JP2015052505A - Viability method of acanthamoeba (cyst) - Google Patents

Viability method of acanthamoeba (cyst) Download PDF

Info

Publication number
JP2015052505A
JP2015052505A JP2013184912A JP2013184912A JP2015052505A JP 2015052505 A JP2015052505 A JP 2015052505A JP 2013184912 A JP2013184912 A JP 2013184912A JP 2013184912 A JP2013184912 A JP 2013184912A JP 2015052505 A JP2015052505 A JP 2015052505A
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
cyst
acanthamoeba
medium
nutrient
cysts
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Pending
Application number
JP2013184912A
Other languages
Japanese (ja)
Inventor
敏伸 洲▲崎▼
Toshinobu Suzaki
敏伸 洲▲崎▼
早川 昌志
Masashi Hayakawa
昌志 早川
英郎 筏
Hideo Ikada
英郎 筏
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
EIKOH CO Ltd
Kobe University NUC
Original Assignee
EIKOH CO Ltd
Kobe University NUC
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by EIKOH CO Ltd, Kobe University NUC filed Critical EIKOH CO Ltd
Priority to JP2013184912A priority Critical patent/JP2015052505A/en
Publication of JP2015052505A publication Critical patent/JP2015052505A/en
Pending legal-status Critical Current

Links

Landscapes

  • Agricultural Chemicals And Associated Chemicals (AREA)
  • Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Apparatus For Disinfection Or Sterilisation (AREA)

Abstract

PROBLEM TO BE SOLVED: To provide a test method or the like that can assay life and death about Acanthamoeba (cyst) easily and reliably.SOLUTION: A test method includes: (1) a cyst culture preparation step of preparing a cyst culture by growing Acanthamoeba on a solid medium for growth obtained by adding a substance serving as bait of trophozoite ameba, and by making a cyst exist by bringing all Acanthamoeba into cyst configuration, with degradation of the breeding condition due to the decrease of the bait; (2) an exposure step of immersing the cyst culture in a test liquid containing a test substance; (3) a trophozoite derivation step of deriving the trophozoite ameba from the cyst configuration, by placing the cyst culture passed through the exposure step on a nutrient agar and culturing it; and (4) an evaluation step of calculating a de-cyst rate by counting a de-cyst count showing the trophozoite ameba grown from the cyst configuration and being the number of de-cyst traces, and a non-de-cyst count being the number of non-de-cysts remaining as the cyst configuration, after a constant period of time elapses from the implementation of the trophozoite derivation step.

Description

本発明は、アカントアメーバ(・シスト)の生死判別方法に関する。   The present invention relates to a method for discriminating the life and death of an acanthamoeba.

コンタクトレンズの普及に伴い、アカントアメーバによる角膜感染症が増加している。アカントアメーバは土壌や環境水中に広く生息する小型の自由生活性アメーバであり、生育条件の良いときは栄養体となり、運動性を有し、分裂増殖を行う。栄養体は膜の透過性が高いため、薬剤にも高い感受性を有する。一方、生育条件が悪化すると、アカントアメーバは二重壁を有するシストとなる。シスト化したアメーバは耐乾性、耐熱性、耐薬品性を有し、各種治療に抵抗する。また、シスト化すると、空気中を散布・拡散しながら環境の変化を待ち、良好な環境に至ったときに、脱シストして栄養体となる。   With the spread of contact lenses, corneal infections due to Acanthamoeba are increasing. Acanthamoeba is a small free-living amoeba that inhabits widely in soil and environmental waters. When it is in good growth conditions, it becomes a nutrient, has motility, and divides and proliferates. Nutrients are highly sensitive to drugs due to their high membrane permeability. On the other hand, when the growth conditions deteriorate, Acanthamoeba becomes a cyst having a double wall. The cysted amoeba has resistance to dryness, heat resistance, and chemical resistance and resists various treatments. In addition, when cysts are formed, they wait for changes in the environment while spraying and diffusing in the air, and when they reach a favorable environment, they are decysted and become nutrients.

アカントアメーバが角膜に侵入すると、アメーバは角膜上皮内で増殖するが、炎症反応が起こるとシスト化して反応から逃れ、炎症が静まると再び栄養体となって増殖すると考えられている(国民生活センター報告)。アカントアメーバの感染経路として、ソフトコンタクトレンズを介した感染が疑われており、その理由として、ソフトコンタクトレンズの不完全な消毒、使用者のコンプライアンスの問題などが挙げられている。ソフトコンタクトレンズ用消毒剤の消毒効果試験において、細菌および真菌については、ISO/FDIS 14729(Ophthalmic optics-Contact lens care products-Microbiological requirements and test methods for products and regimens for hygienic management of contact lens)が定法として知られている。しかしながら、アメーバに対する試験法は定まっていない。   When Acanthamoeba invades the cornea, it grows in the corneal epithelium, but when it undergoes an inflammatory reaction, it becomes cystic and escapes from the reaction. report). As an infection route for Acanthamoeba, infection via a soft contact lens is suspected, and the reasons include incomplete disinfection of soft contact lenses and user compliance problems. In the disinfection test of disinfectants for soft contact lenses, ISO / FDIS 14729 (Ophthalmic optics-Contact lens care products-Microbiological requirements and test methods for products and regimens for hygienic management of contact lens) is the standard method for bacteria and fungi. Are known. However, no test method for amoeba has been established.

