍＭのＴｒｉｓ−ＨＣｌ、１５０ｍＭのＮａＣｌ、２ｍＭのＥＤＴＡ、０．１％Ｔｒｉｔｏｎ−Ｘ１００（ｐＨ７．２５））を加え、激しく懸濁することでタンパク質粗抽出を行った。粗抽出液１ｍｌを１．５ｍｌエッペンドルフチューブに移し、４℃、２０，４００×ｇ、１０分間遠心後、上清を回収し、後述のＧＦＰ定量に用いた。
6). 4. Measurement of GFP expression level (1) Preparation of crude extract The GFP and P19-expressing Agrobacterium-infected leaves cryopreserved in were transferred to a mortar and ground in liquid nitrogen. Then, 6 times the sample fresh weight of GFP assay extraction buffer (50 mM Tris-HCl, 150 mM NaCl, 2 mM EDTA, 0.1% Triton-X100 (pH 7.25)) is added and suspended vigorously. Thus, crude protein extraction was performed. 1 ml of the crude extract was transferred to a 1.5 ml Eppendorf tube, centrifuged at 4 ° C., 20,400 × g for 10 minutes, and the supernatant was collected and used for GFP quantification described later.
（２）ＧＦＰ定量
ＧＦＰ蛍光の検出にはWallac ARVO SX 1420 Multilabel counter (Perkin-Elmer Life Sciences) を用いて４８５ｎｍの励起光によって生じる５０７ｎｍの発光を検出した。定量には段階希釈したＧＦＰスタンダード（ｒＡｃＧＦＰ１ Ｐｒｏｔｅｉｎ：タカラバイオ社製）を用いた。測定サンプルはＧＦＰ用抽出バッファーで５倍希釈し、１００μＬずつ、９６−ｗｅｌｌマイクロプレート（Ｎｕｎｃフルオロヌンクプレート：サーモフィッシャーサイエンティフィック社製）に分注し、３株の測定結果を平均し、新鮮重当たりのＧＦＰ発現量（mg／kg−ＦＷ）を算出した。固形培地耕栽培した植物の場合の総ＧＦＰ量（ｍｇ）を１００％として表１に示した。
表１より、ＧＦＰ発現量についても、水耕栽培した葉の方が、固形培地栽培した葉に比べて約４倍と高いことが分った。
(2) Quantification of GFP For detection of GFP fluorescence, 507 nm emission generated by excitation light of 485 nm was detected using Wallac ARVO SX 1420 Multilabel counter (Perkin-Elmer Life Sciences). For quantification, serially diluted GFP standard (rAcGFP1 Protein: manufactured by Takara Bio Inc.) was used. The measurement sample was diluted 5-fold with GFP extraction buffer, and 100 μL each was dispensed onto a 96-well microplate (Nunc fluoronunk plate: manufactured by Thermo Fisher Scientific), and the measurement results of the three strains were averaged and fresh. The expression level of GFP per weight (mg / kg-FW) was calculated. Table 1 shows the total amount of GFP (mg) in the case of plants cultivated in solid medium as 100%.
From Table 1, it was found that the GFP expression level was about 4 times higher in the hydroponically cultivated leaves than in the solid medium cultivated leaves.
[実施例２〜３]
７．Vacuum Infiltration（真空浸潤法）による葉への浸潤
上記１（４）で得られた播種後２８日目のベンサミアナタバコの茎から葉と葉柄の部分を１枚ずつ切り出した。次に、ビーカー中の水を入れ、３通りの方法で浸漬させた。１つ目は、葉と葉柄のすべてが浸漬する場合（実施例２）、２つ目は、葉柄が水面から出ている場合（実施例３）、３つ目は、葉の一部が水面から出ている場合（比較例１）である。その後、該ビーカーを真空デシケーター（ＦＶ−３Ｐ）（東京硝子器械株式会社）に入れ、１９Ｔｏｒｒ（２．５ｋＰａ）〜４０Ｔｏｒｒ（５．３ｋＰａ）に１分間静置し、減圧した。その後、バルブを一気に開放して復圧をおこなった。その結果を図３に示す。
図３に示したように、葉の一部でも液面から出ている場合は、感染液が全く浸潤せず、葉の全体が液面下にあることが重要であることが分かった。
[Examples 2-3]
7). Leaf Infiltration by Vacuum Infiltration (Vacuum Infiltration Method) Leaves and petiole portions were cut out one by one from the stem of Bensamiana tobacco obtained in 1 (4) above on day 28 after sowing. Next, water in the beaker was added and immersed in three ways. The first is when all of the leaves and petiole are immersed (Example 2), the second is when the petiole is out of the water surface (Example 3), and the third is a part of the leaf is water surface (Comparative Example 1). Thereafter, the beaker was placed in a vacuum desiccator (FV-3P) (Tokyo Glass Instrument Co., Ltd.), left still at 19 Torr (2.5 kPa) to 40 Torr (5.3 kPa) for 1 minute, and the pressure was reduced. After that, the valve was opened at once to restore the pressure. The result is shown in FIG.
