JP2013159600A - Glyoxalase i inhibitor and use thereof - Google Patents

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Norio Kaneda
典雄 金田
Hitoshi Tanaka
齊 田中
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Abstract

PROBLEM TO BE SOLVED: To provide a more practical glyoxalase I inhibitor.SOLUTION: A glyoxalase I inhibitor includes a compound represented by formula (1). In the formula: R, R, R, R, R, R, R, R, Rand Rare each a hydrogen atom, a hydroxyl group, or a 1-4C alkyl group; and R, Rand Rare each independently a hydrogen atom or a 1-4C alkyl group which may have a substituent.

Description

本明細書の開示は、グリオキサラーゼI阻害剤及びその利用に関する。   The disclosure herein relates to glyoxalase I inhibitors and uses thereof.

抗腫瘍活性を示す化合物として、例えば、グリオキサラーゼI阻害活性を有する、フラボン化合物が知られている(特許文献1)。グリオキサラーゼI(GLO I:Glyoxalase I)は、細胞内の嫌気的糖代謝過程で生じるメチルグリオキサール(MG:methylglyoxal)とグルタチオン(GSH:glutathione)からS-D-ラクトイルグルタチオン(S-D-lactoylglutathione)を生成させる酵素である。MGは解糖系の代謝副産物であるが、蓄積することでタンパク質、DNA、RNA等を非可逆的に修飾し、細胞死(アポトーシス)を誘発することが知られている。すなわち、MGは細胞死誘導活性を有していると考えられている。   As a compound exhibiting antitumor activity, for example, a flavone compound having glyoxalase I inhibitory activity is known (Patent Document 1). Glyoxalase I (GLO I: Glyoxalase I) produces SD-lactoylglutathione (SD) from methylglyoxal (MG) and glutathione (GSH) produced during intracellular anaerobic sugar metabolism It is an enzyme. MG is a glycolytic metabolic byproduct, but it is known that MG irreversibly modifies proteins, DNA, RNA, etc. to induce cell death (apoptosis). That is, MG is considered to have cell death inducing activity.

ガン細胞内は、一般に嫌気的環境であるため、エネルギー産生は嫌気的な解糖系に依存しており、このためMGが生成する。そして、ガン細胞では、こうして生成したMGを解毒するためのGLOIの発現が亢進している。正常細胞においてはGLOI活性が低いため、GLOI阻害剤は、ガン細胞に特異的に作用して、ガン細胞におけるMGの蓄積を促進し、ガン細胞のアポトーシスを誘導することが期待される。   Since cancer cells are generally in an anaerobic environment, energy production depends on an anaerobic glycolysis system, and MG is thus generated. In cancer cells, the expression of GLOI for detoxifying the MG thus generated is increased. Since GLOI activity is low in normal cells, GLOI inhibitors are expected to act specifically on cancer cells, promote MG accumulation in cancer cells, and induce cancer cell apoptosis.

特開2011−219384号公報JP 2011-219384 A

特許文献1に開示されるフラボン化合物は、フラボノイドの一種である。フラボノイドは、広く植物界に分布するフェニルクロマン環に近い構造のC6−C3−C6炭素骨格からなる化合物であり、フラボン、イソフラボン、フラバノール等を始めとする多種多様な骨格及び置換様式を包含している。このため、フラボノイドの有する構造とGLOI活性の相関は全く知られておらず、予測することも困難であった。したがって、フラボノイドに属する新たなGLOI阻害剤は未だ提供されていない。   The flavone compound disclosed in Patent Document 1 is a kind of flavonoid. Flavonoids are compounds composed of a C6-C3-C6 carbon skeleton having a structure close to the phenylchroman ring widely distributed in the plant kingdom. Yes. For this reason, the correlation between the structure of the flavonoid and the GLOI activity is not known at all, and it has been difficult to predict. Therefore, new GLOI inhibitors belonging to flavonoids have not yet been provided.

そこで、本明細書の開示は、より実用的なGLOI阻害剤及びその利用を提供することを一つの目的とする。   Accordingly, an object of the present disclosure is to provide a more practical GLOI inhibitor and use thereof.

本発明者らは、植物、特にマメ科植物に由来するイソフラボン化合物を対象として、GLOI阻害活性を指標とするスクリーニングを始めとする各種の検討を行ったところ、細胞内においてGLOI阻害活性を有するイソフラボン化合物を見出した。本明細書の開示は、これらの知見に基づいて提供される。   The inventors of the present invention have conducted various studies including isoflavone compounds derived from plants, particularly leguminous plants, including screening using GLOI inhibitory activity as an index. As a result, isoflavones having GLOI inhibitory activity in cells. The compound was found. The disclosure herein is provided based on these findings.

本明細書の開示によれば、以下の式(1)で表される化合物及びこれらの薬学的に許容される塩から選択される1種以上を含むGLOI阻害剤が提供される。
(上記式中、R1、R2、R4、R5、R7、R8、R9、R11、R12及びR13は、それぞれ独立して水素原子、水酸基又は置換されていてもよい炭素数1〜4のアルキル基を表し、R3、R6及びR10は、それぞれ独立して水素原子又は置換されていてもよい炭素数1〜4のアルキル基を表す。)
According to the indication of this specification, the GLOI inhibitor containing 1 or more types selected from the compound represented by the following formula | equation (1) and these pharmaceutically acceptable salts is provided.
(In the above formula, R 1 , R 2 , R 4 , R 5 , R 7 , R 8 , R 9 , R 11 , R 12 and R 13 may each independently be a hydrogen atom, hydroxyl group or substituted. Represents a good alkyl group having 1 to 4 carbon atoms, and R 3 , R 6 and R 10 each independently represent a hydrogen atom or an optionally substituted alkyl group having 1 to 4 carbon atoms.)