アメーバに対する消毒効果試験について、多くの研究者はISO14729を参照としている。簡単に説明すると、アメーバを消毒液と一定時間接触させた後、その生存率を算出するという方法である。しかし、静置接触させるためにアメーバが沈殿してしまうため、消毒液の効果が正しく評価されているか不明である。また、ISO14729は細菌や真菌など、容易に生死が判定できる生物に対して考案されているため、シスト化したアメーバに対して判定することは難しく、評価の際には脱シストしたことを確認する必要がある。更に、脱シストしたアメーバは分裂増殖するため、定量的な評価をすることは困難となる。
このような状況に鑑み、アカントアメーバに特化した測定方法が開発されている(特許文献1)。この技術では、2種以上のアカントアメーバに特異的に反応するIgM型モノクローナル抗体を使用することで、栄養体のアメーバを迅速・的確に検出するものであった。
Many researchers refer to ISO14729 for disinfection test on amoebae. Briefly, the survival rate is calculated after contacting the amoeba with the disinfecting solution for a certain period of time. However, since the amoeba precipitates due to the stationary contact, it is unclear whether the effect of the disinfectant is correctly evaluated. In addition, ISO14729 is designed for organisms that can be easily determined for life and death, such as bacteria and fungi, so it is difficult to determine against cystized amoeba, and it is confirmed that it has been decysted at the time of evaluation. There is a need. Furthermore, since the desiccated amoeba divides and proliferates, it is difficult to make a quantitative evaluation.
In view of such a situation, a measurement method specialized for Acanthamoeba has been developed (Patent Document 1). In this technique, an amoebae of a vegetative body is detected quickly and accurately by using an IgM type monoclonal antibody that specifically reacts with two or more types of Acanthamoeba.

特開平9−105751号公報Japanese Patent Laid-Open No. 9-105751

アカントアメーバによる角膜炎の特徴としては、ソフトコンタクトレンズによる被害が多いという点が挙げられる。ソフトコンタクトレンズは、未装着時に消毒液によって消毒されているが、この消毒液は、細菌・真菌に対する消毒性を備えているものの、アメーバ用には設計されていない。特に、シスト形態のアメーバに対しては、効率的な殺菌剤が存在しない。
このように、アカントアメーバに対しては、消毒効果試験方法が定まっていないため、より簡便で正しく評価できる方法の構築が必要とされていた。
本発明は、上記した事情に鑑みてなされたものであり、その目的は、シスト形態のアカントアメーバについて、効果的な消毒剤を評価できる試験方法などを提供することである。
A characteristic of keratitis caused by Acanthamoeba is that there is much damage caused by soft contact lenses. Soft contact lenses are disinfected with a disinfectant when not worn, but this disinfectant is not designed for amoeba although it has disinfection against bacteria and fungi. In particular, there is no effective disinfectant for cystic amoeba.
As described above, since a disinfection effect test method has not been established for Acanthamoeba, it is necessary to construct a method that can be more simply and correctly evaluated.
The present invention has been made in view of the above-described circumstances, and an object thereof is to provide a test method or the like that can evaluate an effective disinfectant for a cyst-type acanthamoeba.

上記目的を達成するための発明に係るアカントアメーバについての試験方法は、(1)栄養体アメーバの餌となる物質を添加した増殖用の固形培地上でアカントアメーバを増殖させ、前記餌の減少による飼育条件の悪化に伴い、全てのアカントアメーバをシスト形態とさせることで、シストを存在させたシスト培地を作成するシスト培地作成工程、(2)被験物質を含有した試験液中に、前記シスト培地を浸漬する暴露工程、(3)前記暴露工程を経たシスト培地を栄養寒天培地上に載置して培養することで、シスト形態から栄養体アメーバを誘導する栄養体誘導工程、及び(4)前記栄養体誘導工程の実施から一定時間の経過後、シスト形態から栄養体アメーバとなったことを示す脱シスト跡の個数である脱シスト数と、依然としてシスト形態のままの未脱シストの個数である未脱シスト数とを計数し、脱シスト率を算出する評価工程を備えたことを特徴とする。   The test method for Acanthamoeba according to the invention for achieving the above object is as follows: (1) Growing Acanthamoeba on a solid medium for growth to which a substance serving as a feed for a nutritional amoeba is added, and reducing the feed A cyst medium preparation step for preparing a cyst medium in which cysts are present by causing all Acanthamoeba to have a cyst form as the breeding conditions deteriorate, and (2) the cyst medium in a test solution containing a test substance. (3) a nutrient induction process for inducing a vegetative amoeba from a cyst form by placing and culturing the cyst medium after the exposure process on a nutrient agar medium, and (4) After a certain period of time from the implementation of the nutrient induction process, the number of desist, which is the number of desist marks indicating that the cyst form has become a nutrient amoeba, and the cyst Counting the non-de-cyst number and which is the number of missing de cysts remain state, characterized by comprising an evaluation step of calculating a de-cyst rate.

