JP2015053893A - High-speed gene amplification detection device - Google Patents

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安田 賢二
Kenji Yasuda
賢二 安田
英之 寺薗
Hideyuki Terazono
英之 寺薗
賢徹 金
Hyon-Chol Kin
賢徹 金
服部 明弘
Akihiro Hattori
明弘 服部
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Tokyo Medical and Dental University NUC
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On-chip Cellomics Consortium
Tokyo Medical and Dental University NUC
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Abstract

PROBLEM TO BE SOLVED: To provide a reaction control device that can perform accurate temperature control and temperature measurement and rapid raising or lowering of temperature.SOLUTION: There is provided a high-speed gene amplification detection device including: an additional mechanism capable of further stable temperature control; a pretreatment mechanism including an introduction of a reverse transcription reaction process before a PCR reaction enabling RNA detection; a melting curve analysis function; and an optical measuring function of an optimum chip technology for droplet holding and optical measurement, and of the PCR reaction.

Description

本発明は、基礎生命科学、医学基礎研究ならびに医療現場において、迅速に微量の遺伝子解析の研究や臨床を行うに適する反応容器を用いた遺伝子解析装置に関するものであり、例えば人間をはじめとする動物や植物のゲノムDNA、メッセンジャーRNA等の核酸塩基配列から特定の塩基配列を高速で検出するための反応装置を扱う遺伝子解析に関するものである。   The present invention relates to a genetic analysis apparatus using a reaction vessel suitable for conducting rapid research and clinical analysis of a very small amount of genes in basic life science, basic medical research, and medical practice, for example, animals such as humans The present invention relates to gene analysis that handles a reaction apparatus for detecting a specific base sequence at high speed from nucleic acid base sequences such as genomic DNA of plants and messenger RNA.

ポリメラーゼ連鎖反応(Polymerase chain reaction以下、PCRと略記する。)は、様々な種類の核酸の混合物から特定の塩基配列を増幅する方法である。混合物中にゲノムDNA あるいはメッセンジャーRNAから逆転写した相補的DNA等のDNAテンプレート、2種類以上のプライマーと熱安定性酵素、マグネシウムなどの塩、および4種類のデオキシリボヌクレオシド三リン酸(dATP、dCTP、dGTP、dTTP)を入れ、核酸を分離させる工程と、前記プライマーを結合させる工程と、熱安定性酵素によってプライマーが結合した核酸を鋳型としてハイブリダイゼーションさせる工程を少なくとも一回繰り返すことによって、特定の核酸配列を増幅させることができる。DNA増幅反応に用いられる反応容器を昇温、降温させることによって、熱サイクルを行っている。温度変化用の機構は色々と挙げられるが、サンプルを含む反応容器の温度をヒーターないしペルチエ素子、温風を用いた熱交換で変化させる機構、反応容器を異なる温度のヒータブロックもしくは液体バスに交互に接触させることにより温度を変化させる機構、異なる温度の領域を有する流路中にサンプルを流して温度を変える方法がある。現状の市販装置として最速なものとして、例えばロッシュ社のライトサイクラー(Light Cycler)では、複数のガラスキャピラリー管の各々に試料とDNAポリメラーゼとプライマーとなるDNA小片および計測用の蛍光標識色素を導入し、このキャピラリー管内の微量液滴の温度を、例えば55℃と95℃の2つの温度など、変化させたい液滴の温度と同じ温度の温風を吹き付けることで変化させ、同時に、このガラスキャピラリー管に蛍光色素の励起光を照射し、得られた蛍光強度を計測する機構を有するものである。これらの方法によりサンプルの温度を繰り返し変化させることが可能である。   Polymerase chain reaction (hereinafter abbreviated as PCR) is a method for amplifying a specific base sequence from a mixture of various types of nucleic acids. DNA templates such as complementary DNA reverse transcribed from genomic DNA or messenger RNA in the mixture, two or more primers and thermostable enzyme, salts such as magnesium, and four deoxyribonucleoside triphosphates (dATP, dCTP, dGTP, dTTP) and separating the nucleic acid, the step of binding the primer, and the step of hybridization using the nucleic acid to which the primer is bound by a thermostable enzyme as a template, are repeated at least once. The sequence can be amplified. Thermal cycling is performed by raising and lowering the temperature of the reaction vessel used for the DNA amplification reaction. There are various mechanisms for changing the temperature, but the temperature of the reaction vessel containing the sample is changed by a heater or Peltier element, heat exchange using hot air, and the reaction vessel is switched to a heater block or liquid bath at different temperatures. There is a mechanism for changing the temperature by bringing the sample into contact with each other, and a method for changing the temperature by flowing a sample in a flow path having regions of different temperatures. As the fastest commercially available device, for example, Light Cycler (Roche Cycler), for example, introduces a sample, a DNA polymerase, a DNA piece serving as a primer, and a fluorescent labeling dye for measurement into each of a plurality of glass capillary tubes. The temperature of the minute droplet in the capillary tube is changed by blowing hot air having the same temperature as the temperature of the droplet to be changed, for example, two temperatures of 55 ° C. and 95 ° C., and at the same time, the glass capillary tube It has a mechanism for irradiating the fluorescent light with excitation light of a fluorescent dye and measuring the obtained fluorescence intensity. By these methods, it is possible to repeatedly change the temperature of the sample.

また、試料含有領域の外壁へ流体ジェットを衝突させることにより、試料温度を制御する流体衝突熱サイクラー装置が報告されている(特表2001―519224(特許文献1))。そこで本発明者らは、現在までにより高速なPCRを行うために、水に特異的に吸収を持つ波長の赤外線を照射して微小水滴の温度を高速で変換する技術、ならびに循環水を利用して循環水との熱交換によって温度サイクリングが超高速に行える超高速PCR装置を開発してきた(特開2008−278791、特開2009−118798、WO2010/113990、WO2011/105507(特許文献2〜5))。   In addition, a fluid collision thermal cycler device that controls the sample temperature by causing a fluid jet to collide with the outer wall of the sample-containing region has been reported (Japanese Patent Publication No. 2001-519224 (Patent Document 1)). Therefore, in order to perform PCR at a higher speed up to now, the present inventors have used a technology for converting the temperature of a minute water droplet at a high speed by irradiating infrared light having a wavelength specifically absorbed in water, and circulating water. Have developed ultra-high-speed PCR devices that can perform temperature cycling at high speed by heat exchange with circulating water (JP 2008-278791, JP 2009-118798, WO 2010/113990, WO 2011/105507 (Patent Documents 2 to 5)). ).

特表2001−519224Special table 2001-519224 特開2008−278791JP 2008-278791 A 特開2009−118798JP 2009-118798 A WO2010/113990WO2010 / 113990 WO2011/105507WO2011 / 105507

上述のように、従来の技術では、急激な温度変化を伴って複数の温度の間でのサイクルを繰り返す場合には、1)厳密な温度制御、2)安定した温度維持、3)目標温度への移動時にオーバーシュートが無いことを達成する事は困難である。例えば、ヒーターまたはペルチエ素子での温度の変化速度は、毎秒数℃程度と遅く、また発熱と熱伝導との関係からターゲット温度に達するプロセスでは、高速でターゲット温度にするためにはオーバーシュートなしに温度を変化させることは困難である。また、基本的に固体中の熱伝導を利用すると熱源と表面の間には熱勾配が形成されてしまい、厳密な制御は不可能であった。また、サンプルがヒーターないしペルチエ素子に触れた瞬間に熱が奪われ、表面温度が所定温度に復帰するまでの遅延が発生していた。また異なるヒーターないし液体バスに反応槽を接触させる場合には、移動用の機構が複雑であり、ヒーターないし液体バスの温度制御が困難であった。さらに、異なる温度領域を有する流路中にサンプルを流す方法においては、サンプルの移動に伴って流路自体の表面温度が変化してしまい、温度制御が困難であるといった問題があった。また、温風を吹き付けて温度変化を行う場合には、空気の熱容量が少ないため、多量の空気を吹き付ける必要があり、また、同様に空気の熱容量が少ないため、電熱線等で吹き付ける空気の最終的な吹き出し温度を1℃単位で厳密に制御することは困難であった。   As described above, in the conventional technique, when a cycle between a plurality of temperatures is repeated with a rapid temperature change, 1) strict temperature control, 2) stable temperature maintenance, and 3) to a target temperature. It is difficult to achieve no overshoot when moving. For example, the rate of change of temperature in a heater or Peltier element is as slow as several degrees C per second, and in the process of reaching the target temperature due to the relationship between heat generation and heat conduction, there is no overshoot in order to reach the target temperature at high speed. It is difficult to change the temperature. Moreover, basically, when heat conduction in a solid is utilized, a thermal gradient is formed between the heat source and the surface, and thus strict control is impossible. Further, heat is taken away at the moment when the sample touches the heater or Peltier element, and a delay occurs until the surface temperature returns to the predetermined temperature. Further, when the reaction tank is brought into contact with a different heater or liquid bath, the moving mechanism is complicated, and it is difficult to control the temperature of the heater or liquid bath. Furthermore, in the method in which the sample is caused to flow through the flow paths having different temperature regions, there is a problem that the surface temperature of the flow path itself changes with the movement of the sample, making temperature control difficult. In addition, when changing the temperature by blowing warm air, it is necessary to blow a large amount of air because the heat capacity of air is small. It is difficult to strictly control the typical blowing temperature in units of 1 ° C.

本発明者らはこれまでに、連続して一定の熱量を供給するために定常的な赤外光照射あるいは高速還流する温水を利用し、ターゲットに対して常にエネルギーを供給することができ、正確な温度制御、温度測定と迅速な昇温、降温を行うことができる反応制御装置を独自に開発した。さらにこれに蛍光検出系を組み合わせる事で、PCR反応によるDNA増幅に伴い蛍光強度が増加する蛍光色素を用い、その増幅反応をリアルタイムに検出する蛍光検出方法を組み込んだ高速PCR検出装置を開発してきた(特許文献2〜5)。   In the past, the present inventors have been able to constantly supply energy to the target using constant infrared light irradiation or hot water that is refluxed at high speed in order to continuously supply a constant amount of heat. Has developed a unique reaction control device that can perform temperature control, temperature measurement and quick temperature rise and fall. Furthermore, by combining this with a fluorescence detection system, we have developed a high-speed PCR detector that incorporates a fluorescence detection method that detects the amplification reaction in real time using a fluorescent dye whose fluorescence intensity increases with the amplification of DNA by PCR reaction. (Patent Documents 2 to 5).

本発明では、これら本発明者らの従前の発明をさらに改善させ、より正確な温度制御、温度測定と迅速な昇温、降温を行うことができる核酸反応制御装置を提供することを目的とする。   An object of the present invention is to provide a nucleic acid reaction control apparatus that can further improve these previous inventions and can perform more accurate temperature control, temperature measurement, and quick temperature increase / decrease. .

上記課題に鑑みて、本発明は、より安定した温度制御を可能にする付加機構を備える高速反応制御装置(例:高速PCR装置)およびそれを用いる遺伝子解析または遺伝子増幅方法を提供する。   In view of the above problems, the present invention provides a high-speed reaction control device (eg, high-speed PCR device) having an additional mechanism that enables more stable temperature control and a gene analysis or gene amplification method using the same.

すなわち、本発明は、以下の装置および方法を提供する。
[1]核酸を含むサンプル液を容れるための1または複数のウェルを備えた反応槽(reaction vessel)と、
ヒートシンク(heat sink)または熱交換槽(heat exchange chamber)と、
上記ヒートシンクまたは上記熱交換槽を第1の温度に保つように構成された、該ヒートシンクまたは該熱交換槽の温度制御装置(temperature controller)と、
上記ヒートシンクまたは上記熱交換槽と上記反応槽との間に配置された、上記ヒートシンクまたは熱交換槽と上記反応槽との間の熱の移動を媒介する熱電素子(thermoelectric element)と、
上記熱電素子の動作(operation)を制御することにより、上記反応槽の温度を上記第1の温度と第2の温度との間で変化させる熱電素子制御装置(thermoelectric element controller)と
を備え、
上記熱電素子の動作がオフのときに、上記反応槽の温度が上記第1の温度となるように構成されている、遺伝子解析または遺伝子増幅のための装置。
[2]上記第1の温度が、核酸の伸長反応温度であり、
上記第2の温度が、(i)核酸の変性温度、または(ii)核酸の変性温度もしくは核酸のアニーリング温度である、上記[1]に記載の装置。
[3]上記温度制御装置が、
(i)温度センサー、
(ii)上記ヒートシンクを加温するための熱電線、および
(iii)上記温度センサーからの上記ヒートシンクの温度情報に基づいて上記熱電線への電力供給を制御するフィードバック制御機構
を備える、上記[1]または[2]に記載の装置。
[4]上記温度制御装置が、管状流路により上記熱交換槽に流体接続された所定の温度の液体を保持した液体リザーバと上記熱交換槽との間で上記所定の温度の液体を還流させることによって上記熱交換槽の温度を制御する液体還流型温度制御装置である、上記[1]または[2]に記載の装置。
[5]上記熱電素子制御装置が、
温度センサー、および
上記温度センサーからの上記反応槽の温度情報に基づいて上記熱電素子の動作を制御するコンピュータ
を備える、上記[1]〜[4]のいずれかに記載の装置。
[6]上記熱電素子が、ペルチエ素子である、上記[1]〜[5]のいずれかに記載の装置。
[7]上記熱電素子と上記反応槽との間の熱の移動効率を高めるために上記熱電素子と上記反応槽との間に配置された熱伝導用薄板をさらに備える、上記[1]〜[6]のいずれかに記載の装置。
[8]上記反応槽の底面および壁面が、厚さ1ミクロンから100ミクロンのアルミ、ニッケル、マグネシウム、チタン、プラチナ、金、銀、および銅からなる群から選択される金属またはシリコンから形成されている、上記[1]〜[7]のいずれかに記載の装置。
[9]上記サンプル液の量が1ウェル当たり数十μL以下である、上記[1]〜[8]のいずれかに記載の装置。
[10]上記サンプル液中に蛍光色素を含有させた場合に、上記反応槽の温度の切り替えに連動して上記ウェル内の上記蛍光色素が発する蛍光を検出し、蛍光強度の時間変化を測定するための蛍光検出装置をさらに備える、上記[1]〜[9]のいずれかに記載の装置。
[11]上記ウェルに配置したサンプルの液滴の蒸発を防ぐために上記反応槽を密閉して覆い、かつ結露を防ぐために保温部材を備える反応槽枠をさらに備える、上記[1]〜[10]のいずれかに記載の装置。
[12]上記反応槽枠が、該反応槽枠内の上記サンプルからの光学信号の測定を容易にする孔もしくは光学窓をさらに備え、該光学窓が光学的に透明な発熱体を備える、上記[11]に記載の装置。
[13]上記反応槽の上記各ウェルのサンプル配置場所に支柱(ピラー)が配置されており、該ピラーに支えられるようにサンプル液蒸発防止用のシール剤が該ウェルに被せられており、該ピラーによって測定中の上記サンプル液が上記蒸発防止用のシール剤に付着することを防がれている、上記[1]〜[9]のいずれかに記載の装置。
[14]上記反応槽(reaction vessel)に備えられた1または複数のウェル中の核酸を含むサンプル液の蛍光強度変化を計測する手段を有する、上記[1]〜[13]のいずれかに記載の装置。
[15]蛍光強度変化を計測する手段として、
上記サンプル液に対して照射するための1つ以上の蛍光光源、それぞれの波長の光を伝導する光ファイバー、および照射部位において観察対象に光を集束させる集光用レンズを含む光学系と、
上記サンプル液の蛍光強度を検出するための蛍光を伝導する、1つ以上の蛍光波長の各々に対応した光ファイバーと光ファイバーの後段に配置された特定の蛍光波長を通過させるバンドパスフィルターと蛍光検出器からなる上記細胞に結合した蛍光標識物質の蛍光強度を同時に取得する検出系とを有する、
上記[14]に記載の装置。
[16]上記サンプル液に対して照射するための1つ以上の蛍光光源として、強度可変調整機能を付加したLED光源と、
2つ以上の蛍光光源を用いる場合は、各々の蛍光光源の光強度を同じ強度に揃える機能、あるいは各単色光波長の励起光に対する蛍光感度の違い、あるいは蛍光強度の違いにあわせて各波長が同程度の検出感度を有するように各単色光単位で強度のバランスを調整する機能と、連続光からたとえば10ms以下のパルス光までの照射時間を可変に調整し、かつ、連続処理をする機能を有する、蛍光検出コントロールユニットとを備える、上記[14]〜[15]に記載の装置。
[17]上記該ヒートシンクまたは該熱交換槽の温度制御装置(temperature controller)において、高速循環する水等の熱交換媒体に対して熱交換表面において目的温度に制御され設定されたペルチエ素子等の温度制御可能な発熱源と広面積で接触する熱交換部を備える上記[1]〜[16]に記載の装置。
[18]上記熱交換部において、ペルチエ素子等の温度制御可能な発熱源との接触面から5mm以内の高さの熱交換用容器を備える、上記[17]に記載の装置。
[19]上記熱交換部において、ペルチエ素子等の温度制御可能な発熱源との接触面積を増大させるために熱交換領域内に高速液体の循環を妨げない1つ以上の支柱型熱交換用ピラーを容器内に配置した熱交換用容器を備える、上記[17]〜[18]に記載の装置。
[20]上記核酸を含むサンプル液を容れるための1または複数のウェルを備えた反応槽(reaction vessel)において、ウェル表面に、サンプル液をより広い表面積で接触することができるように親水性処理を行ったことを特徴とする、上記[1]〜[19]に記載の装置。
[21]上記核酸を含むサンプル液を容れるための1または複数のウェルを備えた反応槽(reaction vessel)において、サンプル液がウェル外に漏れ出ることを防ぐためにウェル外の表面に疎水性処理を施したことを特徴とする、上記[1]〜[20]に記載の装置。
[22]上記[1]〜[21]のいずれかに記載の装置を用いて、PCRを行う方法であって、
(a)核酸を含むサンプル液をウェルに配置する工程、
(b)第1の温度としての核酸の伸長反応温度から、第2の温度としての(i)核酸の変性温度または(ii)核酸の変性温度もしくは核酸のアニーリング温度への反応槽の温度の切り替えを行う工程、
(c)引き続き上記第2の温度から上記第1の温度への上記反応槽の温度の切り替えを行う工程、ならびに
(d)工程(b)および工程(c)を所定の時間間隔で所定回繰り返す工程、
を含み、
上記第2の温度から上記第1の温度への上記反応槽の温度の切り替えが、上記熱電素子の動作をオフにすることによって行われる、方法。
[23]上記工程(d)において、工程(b)(ii)および工程(c)を所定回繰り返す際に、
上記第1の温度としての核酸の伸長反応温度から、上記(b)(ii)の第2の温度としての核酸の変性温度への上記反応槽の温度の切り替えおよび引き続き該核酸の変性温度から上記第1の温度への上記反応槽の温度の切り替えを行うことと、
上記第1の温度としての核酸の伸長反応温度から、上記(b)(ii)の第2の温度としての核酸のアニーリング温度への上記反応槽の温度の切り替えおよび引き続き該核酸のアニーリング温度から上記第1の温度への上記反応槽の温度の切り替えを行うことと
を交互に行うことを所定の時間間隔で繰り返すことを含む、上記[22]に記載の方法。
[24]上記[1]〜[21]のいずれかに記載の装置を用いて、融解曲線測定を行う方法であって、
(a)核酸を含むサンプル液をウェルに配置する工程、
(b)第1の温度としての核酸の伸長反応温度から、第2の温度としての(i)核酸の変性温度または(ii)核酸の変性温度もしくは核酸のアニーリング温度への反応槽の温度の切り替えを行う工程、
(c)引き続き上記第2の温度から上記第1の温度への上記反応槽の温度の切り替えを行う工程、ならびに
(d)工程(b)および工程(c)を所定の時間間隔で所定回繰り返す工程、
(e)反応後のPCR産物をたとえば60℃から90℃の間で毎分5℃以下の低速の一定速度での熱変化で熱処理、解離し、その間の蛍光強度の変化とそのときのサンプル液の温度をモニタリングする工程(非特異な産物が含まれると複数のピークが生じるので,産物の特異性を確認することができる)
を含み、
上記第2の温度から上記第1の温度への上記反応槽の温度の切り替えが、上記熱電素子の動作をオフにすることによって行われる、方法。
That is, the present invention provides the following apparatus and method.
[1] a reaction vessel having one or more wells for containing a sample solution containing nucleic acid;
A heat sink or heat exchange chamber;
A temperature controller for the heat sink or the heat exchange bath configured to maintain the heat sink or the heat exchange bath at a first temperature;
A thermoelectric element that is disposed between the heat sink or the heat exchange tank and the reaction tank and mediates heat transfer between the heat sink or the heat exchange tank and the reaction tank;
A thermoelectric element controller that changes the temperature of the reaction vessel between the first temperature and the second temperature by controlling the operation of the thermoelectric element;
An apparatus for gene analysis or gene amplification configured such that the temperature of the reaction vessel becomes the first temperature when the operation of the thermoelectric element is off.
[2] The first temperature is a nucleic acid elongation reaction temperature,
The apparatus according to [1] above, wherein the second temperature is (i) a nucleic acid denaturation temperature, or (ii) a nucleic acid denaturation temperature or a nucleic acid annealing temperature.
[3] The temperature control device is
(I) temperature sensor,
(Ii) a thermal wire for heating the heat sink, and (iii) a feedback control mechanism for controlling power supply to the thermal wire based on temperature information of the heat sink from the temperature sensor. ] Or the apparatus according to [2].
[4] The temperature control device recirculates the liquid at the predetermined temperature between the liquid reservoir holding the liquid at the predetermined temperature and fluidly connected to the heat exchange tank through the tubular flow path and the heat exchange tank. The apparatus according to [1] or [2], wherein the apparatus is a liquid reflux type temperature control device that controls the temperature of the heat exchange tank.
[5] The thermoelectric element control device is
The apparatus according to any one of [1] to [4], further comprising: a temperature sensor; and a computer that controls the operation of the thermoelectric element based on temperature information of the reaction vessel from the temperature sensor.
[6] The apparatus according to any one of [1] to [5], wherein the thermoelectric element is a Peltier element.
[7] The above [1] to [1], further comprising a thin plate for heat conduction disposed between the thermoelectric element and the reaction tank in order to increase heat transfer efficiency between the thermoelectric element and the reaction tank. 6] The apparatus according to any one of the above.
[8] The bottom surface and wall surface of the reaction vessel are formed of metal or silicon selected from the group consisting of aluminum, nickel, magnesium, titanium, platinum, gold, silver, and copper having a thickness of 1 to 100 microns. The apparatus according to any one of [1] to [7].
[9] The device according to any one of [1] to [8], wherein the amount of the sample solution is several tens of μL or less per well.
[10] When a fluorescent dye is contained in the sample solution, the fluorescence emitted from the fluorescent dye in the well is detected in conjunction with the switching of the temperature of the reaction vessel, and the time change of the fluorescence intensity is measured. The apparatus in any one of said [1]-[9] further provided with the fluorescence detection apparatus for.
[11] The above [1] to [10], further comprising a reaction vessel frame that hermetically covers and covers the reaction vessel to prevent evaporation of the sample droplets disposed in the wells, and further includes a heat retaining member to prevent condensation. The apparatus in any one of.
[12] The reaction vessel frame further includes a hole or an optical window that facilitates measurement of an optical signal from the sample in the reaction vessel frame, and the optical window includes an optically transparent heating element. The apparatus according to [11].
[13] A column (pillar) is disposed at a sample arrangement position of each well of the reaction tank, and a sealant for preventing sample liquid evaporation is placed on the well so as to be supported by the pillar. The apparatus according to any one of [1] to [9] above, wherein the sample liquid being measured is prevented from adhering to the sealing agent for preventing evaporation by a pillar.
[14] The method according to any one of [1] to [13], further including means for measuring a change in fluorescence intensity of a sample solution containing nucleic acids in one or more wells provided in the reaction vessel. Equipment.
[15] As a means for measuring changes in fluorescence intensity,
An optical system including one or more fluorescent light sources for irradiating the sample liquid, an optical fiber that conducts light of each wavelength, and a condensing lens that focuses the light on the observation target at the irradiation site;
An optical fiber corresponding to each of one or more fluorescent wavelengths, a bandpass filter that passes a specific fluorescent wavelength disposed downstream of the optical fiber, and a fluorescence detector that conducts fluorescence for detecting the fluorescence intensity of the sample solution A detection system for simultaneously acquiring the fluorescence intensity of the fluorescent labeling substance bound to the cells consisting of
The apparatus according to [14] above.
[16] As one or more fluorescent light sources for irradiating the sample liquid, an LED light source to which an intensity variable adjustment function is added;
When two or more fluorescent light sources are used, each wavelength varies depending on the function of aligning the light intensities of the respective fluorescent light sources, the difference in fluorescence sensitivity to the excitation light of each monochromatic light wavelength, or the difference in fluorescence intensity. A function to adjust the intensity balance for each monochromatic light unit so as to have the same level of detection sensitivity, and a function to variably adjust the irradiation time from continuous light to pulse light of 10 ms or less, and to perform continuous processing The apparatus according to any one of [14] to [15] above, comprising a fluorescence detection control unit.
[17] In the temperature controller of the heat sink or the heat exchange tank, the temperature of the Peltier element or the like controlled and set at a target temperature on the heat exchange surface with respect to a heat exchange medium such as water circulating at high speed The apparatus according to any one of [1] to [16] above, further comprising a heat exchanging portion that contacts the controllable heat generation source over a wide area.
[18] The apparatus according to [17], wherein the heat exchanging unit includes a heat exchanging container having a height within 5 mm from a contact surface with a temperature-controllable heat source such as a Peltier element.
[19] One or more pillar-type heat exchange pillars that do not hinder the circulation of the high-speed liquid in the heat exchange region in order to increase the contact area with a heat-controllable heat source such as a Peltier element in the heat exchange unit The apparatus according to any one of [17] to [18], further including a heat exchange container disposed in the container.
[20] In a reaction vessel provided with one or a plurality of wells for containing a sample solution containing the nucleic acid, hydrophilic treatment is performed so that the sample solution can be brought into contact with the well surface with a wider surface area. The apparatus according to any one of [1] to [19] above, wherein
[21] In a reaction vessel having one or a plurality of wells for containing a sample solution containing the nucleic acid, a hydrophobic treatment is applied to the surface outside the well in order to prevent the sample solution from leaking out of the well. The apparatus according to any one of [1] to [20] above, wherein the apparatus is applied.
[22] A method for performing PCR using the apparatus according to any one of [1] to [21],
(A) placing a sample solution containing nucleic acid in a well;
(B) Switching the reaction vessel temperature from the nucleic acid elongation reaction temperature as the first temperature to (i) the nucleic acid denaturation temperature or (ii) the nucleic acid denaturation temperature or the nucleic acid annealing temperature as the second temperature. The process of performing,
(C) the step of subsequently switching the temperature of the reaction vessel from the second temperature to the first temperature, and (d) repeating step (b) and step (c) a predetermined number of times at predetermined time intervals Process,
Including
Switching the temperature of the reaction vessel from the second temperature to the first temperature by turning off the operation of the thermoelectric element.
[23] In step (d), when steps (b) (ii) and (c) are repeated a predetermined number of times,
Switching the temperature of the reaction vessel from the nucleic acid elongation reaction temperature as the first temperature to the nucleic acid denaturation temperature as the second temperature in (b) (ii) and subsequently from the nucleic acid denaturation temperature to the above Switching the temperature of the reaction vessel to a first temperature;
Switching of the reaction vessel temperature from the nucleic acid elongation reaction temperature as the first temperature to the nucleic acid annealing temperature as the second temperature in (b) (ii) above, and subsequently from the nucleic acid annealing temperature to the above The method according to [22] above, comprising alternately performing switching of the temperature of the reaction vessel to the first temperature at predetermined time intervals.
[24] A method for measuring a melting curve using the apparatus according to any one of [1] to [21],
(A) placing a sample solution containing nucleic acid in a well;
(B) Switching the reaction vessel temperature from the nucleic acid elongation reaction temperature as the first temperature to (i) the nucleic acid denaturation temperature or (ii) the nucleic acid denaturation temperature or the nucleic acid annealing temperature as the second temperature. The process of performing,
(C) the step of subsequently switching the temperature of the reaction vessel from the second temperature to the first temperature, and (d) repeating step (b) and step (c) a predetermined number of times at predetermined time intervals Process,
(E) The PCR product after the reaction is heat-treated and dissociated by a thermal change at a constant rate of 5 ° C./min or less between 60 ° C. and 90 ° C., for example, and the change in fluorescence intensity and the sample solution at that time The process of monitoring the temperature of the product (multiple peaks occur when non-specific products are included, so the specificity of the product can be confirmed)
Including
Switching the temperature of the reaction vessel from the second temperature to the first temperature by turning off the operation of the thermoelectric element.