As shown in FIG. 3, when even a part of the leaf came out from the liquid level, it was found that it is important that the infectious liquid does not infiltrate at all and the entire leaf is below the liquid level.
[実施例４]
８．Vacuum Infiltration（真空浸潤法）による感染（感染工程）
上記１（４）で得られた播種後２８日目のベンサミアナタバコを逆さにして、全ての葉について、一つ一つの葉全体が浸潤するように、ビーカー中のアグロバクテリウム菌液（上述の２．（１）で調製したもの）中に浸るように沈めた。
その後、該ビーカーを真空デシケーター（ＦＶ−３Ｐ）（東京硝子器械株式会社）に入れ、１９Ｔｏｒｒ（２．５ｋＰａ）〜４０Ｔｏｒｒ（５．３ｋＰａ）に１分間静置し、減圧した。その後、バルブを一気に開放して復圧をおこなった。
復圧終了後、植物を正立に戻し、液体肥料（ＥＣ：２．１〜２．２ｍＳ／ｃｍ、ｐＨ５．５）の入った丸型容器（丸型Ｖ式容器Ｖ−６）（アズワン）に植えた。
[Example 4]
8). Infection (infectious process) by vacuum infiltration
The Agrobacterium fungus solution in the beaker (in the beaker so that the entire leaf infiltrates one by one for all the leaves by inverting the Bensamiana tobacco 28 days after sowing obtained in 1 (4) above. (Prepared in 2. (1) above).
Thereafter, the beaker was placed in a vacuum desiccator (FV-3P) (Tokyo Glass Instrument Co., Ltd.), left still at 19 Torr (2.5 kPa) to 40 Torr (5.3 kPa) for 1 minute, and the pressure was reduced. After that, the valve was opened at once to restore the pressure.
After completion of reinstatement, the plant is returned to an upright position, and a round container (round V container V-6) containing liquid fertilizer (EC: 2.1-2.2 mS / cm, pH 5.5) (As One) Planted in.
９．感染葉の栽培（発現工程）
感染後の栽培は人工気象器（ＬＨ−４１０ＳＰ）（日本医化器械製作所）を用いて行った。光源として、ＬＥＤ照明ユニット（３ＬＨ−２５６）（日本医化器械製作所）を用い、１６時間昼／８時間夜の光サイクルで、平均ＰＰＦＤ１５０μｍｏｌ／ｍ２・秒にて栽培した。温度は、２５℃昼／２０℃夜のサイクルとした。また、相対湿度は６０〜８５％とした
9. Cultivation of infected leaves (expression process)
Cultivation after infection was carried out using an artificial meteorological device (LH-410SP) (Nippon Medical Instruments Co., Ltd.). Using an LED lighting unit (3LH-256) (Nippon Medical Instrument Co., Ltd.) as a light source, the plant was cultivated at an average PPFD of 150 μmol / m 2 · sec with a light cycle of 16 hours day / 8 hours. The temperature was a cycle of 25 ° C. day / 20 ° C. night. The relative humidity is 60 to 85%.