「固形培地」とは、アカントアメーバの培養に使用する固体の物質を意味する。このような固形培地としては、寒天培地、ソフトコンタクトレンズ(非含水タイプ、含水タイプ、シリコーンハイドロゲルタイプ)、ハードコンタクトレンズ、酸素透過性ハードコンタクトレンズなどを用いることができる。
「アメーバの餌」としては、生物の生体(バクテリアなど)、生物の乾燥物、人工栄養物などを用いることができる。なお、アメーバの餌が多すぎる場合には、アカントアメーバが、シストとならない場合があり得るので、適宜に増減して好ましい条件を設定する。固形培地として、寒天培地を用いる場合には、適当量のバクテリアを寒天培地上に塗布することが好ましい。
“Solid medium” means a solid substance used for cultivation of Acanthamoeba. As such a solid medium, an agar medium, a soft contact lens (non-water-containing type, water-containing type, silicone hydrogel type), a hard contact lens, an oxygen-permeable hard contact lens, or the like can be used.
As the “food of amoeba”, living organisms (such as bacteria), dried organisms, artificial nutrients, and the like can be used. In addition, when there is too much amoeba bait, an acanthamoeba may not become a cyst, Therefore It increases / decreases suitably and a preferable condition is set. When an agar medium is used as the solid medium, it is preferable to apply an appropriate amount of bacteria on the agar medium.

「脱シスト」とは、シストから栄養体に変化したシストを意味する。脱シストした跡を観察すると、(栄養体は同定できないが)シストの抜け殻として観察される。
「未脱シスト」とは、栄養体に変化できなかったシストを意味する。未脱シストを観察すると、抜け殻ではなくシストのままであり、死滅して栄養体アメーバになれなかったことが分かる。
「脱シスト率」とは、観察された全シスト数(脱シスト数+未脱シスト数)のうち、生存していた数(脱シスト数)を意味する。百分率として表すときには、「100×脱シスト数/(未脱シスト数+脱シスト数)」にて算出できる。
また、本発明に係る第二の発明は、上記試験方法を実施するための試験用キットであって、シスト培地と、試験液を調製するための基礎緩衝液と、暴露工程に使用する多穴プレートとを備えたことを特徴とする。
また、本発明に係る第三の発明は、上記試験方法によって選択されたことを特徴とするアカントアメーバのシストに対して抗菌性を示す抗シスト薬剤であることを特徴とする。
“Decysting” means a cyst that has changed from a cyst to a nutrient. Observing the desiccated trace, it is observed as a cyst shell (although no nutrients can be identified).
“Non-deprived cyst” means a cyst that could not be changed into a nutrient. Observing the unprolapsed cysts reveals that it was not a husk but remained a cyst and died and could not become a nutrient amoeba.
The “desisting rate” means the number of surviving (the number of desisting) out of the total number of cysts observed (the number of desisting + the number of non-desisting cysts). When expressed as a percentage, it can be calculated by “100 × number of desiccated / (number of undescended cysts + number of desistated)”.
The second invention according to the present invention is a test kit for carrying out the above test method, which is a cyst medium, a basic buffer for preparing a test solution, and a multi-hole used in an exposure step. And a plate.
The third invention according to the present invention is an anticyst drug exhibiting antibacterial activity against an Acanthamoeba cyst selected by the above test method.

本発明によれば、シストから脱シストして栄養体となるアカントアメーバについて、シストに対して殺菌効果を示すか否かを検討する被験物質を定量的に評価できる。こうして、ソフトコンタクレンズ消毒剤を含む薬剤の効果を、実際的な使用条件に近い状態で、より簡単な装置構成で評価できる。   ADVANTAGE OF THE INVENTION According to this invention, the test substance which examines whether it shows a bactericidal effect with respect to a cyst about the Acanthamoeba which decysts from a cyst and becomes a nutrient can be evaluated quantitatively. In this way, the effect of the medicine containing the soft contact lens disinfectant can be evaluated with a simpler apparatus configuration in a state close to practical use conditions.

