JP2014113149A - エーリキア・カニスの免疫反応性糖タンパク質gp19 - Google Patents
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Abstract
【解決手段】E.カニス(E. canis)のgp19免疫反応性組成物、ならびにそれに関連する、ワクチン、抗体、ポリペプチド、ペプチド、およびポリヌクレオチドを含む組成物に関する。特に、E.カニスgp19のエピトープを開示する。
【選択図】図1
Description
本発明は少なくとも、分子生物学、細胞生物学、病理学、および獣医学が含まれる医学の分野に関する。特定の局面において、本発明は、E.カニス(E. canis)における免疫反応性gp19組成物に関する。
エーリキア・カニス(Ehrlichia canis)は、野生および家畜のイヌにおける中等度から重度の、時に致死的な疾患を引き起こすマダニ伝搬性の偏性細胞内細菌である。E.カニスならびにE.シャフェンシス(E. chaffeensis)およびE.ルミナンチウム(E. ruminantium)が含まれる属の他の生物のゲノムは、高い程度のゲノムシンテニー、パラローグタンパク質ファミリー、膜貫通へリックスおよび/またはシグナル配列を有するタンパク質の割合が大きいこと、ならびにO-グリコシル化およびリン酸化能に関連する独自のセリン-トレオニンバイアスを示し、宿主-病原体相互作用に関連するタンパク質においてタンデムリピートおよびアンキリンドメインを有する(Collins et al., 2005;Hotopp et al., 2006;Frutos et al., 2006;Mavromatis et al., 2006)。これらのゲノムのそれぞれによってコードされる900個より多いタンパク質の小さいサブセットが抗体によって認識される(Doyle et al., 2006;McBride et al., 2003;McBride et al., 2000;Sumner et al., 2000)。同定され、分子的に特徴付けされた主要な免疫反応性タンパク質のいくつかは、分泌されるセリンに富む糖タンパク質である。これらの糖タンパク質の多くはタンデムリピートを有する;しかし、多数の真核生物様アンキリンドメインを有するものもある(Doyle et al., 2006;McBride et al., 2003;McBride et al., 2000;Nethery et al., 2005;Singu et al., 2005;Yu et al., 2000)。
一定の態様において、エピトープは、SEQ ID NO:17またはSEQ ID NO:19において例示されるように、天然に存在するgp19において、SEQ ID NO:13の配列に隣接してC末端に存在するアミノ酸のような、C末端上のさらなるアミノ酸を含む。特定の態様において、SEQ ID NO:13のC末端には1、2、3、4、5、6、7、8、9、10個またはそれ以上のさらなるアミノ酸が存在してもよい。さらなる態様において、アミノ酸配列は、本発明のいくつかの局面においてアジュバントを含む、薬学的に許容される賦形剤に含まれる。本発明の一定の局面においては、SEQ ID NO:13のペプチド配列をコードするSEQ ID NO:20
を含むポリヌクレオチドが存在する。
[本発明101]
(a)SEQ ID NO:17もしくはSEQ ID NO:19を含む、単離されたポリペプチド;
(b)(a)のポリペプチドと少なくとも70%同一である、単離されたポリペプチド;
(c)SEQ ID NO:13を含む、単離されたポリペプチド;または
(d)SEQ ID NO:13と少なくとも70%同一である、単離されたポリペプチド
のうちの一つまたは複数を含む薬学的組成物であって、
該ポリペプチドが、薬学的に許容される希釈剤に分散されている、
薬学的組成物。
[本発明102]
(b)が、(a)のポリペプチドと少なくとも75%同一であるポリペプチドとしてさらに定義される、本発明101記載の組成物。
[本発明103]
(b)が、(a)のポリペプチドと少なくとも80%同一であるポリペプチドとしてさらに定義される、本発明102記載の組成物。
[本発明104]
(b)が、(a)のポリペプチドと少なくとも85%同一であるポリペプチドとしてさらに定義される、本発明103記載の組成物。
[本発明105]
(b)が、(a)のポリペプチドと少なくとも90%同一であるポリペプチドとしてさらに定義される、本発明104記載の組成物。
[本発明106]
(b)が、(a)のポリペプチドと少なくとも95%同一であるポリペプチドとしてさらに定義される、本発明105記載の組成物。
[本発明107]
ワクチン組成物としてさらに定義される、本発明101記載の組成物。
[本発明108]
ポリペプチドが、一つまたは複数の糖質部分を含むとしてさらに定義される、本発明101記載の組成物。
[本発明109]
(a)のポリペプチドがSEQ ID NO:17を含む、本発明101記載の組成物。
[本発明110]
(a)のポリペプチドがSEQ ID NO:19を含む、本発明101記載の組成物。
[本発明111]
(c)のポリペプチドが、アミノ酸24〜50個の長さであるとしてさらに定義される、本発明101記載の組成物。
[本発明112]
(d)のポリペプチドが、SEQ ID NO:13と少なくとも80%同一であるとしてさらに定義される、本発明101記載の組成物。
[本発明113]
(d)のポリペプチドが、SEQ ID NO:13と少なくとも85%同一であるとしてさらに定義される、本発明112記載の組成物。
[本発明114]
(d)のポリペプチドが、SEQ ID NO:13と少なくとも90%同一であるとしてさらに定義される、本発明113記載の組成物。
[本発明115]
(d)のポリペプチドが、SEQ ID NO:13と少なくとも95%同一であるとしてさらに定義される、本発明114記載の組成物。
[本発明116]
(a)SEQ ID NO:16もしくはSEQ ID NO:18を含むポリヌクレオチド;または
(b)ストリンジェントな条件下で(a)のポリヌクレオチドとハイブリダイズすることができるポリヌクレオチド
を含む単離された核酸分子によってコードされる単離されたポリペプチドを含む薬学的組成物であって、
該ポリペプチドが、SEQ ID NO:17またはSEQ ID NO:19に対して少なくとも70%の同一性を有し、かつ該ポリペプチドが、薬学的に許容される希釈剤に分散されている、
薬学的組成物。
[本発明117]
ポリペプチドがSEQ ID NO:17またはSEQ ID NO:19と少なくとも75%同一である、本発明116記載の組成物。
[本発明118]
ポリペプチドがSEQ ID NO:17またはSEQ ID NO:19と少なくとも80%同一である、本発明117記載の組成物。
[本発明119]
ポリペプチドがSEQ ID NO:17またはSEQ ID NO:19と少なくとも85%同一である、本発明118記載の組成物。
[本発明120]
ポリペプチドがSEQ ID NO:17またはSEQ ID NO:19と少なくとも90%同一である、本発明119記載の組成物。
[本発明121]
ポリペプチドがSEQ ID NO:17またはSEQ ID NO:19と少なくとも95%同一である、本発明120記載の組成物。
[本発明122]
(a)SEQ ID NO:16もしくはSEQ ID NO:18を含むポリヌクレオチド;または
(b)ストリンジェントな条件下で(a)のポリヌクレオチドとハイブリダイズすることができるポリヌクレオチドであり、かつSEQ ID NO:17もしくはSEQ ID NO:19に対して少なくとも70%の同一性を有するポリペプチドをコードする、ポリヌクレオチド
を含み、かつ異種プロモーターに機能的に連結している、単離された核酸分子。
[本発明123]
(a)が、SEQ ID NO:16を含むポリヌクレオチドとしてさらに定義される、本発明122記載の単離された核酸分子。
[本発明124]
(a)が、SEQ ID NO:18を含むポリヌクレオチドとしてさらに定義される、本発明122記載の単離された核酸分子。
[本発明125]
(b)が、SEQ ID NO:17またはSEQ ID NO:19と少なくとも75%同一であるポリペプチドをコードするポリヌクレオチドとしてさらに定義される、本発明122記載の単離された核酸分子。
[本発明126]
(b)が、SEQ ID NO:17またはSEQ ID NO:19と少なくとも80%同一であるポリペプチドをコードするポリヌクレオチドとしてさらに定義される、本発明125記載の単離された核酸分子。
[本発明127]
(b)が、SEQ ID NO:17またはSEQ ID NO:19と少なくとも85%同一であるポリペプチドをコードするポリヌクレオチドとしてさらに定義される、本発明126記載の単離された核酸分子。
[本発明128]
(b)が、SEQ ID NO:17またはSEQ ID NO:19と少なくとも90%同一であるポリペプチドをコードするポリヌクレオチドとしてさらに定義される、本発明127記載の単離された核酸分子。
[本発明129]
(b)が、SEQ ID NO:17またはSEQ ID NO:19と少なくとも95%同一であるポリペプチドをコードするポリヌクレオチドとしてさらに定義される、本発明128記載の単離された核酸分子。
[本発明130]
異種プロモーターが真核生物プロモーターである、本発明122記載の単離された核酸分子。
[本発明131]
異種プロモーターが原核生物プロモーターである、本発明122記載の単離された核酸分子。
[本発明132]
ベクター中に含まれるとしてさらに定義される、本発明122記載の単離された核酸分子。
[本発明133]
ベクターがウイルスベクターまたは非ウイルスベクターである、本発明132記載の単離された核酸分子。
[本発明134]
ウイルスベクターが、アデノウイルスベクター、レトロウイルスベクター、またはアデノ随伴ウイルスベクターを含む、本発明133記載の単離された核酸分子。
[本発明135]
リポソーム中に含まれる、本発明122記載の単離された核酸分子。
[本発明136]
SEQ ID NO:13、SEQ ID NO:17、およびSEQ ID NO:19からなる群より選択されるアミノ酸配列の一つまたは複数と免疫学的に反応する、単離された抗体。
[本発明137]
モノクローナル抗体であるか、ポリクローナル抗血清中に含まれるか、または抗体断片である、本発明136記載の抗体。
[本発明138]
本発明122〜135のいずれか一項記載のポリヌクレオチドを含む宿主細胞を提供する段階;および
コードされたポリペプチドを産生するために、ポリヌクレオチドを発現させるように宿主細胞に適した条件下で細胞を培養する段階
を含む、ポリペプチドを産生する方法。
[本発明139]
ポリペプチドを単離する段階をさらに含む、本発明138記載の方法。
[本発明140]
ストリンジェントな条件下でSEQ ID NO:16またはSEQ ID NO:18とゲノムDNAとをハイブリダイズさせる段階、および
SEQ ID NO:16またはSEQ ID NO:18によって検出されたポリヌクレオチドを単離する段階
を含む、ポリヌクレオチドを産生する方法。
[本発明141]
本発明140記載の方法に従って調製された、単離されたDNA。
[本発明142]
本発明101〜137のいずれか一項記載の組成物の治療的有効量を個体に送達する段階を含む、個体における免疫応答を誘導する方法。
[本発明143]
E.カニス(E. canis)に曝露される前の被験体、またはE.カニスに曝露されたこともしくはE.カニスに感染していることが疑われる被験体に、本発明101〜137のいずれか一項記載の組成物の有効量を投与する段階を含む、被験体におけるE.カニス感染症を抑制する方法。
[本発明144]
(a)SEQ ID NO:17、SEQ ID NO:19、もしくはその両方のポリペプチド;または
(b)SEQ ID NO:13、SEQ ID NO:17、およびSEQ ID NO:19からなる群より選択されるアミノ酸配列と免疫学的に反応する抗体
の一つまたは両方に関して、個体からの試料をアッセイする段階を含む、個体におけるE.カニス感染症を同定する方法。
[本発明145]
(a)のポリペプチドがSEQ ID NO:17である、本発明144記載の方法。
[本発明146]
(a)のポリペプチドがSEQ ID NO:19である、本発明144記載の方法。
[本発明147]
(a)のポリペプチドがSEQ ID NO:17およびSEQ ID NO:19の両方である、本発明144記載の方法。