１０．栽培された感染葉の採集
６日間かけて上述の栽培工程を行ったアグロバクテリウム感染ベンサミアナタバコは、葉柄を含めずに全ての葉を収穫し，−８０℃にて保管した。
10. Collection of cultivated infected leaves The Agrobacterium-infected Bensamiana tobacco that had been subjected to the above cultivation process over 6 days harvested all leaves without petioles and stored them at -80 ° C.
１１．ＧＦＰ発現量の測定
（１）粗抽出液の調製
１０．で凍結保存したＧＦＰおよびＰ１９発現用アグロバクテリウム感染葉を乳鉢に移し、液体窒素中で磨砕した。その後、サンプル新鮮重量の６倍量のＧＦＰアッセイ用抽出バッファー（５０ｍＭのＴｒｉｓ−ＨＣｌ、１５０ｍＭのＮａＣｌ、２ｍＭのＥＤＴＡ、０．１％Ｔｒｉｔｏｎ−Ｘ１００（ｐＨ７．２５））を加え、激しく懸濁することでタンパク質粗抽出を行った。粗抽出液１ｍｌを１．５ｍｌエッペンドルフチューブに移し、４℃、２０，４００×ｇ、１０分間遠心後、上清を回収し、後述のＧＦＰ定量に用いた。
11. 10. Measurement of GFP expression level (1) Preparation of crude extract The GFP and P19-expressing Agrobacterium-infected leaves cryopreserved in were transferred to a mortar and ground in liquid nitrogen. Then, 6 times the sample fresh weight of GFP assay extraction buffer (50 mM Tris-HCl, 150 mM NaCl, 2 mM EDTA, 0.1% Triton-X100 (pH 7.25)) is added and suspended vigorously. Thus, crude protein extraction was performed. 1 ml of the crude extract was transferred to a 1.5 ml Eppendorf tube, centrifuged at 4 ° C., 20,400 × g for 10 minutes, and the supernatant was collected and used for GFP quantification described later.
（２）ＧＦＰ定量
ＧＦＰ蛍光の検出にはWallac ARVO SX 1420 Multilabel counter(Perkin-Elmer Life Sciences）を用いて４８５ｎｍの励起光によって生じる５０７ｎｍの発光を検出した。定量には段階希釈したＧＦＰスタンダード（ｒＡｃＧＦＰ１ Ｐｒｏｔｅｉｎ：タカラバイオ社製）を用いた。測定サンプルはＧＦＰ用抽出バッファーで５倍希釈し、１００μＬずつ、９６−ｗｅｌｌマイクロプレート（Ｎｕｎｃフルオロヌンクプレート：サーモフィッシャーサイエンティフィック社製）に分注し、測定を行い、新鮮重当たりのＧＦＰ発現量（ｍｇ／ｋｇ−ＦＷ）を算出した。２株の測定結果を平均し、葉の質量の浸漬割合１００質量％、根の質量の浸漬割合０質量％のＧＦＰ発現量（ｍｇ／ｋｇＦＷ）を１００％として表２に示した。
(2) Quantification of GFP For the detection of GFP fluorescence, 507 nm emission generated by excitation light of 485 nm was detected using Wallac ARVO SX 1420 Multilabel counter (Perkin-Elmer Life Sciences). For quantification, serially diluted GFP standard (rAcGFP1 Protein: manufactured by Takara Bio Inc.) was used. The measurement sample was diluted 5-fold with GFP extraction buffer, and 100 μL each was dispensed into 96-well microplates (Nunc Fluoro-Nunk plate: manufactured by Thermo Fisher Scientific), measurement was performed, and GFP expression per fresh weight The amount (mg / kg-FW) was calculated. The measurement results of the two strains were averaged, and the amount of GFP expression (mg / kg FW) with an immersion ratio of 100% by mass of leaf mass and an immersion ratio of 0% by mass of roots was shown in Table 2.