シスト培地作成工程において、バクテリアを塗布した寒天培地上に、アカントアメーバを載置する様子を示す図である。It is a figure which shows a mode that an acanthamoeba is mounted on the agar medium which apply | coated bacteria in the cyst medium preparation process. シスト培地作成工程において、アカントアメーバが栄養体からシストとなる様子を観察した顕微鏡写真図である。(A)培養開始後、20時間程度において、栄養体が増加している様子、(B)培養開始後、1週間程度において、シストが形成されていく様子、(C)培養開始後、2週間程度において、ほぼ全部のアメーバがシストとなった様子をそれぞれ示す写真図である。It is the microscope picture figure which observed a mode that an acanthamoeba turns into a cyst from a nutrient body in a cyst medium preparation process. (A) Nutrients are increasing in about 20 hours after the start of culture, (B) A state in which cysts are formed in about one week after the start of culture, (C) Two weeks after the start of culture It is a photograph figure which shows a mode that almost all amoeba became cyst in the grade. 暴露工程の様子を示す写真図である。(A)シャーレに形成したシスト培地を適当な大きさ(約1cm×1cm)に切り出す様子、(B)切り出したシスト培地を拡大して写した様子、(C)多穴プレートの各ウエルに試験液を添加しておき、切り出したシスト培地を加える様子、(D)上記(C)のシスト培地を拡大して写した様子をそれぞれ示す写真図である。It is a photograph figure which shows the mode of an exposure process. (A) The cyst medium formed in the petri dish is cut out to an appropriate size (about 1 cm × 1 cm), (B) The cut cyst medium is enlarged and copied, (C) Each well of the multi-well plate is tested It is a photograph figure which each shows a mode that the liquid was added and the cut cyst culture medium was added, and (D) the cyst culture medium of said (C) was expanded and copied. シスト培地を浸漬した様子を示す写真図である(矢印の先端には、シスト培地が認められる)。It is a photograph figure which shows a mode that the cyst culture medium was immersed (a cyst culture medium is recognized at the front-end | tip of the arrow). 栄養体誘導工程を実施後、25℃、20時間培養した後、評価工程においてアメーバの様子を観察したときの顕微鏡写真図である。(A)浸漬工程において、試験液として生理食塩水(陰性対照)を用いたときの様子、(B)浸漬工程において、試験液としてシストに効果がある薬剤を用いたときの様子をそれぞれ示す写真図である。なお、図中において、丸印「○」は、脱シスト(殻の痕跡)を示し、星印「☆」は、未脱シストを示す。It is a microscope picture when the state of an amoeba is observed in the evaluation process after culturing at 25 ° C. for 20 hours after performing the nutrient induction process. (A) Photograph when physiological saline (negative control) is used as a test solution in the immersion process, and (B) Photograph showing a state when a drug having an effect on cysts is used as the test liquid in the immersion process. FIG. In the figure, a circle mark “◯” indicates decystation (a trace of the shell), and an asterisk “☆” indicates non-degeneration. 試験例1の結果を示す棒グラフである。6 is a bar graph showing the results of Test Example 1. 試験例2の結果を示す棒グラフである。10 is a bar graph showing the results of Test Example 2.

次に、本発明の実施形態について、図表を参照しつつ説明するが、本発明の技術的範囲は、これらの実施形態によって限定されるものではなく、発明の要旨を変更することなく様々な形態で実施できる。
<アカントアメーバについての試験方法>
1.シスト培地作成工程
固形培地としては、寒天培地、ソフトコンタクトレンズ(非含水タイプ、含水タイプ、シリコーンハイドロゲルタイプ)、ハードコンタクトレンズ、酸素透過性ハードコンタクトレンズなど、様々なものを用いることができる。ここでは、寒天培地を用いる場合について説明する。寒天培地としては、一般にバクテリアなどの培養に使用するもの(約1.5%の寒天濃度で固形化させた培地)を用いることができる。本発明に使用されるシスト培地としては、アカントアメーバがシストを形成する場所(培地表面、或いは表面近傍)を用いれば済むので、表面積が大きいシャーレを用いた寒天培地を使用することが好ましい。寒天培地の製造については、通常の方法に従って行う。
栄養体アメーバの餌としては、バクテリア(大腸菌など)を寒天培地表面に適量だけ塗布する。
Next, embodiments of the present invention will be described with reference to the drawings. However, the technical scope of the present invention is not limited by these embodiments, and various forms can be made without changing the gist of the invention. Can be implemented.
<Test method for Acanthamoeba>
1. Cyst medium preparation process Various things, such as an agar medium, a soft contact lens (a non-water-containing type, a water-containing type, a silicone hydrogel type), a hard contact lens, an oxygen-permeable hard contact lens, can be used as a solid medium. Here, a case where an agar medium is used will be described. As the agar medium, a medium generally used for culturing bacteria or the like (a medium solidified at an agar concentration of about 1.5%) can be used. As the cyst medium used in the present invention, an agar medium using a petri dish having a large surface area is preferably used because a place where the Acanthamoeba forms cysts (the surface of the medium or near the surface) may be used. About manufacture of an agar medium, it carries out in accordance with a normal method.
Appropriate amounts of bacteria (such as Escherichia coli) are applied to the surface of the agar medium as a nutrient amoeba food.

図1に示すように、シャーレ1内にバクテリアを塗布した寒天培地2を形成しておき、アカントアメーバを載置する。載置するアメーバとしては、栄養体またはシスト培地のいずれでも良い。実験時には、常に栄養体を維持しておくことは手間が掛かるので、シスト培地としたものを用いることが好ましい。図1には、予め保存しておいたシスト寒天3を複数個埋め込んだスポンジ4をアカントアメーバとして用いる様子を示している。   As shown in FIG. 1, an agar medium 2 coated with bacteria is formed in a petri dish 1, and an Acanthamoeba is placed thereon. The amoeba to be placed may be either a nutrient body or a cyst medium. During the experiment, it is time-consuming to maintain the nutrients, so it is preferable to use a cyst medium. FIG. 1 shows a state in which a sponge 4 embedded with a plurality of cyst agar 3 stored in advance is used as an acanthamoeba.