上記「より安定した温度制御を可能にする付加機構」に関連して、本発明の反応温度制御装置は、例えば、通常のPCR反応で用いられる3つの温度、すなわち変性温度(以降、高温とする)、アニーリング温度(以降、低温度とする)、そして伸長反応温度(以降、中温度とする)を短時間で実現し、特に反応させたいDNA鎖の長さに応じて反応時間を長くしたりという調整が必要な伸長反応温度を高速でかつ安定して提供する手段を有する。すなわち、例えば、本発明の一実施形態では、(1)中温度で安定するように制御された熱容量の大きなヒートシンクと、(2)このヒートシンクの温度を一定に維持するように熱を供給する電熱線あるいは一定温度での中温度の液体の高速循環を行う手段と、(3)DNA伸長反応を行わせる試料を配置したDNA反応チップと、(4)DNA反応チップを収容し、チップ上面の温度を75℃以上に維持する蛍光観察領域の波長について光学的に透明な観察窓を持つ容器と、(5)上記、DNA反応チップとヒートシンクの間に配置された熱を能動的に移動させることができるペルチエ素子等の熱移動手段と、(6)DNA反応チップ上の液体の蛍光強度の変化を検出する手段と、を有する高速遺伝子増幅装置が提供される。ヒートシンクに熱容量の大きな素材と電熱線等の発熱源を用いる場合は、ヒートシンクの素材は熱容量が大きく、かつ、熱伝導性が高い金属(例:アルミニウム、ジュラルミン、金、銀、タングステン、ネパール黄銅、マグネシウム、モリブデン、ベリリウムおよび、これらの元素を用いた合金)を用いる事が望ましい。またヒートシンクと同等に用いられるものとして中温度に設定された高速循環液体を用いた熱交換槽を用いても良い。その場合、リザーバを1個のみ備える高速液体還流型の反応制御装置のみならず、それ自体で2温度または3温度のPCRに対応可能な2または3個のリザーバを備える高速液体還流型の反応制御装置において中温度に設定した1個のリザーバのみを用いるようにしてもよい。また、試料を載せるDNA反応チップについては、発明者らが以前に出願した高速液体還流型PCR装置(WO2010/113990)の反応容器の構成をそのまま利用することができる。   In relation to the above “addition mechanism that enables more stable temperature control”, the reaction temperature control device of the present invention is, for example, three temperatures used in a normal PCR reaction, that is, a denaturation temperature (hereinafter referred to as a high temperature). ), Annealing temperature (hereinafter referred to as low temperature), and extension reaction temperature (hereinafter referred to as medium temperature) can be realized in a short time, and in particular, the reaction time can be increased depending on the length of the DNA strand to be reacted. And a means for stably providing the extension reaction temperature which requires adjustment at a high speed. That is, for example, in one embodiment of the present invention, (1) a heat sink with a large heat capacity controlled to be stable at a medium temperature, and (2) an electric power supply that supplies heat so as to keep the temperature of the heat sink constant. Means for high-speed circulation of a medium-temperature liquid at a hot wire or at a constant temperature; (3) a DNA reaction chip on which a sample for carrying out a DNA extension reaction is placed; and (4) a temperature of the upper surface of the chip containing the DNA reaction chip. A container having an observation window that is optically transparent with respect to the wavelength of the fluorescence observation region for maintaining the temperature at 75 ° C. or higher, and (5) actively moving the heat disposed between the DNA reaction chip and the heat sink. There is provided a high-speed gene amplification device having a heat transfer means such as a Peltier element, and (6) a means for detecting a change in fluorescence intensity of a liquid on a DNA reaction chip. When using a heat sink with a material with a large heat capacity and a heat source such as a heating wire, the heat sink material has a large heat capacity and a metal with high heat conductivity (eg, aluminum, duralumin, gold, silver, tungsten, Nepalese brass, It is desirable to use magnesium, molybdenum, beryllium, and alloys using these elements. Moreover, you may use the heat exchange tank using the high-speed circulation liquid set to medium temperature as what is used equivalent to a heat sink. In that case, not only a high-speed liquid reflux type reaction control apparatus having only one reservoir, but also a high-speed liquid reflux type reaction control having two or three reservoirs capable of supporting two- or three-temperature PCR by itself. Only one reservoir set at a medium temperature in the apparatus may be used. For the DNA reaction chip on which the sample is placed, the configuration of the reaction vessel of the high-speed liquid reflux PCR apparatus (WO2010 / 113990) previously filed by the inventors can be used as it is.

中温度のヒートシンクまたは熱交換槽を用いて反応槽の温度を制御する本発明の利点として、1)中温度についての厳密な温度制御が可能なこと、2)中温度についての安定した温度維持が可能なこと、3)中温度への移動時にオーバーシュートが無いことが挙げられる。温度のオーバーシュート問題を解決することができることについては、大きな熱容量を持つヒートシンクまたは熱交換槽の温度はほぼ一定であることから、反応槽表面の温度とヒートシンクまたは熱交換槽の温度はほぼ瞬時に平衡化することができる。本発明において、反応槽およびサンプルの熱容量は、ヒートシンクまたは熱交換槽と比較して微々たるものであり、また、熱電素子(例:ペルチエ素子)の動作についてもヒートシンクまたは熱交換槽の温度が安定しており、また、その安定点の温度(中温度)が、高温度と低温度の中間に位置する事から、従来の室温から動作させていたペルチエ素子制御型遺伝子増幅装置に対して、高温度あるいは低温度に移動させるときの熱の移動量が最小となり、また、ヒートシンクまたは熱交換槽の温度が安定している限り、高温度あるいは低温度への温度変化の動作に必要な電流量を見積もりやすい。また、ペルチエ素子の動作によって局所的にヒートシンクまたは熱交換槽から熱が奪われたとしてもヒートシンクまたは熱交換槽の熱容量が十分に大きい事から熱勾配は基本的に発生しない。勿論、ペルチエ素子等の熱電素子OFF時の反応槽の温度はヒートシンクまたは熱交換槽の温度を超えることはない。本発明によれば0.5秒以内に30℃以上温度を変化させることが可能である。したがって、本発明によれば、温度変更に必要な時間を極めて短くできることから、例えば、PCR反応を遂行するためのトータルタイムを従来の装置よりも格段に短縮することが可能である。   Advantages of the present invention in that the temperature of the reaction vessel is controlled using a medium temperature heat sink or heat exchange vessel are as follows: 1) strict temperature control is possible for medium temperature, and 2) stable temperature maintenance for medium temperature. 3) No overshoot when moving to medium temperature. Regarding the ability to solve the temperature overshoot problem, the temperature of the heat sink or heat exchanger with a large heat capacity is almost constant, so the temperature of the reaction vessel surface and the temperature of the heat sink or heat exchanger are almost instantaneous. Can be equilibrated. In the present invention, the heat capacity of the reaction vessel and the sample is insignificant compared to the heat sink or heat exchange vessel, and the temperature of the heat sink or heat exchange vessel is stable with respect to the operation of the thermoelectric element (eg, Peltier element). In addition, since the temperature of the stable point (medium temperature) is located between the high temperature and the low temperature, it is higher than the conventional Peltier element control type gene amplification device operated from room temperature. As long as the amount of heat transferred when moving to a low or low temperature is minimized and the temperature of the heat sink or heat exchanger is stable, the amount of current required to operate the temperature change to a high or low temperature is reduced. Easy to estimate. Further, even if heat is locally deprived from the heat sink or heat exchange tank by the operation of the Peltier element, a heat gradient is basically not generated because the heat capacity of the heat sink or heat exchange tank is sufficiently large. Of course, the temperature of the reaction tank when the thermoelectric element such as a Peltier element is OFF does not exceed the temperature of the heat sink or the heat exchange tank. According to the present invention, it is possible to change the temperature by 30 ° C. or more within 0.5 seconds. Therefore, according to the present invention, since the time required for temperature change can be extremely shortened, for example, the total time for performing the PCR reaction can be remarkably shortened compared with the conventional apparatus.

また、複数の光ファイバーを用いることで安価に、かつ、小型の複数蛍光波長での同時蛍光強度変化計測が連続して行うことができる。   In addition, by using a plurality of optical fibers, it is possible to continuously measure changes in the fluorescence intensity at a low cost and at a plurality of small fluorescence wavelengths.

また、ヒートシンクに温度変化が高速に対応できるモジュールを採用することの利点として安定して一定の温度変化を行わせる融解曲線計測がより容易になることが挙げられる。   Further, as an advantage of adopting a module that can cope with a high temperature change in the heat sink, it is easier to measure a melting curve that makes a constant temperature change stably.

さらにサンプル液を親水性処理をされた熱交換を行うプレートに滴下することでより広面積にサンプル液が伸展し、より広い表面積で熱交換が効率的に行われることが可能である。   Further, by dropping the sample liquid onto a hydrophilically treated plate for heat exchange, the sample liquid extends over a larger area, and heat exchange can be efficiently performed with a wider surface area.

本発明によれば、2温度または3温度PCRを行うために従来の液体還流型反応制御装置において必要であった、異なる2温度または3温度の各液体リザーバからの液体を交互に熱交換槽に循環させるためのバルブ等のスイッチング稼働部が必要でないという利点が提供される。あるいはまた、2温度もしくは3温度に対応可能な複数のリザーバを備える液体還流型反応制御装置を用いて本発明を実施する場合には、バルブ等のスイッチング機構を用いて異なる複数の温度に中温度を設定することが容易に実現可能であるという利点が提供される。   According to the present invention, the liquid from each liquid reservoir having different two or three temperatures, which is necessary in the conventional liquid reflux reaction control apparatus for performing the two-temperature or three-temperature PCR, is alternately supplied to the heat exchange tank. An advantage is provided that a switching operating part such as a valve for circulation is not required. Alternatively, when the present invention is implemented using a liquid reflux type reaction control device having a plurality of reservoirs capable of corresponding to two or three temperatures, a medium temperature is set to a plurality of different temperatures using a switching mechanism such as a valve. The advantage is that it can be easily realized.

高速液体還流型の反応制御装置(例:PCR装置)の全体構成を示す模式図である。It is a schematic diagram which shows the whole structure of the reaction control apparatus (example: PCR apparatus) of a high-speed liquid reflux type. 高速液体還流型の反応制御装置に使用される熱交換槽の概略図である。It is the schematic of the heat exchange tank used for the reaction control apparatus of a high-speed liquid reflux type. 本発明の装置に使用される反応槽の形態と凍結乾燥試薬の溶解方法を示す模式図である。It is a schematic diagram which shows the form of the reaction tank used for the apparatus of this invention, and the dissolution method of a freeze-drying reagent. 本発明の装置に使用される円柱型反応枠と熱交換槽への取り付け方法を示す模式図である。It is a schematic diagram which shows the attachment method to the cylindrical reaction frame and heat exchange tank which are used for the apparatus of this invention. 高速液体還流型の反応制御装置に使用されるバルブの切り替えシーケンスを示す模式図である。It is a schematic diagram which shows the switching sequence of the valve | bulb used for a high-speed liquid reflux type reaction control apparatus. 高速液体還流型の反応制御装置を用いて行った(A)温度変化に関するデータと、(B)PCR反応の結果を示す図である。It is a figure which shows the result of (A) the data regarding a temperature change and (B) PCR reaction which were performed using the high-speed liquid reflux type reaction control apparatus. 本発明の装置に使用されるスライドガラス型反応枠と熱交換槽への取り付け方法を示す模式図である。It is a schematic diagram which shows the attachment method to the slide glass type | mold reaction frame used for the apparatus of this invention, and a heat exchange tank. 高速液体還流型の反応制御装置に使用されるスライド型ピストンバルブの駆動機構を示す模式図である。It is a schematic diagram which shows the drive mechanism of the slide type piston valve used for the reaction control apparatus of a high-speed liquid recirculation | reflux type | mold. 高速液体還流型の反応制御装置に使用されるスライド型ピストンバルブの駆動機構を示す模式図である。It is a schematic diagram which shows the drive mechanism of the slide type piston valve used for the reaction control apparatus of a high-speed liquid recirculation | reflux type | mold. 高速液体還流型の反応制御装置に使用される回転式バルブの駆動機構を示す模式図である。It is a schematic diagram which shows the drive mechanism of the rotary valve | bulb used for a high-speed liquid reflux type reaction control apparatus. 高速液体還流型の反応制御装置に使用されるメンブレンによる温度変化機構を示す模式図である。It is a schematic diagram which shows the temperature change mechanism by the membrane used for the high-speed liquid reflux type reaction control apparatus. 高速液体還流型の反応制御装置に使用される温度設定型バルブの駆動機構を示す模式図である。It is a schematic diagram which shows the drive mechanism of the temperature setting type | mold valve used for the reaction control apparatus of a high-speed liquid recirculation | reflux type | mold. 高速液体還流型の反応制御装置の構成の一例を用いて、DNA反応チップの配置、上面の温度制御、ならびに蛍光検出の方法の一例を示す模式図である。It is a schematic diagram showing an example of the arrangement of a DNA reaction chip, temperature control of the upper surface, and fluorescence detection method using an example of the configuration of a high-speed liquid reflux type reaction control device. 高速液体還流型の反応制御装置の反応槽の構成の一例を用いて、DNA反応チップの配置、上面の温度制御、ならびに蛍光検出の方法の一例を示す模式図である。It is a schematic diagram showing an example of a method of arrangement of a DNA reaction chip, temperature control of an upper surface, and fluorescence detection using an example of a configuration of a reaction tank of a high-speed liquid reflux type reaction control device. 高速液体還流型反応制御装置の反応槽における、反応槽チップの搬送系ならびに逆転写反応を行う装置構成の一例を用いて、DNA反応チップの配置、上面の温度制御、ならびに蛍光検出の方法の一例を示す模式図である。An example of a method for arranging a DNA reaction chip, controlling the temperature of the upper surface, and detecting fluorescence using an example of a reaction tank chip transport system and a reverse transcription reaction in a reaction tank of a high-speed liquid reflux reaction control apparatus It is a schematic diagram which shows. 本発明の反応槽における試料の蛍光検出方法の構成の一例を示す模式図である。It is a schematic diagram which shows an example of a structure of the fluorescence detection method of the sample in the reaction tank of this invention. 本発明の反応槽における試料の蛍光検出方法の構成の一例を示す模式図である。It is a schematic diagram which shows an example of a structure of the fluorescence detection method of the sample in the reaction tank of this invention. 本発明の反応槽の構造の一例を示す模式図である。It is a schematic diagram which shows an example of the structure of the reaction tank of this invention. 本発明の反応槽の構造の一例と検出方法の一例を示す模式図である。It is a schematic diagram which shows an example of the structure of the reaction tank of this invention, and an example of a detection method. 本発明の反応槽の構造一例を示す模式図である。It is a schematic diagram which shows an example of the structure of the reaction tank of this invention. 高速液体還流型の反応制御装置の構成の一例を示す模式図である。It is a schematic diagram which shows an example of a structure of a high-speed liquid reflux type reaction control apparatus. 光加熱型の反応制御装置の構成の一例を示す模式図である。It is a schematic diagram which shows an example of a structure of a light heating type reaction control apparatus. 光加熱型の反応制御装置の構成の一例でのNDフィルターの透過率の角度依存性を示す模式図である。It is a schematic diagram which shows the angle dependence of the transmittance | permeability of ND filter in an example of a structure of a light heating type reaction control apparatus. 本発明の構成の一例を示す模式図である。It is a schematic diagram which shows an example of a structure of this invention. 本発明のDNA試料の温度変化とペルチエ素子の動作を模式的に示すグラフである。It is a graph which shows typically the temperature change of the DNA sample of this invention, and operation | movement of a Peltier device. 光ファイバーアレイを用いて複数波長の蛍光励起光をサンプル液へ同時に照射し、発せられた複数波長の蛍光量を同時取得し、かつ複数波長の蛍光画像を同時取得するための装置構成の一例を模式的に示した図である。Schematic example of an apparatus configuration for simultaneously irradiating sample liquid with multiple wavelengths of fluorescence excitation light using an optical fiber array, simultaneously acquiring the emitted fluorescence amounts of multiple wavelengths, and simultaneously acquiring fluorescent images of multiple wavelengths FIG. サンプル液に照射するための複数の蛍光励起光と検出する複数の蛍光の波長セットを選択した一例を模式的に示したスペクトル図である。It is the spectrum figure which showed typically the example which selected the wavelength set of the some fluorescence excitation light for irradiating a sample liquid, and the some fluorescence to detect. サンプル液に照射する複数の蛍光励起光と検出する複数の蛍光の照射計測タイミングの一例を模式的に示した図である。It is the figure which showed typically an example of the irradiation measurement timing of the some fluorescence excitation light irradiated to a sample liquid, and the some fluorescence detected. 高速循環する水等の熱交換媒体に対して熱交換表面において目的温度に制御され設定されたペルチエ素子等の温度制御可能な発熱源と広面積で接触する熱交換部を有するヒートシンクまたは該熱交換槽の温度制御装置(temperature controller)についての一例を模式的に示した図である。A heat sink having a heat exchanging portion in contact with a heat-controllable heat source such as a Peltier element that is controlled and set at a target temperature on a heat exchanging surface such as water that circulates at high speed, or a large area, or the heat exchanging It is the figure which showed typically an example about the temperature controller (temperature controller) of a tank. 高速循環する水等の熱交換媒体に対して熱交換表面において目的温度に制御され設定されたペルチエ素子等の温度制御可能な発熱源と広面積で接触する熱交換部を有するヒートシンクまたは該熱交換槽の温度制御装置(temperature controller)についての一例を模式的に示した図である。A heat sink having a heat exchanging portion in contact with a heat-controllable heat source such as a Peltier element that is controlled and set at a target temperature on a heat exchanging surface such as water that circulates at high speed, or a large area, or the heat exchanging It is the figure which showed typically an example about the temperature controller (temperature controller) of a tank. 高速循環する水等の熱交換媒体に対して熱交換表面において目的温度に制御され設定されたペルチエ素子等の温度制御可能な発熱源と広面積で接触する熱交換部を有するヒートシンクまたは該熱交換槽の温度制御装置(temperature controller)を用いたPCR装置についての一例を模式的に示した図である。A heat sink having a heat exchanging portion in contact with a heat-controllable heat source such as a Peltier element that is controlled and set at a target temperature on a heat exchanging surface such as water that circulates at high speed, or a large area It is the figure which showed typically an example about the PCR apparatus using the temperature controller (temperature controller) of a tank. 核酸を含むサンプル液を容れるための1または複数のウェルを備えた反応槽(reaction vessel)について、サンプル液をウェル表面に、より広い表面積で接触することができるように親水性処理を行い、周囲を疎水処理したウェルの構造およびサンプル液の形状についての一例を模式的に示した図である。A reaction vessel equipped with one or more wells for containing a sample solution containing nucleic acid is subjected to hydrophilic treatment so that the sample solution can be brought into contact with the well surface with a larger surface area, and the surroundings. It is the figure which showed typically an example about the structure of the well which processed hydrophobicity, and the shape of a sample liquid.

以下、図面を参照しながら本発明の実施形態について説明するが、これらの実施形態は例示であって、本発明の範囲がこれらに限定されるものではない。   Hereinafter, embodiments of the present invention will be described with reference to the drawings. However, these embodiments are examples, and the scope of the present invention is not limited thereto.

図1は、高速液体還流型の反応制御装置の一実施形態の全体構成を示す模式図である。この反応制御装置は、典型的には、反応槽(reaction vessel)1、反応槽枠2、熱交換槽(heat exchange chamber)3、液体リザーバタンク(liquid reservoir tank)4、熱源5、攪拌機構6、ポンプ7、切り替えバルブ8、バイパス流路9、および補助温度制御機構10を備える。好ましくは、さらに蛍光検出器201、および制御信号203を送るための制御解析部202、および光学窓(または孔)204を備える。   FIG. 1 is a schematic diagram showing the overall configuration of an embodiment of a high-speed liquid reflux type reaction control device. This reaction control apparatus typically includes a reaction vessel 1, a reaction vessel frame 2, a heat exchange chamber 3, a liquid reservoir tank 4, a heat source 5, and a stirring mechanism 6. , A pump 7, a switching valve 8, a bypass flow path 9, and an auxiliary temperature control mechanism 10. Preferably, it further includes a fluorescence detector 201, a control analysis unit 202 for sending a control signal 203, and an optical window (or hole) 204.

好ましい実施形態では、複数の液体リザーバタンク4は、液体の高速循環中に各タンク中の液体の高さに違いが発生してこれが水位高さの違いによる圧力差を発生させないように、微量の液体がタンク間を移動できる細い連結チューブ15によって接続されている。また、短時間で熱交換を実現するためには、図1に示されているように、各リザーバタンク4から常時、ポンプ7によって液体を循環させ、熱交換槽3に誘導しない場合も、切り替えバルブ8によってバイパス流路9に液体を誘導して常に循環させる。また、循環する液体は、リザーバタンク4に戻る前に補助温度制御機構10によって、リザーバタンク4の液体の温度と同じ温度となるように微調整をして還流するように配管されている。ここで補助温度制御機構10は、加温機構と冷却機構が組み込まれており、ペルチエ素子等によって加温と冷却の両方を実現する事も、あるいは抵抗加熱機構による加温系と空冷フィン型の冷却機構を用いる事も可能である。また、液温度センサー16が、各リザーバタンク4および各補助温度制御機構10に配置されており、これらのセンサーからの温度情報から液温度を各々希望する温度に制御できるように熱源5および補助温度制御機構10を制御することができる。ここで液温度センサーは、液体に直接接触しても腐食しない素材よりなるサーミスタあるいは防蝕被覆された熱電対などを用いる事が望ましい。   In a preferred embodiment, the plurality of liquid reservoir tanks 4 have a minute amount so that there is no difference in the height of the liquid in each tank during the high-speed circulation of the liquid and this does not cause a pressure difference due to the difference in water level height. The liquid is connected by a thin connecting tube 15 that can move between tanks. Further, in order to realize heat exchange in a short time, as shown in FIG. 1, the liquid is circulated from each reservoir tank 4 by the pump 7 at all times and is not guided to the heat exchange tank 3. The liquid is guided to the bypass channel 9 by the valve 8 and constantly circulated. In addition, the circulating liquid is piped so as to be recirculated by fine adjustment by the auxiliary temperature control mechanism 10 so as to be the same as the temperature of the liquid in the reservoir tank 4 before returning to the reservoir tank 4. Here, the auxiliary temperature control mechanism 10 incorporates a heating mechanism and a cooling mechanism, and can realize both heating and cooling by a Peltier element or the like, or a heating system by an resistance heating mechanism and an air cooling fin type. It is also possible to use a cooling mechanism. A liquid temperature sensor 16 is disposed in each reservoir tank 4 and each auxiliary temperature control mechanism 10, and the heat source 5 and the auxiliary temperature are controlled so that the liquid temperature can be controlled to a desired temperature from the temperature information from these sensors. The control mechanism 10 can be controlled. Here, as the liquid temperature sensor, it is desirable to use a thermistor made of a material that does not corrode even if it is in direct contact with the liquid, or a thermocouple with a corrosion protection coating.

また、好ましい実施形態では、各リザーバタンクには、熱源からの熱供給によって発生する水蒸気等の気体によるリザーバタンク内の圧力上昇があった場合に、タンクの破壊を防止し、また、気体の圧力差に原因した連結チューブを通じての液面高さの発生を防ぐために、発生した気体を効果的にタンク外に排出する圧力リーク弁2003を配置している。   Further, in a preferred embodiment, each reservoir tank prevents the tank from being destroyed when there is an increase in pressure in the reservoir tank due to gas such as water vapor generated by heat supply from a heat source. In order to prevent the generation of the liquid level through the connecting tube due to the difference, a pressure leak valve 2003 that effectively discharges the generated gas to the outside of the tank is disposed.

反応槽1は、典型的には、窪み(ウェル)を複数個有するアルミ、ニッケル、ないし金の薄板などから構成されている。窪み領域における薄板の厚さは、熱伝導性を高めるため周囲に比べて薄く構成されていることが好ましく、典型的には10から30ミクロン程度の厚さであるがこれに限定されない。隣り合った窪みの間の領域は全体的に強度を担保するためにより厚くなっていることが好ましく、典型的には、厚さが100ミクロンから500ミクロンの範囲にあるがこれに限定されない。反応槽1は、典型的には、四角、円形などの形状の反応槽枠2の底面に固定されて一体的に形成される。反応槽1および反応槽枠2は、典型的には、熱交換槽3に対して着脱可能に構成される(図4を参照)。   The reaction vessel 1 is typically composed of a thin plate of aluminum, nickel, or gold having a plurality of depressions (wells). The thickness of the thin plate in the indented region is preferably configured to be thinner than the surroundings in order to enhance thermal conductivity, and is typically about 10 to 30 microns thick, but is not limited thereto. The area between adjacent depressions is preferably thicker to ensure overall strength, and typically has a thickness in the range of 100 microns to 500 microns, but is not so limited. The reaction tank 1 is typically formed integrally with the bottom of the reaction tank frame 2 having a shape such as a square or a circle. The reaction tank 1 and the reaction tank frame 2 are typically configured to be detachable from the heat exchange tank 3 (see FIG. 4).

熱交換槽3に導入される液体の温度は、液体リザーバタンク4の内部に配置されている熱源5により制御されている。好ましくは、熱源5の表面から迅速に熱を奪い、液体リザーバタンク4内部の温度を均一にするために、攪拌機構6が備えられている。液体リザーバタンク4中の液体はポンプ7により流路内部に導かれる。切り替えバルブ8によって、液体は熱交換槽3に導かれるか、バイパス流路9に導かれて熱交換槽3を経ずに直接液体リザーバタンク4に戻る。必要に応じて、補助温度制御機構10によって、循環中に変化した液体の温度をタンク4内の設定温度と同じ温度に修正してから排出されるように緻密に制御され、液体リザーバタンク4内部の温度変動を抑制する。   The temperature of the liquid introduced into the heat exchange tank 3 is controlled by a heat source 5 disposed inside the liquid reservoir tank 4. Preferably, a stirring mechanism 6 is provided in order to quickly remove heat from the surface of the heat source 5 and make the temperature inside the liquid reservoir tank 4 uniform. The liquid in the liquid reservoir tank 4 is guided into the flow path by the pump 7. By the switching valve 8, the liquid is guided to the heat exchange tank 3 or is guided to the bypass flow path 9 and returns directly to the liquid reservoir tank 4 without passing through the heat exchange tank 3. If necessary, the auxiliary temperature control mechanism 10 finely controls the temperature of the liquid changed during the circulation so as to be discharged after being corrected to the same temperature as the set temperature in the tank 4. Suppresses temperature fluctuations.