また、本明細書の開示によれば、以下の式(1)で表される化合物及びその薬学的に許容される塩から選択される1種以上を含む抗腫瘍剤が提供される。
(上記式中、R1、R2、R4、R5、R7、R8、R9、R11、R12及びR13は、それぞれ独立して水素原子、水酸基又は置換されていてもよい炭素数1〜4のアルキル基を表し、R3、R6及びR10は、それぞれ独立して水素原子又は置換されていてもよい炭素数1〜4のアルキル基を表す。)
Moreover, according to the indication of this specification, the antitumor agent containing 1 or more types selected from the compound represented by the following formula | equation (1) and its pharmaceutically acceptable salt is provided.
(In the above formula, R 1 , R 2 , R 4 , R 5 , R 7 , R 8 , R 9 , R 11 , R 12 and R 13 may each independently be a hydrogen atom, hydroxyl group or substituted. Represents a good alkyl group having 1 to 4 carbon atoms, and R 3 , R 6 and R 10 each independently represent a hydrogen atom or an optionally substituted alkyl group having 1 to 4 carbon atoms.)

本明細書の開示によれば、上記グリオキサラーゼI阻害剤を有効成分として含有する、医薬組成物が提供される。   According to the indication of this specification, the pharmaceutical composition which contains the said glyoxalase I inhibitor as an active ingredient is provided.

本明細書の開示によれば、イソフラボノイド骨格を有する化合物である被験化合物のグリオキサラーゼI阻害活性を評価する工程、を備える、グリオキサラーゼ阻害剤のスクリーニング方法が提供される。   According to the disclosure of the present specification, there is provided a method for screening a glyoxalase inhibitor, comprising a step of evaluating glyoxalase I inhibitory activity of a test compound which is a compound having an isoflavonoid skeleton.

本明細書の開示によれば、イソフラボノイド骨格を有する被験化合物のグリオキサラーゼI阻害活性を評価する工程、
を備える、抗腫瘍剤のスクリーニング方法が提供される。
According to the disclosure of the present specification, the step of evaluating the glyoxalase I inhibitory activity of a test compound having an isoflavonoid skeleton,
An antitumor agent screening method is provided.

本明細書の開示によれば、以下の式(1)で表される被験化合物及びその誘導体から選択される1種以上のグリオキサラーゼI阻害活性を評価する工程を、備える、抗腫瘍剤のスクリーニング方法。
(上記式中、R1、R2、R4、R5、R7、R8、R9、R11、R12及びR13は、それぞれ独立して水素原子、水酸基又は置換されていてもよい炭素数1〜4のアルキル基を表し、R3、R6及びR10は、それぞれ独立して水素原子又は置換されていてもよい炭素数1〜4のアルキル基を表す。)
According to the disclosure of the present specification, an antitumor agent comprising a step of evaluating one or more glyoxalase I inhibitory activities selected from a test compound represented by the following formula (1) and derivatives thereof: Screening method.
(In the above formula, R 1 , R 2 , R 4 , R 5 , R 7 , R 8 , R 9 , R 11 , R 12 and R 13 may each independently be a hydrogen atom, hydroxyl group or substituted. Represents a good alkyl group having 1 to 4 carbon atoms, and R 3 , R 6 and R 10 each independently represent a hydrogen atom or an optionally substituted alkyl group having 1 to 4 carbon atoms.)

14種類のイソフラボン化合物およびBBGの100 μMにおけるhGLOIに対する阻害活性の結果を示す図である。It is a figure which shows the result of the inhibitory activity with respect to hGLOI in 100 micromol of 14 types of isoflavone compounds and BBG. 阻害剤候補化合物のヒト白血病細胞株HL−60に対する抗増殖活性の評価結果を示す図である。It is a figure which shows the evaluation result of the antiproliferative activity with respect to human leukemia cell line HL-60 of an inhibitor candidate compound. 阻害剤候補化合物で処理したHL−60細胞の培養上清中のMG量を測定した結果を示す図である。It is a figure which shows the result of having measured the amount of MG in the culture supernatant of the HL-60 cell processed with the inhibitor candidate compound. 阻害剤候補化合物11で処理したHL−60細胞におけるアポトーシスの観察結果を示す図である。It is a figure which shows the observation result of the apoptosis in HL-60 cell processed with the inhibitor candidate compound 11.

本明細書の開示は、フラボノイドと総称される化合物群に包含されるイソフラボン骨格を有する化合物(以下、イソフラボン化合物という。)又はその薬学的に許容される塩を含有するGLOI阻害剤及びその利用に関する。   The disclosure of the present specification relates to a GLOI inhibitor containing a compound having an isoflavone skeleton (hereinafter referred to as an isoflavone compound) included in a group of compounds collectively called flavonoids, or a pharmaceutically acceptable salt thereof, and use thereof. .