[本発明148]
(b)の抗体がSEQ ID NO:13のアミノ酸配列と免疫学的に反応する、本発明144記載の方法。
[本発明149]
(b)の抗体がSEQ ID NO:17のアミノ酸配列と免疫学的に反応する、本発明144記載の方法。
[本発明150]
(b)の抗体がSEQ ID NO:19のアミノ酸配列と免疫学的に反応する、本発明144記載の方法。
[本発明151]
(b)が、抗体に関してELISAによりアッセイすることとしてさらに定義される、本発明144記載の方法。
[本発明152]
ELISAにより、(b)の抗体以外の一つまたは複数のE.カニス抗体に関してアッセイすることが可能になる、本発明151記載の方法。
[本発明153]
他のE.カニス抗体が、gp36、gp19、gp28/30、およびgp200の抗体からなる群より選択される、本発明152記載の方法。
[本発明154]
(a)SEQ ID NO:17もしくはSEQ ID NO:19を含む、単離されたポリペプチド;
(b)(a)のポリペプチドと少なくとも70%同一である、単離されたポリペプチド;
(c)SEQ ID NO:13を含む、単離されたポリペプチド;
(d)SEQ ID NO:13と少なくとも70%同一である、単離されたポリペプチド;
(e)SEQ ID NO:16もしくはSEQ ID NO:18を含むポリヌクレオチド;
(f)ストリンジェントな条件下で(a)のポリヌクレオチドとハイブリダイズすることができるポリヌクレオチドであり、かつSEQ ID NO:17もしくはSEQ ID NO:19に対して少なくとも70%の同一性を有するポリペプチドをコードする、ポリヌクレオチド;または
(g)SEQ ID NO:13、SEQ ID NO:17、およびSEQ ID NO:19からなる群より選択されるアミノ酸配列の一つまたは複数と免疫学的に反応する、単離された抗体
の組成物のうちの一つまたは複数を含むキット。
[本発明155]
前記組成物のうちの二つまたはそれ以上を含むとしてさらに定義される、本発明154記載のキット。
I.定義
長年にわたる特許法の協定に従って、特許請求の範囲を含む本明細書において、含むという用語と協調して用いられる場合の「一つの(a)」および「一つの(an)」という用語は、「一つまたは複数」を指す。本発明のいくつかの態様は、本発明の一つまたは複数の要素、方法の段階、および/または方法から本質的になってもよく、またはそれらからなる。本明細書に記述される任意の方法または組成物は、本明細書に記述される任意の他の方法または組成物に関して実行することができると企図される。
本発明は、エーリキア種のタンパク質およびそれらをコードするポリヌクレオチドに関連する組成物および方法に関する。本発明の特定の局面においては、グリコシル化タンデムリピート上のエピトープに対して初期抗体応答を誘発するE.カニスおよびE.シャフェンシスの、異なるように発現され、分泌された主要な免疫反応性タンパク質オルソログが存在する。具体的に、本発明は、特定の態様において、エーリキア種からの一つまたは複数の糖タンパク質に関する。さらなる態様において、本発明は、gp19タンパク質であるエーリキア種からの糖タンパク質に関する。さらなる態様において、gp19タンパク質は、E.カニスのタンパク質である。
本発明は、E.カニスgp19を含むポリペプチドまたはペプチドに関する。簡潔にするために、以下の章は、ポリペプチドおよびペプチドを含む本発明の任意のE.カニスgp19アミノ酸組成物について言及する。
本発明の一定の態様は、E.カニスgp19核酸に関する。簡潔にするために、以下の章は、本発明の任意のE.カニスgp19核酸組成物について言及する。
本明細書において用いられるように、「核酸塩基」とは、例えば少なくとも一つの天然の核酸(すなわち、DNAおよびRNA)、ならびにそのような核酸塩基の天然または非天然の誘導体および類似体において見い出される、天然の核酸塩基(すなわち、A、T、G、C、またはU)のような複素環塩基を指す。核酸塩基は一般的に、天然の核酸塩基対形成(例えばAとT、GとC、およびAとUの間の水素結合)の代わりとなるように、少なくとも一つの天然の核酸塩基と一つまたは複数の水素結合(「アニール」または「ハイブリダイズ」)を形成することができる。
本明細書において用いられるように、「ヌクレオシド」は、核酸塩基リンカー部分に共有結合的に付着した核酸塩基を含む個々の化学単位を指す。「核酸塩基リンカー部分」の非制限的な例は、炭素原子5個を含む糖(すなわち、「五炭糖」)であり、デオキシリボース、リボース、アラビノース、または五炭糖の誘導体もしくは類似体が含まれるがこれらに限定されるわけではない。五炭糖の誘導体または類似体の非制限的な例には、炭素が糖環における酸素原子に置換されている2'-フルオロ-2'-デオキシリボース、または炭素環等が含まれる。
本明細書において用いられるように、「ヌクレオチド」は、「骨格部分」をさらに含むヌクレオシドを指す。骨格部分は一般的に、ヌクレオチドを含むもう一つの分子またはもう一つのヌクレオチドにヌクレオチドを共有結合的に付着させて、核酸を形成する。天然に存在するヌクレオチドにおける「骨格部分」は、典型的に五炭糖に共有結合的に付着するリン部分を含む。骨格部分の付着は典型的に、五炭糖の3'または5'位のいずれかで起こる。しかし、特にヌクレオチドが天然に存在する五炭糖またはリン部分の誘導体または類似体を含む場合には、他のタイプの付着が当技術分野において公知である。
核酸は、天然に存在する核酸に存在する可能性がある核酸塩基、核酸塩基リンカー部分、および/または骨格部分の誘導体または類似体を含んでもよく、または完全にそれらで構成されてもよい。本明細書において用いられるように、「誘導体」は、天然に存在する分子の化学改変または変化型を指すが、「模倣体」または「類似体」という用語は、天然に存在する分子または部分に構造的に類似する、または類似しなくてもよいが類似の機能を保有する分子を指す。本明細書において用いられるように、「部分」は一般的に大きい化学または分子構造の、より小さい化学または分子成分を指す。核酸塩基、ヌクレオシド、およびヌクレオチド類似体または誘導体は当技術分野において周知であり、記述されている(例えば、参照により本明細書に組み入れられるScheit, 1980を参照されたい)。
一定の態様においては、ヌクレオシドまたはヌクレオチドの誘導体または類似体を含む核酸を本発明の方法および組成物において用いてもよいと企図される。非制限的な例は、参照により本明細書に組み入れられる米国特許第5,908,845号に記述される「ポリエーテル核酸」である。ポリエーテル核酸において、一つまたは複数の核酸塩基は、ポリエーテル骨格におけるキラル炭素原子に連結する。
核酸は、例えば化学合成、酵素産生、または生物学的産生のような、当業者に公知の任意の技術によって作製してもよい。合成核酸の非制限的な例(例えば、合成オリゴヌクレオチド)には、ホスホトリエステル、ホスファイト、またはホスホラミダイト化学を用いるインビトロ化学合成によって、および参照により本明細書に組み入れられるEP 266,032に記述されるような固相技術によって、またはそのそれぞれが参照により本明細書に組み入れられる、Froehler et al., 1986および米国特許第5,705,629号によって記述されるようなデオキシヌクレオシドH-ホスホネート中間体によって作製された核酸が含まれる。本発明の方法において、一つまたは複数のオリゴヌクレオチドを用いてもよい。オリゴヌクレオチド合成の様々な異なる機構が、例えばそのそれぞれが参照により本明細書に組み入れられる、米国特許第4,659,774号、第4,816,571号、第5,141,813号、第5,264,566号、第4,959,463号、第5,428,148号、第5,554,744号、第5,574,146号、第5,602,244号において開示されている。
核酸をポリアクリルアミドゲル、塩化セシウム勾配遠心分離、または当業者に公知の任意の他の手段によって精製してもよい(例えば、参照により本明細書に組み入れられる、Sambrook et al., 1989を参照されたい)。
一定の態様において、核酸は核酸セグメントである。本明細書において用いられるように、「核酸セグメント」という用語は、例えば非制限的な例に関して、ペプチドまたはポリペプチド配列のごく一部をコードする核酸のような、核酸のより小さい断片である。このように、「核酸セグメント」は、ペプチドまたはポリペプチドコード領域の約2ヌクレオチドから全長までの遺伝子配列の任意の部分を含んでもよい。
nからn+y
nが1から配列の最後の数までの整数であって、yが核酸セグメントマイナス1の長さである場合、n+yは、配列の最後の数を超えない。このように、10量体の場合、核酸セグメントは、塩基1〜10、2〜11、3〜12位などに対応する。15量体の場合、核酸セグメントは塩基1〜15、2〜16、3〜17位などに対応する。20量体の場合、核酸セグメントは塩基1〜20、2〜21、3〜22位などに対応する。一定の態様において、核酸セグメントはプローブまたはプライマーであってもよい。本明細書において用いられるように、「プローブ」は一般的に、検出法または組成物において用いられる核酸を指す。本明細書において用いられるように、「プライマー」は一般的に、伸長または増幅法または組成物において用いられる核酸を指す。
本発明はまた、一つまたは複数の他の核酸と相補的である核酸を包含する。特定の態様において、例えば、核酸は、ポリヌクレオチドの発現を少なくとも部分的に抑制するために、アンチセンスまたはsiRNAの目的のために使用される。
本明細書において用いられるように、「ハイブリダイゼーション」、「ハイブリダイズする」、「ハイブリダイズすることができる」とは、二本鎖もしくは三本鎖分子または部分的二本鎖もしくは三本鎖の性質を有する分子を形成することができることを意味すると理解される。本明細書において用いられるように、「アニール」という用語は、「ハイブリダイズ」と同義である。「ハイブリダイゼーション」、「ハイブリダイズする」、「ハイブリダイズすることができる」という用語は、「ストリンジェントな条件」、または「高ストリンジェンシー」という用語、および「低ストリンジェンシー」、または「低ストリンジェンシー条件」という用語を包含する。
特定の態様において、本発明は、免疫反応性エーリキアポリペプチドをコードするポリヌクレオチドに関し、同様にポリペプチドをコードするポリヌクレオチドまたはそのコードされる産物を、エーリキアに感染した個体および/またはエーリキアに感染していることが疑われる個体のような、その必要がある個体に送達する段階が含まれる。簡潔にするために、以下の章は、本発明の任意のE.カニスgp19核酸組成物および/または核酸に基づく発現系について言及する。
「ベクター」という用語は、細胞内に導入するためにその中に核酸配列を挿入することができ、細胞内で核酸配列を複製させることができる担体核酸分子を指すために用いられる。核酸配列は「外因性」であってもよく、このことは、配列が、ベクターが導入される細胞にとって異物であること、または配列が、細胞の配列と相同であるが、配列が通常見い出されない宿主核酸内の位置に存在することを意味する。ベクターには、プラスミド、コスミド、ウイルス(バクテリオファージ、動物ウイルス、および植物ウイルス)、および人工染色体(例えば、YAC)が含まれる。当業者は、標準的な組換え技術を通してベクターを構築する能力を十分に備えていると考えられる(例えば、その両方が参照により本明細書に組み入れられる、Maniatis et al., 1988およびAusubel et al., 1994を参照されたい)。
「プロモーター」は、そこで転写の開始および速度が制御される核酸配列の領域である制御配列である。これは、RNAポリメラーゼおよび他の転写因子のような調節タンパク質および分子が結合して、核酸配列の特異的転写を開始する可能性がある遺伝的要素を含有してもよい。「機能的に配置される」、「機能的に連結した」、「制御下である」、および「転写制御下である」という句は、プロモーターが、その配列の転写開始および/または発現を制御するために核酸配列に関して正確な機能的位置および/または方向に存在することを意味する。