熱交換槽3に導入される液体としては、水を用いてもよいがこれに限定されず、熱容量が大きく、かつ、粘性が低い液体(例:液体アンモニア)ならば任意のものを用いることができる。ただし、安全性の観点から非毒性、非可燃性の液体を用いる事が望ましい。また、例えば、水より沸点の高い液体を用いることで、確実に、サンプル液を100℃にしたり、あるいは、水より凝固点の低い液体を用いることで、装置内で循環する液体の凝固を防ぎながら水の凝固点までの温度の変化を確実に行うこともできる。   The liquid introduced into the heat exchange tank 3 may be water, but is not limited to this, and any liquid may be used as long as it has a large heat capacity and low viscosity (eg, liquid ammonia). it can. However, it is desirable to use a non-toxic and non-flammable liquid from the viewpoint of safety. In addition, for example, by using a liquid having a boiling point higher than that of water, the sample liquid can be surely brought to 100 ° C. It is also possible to reliably change the temperature up to the freezing point of water.

好適には、図1に示すように、反応槽枠2には、反応槽1内のサンプル液の反応によって変化するサンプル液中の蛍光色素の蛍光強度の変化を、1つあるいは複数の反応槽の各々について計測できるように、蛍光色素の励起光ならびに蛍光を透過する光学窓204が配置されている。また、蛍光検出器201が配置されることで、計測された各反応槽1の蛍光強度の時間変化を計測することができる。図1の実施例では、複数の蛍光検出器201各々の内に、励起光照射機構と、蛍光検出機構が具備されており、例えば、PCR反応を行わせる場合には、異なるプライマー、あるいは異なるサンプル液を滴下した複数の反応槽1の各々の異なるPCR増幅情報を独立して計測することができる構成となっている。また、蛍光検出器201で取得された蛍光強度データは、制御解析部202で記録され、PCR反応によって得られたサンプル液内のDNA量、あるいは、mRNA量を見積もる機能を有する。さらに、制御解析部202では、切り替えバルブ8の切り替え情報を取得することで、バルブ切り替え後のサンプル液の温度変化が目的の温度に達したかどうかを、蛍光強度の時間変化から見積もる機能、およびその結果に基づいてバルブ切り替えを制御する機構も有する。これは、蛍光色素が普遍的にもつ水分子の運動に基づいた蛍光消光が液温に依存することを利用して、蛍光強度の単位時間での変化量が小さくなること、あるいは、ゼロとなることから見積もるものであり、特に、DNAを変性させる高温状態の達成の確認に有効である。   Preferably, as shown in FIG. 1, the reaction vessel frame 2 is provided with a change in the fluorescence intensity of the fluorescent dye in the sample solution that changes due to the reaction of the sample solution in the reaction vessel 1, in one or more reaction vessels. An optical window 204 that transmits the excitation light of the fluorescent dye as well as the fluorescence is disposed so that each of the optical windows can be measured. Moreover, the time change of the fluorescence intensity of each measured reaction tank 1 can be measured by arrange | positioning the fluorescence detector 201. FIG. In the embodiment of FIG. 1, an excitation light irradiation mechanism and a fluorescence detection mechanism are provided in each of the plurality of fluorescence detectors 201. For example, when performing a PCR reaction, different primers or different samples The different PCR amplification information of each of the plurality of reaction vessels 1 to which the liquid has been dropped can be independently measured. The fluorescence intensity data acquired by the fluorescence detector 201 is recorded by the control analysis unit 202 and has a function of estimating the amount of DNA or mRNA in the sample solution obtained by the PCR reaction. Further, the control analysis unit 202 obtains switching information of the switching valve 8 to estimate whether or not the temperature change of the sample liquid after the valve switching has reached a target temperature from the change in fluorescence intensity over time, and It also has a mechanism for controlling valve switching based on the result. This is due to the fact that the fluorescence quenching based on the movement of water molecules universally possessed by fluorescent dyes depends on the liquid temperature, so that the amount of change in fluorescence intensity per unit time becomes small or zero. This is an estimate, and is particularly effective in confirming the achievement of a high temperature state in which DNA is denatured.

また、図1に示す実施例では、各反応槽1に1つの検出器を配置する構成を示したが、蛍光励起用光源と冷却CCDカメラなどの蛍光定量検出が可能なカメラを組み合わせて複数の反応槽1の蛍光強度変化を計測してもよい。あるいは、反応槽1の数より少ない検出器を用いる場合には、X−Y面で高速に移動することができる機械式駆動機構を検出器と組み合わせることで、すべての反応槽1の蛍光強度を計測してもよい。   In the embodiment shown in FIG. 1, a configuration is shown in which one detector is arranged in each reaction tank 1, but a plurality of light sources for fluorescence excitation such as a fluorescence excitation light source and a cooled CCD camera can be combined. You may measure the fluorescence intensity change of the reaction tank 1. FIG. Alternatively, when fewer detectors than the number of reaction vessels 1 are used, the fluorescence intensity of all reaction vessels 1 can be increased by combining a mechanical drive mechanism that can move at high speed on the XY plane with the detectors. You may measure.

また、サンプル液の容量は、1ウェル当たり0.1μL〜100μLの範囲を使用することができるが、これに限定されない。好ましいサンプル液の容量は、1ウェル当たり0.1〜数十(例えば、90、80、70、60、50、40、30、20、10)μLであるが、必要に応じて、さらに低容量で、例えば、1ウェル当たり0.5μL〜10μL、1ウェル当たり1μL〜5μL、1ウェル当たり1μL〜2μL等での使用も好適である。ウェルにはサンプル液の他に、サンプル液の蒸発を防ぐためのミネラルオイルなどを含有させてもよい。ミネラルオイルの容量としては、数μL(例:3〜4μL)程度が好ましいが、これに限定されず、ウェルの大きさやサンプル量により適宜変更しうることは当業者に明らかである。   The volume of the sample solution can be in the range of 0.1 μL to 100 μL per well, but is not limited thereto. A preferable volume of the sample solution is 0.1 to several tens (e.g., 90, 80, 70, 60, 50, 40, 30, 20, 10) μL per well. For example, it is also suitable to use 0.5 μL to 10 μL per well, 1 μL to 5 μL per well, 1 μL to 2 μL per well, and the like. In addition to the sample solution, the well may contain mineral oil or the like for preventing evaporation of the sample solution. The volume of the mineral oil is preferably about several μL (eg, 3 to 4 μL), but is not limited to this, and it will be apparent to those skilled in the art that it can be appropriately changed depending on the size of the well and the sample amount.

図2は、高速液体還流型の反応制御装置に使用される熱交換槽3の概略図である。熱交換槽3は、基本構成として、異なる温度の液体を導入するインレットA(11)、インレットB(12)を備える。また、熱交換槽3は、熱交換槽3の液体を液体リザーバタンク4に戻すための複数のアウトレット、アウトレットA(13)およびアウトレットB(14)を備える。図2Aは、液体リザーバタンク4からのある温度の液体をインレットA(11)から導入し、アウトレットA(13)から排出する様子を、図2Bは、液体リザーバタンク4からの別の温度の液体をインレットB(12)から導入し、アウトレットB(14)から排出する様子を、それぞれ模式的に示す。インレットの数は2に限定されず、サンプル液の温度を変化させたい複数の温度に一致する数だけ2温度分以上の複数を用意することができる。例えば、3温度系を達成したい場合にはインレットの数は3つとなる。アウトレットの数もインレットの場合と同様、2に限定されない。なお、図2中の矢印は熱交換槽3に導入または熱交換槽3から排出する液体の流れる方向を大まかに示したものである。   FIG. 2 is a schematic view of the heat exchange tank 3 used in the high-speed liquid reflux type reaction control device. The heat exchange tank 3 includes an inlet A (11) and an inlet B (12) for introducing liquids having different temperatures as a basic configuration. Further, the heat exchange tank 3 includes a plurality of outlets, outlet A (13) and outlet B (14) for returning the liquid in the heat exchange tank 3 to the liquid reservoir tank 4. FIG. 2A shows a state in which liquid at a certain temperature from the liquid reservoir tank 4 is introduced from the inlet A (11) and discharged from the outlet A (13), and FIG. Are schematically shown in the figure from the inlet B (12) and discharged from the outlet B (14). The number of inlets is not limited to two, and a plurality of inlets corresponding to a plurality of temperatures for which the temperature of the sample liquid is desired to be changed can be prepared. For example, when a three-temperature system is desired, the number of inlets is three. The number of outlets is not limited to 2 as in the case of the inlets. Note that the arrows in FIG. 2 roughly indicate the direction in which the liquid introduced into or discharged from the heat exchange tank 3 flows.

熱交換槽3と液体リザーバタンク4との間を循環させる液体の総容積は、循環に用いる液体の流速、液体の熱容量や温度の安定性などを考慮して、例えば、反応槽3の温度変化の高速性と温度安定性を実現するために流速毎秒10mL以上とした場合には、通常数十mL以上の総容量であり、好ましくは、100mL以上、より好ましくは、200mL以上、さらに最も好ましくは、300mL以上である。容積の上限は、装置の可搬性等を考慮して適宜設定できる。   The total volume of the liquid circulated between the heat exchange tank 3 and the liquid reservoir tank 4 is, for example, the temperature change of the reaction tank 3 in consideration of the flow rate of the liquid used for the circulation, the heat capacity of the liquid, and the stability of the temperature When the flow rate is 10 mL or more per second to achieve high speed and temperature stability, the total volume is usually several tens of mL or more, preferably 100 mL or more, more preferably 200 mL or more, and most preferably , 300 mL or more. The upper limit of the volume can be appropriately set in consideration of the portability of the apparatus.

熱交換槽3の容量は、ウェル当たりのサンプル量の約10倍以上が好ましく、約100倍以上であることがより好ましく、約1000倍以上であれば最も好ましい。典型的には、熱交換槽の容量は、1ウェルに対して約0.01mL〜10mLであり、より好ましくは、約0.05mL〜数mL(例えば、9、8、7、6、5、4、3、2、1mL)であり、最も好ましくは、約0.1mL〜2mLである。   The capacity of the heat exchange tank 3 is preferably about 10 times or more the sample amount per well, more preferably about 100 times or more, and most preferably about 1000 times or more. Typically, the capacity of the heat exchange bath is about 0.01 mL to 10 mL per well, more preferably about 0.05 mL to a few mL (eg, 9, 8, 7, 6, 5, 4, 3, 2, 1 mL), and most preferably from about 0.1 mL to 2 mL.

図3は、本発明の装置に使用されうる反応槽の形態と凍結乾燥試薬の溶解方法を示す模式図である。色々な形状の反応槽またはウェルを用いることが可能であり、図3Aは一つの例として、熱交換槽の液体と接する面が、フラットな反応槽A(21)、半球状である反応槽B(22)、三角錐状である反応槽C(23)、球状である反応槽D(24)、球状の凹みの中に円錐状の構築物を持った液滴の安定した位置の保持と接触表面積の拡大を可能とした反応槽C’(231)を、それぞれ示している。熱伝導の効率を考えると、熱交換槽の液体と接する面の面積が大きいほど効率がよいことは当業者ならば容易に理解できる。   FIG. 3 is a schematic diagram showing the form of a reaction vessel that can be used in the apparatus of the present invention and a method for dissolving a lyophilized reagent. Various shapes of reaction tanks or wells can be used, and FIG. 3A shows, as an example, a reaction tank A (21) in which the surface in contact with the liquid of the heat exchange tank is a hemispherical reaction tank B. (22) Triangular pyramid shaped reaction vessel C (23), spherical reaction vessel D (24), holding a stable position of a droplet having a conical structure in a spherical recess and contact surface area The reaction tank C '(231) which enabled the expansion | swelling of each is shown. In view of the efficiency of heat conduction, those skilled in the art can easily understand that the larger the area of the surface in contact with the liquid in the heat exchange tank, the better the efficiency.

反応に必要な試薬は凍結乾燥しておくと便利である。図3Bに示すように、反応槽26の底部に凍結乾燥試薬25を調製しておくことは可能である。また、サンプルを分注する際に用いられる分注チップ27内部にプラグ状の凍結乾燥試薬25を形成しておけば、サンプル液28を上下に移動させることにより試薬をサンプル中に溶解することが可能である。または、ナイロン繊維等が束ねられている繊維玉29表面に凍結乾燥試薬25を形成しておき、反応槽26内部のサンプル28中に挿入して攪拌することにより凍結乾燥試薬を溶解することも可能である。   It is convenient to freeze and dry the reagents necessary for the reaction. As shown in FIG. 3B, it is possible to prepare a freeze-dried reagent 25 at the bottom of the reaction vessel 26. In addition, if a plug-like freeze-dried reagent 25 is formed inside a dispensing tip 27 used when dispensing a sample, the reagent can be dissolved in the sample by moving the sample liquid 28 up and down. Is possible. Alternatively, the freeze-dried reagent 25 can be dissolved by forming the freeze-dried reagent 25 on the surface of the fiber ball 29 in which nylon fibers or the like are bundled and inserting the sample into the sample 28 inside the reaction vessel 26 and stirring. It is.

図4は、本発明の装置に使用されうる円柱型反応槽枠32、およびその熱交換槽37への取り付け方法を示す模式図である。薄膜から構成されている反応槽を直接ハンドリングするのは不便であるので、図4Aに示すように、反応槽31を反応槽枠32に固定すると便利である。反応槽枠32は断熱性材質であるポリスチレン、ポリカーボネート、PEEK,アクリル等で形成することが望ましい。また、反応槽31との結合面積をできるだけ小さく(例:5mm以下)抑えることが、反応槽31の迅速かつ高精度な昇温、降温に望ましい。 FIG. 4 is a schematic view showing a cylindrical reaction vessel frame 32 that can be used in the apparatus of the present invention and a method for attaching it to the heat exchange vessel 37. Since it is inconvenient to directly handle a reaction tank composed of a thin film, it is convenient to fix the reaction tank 31 to a reaction tank frame 32 as shown in FIG. 4A. The reaction vessel frame 32 is preferably formed of a heat insulating material such as polystyrene, polycarbonate, PEEK, acrylic or the like. In addition, it is desirable for rapid and highly accurate temperature increase / decrease of the reaction tank 31 to suppress the coupling area with the reaction tank 31 as small as possible (for example, 5 mm 2 or less).

図4Bは、反応槽31を熱交換槽37に装着する1つの態様として、反応槽枠32の表面にネジ山34を形成しておき、反応槽枠32を熱交換槽37の反応槽受け口33にねじ込む方法を示す。図4Bに示すように、水密性の保持のために、開口部にシール35を装着することが望ましい。図4Cはさらに別の装着方法を示す。図4Cに示すように、テーパー状反応槽枠36を採用し、圧力のみで熱交換槽38に装着することも可能である。   FIG. 4B shows an embodiment in which the reaction tank 31 is attached to the heat exchange tank 37. A thread 34 is formed on the surface of the reaction tank frame 32. The method of screwing is shown. As shown in FIG. 4B, it is desirable to attach a seal 35 to the opening in order to maintain watertightness. FIG. 4C shows yet another mounting method. As shown in FIG. 4C, it is also possible to employ a tapered reaction vessel frame 36 and attach it to the heat exchange vessel 38 only by pressure.

図5は、高速液体還流型の反応制御装置に使用されるバルブの切り替え機構の具体例を示す。反応槽に液体を導入するためのインレットバルブA(41)、インレットバルブB(43)、外部に導くためのアウトレットバルブA(42)とアウトレットバルブB(44)が示されている。インレットバルブA(41)から導かれる液体はアウトレットバルブA(42)から液体リザーバタンク4に戻り、インレットバルブA(43)から導かれる液体はアウトレットバウルB(44)から別の液体リザーバタンク4に戻る。この二つの状態を交互に繰り替えることにより、反応槽中のサンプルを反応することができる。さらに望ましいバルブ切り替え方法としては、上記の二つの状態以外に、インレットバルブB(43)とアウトレットバルブA(42)、もしくはインレットバルブA(41)とアウトレットバルブB(44)が一瞬の間同時に開放することにより、異なる温度の液体が混合することを抑制でき、それぞれの系の液体リザーバタンクの温度制御が容易になる。   FIG. 5 shows a specific example of a valve switching mechanism used in a high-speed liquid reflux type reaction control device. An inlet valve A (41) and an inlet valve B (43) for introducing a liquid into the reaction tank, an outlet valve A (42) and an outlet valve B (44) for introducing the liquid to the outside are shown. The liquid guided from the inlet valve A (41) returns from the outlet valve A (42) to the liquid reservoir tank 4, and the liquid guided from the inlet valve A (43) flows from the outlet bawl B (44) to another liquid reservoir tank 4. Return. By alternately repeating these two states, the sample in the reaction vessel can be reacted. As a more preferable valve switching method, in addition to the above two states, the inlet valve B (43) and the outlet valve A (42) or the inlet valve A (41) and the outlet valve B (44) are simultaneously opened for a moment. By doing so, it is possible to suppress the mixing of liquids having different temperatures, and the temperature control of the liquid reservoir tanks of the respective systems becomes easy.

液体の循環速度は、特に限定されないが、通常約1mL/秒〜100mL/秒であり、より好ましくは、5mL/秒〜50mL/秒であり、最も好ましくは、7mL/秒〜15mL/秒である。リザーバタンク中の液体の温度を低下させることなく熱交換槽3まで循環させるためには、液体がポンプ7によって常にリザーバタンクから10mL/s以上の高速で循環することが望ましい。   The circulation rate of the liquid is not particularly limited, but is usually about 1 mL / second to 100 mL / second, more preferably 5 mL / second to 50 mL / second, and most preferably 7 mL / second to 15 mL / second. . In order to circulate to the heat exchange tank 3 without lowering the temperature of the liquid in the reservoir tank, it is desirable that the liquid is always circulated from the reservoir tank at a high speed of 10 mL / s or more by the pump 7.

図6Aは、上記の機構を用いることによって実現できた温度制御に関するデータから得られたグラフを示す。図6Aに示すように、1.5秒といった短時間で、温度を60℃から92℃に昇温させ、また60℃に戻すことが可能である。図6Bは、リアルタイムPCRによる結果を示すグラフである。PCRを行うときの溶液条件は以下のとおりである。反応バッファー 1.0 μL、2mM dNTP (dATP、dCTP、dGTP、dTTP) 1μL、25 mM 硫酸マグネシウム 1.2 μL、10%牛胎仔血清 0.125μL、SYBR Green I 0.5 μL、プライマー2種類各0.6μL、 滅菌水 3.725μL、KOD plus polymerase 0.25μL、ゲノムDNA1.0 μLの割合で混ぜ合わせた。温度条件としては、まず95℃ 10 sec行い、次に95℃ 1 sec、60℃ 3 secの温度変化を40サイクル行った。液体の循環速度は、約10mL/秒であった。   FIG. 6A shows a graph obtained from data relating to temperature control realized by using the above-described mechanism. As shown in FIG. 6A, the temperature can be raised from 60 ° C. to 92 ° C. and returned to 60 ° C. in a short time such as 1.5 seconds. FIG. 6B is a graph showing the results of real-time PCR. The solution conditions for performing PCR are as follows. Reaction buffer 1.0 μL, 2 mM dNTP (dATP, dCTP, dGTP, dTTP) 1 μL, 25 mM magnesium sulfate 1.2 μL, 10% fetal calf serum 0.125 μL, SYBR Green I 0.5 μL, 2 types of each primer 0.6 μL, sterile water 3.725 μL , KOD plus polymerase 0.25 μL, genomic DNA 1.0 μL. As temperature conditions, first, 95 ° C. for 10 seconds, and then, temperature change at 95 ° C. for 1 second and 60 ° C. for 3 seconds was performed for 40 cycles. The circulation rate of the liquid was about 10 mL / second.

図7は、本発明の装置に使用されうる反応槽59および反応槽枠51の熱交換槽への脱着方法に関するバリエーションを示す。反応槽59は、スライドガラス型反応槽枠51に張られて取り付けられている(図7A)。このスライドガラス型反応槽枠51を熱交換槽に装着するにあたって、ガイドレール53に沿って反応槽枠51を横にスライドさせ、シール54に押し付けて固定することができる(図7B)。または、スライドガラス型反応枠51をスライド受け口55に挿入して、ヒンジ56を活用して、シール57に押し付けることも可能である(図7C)。   FIG. 7 shows a variation relating to a method for detaching the reaction tank 59 and the reaction tank frame 51 from the heat exchange tank that can be used in the apparatus of the present invention. The reaction tank 59 is stretched and attached to the slide glass type reaction tank frame 51 (FIG. 7A). When the slide glass type reaction vessel frame 51 is attached to the heat exchange vessel, the reaction vessel frame 51 can be slid sideways along the guide rail 53 and pressed against the seal 54 to be fixed (FIG. 7B). Alternatively, it is possible to insert the slide glass reaction frame 51 into the slide receiving port 55 and press it against the seal 57 using the hinge 56 (FIG. 7C).

図8は、高速液体還流型の反応制御装置に使用されるバルブの切り替え機構のバリエーションを示す模式図であり、図5に示したものとは異なるスライド型ピストンバルブの駆動機構を示す。反応槽66の温度を変えるバルブ機構として左右にスライドできるピストン65を用いる。ピストン65の左側にはインレットA(61)から熱交換槽67に液体が導入され、アウトレットA(62)から外部に導かれる。ピストン65の右側にはインレットB(63)から熱交換槽67に液体が導入され、アウトレットB(64)から外部に導かれる。ピストン65が反応槽66に対して右にスライドすると、反応槽66はインレットA(61)から導入された液体の温度と平衡に達し、逆に左側にスライドするとインレットB(63)から導入される液体の温度と平衡に達する。また、ピストン65が反応槽66の真下に位置する場合には、液体が漏れることなく反応槽66を外すことができる。ピストン65は断熱性に勝れた素材で製作するか、内部が空洞になっており気体で満たされていたり、または真空状態にあることが望ましい。なお、図8中の矢印は、液体の流れる方向を大まかに示す。   FIG. 8 is a schematic diagram showing a variation of the valve switching mechanism used in the high-speed liquid reflux type reaction control device, and shows a slide-type piston valve drive mechanism different from that shown in FIG. A piston 65 that can slide to the left and right is used as a valve mechanism that changes the temperature of the reaction vessel 66. On the left side of the piston 65, liquid is introduced from the inlet A (61) into the heat exchange tank 67, and is led to the outside from the outlet A (62). On the right side of the piston 65, liquid is introduced from the inlet B (63) into the heat exchange tank 67, and is guided to the outside from the outlet B (64). When the piston 65 slides to the right with respect to the reaction tank 66, the reaction tank 66 reaches equilibrium with the temperature of the liquid introduced from the inlet A (61). Conversely, when the piston 65 slides to the left, the reaction tank 66 is introduced from the inlet B (63). It reaches equilibrium with the temperature of the liquid. Moreover, when the piston 65 is located directly under the reaction tank 66, the reaction tank 66 can be removed without liquid leaking. It is desirable that the piston 65 is made of a material excellent in heat insulation, or is hollow and filled with gas, or is in a vacuum state. Note that the arrows in FIG. 8 roughly indicate the direction of liquid flow.

図9は、高速液体還流型の反応制御装置に使用されるピストンバルブのピストンの駆動機構のいくつかのバリエーションを示す。一つの方法としては、ピストン71がピストンロッド72と一体になっており、外部から直接動かす方法である(図9A)。別の方法としては、ピストン73を鉄、ニッケル等の強磁性材料で作製するか、その他の素材で作製されたピストンの内部に磁石74を組み込む。外部に電磁コイル75を設置し、電流を制御することにより、ピストン73を左右にスライドする(図9B)。さらなる方法としては、インレット側の圧力もしくはアウトレットの流体抵抗を制御することにより、ピストン76の両側での圧力差を利用してピストン76を左右にスライドすることも可能である(図9C)。なお、図9中の白抜き矢印はピストンの動く方向を示し、黒塗り矢印は、流体の流れを示し、矢の向きによって流体の流れる方向を、矢の太さによって流量を大まかに示す。   FIG. 9 shows several variations of the piston drive mechanism of the piston valve used in the high-speed liquid reflux type reaction control device. As one method, the piston 71 is integrated with the piston rod 72 and is directly moved from the outside (FIG. 9A). As another method, the piston 73 is made of a ferromagnetic material such as iron or nickel, or a magnet 74 is incorporated in a piston made of another material. An electromagnetic coil 75 is installed outside and the current is controlled to slide the piston 73 left and right (FIG. 9B). As a further method, by controlling the pressure on the inlet side or the fluid resistance of the outlet, it is possible to slide the piston 76 to the left and right by utilizing the pressure difference between both sides of the piston 76 (FIG. 9C). The white arrow in FIG. 9 indicates the direction in which the piston moves, the black arrow indicates the flow of the fluid, the direction of flow of the fluid is indicated by the direction of the arrow, and the flow rate is roughly indicated by the thickness of the arrow.

図10は、高速液体還流型の反応制御装置に使用されるバルブの切り替え機構の別の形態を示す。回転軸としての棒82が結合されている傾いた楕円形の板からなる回転弁81が、断面が円形の熱交換槽83内部に挿入されている。回転弁81は熱交換槽83を左右に分断しており、回転軸82を回すことにより、熱交換槽の右もしくは左から導入される液体を反応槽84に導くことができる。図10における回転弁81の形状としては、傾斜した平板であるが、その他の螺旋ネジ等の形状も可能であり、回転軸を回転させることにより同様な効果を生み出す形状であればよい。なお、図10中の黒塗り矢印は回転軸82の回転方向を示し、白抜き矢印は、液体の流れる様子を大まかに示す。   FIG. 10 shows another form of the valve switching mechanism used in the high-speed liquid reflux type reaction control device. A rotary valve 81 made of an inclined elliptical plate to which a rod 82 as a rotary shaft is coupled is inserted into a heat exchange tank 83 having a circular cross section. The rotary valve 81 divides the heat exchange tank 83 into left and right, and the liquid introduced from the right or left of the heat exchange tank can be guided to the reaction tank 84 by turning the rotary shaft 82. The shape of the rotary valve 81 in FIG. 10 is an inclined flat plate, but other shapes such as a spiral screw are also possible, and any shape that produces a similar effect by rotating the rotating shaft may be used. In addition, the black arrow in FIG. 10 shows the rotation direction of the rotating shaft 82, and the outline arrow roughly shows a mode that the liquid flows.

図11は、バルブ以外の構造により液体を置換する構造を示す。熱交換槽98はメンブランA(95)とメンブランB(96)によって仕切られている。インレットA(91)から導入された液体はアウトレットA(92)により外部に導き出される。メンブランが存在するが故、インレットB(93)やアウトレットB(94)から導き出されることはない(図11A)。インレットA(91)から導入される液体の圧力が、インレットB(93)から導入される液体の圧力に勝る場合には、メンブランA(95)とメンブランB(96)を左側に押し出すことによって、インレットA(91)から導入される液体の熱が反応槽97に伝わる(図11B)。インレットA(91)とインレットB(93)から導入される液体の圧力の関係が逆の場合には、反応槽97の温度はインレットB(93)から導入される液体の温度と平衡状態に達する(図11C)。メンブランは耐熱ゴム等、耐熱性に優れた薄い膜から作製することが望ましい。なお、図11中の矢印は、液体の流れる方向を大まかに示す。   FIG. 11 shows a structure in which the liquid is replaced by a structure other than the valve. The heat exchange tank 98 is partitioned by a membrane A (95) and a membrane B (96). The liquid introduced from the inlet A (91) is led to the outside by the outlet A (92). Since the membrane exists, it is not derived from the inlet B (93) or the outlet B (94) (FIG. 11A). When the pressure of the liquid introduced from the inlet A (91) exceeds the pressure of the liquid introduced from the inlet B (93), by pushing the membrane A (95) and the membrane B (96) to the left side, The heat of the liquid introduced from the inlet A (91) is transmitted to the reaction tank 97 (FIG. 11B). When the relationship between the pressures of the liquids introduced from the inlet A (91) and the inlet B (93) is reversed, the temperature of the reaction tank 97 reaches an equilibrium state with the temperature of the liquid introduced from the inlet B (93). (FIG. 11C). The membrane is desirably made of a thin film having excellent heat resistance such as heat resistant rubber. Note that the arrows in FIG. 11 roughly indicate the direction of liquid flow.