本明細書に開示されるイソフラボン化合物(以下、本イソフラボン化合物という。)は、GLOI阻害活性を示すことができる。また、本イソフラボン化合物は、好ましくは、ガン細胞に対してGLOI阻害活性に基づく抗増殖活性も示すことができる。GLOIは正常細胞ではほとんど発現されていないのに対してガン細胞での過剰発現が認められることから、GLOI阻害剤は、ガン細胞に対して高い選択性で作用し細胞死を誘導することができる。   The isoflavone compound disclosed herein (hereinafter referred to as the present isoflavone compound) can exhibit GLOI inhibitory activity. The isoflavone compound can also preferably exhibit antiproliferative activity based on GLOI inhibitory activity against cancer cells. Since GLOI is hardly expressed in normal cells, but overexpressed in cancer cells, GLOI inhibitors can act with high selectivity on cancer cells and induce cell death. .

以下、本イソフラボン化合物を含むGLOI阻害剤、抗腫瘍剤及び医薬組成物並びにGLOI阻害剤のスクリーニング方法等について説明する。   Hereinafter, the GLOI inhibitor containing this isoflavone compound, an antitumor agent, a pharmaceutical composition, the screening method of a GLOI inhibitor, etc. are demonstrated.

(GLOI阻害剤)
本イソフラボン化合物は、以下の式(1)で表される。
(GLOI inhibitor)
This isoflavone compound is represented by the following formula (1).

式(1)において、R1、R2、R4、R5、R7、R8、R9、R11、R12及びR13は、それぞれ独立して水素原子、水酸基又は置換基を有していてもよい炭素数1〜4のアルキル基を表すことができる。 In the formula (1), R 1 , R 2 , R 4 , R 5 , R 7 , R 8 , R 9 , R 11 , R 12 and R 13 each independently have a hydrogen atom, a hydroxyl group or a substituent. It may represent an alkyl group having 1 to 4 carbon atoms which may be used.

置換基を有していてもよい炭素数1〜4のアルキル基は、直鎖状であっても分岐状であってもよいが、好ましくは直鎖状である。こうしたアルキル基は、メチル基、エチル基、プロピル基、イソプロピル基、n−ブチル基、sec-ブチル基、tert−ブチル基、2,2−ジメトキシエチル基等が挙げられる。好ましくは、エチル基及びプロピル基であり、より好ましくはメチル基及びエチル基であり、さらに好ましくはメチル基である。置換基としては、水酸基、ヒドロキシアルキル基、アルキルエーテル基、アルキルカルボニル基、アミノ基、アルキルアミノ基、ニトロ基、ニトリル基、ハロゲン原子が挙げられる。これら置換基におけるアルキル基は、炭素数1〜4であることが好ましく、より好ましくはメチル基である。   The alkyl group having 1 to 4 carbon atoms which may have a substituent may be linear or branched, but is preferably linear. Examples of such an alkyl group include a methyl group, an ethyl group, a propyl group, an isopropyl group, an n-butyl group, a sec-butyl group, a tert-butyl group, and a 2,2-dimethoxyethyl group. Preferred are an ethyl group and a propyl group, more preferred are a methyl group and an ethyl group, and even more preferred is a methyl group. Examples of the substituent include a hydroxyl group, a hydroxyalkyl group, an alkyl ether group, an alkylcarbonyl group, an amino group, an alkylamino group, a nitro group, a nitrile group, and a halogen atom. The alkyl group in these substituents preferably has 1 to 4 carbon atoms, more preferably a methyl group.

式(1)において、R1、R2、R4、R5、R7、R8、R9、R11、R12及びR13は、これら10個の置換基のうち、水素原子が5個以上であってもよく、6個以上であってもよく、7個以上であってもよく、8個以上であってもよく、9個以上であってもよく、全てが水素原子であってもよい。R1、R2、R4、R5、R7、R8、R12及びR13は、これら8個の置換基のうち、水素原子が5個以上であってもよく、6個以上であってもよく、7個以上であってもよく、全てが水素原子であってもよい。 In the formula (1), R 1 , R 2 , R 4 , R 5 , R 7 , R 8 , R 9 , R 11 , R 12, and R 13 are 5 of these 10 substituents. The number may be 6 or more, 6 or more, 7 or more, 8 or more, 9 or more, and all may be hydrogen atoms. May be. R 1 , R 2 , R 4 , R 5 , R 7 , R 8 , R 12 and R 13 may be 5 or more hydrogen atoms out of these 8 substituents, and 6 or more There may be seven or more, and all may be hydrogen atoms.

また、式(1)において、R1、R2、R4、R5、R7、R8、R9、R11、R12及びR13は、これら10個の置換基のうち、メチル基が2個以上であってもよく、3個以上であってもよく、4個以上であってもよく、5個以上であってもよく、6個以上であってもよい。また、R1、R2、R4、R5、R7、R8、R12及びR13は、これら8個の置換基のうち、水酸基が2個以上であってもよく、3個以上であってもよく、4個以上であってもよく、5個以上であってもよく、6個以上であってもよい。 In the formula (1), R 1 , R 2 , R 4 , R 5 , R 7 , R 8 , R 9 , R 11 , R 12 and R 13 are methyl groups among these 10 substituents. May be 2 or more, 3 or more, 4 or more, 5 or more, or 6 or more. R 1 , R 2 , R 4 , R 5 , R 7 , R 8 , R 12, and R 13 may be 2 or more of these 8 substituents, and 3 or more It may be 4 or more, 5 or more, or 6 or more.