特異的開始シグナルも同様に、コード配列の効率的な翻訳に必要である可能性がある。これらのシグナルには、ATG開始コドンまたは隣接配列が含まれる。ATG開始コドンを含む外因性の翻訳制御シグナルが提供される必要があることがある。当業者は容易にこれを決定して、必要なシグナルを提供することができると考えられる。開始コドンは、全挿入物が確実に翻訳されるように、所望のコード配列の読み枠と「インフレーム」でなければならないことは周知である。外因性の翻訳制御シグナルおよび開始コドンは、天然または合成のいずれかとなりうる。発現効率は、適切な転写エンハンサーエレメントを含めることによって増強される可能性がある。
ベクターには、そのいずれも、ベクターを消化するために標準的な組換え技術と共に用いることができる、多数の制限酵素部位を含有する核酸領域である多数のクローニング部位(MCS)が含まれうる(例えば、参照により本明細書に組み入れられる、Carbonelli et al., 1999、Levenson et al., 1998、およびCocea, 1997を参照されたい)。「制限酵素消化」は、核酸分子における特異的位置のみで機能する酵素による核酸分子の触媒的切断を指す。これらの制限酵素の多くは市販されている。そのような酵素を用いることは、当業者に広く理解されている。しばしば、ベクターは、外因性の配列をベクターにライゲーションさせることができるように、MCS内で切断する制限酵素を用いて直線状にするかまたは断片化する。「ライゲーション」は、互いに連続してもよく、連続していなくてもよい二つの核酸断片の間のホスホジエステル結合を形成するプロセスを指す。制限酵素およびライゲーション反応を伴う技術は、組換え技術の当業者に周知である。
ほとんどの転写された真核細胞RNA分子は、RNAスプライシングを受けて一次転写物からイントロンを除去すると考えられる。ゲノム真核細胞配列を含有するベクターは、タンパク質発現のための転写物の適当なプロセシングが確実に起こるようにドナーおよび/またはアクセプタースプライシング部位を必要とする可能性がある(例えば、参照により本明細書に組み入れられるChandler et al., 1997を参照されたい)。
本発明のベクターまたは構築物は、一般的に少なくとも一つの終止シグナルを含むと考えられる。「終止シグナル」または「ターミネーター」は、RNAポリメラーゼによるRNA転写物の特異的な終止に関係するDNA配列を含む。このように、一定の態様において、RNA転写物の産生を終了させる終止シグナルが企図される。ターミネーターは、所望のメッセージレベルを達成するためにインビボにおいて必要である可能性がある。
発現、特に真核細胞の発現において、転写物の適当なポリアデニル化を行うためにポリアデニル化シグナルが含まれると考えられる。ポリアデニル化シグナルの性質は、本発明の実践の成功にとって重大ではないと考えられ、そのようないかなる配列も使用することができる。好ましい態様には、様々な標的細胞において良好に機能するために簡便で、機能することが公知である、SV40ポリアデニル化シグナルまたはウシ成長ホルモンポリアデニル化シグナルが含まれる。ポリアデニル化は、転写物の安定性を増加させる可能性があり、または細胞質輸送を促進する可能性がある。
宿主細胞においてベクターを成長させるために、ベクターは、そこから複製が開始される特異的核酸配列である一つまたは複数の複製開始点(しばしば、「ori」と呼ばれる)を含有してもよい。または、宿主細胞が酵母である場合、自律複製配列(ARS)を使用することができる。
本発明の一定の態様において、発現ベクターにマーカーを含めることによって、本発明の核酸構築物を含有する細胞をインビトロまたはインビボにおいて同定することができる。そのようなマーカーは、細胞に対して同定可能な変化を付与し、発現ベクターを含有する細胞の容易な同定を許容する。一般的に、選択マーカーは、選択を可能にする特性を付与するマーカーである。陽性選択マーカーは、マーカーの存在がその選択を可能にするマーカーであり、陰性選択マーカーはその存在がその選択を防止するマーカーである。陽性選択マーカーの例は薬物耐性マーカーである。
一定の態様において、プラスミドベクターは、宿主細胞を形質転換する目的で用いるために企図される。一般的に、レプリコン、および宿主細胞と適合性の種に由来する制御配列を含有するプラスミドベクターを、これらの宿主に関連して用いる。ベクターは通常、複製部位と共に、形質転換細胞において表現型選択を提供することができるマーキング配列を有する。非制限的な例において、大腸菌はしばしば大腸菌種に由来するプラスミドであるpBR322の誘導体を用いて形質転換される。pBR322は、アンピシリンおよびテトラサイクリン耐性に関する遺伝子を含有し、したがって、形質転換細胞を同定するための容易な手段を提供する。pBRプラスミドまたは他の微生物プラスミドもしくはファージはまた、例えばその自身のタンパク質の発現のために微生物によって用いられうるプロモーターを含有しなければならないか、または含有するように改変されなければならない。
一定のウイルスが細胞に感染する、または受容体媒介エンドサイトーシスを通して細胞に入る、および宿主細胞のゲノムに組み入れられて、ウイルス遺伝子を安定かつ効率的に発現させることができることにより、ウイルスは、外来核酸を細胞(例えば、哺乳動物細胞)に移入するための魅力的な候補物となる。本発明の成分は、例えば免疫調節剤またはアジュバントのような一つもしくは複数の組成物または他の成分をコードするウイルスベクターを含んでもよい。本発明の核酸を送達するために用いられてもよいウイルスベクターの非制限的な例を、以下に記述する。
核酸を送達するための特定の方法は、アデノウイルス発現ベクターを用いることを伴う。アデノウイルスベクターは、ゲノムDNAへの組み込み能が低いことが知られているが、この特色はこれらのベクターによって与えられる高い遺伝子移入効率によって相殺される。「アデノウイルス発現ベクター」は、(a)構築物のパッケージングを支持するのに十分な、および(b)その中で、クローニングされている組織または細胞特異的構築物を最終的に発現させるのに十分なアデノウイルス配列を含有する構築物が含まれることを意味する。遺伝子構築またはアデノウイルス36 kbの直線状の二本鎖DNAウイルスを理解することによって、アデノウイルスDNAの大きい断片を7 kbまでの外来配列に置換することができる(Grunhaus and Horwitz, 1992)。
アデノウイルス補助トランスフェクションを用いて、核酸を細胞に導入してもよい。アデノウイルスカップリング系を用いる細胞系において、トランスフェクション効率の増加が報告されている(Kelleher and Vos, 1994;Cotten et al., 1992;Curiel, 1994)。アデノ随伴ウイルス(AAV)は、それが高い組み込み頻度を有し、非分裂細胞に感染することができることから、本発明の組成物において用いるための魅力的なベクター系であり、このように遺伝子を哺乳動物細胞、例えば組織培養(Muzyczka, 1992)、またはインビボにおいて遺伝子を送達するために有用となる。AAVは、感染性に関して広い宿主範囲を有する(Tratschin et al., 1984;Laughlin et al., 1986;Lebkowski et al., 1988;McLaughlin et al., 1988)。rAAVベクターの生成および使用に関する詳細は、それぞれが参照により本明細書に組み入れられる、米国特許第5,139,941号および第4,797,368号に記述される。
レトロウイルスベクターは、宿主ゲノムにその遺伝子を組み入れる能力、大量の外来遺伝子材料を移入できること、広いスペクトルの種および細胞型に感染できること、ならびに特殊な細胞株においてパッケージングされる能力のために送達ベクターとして有用である(Miller, 1992)。
他のウイルスベクターを本発明のワクチン構築物として使用してもよい。ワクシニアウイルス(Ridgeway, 1988;Baichwal and Sugden, 1986;Coupar et al., 1988)、シンドビスウイルス、サイトメガロウイルスおよび単純ヘルペスウイルスのようなウイルスに由来するベクターを使用してもよい。それらは、様々な哺乳動物細胞にとっていくつかの魅力的な特色を提供する(Friedmann, 1989;Ridgeway, 1988;Baichwal and Sugden, 1986;Coupar et al., 1988;Horwich et al., 1990)。
送達される核酸は、特異的結合リガンドを発現するように操作されている感染性ウイルス内に収容されてもよい。このように、ウイルス粒子は、標的細胞の同族の受容体に特異的に結合して、内容物を細胞に送達する。レトロウイルスベクターの特異的ターゲティングを可能にするように設計された新規アプローチは、ウイルスエンベロープに乳糖残基を化学的に付加することによるレトロウイルスの化学改変に基づいて開発された。この改変は、シアロ糖タンパク質受容体を通して肝細胞の特異的感染を許容することができる。
本発明と共に用いるための細胞小器官、細胞、組織、または生物を形質転換するためのエーリキア核酸送達のための適した方法には、本明細書において記述されるように、または当業者に公知であるように、核酸(例えば、DNA)を細胞小器官、細胞、組織、または生物に導入することができる実質的にいかなる方法も含まれると考えられる。そのような方法には、エクスビボトランスフェクション(Wilson et al., 1989、Nabel et al., 1989)、マイクロインジェクション(参照により本明細書に組み入れられる、Harlan and Weintraub, 1985;米国特許第5,789,215号)を含む注入(そのそれぞれが参照により本明細書に組み入れられる、米国特許第5,994,624号、第5,981,274号、第5,945,100号、第5,780,448号、第5,736,524号、第5,702,932号、第5,656,610号、第5,589,466号、および第5,580,859号);電気穿孔(参照により本明細書に組み入れられる米国特許第5,384,253号;Tur-Kaspa et al., 1986;Potter et al., 1984);リン酸カルシウム沈殿(Graham and Van Der Eb, 1973;Chen and Okayama, 1987;Rippe et al., 1990);DEAEデキストランの後にポリエチレングリコールを用いることによって(Gopal, 1985);直接超音波ローディング(Fechheimer et al., 1987);リポソーム媒介トランスフェクション(Nicolau and Sene, 1982;Fraley et al., 1979;Nicolau et al., 1987;Wong et al., 1980;Kaneda et al., 1989;Kato et al., 1991)、および受容体媒介トランスフェクション(Wu and Wu, 1987;Wu and Wu, 1988);微粒子銃(そのそれぞれが参照により本明細書に組み入れられる、PCT出願番号WO 94/09699および95/06128;米国特許第5,610,042号、第5,322,783号、第5,563,055号、第5,550,318号、第5,538,877号、および第5,538,880号);シリコンカーバイド繊維による撹拌(そのそれぞれが参照により本明細書に組み入れられる、Kaeppler et al., 1990;米国特許第5,302,523号および第5,464,765号);アグロバクテリウム(Agrobacterium)媒介形質転換(そのそれぞれが参照により本明細書に組み入れられる、米国特許第5,591,616号および5,563,055);プロトプラストのPEG媒介形質転換(そのそれぞれが参照により本明細書に組み入れられる、Omirulleh et al., 1993;米国特許第4,684,611号および第4,952,500号);乾燥/抑制媒介DNA取り込み(Potrykus et al., 1985)によるようなDNAの直接送達、およびそのような方法の任意の組み合わせが含まれるがこれらに限定されるわけではない。これらのような技術の適用を通して、細胞小器官、細胞、組織、または生物は、安定にまたは一過性に形質転換される可能性がある。
エクスビボにおいて生物から採取した血管細胞および組織をトランスフェクションする方法は当業者に公知である。例えばイヌ内皮細胞は、インビトロにおいてレトロウイルス遺伝子移入によって遺伝子改変され、イヌに移植されている(Wilson et al., 1989)。もう一つの例において、ユカタンミニブタの内皮細胞は、インビトロにおいてレトロウイルスによってトランスフェクションされ、二重バルーンカテーテルを用いて動脈に移植された(Nabel et al., 1989)。このように、細胞または組織を採取して、本発明の核酸を用いてエクスビボにおいてトランスフェクションしてもよいと企図される。特定の局面においては、移植された細胞または組織を生物内に留置してもよい。好ましい面において、核酸は、移植された細胞または組織において発現される。