図12は、高速液体還流型の反応制御装置に使用される温度設定型バルブのさらに別の駆動機構を示す模式図である。ここにおいては、設定できる温度は二つに限定されるものではない。図12には、反応槽の温度を3つ以上設定できる構造を示す。熱交換槽103には、側面に溝102が形成されたロータリーバルブ101が挿入されている。ロータリーバルブ101の両側にはインレットとアウトレットが設けられており、例えばインレットA(104)から導入された液体は流路108を経て溝102に流れこみ、反応槽109に熱を伝えてからアウトレットA(105)から外に導かれる。それに対して、インレットB(106)から導入された液体は反応槽109に接することなく、アウトレットB(107)から外に導かれる。しかし、ロータリーバルブ101を回転することにより、任意のインレットから導入された液体を反応槽と接することが可能である(図12C)。経過時間111に伴ってロータリーバルブ101を回転することにより、図12Cのグラフに示すように温度110を変化させることが可能である。ロータリーバルブ101は断熱性材料から作製されていることが望ましい。   FIG. 12 is a schematic diagram showing still another drive mechanism of the temperature setting type valve used in the high-speed liquid reflux type reaction control device. Here, the temperature which can be set is not limited to two. FIG. 12 shows a structure in which three or more reaction vessel temperatures can be set. A rotary valve 101 having a groove 102 formed on the side surface is inserted into the heat exchange tank 103. An inlet and an outlet are provided on both sides of the rotary valve 101. For example, the liquid introduced from the inlet A (104) flows into the groove 102 through the flow path 108 and transfers heat to the reaction tank 109 before the outlet A. Guided out from (105). On the other hand, the liquid introduced from the inlet B (106) is led out from the outlet B (107) without contacting the reaction tank 109. However, by rotating the rotary valve 101, the liquid introduced from an arbitrary inlet can be brought into contact with the reaction tank (FIG. 12C). By rotating the rotary valve 101 with the elapsed time 111, the temperature 110 can be changed as shown in the graph of FIG. 12C. The rotary valve 101 is preferably made of a heat insulating material.

図13は、高速液体還流型の反応制御装置の3温度型のシステムの制御系部分の記述を省略した温度制御機構について一実施形態の全体構成を示す模式図である。高速PCR反応を起こすための反応制御装置部は、典型的には、高速で循環する液体とPCR反応液滴との熱交換を行うための反応槽(reaction vessel)1、反応槽上のPCR反応液滴への外部からのコンタミネーションと液滴の蒸発を防ぐための反応槽枠2、熱交換のための高速循環液体が導入される熱交換槽(heat exchange chamber)3、3つの温度の液体をそれぞれの温度で保持する3つの液体リザーバタンク(liquid reservoir tank)4、ならびに各リザーバタンクに対して熱源5、攪拌機構6、ポンプ7、切り替えバルブ8、バイパス流路9、および補助温度制御機構10を備える。高速PCRを実現するためにそれぞれのリザーバタンクから液体は、液体の流れの方向18の矢印の方向に循環しており、ジョイント90にて各リザーバタンクから各切り替えバルブ8を経て流路が接合され、熱交換槽3への流路へと誘導される構成となっており、また、熱交換槽3から流出する液体も下流側のジョイント90にて各リザーバタンクへの還流流路に分岐しており、熱交換槽3の上流側と下流側の双方の各分岐流路にある各切り替えバルブ8を、同時に連動させて高温、中温、低温の各リザーバタンク4のいずれかの液体の循環のために切り替えることで、瞬時に熱交換槽3へ導入される高速循環液体を高温、中温、低温のいずれかに切り替えることができる。ここで、図13では装置の構成ならびに配管の配置をわかりやすく示すために模式的に示した事から、各パーツ間の配管の長さが実際の長さと同じように示されていないが、ジョイント90と各切り替えバルブ8の間を繋ぐ管の長さは、残留する高速液体の量がほとんど無いようにジョイント90に隣接するかたちで切り替えバルブ8は配置されていることが好ましい。また、各リザーバタンク4から熱交換槽3に供給される高速循環液体の温度降下を最小限とするため、各リザーバタンク4から熱交換槽3への流路長さが最小長さとなるように、各リザーバタンク4と熱交換槽3の間に組み込まれるパーツはポンプ7、切り替えバルブ8の2つのパーツ(機構)が組み込まれているだけの最少数のパーツ組み込みの構成となっていることが好ましい。他方、熱交換槽3から各リザーバタンク4に還流する流路の長さについては若干長くなっても下流補助温度制御機構10によって温度補正をした後にリザーバタンク4に還流するため問題はない。また、ポンプ7の配置位置は、熱交換槽3に確実に流速を維持して高速循環液体を供給し、また、熱交換槽3に供給しないときは切り替えバルブによって瞬時に、かつ、確実に補助温度制御機構10を経て各リザーバタンクに還流させるために、ポンプ7を各リザーバタンク4と熱交換槽4に供給する上流側の切り替えバルブ8の間に配置し、常に高速還流液体をリザーバタンク4から直接「押し出す」構成となるように配置されていることが好ましい。また、各リザーバタンク4から熱交換槽3へ供給される高速循環液体の温度降下を最小限にするため、これらの流路についての流路内径は2mm以上であることが望ましい。   FIG. 13 is a schematic diagram showing an overall configuration of an embodiment of a temperature control mechanism in which a description of a control system portion of a three-temperature system of a high-speed liquid reflux type reaction control device is omitted. The reaction control unit for causing a high-speed PCR reaction typically has a reaction vessel 1 for exchanging heat between the liquid circulating at high speed and the PCR reaction droplet, and the PCR reaction on the reaction tank. Reaction vessel frame 2 to prevent external contamination and droplet evaporation to droplets, heat exchange chamber 3 to which high-speed circulating liquid for heat exchange is introduced, liquid at three temperatures Liquid reservoir tanks 4 that hold the liquid at respective temperatures, and a heat source 5, a stirring mechanism 6, a pump 7, a switching valve 8, a bypass flow path 9, and an auxiliary temperature control mechanism for each reservoir tank 10 is provided. In order to realize high-speed PCR, the liquid from each reservoir tank circulates in the direction of the arrow of the liquid flow direction 18, and the flow path is joined from each reservoir tank via each switching valve 8 at the joint 90. The liquid flowing out from the heat exchange tank 3 is also branched into the reflux flow path to each reservoir tank by the joint 90 on the downstream side. In order to circulate any one of the high-temperature, medium-temperature, and low-temperature reservoir tanks 4 by simultaneously linking the switching valves 8 in both the branch flow paths on the upstream side and the downstream side of the heat exchange tank 3. By switching to, the high-speed circulating liquid that is instantaneously introduced into the heat exchange tank 3 can be switched to one of high temperature, medium temperature, and low temperature. Here, in FIG. 13, the configuration of the apparatus and the arrangement of the piping are schematically shown for easy understanding, so the length of the piping between the parts is not shown in the same way as the actual length, The length of the pipe connecting between 90 and each switching valve 8 is preferably such that the switching valve 8 is arranged adjacent to the joint 90 so that there is little residual high-speed liquid. Further, in order to minimize the temperature drop of the high-speed circulating liquid supplied from each reservoir tank 4 to the heat exchange tank 3, the flow path length from each reservoir tank 4 to the heat exchange tank 3 is minimized. The parts incorporated between each reservoir tank 4 and the heat exchange tank 3 may be configured to incorporate a minimum number of parts, in which only two parts (mechanisms) of the pump 7 and the switching valve 8 are incorporated. preferable. On the other hand, even if the length of the flow path returning from the heat exchange tank 3 to each reservoir tank 4 is slightly longer, there is no problem because the temperature is corrected by the downstream auxiliary temperature control mechanism 10 and then returned to the reservoir tank 4. Further, the position of the pump 7 is to maintain the flow rate reliably in the heat exchange tank 3 to supply the high-speed circulating liquid, and when not supplied to the heat exchange tank 3, it is instantly and surely supported by the switching valve. In order to recirculate to each reservoir tank via the temperature control mechanism 10, a pump 7 is arranged between each reservoir tank 4 and the upstream side switching valve 8 that supplies the heat exchange tank 4, and the high-speed recirculation liquid is always supplied to the reservoir tank 4. It is preferably arranged so that it is configured to “push out” directly from. Further, in order to minimize the temperature drop of the high-speed circulating liquid supplied from each reservoir tank 4 to the heat exchange tank 3, the inner diameters of these channels are desirably 2 mm or more.

図1の例でも説明したが、各リザーバおよび各補助温度制御機構には、液体の温度を計測する液温度センサー16が配置されており、このセンサー16の各情報に基づいて、各リザーバタンク4の熱源5による温度制御、および各補助温度制御機構10を通過する液体の温度をリザーバタンク4の温度と同じ温度に微調整することができる。また、この補助温度制御機構10を導入する事で、リザーバタンク4の温度緩衝機能は最小とすることができるため、リザーバタンク4の容量、すなわち循環する液体量を最小に保つ事が可能となる。また、本実施例では、図1の実施例の二温度PCR反応に対して、変性、アニーリング、伸長の3つの状態それぞれに対応する3温度PCR反応を実現できる構成となっている。ここで、高温、中温、低温の3温度の制御についてであるが、高温については(図13では中央のリザーバタンク4)変性のために95℃以上の高温を保つためリザーバの温度も加温系のみで十分であるが、中温、低温リザーバについては、用いる酵素の種類に応じて、その反応温度すなわちリザーバ温度の微調整を行う必要がある場合がある。ここで、各リザーバタンク4内の液体の温度を上昇させることは熱源からの熱量の供給で容易に実現できるが、温度を下げる場合には、例えば、リザーバタンク4に付加された補助液体放熱機構17によって液温度を下げることができる。この補助液体放熱機構17は、リザーバタンク4内の液体の温度を下げたいときにのみ動作させ、機構内に組み込まれたポンプ系によって高速でリザーバ内の液体を吸入し、空冷式あるいはペルチエ素子等の冷却機構が組み込まれた流路を通過するプロセスで液体の熱を放熱し、最終的にリザーバタンク4内に設置された液温度センサー16によって設定した液温度になることが確認されるまで液体の冷却を行うことができる。   As described in the example of FIG. 1, each reservoir and each auxiliary temperature control mechanism is provided with a liquid temperature sensor 16 for measuring the temperature of the liquid, and each reservoir tank 4 based on each information of the sensor 16. The temperature control by the heat source 5 and the temperature of the liquid passing through each auxiliary temperature control mechanism 10 can be finely adjusted to the same temperature as the temperature of the reservoir tank 4. In addition, since the temperature buffering function of the reservoir tank 4 can be minimized by introducing the auxiliary temperature control mechanism 10, the capacity of the reservoir tank 4, that is, the amount of circulated liquid can be kept to a minimum. . In addition, in this example, the three-temperature PCR reaction corresponding to each of the three states of denaturation, annealing, and extension is realized with respect to the two-temperature PCR reaction of the example of FIG. Here, regarding the control of the three temperatures of high temperature, medium temperature, and low temperature, the temperature of the reservoir is also a heating system in order to maintain a high temperature of 95 ° C. or higher for the high temperature (the central reservoir tank 4 in FIG. 13). However, for intermediate and low temperature reservoirs, it may be necessary to fine tune the reaction temperature, ie, reservoir temperature, depending on the type of enzyme used. Here, raising the temperature of the liquid in each reservoir tank 4 can be easily realized by supplying heat from a heat source. However, when the temperature is lowered, for example, an auxiliary liquid heat radiation mechanism added to the reservoir tank 4 is used. The liquid temperature can be lowered by 17. The auxiliary liquid radiating mechanism 17 is operated only when it is desired to lower the temperature of the liquid in the reservoir tank 4, and the liquid in the reservoir is sucked at a high speed by a pump system incorporated in the mechanism. The heat of the liquid is radiated in the process of passing through the flow path incorporating the cooling mechanism, and the liquid is finally confirmed until the liquid temperature set by the liquid temperature sensor 16 installed in the reservoir tank 4 is reached. Can be cooled.

そのため、各リザーバタンク4の液体は、図1から図6の説明でも記述したように、熱源5からリザーバタンク4に熱を供給して温度センサー16のフィードバック制御によって各リザーバの温度を高温(熱変性温度)、中温(伸長反応温度)、低温(アニーリング反応温度)に保つ。また、熱源の位置は、室温より高温での温度制御を行う事から、熱対流を効果的に行うために、リザーバタンク4の底面に配置する事が望ましく、また、リザーバタンク4内の液体の温度を熱対流のみならず、より高速に一様にするために攪拌機構6などの液体の温度分布を一様にする機構が動作することで一様になるように構成されている。そして、各リザーバタンク4から常時、例えば、流速10mL/秒でポンプ6によって液体が排出されており、そのポンプの後段に配置された切り替えバルブ8によって、液体を熱交換槽3に誘導しないときは、バイパス流路9を通って補助温度制御機構10に還流されて、液体の温度をリザーバタンク4の設定温度に微調整した後に、リザーバタンク4に還流される。すなわち、リザーバタンク4→ポンプ7→切り替えバルブ8→補助温度制御機構10→リザーバタンク4という循環を行って準備態勢を整えておく。他方、反応槽1の温度を、この液体の温度に変化させたいときには、ポンプ7後段の切り替えバルブ8を熱交換槽3方向に切り替え、かつ、熱交換槽3から排出される液体の流れ方向を制御する切り替えバルブ8も切り替えて、リザーバタンク4→ポンプ7→切り替えバルブ8→熱交換槽3→切り替えバルブ8→補助温度制御機構10→リザーバタンク4という循環として、反応槽1の温度を、所定のリザーバタンク4の液体の温度と同じ温度に変化させる。   Therefore, as described in the description of FIGS. 1 to 6, the liquid in each reservoir tank 4 supplies heat from the heat source 5 to the reservoir tank 4, and the temperature of each reservoir is increased by the feedback control of the temperature sensor 16. Denaturation temperature), medium temperature (extension reaction temperature), and low temperature (annealing reaction temperature). In addition, since the temperature of the heat source is controlled at a temperature higher than room temperature, it is desirable to arrange the heat source on the bottom surface of the reservoir tank 4 for effective heat convection. In order to make the temperature uniform not only by heat convection, but also at a higher speed, a mechanism for making the temperature distribution of the liquid uniform, such as the stirring mechanism 6, operates to make it uniform. When the liquid is discharged from each reservoir tank 4 at all times by, for example, the pump 6 at a flow rate of 10 mL / second, and when the liquid is not guided to the heat exchange tank 3 by the switching valve 8 arranged at the subsequent stage of the pump. Then, the liquid is returned to the auxiliary temperature control mechanism 10 through the bypass channel 9 and finely adjusted to the set temperature of the reservoir tank 4 and then returned to the reservoir tank 4. That is, the preparation system is prepared by circulating the reservoir tank 4 → the pump 7 → the switching valve 8 → the auxiliary temperature control mechanism 10 → the reservoir tank 4. On the other hand, when it is desired to change the temperature of the reaction tank 1 to the temperature of this liquid, the switching valve 8 at the rear stage of the pump 7 is switched to the direction of the heat exchange tank 3 and the flow direction of the liquid discharged from the heat exchange tank 3 is changed. The switching valve 8 to be controlled is also switched, and the temperature of the reaction tank 1 is set to a predetermined value as a circulation of the reservoir tank 4 → the pump 7 → the switching valve 8 → the heat exchange tank 3 → the switching valve 8 → the auxiliary temperature control mechanism 10 → the reservoir tank 4. The temperature of the liquid in the reservoir tank 4 is changed to the same temperature.

また、3つのリザーバタンク4において、この切り替えプロセスでの液体の還流に多少の量的なずれが発生するため、3つのリザーバタンクを独立して運用する場合には、反応プロセスを繰り返すうちに液面の高さに差が発生し、タンクからの液体の溢れ出しや、3つのタンクからの送液速度の違いが発生する可能性がある。それに対処するために、補助的に、液面高さを揃える機構として連結チューブ15が配置されていてもよい。この連結チューブ15は、液面高さを揃えることが目的であり、異なる温度の液体を積極的に移動する事を目的としていないため、十分に細いチューブであることが望ましい。また、その配置する位置は、各リザーバ4の底面付近が望ましい。   In addition, in the three reservoir tanks 4, a slight amount of deviation occurs in the reflux of the liquid in this switching process. Therefore, when the three reservoir tanks are operated independently, the liquid process is repeated as the reaction process is repeated. There may be a difference in the height of the surface, overflowing of the liquid from the tank and a difference in the liquid feeding speed from the three tanks may occur. In order to cope with it, the connecting tube 15 may be disposed as a mechanism for aligning the liquid level. The connection tube 15 is intended to make the liquid surface height uniform, and is not intended to actively move liquids having different temperatures, so it is desirable that the connection tube 15 be a sufficiently thin tube. Further, the position of the arrangement is preferably near the bottom surface of each reservoir 4.

3温度のリザーバタンク4を用いてPCR反応を行う場合について、図6Bの二温度の場合のPCR反応と同様に、典型的な例を用いて本装置システムの動作を説明する。ここでは、三温度PCR反応を以下のようなステップでの反応を行う。最初に初期反応として、反応を行う二本鎖DNAを熱変性させるために94℃以上の温度となるように95℃あるいは96℃に設定された高温リザーバタンク4から高温の液体を10秒以上還流し、反応槽1の温度を10秒以上94℃以上となるようにする。ここで、熱変性を行う場合の温度は、反応槽1全体の温度分布に差が発生する場合であっても最も温度の低い場所の温度が94℃以上となるように、上記高温リザーバタンク4の温度を設定するようにする。これによって一本鎖DNAが作られるとともに酵素類によってはこれによってPCR反応に必要な酵素類が活性化されることとなる。次に、プライマーとDNAを特異的に結合させるアニーリングの工程を反応槽の温度がおよそ60℃となるように液温度を60℃に設定した低温度のリザーバタンク4からの液体の還流によって反応槽1の温度を60℃にする循環を1秒行い、最後に、耐熱性DNAポリメラーゼによる相補DNA鎖の伸長反応をおよそ72℃に反応槽1がなるように、中温度のリザーバタンク4の温度が72℃となるように設定された条件で中温度のリザーバタンク4の液体の循環を3秒行い、伸長が終了したところで、再度、熱変性の工程を高温度リザーバタンク4からの95℃液体の循環1秒で94℃以上の温度に反応槽1温度を進め、次に、同様に、低温度60℃を1秒、中温度72℃を3秒という反応を1サイクルとして、およそ40サイクルほど反応を繰り返すことで、ターゲットとしたDNA配列領域の増幅を行うことができる。ここで、実際にリザーバタンク4の温度から温度の下降が発生しないように熱交換槽3に液を送るためには十分な高速で液体を還流する必要がある。本実施例では、液体の循環速度は、約10mL/秒で温度降下を防ぐかたちで温度変化を行わせる事が可能であった。また、上記実施例では、アニーリング温度は設計するプライマーによって最適なプライマーとの結合温度が異なるため、後で述べる融解曲線解析を用いて最適なアニーリング温度を算出して、その温度に低温度リザーバタンク4の温度を設定する事が望ましい。また、上記実施例では、伸長反応の時間を3秒と設定したが、これに限定されず、DNAポリメラーゼ酵素の伸長速度と標的配列サイズの関係から算出することで設定時間を適宜決定することができる。例えば、代表的なTaqポリメラーゼによるDNA伸長速度は、70℃において約60ヌクレオチド/秒であることから、この酵素の場合であれば、3秒の伸長反応でおよそ150〜180塩基長のターゲット領域を増幅することができる。そのためこの装置システムでの高速PCR反応を効果的に実現するためには、ターゲット領域を数百塩基長に絞り込んでプライマー設計を行う事と、目的に応じて最適なDNAポリメラーゼ酵素を選ぶこととなるが、なるべく高速な反応を行うポリメラーゼを用いる事が望ましい。   In the case of performing the PCR reaction using the three-temperature reservoir tank 4, the operation of the apparatus system will be described using a typical example, similarly to the PCR reaction in the case of two temperatures in FIG. 6B. Here, the three-temperature PCR reaction is performed in the following steps. First, as an initial reaction, a high-temperature liquid is refluxed for 10 seconds or more from a high-temperature reservoir tank 4 set at 95 ° C. or 96 ° C. so that the temperature becomes 94 ° C. or higher in order to thermally denature the double-stranded DNA to be reacted. Then, the temperature of the reaction vessel 1 is set to 94 ° C. or more for 10 seconds or more. Here, the temperature when the heat denaturation is performed is such that the temperature at the lowest temperature is 94 ° C. or higher even when there is a difference in the temperature distribution of the entire reaction tank 1. To set the temperature. As a result, a single-stranded DNA is produced and, depending on the enzymes, the enzymes necessary for the PCR reaction are activated. Next, an annealing process for specifically binding the primer and DNA is performed by refluxing the liquid from the low-temperature reservoir tank 4 in which the liquid temperature is set to 60 ° C. so that the temperature of the reaction tank is about 60 ° C. Circulating the temperature of 1 to 60 ° C. for 1 second, and finally, the temperature of the medium temperature reservoir tank 4 is set so that the reaction vessel 1 becomes approximately 72 ° C. in the extension reaction of the complementary DNA strand by the heat-resistant DNA polymerase. The medium temperature reservoir tank 4 was circulated for 3 seconds under the conditions set to be 72 ° C., and when the expansion was completed, the heat denaturation step was performed again with the 95 ° C. liquid from the high temperature reservoir tank 4. Reactor 1 temperature is advanced to a temperature of 94 ° C. or higher in 1 second of circulation, and then, similarly, about 40 cycles, with a reaction of low temperature 60 ° C. for 1 second and medium temperature 72 ° C. for 3 seconds as one cycle. By repeating the response, it is possible to perform the amplification of DNA sequence region targeting. Here, in order to send the liquid to the heat exchange tank 3 so that the temperature does not actually drop from the temperature of the reservoir tank 4, it is necessary to recirculate the liquid at a sufficiently high speed. In this example, the liquid circulation rate was about 10 mL / second, and it was possible to change the temperature in a manner that prevented a temperature drop. Further, in the above embodiment, since the annealing temperature varies depending on the primer to be designed and the optimum primer binding temperature, the optimum annealing temperature is calculated using the melting curve analysis described later, and the low temperature reservoir tank is calculated. It is desirable to set a temperature of 4. Further, in the above example, the extension reaction time is set to 3 seconds, but is not limited to this, and the set time can be appropriately determined by calculating from the relationship between the extension rate of the DNA polymerase enzyme and the target sequence size. it can. For example, a typical Taq polymerase has a DNA extension rate of about 60 nucleotides / second at 70 ° C. Therefore, in the case of this enzyme, a target region having a length of about 150 to 180 bases can be obtained by an extension reaction of 3 seconds. Can be amplified. Therefore, in order to effectively realize the high-speed PCR reaction in this apparatus system, it is necessary to narrow down the target region to several hundred bases in length and to select the optimal DNA polymerase enzyme according to the purpose. However, it is desirable to use a polymerase that can react as fast as possible.

また、上記3温度でのサイクルを行う場合に、エンドポイント型の計測と、実時間(リアルタイム)での増幅計測という少なくとも2つの計測法を組み合わせることができる。図1でも示したが、本発明の高速遺伝子増幅装置には、光学的にターゲット遺伝子産物の増幅をモニターする光学検出系を組み込むことが可能である。一般にインターカレーター型と呼ばれる二本鎖DNAの水素結合領域に取り込まれる事で蛍光強度が大きく変化する蛍光色素を用いた計測では、ターゲットDNA産物が二本鎖となっていることが産物の量を定量的に計測する上では重要である。そのため、エンドポイント型では、反応が終了した後に計測する事から、反応終了後に二本鎖DNAの状態での計測が可能な温度範囲で安定化させたところで計測するか、あるいは最後の増幅サイクルが終了した直後に、蛍光強度を測定し、増幅反応開始前の蛍光強度と比較解析することで二本鎖DNAによる蛍光強度の増幅量を見積もる事が望ましい。ここで重要な注意点として、蛍光色素は溶液中での蛍光強度が溶液温度に依存して変化する熱蛍光消光現象があることから、計測するときの温度は、かならず同じ温度で行う事が重要である。   Further, when performing the cycle at the above three temperatures, it is possible to combine at least two measurement methods of endpoint type measurement and real-time (real-time) amplification measurement. As shown in FIG. 1, the high-speed gene amplification apparatus of the present invention can incorporate an optical detection system for optically monitoring the amplification of the target gene product. In measurement using a fluorescent dye, the fluorescence intensity of which changes greatly when incorporated into the hydrogen-bonded region of double-stranded DNA, generally called intercalator type, the amount of product is determined by the fact that the target DNA product is double-stranded. This is important for quantitative measurement. Therefore, in the endpoint type, since the measurement is performed after the reaction is completed, the measurement is performed after the reaction is completed in a temperature range where measurement in the double-stranded DNA state is possible, or the last amplification cycle is performed. Immediately after the completion, it is desirable to estimate the amount of amplification of the fluorescence intensity by the double-stranded DNA by measuring the fluorescence intensity and performing a comparative analysis with the fluorescence intensity before the start of the amplification reaction. It is important to note that fluorescent dyes have a thermofluorescence quenching phenomenon in which the fluorescence intensity in the solution changes depending on the solution temperature, so it is important that the measurement temperature be the same. It is.

他方、実時間計測では、増幅サイクルごとの増幅量を見積もる事から、各サイクルでの計測が必要である。各サイクルでの計測するタイミングは上記伸長反応が終盤となり、ちょうど熱変性を開始する前に計測することが望ましい。ここでも同様に熱蛍光消光の影響を排除するために、各サイクルでの計測時の溶液温度は同じ温度とすることが望ましい。また、一般にタックマンプローブ法と呼ばれる、5’-3’エキソヌクレアーゼ機能を持ったDNAポリメラーゼと蛍光エネルギー移動に対応するためにドナー蛍光色素とアクセプター蛍光色素を組み込んだプローブDNA断片とを用いた計測の場合にも、5’-3’エキソヌクレアーゼ反応はDNAポリメラーゼの伸長反応時に進むことから、エンドポイント型では、計測開始前のドナー蛍光色素とアクセプター蛍光色素、それぞれの蛍光波長での蛍光強度を測定した後、遺伝子増幅反応を行い、終了した後に、ドナー蛍光色素とアクセプター蛍光色素、それぞれの蛍光波長での蛍光強度を測定して、プローブDNAが実際にどれだけ酵素によって分解されたかを定量的に検出することで、ターゲット塩基配列の有無を解析することができる。ここでも同様に熱蛍光消光の影響を排除するために計測時の溶液温度は同じ温度とすることが望ましい。他方、実時間計測では、プローブDNA断片の分解反応は、ポリメラーゼの伸長反応時に進むことから、各増幅サイクルの伸長反応の終了時、あるいは熱変性時、アニーリング時でのドナー蛍光色素の波長とアクセプター警告色素の波長での蛍光強度計測を行えば良い。ただし、ここで注意すべき点として、ここでも同様に熱蛍光消光の影響を排除するために、各サイクルでの計測時の溶液温度は同じ温度とすることが望ましい。   On the other hand, in real-time measurement, the amount of amplification for each amplification cycle is estimated, so measurement in each cycle is necessary. The measurement timing in each cycle is desirably measured just before the thermal denaturation starts, when the extension reaction ends. Again, in order to eliminate the influence of thermofluorescence quenching, it is desirable that the solution temperature during measurement in each cycle be the same temperature. In addition, measurement using a DNA polymerase having a 5'-3 'exonuclease function and a probe DNA fragment incorporating a donor fluorescent dye and an acceptor fluorescent dye to cope with fluorescence energy transfer, generally called the Taqman probe method. In some cases, the 5'-3 'exonuclease reaction proceeds during the extension reaction of the DNA polymerase, so the endpoint type measures the fluorescence intensity at the respective fluorescence wavelengths of the donor fluorescent dye and acceptor fluorescent dye before the start of measurement. After the gene amplification reaction is completed, the fluorescence intensity at the respective fluorescence wavelengths of the donor fluorescent dye and the acceptor fluorescent dye is measured to quantitatively determine how much the probe DNA was actually degraded by the enzyme. By detecting, the presence or absence of the target base sequence can be analyzed. Here again, it is desirable that the solution temperature during measurement be the same temperature in order to eliminate the influence of thermofluorescence quenching. On the other hand, in the real-time measurement, the degradation reaction of the probe DNA fragment proceeds during the extension reaction of the polymerase. Therefore, the wavelength of the donor fluorescent dye and the acceptor at the end of the extension reaction of each amplification cycle, heat denaturation, or annealing. The fluorescence intensity may be measured at the wavelength of the warning dye. However, as a point to be noted here, in order to eliminate the influence of thermofluorescence quenching, it is desirable that the solution temperature at the time of measurement in each cycle be the same temperature.