式(1)において、R3、R6及びR10は、それぞれ独立して水素原子又は置換基を有していてもよい炭素数1〜4のアルキル基を表すことができる。置換基を有していてもよい炭素数1〜4のアルキル基については既に説明したとおりである。R3、R6及びR10は、これら3つの置換基のうち、上記アルキル基が1個以上であってもよく、2個以上であってもよく、全てが上記アルキル基であってもよい。また、R3、R6及びR10は、これら3つの置換基のうち、水素原子を1個以上3個以下とすることができる。 In Formula (1), R < 3 >, R < 6 > and R < 10 > can represent the C1-C4 alkyl group which may have a hydrogen atom or a substituent each independently. The alkyl group having 1 to 4 carbon atoms which may have a substituent is as described above. Of these three substituents, R 3 , R 6 and R 10 may be one or more of the above alkyl groups, may be two or more, and all may be the above alkyl groups. . R 3 , R 6, and R 10 may include 1 to 3 hydrogen atoms among these three substituents.

式(1)において、R1〜R8、R10、R12及びR13は水素原子を表し、R9及びR11はメチル基である化合物は、以下の式(2)で表される。この化合物は、マメ科植物であるErythrina variegataに属する植物の樹皮に存在する天然のイソフラボン化合物であり、ErythrininCと称される。本イソフラボン化合物はこの天然のイソフラボン化合物ErythrininCを含み、ErythrininCの構造において、その水素原子部位の水酸基や炭素数1〜4のアルキル基等による置換によって一定範囲内で調節された化合物を包含している。 In the formula (1), R 1 to R 8 , R 10 , R 12 and R 13 represent a hydrogen atom, and a compound in which R 9 and R 11 are methyl groups is represented by the following formula (2). This compound is a natural isoflavone compound present in the bark of a plant belonging to the leguminous plant Erythrina variegata, and is called Erythrinin C. This isoflavone compound includes this natural isoflavone compound Erythrinin C, and includes a compound that is regulated within a certain range by substitution with a hydroxyl group of the hydrogen atom site or an alkyl group having 1 to 4 carbon atoms in the structure of Erythrinin C. .

本イソフラボン化合物は、Erythrina variegataに属する植物の樹皮から取得する式(2)で表される化合物として得られるほか、当該化合物以外の態様は、当該化合物を有機合成的によりあるいは酵素的に適宜修飾して得ることができる。本イソフラボン化合物は、また、全合成によりあるいは天然由来の他の化合物を出発原料として半合成により取得することができる。   This isoflavone compound is obtained as a compound represented by the formula (2) obtained from the bark of a plant belonging to Erythrina variegata. In addition to this compound, the compound is appropriately modified organically or enzymatically. Can be obtained. This isoflavone compound can also be obtained by total synthesis or by semi-synthesis using other naturally derived compounds as starting materials.

例えば、式(2)で表される化合物を、Erythrina variegataに属する植物の樹皮から得るには、以下の方法を採用できる。前記樹皮を細切し、アセトンにて冷浸し、その後、溶媒を減圧留去し油状物を得る。この油状物を、例えば、n−ヘキサンの疎水性溶媒で洗浄後、ジクロロメタン等の疎水性溶媒と水とで分配し、疎水性溶媒相を減圧留去して残渣を得る。この残渣を、クロロホルム−アセトン(1→10:1)等を用いシリカゲルカラムクロマトグラフィー(例えば、シリカゲル500g, 10 x 13 cm)に付し、各フラクションを取得する。式(2)で表される化合物が含まれている可能性が高いことが推測されるフラクションをベンゼン−酢酸エチル (5:1) 等にて、繰り返しシリカゲルカラムクロマトグラフィー(例えば、シリカゲル150g, 4.5 x 24 cmを使用後にシリカゲル10g, 1.0 x 27cmに付す。)により精製することにより、式(2)で表される化合物を得ることができる。   For example, the following method can be employed to obtain the compound represented by the formula (2) from the bark of a plant belonging to Erythrina variegata. The bark is cut into small pieces and cooled in acetone, and then the solvent is distilled off under reduced pressure to obtain an oily substance. This oily substance is washed with, for example, a hydrophobic solvent of n-hexane, and then partitioned between a hydrophobic solvent such as dichloromethane and water, and the hydrophobic solvent phase is distilled off under reduced pressure to obtain a residue. The residue is subjected to silica gel column chromatography (for example, silica gel 500 g, 10 × 13 cm) using chloroform-acetone (1 → 10: 1) or the like to obtain each fraction. Fraction presumably containing a compound represented by formula (2) is repeatedly subjected to silica gel column chromatography with benzene-ethyl acetate (5: 1) or the like (for example, 150 g of silica gel, 4.5 The compound represented by the formula (2) can be obtained by purifying with 10 g of silica gel and 1.0 x 27 cm after use.

本化合物の薬学的に許容される塩は、例えば薬学的に許容される酸付加塩、金属塩、アンモニウム塩、有機アミン付加塩、アミノ酸付加塩等を包含する。   Pharmaceutically acceptable salts of this compound include, for example, pharmaceutically acceptable acid addition salts, metal salts, ammonium salts, organic amine addition salts, amino acid addition salts and the like.