図2に示すように、寒天培地を適当な条件下(温度20℃〜40℃(好ましくは20℃〜30℃))で培養すると、栄養体が増殖する(図2(A))。栄養体が増殖して餌が減少すると、飼育条件の悪化に伴い、アカントアメーバはシストに変化していく(条件にも依るが、培養開始から約5日間〜約10日間程度。図2(B))。最終的には、全てのアカントアメーバは、シストとなる(条件にも依るが、培養開始から約10日間〜約3週間程度。図2(C))。こうして、シストを存在させたシスト培地を作成できる。
なお、シャーレを用いてシスト培地を作成したときには、そのままの状態で保存できる。また、次の暴露工程に使用する際の都合を考慮すると、シスト寒天(の表面)を適当な大きさ(例えば、約0.5cm〜1.5cm×0.5cm〜1.5cmの四角形状の底面を持つ六面体)に切り出しておくことが好ましい(図3(A)、(B)を参照)。
As shown in FIG. 2, when the agar medium is cultured under appropriate conditions (temperature 20 ° C. to 40 ° C. (preferably 20 ° C. to 30 ° C.)), nutrients grow (FIG. 2 (A)). When nutrients proliferate and feed decreases, Acanthamoeba changes to cysts as the breeding conditions worsen (depending on conditions, about 5 to about 10 days from the start of culture. FIG. 2 (B )). Eventually, all Acanthamoeba become cysts (although depending on conditions, about 10 days to about 3 weeks from the start of the culture, FIG. 2 (C)). Thus, a cyst medium in which cysts are present can be prepared.
When a cyst medium is prepared using a petri dish, it can be stored as it is. Also, considering the convenience of use in the next exposure step, the cyst agar (the surface) is a hexahedron with an appropriate size (for example, about 0.5 cm to 1.5 cm x 0.5 cm to 1.5 cm). ) Is preferably cut out (see FIGS. 3A and 3B).

2.暴露工程
暴露工程に際しては、シスト寒天の大きさ、試験液の容量、被験物質数などの条件に鑑み、多穴プレート(例えば、12穴、24穴、48穴)を用いることが好ましい。被験物質を含有した試験液中に、適当な大きさに切り出したシスト寒天を浸漬する(図3(C)、(D)、及び図4を参照)。浸漬時間としては、被験物質の性質・濃度、温度などの条件にも依るが、数時間〜数十時間程度(1,2,4,6,8,12,24,48時間程度)浸漬できる。
なお、暴露工程を経た後には、被験物質を洗い流すために、シスト寒天を洗浄することが好ましい(培地洗浄工程)。
2. Exposure process In the exposure process, it is preferable to use a multi-hole plate (for example, 12 holes, 24 holes, 48 holes) in view of conditions such as the size of cyst agar, the volume of the test solution, the number of test substances, and the like. The cyst agar cut out to an appropriate size is immersed in a test solution containing the test substance (see FIGS. 3C, 3D, and 4). Although the immersion time depends on conditions such as the property / concentration and temperature of the test substance, it can be immersed for several hours to several tens of hours (about 1,2,4,6,8,12,24,48 hours).
In addition, after passing through an exposure process, it is preferable to wash cyst agar in order to wash away a test substance (medium washing process).

3.栄養体誘導工程
次いで、シスト寒天を栄養寒天培地上に載置して培養する。栄養寒天培地としては、シスト培地作成工程に使用した寒天培地の他に、栄養成分を増加させた寒天培地(好ましくは安定した合成培地)などを使用できる。適当な条件下で培養する(例えば、20℃〜40℃(好ましくは20℃〜30℃))、約15時間〜24時間程度)ことにより、栄養寒天培地の栄養組成が適切であれば、死亡していないシストは、ほぼ100%の割合で脱シストが誘導され、栄養体となる。
3. Nutrient body induction step Next, cyst agar is placed on a nutrient agar medium and cultured. As the nutrient agar medium, in addition to the agar medium used in the cyst medium preparation step, an agar medium (preferably a stable synthetic medium) with increased nutrient components can be used. If the nutritional composition of the nutrient agar medium is appropriate by culturing under appropriate conditions (for example, about 20 ° C to 40 ° C (preferably 20 ° C to 30 ° C), about 15 hours to 24 hours) The cysts that have not been induced are desiccated at a rate of almost 100% and become nutrients.