また、本発明の高速PCR反応に使う反応槽1は、使い捨てのチップとすることが可能であるため、交換を行う場合には、熱交換槽3の中を満たしている液体を排出して、液体が無い状態にしてから反応槽枠2を外し、そして反応槽1を外す手順をとる必要がある。そこで、図13に示した実施例においては、空気の流入管2001が弁(切り替えバルブ)8を挟んで熱交換槽3と接続するように配置されており、また、熱交換槽3の液体の排出管2002が同様に弁(切り替えバルブ)8、液体排出ポンプ6を経て、リザーバタンク4のひとつの補助温度制御機構10への循環経路に接続されるように配置されている。実際に、三温度のリザーバタンク4の液体を用いた遺伝子増幅反応等を行うときには管2001、2002に付けられている2つの弁8は閉じられており、3つのリザーバタンク4からの液体の還流に影響を与える事は無い。遺伝子増幅反応が終わった段階で、3つのリザーバタンク4と結合している6つの切り替えバルブ8を切り替えて本熱交換槽3との液体の交換が行われないように切り離し、その後、管2001,2002の各々に接続されたバルブ8を接続し、ポンプ7を用いて熱交換槽3内部の液体を、例えば、低温用のリザーバタンク4の補助温度制御機構10に送液し、熱交換槽3内部は空気で満たすことができる。そうした後に、反応槽1を交換し、新たに別の反応槽1をセットしたところで、管2001、2002に接続された切り替えバルブ8を閉鎖して、リザーバタンク4からの還流系から液体を送液開始すると、熱交換槽3内は液体で満たされて、通常の遺伝子増幅反応を再開することができる。   Moreover, since the reaction tank 1 used for the high-speed PCR reaction of the present invention can be a disposable chip, when exchanging, discharge the liquid filling the heat exchange tank 3, It is necessary to take the procedure of removing the reaction vessel frame 2 after removing the liquid and then removing the reaction vessel 1. Therefore, in the embodiment shown in FIG. 13, the air inflow pipe 2001 is arranged so as to be connected to the heat exchange tank 3 with the valve (switching valve) 8 interposed therebetween, and the liquid in the heat exchange tank 3 is arranged. Similarly, the discharge pipe 2002 is arranged so as to be connected to the circulation path to one auxiliary temperature control mechanism 10 of the reservoir tank 4 through the valve (switching valve) 8 and the liquid discharge pump 6. Actually, when performing a gene amplification reaction or the like using the liquid in the reservoir tank 4 at three temperatures, the two valves 8 attached to the tubes 2001 and 2002 are closed, and the liquid reflux from the three reservoir tanks 4 is closed. Will not be affected. At the stage where the gene amplification reaction is finished, the six switching valves 8 coupled to the three reservoir tanks 4 are switched so as not to exchange liquids with the heat exchange tank 3, and then the tubes 2001, The valve 8 connected to each of 2002 is connected, and the liquid in the heat exchange tank 3 is sent to the auxiliary temperature control mechanism 10 of the low temperature reservoir tank 4 by using the pump 7, for example, and the heat exchange tank 3. The interior can be filled with air. After that, when the reaction tank 1 is replaced and another reaction tank 1 is newly set, the switching valve 8 connected to the pipes 2001 and 2002 is closed, and the liquid is sent from the reflux system from the reservoir tank 4. When started, the heat exchange tank 3 is filled with a liquid, and a normal gene amplification reaction can be resumed.

さらに、本発明の装置では液体の温度制御を行う機構を利用することで融解曲線測定を行うことも可能である。融解曲線解析を行う場合には、例えば、連続して65〜95℃までramp rate 0.11℃/secでの温度変化を反応槽1の反応液に与えて、その温度を反応槽1内に設置した液温度センサーにて反応槽1の温度をモニターしながら、その時の反応槽1のPCR反応液のインターカレーター蛍光色素の強度の変化などを図1に示したような光学計測モジュールを用いて計測し、温度と蛍光強度の相関の融解曲線分析の計測をすることが可能である。このとき、例えば、図13の3つのリザーバタンク4のうちの補助液体放熱機構17が組み込まれたリザーバタンクを用いて、最初に、所定の低温側のスタート温度となるところまでリザーバタンク内の液温度を下げる。次に、リザーバタンク内の熱源に少しずつ熱量を加え、ちょうど0.11℃/sec程度の温度上昇となるような熱量供給を温度センサー16で計測を行いながら進め、それと同時に、熱交換槽3にそのリザーバタンクの液体を供給する。熱交換槽3から戻った液体は、補助温度制御機構10にて、リザーバタンクの温度と同じ温度となるように調整されてリザーバタンクに還流するようにする。そして、最後に、最終温度として例えば、95℃に達したら、リザーバタンク内の液温度を下げるため、再び補助液体放熱機構17によって、当初設定していた温度まで液体の温度を下げればよい。   Furthermore, in the apparatus of the present invention, it is possible to measure the melting curve by utilizing a mechanism for controlling the temperature of the liquid. In the case of performing a melting curve analysis, for example, a temperature change at a ramp rate of 0.11 ° C./sec is continuously applied from 65 to 95 ° C. to the reaction solution in the reaction vessel 1 and the temperature is set in the reaction vessel 1. While monitoring the temperature of the reaction tank 1 with the liquid temperature sensor, the change in the intensity of the intercalator fluorescent dye in the PCR reaction liquid in the reaction tank 1 at that time is measured using an optical measurement module as shown in FIG. It is possible to measure the melting curve analysis of the correlation between temperature and fluorescence intensity. At this time, for example, using the reservoir tank in which the auxiliary liquid heat radiation mechanism 17 is incorporated among the three reservoir tanks 4 in FIG. 13, first, the liquid in the reservoir tank is reached until the start temperature reaches a predetermined low temperature side. Reduce the temperature. Next, heat is gradually added to the heat source in the reservoir tank, and heat supply is performed while measuring with the temperature sensor 16 so that the temperature rises to about 0.11 ° C./sec. Supply reservoir tank fluid. The liquid returned from the heat exchange tank 3 is adjusted by the auxiliary temperature control mechanism 10 so as to have the same temperature as that of the reservoir tank, and is returned to the reservoir tank. Finally, when the final temperature reaches, for example, 95 ° C., the liquid temperature in the reservoir tank may be lowered, and the liquid temperature may be lowered to the initially set temperature again by the auxiliary liquid heat dissipation mechanism 17.

図1でも説明したが、反応槽1は、反応槽枠2で密閉状態に保たれている。好ましい実施形態では、反応槽枠2は、温度センサー16によって計測された温度データに基づいて、反応槽枠2に組み込まれたヒーターによって常時75℃以上に保たれるようになっている。このヒーターによって加熱される事で、枠内の水蒸気が枠の内表面で結露することを防ぎ、それによって枠内の水蒸気圧は一定に保たれて、その結果、反応槽の液滴はミネラルオイル等の添加無しのむき出しの状態での液滴状態で配置されていても蒸発をしないで50〜97℃の範囲での温度変化を行うことができる。   As described with reference to FIG. 1, the reaction vessel 1 is kept in a sealed state by the reaction vessel frame 2. In a preferred embodiment, the reaction vessel frame 2 is always kept at 75 ° C. or higher by a heater incorporated in the reaction vessel frame 2 based on temperature data measured by the temperature sensor 16. Heating by this heater prevents the water vapor in the frame from condensing on the inner surface of the frame, thereby keeping the water vapor pressure in the frame constant. Even if the liquid droplets are arranged in a state of being exposed without adding such as, it is possible to change the temperature in the range of 50 to 97 ° C. without evaporation.

また、同様に、融解曲線解析のための温度制御の手法を、PCR反応とは異なる温度にて一定の温度を保つために用いる事もできる。それによって逆転写反応を反応槽のPCR反応液について行う事も可能である。例えば、50℃の液体の温度で液体を10分以上還流させる事でRNAからDNAへの転写を行ってから、このリザーバタンクの温度を通常のPCR反応を行う温度に調整し、連続して逆転写反応からPCR反応に進める事もできる。   Similarly, a temperature control method for melting curve analysis can be used to maintain a constant temperature at a temperature different from the PCR reaction. Accordingly, reverse transcription reaction can be performed on the PCR reaction solution in the reaction vessel. For example, after transferring the RNA to DNA by refluxing the liquid at a liquid temperature of 50 ° C. for 10 minutes or more, the temperature of this reservoir tank is adjusted to the temperature at which the normal PCR reaction is performed, and continuously reversed. It is possible to proceed from the photoreaction to the PCR reaction.

具体的な逆転写反応に引き続き行う遺伝子増幅反応の工程としては、ワンステップ操作(逆転写と増幅が1つのチューブ内で連続的に行われる) またはツーステップ操作(逆転写と増幅が別々のチューブ内で行われる)の 2 つがあるが、ここではワンステップ操作を例に、操作の手順の一例を示す。短いターゲットに対するワンステップ RT-PCR 用逆転写酵素として、例えば、Tth DNA Polymerase(Roche)を用いた場合、この反応は55〜70℃が最適反応温度となっているため、(1)低温リザーバタンクの温度を通常のアニーリング温度より低い50〜60℃に設定し、この低温リザーバタンク4の液体を熱交換槽3に30分程度還流させて逆転写反応を行い、次に(2)高温リザーバタンク4より熱交換槽3に94℃以上の液体を2分間ほど還流させて初期熱変性を行い、その後は、(3)増幅サイクルとして、高温リザーバタンク4からの94℃以上の液体による1秒以上の熱変性プロセス、引き続きアニーリング用に温度調整を行った低温リザーバタンク4からのプライマー特性に対応した45〜66℃の液体によるアニーリングプロセス、そして、中温リザーバタンク4からの酵素特性に合わせた68〜70℃の液体による伸長反応を3秒というサイクルを行う事でターゲットRNAの増幅反応を行うことができる。この実施例では、3つの異なる温度のリザーバタンク4のひとつの温度を逆転写反応に最適な温度に調整して逆転写反応を行った後に、再度、PCR反応に最適な温度に設定をし直して三温度遺伝子増幅反応を行ったが、逆転写反応に最適な温度となる第4のリザーバタンク4を同様に付加して、上記プロセスを行っても良い。   The gene amplification reaction process that follows the specific reverse transcription reaction includes one-step operation (reverse transcription and amplification are performed continuously in one tube) or two-step operation (reverse transcription and amplification are performed in separate tubes). Here, an example of the operation procedure is shown by taking a one-step operation as an example. For example, when Tth DNA Polymerase (Roche) is used as a one-step RT-PCR reverse transcriptase for short targets, the optimal reaction temperature for this reaction is 55-70 ° C. (1) Low temperature reservoir tank Is set to 50-60 ° C., which is lower than the normal annealing temperature, and the liquid in the low temperature reservoir tank 4 is refluxed to the heat exchange tank 3 for about 30 minutes to perform the reverse transcription reaction, and then (2) the high temperature reservoir tank From step 4, the liquid having a temperature of 94 ° C. or higher is refluxed to the heat exchange tank 3 for about 2 minutes to perform initial heat denaturation. A thermal denaturation process, followed by an annealing process with a liquid at 45-66 ° C. corresponding to the primer properties from the low temperature reservoir tank 4 which was temperature adjusted for annealing, , It is possible to carry out an amplification reaction of the target RNA by performing cycle of extension reaction for 3 seconds by 68 to 70 ° C. a liquid that matches the enzymatic properties of the medium-temperature reservoir tank 4. In this embodiment, after adjusting the temperature of one of the three different reservoir tanks 4 to the optimum temperature for the reverse transcription reaction and performing the reverse transcription reaction, the temperature is again set to the optimum temperature for the PCR reaction. Although the three-temperature gene amplification reaction is performed in this manner, the above-described process may be performed by adding the fourth reservoir tank 4 having the optimum temperature for the reverse transcription reaction in the same manner.

図14は、上記融解曲線解析のための計測機能を反応槽1に持たせるための別の手法の実施例のひとつを説明したものである。この実施例ではペルチエ温度制御機構19が熱交換槽3の底面に配置されており、ここでペルチエ温度制御機構19には、PCR反応のために循環させる液体の流路管20が貫通しているため、上記図13で述べた高速PCR反応のための液体の循環を同様に行うことができるが、さらに融解曲線解析の計測を行うときには液体の流路管20の液の流れ18を停止させ、ペルチエ温度制御機構19と熱交換槽3内の温度センサー16によって熱交換槽3に満たされた静止液体の温度を制御することで融解曲線解析を行うものである。また、この機構は、同様に逆転写反応でも用いることができる。その場合は、逆転写反応に最適な温度と時間をペルチエ温度制御機構19によって提供し、逆転写反応が終わったところで図1に示されたような二温度遺伝子増幅装置の構成、あるいは図13に示されたような三温度遺伝子増幅装置の構成を用いて高速遺伝子増幅を引き続き連続して行うことができる。   FIG. 14 illustrates one example of another method for providing the reaction vessel 1 with a measurement function for the melting curve analysis. In this embodiment, the Peltier temperature control mechanism 19 is disposed on the bottom surface of the heat exchange tank 3, and the Peltier temperature control mechanism 19 is pierced with a liquid flow pipe 20 that is circulated for the PCR reaction. Therefore, the liquid circulation for the high-speed PCR reaction described in FIG. 13 can be performed in the same manner. However, when the measurement of the melting curve analysis is further performed, the liquid flow 18 in the liquid channel tube 20 is stopped, The melting curve analysis is performed by controlling the temperature of the stationary liquid filled in the heat exchange tank 3 by the Peltier temperature control mechanism 19 and the temperature sensor 16 in the heat exchange tank 3. This mechanism can also be used in reverse transcription reactions. In that case, the optimum temperature and time for the reverse transcription reaction are provided by the Peltier temperature control mechanism 19, and when the reverse transcription reaction is completed, the configuration of the two-temperature gene amplification apparatus as shown in FIG. High-speed gene amplification can be continuously performed continuously using the configuration of the three-temperature gene amplification apparatus as shown.

図15は、本発明における連続した使い捨て反応槽1の利用方法の実施形態の一例、ならびに逆転写反応を行うことができる反応槽1を備えた反応槽部の実施形態の一例を示す模式図である。本発明の反応槽1は、上記図13の説明で述べたように、使い捨てチップとして用いる事ができる。この場合、図15のA-A断面図でも示したように、例えば、高速遺伝子増幅反応を行う反応槽部1015は典型的にはPCRを行うための反応槽1、反応槽1を固定するOリング1010などの断熱性と密閉性が保証されたスペーサーで反応槽1の上下を挟み込む反応槽枠2と熱交換槽3、反応槽を搬送するためのガイドレール1011を備えることで、ガイドレール1011に沿って複数の反応槽1を反応槽部1015に搬送することができる。反応槽1を反応で用いるときには、反応槽枠2と熱交換槽3で挟み込む事でOリング1010によって反応槽1を固定化させ、液体リザーバタンク4からの液体の導入を行うことができる。他方、搬送するときには、反応槽枠2と熱交換槽3を反応槽1から離してOリング1010を緩める事で、反応槽1のチップをガイドレール1011に沿って移動させ、交換することができる。図15のA-A断面図からもわかるように、反応槽枠2は、光学的に反応槽1上に配置した反応液を観察し計測するために光学的に透明な構成を取ることができる。この場合、二枚の薄いガラス板1013の間にITOなどの抵抗による発熱が効果的に起こる透明電極1014が挟み込まれており、光学的観測に支障を与える事無く反応槽枠2の温度を制御することができる。特に温度センサー16を内側のガラス板1013内面に設置し、75℃以上の温度に調整することで反応槽枠2内面での結露を防ぎ、蒸気圧の変化を防ぐ事が出来、その結果によって反応槽1の上に配置した反応液の蒸発を防ぐ事ができる。   FIG. 15 is a schematic diagram showing an example of an embodiment of a method for using a continuous disposable reaction tank 1 in the present invention and an example of an embodiment of a reaction tank unit including a reaction tank 1 capable of performing a reverse transcription reaction. is there. The reaction tank 1 of the present invention can be used as a disposable chip as described in the explanation of FIG. In this case, as shown in the AA cross-sectional view of FIG. 15, for example, the reaction tank unit 1015 for performing high-speed gene amplification reaction typically has a reaction tank 1 for performing PCR and an O for fixing the reaction tank 1. A guide rail 1011 is provided by providing a reaction tank frame 2 and a heat exchange tank 3 for sandwiching the upper and lower sides of the reaction tank 1 with spacers such as a ring 1010 that guarantees heat insulation and sealing properties, and a guide rail 1011 for transporting the reaction tank. A plurality of reaction tanks 1 can be transferred to the reaction tank section 1015. When the reaction tank 1 is used in the reaction, the reaction tank 1 can be fixed by the O-ring 1010 by being sandwiched between the reaction tank frame 2 and the heat exchange tank 3, and the liquid can be introduced from the liquid reservoir tank 4. On the other hand, when transporting, by separating the reaction vessel frame 2 and the heat exchange vessel 3 from the reaction vessel 1 and loosening the O-ring 1010, the tip of the reaction vessel 1 can be moved along the guide rail 1011 and exchanged. . As can be seen from the AA cross-sectional view of FIG. 15, the reaction vessel frame 2 can take an optically transparent configuration for observing and measuring the reaction solution optically disposed on the reaction vessel 1. . In this case, a transparent electrode 1014 that effectively generates heat due to resistance such as ITO is sandwiched between two thin glass plates 1013, and the temperature of the reaction vessel frame 2 is controlled without hindering optical observation. can do. In particular, the temperature sensor 16 is installed on the inner surface of the inner glass plate 1013 and the temperature is adjusted to 75 ° C. or higher to prevent condensation on the inner surface of the reaction tank frame 2 and to prevent changes in vapor pressure. The evaporation of the reaction solution disposed on the tank 1 can be prevented.

また、ガイドレール1011上の、反応槽部1015の前段に逆転写反応槽部1016を配置する事で、RNAサンプルをcDNAに逆転写して、後段の反応槽部1015にて高速遺伝子増幅を行うことができる。逆転写反応槽部1016では、図15のB-B断面図からもわかるように、反応槽枠2と同様な構成の枠は、光学的に反応槽1上に配置した反応液を観察し計測するために光学的に透明な構成を取ることができる。この場合、二枚の薄いガラス板1013の間にITOなどの抵抗による発熱が効果的に起こる透明電極1014が挟み込まれており、光学的観測に支障を与える事無く枠内部の温度を制御することができる。特に温度センサー16を内側のガラス板1013内面に設置し、約75℃以上の温度に調整することで反応槽枠2内面での結露を防ぎ、蒸気圧の変化を防ぐ事が出来、その結果によって反応槽1の上に配置した反応液の蒸発を防ぐ事ができる。反応槽1の下面には、逆転写反応用温度プレート1012が配置されており、逆転写に最適な温度として例えば、50℃に設定された状態で、反応槽1に密着させることでPCR溶液が入った反応槽1のプレートの温度を50℃で30分程度反応させて逆転写が完了したところで、その後ガイドレールを反応槽部1015にスライドすることでPCRを始めることができる。   In addition, by placing a reverse transcription reaction tank unit 1016 in front of the reaction tank unit 1015 on the guide rail 1011, the RNA sample is reverse transcribed into cDNA, and high-speed gene amplification is performed in the subsequent reaction tank unit 1015. Can do. In the reverse transcription reaction tank unit 1016, as can be seen from the BB cross-sectional view of FIG. 15, the frame having the same configuration as the reaction tank frame 2 optically observes and measures the reaction solution disposed on the reaction tank 1. To achieve this, an optically transparent configuration can be taken. In this case, a transparent electrode 1014 that effectively generates heat due to resistance such as ITO is sandwiched between two thin glass plates 1013, and the temperature inside the frame is controlled without hindering optical observation. Can do. In particular, by installing the temperature sensor 16 on the inner surface of the inner glass plate 1013 and adjusting it to a temperature of about 75 ° C. or higher, condensation on the inner surface of the reaction vessel frame 2 can be prevented, and the change in vapor pressure can be prevented. It is possible to prevent evaporation of the reaction solution disposed on the reaction tank 1. A reverse transcription reaction temperature plate 1012 is disposed on the lower surface of the reaction tank 1, and the PCR solution is brought into close contact with the reaction tank 1 in a state set to, for example, 50 ° C. as an optimum temperature for reverse transcription. When reverse transcription is completed by reacting the temperature of the plate in the reaction vessel 1 at about 50 ° C. for about 30 minutes, the PCR can be started by sliding the guide rail to the reaction vessel unit 1015.

図16は本発明の多サンプルの遺伝子増幅反応におけるリアルタイム検出方法の一実施形態の一例を示す模式図である。本発明の反応検出装置は、典型的には、マルチウェル反応槽(reaction vessel)1101、アレイ状に配置された複数の反応ウェル1102、検出装置1201を備える。検出装置1201をPCR反応中に例えば方向1202に走査させ反応ウェル1102上のPCRサンプルの蛍光強度を検出することで反応ウェルの数より少ない数の検出器で全サンプル中の蛍光強度を測定する機能を備える。ここで図13の説明でも記述したように、インターカレーター方式での蛍光検出を行う場合には、PCRの伸長反応終了時に、熱変性を開始する前の二本鎖DNAの状態が維持している時間中に計測する事が望ましい。また、タックマンプローブ法のような蛍光プローブのPCR伸長反応時に量的変化を生じる蛍光プローブ量の蛍光検出の場合には、PCR伸長反応終了後のタイミングから、熱変性、アニーリングの段階のいずれであっても計測することができる。ただし、いずれの場合であっても、蛍光強度を比較計測するためには蛍光色素が含まれる反応液の温度が同じであるようにすることが望ましい。これは、温度依存性のある蛍光消光によって、同じ反応液内の蛍光色素量であっても、温度が違う事で蛍光強度が異なる事を防ぐためである。   FIG. 16 is a schematic diagram showing an example of an embodiment of a real-time detection method in a multi-sample gene amplification reaction of the present invention. The reaction detection apparatus of the present invention typically includes a multiwell reaction vessel 1101, a plurality of reaction wells 1102 arranged in an array, and a detection apparatus 1201. A function of measuring the fluorescence intensity in all the samples with fewer detectors than the number of reaction wells by detecting the fluorescence intensity of the PCR sample on the reaction well 1102 by scanning the detection device 1201 in, for example, the direction 1202 during the PCR reaction. Is provided. Here, as described in the explanation of FIG. 13, in the case of performing fluorescence detection by the intercalator method, the state of the double-stranded DNA before the start of thermal denaturation is maintained at the end of the PCR extension reaction. It is desirable to measure during the time. In addition, in the case of fluorescence detection of the amount of a fluorescent probe that causes a quantitative change during the PCR extension reaction of a fluorescent probe, such as the Taqman probe method, the thermal denaturation or annealing stage is performed from the timing after the PCR extension reaction is completed. Can be measured. However, in any case, it is desirable that the temperature of the reaction solution containing the fluorescent dye be the same in order to compare and measure the fluorescence intensity. This is to prevent the fluorescence intensity from being different due to different temperatures, even with the amount of fluorescent dye in the same reaction solution, due to temperature-dependent fluorescence quenching.

図17は本発明の多サンプルの遺伝子増幅反応におけるリアルタイム検出方法の実施形態の一例を示す模式図である。本発明の反応検出装置は、典型的には、マルチウェル反応槽1101、アレイ状に配置された複数の反応ウェル1102、検出プローブ1203を備える。1101上にある反応ウェル1102の数と同量の検出プローブ1203のアレイを用意しPCRサンプルの蛍光強度を定点観測することで切れ目の無い連続した時間変化を計測する事で、図16で示したスキャン型と異なり、連続した蛍光強度変化を検出することができる。   FIG. 17 is a schematic diagram showing an example of an embodiment of a real-time detection method in a multi-sample gene amplification reaction of the present invention. The reaction detection apparatus of the present invention typically includes a multi-well reaction tank 1101, a plurality of reaction wells 1102 arranged in an array, and a detection probe 1203. As shown in FIG. 16, an array of detection probes 1203 having the same amount as the number of reaction wells 1102 on 1101 is prepared and a continuous time change without a break is measured by observing the fluorescence intensity of the PCR sample at a fixed point. Unlike the scanning type, it is possible to detect a continuous fluorescence intensity change.

図18は、反応槽1上の反応液がPCR反応中に乾燥しないための手段として、反応ウェル1102上にのせたサンプルの蒸発を防止するために封入するシール1302を反応槽1101上に貼付ける実施形態の一例を模式的に示したものである。ここでは、シール1302が反応ウェル1102中のサンプル溶液1303と接しないため、かつ反応液滴下時、搬送時、PCR測定中にサンプル反応液のウェル内での移動を抑えるために各反応ウェルの中心に柱(ピラー)1301を構成した構造の一例を模式的に示したものである。この柱1301は、熱伝導性が高いアルミニウム等の金属の打ち出し加工や付加によって作った構造でも良いし、あるいは光学的に透過性を持ったガラスやプラスチックでも良い。   FIG. 18 shows that as a means for preventing the reaction solution on the reaction vessel 1 from drying during the PCR reaction, a seal 1302 that is sealed to prevent evaporation of the sample placed on the reaction well 1102 is attached to the reaction vessel 1101. An example of embodiment is shown typically. Here, since the seal 1302 is not in contact with the sample solution 1303 in the reaction well 1102, and in order to suppress movement of the sample reaction solution in the well during the PCR measurement during the drop of the reaction droplet, during transport, the center of each reaction well 1 schematically shows an example of a structure in which a pillar 1301 is formed. The pillar 1301 may be a structure made by stamping or adding a metal such as aluminum having high thermal conductivity, or may be glass or plastic having optical transparency.

これにより5-10μLのPCR溶液がPCR反応中に移動せずかつシール剤と接することを防止することができる。また、ピラーによってより広い表面積に液滴を展開することができ、その結果として、単純に反応液の液滴を反応槽1101の表面に滴下した場合に比べて、より広い表面積で反応液を展開することができ、より効果的に反応液の温度を熱交換槽と交換することができる。また、ピラー1301が光学的に透明なプラスチックやPDMS等の高分子構造素材であった場合にはリアルタイムPCR測定中に検出する波長とは異なる蛍光を発する物質を練り込むことによりPCRの蛍光強度をキャリブレーションするためのリファレンスとして使用することができる。   This prevents 5-10 μL of the PCR solution from moving during the PCR reaction and coming into contact with the sealant. Also, the droplets can be spread over a wider surface area by the pillar, and as a result, the reaction liquid can be spread out with a wider surface area than when the droplets of the reaction liquid are simply dropped on the surface of the reaction tank 1101. The temperature of the reaction solution can be exchanged with the heat exchange tank more effectively. In addition, when the pillar 1301 is an optically transparent plastic or a polymer structure material such as PDMS, the fluorescence intensity of PCR is increased by incorporating a substance that emits fluorescence different from the wavelength detected during real-time PCR measurement. It can be used as a reference for calibration.