薬学的に許容される酸付加塩としては、例えば塩酸塩、硫酸塩、硝酸塩、リン酸塩等の無機酸塩、酢酸塩、マレイン酸塩、フマル酸塩、クエン酸塩等の有機酸塩が挙げられ、薬学的に許容される金属塩としては、例えばナトリウム塩、カリウム塩等のアルカリ金属塩、マグネシウム塩、カルシウム塩等のアルカリ土類金属塩、アルミニウム塩、亜鉛塩等が挙げられ、薬学的に許容されるアンモニウム塩としては、例えばアンモニウム、テトラメチルアンモニウム等の塩が挙げられ、薬学的に許容される有機アミン付加塩としては、例えばモルホリン、ピペリジン等の付加塩が挙げられ、薬学的に許容されるアミノ酸付加塩としては、例えばグリシン、フェニルアラニン、リジン、アスパラギン酸、グルタミン酸等の付加塩が挙げられる。   Examples of pharmaceutically acceptable acid addition salts include inorganic acid salts such as hydrochloride, sulfate, nitrate and phosphate, and organic acid salts such as acetate, maleate, fumarate and citrate. Examples of the pharmaceutically acceptable metal salt include alkali metal salts such as sodium salt and potassium salt, alkaline earth metal salts such as magnesium salt and calcium salt, aluminum salt and zinc salt. Examples of the pharmaceutically acceptable ammonium salt include salts such as ammonium and tetramethylammonium. Examples of the pharmaceutically acceptable organic amine addition salt include addition salts such as morpholine and piperidine. Examples of acceptable amino acid addition salts include addition salts of glycine, phenylalanine, lysine, aspartic acid, glutamic acid and the like.

本化合物のGLOI阻害活性は、公知の方法で測定することができるほか、後述の実施例に開示される方法で測定することができる。本化合物のGLOI阻害活性は、少なくともin vitroにおいて、通常程度に精製されたGLOIに対する阻害活性を意味している。その活性程度は特に限定しないが、後述する実施例に準じて得られるIC50は、既知のGLOI阻害剤であるS−p−ブロモ−ベンジルグルタチオン(BBG)(式(3)においてR=Hである)の50%以上であることが好ましく、より好ましくは70%以上であり、さらに好ましくは80%以上である。 The GLOI inhibitory activity of the present compound can be measured by a known method or can be measured by a method disclosed in Examples described later. The GLOI inhibitory activity of the present compound means an inhibitory activity against GLOI purified to a normal degree at least in vitro. The degree of activity is not particularly limited, but the IC 50 obtained according to the examples described below is a known GLOI inhibitor Sp-bromo-benzylglutathione (BBG) (in the formula (3), R = H. It is preferably 50% or more, more preferably 70% or more, and still more preferably 80% or more.

また、本イソフラボン化合物のGLOI阻害活性は、さらに、ガン細胞の抗増殖活性を意味していてもよい。ガン細胞の抗増殖活性は、公知の方法を用いて評価できるほか、後述する実施例に準じてヒト白血病細胞株HL−60に対する抗増殖活性として評価できる。この方法における抗増殖活性は、IC50が好ましくは20μM以下、より好ましくは15μM以下、さらに好ましくは10μM以下、一層好ましくは5μM以下、より一層好ましくは3μM以下である。 Further, the GLOI inhibitory activity of the present isoflavone compound may further mean an antiproliferative activity of cancer cells. The antiproliferative activity of cancer cells can be evaluated using a known method, and can also be evaluated as antiproliferative activity against human leukemia cell line HL-60 according to the examples described later. The antiproliferative activity in this method is such that the IC 50 is preferably 20 μM or less, more preferably 15 μM or less, even more preferably 10 μM or less, even more preferably 5 μM or less, and even more preferably 3 μM or less.

本化合物は、GLOI阻害剤として使用できるほか、アポトーシス誘導剤(特にガン細胞の)や抗腫瘍剤としても用いることができる。特に、本化合物がGLOI阻害活性の一態様としてガン細胞のアポトーシスを誘導し、抗増殖活性を有するときには抗腫瘍剤として有用である。   In addition to being used as a GLOI inhibitor, this compound can also be used as an apoptosis inducer (particularly for cancer cells) or an antitumor agent. In particular, the present compound is useful as an antitumor agent when it induces apoptosis of cancer cells as one embodiment of GLOI inhibitory activity and has antiproliferative activity.

本明細書に開示される抗腫瘍剤及び医薬組成物は、有効成分である本イソフラボン化合物のほか、賦形剤、安定剤、湿潤剤、乳化剤、吸収促進剤、pH調整剤、界面活性剤、稀釈剤、担体、溶解助剤、矯味剤、保存剤、芳香剤、着色剤、コーティング剤などの添加成分や水などを含むものであってもよい。   The antitumor agent and pharmaceutical composition disclosed in the present specification include the present isoflavone compound as an active ingredient, an excipient, a stabilizer, a wetting agent, an emulsifier, an absorption accelerator, a pH adjuster, a surfactant, It may contain additives such as diluents, carriers, solubilizers, flavoring agents, preservatives, fragrances, colorants, coating agents, and water.

本明細書に開示される抗腫瘍剤及び医薬組成物は、経口投与、非経口投与いずれの投与方法をも採用することができ、それぞれに適した医薬製剤の形態とすることができる。医薬製剤としては、例えば、液剤、シロップ剤、注射剤、液状吸入剤、乳剤等の液状剤、錠剤、粉剤、顆粒剤、カプセル剤、軟膏剤、固形吸入剤、座剤等の固形剤などを挙げることができる。   The antitumor agent and the pharmaceutical composition disclosed in the present specification can employ any method of oral administration or parenteral administration, and can be in the form of a pharmaceutical preparation suitable for each. Examples of pharmaceutical preparations include liquid agents such as liquids, syrups, injections, liquid inhalants, emulsions, and solid agents such as tablets, powders, granules, capsules, ointments, solid inhalants, suppositories, etc. Can be mentioned.