4.評価工程
栄養体誘導工程を経た後、拡大鏡(顕微鏡など)を用いて、培地上の脱シスト数(シストから栄養体アメーバとなった脱シスト跡の数)と、未脱シスト数(シスト形態のままのシスト数)とを計数する。未脱シストのものは、シストが盛り上がり、陰影が明瞭である一方、脱シストすると、内容物が脱離して、陰影が不明瞭となり、いわゆる殻の状態となる(図5を参照)。このため、未脱シストと脱シストとを見分けることは容易に行える。図5中において、丸印「○」は、脱シスト(殻の痕跡)、星印「☆」は、未脱シストをそれぞれ示している。
脱シスト数と未脱シスト数から脱シスト率を百分率として算出し[100×脱シスト数/(脱シスト数+未脱シスト数)]、被験物質の効果を比較する。
4). Evaluation process After the nutrient induction process, using a magnifier (microscope, etc.), the number of desist on the medium (the number of desist from traces of cysts that became nutrient amoebae) and the number of undescended cysts (cyst form) The number of cysts). In the case of the non-depleted cyst, the cyst is raised and the shadow is clear, but when decysted, the contents are detached and the shadow becomes unclear, so that a so-called shell state is obtained (see FIG. 5). For this reason, it is easy to distinguish between the undescended cyst and the removed cyst. In FIG. 5, a circle mark “◯” indicates decystation (a trace of the shell), and an asterisk “☆” indicates non-degeneration cyst.
The percentage of desistation is calculated as a percentage from the number of desiccations and the number of undescended cysts [100 × number of desistation / (number of desistation + number of undesisted cysts)], and the effects of the test substance are compared.

次に、実施例を説明することで、本発明を更に詳細に説明する。
<試験例1 パロモマイシン硫酸塩及び塩酸ポリヘキサニドの効果>
上記試験方法に従い、暴露工程における被験物質として、パロモマイシン硫酸塩(PS)及び塩酸ポリヘキサニド(PH)を用い、シストに及ぼす効果について調べた。
被験物質として、PS 0.01% + PH 10ppm, PS 0.01% + PH 100ppm, PS 0.01%, PS 0.1%, PH 10ppm, PH 100ppm及び PH 1000ppm をそれぞれ用いた。各被験物質は、KCM溶液(KCl 0.7g, CaCl2 0.8g, MgSO4・7H2O 0.8gを精製水に溶解して1000mLとし、HEPES-KOHでpH7.0に調製したもの)に溶解し、試験液とした。なお、陰性対照(nothing)として、KCM溶液を用いた。
予め調製しておいたシスト寒天(約1cm×1cm)を使用し、暴露工程において、シスト寒天を各試験液中に24時間浸漬した後、栄養体誘導工程(25℃、20時間)を実施し、未脱シストと脱シストとを計数した。各データから、脱シスト率(%)を求めた。
結果を図6に示した。図より明らかなように、PSのみでは0.1%でシストの殺菌効果(脱シスト率:11%)が認められた。また、PHのみでは、10ppmから殺菌効果が認められ(脱シスト率:75%)、1000ppmでは完全に脱シストが抑制された(脱シスト率:0%)。また、PSとPHとを併用すると、相乗的な効果が認められた。
Next, the present invention will be described in more detail by describing examples.
<Test Example 1 Effect of Paromomycin Sulfate and Polyhexanide Hydrochloride>
According to the test method described above, paromomycin sulfate (PS) and polyhexanide hydrochloride (PH) were used as test substances in the exposure process, and the effects on cysts were examined.
PS 0.01% + PH 10ppm, PS 0.01% + PH 100ppm, PS 0.01%, PS 0.1%, PH 10ppm, PH 100ppm and PH 1000ppm were used as test substances, respectively. Each test substance is dissolved in KCM solution (KCl 0.7g, CaCl 2 0.8g, MgSO 4 · 7H 2 O 0.8g dissolved in purified water to 1000mL, adjusted to pH 7.0 with HEPES-KOH). A test solution was obtained. A KCM solution was used as a negative control.
Using cyst agar prepared in advance (about 1cm x 1cm), in the exposure process, cyst agar was immersed in each test solution for 24 hours, followed by a nutrient induction process (25 ° C, 20 hours). Undecysted and decysted were counted. From each data, the desist rate (%) was calculated.
The results are shown in FIG. As is clear from the figure, PS alone showed a cyst bactericidal effect (desisting rate: 11%) at 0.1%. In addition, with PH alone, a bactericidal effect was observed from 10 ppm (desisting rate: 75%), and 1000 ppm completely suppressed desisting (desisting rate: 0%). In addition, when PS and PH were used in combination, a synergistic effect was observed.