図19は反応ウェル1102内に設置した光学的な伝導性を持つ光ファイバーガラスやプラスチック等の素材でできたピラー1301の表面に、PCR反応中のDNAが近傍にハイブリダイゼーションできるようにDNAプローブ1306またはプライマーを結合させた実施形態の一例を示した模式図である。これにより、PCR反応物の増幅が効果的に行われた場合には、ピラー表面近傍でDNA増幅物が効果的に結合し、その蛍光をピラーの光ファイバー特性を利用して通常より高い検出感度でリアルタイムPCR反応を検出事が可能となる。蛍光を発するための手段としては、図19Aで示したように、DNA二重鎖の時にインターカレートすることで蛍光を発するSYBR Greenなどのインターカレーター1304を用いる手段や、図19Bで示したようにPCR反応物1302がハイブリダイズしたときDNAの立体構造が崩れることによりDNAプローブ末端に結合していた蛍光物質1305が蛍光を発する蛍光共鳴エネルギー移動(FRET)法を利用したプローブ法などを利用することができる。あるいは、柱1301表面あるいは柱1301中に蛍光アクセプター蛍光色素を導入し、インターカレーターをドナー蛍光色素として用いる事で、効果的にターゲットDNAが増幅された場合には、柱表面に結合しているプローブDNAと増幅産物DNAが結合し、インターカレーター蛍光がピラー表面で効果的に発生する事で、アクセプター蛍光を柱の蛍光発光から計測する事も可能である。この利点は、従来のインターカレーターの蛍光強度の変化という指標でのターゲットDNAの観察から、蛍光エネルギー移動によってアクセプター蛍光の発光情報という別のインタオーカレーター蛍光色素とは異なる波長の蛍光を観察することで定量的に計測することができることであり、よりノイズの低い定量性の高い計測が可能となる。   FIG. 19 shows a DNA probe 1306 or a DNA probe 1306 or a DNA probe 1306 that can be hybridized in the vicinity on the surface of a pillar 1301 made of a material such as optical fiber glass or plastic having optical conductivity installed in a reaction well 1102. It is the schematic diagram which showed an example of embodiment which combined the primer. As a result, when amplification of the PCR reaction product is performed effectively, the DNA amplification product binds effectively near the pillar surface, and the fluorescence is detected with higher detection sensitivity than usual by utilizing the optical fiber characteristics of the pillar. Real-time PCR reaction can be detected. As a means for emitting fluorescence, as shown in FIG. 19A, a means using an intercalator 1304 such as SYBR Green that emits fluorescence by intercalating in the case of a DNA double strand, or as shown in FIG. 19B When the PCR reaction product 1302 is hybridized with the DNA, the probe structure using the fluorescence resonance energy transfer (FRET) method in which the fluorescent substance 1305 bound to the DNA probe end emits fluorescence due to the collapse of the three-dimensional structure of the DNA is used. be able to. Alternatively, when the target DNA is effectively amplified by introducing a fluorescent acceptor fluorescent dye into the surface of the pillar 1301 or into the pillar 1301 and using an intercalator as a donor fluorescent dye, a probe bound to the pillar surface It is also possible to measure the acceptor fluorescence from the fluorescence emission of the column by binding the DNA and the amplification product DNA and effectively generating intercalator fluorescence on the pillar surface. The advantage of this is that from the observation of target DNA with the index of change in fluorescence intensity of the conventional intercalator, the fluorescence energy transfer is used to observe fluorescence with a wavelength different from that of another interocalator fluorescent dye, which is emission information of acceptor fluorescence. In other words, it is possible to measure quantitatively, and it is possible to perform measurement with lower noise and high quantitativeness.

図20は、反応液の容量を効果的に制御し、従来の液滴の滴下だけでは実現できない、より広い表面積で熱交換槽と接する事ができる反応液の空間配置を反応槽1101中に実現するために、微細加工技術によって、反応液の導入経路と、反応領域を反応槽中に構成した実施例の一例を模式的に示したものである。本実施例で示したマイクロ流路型反応槽1401は、上記、図1から19で示した実施例で用いてきた熱伝導性に優れたアルミニウム薄板等の反応槽1404上に、ポリジメチルシロキサン(PDMS)等の光学的な透過性と弾性を持った素材からなる流路形成用高分子1403を接着したものである。このチップにはサンプル注入口1405と、毛細管現象によってサンプル注入口から反応液が導入されて通過するマイクロ流路1402と、反応液が満たされる反応液リザーバ1407、そして、反応液を回収するときにこれを押す事で空気圧によってサンプル注入口1405から反応液を回収するために用いる空気リザーバ1406が配置されている。この実施例では、反応液を注入口1405に導入した後に、上記図1あるいは図13で示した高速遺伝子増幅装置にて遺伝子増幅を行った後に、サンプル回収用空気リザーバ1406を押して、反応液をサンプル注入口1405から回収することができる。例えば、流し込む反応溶液は5μL以下が妥当であり、注入口1405から反応液リザーバ1407までの容積を5μL以内に抑える方が望ましい。また、上記実施例では、空気リザーバを用いたが、図20A‘-A’断面図のように、空気リザーバの位置をサンプル排出口1408にしても良い。この場合には、反応後の反応液の回収の場合には、サンプル注入口1405から空気を吹き込むことでサンプル排出口1408から回収することができる。また、図20の実施例では、反応液リザーバ1407の高さをマイクロ流路1402より高く設定したが、より効果的に熱交換を行うためには、なるべく反応液リザーバ1407の高さを低くして面積を広げる事で、より効率的なPCR反応を行うことができる。   FIG. 20 effectively controls the volume of the reaction liquid, and realizes a spatial arrangement of the reaction liquid in the reaction tank 1101 that can be in contact with the heat exchange tank with a larger surface area, which cannot be realized only by dropping conventional droplets. Therefore, an example of an embodiment in which a reaction liquid introduction path and a reaction region are configured in a reaction tank by a microfabrication technique is schematically shown. A micro-channel type reaction vessel 1401 shown in this example is formed on a reaction vessel 1404 such as an aluminum thin plate having excellent thermal conductivity used in the examples shown in FIGS. PDMS) or the like, and a flow path forming polymer 1403 made of a material having optical transparency and elasticity is bonded. This chip has a sample inlet 1405, a microchannel 1402 through which a reaction liquid is introduced from the sample inlet by capillary action, a reaction liquid reservoir 1407 filled with the reaction liquid, and a reaction liquid is collected. By pushing this, an air reservoir 1406 used for collecting the reaction solution from the sample inlet 1405 by air pressure is arranged. In this embodiment, after introducing the reaction solution into the inlet 1405 and performing gene amplification with the high-speed gene amplification apparatus shown in FIG. 1 or FIG. 13, the sample recovery air reservoir 1406 is pushed to It can be collected from the sample inlet 1405. For example, it is appropriate that the reaction solution to be poured is 5 μL or less, and it is desirable to keep the volume from the inlet 1405 to the reaction solution reservoir 1407 within 5 μL. In the above embodiment, the air reservoir is used. However, the position of the air reservoir may be the sample discharge port 1408 as shown in the cross-sectional view of FIG. In this case, in the case of recovering the reaction liquid after the reaction, it can be recovered from the sample outlet 1408 by blowing air from the sample inlet 1405. In the embodiment of FIG. 20, the height of the reaction liquid reservoir 1407 is set higher than that of the micro flow path 1402, but in order to perform heat exchange more effectively, the height of the reaction liquid reservoir 1407 is made as low as possible. By expanding the area, a more efficient PCR reaction can be performed.

図21は、図13で示した実施例について、温度制御用の液体を送液する手段としてシリンジポンプ1411を用いた場合の形態の実施例の一例を模式的に示したものである。毎秒10mL以上の流速での自動送液および自動吸引が可能なシリンジポンプ1411表面には熱源5が、シリンジポンプ中には温度センサー16が配置されており、温度制御のための液体を熱交換槽3に導入するときは、送液したい温度のシリンジポンプ1411の切り替えバルブ8を切り替えて、各シリンジポンプからジョイント90を経て液体を熱交換槽3に導入する。そして、熱交換槽3から戻ってくる液体は、ジョイント90および切り替えバルブ8を経て補助温度制御機構10に蓄えられて、シリンジポンプ1411内で設定した温度と同じ温度に液体を戻した後にシリンジポンプに還流する機能を有する。そして、シリンジポンプからの送液が終わり、別のシリンジポンプ1411からの別温度の液体の送液が開始されたところで、切り替えバルブ8をシリンジポンプ1411と補助温度制御機構10とを接続するように切り替えて、シリンジポンプ1411内に液体を回収するように構成されている。   FIG. 21 schematically shows an example of the embodiment in the case where the syringe pump 1411 is used as a means for sending a temperature control liquid with respect to the embodiment shown in FIG. A heat source 5 is disposed on the surface of a syringe pump 1411 capable of automatic liquid feeding and automatic suction at a flow rate of 10 mL or more per second, and a temperature sensor 16 is disposed in the syringe pump, and a liquid for temperature control is used as a heat exchange tank. 3, the switching valve 8 of the syringe pump 1411 having a temperature to be fed is switched, and the liquid is introduced from each syringe pump into the heat exchange tank 3 through the joint 90. The liquid returning from the heat exchange tank 3 is stored in the auxiliary temperature control mechanism 10 via the joint 90 and the switching valve 8, and after returning the liquid to the same temperature as set in the syringe pump 1411, the syringe pump It has a function of refluxing. When the liquid feeding from the syringe pump is finished and the liquid feeding of another temperature from another syringe pump 1411 is started, the switching valve 8 is connected to the syringe pump 1411 and the auxiliary temperature control mechanism 10. The liquid is collected in the syringe pump 1411 by switching.

図22は、反応液の温度制御に反応液の水の吸収が強い赤外線を照射して、その吸収による温度変化を利用した実施例の一例を示したものである。発明者らは、すでにこの集束赤外光の吸収による高速PCR装置技術について特開2008−278791に記載しているが、図22の本実施例では、反応液の温度制御を赤外レーザ1510の強度制御ではなく、円状に連続して段階的に透過率が変化するグラデーションNDフィルター1515と、このNDフィルター1515の角度をシャフト1514を介して緻密に制御するステッピングモーター等のモーター1513を用いて、角度を高速で可変に行う事で光の強度を高速で変化させる構成となっている。これによって急激な温度変化だけでなく、様々な一定回転各速度にする事で、反応液の単位時間当たりの温度勾配を正確に、かつ緻密に行うことができるだけでなく、温度変化を自在にプログラムすることもできる。   FIG. 22 shows an example of an embodiment in which infrared rays with strong absorption of water in the reaction solution are irradiated to control the temperature of the reaction solution and a temperature change due to the absorption is used. The inventors have already described in Japanese Patent Application Laid-Open No. 2008-278791 the technology of high-speed PCR using absorption of focused infrared light. In this example of FIG. 22, the temperature control of the reaction solution is controlled by the infrared laser 1510. Rather than intensity control, a gradation ND filter 1515 whose transmittance continuously changes in a circular fashion and a motor 1513 such as a stepping motor that precisely controls the angle of the ND filter 1515 via a shaft 1514 are used. The light intensity is changed at high speed by changing the angle at high speed. As a result, not only a rapid temperature change, but also various constant rotation speeds, the temperature gradient per unit time of the reaction solution can be accurately and precisely performed, and the temperature change can be freely programmed. You can also

図22の本実施例の装置構成は、照明用光源(ハロゲンランプなど)1501からの可視光を、コンデンサレンズ1502にて集光し、自動XYステージ1503上の反応ウェルプレート1507の各反応液の状態を光学的に観察できるように、対物レンズ1508経由にて焦点を合わせて、画像観察用カメラ(冷却CCDなど)1522で観察することができる。自動XYステージ1503は、X軸用モーター1504とY軸用モーター1505によって駆動することで任意の座標のウェルを観察することができる。また、ステージヒーター1506によって、例えば、アニーリング温度等のPCR反応での最低温度となる温度に反応ウェルプレート1507の温度を制御することができる。他方、赤外レーザ1510は、ビームエキスパンダー1511、レーザシャッター1512、グラデーションNDフィルター1515を通過して顕微鏡光学系に赤外レーザ用ダイクロイックミラー1509で導入することができる構成となっている。また、グラデーションNDフィルター1515は、その中心のシャフト1514がステッピングモーター等のモーター1513と接続されていることで、グラデーションNDフィルター1515による赤外レーザの透過率を自在に調整することができる。ここでグラデーションNDフィルターの表面のNDのグラデーションのパターンについては、通常は、図23(a)に示したように、その角度θに応じて直線的にND=NDMAX・(θ/θMAX)の関係で変化するものを用いれば良い。あるいは、グラデーションのパターンを角度θに依存してあらかじめ書き込むことで、一定の角速度で回転させながら予定した透過光強度の赤外線を水滴に照射することも可能である。図23(b)は、通常の3温度PCRの反応を行わせるためのプロセスを一回転分で1サイクルとなるようにグラデーションを構成した1例である。まず透過光0%の状態から一気に100%の透過まで上昇させ、95度以上の温度に水滴温度を上げることで核酸の熱変成を行わせ、つぎに透過光を0%に戻すことで、外部の温度を55度から60度程度のあらかじめアニーリング温度としておくことで、水滴はアニーリング温度まで下降し、さらにNDフィルター円盤の回転で透過光を、たとえば30%程度透過させることで、水滴の温度を70度に変化させることができ、PCR伸長反応が進む。このとき、一定角速度で円盤を回転させる場合には、各透過光の照射時間の比は、そのグラデーションパターンの空間配置に反映させることで実現できる。反応ウェル中でのPCR反応を定量的に計測するために蛍光観察をするために、この光学系には、蛍光励起用光源(水銀ランプなど)1517からの励起光を蛍光励起光源用シャッター1518、蛍光励起光用投光レンズ1519を経由して、蛍光励起光用ダイクロイックミラー1516によって励起光を導入することができるようになっており、加熱用赤外レーザの波長の光ならびに励起光が導入されないように調整されたカメラ用ダイクロイックミラー1520、結像レンズ1521を経由して、冷却CCDなどの画像観察用カメラ1522によって定量的に蛍光強度を計測する事が可能な構成となっている。図22に述べられた光学的加熱法に付いては、上記図1から21に述べられた手法と柔軟に組み合わせて用いることができる。 The apparatus configuration of this embodiment shown in FIG. 22 condenses visible light from an illumination light source (such as a halogen lamp) 1501 with a condenser lens 1502, and each reaction solution on the reaction well plate 1507 on the automatic XY stage 1503. The image can be observed with an image observation camera (cooled CCD or the like) 1522 while being focused through the objective lens 1508 so that the state can be optically observed. The automatic XY stage 1503 can be observed by a well of arbitrary coordinates by being driven by an X-axis motor 1504 and a Y-axis motor 1505. In addition, the temperature of the reaction well plate 1507 can be controlled by the stage heater 1506 to a temperature that becomes the lowest temperature in the PCR reaction such as an annealing temperature, for example. On the other hand, the infrared laser 1510 passes through the beam expander 1511, the laser shutter 1512, and the gradation ND filter 1515, and can be introduced into the microscope optical system by the infrared laser dichroic mirror 1509. Further, the gradation ND filter 1515 has a central shaft 1514 connected to a motor 1513 such as a stepping motor, whereby the infrared laser transmittance by the gradation ND filter 1515 can be freely adjusted. Here, as for the ND gradation pattern on the surface of the gradation ND filter, normally, as shown in FIG. 23A, ND = ND MAX · (θ / θ MAX ) linearly according to the angle θ. What changes according to the relationship may be used. Alternatively, by writing a gradation pattern in advance depending on the angle θ, it is possible to irradiate the water droplet with infrared light having a predetermined transmitted light intensity while rotating at a constant angular velocity. FIG. 23B is an example in which gradation is configured so that the process for performing the normal three-temperature PCR reaction is one cycle for one rotation. First, it is increased from 0% transmitted light to 100% transmitted at once, and the nucleic acid is thermally denatured by raising the water droplet temperature to a temperature of 95 ° C. or higher, and then the transmitted light is returned to 0%. The temperature of the water droplet is lowered to the annealing temperature by setting the temperature to 55 to 60 degrees in advance, and the transmitted light is transmitted by, for example, about 30% by rotating the ND filter disk. It can be changed to 70 degrees, and the PCR extension reaction proceeds. At this time, when the disk is rotated at a constant angular velocity, the ratio of the irradiation time of each transmitted light can be realized by reflecting the spatial arrangement of the gradation pattern. In order to perform fluorescence observation in order to quantitatively measure the PCR reaction in the reaction well, this optical system receives excitation light from a fluorescence excitation light source (such as a mercury lamp) 1517 as a fluorescence excitation light source shutter 1518, Excitation light can be introduced by the fluorescence excitation light dichroic mirror 1516 via the fluorescence excitation light projection lens 1519, and the light of the wavelength of the infrared laser for heating and the excitation light are not introduced. The fluorescence intensity can be quantitatively measured by the image observation camera 1522 such as a cooled CCD via the camera dichroic mirror 1520 and the imaging lens 1521 adjusted as described above. The optical heating method described in FIG. 22 can be used flexibly in combination with the method described in FIGS.

たとえば、上記、図1から21の実施例に、本図22の光学的加熱法を付加することで、リザーバタンク4の温度を変更させることなく、簡単に融解曲線解析の機能を組み込むことができる。具体的には、リザーバタンク4からの高速循環液体の流れについて最低温度となる液体を、あらかじめ循環させておくか、あるいは高速循環液体の導入を開始させる前に、ターゲット核酸分子とインターカレーターの機能を持つ蛍光色素を含む水滴に加熱用赤外レーザを連続して照射するが、このとき減光のグラデーションの程度が一次関数の線形(直線)的に減少するように構成されたグラデーションNDフィルター1515を水滴の温度が十分に安定して追従する程度の一定の角速度で回転させることで、水滴の温度を直線的に上昇あるいは下降させることができる。ここで、上昇については、NDの大きさが減少する方向で回転させたときに、また、下降については、NDの大きさが上昇する方向で回転させたときに実現させることができる。毎秒0.1ラジアン以下のゆっくりとした回転で、その角度情報と蛍光強度の変化を記録することで、以下に述べる角度θからの液滴温度の見積もり法を用いることで液滴温度と蛍光強度の結果を得ることができ融解曲線解析をすることができる。ここで温度の見積もり法は、透過光0%をθ=0ラジアン、透過光100%をθ=2πラジアンとし、透過光100%が照射されたところで水滴の温度が95度以上となるように照射光源の赤外線の強度を調整しておき、この調整された蛍光強度をそのまま維持しながらグラデーションNDフィルターを回転させることから、(θ/2π)・(TMAX-TMIN)という関係式で、角度θの測定から水滴の温度を見積もる手段を用いることができる。ただし、ここでTMAXは、透過光100%での照射時の水滴の温度、TMINは、照射前の透過光0%での水滴の温度である。 For example, by adding the optical heating method of FIG. 22 to the embodiment of FIGS. 1 to 21 described above, the melting curve analysis function can be easily incorporated without changing the temperature of the reservoir tank 4. . Specifically, the function of the target nucleic acid molecule and the intercalator is performed before the liquid having the lowest temperature in the flow of the high-speed circulating liquid from the reservoir tank 4 is circulated in advance or before the introduction of the high-speed circulating liquid is started. An infrared laser for heating is continuously irradiated onto water droplets containing a fluorescent dye having a gradation, and at this time, the gradation ND filter 1515 configured so that the degree of gradation of dimming decreases linearly (linearly) as a linear function. , The temperature of the water droplet can be increased or decreased linearly by rotating it at a constant angular velocity such that the temperature of the water droplet follows sufficiently stably. Here, ascending can be realized when rotating in a direction in which the magnitude of ND decreases, and descending can be realized when rotating in a direction in which the magnitude of ND increases. By recording the angle information and changes in fluorescence intensity at a slow rotation of 0.1 radians or less per second, the droplet temperature and fluorescence intensity results can be obtained using the droplet temperature estimation method from the angle θ described below. Can be obtained and a melting curve analysis can be performed. Here, the temperature is estimated by setting the transmitted light 0% to θ = 0 radians, the transmitted light 100% to θ = 2π radians, and irradiating so that the temperature of the water droplet is 95 ° C. or higher when the transmitted light 100% is irradiated. By adjusting the infrared intensity of the light source and rotating the gradation ND filter while maintaining the adjusted fluorescence intensity, the angle is expressed by the relational expression (θ / 2π) · (T MAX -T MIN ). A means for estimating the temperature of the water droplet from the measurement of θ can be used. Here, T MAX is the temperature of the water droplet at the time of irradiation with transmitted light 100%, and T MIN is the temperature of the water droplet at the transmitted light 0% before irradiation.

あるいは、図23(b)示したように、グラデーションNDフィルターの円盤上に、あらかじめ一回転すると一回あるいは数回のPCR反応が終了するように、透過光の割合をθが一定速度で回転することを前提にθ依存的に配置することで、液滴の最低温度を安定化させるための目標とする最低温度の高速液体を還流させる1系統の高速還流系と、本構成を組み合わせれば、簡単に高速PCR反応を光学的な光熱変換によって実現することも可能である。ここでは、高速還流系は1系統のみとなるため、上記図1から21で記載した複雑な切り替えバルブの組み込みやスイッチングプログラムを組み込む必要がなく、また、リザーバタンクも1個で十分となり、構成が大きく簡素化できることとなる。   Alternatively, as shown in FIG. 23 (b), on the disk of the gradation ND filter, the ratio of transmitted light is rotated at a constant speed so that one or several PCR reactions are completed once in one rotation. If this configuration is combined with one system of a high-speed reflux system for refluxing a high-speed liquid having the lowest temperature as a target for stabilizing the minimum temperature of the droplets by arranging it in a θ-dependent manner, A high-speed PCR reaction can be easily realized by optical photothermal conversion. Here, since there is only one high-speed recirculation system, it is not necessary to incorporate the complicated switching valve and the switching program described in FIGS. 1 to 21, and only one reservoir tank is sufficient. It can be greatly simplified.

本発明はまた、遺伝子解析または遺伝子増幅のための装置を提供し、この装置は、核酸を含むサンプル液を容れるための1または複数のウェルを備えた反応槽(reaction vessel)、ヒートシンク(heat sink)または熱交換槽(heat exchange chamber)、ヒートシンクまたは熱交換槽を第1の温度(例:核酸の伸長反応温度)に保つように構成されたヒートシンクまたは熱交換槽の温度制御装置(temperature controller)(例:温度センサー、熱電線、液体還流型温度制御装置)、ヒートシンクまたは熱交換槽と反応槽との間に配置された、ヒートシンクまたは熱交換槽と反応槽との間の熱の移動を媒介する熱電素子(thermoelectric element)(例:ペルチエ素子)、熱電素子の動作(operation)を制御することにより、反応槽の温度を第1の温度と第2の温度(例:核酸の変性温度またはアニーリング温度)との間で変化させる熱電素子制御装置(thermoelectric element controller)(例:温度センサー、コンピュータ(例:PC))とを備えており、熱電素子の動作がオフのときに、反応槽の温度が第1の温度となるように構成されている。   The present invention also provides a device for gene analysis or gene amplification, which device comprises a reaction vessel, heat sink, or heat sink with one or more wells for containing a sample solution containing nucleic acid. ) Or heat exchange chamber, heat sink or heat exchanger temperature controller configured to maintain the heat sink or heat exchange chamber at a first temperature (eg, nucleic acid elongation reaction temperature) (Example: temperature sensor, heat wire, liquid reflux type temperature controller), mediating heat transfer between heat sink or heat exchange tank and reaction tank, placed between heat sink or heat exchange tank and reaction tank By controlling the operation of the thermoelectric element (eg, Peltier element) and thermoelectric element, the temperature of the reaction vessel is set to the first temperature and the second temperature (eg, nucleus). Thermoelectric element controller (example: temperature sensor, computer (example: PC)) that changes between the temperature of the thermoelectric element and the temperature of the thermoelectric element is off. The temperature of the reaction vessel is configured to be the first temperature.

図24は、このような本発明の遺伝子解析または遺伝子増幅のための装置の構成の非限定的な一例を示す模式図である。図24に示す本発明の実施形態は、DNAを含むサンプルを保持するためのDNA反応チップ容器2401、ペルチエ素子2403、ペルチエ素子2403と反応チップ容器2401との間の熱伝導効率を上げるための熱伝導薄板2402、ヒートシンク2404、ヒートシンク2404を加熱するための熱電線2405、反応チップ容器2401の温度をモニターするための温度センサー2406、ヒートシンク2404の温度をモニターするための温度センサー2407、反応チップ容器2401に設けられたサンプル観察するための観察窓2408、および観察窓2408を介してサンプル液中のサンプルの様子を蛍光観察するための蛍光検出モジュール2409を備える。   FIG. 24 is a schematic diagram showing a non-limiting example of the configuration of such an apparatus for gene analysis or gene amplification of the present invention. The embodiment of the present invention shown in FIG. 24 has a DNA reaction chip container 2401 for holding a sample containing DNA, a Peltier element 2403, and heat for increasing the heat conduction efficiency between the Peltier element 2403 and the reaction chip container 2401. Conductive thin plate 2402, heat sink 2404, heat wire 2405 for heating heat sink 2404, temperature sensor 2406 for monitoring the temperature of reaction chip container 2401, temperature sensor 2407 for monitoring the temperature of heat sink 2404, reaction chip container 2401 An observation window 2408 for observing the sample, and a fluorescence detection module 2409 for observing the state of the sample in the sample liquid via the observation window 2408.