一定の態様において、核酸は、皮下、皮内、筋肉内、静脈内、腹腔内等のような、1回または複数回の注入(すなわち、針による注入)によって細胞小器官、細胞、組織、または生物に送達されてもよい。ワクチンを注入する方法は当業者に周知である(例えば、生理食塩液溶液を含む組成物の注入)。本発明のさらなる態様には、直接マイクロインジェクションによる核酸の導入が含まれる。直接マイクロインジェクションは、核酸構築物をツメガエル(Xenopus)の卵母細胞に導入するために用いられている(Harland and Weintraub, 1985)。用いる組成物の量は、用いる細胞小器官、細胞、組織、または生物と共に抗原の性質に応じて変化してもよい。
本発明の一定の態様において、核酸は電気穿孔によって細胞小器官、細胞、組織、または生物に導入される。電気穿孔は高圧放電に細胞およびDNAの浮遊液を曝露することを伴う。この方法のいくつかの変法において、ペクチン分解酵素のような一定の細胞壁分解酵素を使用して標的レシピエント細胞を、電気穿孔による形質転換に対して未処置細胞よりも感受性があるようにする(参照により本明細書に組み入れられる、米国特許第5,384,253号)。または、レシピエント細胞を、機械的創傷による形質転換に対してより感受性があるようにすることができる。
本発明の他の態様において、核酸はリン酸カルシウム沈殿を用いて細胞に導入される。この技術を用いて、ヒトKB細胞にアデノウイルス5 DNAをトランスフェクションしている(Graham and Van Der Eb, 1973)。同様に、このようにして、マウスL(A9)、マウスC127、CHO、CV1、BHK、NIH3T3およびHeLa細胞にネオマイシンマーカー遺伝子をトランスフェクションし(Chen and Okayama, 1987)、ラット肝細胞に多様なマーカー遺伝子をトランスフェクションした(Rippe et al., 1990)。
別の態様において、核酸はDEAEデキストランの後にポリエチレングリコールを用いて細胞に送達される。このようにしてレポータープラスミドは、マウス骨髄腫および赤白血病細胞に導入された(Gopal, 1985)。
本発明のさらなる態様には、直接超音波ローディングによる核酸の導入が含まれる。超音波ローディングによってLTK線維芽細胞にチミジンキナーゼ遺伝子をトランスフェクションしている(Fechheimer et al., 1987)。
本発明のさらなる態様において、エーリキア核酸は、例えばリポソーム中に含まれるように、脂質複合体に含まれてもよい。リポソームは、リン脂質二重層膜と内部水性媒体とを特徴とする小胞構造である。マルチラメラリポソームは、水性媒体によって分かれた多数の脂質層を有する。それらは.リン脂質を過剰量の水溶液に懸濁させると自然に形成する。脂質成分は、閉鎖構造を形成する前に自己再編成を受けて、脂質二重層の中に水および溶解した溶質を捕獲する(Ghosh and Bachhawat, 1991)。同様に、Lipofectamine(Gibco BRL)、またはSuperfect(Qiagen)と複合体を形成した核酸も企図される。
なおさらに、核酸を受容体媒介送達媒体によって標的細胞に送達してもよい。これらは、標的細胞内で起こると考えられる受容体媒介エンドサイトーシスによる、高分子の選択的取り込みを利用する。様々な受容体の細胞型特異的分布を考慮して、この送達法は、本発明の特異性のもう一つの程度を高める。
微粒子銃技術は、少なくとも一つの細胞小器官、細胞、組織、または生物に核酸を導入するために用いることができる(そのそれぞれが参照により本明細書に組み入れられる、米国特許第5,550,318号;米国特許第5,538,880号;米国特許第5,610,042号;およびPCT出願WO 94/09699)。この方法は、DNAをコーティングした微粒子を、細胞膜を通過させて細胞を殺すことなく細胞内に入らせるように、高速で加速させることができることに依存する(Klein et al., 1987)。当技術分野において公知の広く多様な微粒子銃技術が存在し、その多くは本発明に応用可能である。
本明細書において用いられるように、「細胞」、「細胞株」および「細胞培養」という用語は、互換的に用いられる可能性がある。これらの用語には全て、任意のおよび全てのその後の世代であるその子孫が含まれる。子孫は全て、計画的または偶然の変異により同一ではなくてもよいと理解される。異種核酸配列を発現する文脈において、「宿主細胞」は、原核細胞または真核細胞を指し、これには、ベクターを複製することができ、および/またはベクターによってコードされる異種遺伝子を発現することができる任意の形質転換可能な生物が含まれる。宿主細胞は、ベクターのレシピエントとして用いることができ、用いられている。宿主細胞は「トランスフェクション」または「形質転換」されてもよく、これは外因性の核酸がそれによって宿主細胞に移入または導入されるプロセスを指す。形質転換細胞には、主要な本発明の細胞およびその子孫が含まれる。本明細書において用いられるように、「操作された」および「組換え型」細胞または宿主細胞は、その中に例えばベクターのような外因性の核酸配列が導入されている細胞を指すと意図される。したがって、組換え型細胞は、組換えによって導入された核酸を含有しない天然に存在する細胞とは区別される。
先に記述した組成物の少なくとも一部または全てを含む多数の発現系が存在する。核酸配列、またはその同族のポリペプチド、タンパク質、およびペプチドを産生する目的で、本発明と共に用いるために、原核生物および/または真核生物に基づく系を使用することができる。そのような多くの系が市販され、広く入手可能である。
本発明に記載のポリヌクレオチドおよび/またはタンパク質の構造に、改変および/または変化を施してもよく、それでも類似または改善された特徴を有する分子を得、そのような生物機能同等物もまた本発明に含まれる。
生物機能同等物は、別個の配列を含有するように操作されているが、同時に「野生型」または標準的なタンパク質をコードする能力を保持しているポリヌクレオチドを含んでもよい。これは、遺伝子コードの縮重、すなわち同じアミノ酸をコードする多数のコドンの存在により達成されうる。一つの例において、当業者は、タンパク質をコードするそのポリヌクレオチドの能力を乱すことなく、ポリヌクレオチドに制限酵素認識配列を導入しようとしてもよい。
一般的に、分子の長さがより短ければ、機能を保持しながら分子内で施すことができる変化はより少なくなる。より長いドメインは、中等の数の変化を有する可能性がある。完全長のタンパク質は、より多数の変化に関して最大の寛容を有すると考えられる。しかし、その構造に高度に依存する一定の分子またはドメインは、ほとんどまたは全く改変を認容しない可能性があることを認識しなければならない。
多くの局面において、本発明は、適切なポリヌクレオチドの転写および翻訳を通して、細胞内でのペプチドおよびポリペプチドの合成に依存する。これらのペプチドおよびポリペプチドには、「天然の」アミノ酸20個およびその翻訳後修飾が含まれると考えられる。しかし、インビトロペプチド合成は、修飾および/または非通常アミノ酸の使用を許容する。表1は、例示的な、しかし修飾されたおよび/または非通常のアミノ酸を提供する。
先に考察した生物機能同等物の他に、本発明者らはまた、構造的に類似の化合物を、本発明のペプチドまたはポリペプチドの重要な部分を模倣するように製剤化してもよいと企図する。ペプチド模倣体と呼ばれるそのような化合物は、本発明のペプチドと同じ方法で用いられてもよく、よって同様に機能的同等物である。
本発明の特定の態様において、免疫学的組成物が使用される。簡潔にするために、以下の章は、例示的に過ぎない態様として本明細書において他所で記述されているように、本発明の任意のE.カニスgp19免疫学的組成物について言及する。例えば、組成物には、例えばSEQ ID NO:17もしくはSEQ ID NO:19の一部または全てを含むポリペプチドのようなE.カニスgp19ポリペプチド、SEQ ID NO:16もしくはSEQ ID NO:18の一部もしくは全てを含むポリヌクレオチドのようなgp19ポリヌクレオチド、SEQ ID NO:13を含むペプチドのようなペプチド、本発明のポリペプチドもしくはペプチドに対する抗体、またはその混合物の全てもしくは一部が含まれてもよい。抗体は、抗原に結合して、それによって例えば分子をその活性に関して少なくとも部分的に無効にするために利用されてもよい。他の態様において、抗原に対する抗体は、試料からの抗原の存在を検出するためのような、本発明の診断的局面において使用される。例示的な試料は、E.カニスもしくはE.シャフェンシス感染症を有することが疑われる動物、E.カニスもしくはE.シャフェンシス感染症に対して感受性がある動物、またはE.カニスもしくはE.シャフェンシス感染症を有する動物からの試料であってもよい。例示的な試料は、血液、血清、脳脊髄液、尿、糞、口腔内擦過標本、乳頭吸引液等から得てもよい。
本発明の一定の局面において、発現されたgp36またはgp47に対して一つまたは複数の抗体を産生してもよい。これらの抗体は、本明細書において記述される様々な診断および/または治療応用において用いられてもよい。
モノクローナル抗体(MAb)を生成するための例示的な方法は一般的に、ポリクローナル抗体を調製するための系列と同じ系列に沿って始まる。簡単に説明すると、ポリクローナル抗体は、本発明に従ってLEEまたはCEE組成物によって動物を免疫する段階、および免疫した動物から抗血清を採取する段階によって調製される。
本発明はさらに、少なくとも一つの物質に連結して抗体結合体を形成する、一般的にモノクローナル型のgp19タンパク質、ポリペプチド、およびペプチドに対する抗体を提供する。診断または治療物質としての抗体分子の有効性を増加させるために、少なくとも一つの所望の分子または部分で連結、共有結合、または複合体を形成することが慣例的である。そのような分子または部分は、少なくとも一つのエフェクターまたはレポーター分子であってもよいがそれらに限定されない。エフェクター分子は、所望の活性、例えば細胞障害活性を有する分子を含む。抗体に付着しているエフェクター分子の非制限的な例には、毒素、抗腫瘍物質、治療酵素、放射標識ヌクレオチド、抗ウイルス剤、キレート剤、サイトカイン、増殖因子、およびオリゴヌクレオチドまたはポリヌクレオチドが含まれる。対照的に、レポーター分子は、アッセイを用いて検出される可能性がある任意の部分として定義される。抗体に結合しているレポーター分子の非制限的な例には、酵素、放射標識、ハプテン、蛍光標識、リン光分子、化学発光分子、発色団、発光分子、光親和性分子、着色粒子、またはビオチンのようなリガンドが含まれる。
なおさらなる態様において、本発明は、免疫反応性ポリペプチドのような生物学的成分を結合、精製、除去、定量、および/またはそうでなければ一般的に検出するための免疫検出法に関する。本発明に従って調製される抗体は、野生型および/または変異型タンパク質、ポリペプチド、および/またはペプチドを検出するために使用されてもよい。野生型および/または変異型抗体を用いることが企図される。いくつかの免疫検出法には、いくつか例を挙げれば、酵素結合免疫吸着測定法(ELISA)、放射性免疫測定法(RIA)、免疫放射線測定法、蛍光免疫測定法、化学発光アッセイ、生物発光アッセイ、およびウエスタンブロットが含まれる。様々な有用な免疫検出法の段階が、例えばそれぞれ参照により本明細書に組み入れられる、Doolittle MH and Ben-Zeev O, 1999;Gulbis B and Galand P, 1993;De Jager R et al., 1993;およびNakamura et al., 1987のような科学文献に記述されている。
先に詳述したように、その最も単純および/または直接的な意味における免疫測定法は、結合アッセイである。一定の好ましい免疫測定法は、当技術分野において公知の、様々なタイプの酵素結合免疫吸着測定法(ELISA)および/または放射性免疫測定法(RIA)である。組織切片を用いる免疫組織化学検出も同様に特に有用である。しかし、検出はそのような技術に限定されず、および/またはウエスタンブロッティング、ドットブロッティング、FACS分析等も同様に用いてもよいと容易に認識されると考えられる。