[実施例５〜７]
実施例４で、８．感染工程において、液面下の葉の質量の浸漬割合が、９６質量％（実施例５）、８０質量％（実施例６）、６３質量％（実施例７）になるように設定し、それ以外は実施例４と同様に実験を行った。それぞれ２株の測定結果を平均し、葉の質量の浸漬割合１００質量％のＧＦＰ発現量（ｍｇ／ｋｇＦＷ）を１００％として表２に示した。また、その結果を図４にグラフとして表した。図中の各点は、夫々の実施例の結果を示す。
[Examples 5 to 7]
In Example 4, 8. In the infection process, the immersion ratio of the leaf mass under the liquid level was set to 96 mass% (Example 5), 80 mass% (Example 6), and 63 mass% (Example 7). Except that, the experiment was performed in the same manner as in Example 4. The measurement results of each of the two strains were averaged, and the GFP expression level (mg / kg FW) when the immersion ratio of the leaf mass was 100% by mass was shown as 100% in Table 2. The results are shown as a graph in FIG. Each point in a figure shows the result of each example.
[実施例８〜９]
９．液面下への根の浸潤
８．感染工程において、液面下の根の質量の浸漬割合が、０質量％（実施例８）、３７質量％（実施例９）になるように設定し、また、葉の質量の浸漬割合は、１００質量％に設定して、それ以外は実施例４と同様に実験を行った。それぞれ２株の測定結果を平均し、根の質量の浸漬割合０質量％の総ＧＦＰ量（ｍｇ）を１００％として表３に示した。
[Examples 8 to 9]
9. 7. Infiltration of root under the liquid surface In the infection step, the immersion ratio of the root mass under the liquid level is set to 0 mass% (Example 8) and 37 mass% (Example 9), and the immersion ratio of the leaf mass is The experiment was performed in the same manner as in Example 4 except that the mass was set to 100% by mass. The measurement results of the two strains were averaged, and the total amount of GFP (mg) with a root mass immersion ratio of 0% by mass is shown in Table 3 as 100%.
[比較例２〜３]
４．感染工程において、液面下の根の質量の浸漬割合が、６０質量％（比較例２）、１００質量％（比較例３）であること、また、葉の質量の浸漬割合は、１００質量％に設定して、それ以外は実施例４と同様に実験を行った。２株の測定結果を平均し、根の質量の浸漬割合０質量％の総ＧＦＰ量（ｍｇ）を１００％として表３に示した。
表３に示すように、根の浸漬割合が５０質量％を超えると、ＧＦＰの発現量も有意に低下する。
[Comparative Examples 2-3]
4). In the infection process, the immersion ratio of the root mass under the liquid surface is 60 mass% (Comparative Example 2) and 100 mass% (Comparative Example 3), and the immersion ratio of the leaf mass is 100 mass%. Otherwise, the experiment was performed in the same manner as in Example 4. The measurement results of the two strains were averaged, and the total amount of GFP (mg) with a root mass immersion ratio of 0% by mass was shown as 100% in Table 3.
As shown in Table 3, when the root immersion ratio exceeds 50% by mass, the expression level of GFP is also significantly reduced.
Claims (6)
前記水耕栽培にて生育した根及び葉を含む植物を、目的タンパク質をコードするポリヌクレオチドを有するアグロバクテリウムを含む感染液に接触させることにより感染させる工程、及び
前記感染後の植物をさらに栽培して、目的タンパク質を前記植物で発現させる工程を含む、植物によるタンパク質の製造方法であって、
前記感染工程は、
前記アグロバクテリウムを含む感染液に、前記植物の少なくとも一部を浸漬した状態で圧力を調節することにより行われ、当該工程において感染液に浸漬される根の割合が根全体の５０質量％以下であり、かつ前記圧力調節段階の少なくとも一部において、一つの葉全体を当該感染液の液面下に浸漬する工程を含むことを特徴とする、植物によるタンパク質の製造方法。 A process of cultivating a plant capable of being infected with Agrobacterium by hydroponics,
Infecting a plant containing roots and leaves grown in hydroponics with an infectious solution containing Agrobacterium having a polynucleotide encoding a target protein, and further cultivating the plant after infection A method for producing a protein by a plant, comprising the step of expressing the target protein in the plant,
The infection process includes
It is performed by adjusting the pressure in a state where at least a part of the plant is immersed in the infectious solution containing Agrobacterium, and the proportion of roots immersed in the infectious solution in this step is 50% by mass or less of the whole roots And at least a part of the pressure adjustment step, the method includes a step of immersing the entire leaf under the surface of the infectious solution, wherein the protein is produced by a plant.
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