DNA反応チップ容器2401としては、前述の液体還流型あるいは光吸収加熱型反応制御装置で用いた反応容器の構成ならびに、光学蛍光強度検出系をそのまま用いることができる。熱源については、DNA伸長反応温度(中温度)に制御したヒートシンク2404を安定熱源として用い、このヒートシンクからペルチエ素子2403と熱を均質に平面上に伝える熱伝導用薄板2402(アルミニウム、ジュラルミン、金、銀、タングステン、ネパール黄銅、マグネシウム、モリブデン、ベリリウムおよび、これらの元素を用いた合金、を含む熱伝導性の高い金属、あるいは合金で構成される)を介して、DNA反応チップへ熱を供給してDNA変性温度(高温度)あるいは、熱を奪ってアニーリング温度(低温度)に高速で移動させることができる。温度センサー2406は、反応チップのすぐ下に配置された熱伝導用薄板2402上面に配置され、熱伝導板上面の反応チップの温度をリアルタイムでモニターでき、この計測された温度と、プログラムに事前に書き込んだ温度経時変化プロファイルとが同じ温度となるようにペルチエ素子2403を駆動させることができる。ヒートシンクは安定して中温度にあるのに十分な熱容量と熱伝導性を有する金属等の素材(例:アルミニウム、ジュラルミン、金、銀、タングステン、ネパール黄銅、マグネシウム、モリブデン、ベリリウムおよび、これらの元素を用いた合金)からなっており、電熱線2405等の安定して熱を供給できるモジュールからヒートシングに配されている温度センサー2407の温度をモニタリングしており、このセンサー2407からの情報を元に温度制御モジュール(例:フィードバック制御機構)(これは、電熱線等の電流駆動型の熱源の場合については電流量と極性の制御を、液体還流型温度制御装置については水温加熱冷却モジュールへのON/OFF制御信号を送る機能を有する)によって定常的に必要な熱をヒートシンクに供給して中温度を保っている。本発明の最大の特徴は、ヒートシンクを中温度に設定する(注:厳密には反応槽または反応容器を中温度に設定するためにヒートシンクの温度は熱伝導のロスを考慮すると反応容器の設定温度から高温または低温側に幾分ずれる可能性がある)事で、ペルチエ素子をオフにすれば自律的に高速でオーバーシュートする事無く、DNA反応チップの温度を目的とする中温度のDNA伸長反応温度に平衡温度として達成できることにある。一般にペルチエ素子等のフィードバック制御素子を用いて熱を供給させ続ける事で一定の温度を維持する手法はフィードバック制御由来のオーバーシュートや温度の振動をもたらし易く、かつ、消費電力が非常に大きくなる事、連続したペルチエ素子の動作による素子寿命の短縮などの問題がある。他方、このように中温度をペルチエ素子をオフにすることで実現できる本発明では、PCR反応において最も時間を費やすPCR伸長反応時にペルチエ素子をオフにすることができ、また、特に低温側でアニーリングによって結合した二本鎖DNAを温度上昇によるオーバーシュートによって乖離するリスクを冒す事無く、伸長反応温度に平衡点に近づく形で達成することができる。また、高温側のDNA変性温度と低温側のアニーリング温度については1秒程度の短い時間のペルチエ素子動作(変性反応とアニーリング反応)であり、かつ、若干のオーバーシュートは許容されることから、厳密な温度制御を行う必要がなく、また、DNA反応チップに熱を出し入れするペルチエ素子が接触する熱源が中温度で安定している事から、目的とする温度に達するために加える電流量についてもだいたいの値を見積もる事が可能である。DNA反応チップは、上記、液体還流型装置の例でも示したように、DNA反応チップ容器2401の上面にITO等の発熱性透明電極が配置された観察窓2408が配置されており、チップ上面の温度が75℃以上となるように熱を供給しており、これによってチップ内の試薬の底面からの蒸発と容器上面での結露を防ぐ事ができ、微量の試薬反応液であっても蒸発する事無くPCR反応を蛍光検出モジュール2409で検出することができる。   As the DNA reaction chip container 2401, the structure of the reaction container used in the liquid reflux type or light absorption heating type reaction control apparatus described above and the optical fluorescence intensity detection system can be used as they are. As a heat source, a heat sink 2404 controlled to a DNA extension reaction temperature (medium temperature) is used as a stable heat source, and a thin plate for heat conduction 2402 (aluminum, duralumin, gold, Heat is supplied to the DNA reaction chip via a metal having high thermal conductivity or an alloy including silver, tungsten, Nepal brass, magnesium, molybdenum, beryllium, and alloys using these elements). Thus, the DNA can be moved at high speed to the DNA denaturation temperature (high temperature) or the annealing temperature (low temperature) by depriving of heat. The temperature sensor 2406 is arranged on the upper surface of the heat conducting thin plate 2402 arranged immediately below the reaction chip, and can monitor the temperature of the reaction chip on the upper surface of the heat conducting plate in real time. The Peltier element 2403 can be driven so that the written temperature change profile becomes the same temperature. A heat sink is a metal or other material that has sufficient heat capacity and thermal conductivity to be stable and at medium temperature (eg, aluminum, duralumin, gold, silver, tungsten, Nepal brass, magnesium, molybdenum, beryllium, and their elements. The temperature sensor 2407 disposed in the heat sink is monitored from a module that can supply heat stably, such as a heating wire 2405, and the information from the sensor 2407 Temperature control module (example: feedback control mechanism) (this is the control of the amount of current and polarity for current-driven heat sources such as heating wires, and the water heating / cooling module for liquid reflux temperature control devices. It has a function to send an ON / OFF control signal) and constantly supplies necessary heat to the heat sink. It is kept. The most significant feature of the present invention is that the heat sink is set to an intermediate temperature (Note: Strictly speaking, the temperature of the heat sink in order to set the reaction vessel or the reaction vessel to an intermediate temperature, the temperature of the reaction vessel is set in consideration of the loss of heat conduction. Medium temperature DNA elongation reaction for the purpose of the temperature of the DNA reaction chip without autonomous high-speed overshooting when the Peltier element is turned off. The temperature can be achieved as an equilibrium temperature. In general, a method of maintaining a constant temperature by continuously supplying heat using a feedback control element such as a Peltier element is likely to cause overshoot and temperature oscillations derived from feedback control, and power consumption becomes very large. There are problems such as shortening of device life due to continuous operation of Peltier devices. On the other hand, in the present invention, which can be realized by turning off the Peltier element in this way, the Peltier element can be turned off at the time of the PCR extension reaction that spends the most time in the PCR reaction, and the annealing is performed particularly on the low temperature side. It can be achieved in such a manner that the elongation reaction temperature approaches the equilibrium point without taking the risk of detaching the double-stranded DNA bound by the above by overshoot due to temperature rise. In addition, the DNA denaturation temperature on the high temperature side and the annealing temperature on the low temperature side are Peltier element operations (denaturation reaction and annealing reaction) in a short time of about 1 second, and a slight overshoot is allowed. There is no need to control the temperature, and since the heat source that contacts the Peltier element that puts heat in and out of the DNA reaction chip is stable at medium temperature, the amount of current applied to reach the target temperature is roughly It is possible to estimate the value of. The DNA reaction chip has an observation window 2408 in which an exothermic transparent electrode such as ITO is arranged on the upper surface of the DNA reaction chip container 2401 as shown in the example of the liquid reflux type apparatus. Heat is supplied so that the temperature is 75 ° C. or higher. This prevents evaporation from the bottom surface of the reagent in the chip and condensation on the top surface of the container, and even a small amount of reagent reaction solution is evaporated. The PCR reaction can be detected by the fluorescence detection module 2409 without any problem.

図25は、実際にDNA反応チップ中の試薬の反応温度(a)と、ペルチエ素子への電流印加の例(b)を模式的に示したものである。図からもわかるように、ペルチエ素子の動作時間は、高温と低温にするための短時間の動作に限っており、また、低温にした後の中温への温度変化は、ヒートシンクからDNA反応チップへの熱伝導による熱平衡によってもたらされている。   FIG. 25 schematically shows the reaction temperature (a) of the reagent in the DNA reaction chip and an example (b) of current application to the Peltier element. As can be seen from the figure, the operation time of the Peltier element is limited to a short time operation to make the temperature high and low, and the temperature change from the heat sink to the DNA reaction chip changes from the heat sink to the medium temperature. This is brought about by the heat balance of heat conduction.

本発明によれば、高速で温度変化をするように温度制御することが可能である。したがって、標準的なPCRにおいて、例えば、変性温度(高温)が94℃、伸長温度(中温)が72℃、およびアニーリング温度(低温)が55℃に設定される場合に、中温から高温、高温から中温、中温から低温、および低温から中温のそれぞれの温度変化に要する時間を、例えば、2秒、1秒、0.9秒、0.8秒、0.7秒、0.6秒、0.5秒、0.4秒、もしくは0.3秒またはそれより短い時間とすることが可能である。   According to the present invention, it is possible to control the temperature so as to change the temperature at high speed. Therefore, in standard PCR, for example, when the denaturation temperature (high temperature) is set to 94 ° C., the extension temperature (medium temperature) is set to 72 ° C., and the annealing temperature (low temperature) is set to 55 ° C. The time required for each temperature change from medium temperature, medium temperature to low temperature, and low temperature to medium temperature is, for example, 2 seconds, 1 second, 0.9 seconds, 0.8 seconds, 0.7 seconds, 0.6 seconds, 0.5 seconds, 0.4 seconds, or 0.3 seconds or It is possible to set a shorter time.

本実施例では、3温度PCRの場合について例示したが、同様に高温と中温のみからなる2温度PCRでも、同様に高温へのペルチエ素子のオン/オフのみで実現することができる。また融解曲線解析や、RT-PCRの工程についても、ヒートシンクの温度をゆっくりと変化させることで実現することも、あるいはペルチエ素子によるDNA反応チップへの熱供給を温度センサーによってフィードバック制御しながらゆっくりと温度変化をさせることで実現することができる。   In the present embodiment, the case of the three-temperature PCR is illustrated, but similarly, the two-temperature PCR including only the high temperature and the medium temperature can be realized by only turning on / off the Peltier element to the high temperature. The melting curve analysis and RT-PCR process can also be realized by slowly changing the heat sink temperature, or slowly while feeding back heat to the DNA reaction chip by the Peltier element using a temperature sensor. This can be realized by changing the temperature.

また、本実施例ではヒートシンクと電熱線を中温度の熱源として用いたが、中温度1つの液体リザーバを備える高速液体還流型の反応制御装置において、または図1、図13、図21に記載したような2温度もしくは3温度に対応可能な高速液体還流型の反応制御装置において、中温に設定した1つの液体リザーバおよび熱交換槽3を上記ヒートシンクの替わりに用いても良い。また、2温度もしくは3温度に対応可能な複数のリザーバを備える液体還流型反応制御装置では、中温度自体に異なる温度のバリエーションを持たせることも可能であるという利点がある。   In the present embodiment, the heat sink and the heating wire are used as the medium temperature heat source. However, in the high-speed liquid reflux type reaction control device having one medium temperature liquid reservoir, or described in FIG. 1, FIG. 13, and FIG. In such a high-speed liquid reflux type reaction control apparatus that can cope with two or three temperatures, one liquid reservoir set to an intermediate temperature and the heat exchange tank 3 may be used instead of the heat sink. In addition, the liquid reflux reaction control apparatus including a plurality of reservoirs that can handle two or three temperatures has an advantage that the intermediate temperature itself can have different temperature variations.

図26は、光ファイバーアレイを用いて複数波長の蛍光励起光をサンプル液へ同時に照射し、発せられた複数波長の蛍光量を同時取得し、かつ複数波長の蛍光画像を同時取得するための装置構成の一例を模式的に示した図である。また、図27は、サンプル液に照射するための複数の蛍光励起光と検出する複数の蛍光の波長セットを選択した一例を模式的に示したスペクトル図である。また、図28はサンプル液に照射する複数の蛍光励起光と検出する複数の蛍光の照射計測タイミングの一例を模式的に示した図である。これらの図は、反応槽(reaction vessel)に備えられた1または複数のウェル中の核酸を含むサンプル液の蛍光強度変化を計測する手段として、上記サンプル液に対して照射するための1つ以上の蛍光光源、それぞれの波長の光を伝導する光ファイバー、および照射部位において観察対象に光を集束させる集光用レンズを含む光学系と、上記サンプル液の蛍光強度を検出するための蛍光を伝導する、1つ以上の蛍光波長の各々に対応した光ファイバーと光ファイバーの後段に配置された特定の蛍光波長を通過させるバンドパスフィルターと蛍光検出器からなる上記細胞に結合した蛍光標識物質の蛍光強度を同時に取得する検出系とを有する装置を説明している。   FIG. 26 shows an apparatus configuration for simultaneously irradiating a sample liquid with fluorescence excitation light of a plurality of wavelengths using an optical fiber array, simultaneously acquiring the emitted fluorescence amounts of the plurality of wavelengths, and simultaneously acquiring the fluorescence images of the plurality of wavelengths. It is the figure which showed typically an example. FIG. 27 is a spectrum diagram schematically showing an example in which a plurality of fluorescence excitation lights for irradiating the sample liquid and a plurality of fluorescence wavelength sets to be detected are selected. FIG. 28 is a diagram schematically showing an example of irradiation measurement timings of a plurality of fluorescence excitation lights to be irradiated to a sample liquid and a plurality of fluorescence to be detected. These figures show one or more for irradiating the sample solution as a means of measuring the fluorescence intensity change of the sample solution containing nucleic acids in one or more wells provided in a reaction vessel. A fluorescent light source, an optical fiber that conducts light of each wavelength, and an optical system that includes a condensing lens that focuses the light on the observation target at the irradiation site, and conducts fluorescence for detecting the fluorescence intensity of the sample liquid. The fluorescence intensity of the fluorescence-labeled substance bound to the cells, which is composed of an optical fiber corresponding to each of one or more fluorescence wavelengths, a band-pass filter arranged after the optical fiber and passing a specific fluorescence wavelength, and a fluorescence detector, is simultaneously An apparatus having a detection system for acquisition is described.

図26の実施例の装置は、光源については6つの異なる単色励起光を発生させる蛍光励起光源と1つの明視野顕微画像用光源からなる励起光源部(3801−3805)を備えている。励起光源の各々にはそれぞれ発光タイミングや発光時間、発光強度を個別に制御できる制御コントローラ3806−3810が接続されている。励起光源としては、連続照射を行う場合には通常のキセノンランプ、水銀ランプ等の広帯域発光光源にフィルターを組み合わせた光源、または半導体励起固体レーザー、He-Neレーザーなどのレーザー光源を利用してもよいが、最も適しているもののひとつは、小型で、かつ、出力光の波長幅が狭く強度も安定して定量的に同時に制御でき、通常のキセノンランプ、水銀ランプ等の広帯域発光光源にフィルターを組み合わせた光源では困難な各単色光波長での光強度を同程度に調整する機能を有し、ミリ秒未満でのパルス発光制御も容易であるLED光源である。励起光源に接続されたコントローラ3806−3810は励起光源の強度と出力時間を制御できるようになっており、これにより各単色光の強度のバランスを自在に制御し、かつ、連続光からパルス光までの光を照射することが可能となっている。パルス光源を用いたパルス露光方法の実施例のひとつについては図28にも記載しているように、たとえばPCRのプロセスの中で各PCR反応サイクルでの伸長反応の終了時点近傍で複数のタイミングで計測する手法を用いることができる。   The apparatus of the embodiment of FIG. 26 includes an excitation light source unit (3801-3805) including a fluorescence excitation light source that generates six different monochromatic excitation lights and one light source for bright field microscopic images. Each excitation light source is connected to a controller 3806-3810 that can individually control the light emission timing, light emission time, and light emission intensity. As the excitation light source, in the case of continuous irradiation, a light source combining a filter with an ordinary broadband light source such as a xenon lamp or a mercury lamp, or a laser light source such as a semiconductor excited solid laser or a He-Ne laser One of the most suitable is small, and the output wavelength is narrow and the intensity is stable and can be controlled quantitatively at the same time. Filters can be applied to ordinary broadband light sources such as xenon lamps and mercury lamps. This LED light source has the function of adjusting the light intensity at each monochromatic light wavelength, which is difficult with a combined light source, to the same extent, and can easily control pulse emission in less than milliseconds. The controller 3806-3810 connected to the excitation light source can control the intensity and output time of the excitation light source, thereby freely controlling the balance of the intensity of each monochromatic light, and from continuous light to pulsed light. It is possible to irradiate light. One example of the pulse exposure method using a pulse light source is also described in FIG. 28, for example, at a plurality of timings near the end of the extension reaction in each PCR reaction cycle in the PCR process. A measuring method can be used.

各LED励起光源の励起光出口には、それぞれの光源3801〜3805の励起光の光ファイバーへの集光用のレンズ3816が配置されており、各励起光源で発生した各励起光は光ファイバー束として集束されて励起光ごとに各々の光ファイバー3818の端面に照射され、光ファイバー束内の独立した各光ファイバー3818内に励起光が導入される。これら光ファイバーは束ねられて、反対側の端面より照射され、集光用マイクロレンズ3820を経て、熱交換槽3上のウェル中のサンプル液試料に照射される。光ファイバーの直径は典型的には1本あたり100ミクロンであり、マイクロチップ中の試料細胞が通過するマイクロ流路幅は典型的には10ミクロンから100ミクロンであるため、励起光の照射領域を絞るためにサンプル液ウェルの直上には励起光の集光用マイクロレンズ3820が配置してある。マイクロレンズ3820の焦点位置を調整することにより、サンプル液の1ミクロン径程度のごく狭い領域のみに励起光を絞って照射することも可能であり、また照射領域直径を100ミクロン程度としてサンプル液の広領域にわたって照射することも可能である。   A lens 3816 for condensing the excitation light of the respective light sources 3801 to 3805 to the optical fiber is disposed at the excitation light exit of each LED excitation light source, and each excitation light generated by each excitation light source is focused as an optical fiber bundle. Then, the end face of each optical fiber 3818 is irradiated for each excitation light, and the excitation light is introduced into each independent optical fiber 3818 in the optical fiber bundle. These optical fibers are bundled, irradiated from the opposite end surface, and irradiated to the sample liquid sample in the well on the heat exchange tank 3 through the condensing microlens 3820. The diameter of the optical fiber is typically 100 microns, and the width of the microchannel through which the sample cells in the microchip pass is typically 10 to 100 microns. Therefore, a microlens 3820 for condensing excitation light is disposed immediately above the sample solution well. By adjusting the focal position of the microlens 3820, it is possible to irradiate only a very narrow region of about 1 micron diameter of the sample liquid with excitation light, and the irradiation region diameter is about 100 microns. Irradiation over a wide area is also possible.

サンプル液試料に対して上記集束励起光が照射されると、PCR反応の進行に応じて試料から特定波長の蛍光が球面波状に放射される。そのうちの片側半球方向(図26の実施例ではウェルの上面方向)に放射された蛍光はマイクロレンズ3820によって、計測したい蛍光波長帯域数の数だけ用意された光ファイバー3819が束ねられた端面に誘導され、さらに光ファイバーを経由して、蛍光強度検出を行う蛍光強度検出部に誘導される。   When the focused excitation light is irradiated to the sample liquid sample, fluorescence of a specific wavelength is emitted from the sample in a spherical wave shape as the PCR reaction proceeds. The fluorescence emitted in one hemispherical direction (in the embodiment of FIG. 26 in the direction of the upper surface of the well) is guided by the microlens 3820 to the end face where the optical fibers 3819 prepared for the number of fluorescence wavelength bands to be measured are bundled. Further, the light is guided to a fluorescence intensity detection unit that performs fluorescence intensity detection via an optical fiber.

蛍光強度検出部については、本実施例ではたとえば6つの異なる蛍光波長領域の蛍光強度をそれぞれ検出する蛍光検出器3811−3815からなる蛍光強度検出部を搭載しており、各光ファイバー3819の端面から放射される蛍光を、まずは各光ファイバーの端点に配置したレンズ3816に誘導し、次に、計測したい各蛍光波長のフィルター3817、そして蛍光検出器3811−3815に誘導することで蛍光計測を行うことができる。蛍光検出器としては微弱な光を検出することが可能で受光量の定量化が容易である光電子増倍管を利用することが適しているが、励起光源、蛍光検出器共に測定対象に合わせてアパランシア型フォトダイオードなどの光電変換機能を持つ半導体素子などの適切なものを選択することが望ましい。また蛍光検出器の検出口には計測の条件に応じて交換可能な蛍光フィルター3817を搭載することができるようになっている。   In this embodiment, for example, a fluorescence intensity detection unit comprising fluorescence detectors 3811 to 3815 for detecting fluorescence intensities in six different fluorescence wavelength regions is mounted in this embodiment, and is emitted from the end face of each optical fiber 3819. Fluorescence can be measured by first guiding the fluorescence to the lens 3816 disposed at the end point of each optical fiber, and then guiding the fluorescence to the filter 3817 and fluorescence detectors 3811 to 3815 for each fluorescence wavelength to be measured. . As a fluorescence detector, it is suitable to use a photomultiplier tube that can detect weak light and easily quantify the amount of received light. However, both the excitation light source and the fluorescence detector are suitable for the measurement target. It is desirable to select an appropriate device such as a semiconductor element having a photoelectric conversion function such as an aparancia photodiode. In addition, a fluorescent filter 3817 that can be exchanged according to measurement conditions can be mounted on the detection port of the fluorescence detector.

検出された蛍光量は蛍光検出コントロールユニット3822で分析処理される。ここで、本コントロールユニットは、特に検出される蛍光量が微弱な場合は、上記、該蛍光の光源となるLED光源の強度を強めるようにフィードバック制御を、制御コントローラ3806−3810に与えて実質的に感度を増感する機能も有する。   The detected fluorescence amount is analyzed by the fluorescence detection control unit 3822. Here, particularly when the amount of fluorescence detected is weak, the control unit provides feedback control to the control controller 3806-3810 so as to increase the intensity of the LED light source serving as the fluorescence light source. It also has a function to increase sensitivity.

図27は図26の装置に搭載する6種類の蛍光励起光源および検出する蛍光の波長セット選択に関する一例である。ここでは蛍光励起6波長、蛍光検出6波長の例を示しているが、光源と検出器、光ファイバーの本数を増やすことにより容易に数をそれぞれ増やすことが可能である。特にLED光源のパルス光を用いることで従来の連続光照射では困難であった蛍光波長の重なりがある異なる励起光に反応する蛍光色素を、パルス光照射のタイミングをずらすことによって同時に利用することが可能である。図27では励起光源中心波長としては370, 440, 465, 498, 533, 618nm、蛍光中心波長としては488, 510, 580, 610, 640, 660nmをそれぞれ例として示している。   FIG. 27 shows an example of six types of fluorescence excitation light sources mounted on the apparatus of FIG. 26 and wavelength set selection of fluorescence to be detected. Here, an example of 6 wavelengths of fluorescence excitation and 6 wavelengths of fluorescence detection is shown, but the number can be easily increased by increasing the number of light sources, detectors, and optical fibers. In particular, it is possible to simultaneously use fluorescent dyes that react to different excitation lights with overlapping fluorescence wavelengths that were difficult with conventional continuous light irradiation by using pulsed light from an LED light source by shifting the timing of pulse light irradiation. Is possible. In FIG. 27, the excitation light source center wavelengths are 370, 440, 465, 498, 533, 618 nm, and the fluorescence center wavelengths are 488, 510, 580, 610, 640, 660 nm as examples.

本実施例の装置システム構成の特長は、従来の励起光光源の波長スペクトルの波長依存性を持った強度むらを解決し、かつ、より積極的に感度の悪い蛍光波長については励起光強度を調整して微弱な信号をより正確にかつ定量的に計測することを実現するものであり、また、従来のキセノンランプ等では実現が難しかったms以下の短パルス光を組み合わせてより多くの蛍光色素を同時計測することを実現するものである。   The feature of the device system configuration of this embodiment is to solve the intensity unevenness with the wavelength dependence of the wavelength spectrum of the conventional excitation light source, and more positively adjust the excitation light intensity for the fluorescence wavelength with less sensitivity In addition, it is possible to measure weak signals more accurately and quantitatively. In addition, more fluorescent dyes can be combined by combining short pulsed light of less than ms, which was difficult to achieve with conventional xenon lamps. Realizes simultaneous measurement.

図29は、高速循環する水等の熱交換媒体に対して熱交換表面において目的温度に制御され設定されたペルチエ素子等の温度制御可能な発熱源と広面積で接触する熱交換部を有するヒートシンクまたは該熱交換槽の温度制御装置(temperature controller)についての一例を模式的に示した図である。ここでは、高速循環する水等の熱交換媒体に対して熱交換を行うリザーバー2801と、これに接続されたペルチエ素子等の温度制御可能な発熱源2802、リザーバー2801に水等の熱交換媒体を導入するインレット2803と、リザーバー2801から温度制御された水等の熱交換媒体を排出するアウトレット2804とからなる。ここで発熱源2802は、発熱源の温度を下げることによって単に加熱を行うだけでなく、熱交換媒体を冷却することで液温を下げることも可能である。   FIG. 29 shows a heat sink having a heat exchange part that contacts a heat-controllable heat source such as a Peltier element that is controlled and set at a target temperature on a heat exchange surface with respect to a heat exchange medium such as water that circulates at high speed in a wide area. Or it is the figure which showed typically an example about the temperature control apparatus (temperature controller) of this heat exchange tank. Here, a reservoir 2801 that exchanges heat with a heat exchange medium such as water that circulates at high speed, a heat source 2802 that can be temperature controlled such as a Peltier element connected thereto, and a heat exchange medium such as water in the reservoir 2801. An inlet 2803 to be introduced and an outlet 2804 for discharging a heat exchange medium such as water whose temperature is controlled from the reservoir 2801 are included. Here, the heat source 2802 can not only perform heating by lowering the temperature of the heat source, but also can lower the liquid temperature by cooling the heat exchange medium.

図30は、高速循環する水等の熱交換媒体に対して熱交換表面において目的温度に制御され設定されたペルチエ素子等の温度制御可能な発熱源と広面積で接触する熱交換部を有するヒートシンクまたは該熱交換槽の温度制御装置(temperature controller)についての一例を模式的に示した図である。発熱源からの熱交換をより効率的に行うために、その容量に対する発熱源との接触面積は最大となるように構成されており、たとえば、熱交換領域の容量を V、発熱源との接触面の面積をSとしたとき、
V=S×5mm未満(高さ:h)
というように高さhを5mm未満にすることが望ましい。また、より接触面積を増大させるために、図30に記載したように熱交換領域内に複数のピラー2901を配置することも望ましい。ここでピラーの形状は、高速循環する水等の熱交換媒体の流れの抵抗を細小にするように、たとえば直径3mm以下の円柱状の支柱を用いることが望ましい。その他、紡錘形、薄板なども用いることが望ましい。
FIG. 30 shows a heat sink having a heat exchanging portion that contacts a heat-controllable heat source such as a Peltier element that is controlled and set to a target temperature on a heat exchanging surface with respect to a heat exchanging medium such as water circulating at high speed. Or it is the figure which showed typically an example about the temperature control apparatus (temperature controller) of this heat exchange tank. In order to more efficiently exchange heat from the heat source, the contact area with the heat source with respect to the capacity is maximized. For example, the capacity of the heat exchange region is V, and the contact with the heat source When the area of the surface is S,
V = S x less than 5 mm (height: h)
Thus, it is desirable that the height h is less than 5 mm. In order to further increase the contact area, it is also desirable to arrange a plurality of pillars 2901 in the heat exchange region as described in FIG. Here, it is desirable to use, for example, a columnar column having a diameter of 3 mm or less so that the pillar has a small flow resistance of a heat exchange medium such as water circulating at high speed. In addition, it is desirable to use a spindle shape or a thin plate.

図31は、高速循環する水等の熱交換媒体に対して熱交換表面において目的温度に制御され設定されたペルチエ素子等の温度制御可能な発熱源と広面積で接触する熱交換部を有するヒートシンクまたは該熱交換槽の温度制御装置(temperature controller)を用いたPCR装置についての一例を模式的に示した図である。本実施例は、ヒートシンク2800の高速温度制御機能を利用して、ポンプ7で温度制御された熱交換媒体となる水等の液体をPCR反応を行うサンプル液が設置されている熱交換槽3に循環させて温度変化を高速で行うことで、高速PCR反応に加えて融解曲線解析も行うことができる。   FIG. 31 shows a heat sink having a heat exchange section that contacts a heat-controllable heat source such as a Peltier element that is controlled and set at a target temperature on the heat exchange surface with respect to a heat exchange medium such as water that circulates at high speed in a wide area. Or it is the figure which showed typically an example about the PCR apparatus using the temperature controller (temperature controller) of this heat exchange tank. In the present embodiment, by utilizing the high-speed temperature control function of the heat sink 2800, a liquid such as water serving as a heat exchange medium whose temperature is controlled by the pump 7 is placed in the heat exchange tank 3 in which a sample solution for performing a PCR reaction is installed. Circulating and performing temperature changes at high speed enables melting curve analysis in addition to high-speed PCR reactions.

たとえば装置を用いて、PCRを行う方法であって、
(a)核酸を含むサンプル液をウェルに配置する工程、
(b)第1の温度としての核酸の伸長反応温度から、第2の温度としての(i)核酸の変性温度または(ii)核酸の変性温度もしくは核酸のアニーリング温度への反応槽の温度の切り替えを行う工程、
(c)引き続き上記第2の温度から上記第1の温度への上記反応槽の温度の切り替えを行う工程、ならびに
(d)工程(b)および工程(c)を所定の時間間隔で所定回繰り返す工程、
を含み、
上記第2の温度から上記第1の温度への上記反応槽の温度の切り替えが、上記熱電素子の動作をオフにすることによって行われる、方法を実現することができる。
For example, a method of performing PCR using an apparatus,
(A) placing a sample solution containing nucleic acid in a well;
(B) Switching the reaction vessel temperature from the nucleic acid elongation reaction temperature as the first temperature to (i) the nucleic acid denaturation temperature or (ii) the nucleic acid denaturation temperature or the nucleic acid annealing temperature as the second temperature. The process of performing,
(C) the step of subsequently switching the temperature of the reaction vessel from the second temperature to the first temperature, and (d) repeating step (b) and step (c) a predetermined number of times at predetermined time intervals Process,
Including
A method can be realized in which the temperature of the reaction vessel is switched from the second temperature to the first temperature by turning off the operation of the thermoelectric element.