本明細書に開示される抗腫瘍剤及び医薬組成物における本イソフラボン化合物の含有量は、用途、剤型、配合目的等によって異なるが、一般的には、組成物全量中1〜100質量%が好ましく、より好ましくは10〜50質量%である。   The content of the present isoflavone compound in the antitumor agent and pharmaceutical composition disclosed in the present specification varies depending on the use, dosage form, formulation purpose, etc., but generally 1 to 100% by mass in the total amount of the composition is Preferably, it is 10-50 mass%.

本発明の抗腫瘍剤及び医薬組成物本発明の医薬組成物等の投与量は、投与対象者の年齢、体重、投与方法などに応じて適宜決めればよい。例えば、通常成人1日、体重1kgあたり、本イソフラボン化合物0.001mg以上100mg以下、好ましくは、0.01mg以上10mg以下を1日1回又は数回に分けて投与することができる。   Antitumor agent and pharmaceutical composition of the present invention The dosage of the pharmaceutical composition of the present invention and the like may be appropriately determined according to the age, weight, administration method and the like of the administration subject. For example, usually 0.001 mg to 100 mg, preferably 0.01 mg to 10 mg of the present isoflavone compound can be administered once a day or in several divided doses per kg of body weight per day for an adult.

(スクリーニング方法)
本明細書に開示されるGLOI阻害剤のスクリーニング方法は、イソフラボン化合物である被験化合物のGLOI阻害活性を評価する工程、を備えることができる。このスクリーニング方法によれば、イソフラボノイド骨格を有するイソフラボン化合物から有用なGLOI活性阻害剤をスクリーニングできる。また、抗腫瘍剤のシード化合物をスクリーニングできる。なお、イソフラボン化合物は、天然由来の化合物のほか、合成によって取得されたものでもよい。天然由来の化合物は、マメ科植物を取得源とすることができる。取得源植物は、好ましくはErythrina variegata、Erythrina suberosa、Erythrina poeppigiana、Erythrina x bidwilliiなどのErythrina属植物であり、より好ましくはErythrina variegataである。
(Screening method)
The screening method for a GLOI inhibitor disclosed in the present specification can comprise a step of evaluating the GLOI inhibitory activity of a test compound that is an isoflavone compound. According to this screening method, a useful GLOI activity inhibitor can be screened from an isoflavone compound having an isoflavonoid skeleton. In addition, seed compounds for antitumor agents can be screened. In addition, the isoflavone compound may be obtained by synthesis in addition to a naturally derived compound. Naturally derived compounds can be obtained from legumes. The source plant is preferably a plant belonging to the genus Erythrina such as Erythrina variegata, Erythrina suberosa, Erythrina poeppigiana, Erythrina x bidwillii, and more preferably Erythrina variegata.

GLOI阻害活性は、公知の方法のほか、後述する実施例において開示する方法を採用して評価することができる。この評価工程において、GLOI阻害活性は、例えば、コントロールとしてのBBGのGLOI阻害活性と対比することで評価することができる。典型的には、BBGの50%以上、より好ましくは70%以上であり、さらに好ましくは80%以上のGLOI阻害活性があれば、GLOI阻害活性を有すると肯定的に評価できる。   The GLOI inhibitory activity can be evaluated by employing a method disclosed in Examples described later in addition to a known method. In this evaluation step, the GLOI inhibitory activity can be evaluated, for example, by comparing with the GLOI inhibitory activity of BBG as a control. Typically, if it has a GLOI inhibitory activity of 50% or more, more preferably 70% or more, and more preferably 80% or more of BBG, it can be positively evaluated as having a GLOI inhibitory activity.

本明細書に開示される抗腫瘍剤のスクリーニング方法は、イソフラボン化合物である被験化合物のグリオキサラーゼI阻害活性を評価する工程を備えることができる。GLOI阻害活性は、GLOI阻害活性に基づく抗腫瘍剤の基本的な活性である。このため、当該評価工程によれば、抗腫瘍剤として可能性のあるイソフラボン化合物(シード化合物)を広くかつ容易にスクリーニングできる。なお、本スクリーニング方法におけるGLOI阻害活性は、GLOI阻害活性の評価工程と同様の態様で実施することができる。   The screening method for an antitumor agent disclosed in the present specification can comprise a step of evaluating glyoxalase I inhibitory activity of a test compound that is an isoflavone compound. GLOI inhibitory activity is the basic activity of antitumor agents based on GLOI inhibitory activity. For this reason, according to the said evaluation process, the isoflavone compound (seed compound) which has a possibility as an antitumor agent can be screened widely and easily. In addition, the GLOI inhibitory activity in this screening method can be implemented by the same aspect as the evaluation process of GLOI inhibitory activity.