本発明の抗体はまた、免疫組織化学(IHC)による試験のために調製された新鮮な凍結および/またはホルマリン固定の両方のパラフィン包埋組織ブロックと共に用いてもよい。これらの粒状の標本から組織ブロックを調製する方法は、様々な予後因子に関するこれまでのIHC試験において用いられて成功しており、および/または当業者に周知である(Brown et al., 1990;Abbondanzo et al., 1990;Allred et al., 1990)。
本発明の抗体はまた、細胞内組織成分を同定するために電子顕微鏡と共に用いてもよい。簡単に説明すると、電子密度の高い標識を抗体に直接または間接的に結合させる。本発明に記載の電子密度の高い標識の例は、フェリチンおよび金である。電子密度の高い標識は電子を吸収して、電子顕微鏡によって可視化することができる。
なおさらなる態様において、本発明は、先に記述した免疫検出法と共に使用するための免疫検出キットに関する。抗体は一般的に、野生型および/または変異型タンパク質、ポリペプチド、および/またはペプチドを検出するために用いられることから、抗体は好ましくはキットに含まれると考えられる。しかし、そのような成分の両方が含まれるキットを提供してもよい。このように、免疫検出キットは、ふさわしい容器手段において、野生型および/または変異型タンパク質、ポリペプチド、および/またはペプチドに結合する第一の抗体、および/または任意で免疫検出試薬、および/またはさらに任意で野生型および/または変異型タンパク質、ポリペプチド、および/またはペプチドを含むと考えられる。
薬学的組成物はまた、本発明の新規組成物を用いて調製されてもよいことが企図される。そのような場合において、薬学的組成物は、本発明の新規活性組成物と薬学的に許容される担体とを含む。当業者は過度な実験を行うことなく、本発明の活性成分の適切な用量および投与経路を容易に決定することができると考えられる。
本発明の特定の態様においては、適した容器に収容されたキットが存在する。キットは、エーリキア・カニスのようなエーリキアから個体を診断、処置、および/または防御するために適している可能性がある。特定の態様において、キットは、E.カニスgp19抗原を標的とする物質を適した容器において含む。物質は、抗体、低分子、ポリヌクレオチド、ポリペプチド、ペプチド、またはその混合物であってもよい。物質は、例えば滅菌、凍結乾燥、またはその両方のような適した剤形でキットに提供されてもよい。特定の態様において、キットは、SEQ ID NO:13、SEQ ID NO:17、またはSEQ ID NO:19(E.カニスに関して)および/またはその関連するタンパク質の一つまたは複数に対する抗体を含む。本明細書において具体的に紹介されない他のE.カニスgp19関連免疫原性関連組成物(ポリペプチド、ペプチド、または抗体が含まれる)も同様に含まれてもよい。
例示的な材料および方法
エーリキアの培養および精製
E.カニス(Jake、DJ、Demon、Louisiana、Florida、およびSao Paulo株)を、既に記述されているように増殖させた(McBride et al., 2001)。エーリキアを、Sephacryl S-1000(Amersham Biosciences, Piscataway, N.J.)でのサイズ排除クロマトグラフィーによって、既に記述されているように(Rikihisa et al., 1992)精製した。細菌を含有する分画を凍結して、抗原およびDNA起源として利用した。
E.カニスJake株ゲノムライブラリーを、HpaII制限消化を用いて構築して、既に記述されているように(McBride et al., 2001)スクリーニングした。
ライブラリーの挿入物、プラスミド、およびPCR産物を、University of Texas Medical Branch Protein Chemistry Core Laboratoryで、ABI Prism 377XL DNAシークエンサー(Perkin-Elmer Applied Biosystems, Foster City, Calif.)によってシークエンシングした。
核酸およびアミノ酸アラインメントをMegAlign(Lasergene v5.08, DNAstar, Madison, Wis.)によって行った。E.カニスgp19およびE.シャフェンシスVLPTタンパク質配列を、コンピューターアルゴリズムYinOYang 1.2およびNetOGlyc v3.1(Julenius et al., 2005)によって、可能性があるO-連結グリコシル化およびリン酸化に関して評価した。Tandem Repeat Finder(Benson, 1999)を用いて、E.カニスgp19をコードする遺伝子のタンデムリピートを分析した。可能性があるシグナル配列を、グラム陰性細菌に関して訓練したコンピューターアルゴリズムSignal Pによって同定した(Nielsen et al., 1997)。
E.カニスgp19遺伝子断片(gp19;gp19N末端、gp19N1、gp19N2、gp19N1-C、gp19C末端)を増幅するためのオリゴヌクレオチドプライマーを、手動で、またはPrimer Select(Lasergene v5.08, DNAstar, Madison Wis.)を用いることによって設計した(表2)。E.カニスgp19断片を、PCR Master mix(F. Hoffmann-La Roche Ltd, Basel, Switzerland)およびE.カニス(Jake株)ゲノムDNAを鋳型として用いて増幅した。
増幅されたPCR産物をpBAD/TOPO Thio Fusion(登録商標)またはpCR T7/NT TOPO発現ベクター(Invitrogen, Carlsbad, Calif.)に直接クローニングした。大腸菌(TOP10、Invitrogen)を、E.カニスgp19遺伝子断片を含有するプラスミドによって形質転換して、陽性形質転換体を挿入物の存在およびその方位に関してPCRによってスクリーニングして、遺伝子の読み枠を確認するためにシークエンシングした。組換え型タンパク質発現を、Overnight Express Autoinduction System 1(Novagen, Madison, Wis.)を用いて、0.2%アラビノース(pBAD/TOPO Thio Fusion)、またはIPTG(pCR T7/NT)によって誘導した。細菌を沈降させて(5,000 x gで20分間)、PBSに浮遊させ、既に記述されているように(Doyle et al., 2005)組換え型タンパク質を未変性条件で精製した。
精製E.カニスまたはE.シャフェンシスの全細胞溶解物または組換え型タンパク質をSDS-PAGEによって分離して、ニトロセルロースに転写して、一次抗体を希釈した(1:500)ことを除き、既に記述されているように(McBride et al., 2003)ウエスタンブロットを行った。抗E.カニスまたはE.シャフェンシスイヌ血清は、実験的に感染させたイヌ(それぞれ、#2995および#2551)に由来した。
組換え型タンパク質gp19のグリカン検出を、DIGグリカン検出キット(Roche, Indianapolis, IN)によって、既に記述されているように(McBride et al., 2000)行った。グリコシル組成物は、University of Georgia Complex Carbohydrate Research Centerにおいて酢酸アルジトール分析によって決定した。糖タンパク質を2 Mトリフルオロ酢酸(TFA;121℃で密封管において2時間)を用いて加水分解して、NaBD4によって還元し、無水酢酸/TFAを用いてアセチル化した。得られた酢酸アルジトールを、5970質量選択的検出器(電子衝撃イオン化モード)にインターフェースで接続したHewlett Packard 5890ガスクロマトグラフにおいて分析し、30 m Supelco 2330結合相融解シリカキャピラリーカラムにおいて分離を行った。
BALB/cマウス(Jackson Laboratories, Bar Harbor, Me.)5匹を組換え型E.カニスgp19(Thio fusion;アミノ酸4〜137位)によって免疫した。組換え型タンパク質(100μg)を0.1 mLにおいて第一の腹腔内注射のためにフロイント完全アジュバントの当量と混合して、その後の注射のためにフロイントの不完全アジュバントと混合した。マウスに2週間間隔で2回注射を行った。
E.カニスgp19エピトープ含有領域に対応するアミノ酸24個のペプチド
は、Bio-Synthesis, Inc.(Lewisville, Tx)によって合成された。
ELISAプレート(MaxiSorp(商標)表面を有するNunc-Immuno(商標)プレート、NUNC, Roskilde, Denmark)を、リン酸緩衝生理食塩液(PBS)において組換え型タンパク質またはペプチド(1.25μg/ウェル、100μL)によってコーティングした。抗原を、軽く撹拌しながらELISAプレートに4℃で終夜吸着させた後、Tween 20(0.2%)を有するトリス緩衝生理食塩液(TBST)200 μLによって3回洗浄し、TBSTにおいて3%BSAによって室温で1時間撹拌しながらブロックした後、再度洗浄した。3%BSA TBSTにおいて希釈した回復期の抗E.カニスイヌ血清(1:4000)を各ウェルに加えて(100μL)、室温で軽く撹拌しながら1時間インキュベートした。プレートを4回洗浄して、3%BSA TBSTにおいてアルカリホスファターゼ標識ヤギ抗イヌIgG(H+L)二次抗体(1:2500)(Kirkegaard & Perry Laboratories)を加えて1時間インキュベートした。プレートを4回洗浄して基質(100μL)(BluePhos, Kirkegaard & Perry Laboratories)を各ウェルに加えた。プレートを暗所で撹拌しながら30分間インキュベートして、発色をマイクロプレートリーダー(Versamax, Molecular Devices, Sunnyvale, Calif.)においてA650で読み取って、SoftmaxPro v4.0(Molecular Devices)によってデータを分析した。棒グラフの光学密度の読み取りは、緩衝液のみのウェルのO.D.を差し引いたウェル2個の平均値を表す。組換え型gp19の過ヨウ素酸塩処置を、100 mM酢酸ナトリウム緩衝液において、100 mMメタ過ヨウ素酸ナトリウムによって20分間行った。偽処置対照タンパク質を過ヨウ素酸塩の非存在下で同じ緩衝液においてインキュベートした。プレートを乳汁希釈液/ブロッキング溶液によってブロックしたことを除き、E.カニス抗原に関して先に記述したようにELISAを行った(Kirkegaard & Perry Laboratories, Gaithersburg, Md)。
免疫金電子顕微鏡は、一次抗E.カニスgp19抗体を1:10,000倍希釈したことを除き、既に記述されているとおりに(Doyle et al., 2005)行った。非感染DH82細胞を陰性対照として抗E.カニスgp19と反応させた。
抗原スライドガラスを既に記述されているように(McBride et al., 2001)E.カニス(Jake株)に感染させたDH82細胞から調製した。1:100倍希釈した組換え型E.カニスジスルフィド結合形成タンパク質(DsbA)(McBride et al., 2002)に対する単特異的ウサギ血清を各ウェル(15μL)に加えて、30分間インキュベートした。スライドガラスを洗浄して、マウス抗gp19(1:100倍希釈)を加えて、30分間インキュベートした。1:100倍希釈したAlexa Fluor(登録商標)488ヤギ抗ウサギIgG(H & L)二次抗体(Molecular Probes, Eugene, Or.)を加えて30分間インキュベートした後、洗浄して、その後ローダミン標識ヤギ抗マウスIgG(H&L)二次抗体(Kirkegaard & Perry Laboratories)を加えてインキュベートした。封入培地(ProLong Gold, Molecular Probes)を加えて、スライドガラスをOlympus FV-1000レーザー共焦点顕微鏡およびFluoview(商標)ソフトウェアによって観察した。
北米(Jake, Demon, DJ、Louisiana、およびFlorida)分離株、南米(ブラジル)分離株(Sao Paulo;Marcelo Labruna氏の厚意により提供)、およびメキシコの感染したイヌ(Yucatan;Carlos Perez氏の厚意により提供)から単離されたDNAを鋳型として用いて、隣接するプライマー(フォワード-E.カニス p19 FOR