また、上記工程(d)において、工程(b)(ii)および工程(c)を所定回繰り返す際に、
上記第1の温度としての核酸の伸長反応温度から、上記(b)(ii)の第2の温度としての核酸の変性温度への上記反応槽の温度の切り替えおよび引き続き該核酸の変性温度から上記第1の温度への上記反応槽の温度の切り替えを行うことと、
上記第1の温度としての核酸の伸長反応温度から、上記(b)(ii)の第2の温度としての核酸のアニーリング温度への上記反応槽の温度の切り替えおよび引き続き該核酸のアニーリング温度から上記第1の温度への上記反応槽の温度の切り替えを行うことと
を交互に行うことを所定の時間間隔で繰り返すことも可能である。
In step (d), when steps (b) (ii) and (c) are repeated a predetermined number of times,
Switching the temperature of the reaction vessel from the nucleic acid elongation reaction temperature as the first temperature to the nucleic acid denaturation temperature as the second temperature in (b) (ii) and subsequently from the nucleic acid denaturation temperature to the above Switching the temperature of the reaction vessel to a first temperature;
Switching of the reaction vessel temperature from the nucleic acid elongation reaction temperature as the first temperature to the nucleic acid annealing temperature as the second temperature in (b) (ii) above, and subsequently from the nucleic acid annealing temperature to the above It is also possible to repeat switching the temperature of the reaction vessel to the first temperature alternately at a predetermined time interval.

さらに本装置を用いて、融解曲線測定を行う方法であって、
(a)核酸を含むサンプル液をウェルに配置する工程、
(b)第1の温度としての核酸の伸長反応温度から、第2の温度としての(i)核酸の変性温度または(ii)核酸の変性温度もしくは核酸のアニーリング温度への反応槽の温度の切り替えを行う工程、
(c)引き続き上記第2の温度から上記第1の温度への上記反応槽の温度の切り替えを行う工程、ならびに
(d)工程(b)および工程(c)を所定の時間間隔で所定回繰り返す工程、
(e)反応後のPCR産物をたとえば60℃から90℃の間で毎分5℃以下の低速の一定速度での熱変化で熱処理、解離し、その間の蛍光強度の変化とそのときのサンプル液の温度をモニタリングする工程(非特異な産物が含まれると複数のピークが生じるので,産物の特異性を確認することができる)
を含み、
上記第2の温度から上記第1の温度への上記反応槽の温度の切り替えが、上記熱電素子の動作をオフにすることによって行われる、方法も可能である。
Furthermore, a method for measuring a melting curve using this apparatus,
(A) placing a sample solution containing nucleic acid in a well;
(B) Switching the reaction vessel temperature from the nucleic acid elongation reaction temperature as the first temperature to (i) the nucleic acid denaturation temperature or (ii) the nucleic acid denaturation temperature or the nucleic acid annealing temperature as the second temperature. The process of performing,
(C) the step of subsequently switching the temperature of the reaction vessel from the second temperature to the first temperature, and (d) repeating step (b) and step (c) a predetermined number of times at predetermined time intervals Process,
(E) The PCR product after the reaction is heat-treated and dissociated by a thermal change at a constant rate of 5 ° C./min or less between 60 ° C. and 90 ° C., for example, and the change in fluorescence intensity and the sample solution at that time The process of monitoring the temperature of the product (multiple peaks occur when non-specific products are included, so the specificity of the product can be confirmed)
Including
A method is also possible in which switching of the temperature of the reaction vessel from the second temperature to the first temperature is performed by turning off the operation of the thermoelectric element.

図32は、核酸を含むサンプル液を容れるための1または複数のウェルを備えた反応槽(reaction vessel)について、サンプル液をウェル表面に、より広い表面積で接触することができるように親水性処理を行い、周囲を疎水処理したウェルの構造およびサンプル液の形状についての一例を模式的に示した図である。図32Aは、図3Aでも示したサンプル液を配置する反応槽のさまざまな形状のいくつかの例を示したものであるが、サンプル液が載らない部位311には、テフロンコーティング等の疎水処理を行うことで疎水領域を作り、サンプル液を配置する部分の表面(内面)312に、たとえば水酸基等をコーティングすることで親水性処理を行うことで、図32Bに示したように、サンプル液をサンプル液を配置する部分の表面(内面)312になるべく広く伸展させることができ、熱交換を行うサンプル液を配置する部分の表面(内面)312との接触面積の増大によってより効率的にサンプル液の熱交換を進めることができる。他方、サンプル液が載らない部位311には、テフロンコーティング等の疎水処理を行うことで、サンプル液がウェルから漏れでないようにすることが可能となる。   FIG. 32 shows a reaction vessel having one or a plurality of wells for containing a sample solution containing nucleic acid so that the sample solution can be brought into contact with the well surface with a larger surface area. It is the figure which showed typically an example about the structure of a well and the shape of the sample liquid which performed the periphery and performed the hydrophobic process. FIG. 32A shows some examples of various shapes of the reaction vessel in which the sample liquid is also arranged as shown in FIG. 3A. However, hydrophobic treatment such as Teflon coating is applied to the portion 311 where the sample liquid is not placed. As shown in FIG. 32B, the sample solution is sampled as shown in FIG. 32B by creating a hydrophobic region and performing hydrophilic treatment by coating the surface (inner surface) 312 of the portion where the sample solution is placed, for example, with a hydroxyl group or the like. The surface (inner surface) 312 of the portion on which the liquid is disposed can be extended as widely as possible, and the sample liquid can be more efficiently transferred by increasing the contact area with the surface (inner surface) 312 of the portion on which the heat exchange is performed. Heat exchange can proceed. On the other hand, it is possible to prevent the sample liquid from leaking from the well by performing a hydrophobic treatment such as Teflon coating on the portion 311 where the sample liquid is not placed.

本発明は、サンプルの温度を厳密に制御することが求められる反応を行うための反応装置として有用である。本発明はまた、サンプルの温度変更を迅速に行うことが求められる反応を行うための反応装置として有用である。   The present invention is useful as a reaction apparatus for carrying out a reaction required to strictly control the temperature of a sample. The present invention is also useful as a reaction apparatus for carrying out a reaction required to rapidly change the temperature of a sample.

本発明は特に、高速、高精度、高増幅率のPCR反応を行うことができるPCR装置として有用である。本発明の装置はまた、小型化が可能なため、ポータブルPCR装置として有用である。   The present invention is particularly useful as a PCR apparatus capable of performing PCR reactions with high speed, high accuracy, and high amplification rate. Since the apparatus of the present invention can be miniaturized, it is useful as a portable PCR apparatus.

1 反応槽
2 反応槽枠
3 熱交換槽
4 液体リザーバタンク
5 熱源
6 攪拌機構
7 ポンプ
8 切り替えバルブ
9 バイパス流路
90 ジョイント
10 補助温度制御機構
11 インレットA
12 インレットB
13 アウトレットA
14 アウトレットB
15 連結チューブ
16 温度センサー
17 補助液体放熱機構
18 液体の流れの方向
19 ペルチエ温度制御機構
20 液体の流路管
2001 空気の流入管
2002 熱交換槽の液体の排出管
2003 圧力リーク弁
21,22,23,24,26,231 反応槽
25 凍結乾燥試薬
27 分注チップ
28 サンプル
29 繊維玉
31 反応槽
32 反応槽枠
33 反応槽受け口
34 ネジ山
35 シール
36 テーパー状反応槽枠
37,38 熱交換槽
41 インレットバルブA
42 アウトレットバルブA
43 インレットバルブB
44 アウトレットバルブB
51 スライドガラス型反応槽枠
52,58 熱交換槽の反応槽受け口
53 ガイドレール
54 シール
55 スライド受け口
56 ヒンジ
59 反応槽
61 インレットA
62 アウトレットA
63 インレットB
64 アウトレットB
65 ピストン
66 反応槽
67 熱交換槽
71 ピストン
72 ピストンロッド
73 ピストン
74 磁石
75 電磁コイル
76 ピストン
81 回転弁
82 回転軸
83 熱交換槽
84 反応槽
91 インレットA
92 アウトレットA
93 インレットB
94 アウトレットB
95 メンブランA
96 メンブランB
97 反応槽
98 熱交換槽
101 ロータリーバルブ
102 溝
103 熱交換槽
104 インレットA
105 アウトレットA
106 インレットB
107 アウトレットB
108 流路
109 反応槽
110 温度
111 経過時間
201 蛍光検出器
202 制御解析部
203 制御信号
204 光学窓
1010 Oリング
1011 ガイドレール
1012 逆転写反応用温度プレート
1013 ガラス板
1014 透明電極
1015 反応槽部
1016 逆転写反応槽部
1101 反応槽
1102 反応ウェル
1201 蛍光検出プローブ
1202 蛍光検出プローブの走査方向
1203 アレイ化した蛍光検出プローブ
1301 ピラー
1302 蒸発防止用シール
1303 PCR溶液
1304 インターカレーター
1305 蛍光プローブ
1306 DNAプローブ
1401 マイクロ流路型反応槽
1402 マイクロ流路
1403 流路形成用高分子
1404 反応槽
1405 サンプル注入口
1406 サンプル回収用空気だめ
1407 反応液リザーバ
1408 サンプル排出口
1411 シリンジポンプ
1501…照明用光源(ハロゲンランプなど)
1502…コンデンサレンズ
1503…自動XYステージ
1504…X軸用モーター
1505…Y軸用モーター
1506…ステージヒーター
1507…反応ウェルプレート
1508…対物レンズ
1509…赤外レーザ用ダイクロイックミラー
1510…赤外レーザ
1511…ビームエキスパンダー
1512…レーザシャッター
1513…モーター(ステッピングモーターなど)
1514…シャフト
1515…グラデーションNDフィルター
1516…蛍光励起光用ダイクロイックミラー
1517…蛍光励起用光源(水銀ランプなど)
1518…蛍光励起光源用シャッター
1519…蛍光励起光用投光レンズ
1520…カメラ用ダイクロイックミラー
1521…結像レンズ
1522…画像観察用カメラ(冷却CCDなど)
2401…DNA反応チップ容器
2402…熱伝導用薄板
2403…ペルチエ素子
2404…ヒートシンク
2405…電熱線
2406、2407…温度センサー
2408…観察窓
2409…蛍光検出モジュール
2800…ヒートシンク
2801…高速循環する水等の熱交換媒体に対して熱交換を行うリザーバー
2802…ペルチエ素子等の温度制御可能な発熱源
2803…リザーバー2801に水等の熱交換媒体を導入するインレット
2804…リザーバー2801から温度制御された水等の熱交換媒体を排出するアウトレット
2901…ピラー
311…サンプル液が載らない部位
312…サンプル液を配置する部分の表面(内面)
313…サンプル液
3801−3805…LED(もしくはレーザ)光源
3806−3810…光源コントローラ
3811−3815…蛍光検出器
3816…レンズ
3817…蛍光フィルタ
3818、3819…光ファイバ
3820…集光用マイクロレンズ
3821…コリメーターレンズあるいは集光レンズ
3822…蛍光検出コントロールユニット
3823…試料温度計
DESCRIPTION OF SYMBOLS 1 Reaction tank 2 Reaction tank frame 3 Heat exchange tank 4 Liquid reservoir tank 5 Heat source 6 Stirring mechanism 7 Pump 8 Switching valve 9 Bypass flow path 90 Joint 10 Auxiliary temperature control mechanism 11 Inlet A
12 Inlet B
13 Outlet A
14 Outlet B
15 Connecting Tube 16 Temperature Sensor 17 Auxiliary Liquid Heat Dissipating Mechanism 18 Liquid Flow Direction 19 Peltier Temperature Control Mechanism 20 Liquid Channel Pipe 2001 Air Inflow Pipe 2002 Liquid Discharge Pipe 2003 in Heat Exchange Tank Pressure Leak Valves 21, 22 23, 24, 26, 231 Reaction tank 25 Lyophilized reagent 27 Dispensing tip 28 Sample 29 Fiber ball 31 Reaction tank 32 Reaction tank frame 33 Reaction tank receiving port 34 Thread 35 Seal 36 Tapered reaction tank frame 37, 38 Heat exchange tank 41 Inlet valve A
42 Outlet valve A
43 Inlet valve B
44 Outlet valve B
51 Slide Glass Type Reaction Tank Frames 52, 58 Reaction Tank Receiving Port 53 of Heat Exchange Tank 53 Guide Rail 54 Seal 55 Slide Receiving Port 56 Hinge 59 Reaction Tank 61 Inlet A
62 Outlet A
63 Inlet B
64 Outlet B
65 Piston 66 Reaction tank 67 Heat exchange tank 71 Piston 72 Piston rod 73 Piston 74 Magnet 75 Electromagnetic coil 76 Piston 81 Rotary valve 82 Rotating shaft 83 Heat exchange tank 84 Reaction tank 91 Inlet A
92 Outlet A
93 Inlet B
94 Outlet B
95 Membrane A
96 Membrane B
97 Reaction tank 98 Heat exchange tank 101 Rotary valve 102 Groove 103 Heat exchange tank 104 Inlet A
105 Outlet A
106 Inlet B
107 Outlet B
108 Flow path 109 Reaction tank 110 Temperature 111 Elapsed time 201 Fluorescence detector 202 Control analysis section 203 Control signal 204 Optical window 1010 O-ring 1011 Guide rail 1012 Reverse transfer reaction temperature plate 1013 Glass plate 1014 Transparent electrode 1015 Reaction tank section 1016 Reverse rotation Copy reaction tank section 1101 Reaction tank 1102 Reaction well 1201 Fluorescence detection probe 1202 Fluorescence detection probe scanning direction 1203 Arrayed fluorescence detection probe 1301 Pillar 1302 Evaporation prevention seal 1303 PCR solution 1304 Intercalator 1305 Fluorescence probe 1306 DNA probe 1401 Micro flow Road type reaction tank 1402 Micro flow path 1403 Flow path forming polymer 1404 Reaction tank 1405 Sample inlet 1406 Sample collection air reservoir 1407 Reaction liquid reservoir Bas 1408 sample outlet 1411 syringe pump 1501 ... illumination light source (such as a halogen lamp)
1502 ... Condenser lens 1503 ... Automatic XY stage 1504 ... X-axis motor 1505 ... Y-axis motor 1506 ... Stage heater 1507 ... Reaction well plate 1508 ... Objective lens 1509 ... Infrared laser dichroic mirror 1510 ... Infrared laser 1511 ... Beam Expander 1512 ... Laser shutter 1513 ... Motor (stepping motor, etc.)
1514 ... Shaft 1515 ... Gradation ND filter 1516 ... Dichroic mirror 1517 for fluorescence excitation light ... Light source for fluorescence excitation (mercury lamp, etc.)
1518 ... Fluorescence excitation light source shutter 1519 ... Fluorescence excitation light projection lens 1520 ... Camera dichroic mirror 1521 ... Imaging lens 1522 ... Image observation camera (cooling CCD, etc.)
2401 ... DNA reaction chip container 2402 ... heat conduction thin plate 2403 ... Peltier element 2404 ... heat sink 2405 ... heating wire 2406, 2407 ... temperature sensor 2408 ... observation window 2409 ... fluorescence detection module 2800 ... heat sink 2801 ... heat of water circulating at high speed Reservoir 2802 for exchanging heat to the exchange medium. Temperature controllable heat source 2803 such as a Peltier element. Inlet 2804 for introducing a heat exchange medium such as water into the reservoir 2801. Heat of water or the like whose temperature is controlled from the reservoir 2801. Outlet 2901 for discharging the exchange medium ... pillar 311 ... part 312 on which the sample liquid is not placed ... surface (inner surface) of the part on which the sample liquid is placed
313: Sample liquid 3801-3805 ... LED (or laser) light source 3806-3810 ... Light source controller 3811-3815 ... Fluorescence detector 3816 ... Lens 3817 ... Fluorescence filter 3818, 3819 ... Optical fiber 3820 ... Condensing microlens 3821 ... Collision Meter lens or condenser lens 3822 ... Fluorescence detection control unit 3823 ... Sample thermometer

Claims (10)

核酸を含むサンプル液を容れるための1または複数のウェルを備えた反応槽と、
ヒートシンクまたは熱交換槽と、
前記ヒートシンクまたは前記熱交換槽を第1の温度に保つように構成された、該ヒートシンクまたは該熱交換槽の温度制御装置と、
前記ヒートシンクまたは前記熱交換槽と前記反応槽との間に配置された、前記ヒートシンクまたは熱交換槽と前記反応槽との間の熱の移動を媒介する熱電素子と、
前記熱電素子の動作を制御することにより、前記反応槽の温度を前記第1の温度と第2の温度との間で変化させる熱電素子制御装置と、
前記反応槽に備えられた1または複数の前記ウェル中の前記核酸を含む前記サンプル液の蛍光強度変化を計測する手段と
を備え、
前記熱電素子の動作がオフのときに、前記反応槽の温度が前記第1の温度となるように構成されている、遺伝子解析または遺伝子増幅のための装置。
A reaction vessel with one or more wells for containing a sample solution containing nucleic acid;
A heat sink or heat exchange bath,
A temperature control device for the heat sink or the heat exchange bath configured to maintain the heat sink or the heat exchange bath at a first temperature;
A thermoelectric element that mediates heat transfer between the heat sink or the heat exchange tank and the reaction tank, disposed between the heat sink or the heat exchange tank and the reaction tank;
A thermoelectric control device that changes the temperature of the reaction vessel between the first temperature and the second temperature by controlling the operation of the thermoelectric element;
Means for measuring a change in fluorescence intensity of the sample solution containing the nucleic acid in one or more of the wells provided in the reaction vessel,
An apparatus for gene analysis or gene amplification configured such that the temperature of the reaction vessel becomes the first temperature when the operation of the thermoelectric element is off.
蛍光強度変化を計測する手段として、
前記サンプル液に対して照射するための1つ以上の蛍光光源、それぞれの波長の光を伝導する光ファイバー、および照射部位において観察対象に光を集束させる集光用レンズを含む光学系と、
前記サンプル液の蛍光強度を検出するための蛍光を伝導する、1つ以上の蛍光波長の各々に対応した光ファイバーと光ファイバーの後段に配置された特定の蛍光波長を通過させるバンドパスフィルターと蛍光検出器からなる前記細胞に結合した蛍光標識物質の蛍光強度を同時に取得する検出系とを有する、請求項1に記載の装置。
As a means of measuring changes in fluorescence intensity,
An optical system including one or more fluorescent light sources for irradiating the sample liquid, an optical fiber that conducts light of each wavelength, and a condensing lens that focuses the light on the observation target at the irradiation site;
An optical fiber corresponding to each of one or more fluorescent wavelengths, a bandpass filter that passes a specific fluorescent wavelength disposed downstream of the optical fiber, and a fluorescence detector that conducts fluorescence for detecting the fluorescence intensity of the sample liquid The detection apparatus which acquires simultaneously the fluorescence intensity of the fluorescence label | marker substance couple | bonded with the said cell which consists of these.
前記サンプル液に対して照射するための1つ以上の蛍光光源として、強度可変調整機能を付加したLED光源と、
2つ以上の蛍光光源を用いる場合は、各々の蛍光光源の光強度を同じ強度に揃える機能、あるいは各単色光波長の励起光に対する蛍光感度の違い、あるいは蛍光強度の違いにあわせて各波長が同程度の検出感度を有するように各単色光単位で強度のバランスを調整する機能と、連続光からたとえば10ms以下のパルス光までの照射時間を可変に調整し、かつ、連続処理をする機能を有する、蛍光検出コントロールユニットとを備える、請求項1または2に記載の装置。
As one or more fluorescent light sources for irradiating the sample liquid, an LED light source with an intensity variable adjustment function,
When two or more fluorescent light sources are used, each wavelength varies depending on the function of aligning the light intensities of the respective fluorescent light sources, the difference in fluorescence sensitivity to the excitation light of each monochromatic light wavelength, or the difference in fluorescence intensity. A function to adjust the intensity balance for each monochromatic light unit so as to have the same level of detection sensitivity, and a function to variably adjust the irradiation time from continuous light to pulse light of 10 ms or less, and to perform continuous processing The apparatus according to claim 1, further comprising a fluorescence detection control unit.
前記該ヒートシンクまたは該熱交換槽の温度制御装置(temperature controller)において、高速循環する水等の熱交換媒体に対して熱交換表面において目的温度に制御され設定されたペルチエ素子等の温度制御可能な発熱源と広面積で接触する熱交換部を備える、請求項1〜3のいずれかに記載の装置。   In the temperature controller of the heat sink or the heat exchange tank, the temperature of a Peltier element or the like that is controlled and set to a target temperature on a heat exchange surface with respect to a heat exchange medium such as water circulating at high speed can be controlled. The apparatus in any one of Claims 1-3 provided with the heat exchange part which contacts a heat-generation source with a large area. 前記熱交換部において、ペルチエ素子等の温度制御可能な発熱源との接触面から5mm以内の高さを有する熱交換用容器を備える、請求項4に記載の装置。   The apparatus of Claim 4 provided with the container for heat exchange which has the height within 5 mm from the contact surface with the heat-controllable heat sources, such as a Peltier element, in the said heat exchange part. 前記熱交換部において、ペルチエ素子等の温度制御可能な発熱源との接触面積を増大させるために熱交換領域内に高速液体の循環を妨げない1つ以上の支柱型熱交換用ピラーを容器内に配置した熱交換用容器を備える、請求項4または5に記載の装置。   In the heat exchanging unit, in order to increase a contact area with a heat source capable of controlling temperature such as a Peltier element, one or more pillar type heat exchanging pillars that do not hinder circulation of high-speed liquid in the heat exchanging region are provided in the container. The apparatus of Claim 4 or 5 provided with the container for heat exchange arrange | positioned in. 前記核酸を含むサンプル液を容れるための1または複数のウェルを備えた反応槽内において、ウェル表面に、サンプル液をより広い表面積で接触することができるように親水性処理を行ったことを特徴とする、請求項1〜6のいずれかに記載の装置。   In the reaction vessel provided with one or a plurality of wells for containing the sample solution containing the nucleic acid, hydrophilic treatment is performed so that the sample solution can be brought into contact with the surface of the well with a wider surface area. The apparatus according to any one of claims 1 to 6. 前記核酸を含むサンプル液を容れるための1または複数のウェルを備えた反応槽において、サンプル液がウェル外に漏れ出ることを防ぐためにウェル外の表面に疎水性処理を施したことを特徴とする、請求項1〜7のいずれかに記載の装置。   In the reaction vessel having one or a plurality of wells for containing the sample solution containing the nucleic acid, the surface outside the well is subjected to hydrophobic treatment in order to prevent the sample solution from leaking out of the well. The apparatus according to claim 1. 前記第1の温度が、核酸の伸長反応温度であり、
前記第2の温度が、(i)核酸の変性温度、または(ii)核酸の変性温度もしくは核酸のアニーリング温度である、請求項1〜8のいずれかに記載の装置。
The first temperature is a nucleic acid elongation reaction temperature;
The apparatus according to any one of claims 1 to 8, wherein the second temperature is (i) a nucleic acid denaturation temperature, or (ii) a nucleic acid denaturation temperature or a nucleic acid annealing temperature.
前記請求項1〜9のいずれかに記載の装置を用いて、融解曲線測定を行う方法であって、
(a)核酸を含むサンプル液をウェルに配置する工程、
(b)第1の温度としての核酸の伸長反応温度から、第2の温度としての(i)核酸の変性温度または(ii)核酸の変性温度もしくは核酸のアニーリング温度への反応槽の温度の切り替えを行う工程、
(c)引き続き前記第2の温度から前記第1の温度への前記反応槽の温度の切り替えを行う工程、ならびに
(d)工程(b)および工程(c)を所定の時間間隔で所定回繰り返す工程、
(e)反応後のPCR産物をたとえば60℃から90℃の間で毎分5℃以下の低速の一定速度での熱変化で熱処理、解離し、その間の蛍光強度の変化とそのときのサンプル液の温度をモニタリングする工程(非特異な産物が含まれると複数のピークが生じるので,産物の特異性を確認することができる)
を含み、
前記第2の温度から前記第1の温度への前記反応槽の温度の切り替えが、前記熱電素子の動作をオフにすることによって行われる、方法。
A method for measuring a melting curve using the apparatus according to any one of claims 1 to 9,
(A) placing a sample solution containing nucleic acid in a well;
(B) Switching the reaction vessel temperature from the nucleic acid elongation reaction temperature as the first temperature to (i) the nucleic acid denaturation temperature or (ii) the nucleic acid denaturation temperature or the nucleic acid annealing temperature as the second temperature. The process of performing,
(C) a step of subsequently switching the temperature of the reaction vessel from the second temperature to the first temperature, and (d) repeating step (b) and step (c) a predetermined number of times at predetermined time intervals Process,
(E) The PCR product after the reaction is heat-treated and dissociated by a thermal change at a constant rate of 5 ° C./min or less between 60 ° C. and 90 ° C., for example, and the change in fluorescence intensity and the sample solution at that time The process of monitoring the temperature of the product (multiple peaks occur when non-specific products are included, so the specificity of the product can be confirmed)
Including
The method wherein switching the temperature of the reaction vessel from the second temperature to the first temperature is performed by turning off the operation of the thermoelectric element.
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Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN107976402A (en) * 2017-10-19 2018-05-01 广州市第人民医院 It is a kind of based on the modularization bio-analysis system of droplet array chip and its application
KR101870788B1 (en) 2017-03-17 2018-06-25 에스케이텔레콤 주식회사 System for detecting fluorescence of nucleic acids
KR20220061504A (en) * 2020-11-06 2022-05-13 (주)바이오젠텍 Fluorescent multiplex isothermal thermocycler

Families Citing this family (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN110603315B (en) * 2017-06-06 2022-08-09 日本板硝子株式会社 Reaction processing apparatus
CN108730661B (en) * 2018-08-15 2023-09-15 河北科瑞达仪器科技股份有限公司 Pipeline liquid detection structure capable of refluxing
CN111607509B (en) * 2019-02-22 2023-04-07 西安天隆科技有限公司 Automatic amplification and detection device for digital PCR
WO2020189581A1 (en) * 2019-03-15 2020-09-24 国立研究開発法人産業技術総合研究所 Nucleic acid amplification method

Family Cites Families (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
ATE251496T1 (en) * 1997-03-28 2003-10-15 Pe Corp Ny EQUIPMENT FOR THERMOCYCLING DEVICES FOR PCR
US20040241048A1 (en) * 2003-05-30 2004-12-02 Applera Corporation Thermal cycling apparatus and method for providing thermal uniformity
WO2009011942A2 (en) * 2007-04-04 2009-01-22 Network Biosystems, Inc. Methods for rapid multiplexed amplification of target nucleic acids
JP5178086B2 (en) * 2007-08-09 2013-04-10 キヤノン株式会社 Temperature control apparatus and temperature control method
JP5912034B2 (en) * 2011-11-28 2016-04-27 公益財団法人神奈川科学技術アカデミー Liquid reflux type high-speed gene amplification device
JP6027321B2 (en) * 2012-03-06 2016-11-16 公益財団法人神奈川科学技術アカデミー High-speed gene amplification detector

Cited By (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
KR101870788B1 (en) 2017-03-17 2018-06-25 에스케이텔레콤 주식회사 System for detecting fluorescence of nucleic acids
CN107976402A (en) * 2017-10-19 2018-05-01 广州市第人民医院 It is a kind of based on the modularization bio-analysis system of droplet array chip and its application
CN107976402B (en) * 2017-10-19 2021-06-04 广州市第一人民医院 Modular biological analysis system based on liquid drop array chip and application thereof
KR20220061504A (en) * 2020-11-06 2022-05-13 (주)바이오젠텍 Fluorescent multiplex isothermal thermocycler
KR102503418B1 (en) 2020-11-06 2023-02-27 (주)바이오젠텍 Fluorescent multiplex isothermal thermocycler

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