<試験例2 市販のコンタクトレンズ洗浄液の効果>
上記試験方法に従い、暴露工程における被験物質として、市販のコンタクトレンズ洗浄液を用い、シストに及ぼす効果について調べた。
被験物質として、4種類のコンタクトレンズ洗浄液(それぞれsample A〜sample Dとした)を使用し、コンタクトレンズ洗浄時の濃度として、試験液とした。なお、陰性対照(control)として、KCM溶液を用い、陽性対照として、パロモマイシン0.1%(PS 0.1%)を用いた。
予め調製しておいたシスト寒天(約1cm×1cm)を使用し、暴露工程において、シスト寒天を各試験液中に2.5時間浸漬した後、栄養体誘導工程(25℃、20時間)を実施し、未脱シストと脱シストとを計数した。各データから、脱シスト率(%)を求めた。
結果を図7に示した。図より明らかなように、sample A〜sample Cには、ほとんどシストに対する殺菌効果が認められなかった。sample Dは、完全に脱シストが抑制された(脱シスト率:0%)。これは、sample Dは、過酸化水素3.2W/V%消毒液を添加し、中和剤と共に使用するタイプのものであったためであると考えられた。
<Test Example 2 Effect of Commercial Contact Lens Cleaning Solution>
According to the test method described above, a commercially available contact lens cleaning solution was used as a test substance in the exposure process, and the effect on cysts was examined.
Four types of contact lens cleaning solutions (each sample A to sample D) were used as test substances, and the test solution was used as the concentration during contact lens cleaning. In addition, KCM solution was used as a negative control (control), and paromomycin 0.1% (PS 0.1%) was used as a positive control.
Using cyst agar (about 1cm x 1cm) prepared in advance, in the exposure process, cyst agar is immersed in each test solution for 2.5 hours, and then a nutrient induction process (25 ° C, 20 hours) is performed. Undecysted and decysted were counted. From each data, the desist rate (%) was calculated.
The results are shown in FIG. As is apparent from the figure, the bactericidal effect against cyst was hardly observed in sample A to sample C. Sample D was completely suppressed from desisting (desisting rate: 0%). This was considered to be because sample D was of the type used with a neutralizing agent after adding 3.2 W / V% hydrogen peroxide disinfectant.

このように本実施形態によれば、シストから脱シストして栄養体となるアカントアメーバについて、シストに対して殺菌効果を示すか否かを検討する被験物質を定量的に評価できた。こうして、ソフトコンタクレンズ消毒剤を含む薬剤の効果を、実際的な使用条件に近い状態で、より簡単な装置構成で評価できる評価方法を提供できた。   As described above, according to the present embodiment, it was possible to quantitatively evaluate the test substance that examines whether or not the Acanthamoeba that is decysted from the cyst and becomes a nutritional body exhibits a bactericidal effect on the cyst. Thus, it was possible to provide an evaluation method capable of evaluating the effect of a drug containing a soft contact disinfectant with a simpler apparatus configuration in a state close to practical use conditions.

Claims (3)

アカントアメーバ(・シスト)についての生死を容易且つ確実に定量できる方法であって、
(1)栄養体アメーバの餌となる物質を添加した増殖用の固形培地上でアカントアメーバを増殖させ、前記餌の減少による飼育条件の悪化に伴い、全てのアカントアメーバをシスト形態とさせることで、シストを存在させたシスト培地を作成するシスト培地作成工程、
(2)被験物質を含有した試験液中に、前記シスト培地を浸漬する暴露工程、
(3)前記暴露工程を経たシスト培地を栄養寒天培地上に載置して培養することで、シスト形態から栄養体アメーバを誘導する栄養体誘導工程、及び
(4)前記栄養体誘導工程の実施から一定時間の経過後、シスト形態から栄養体アメーバとなったことを示す脱シスト跡の個数である脱シスト数と、依然としてシスト形態のままの未脱シストの個数である未脱シスト数とを計数し、脱シスト率を算出する評価工程を備えたことを特徴とするアカントアメーバについての試験方法。
A method that can easily and reliably quantify life and death of Acanthamoeba (・ cyst),
(1) By growing Acanthamoeba on a solid medium for growth to which a substance serving as a feed for nutrient amoeba is added, and with the deterioration of the breeding conditions due to the decrease in the feed, all Acanthamoeba are made into cyst form A cyst medium preparation step for preparing a cyst medium in which cysts are present,
(2) an exposure step of immersing the cyst medium in a test solution containing a test substance;
(3) a nutrient induction process for inducing a nutrient amoeba from a cyst form by placing and culturing the cyst medium subjected to the exposure process on a nutrient agar medium; and (4) execution of the nutrient induction process. After a lapse of a certain period of time, the number of cysts that are the number of cysts that indicate that the cyst form has become a nutrient amoeba, and the number of uncested cysts that are still in the cyst form A test method for Acanthamoeba, comprising an evaluation step of counting and calculating a desisting rate.
前記固形培地が、寒天培地、ソフトコンタクトレンズ、シリコーンハイドロゲルレンズ、ハードコンタクトレンズからなる群から選択される一つであることを特徴とする請求項1に記載のアカントアメーバについての試験方法。 The test method for Acanthamoeba according to claim 1, wherein the solid medium is one selected from the group consisting of an agar medium, a soft contact lens, a silicone hydrogel lens, and a hard contact lens. アカントアメーバのシストに対して抗菌性を示す薬剤であって、請求項1または2に記載の試験方法によって選択されたことを特徴とする抗シスト薬剤。 An anti-cyst drug which is antibacterial against an Acanthamoeba cyst and is selected by the test method according to claim 1 or 2.
JP2013184912A 2013-09-06 2013-09-06 Viability method of acanthamoeba (cyst) Pending JP2015052505A (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2013184912A JP2015052505A (en) 2013-09-06 2013-09-06 Viability method of acanthamoeba (cyst)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2013184912A JP2015052505A (en) 2013-09-06 2013-09-06 Viability method of acanthamoeba (cyst)