およびリバース-E.カニス p19 REV
を用いて全gp19遺伝子を増幅した。アンプリコンをTAクローニングベクター(pCR 2.1, Invitrogen)にクローニングして、プラスミドを大腸菌(TOP10)に形質転換した。gp19を含有するプラスミドをプラスミド精製キット(Roche)によって精製してシークエンシングした。
E.カニスgp19主要免疫反応性タンパク質の分子的同定
E.カニスゲノム発現ライブラリーのスクリーニングにより、抗体と強く反応して、〜3 kb挿入物を含有するクローンが同定された。このクローンを部分的にシークエンシング(〜900 bp)して、不完全なORFを明らかにして、これを、利用できるE.カニスゲノム配列と整列させると、3 kbクローン内に存在する遺伝子を完全に同定した。クローンは、リボフラビン生合成タンパク質(RibD)をコードする完全な1086 bpの遺伝子、および未知機能の予測質量15.8kDaのアミノ酸137個のタンパク質をコードする下流の414 bpのORFを含有した。タンパク質は、公知の免疫反応性タンパク質であるE.シャフェンシスVLPTと>53%の同一性および〜60%の全相同性を有するアミノ酸47個のC末端領域を有した;したがって、この遺伝子をさらなる研究のために検討した。E.カニスタンパク質は、E.シャフェンシスVLPTと実質的なC末端領域相同性(60%)を有したが、特徴的なタンデムリピートを欠損した。E.カニスタンパク質は、いくつかの予測O-グリカン付着部位と、予測Yin-Yang部位(グリコシル化/リン酸化)であるアミノ酸1個(セリン44位)を有した。染色体における遺伝子の位置に関するさらなる分析により、414-bpのE.カニス遺伝子に関して同じ隣接遺伝子およびE.シャフェンシスvlptの遺伝子が明らかとなった(図1)。
システイン(14個;10.2%)、セリンおよびトレオニン(13個;合わせて9.5%)、グルタミン酸(13個;9.5%)、およびチロシン(13個;9.5%)は、E.カニスgp19において最も頻繁に存在するアミノ酸であり、全アミノ酸含有量の38%より多くを占めた。システイン残基は最初のアミノ酸50個には存在しないが、タンパク質のカルボキシル末端領域(最後のアミノ酸28個)はシステインおよびチロシンが優勢であった(55%)。セリン、トレオニン(それぞれ7個;27%)およびグルタミン酸残基(6個;23%)は、小さい中心領域(STEに富むパッチ;アミノ酸26個)における最も頻繁に存在するアミノ酸であり、アミノ酸含有量の50%を占めた。
E.カニスgp19を、地理的に分散した北米(Jake、DJ、Demon、Louisiana、およびFlorida)、および南米(ブラジル;Sao Paulo)分離株において調べたところ、完全に保存された。メキシコ(Yucatan)のE.カニスに感染したイヌから増幅したgp19配列は、それによってグリシンからアスパラギン酸への一アミノ酸変化が起こる一ヌクレオチド置換(71位)を有した。
gp19融合組換え型タンパク質の質量は、〜35kDaであり、融合タグ(13kDa)が含まれる予測(32kDa)質量より大きかった(〜3kDa)が、本来のgp19(19kDa)の予測(16kDa)質量より〜3kDa大きいことで一致した(図2A)。同様に、組換え型融合タンパク質として発現されたgp19(N末端、N1およびN1c)のより小さい断片は、そのアミノ酸配列によって予測されるより大きい(〜6kDa)分子量を有した(方位に関しては図5を参照されたい)。組換え型gp19は、E.カニスを実験的に感染させたイヌ(#2995)の血清と強く反応した(図2B)。
糖質は、STE-パッチを含有する組換え型gp19(N末端、方位に関しては図4を参照されたい)において検出された(図3)。さらに、酢酸アルジトール分析を用いたUniversity of Georgia Complex Carbohydrate Research CenterによるN末端断片のグリコシル組成分析により、グルコースおよびキシロースの存在が明らかとなった。
抗組換え型gp19抗血清は、E.カニス全細胞溶解物における19kDaタンパク質と強く反応し、このタンパク質は、抗E.カニスイヌ血清によって同様に認識された(図4A)。抗組換え型gp19血清はまた、もう一つの十分に特徴付けされたE.カニス糖タンパク質であるgp36とも弱く反応し、これらの二つのタンパク質の間の弱い交叉反応性を示唆した。抗組換え型gp19血清は、E.シャフェンシス全細胞溶解物における抗原を認識しなかった(図4B)。
E.シャフェンシスgp47およびE.カニスgp36が含まれる他の糖タンパク質のエピトープ決定基が決定されている(Doyle et al., 2006)。E.カニスgp19は感染したイヌの抗体によって強く認識され、これは初期抗体反応を誘発する(McBride et al., 2003)。エピトープ含有領域を同定するために、E.カニスgp19遺伝子断片(N末端、C末端、N1、N2、N1C)(図5)をプライマー(表2)によって増幅して、重なり合う組換え型融合タンパク質を作製した。発現されたgp19断片(N1、N2、N末端およびC末端)は、SDS-PAGEによって予測された質量より大きい(2〜6kDa)質量を示した(図4A)。抗体は、N末端の組換え型断片と強く反応したが、C末端断片とは反応せず、エピトープがタンパク質のN末端領域に存在することを示している(図5B)。エピトープ含有領域のさらなる局在を、断片N1およびN2によって決定した。抗体は、N1(アミノ酸42個)と強く反応して、N2は弱く認識された(図5B)。他のエーリキアタンパク質において同定された他のエピトープと一貫して、高いSer/Thr/Glu含有量(N1C;アミノ酸24個)を有するN1内の領域は、より大きいN1断片と一致して抗体と強く反応して、一つの主要なエピトープがN1Cのアミノ酸24個の領域に存在することを証明している。
糖質は、主要な免疫反応性糖タンパク質における重要なエピトープ決定基であることがこれまでに示されている(Doyle et al., 2006)。糖質は、gp19のN末端領域において検出され、エピトープはSTE-に富むパッチに局在した。グリカン付着部位も同様に、STEに富むパッチ内で予測された。抗体認識における糖質決定基の役割を決定するために、組換え型N1Cの免疫反応性を合成ペプチドの免疫反応性と比較した。ELISAによって、合成ペプチドは、組換え型版より抗E.カニスイヌ血清(#2995)に対する免疫反応性が実質的に低かった(図6)。同様に、グリカン構造を変更させるために過ヨウ素酸塩によって処置したN1Cは、偽処置したN1Cタンパク質より免疫反応性が低かった(図6)。
いくつかの特徴付けされたエーリキア糖タンパク質は、高密度中心を有するエーリキア(gp120、gp36、およびgp47)において異なるように発現されている。しかし、免疫電子顕微鏡によって、E.カニスgp19は、網状および高密度中心を有するエーリキアの両方の細胞質内で観察されたが、同様に、モルラの原線維マトリクスにおいて細胞外に検出され、モルラの膜に会合した(図7)。これらの結果は、抗gp19(図8A)および抗Dsb抗体(エーリキアに存在するが、細胞外ではない)を用いる共焦点免疫蛍光顕微鏡を用いた知見と一致し(図8B)、Dsbおよびgp19の両方がエーリキアにおいて同時局在することを示しており、抗gp19のみ(融合)によってモルラの膜の境界が染色されることを示している(図8C)。
エーリキア・カニスgp19(Jake、DJ、Demon、Louisiana、Florida、Sao Paulo、およびMexico)分離株からのE.カニスgp19遺伝子配列は、GenBank(登録商標)に寄託されており、以下のそれぞれのアクセッション番号DQ858221、DQ858222、DQ858223、DQ858224、DQ858225、DQ860145、およびDQ858226を割付された。これらのアクセッション番号は全て、SEQ ID NO:18のポリヌクレオチド配列およびSEQ ID NO:19のポリペプチド配列において表されるGenBank(登録商標)アクセッション番号DQ858226を除き、SEQ ID NO:16のポリヌクレオチド配列およびSEQ ID NO:17のポリペプチド配列において表される。
本発明の有意性
実験的感染の際のE.カニスの主要な免疫反応性抗原に対する抗体反応の動態は、これまでの研究において十分に確立されている(McBride et al., 2003)。二つのE.カニス抗原(37および19kDa)は、急性の免疫応答において一貫して初期に認識される。より最近の研究において、高密度中心を有するエーリキアにおける異なるように発現される糖タンパク質であって分泌される、37kDaタンパク質(gp36)の同定および分子的特徴付けが記述された(Doyle et al., 2006)。より主要な免疫反応性タンパク質がE.カニスおよびE.シャフェンシスにおいて分子的に特徴付けされていることから、多くが高いセリン/トレオニン含有量を示し、タンデムリピートを含有し、およびグリコシル化されることは明らかとなった(Doyle et al., 2006;McBride et al., 2000;Yu et al., 1997;Yu et al., 2000)。
保存された免疫反応性糖タンパク質gp36およびgp19による酵素結合免疫吸着測定法によるエーリキア・カニス感染症の感度の増強および種特異的免疫診断
エーリキアカニスは、世界中に分布し、おそらく致死的なイヌの疾患であるイヌ単球エーリキア症(CME)の一次病因物質である。本発明者らは、保存された二つの主要な免疫反応抗原、すなわちE.カニス特異的抗体反応を誘発する最初のタンパク質であるgp36およびgp19の同定、ならびに急性感染症において後に強い抗体反応を誘発するgp200およびp28の同定をこれまでに報告した。本発明において、組換え型E.カニスタンパク質5個の感度および特異性を、酵素結合免疫吸着測定法(ELISA)を用いてE.カニス感染症の免疫診断に関して評価した。組換え型gp36、gp19、およびgp200ポリペプチド(NおよびC)は、E.カニスに天然に感染したイヌにおける抗体の検出において、IFA(至適基準(ゴールドスタンダード))と比較して100%の感度および特異性を示した。さらに、IFAと比較してgp36およびgp19の増強された感度は、実験的に感染させたE.カニスイヌにおいて証明され、接種後14日目に2週間も早く検出された。さらに、gp36およびgp19は、E.シャフェンシスに感染したイヌからの血清中の抗体と交叉反応せず、このように、E.カニスとE.シャフェンシス感染症の種特異的な血清学的識別を提供した。これは、「至適基準(ゴールドスタンダード)」IFAと比較した組換え型タンパク質技術の改善された検出能を証明した最初の試験であり、種特異的同定および急性感染症において初期に起こる低い抗体力価に関連する感度の欠如が含まれる、E.カニス感染症の免疫診断に関連する残りの障害を消失させる可能性がある。
実験動物
実験的E.カニス感染症において用いられたイヌおよびプロトコールは既に記述された(McBride et al., 2003)。実験的E.シャフェンシス感染症のために、年齢1歳の健康なビーグル犬2匹を販売元から得て、全米実験動物飼育信任協会(American Association for the Accreditation of Laboratory Animal Care)によって信任されているUniversity of Texas Medical Branch Laboratory Animal Resourcesの施設に収容した。試験の前に、イヌは、身体検査において異常がないことが証明され、IFAによるE.シャフェンシスに対する検出可能な抗体を有しなかった。実験プロトコールは、Animal Care and Use Committee at the University of Texas Medical Branchによって承認された。
E.シャフェンシス接種物の組織培養感染用量(TCID)を、24ウェル組織培養プレートに播種したDH82単層のMEMにおける接種物(0.2 ml)の10倍希釈液(10-1〜10-5)の接種によって決定した。接種物を37℃で1時間インキュベートした後、増殖培地1 mlを加えた。接種の7日後、IFAによる接種細胞におけるE.シャフェンシスの同定によってTCIDを決定した。E.カニス接種物のTCIDは、既に記述されたように決定した(Gaunt et al., 1996)。