本明細書に開示される抗腫瘍剤のスクリーニング方法は、さらに、GLOI阻害活性を有することが肯定された被験化合物についてガン細胞に対する抗増殖活性を評価する工程を備えることができる。こうした評価工程を備えることで、より実用的な抗腫瘍剤又はそのシード化合物をスクリーニングすることができる。ガン細胞の抗増殖活性は、例えば、ガン細胞に対して被験化合物を供給し、一定時間培養母粒子の生細胞又は死細胞に関する指標を測定することによって行う。より詳細には、被験化合物の添加濃度を異ならせてIC50を測定してもよい。この評価工程において、被験化合物のガン細胞の抗増殖活性を確認できる場合には、抗増殖活性を有すると肯定的に評価できる。 The screening method for an antitumor agent disclosed in the present specification can further comprise a step of evaluating the antiproliferative activity against cancer cells for a test compound affirmed to have GLOI inhibitory activity. By providing such an evaluation step, a more practical antitumor agent or its seed compound can be screened. The antiproliferative activity of a cancer cell is performed, for example, by supplying a test compound to the cancer cell and measuring an index relating to live cells or dead cells of the cultured mother particles for a certain period of time. More specifically, IC 50 may be measured by varying the addition concentration of the test compound. In this evaluation step, if the antiproliferative activity of the test compound on cancer cells can be confirmed, it can be positively evaluated as having antiproliferative activity.

なお、本明細書に開示される抗腫瘍剤のスクリーニング方法は、GLOI阻害活性とガン細胞抗増殖活性を有すると肯定された被験化合物について、当該被験化合物の存在下において前記ガン細胞の分泌するMG量を評価する工程と、を備えることもできる。MG量評価工程を備えることで、ガン細胞におけるGLOI阻害によってガン細胞の増殖が阻害されていることを確認できる。MG量の評価は、この種の化合物に対するHPLCなど公知の方法を採用することができる。例えば、ガン細胞の培養液に対してo−フェニレンジアミンを加えてMGを2−メチルキノキサリンに変換後、HPLCに負荷して検出波長315nmで検出することができる。   It should be noted that the screening method for an antitumor agent disclosed in the present specification is based on the MG secreted by the cancer cells in the presence of the test compound for a test compound affirmed to have GLOI inhibitory activity and cancer cell antiproliferative activity And a step of evaluating the amount. By providing the MG amount evaluation step, it can be confirmed that growth of cancer cells is inhibited by GLOI inhibition in cancer cells. For the evaluation of the amount of MG, a known method such as HPLC for this type of compound can be adopted. For example, MG can be converted to 2-methylquinoxaline by adding o-phenylenediamine to a culture solution of cancer cells, and then loaded on HPLC for detection at a detection wavelength of 315 nm.

本明細書に開示される抗腫瘍剤のスクリーニング方法は、式(1)で表される化合物(本イソフラボン化合物)及びその誘導体である被験化合物から選択される1種以上のグリオキサラーゼI阻害活性を評価する工程を、備えることができる。このスクリーニング方法によれば、式(1)で表される被験化合物及びその誘導体からシード化合物としてより有用な抗腫瘍剤(リード化合物)をスクリーニングできる。本スクリーニング方法は、既に記載した抗腫瘍剤のスクリーニング方法における各種態様を適用することができる。本イソフラボン化合物の誘導体の範囲は特に限定しないが、例えば、式(1)における各種Rにつき、式(1)で規定される以外の置換基への修飾を含むことができる。   The screening method for an antitumor agent disclosed in the present specification comprises one or more glyoxalase I inhibitory activities selected from a compound represented by formula (1) (present isoflavone compound) and a test compound that is a derivative thereof. The step of evaluating can be provided. According to this screening method, an antitumor agent (lead compound) more useful as a seed compound can be screened from the test compound represented by formula (1) and its derivatives. Various aspects of the screening method for an antitumor agent already described can be applied to this screening method. Although the range of the derivative of this isoflavone compound is not specifically limited, For example, about various R in Formula (1), the modification to substituents other than prescribed | regulated by Formula (1) can be included.

(GLOI活性阻害剤、抗腫瘍剤の製造方法)
本明細書に開示されるGLOI活性阻害剤又は抗腫瘍剤の製造方法は、Erythrina variegataに属する植物体又はその一部を原料とし、式(1)で表される化合物を分離する工程、を備えることができる。この製造方法によれば、植物体を原料として効率的に式(1)で表される化合物又はその原料を得ることができる。
(Method for producing GLOI activity inhibitor and antitumor agent)
The method for producing a GLOI activity inhibitor or antitumor agent disclosed in the present specification comprises a step of separating a compound represented by formula (1) from a plant belonging to Erythrina variegata or a part thereof as a raw material. be able to. According to this production method, a compound represented by the formula (1) or a raw material thereof can be obtained efficiently using a plant body as a raw material.

前記植物体は、好ましくは、数ミリ程度の細片として原料とすることが好ましい。また、その部位は、樹皮であることが好ましい。式(1)で表される化合物の抽出分離は、当業者であれば適宜実施できるが、例えば、既述したように、アセトンにて冷浸後、溶媒を減圧留去して得た油状物から脂質を除去し、一般的な溶媒分配手法を用いて非極性化合物分画を得た後、シリカなどの極性充填材を用い疎水性移動相を用いる液体クロマトグラフィーを用いて当該分画をさらに分離分画する。さらに、式(2)で表される化合物が含まれている可能性が高いことが推測されるフラクションを繰り返しシリカゲルカラムクロマトグラフィーにより精製することにより、式(2)で表される化合物を得ることができる。   The plant body is preferably used as a raw material as a strip of about several millimeters. Moreover, it is preferable that the site | part is a bark. Extraction and separation of the compound represented by the formula (1) can be appropriately carried out by those skilled in the art. For example, as described above, an oily substance obtained by distilling off the solvent under reduced pressure after immersion in acetone. After removing the lipid from the mixture and obtaining a non-polar compound fraction using a general solvent partitioning technique, the fraction is further purified using liquid chromatography using a hydrophobic mobile phase with a polar filler such as silica. Separate and fractionate. Furthermore, a compound represented by the formula (2) is obtained by repeatedly purifying a fraction presumed to contain a compound represented by the formula (2) by silica gel column chromatography repeatedly. Can do.