Publications (1)

Publication Number Publication Date
JP2015052505A true JP2015052505A (en) 2015-03-19

Family

ID=52701640

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP2013184912A Pending JP2015052505A (en) 2013-09-06 2013-09-06 Viability method of acanthamoeba (cyst)

Country Status (1)

Country Link
JP (1) JP2015052505A (en)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN111549093A (en) * 2020-05-15 2020-08-18 中山大学 Rapid counting method of amoeba spores in water and application thereof

Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH08225444A (en) * 1993-04-06 1996-09-03 Senju Pharmaceut Co Ltd Acanthamoeba deactivator
JP2006501301A (en) * 2002-09-30 2006-01-12 ボシュ・アンド・ロム・インコーポレイテッド Compositions with enhanced antimicrobial efficacy against acanthamoebae
JP2008532586A (en) * 2005-02-23 2008-08-21 アンドレアス・オブヴァラー Contact lens care composition
JP2011246458A (en) * 2010-04-28 2011-12-08 Tamagawa Gakuen Composition for anti-acanthamoeba, agent for prevention and amelioration of acanthamoeba corneal inflammation and contact lens care solution

Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH08225444A (en) * 1993-04-06 1996-09-03 Senju Pharmaceut Co Ltd Acanthamoeba deactivator
JP2006501301A (en) * 2002-09-30 2006-01-12 ボシュ・アンド・ロム・インコーポレイテッド Compositions with enhanced antimicrobial efficacy against acanthamoebae
JP2008532586A (en) * 2005-02-23 2008-08-21 アンドレアス・オブヴァラー Contact lens care composition
JP2011246458A (en) * 2010-04-28 2011-12-08 Tamagawa Gakuen Composition for anti-acanthamoeba, agent for prevention and amelioration of acanthamoeba corneal inflammation and contact lens care solution

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN111549093A (en) * 2020-05-15 2020-08-18 中山大学 Rapid counting method of amoeba spores in water and application thereof

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Bispo et al. Biofilms in infections of the eye
Johnston et al. Resistance of Acanthamoeba cysts to disinfection in multiple contact lens solutions
Cateau et al. Free-living amoebae: what part do they play in healthcare-associated infections?
Lloyd Encystment in Acanthamoeba castellanii: a review
Rezaeian et al. Isolation of Acanthamoeba spp. from different environmental sources
CN105031609B (en) The disinfectant and its preparation and use of the Cbf-14 containing antibacterial peptide
Gu et al. Optimization of ceragenins for prevention of bacterial colonization of hydrogel contact lenses
Kent et al. Toxicity of chlorine to zebrafish embryos
Yanong Cryptocaryon irritans Infections (Marine White Spot Disease) in Fish: FA164/FA164, 12/2009
Shen et al. The role of type III secretion system and lens material on adhesion of Pseudomonas aeruginosa to contact lenses
JP7053481B2 (en) How to disinfect contact lenses
Nakano et al. Sequential washing with electrolyzed alkaline and acidic water effectively removes pathogens from metal surfaces
JP2015052505A (en) Viability method of acanthamoeba (cyst)
Masangkay et al. Vermamoeba vermiformis—global trend and future perspective
CN103215339A (en) Escherichia coli biofilm detection method of 96-pore semi-quantitative method
Voinescu et al. A Comprehensive Review of Microbial Biofilms on Contact Lenses: Challenges and Solutions
Ghafourian et al. Comparative analysis of biofilm development among MRSA and MSSA strains
US20200296971A1 (en) Compositions and methods for dispersing biofilms
RU2481818C1 (en) Method of cleaning and disinfection of removable dental prosthesis
Oz et al. Efficacy of disinfectants on Candida biofilms at different concentrations and contact times
Kroon et al. Standardizing the assessment of amoebicidal efficacy of contact lens solutions against Acanthamoeba species
AU2003247415A1 (en) Control of protozoa and protonzoan cysts that harbor legionella
RU150146U1 (en) METHOD FOR DETERMINING ANTIMICROBIC ACTIVITY OF DISINFECTANTS
CN107455299A (en) Method by controlling chlorine dioxide concentration to improve Tachypleus tridentatus embryo survival and incubation rate
Abd Ghani et al. Anti-Acanthamoeba Activity of Contact Lens Disinfecting Solutions against Acanthamoeba Cysts.

Legal Events

Date Code Title Description
A621 Written request for application examination

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A621

Effective date: 20160324

A521 Written amendment

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523

Effective date: 20160324

A977 Report on retrieval

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A971007

Effective date: 20170222

A131 Notification of reasons for refusal

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131

Effective date: 20170314

A02 Decision of refusal

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A02

Effective date: 20171010