イヌ2匹を既に記述されたように(Chen et al., 1995)、マウス胚細胞株において増殖させたE.シャフェンシス(Arkansas株)に実験的に感染させた。T-150フラスコ6本からの感染細胞を、細胞が80%感染した後、13,000×gで25分間遠心分離した後回収した。イヌ2匹に、E.シャフェンシス細胞浮遊液4 mlを調製直後に静脈内に投与して、TCID50をレトロスペクティブに決定した。免疫血清を接種の4週間後に採取して、抗E.シャフェンシスおよび抗E.カニス抗体力価をIFAによって決定した。イヌ15匹をE.カニスに実験的に感染させ、既に記述されているように(McBride et al., 2003)血清を毎週採取した。
CMEに一致する臨床徴候または出血異常を示す病気のイヌからの血清試料が、既に記述されているように(McBride et al., 2001)、州全体の獣医師からLouisiana Veterinary Medical Diagnostic Laboratory(LAVMDL)に提出された。血清をIFA(1:40)によってスクリーニングして、エーリキア陽性および陰性血清の群に分けた。健康なイヌからの血清を、商業的ブリーダー(Marshall Farms, New York)からの1歳の健康なビーグルから得た。
gp19(ヌクレオチド7〜411位)、gp36(ヌクレオチド28〜816位)、gp200N(ヌクレオチド22〜564位)、およびgp200C(ヌクレオチド3665〜4188位)およびp28-3遺伝子(ヌクレオチド82〜695位)を、既に記述されているように(Doyle et al., 2006;McBride et al., 2006;McBride et al., 2001;McBride et al., 2000;Nethery et al., 2006)、原核生物発現ベクターにクローニングした。プライマーを、pUni/V5-His-TOPOベクターへのアンプリコンのインフレーム挿入のために設計して、pBAD Thio-E Echoアクセプターベクター(p28)(Invitrogen Corporation, Carlsbad, Calif.)と組換えるか、またはpBAD/TOPO ThioFusion発現ベクター(gp19、gp36、gp200N、およびgp200C)(Invitrogen)に直接クローニングした。
gp19、gp36、gp200N末端およびgp200C末端組換え型タンパク質を、0.02%アラビノースによって2時間誘導後、大腸菌(TOP10)において発現させた。細菌(発酵培養物10 Lから)を5,000×gで40分間遠心分離後回収して、PBSに浮遊させた。溶解緩衝液(PBS、0.05%Triton 100X、0.5 M NaCl、1 mM PMSFおよび5 mMイミダゾール)において浮遊させた細菌を溶解する段階、および氷水においてフレンチプレスを用いて1100 psiで破壊する段階、および10,000×gで1時間遠心分離することによって不溶性材料を沈降させる段階によって、組換え型タンパク質(gp19、gp36、gp200N、およびgp200C)を未変性条件で精製した。透明にした上清を、平衡にしたNi-NTAカラム(50 mlカラム)に充填した。結合した組換え型タンパク質を、増加濃度のイミダゾール(4%、8%、20%、および100%)のカラム容積の15倍によって洗浄して、溶解緩衝液において250 mMイミダゾールによって溶出させた。溶解緩衝液(50 mM Tris-HCl、400 mM NaCl、1 mM PMSF、および0.1%Triton 100X)において浮遊させた沈降細菌を50 Wで30分間(20秒オン、20秒オフ)、氷水中で超音波処理する段階、および30分間の遠心分離(10,000×g)によって不溶性材料を沈降させる段階によって、組換え型p28タンパク質を変性条件で精製した。沈降物を最初は2 M尿素によって3回洗浄し、次に溶解緩衝液において4 M尿素によって洗浄した後、室温で30分間撹拌する水によって洗浄した後、30分間沈降させた(6000 g)。最終的な洗浄は、4 M尿素+1%Triton X100および0.1%デオキシコール酸において室温で1時間撹拌することによって行い、遠心分離(10,000×g、45分間)によって沈降させた。沈降物を試料緩衝液(4 M尿素、6 Mグアニジンおよび50 mM 2-メルカプトエタノール)において4℃で終夜撹拌しながら浮遊させて、沈降させた(10,000×g、40分間)。透明にした上清を平衡にした逆相カラム(26/10 XK, Amersham Biosciences)に充填して、緩衝液A(0.1%TFA)によって洗浄し、緩衝液Aおよび緩衝液B(0.1%TFAおよび85%アセトニトリル)の増加比(0%〜100%緩衝液B)のカラム容積の6倍によって溶出した。
E.カニス組換え型タンパク質5個(gp36、gpl9、p28、gp200N、およびgp200C)に対する抗体反応を、酵素結合免疫吸着測定法(ELISA)によって評価した。ELISAプレートを選ぶこと、タンパク質濃度、血清希釈、およびブロッキング緩衝液が含まれるELISAプロトコールを最適化した。組換え型gp36(0.3μg/ml)、gp19(1.2μg/ml)、p28(2.5μg/ml)、gp200N(1.4μg/ml)、gp200C(0.5μg/ml)、およびチオレドキシン対照(2.5μg/ml)をPBSにおいて希釈して、アッセイプレート(Polysorp(商標)表面を有するNunc-Immuno(商標)プレート、NUNC, Roskilde, Denmark)ウェルを、組換え型タンパク質を含有する50μlによってコーティングして、室温で2時間または4℃で終夜インキュベートした。プレートを、洗浄緩衝液(PBSおよびTween 20、0.05%)200μlによって4回洗浄して、ブロッキング緩衝液(PBSにおける10%ウマ血清;HyClone Laboratories, Inc., Logan, Utah)100 μlによってブロックして、37℃で1時間インキュベートした。それぞれの一次抗体をブロッキング緩衝液において1:250倍希釈して、抗体50μlを、抗原を含有する試験ウェル、組換え型チオレドキシン(陰性対照)を含有する対照ウェル、および抗原を含有しないブランクウェルに1試料あたり2個ずつ加えて、室温で1時間インキュベートした。プレートを洗浄して、ブロッキング緩衝液において1:1000に希釈したアフィニティ精製ペルオキシダーゼ標識ヤギ抗イヌIgG(H&L)(Kirkegaard & Perry Laboratories, Gaithersburg, MD)50μlを各ウェルに加えた。プレートを室温で1時間インキュベートして、洗浄した。基質(100μl)(Sure Blue Reserveペルオキシダーゼ基質、Kirkegaard & Perry Laboratories)を加えた後に結合抗体を検出した。プレートを、室温で20分間インキュベートした後、調整可能なマイクロプレートリーダー(Molecular Devices, Sunnyvale. Calif.)においてA630で読み取った。各試料の吸光度を630 nm(OD630)での光学密度としてプロットして、陰性対照ウェルからのバックグラウンドをそれぞれの対応する試料から差し引いて最終的な吸光度を決定した。
E.カニス組換え型タンパク質をドデシル硫酸ナトリウム-ポリアクリルアミドゲル電気泳動(SDS-PAGE)によって分離して、ニトロセスロース膜に転写して、既に記述されているように(McBride et al., 2003)ウエスタン免疫ブロットを行った。
E.カニスに実験的に感染させた、臨床的に病気の、および天然に感染したイヌの抗体状態を、これまでに記述されているように決定した(McBride et al., 2003)。健康なイヌ、ならびにE.シャフェンシスに実験的または天然に感染したイヌの抗体状態を、E.カニス(Jake株)およびE.シャフェンシス(Arkansas株)抗原スライドガラスによって同様に行った。血清を1:64で開始するPBSにおける2倍希釈を用いてアッセイした。
E.カニス主要免疫反応性タンパク質に対する抗体は、急性感染症の際に異なるように発生する(McBride et al., 2003)。実験的に感染させたイヌ3匹におけるE.カニス組換え型タンパク質に対する抗体反応をELISAおよびウエスタン免疫ブロットによって調べて、二つの免疫測定法の相関を決定し、本来のE.カニス溶解物についてこれまでに観察された動態が組換え型タンパク質について再現されるか否かを決定した。E.シャフェンシスに感染したイヌ3匹からの血清における抗体は、ウエスタン免疫ブロットおよびELISAの両方によって組換え型gp36と最も早く(14日目)反応し、次にgp19(21日目)と反応した。p28およびgp200 N-およびC末端ポリペプチドは、類似の検出感度を示し、感染の過程(28〜35日)において後の、gp36よりおよそ2週間後に抗体と反応する(図9)。
免疫診断に関する現在の「至適基準(ゴールドスタンダード)」は、間接的蛍光抗体(IFA)試験である。この基準を用いて本発明者らの組換え型タンパク質ELISAの感度および特異性を決定した。組換え型gp36、gp19、gp200Nおよびgp200Cに対する抗体は、E.カニスに実験的に感染させた(範囲1280〜>10,240)、および天然に感染した(抗体力価:4、≧3200;4、1600;3、800;および2、400)イヌのELISAによって陽性IFA試料29例全てにおいて検出された(表3)。組換え型タンパク質(gp36、gp19、gp200NおよびC末端)は、健康なおよび病気のイヌからの血清に対してIFAと比較して100%の特異性を示した(表3)。逆に、組換え型p28は、いくつかのイヌ血清について高レベルの非特異的抗体結合(陰性対照レベルより上)を示し、このように実質的により低い特異性(60%)を有した。
抗体反応の動態が定義された(McBride et al., 2003)E.カニスに実験的に感染させたイヌ(n=15)を用いて、ELISAにおける組換え型タンパク質と比較してIFAの検出感度を決定した。実験的に感染させたイヌ(例外1匹)はE.カニスgp36に対するIgG抗体を発生させ、これは、接種後14日(dpi)までにELISAによって検出可能であり、これらのイヌの3分の1(n=5)は、gp19と反応する抗体を有した(表3)。逆に、いずれのイヌも、14 dpiではIFAによって検出可能なIgG抗体を有しなかった(表3)。抗体は、21 dpiでイヌ4匹に限ってIFAによって検出可能であった。IFAおよび組換え型糖タンパク質ELISA感度は28 dpiで同等となったが、完全な一致は42 dpiまで達成されなかった(表4)。
E.シャフェンシス(実験的感染2匹および天然感染2匹)に感染したイヌ4匹はE.カニス抗原に対してIFA陽性であったが、E.カニス組換え型タンパク質(gp36、gp19、およびgp200)と反応しなかった。E.シャフェンシスに実験的に感染させたイヌの血清における抗E.シャフェンシス抗体力価は≧1280であった。E.シャフェンシスに天然に感染したイヌの抗E.シャフェンシスIFA抗体力価は、相同な抗原(E.カニスに対して1:64)に対して1:400および1:800であった。
急性感染期におけるCMEの初期診断後にドキシサイクリンによる処置は、最善の予後を保証する。IFAによるE.カニス抗体の検出は、CMEの診断のために現在最も広用いられている方法であり、「至適基準(ゴールドスタンダード)」であると見なされる(Waner et al., 2001)。しかし、IFAは大きい参照診断研究所において慣習的に行われており、高レベルの技術的経験を必要とすることから、ポイントオブケアでの診断またはスクリーニング試験としては有用ではなく、研究所間および研究所内の変動および誤解釈を受けやすく、高価な蛍光顕微鏡機器を必要とする。さらに、IFAは、十分に定義されておらず、他の属のメンバー(E.シャフェンシスおよびE.エウィンギイ(E. ewingii))および他の属(ネオリケッチア)の生物に対して生成された抗体と反応することができる抗原(熱ショックおよびp28/p30)を含有するE.カニス感染細胞を用いる(Comer et al., 1999)。このように、イヌにおける多数のダニ媒介性感染症の可能性は、IFAによる血清学的診断を複雑にする(Kordick et al., 1999)。現在、市販されているポイントオブケア診断試験(Snap 3Dx, IDEXX Laboratories;Dip-S-Tick, PanBio InDx;Immunocomb, Biogal)は、全細胞抗原または二つの主要外膜タンパク質(p30およびp30-1)からの合成もしくは組換え型タンパク質/ペプチドを利用する。Snap 3Dxアッセイは、最も広く用いられている試験の一つであるように見えるが、最近の二つの研究は、感度はIFAより実質的に低いように見えるという結論に達し(Belanger et al., 2002;Harrus et al., 2002)、この問題は低い(<320)抗体力価を含有する血清についてより顕著である(Harrus et al., 2002;O'Connor et al., 2006)。さらに、市販のアッセイは全て、イヌにおいて感染症を引き起こすことが知られている様々なエーリキア種を区別することができない。よって、特に初期急性感染期に、よりよい感度、および感染症の原因となる特異的物質の識別能を提供することができ、十分に特徴付けがなされて一貫して再現可能な組換え型または合成抗原を利用する免疫診断が必要であるが、現在利用可能ではない。
本発明のワクチン
本発明の特定の局面において、本発明の免疫原性組成物は、サブユニットワクチンのようなワクチンとして適している。本発明の他の局面において、免疫原性組成物は免疫防御的であると呼ばれる。
本明細書において言及した全ての特許および刊行物は、本発明が属する当業者のレベルを示している。全ての特許および刊行物は、それぞれの個々の刊行物が具体的および個々に参照により本明細書に組み入れられると示されるのと同じ程度に参照により本明細書に組み入れられる。
米国特許第5,440,013号
米国特許第5,618,914号
米国特許第5,670,155号
米国特許第5,446,128号
米国特許第5,710,245号
米国特許第5,840,833号
米国特許第5,859,184号
米国特許第5,929,237号
米国特許第5,475,085号
米国特許第5,672,681号
米国特許第5,674,976号
米国特許第4,554,101号
Claims (55)
- (a)SEQ ID NO:17もしくはSEQ ID NO:19を含む、単離されたポリペプチド;
(b)(a)のポリペプチドと少なくとも70%同一である、単離されたポリペプチド;
(c)SEQ ID NO:13を含む、単離されたポリペプチド;または
(d)SEQ ID NO:13と少なくとも70%同一である、単離されたポリペプチド
のうちの一つまたは複数を含む薬学的組成物であって、
該ポリペプチドが、薬学的に許容される希釈剤に分散されている、
薬学的組成物。 - (b)が、(a)のポリペプチドと少なくとも75%同一であるポリペプチドとしてさらに定義される、請求項1記載の組成物。
- (b)が、(a)のポリペプチドと少なくとも80%同一であるポリペプチドとしてさらに定義される、請求項2記載の組成物。
- (b)が、(a)のポリペプチドと少なくとも85%同一であるポリペプチドとしてさらに定義される、請求項3記載の組成物。
- (b)が、(a)のポリペプチドと少なくとも90%同一であるポリペプチドとしてさらに定義される、請求項4記載の組成物。
- (b)が、(a)のポリペプチドと少なくとも95%同一であるポリペプチドとしてさらに定義される、請求項5記載の組成物。
- ワクチン組成物としてさらに定義される、請求項1記載の組成物。
- ポリペプチドが、一つまたは複数の糖質部分を含むとしてさらに定義される、請求項1記載の組成物。
- (a)のポリペプチドがSEQ ID NO:17を含む、請求項1記載の組成物。
- (a)のポリペプチドがSEQ ID NO:19を含む、請求項1記載の組成物。
- (c)のポリペプチドが、アミノ酸24〜50個の長さであるとしてさらに定義される、請求項1記載の組成物。
- (d)のポリペプチドが、SEQ ID NO:13と少なくとも80%同一であるとしてさらに定義される、請求項1記載の組成物。
- (d)のポリペプチドが、SEQ ID NO:13と少なくとも85%同一であるとしてさらに定義される、請求項12記載の組成物。
- (d)のポリペプチドが、SEQ ID NO:13と少なくとも90%同一であるとしてさらに定義される、請求項13記載の組成物。
- (d)のポリペプチドが、SEQ ID NO:13と少なくとも95%同一であるとしてさらに定義される、請求項14記載の組成物。
- (a)SEQ ID NO:16もしくはSEQ ID NO:18を含むポリヌクレオチド;または
(b)ストリンジェントな条件下で(a)のポリヌクレオチドとハイブリダイズすることができるポリヌクレオチド
を含む単離された核酸分子によってコードされる単離されたポリペプチドを含む薬学的組成物であって、
該ポリペプチドが、SEQ ID NO:17またはSEQ ID NO:19に対して少なくとも70%の同一性を有し、かつ該ポリペプチドが、薬学的に許容される希釈剤に分散されている、
薬学的組成物。 - ポリペプチドがSEQ ID NO:17またはSEQ ID NO:19と少なくとも75%同一である、請求項16記載の組成物。
- ポリペプチドがSEQ ID NO:17またはSEQ ID NO:19と少なくとも80%同一である、請求項17記載の組成物。
- ポリペプチドがSEQ ID NO:17またはSEQ ID NO:19と少なくとも85%同一である、請求項18記載の組成物。
- ポリペプチドがSEQ ID NO:17またはSEQ ID NO:19と少なくとも90%同一である、請求項19記載の組成物。
- ポリペプチドがSEQ ID NO:17またはSEQ ID NO:19と少なくとも95%同一である、請求項20記載の組成物。
- (a)SEQ ID NO:16もしくはSEQ ID NO:18を含むポリヌクレオチド;または
(b)ストリンジェントな条件下で(a)のポリヌクレオチドとハイブリダイズすることができるポリヌクレオチドであり、かつSEQ ID NO:17もしくはSEQ ID NO:19に対して少なくとも70%の同一性を有するポリペプチドをコードする、ポリヌクレオチド
を含み、かつ異種プロモーターに機能的に連結している、単離された核酸分子。 - (a)が、SEQ ID NO:16を含むポリヌクレオチドとしてさらに定義される、請求項22記載の単離された核酸分子。
- (a)が、SEQ ID NO:18を含むポリヌクレオチドとしてさらに定義される、請求項22記載の単離された核酸分子。
- (b)が、SEQ ID NO:17またはSEQ ID NO:19と少なくとも75%同一であるポリペプチドをコードするポリヌクレオチドとしてさらに定義される、請求項22記載の単離された核酸分子。
- (b)が、SEQ ID NO:17またはSEQ ID NO:19と少なくとも80%同一であるポリペプチドをコードするポリヌクレオチドとしてさらに定義される、請求項25記載の単離された核酸分子。
- (b)が、SEQ ID NO:17またはSEQ ID NO:19と少なくとも85%同一であるポリペプチドをコードするポリヌクレオチドとしてさらに定義される、請求項26記載の単離された核酸分子。
- (b)が、SEQ ID NO:17またはSEQ ID NO:19と少なくとも90%同一であるポリペプチドをコードするポリヌクレオチドとしてさらに定義される、請求項27記載の単離された核酸分子。
- (b)が、SEQ ID NO:17またはSEQ ID NO:19と少なくとも95%同一であるポリペプチドをコードするポリヌクレオチドとしてさらに定義される、請求項28記載の単離された核酸分子。
- 異種プロモーターが真核生物プロモーターである、請求項22記載の単離された核酸分子。
- 異種プロモーターが原核生物プロモーターである、請求項22記載の単離された核酸分子。
- ベクター中に含まれるとしてさらに定義される、請求項22記載の単離された核酸分子。
- ベクターがウイルスベクターまたは非ウイルスベクターである、請求項32記載の単離された核酸分子。
- ウイルスベクターが、アデノウイルスベクター、レトロウイルスベクター、またはアデノ随伴ウイルスベクターを含む、請求項33記載の単離された核酸分子。
- リポソーム中に含まれる、請求項22記載の単離された核酸分子。
- SEQ ID NO:13、SEQ ID NO:17、およびSEQ ID NO:19からなる群より選択されるアミノ酸配列の一つまたは複数と免疫学的に反応する、単離された抗体。
- モノクローナル抗体であるか、ポリクローナル抗血清中に含まれるか、または抗体断片である、請求項36記載の抗体。
- 請求項22〜35のいずれか一項記載のポリヌクレオチドを含む宿主細胞を提供する段階;および
コードされたポリペプチドを産生するために、ポリヌクレオチドを発現させるように宿主細胞に適した条件下で細胞を培養する段階
を含む、ポリペプチドを産生する方法。 - ポリペプチドを単離する段階をさらに含む、請求項38記載の方法。
- ストリンジェントな条件下でSEQ ID NO:16またはSEQ ID NO:18とゲノムDNAとをハイブリダイズさせる段階、および
SEQ ID NO:16またはSEQ ID NO:18によって検出されたポリヌクレオチドを単離する段階
を含む、ポリヌクレオチドを産生する方法。 - 請求項40記載の方法に従って調製された、単離されたDNA。
- 請求項1〜37のいずれか一項記載の組成物の治療的有効量を個体に送達する段階を含む、個体における免疫応答を誘導する方法。
- E.カニス(E. canis)に曝露される前の被験体、またはE.カニスに曝露されたこともしくはE.カニスに感染していることが疑われる被験体に、請求項1〜37のいずれか一項記載の組成物の有効量を投与する段階を含む、被験体におけるE.カニス感染症を抑制する方法。
- (a)SEQ ID NO:17、SEQ ID NO:19、もしくはその両方のポリペプチド;または
(b)SEQ ID NO:13、SEQ ID NO:17、およびSEQ ID NO:19からなる群より選択されるアミノ酸配列と免疫学的に反応する抗体
の一つまたは両方に関して、個体からの試料をアッセイする段階を含む、個体におけるE.カニス感染症を同定する方法。 - (a)のポリペプチドがSEQ ID NO:17である、請求項44記載の方法。
- (a)のポリペプチドがSEQ ID NO:19である、請求項44記載の方法。
- (a)のポリペプチドがSEQ ID NO:17およびSEQ ID NO:19の両方である、請求項44記載の方法。
- (b)の抗体がSEQ ID NO:13のアミノ酸配列と免疫学的に反応する、請求項44記載の方法。
- (b)の抗体がSEQ ID NO:17のアミノ酸配列と免疫学的に反応する、請求項44記載の方法。
- (b)の抗体がSEQ ID NO:19のアミノ酸配列と免疫学的に反応する、請求項44記載の方法。
- (b)が、抗体に関してELISAによりアッセイすることとしてさらに定義される、請求項44記載の方法。
- ELISAにより、(b)の抗体以外の一つまたは複数のE.カニス抗体に関してアッセイすることが可能になる、請求項51記載の方法。
- 他のE.カニス抗体が、gp36、gp19、gp28/30、およびgp200の抗体からなる群より選択される、請求項52記載の方法。
- (a)SEQ ID NO:17もしくはSEQ ID NO:19を含む、単離されたポリペプチド;
(b)(a)のポリペプチドと少なくとも70%同一である、単離されたポリペプチド;
(c)SEQ ID NO:13を含む、単離されたポリペプチド;
(d)SEQ ID NO:13と少なくとも70%同一である、単離されたポリペプチド;
(e)SEQ ID NO:16もしくはSEQ ID NO:18を含むポリヌクレオチド;
(f)ストリンジェントな条件下で(a)のポリヌクレオチドとハイブリダイズすることができるポリヌクレオチドであり、かつSEQ ID NO:17もしくはSEQ ID NO:19に対して少なくとも70%の同一性を有するポリペプチドをコードする、ポリヌクレオチド;または
(g)SEQ ID NO:13、SEQ ID NO:17、およびSEQ ID NO:19からなる群より選択されるアミノ酸配列の一つまたは複数と免疫学的に反応する、単離された抗体
の組成物のうちの一つまたは複数を含むキット。 - 前記組成物のうちの二つまたはそれ以上を含むとしてさらに定義される、請求項54記載のキット。
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