以下、本発明を、実施例を挙げて具体的に説明するが、本発明はこれらの実施例に限定されるものではない。   EXAMPLES Hereinafter, although an Example is given and this invention is demonstrated concretely, this invention is not limited to these Examples.

(阻害剤候補化合物の取得)
本実施例では、マメ科のErythrina属植物から、14種類のフラボノイド化合物を取得した。由来する植物名と化合物番号を以下に示し、化合物番号に対応する構造を以下に示す。
(Acquire inhibitor candidate compounds)
In this example, 14 types of flavonoid compounds were obtained from leguminous Erythrina genus plants. The derived plant name and compound number are shown below, and the structure corresponding to the compound number is shown below.

(阻害剤候補化合物Erythrinin C(化合物11)の取得)
Erythrina variegataの樹皮(2.55 Kg)を細切し、アセトンにて冷浸し、アセトンを減圧留去し油状物(133.7 g)を得た。この油状物をn−ヘキサンで洗浄後、ジクロロメタンと水とで分配した。ジクロロメタン可溶部を減圧留去し、赤褐色の残渣(50 g)を得た。この残渣をクロロホルム−アセトン(1→10:1)を用いシリカゲルカラムクロマトグラフィー(シリカゲル500g, 10 x 13 cm)に付し、フラクション81個(A1-A81, 各200mL)を得た。フラクションA69-A70(褐色油状物:4.82g)はベンゼン−酢酸エチル (5:1) にて、繰り返しシリカゲルカラムクロマトグラフィー(1回目はシリカゲル150g, 4.5 x 24 cm、2回目はシリカゲル10g, 1.0 x 27cm)により精製して、Erythrinin C (167 mg) を得た。
(Acquisition of inhibitor candidate compound Erythrinin C (compound 11))
The bark (2.55 Kg) of Erythrina variegata was cut into small pieces, soaked in acetone, and the acetone was distilled off under reduced pressure to obtain an oil (133.7 g). The oil was washed with n-hexane and then partitioned between dichloromethane and water. The dichloromethane soluble part was distilled off under reduced pressure to obtain a reddish brown residue (50 g). This residue was subjected to silica gel column chromatography (silica gel 500 g, 10 × 13 cm) using chloroform-acetone (1 → 10: 1) to obtain 81 fractions (A1-A81, 200 mL each). Fraction A69-A70 (brown oil: 4.82 g) was repeatedly subjected to silica gel column chromatography using benzene-ethyl acetate (5: 1) (first time silica gel 150 g, 4.5 x 24 cm, second time silica gel 10 g, 1.0 x To give Erythrinin C (167 mg).

(他の阻害剤候補化合物の取得)
また、他の化合物についても、Erythrinin Cに準じ、適宜クロマトグラフィー条件を変更してそれぞれ取得した。
(Acquisition of other inhibitor candidate compounds)
In addition, other compounds were also obtained in accordance with Erythrinin C by appropriately changing the chromatography conditions.

(精製hGLOI酵素活性に対する阻害活性の評価)
本実施例では、実施例1で得た各種のフラボノイド化合物につき、GLOI阻害活性を測定した。すなわち、ジメチルスルホキシド (DMSO) に溶解した阻害剤候補化合物を、GLOI酵素の基質等を含む反応液(後述する平衡後の反応液)に終濃度100 μMとなるように加え、次いでhGLOI精製酵素液5 μL (タンパク質量で1 μg) を加えて各々活性測定し比活性を求めた。その比活性を阻害剤であるBBG (controlとする) と比較し阻害作用の評価(% inhibition) を行った。
(Evaluation of inhibitory activity against purified hGLOI enzyme activity)
In this example, GLOI inhibitory activity was measured for the various flavonoid compounds obtained in Example 1. That is, an inhibitor candidate compound dissolved in dimethyl sulfoxide (DMSO) is added to a reaction solution containing a GLOI enzyme substrate or the like (reaction solution after equilibration described later) to a final concentration of 100 μM, and then purified hGLOI enzyme solution 5 μL (1 μg protein amount) was added, and each activity was measured to determine specific activity. The specific activity was compared with BBG (control) as an inhibitor to evaluate the inhibitory effect (% inhibition).

なお、GLOI活性は、Orayらの方法(Bedii Oray and Scott, J. Norton, Method in Enzymology, 90, 542-546(1982))を一部改変して行った。すなわち、基質であるMGは補酵素GSHの存在下、中間体のhemimercapatalを経て、hGLOIによってS-D-lactoylglutathioneへ変換されるため、酵素反応によって生成したS-D-lactoylglutathione (ε240nm=3370M−1cm−1) の240 nmにおける吸光度の増加を測定し、酵素活性を算出した。
〈反応液〉
200 mM imidazole・HCl, 16 mM MgSO4(pH 7.0) 2.73 mL
100 mM methylglyoxal (MG) 237μL
100 mM reduced glutathione (GSH) 30μL
Total 3.0 mL
GLOI activity was performed by partially modifying the method of Oray et al. (Bedii Oray and Scott, J. Norton, Method in Enzymology, 90, 542-546 (1982)). That is, since the substrate MG passes through the intermediate hemimercapatal in the presence of the coenzyme GSH and is converted into SD-lactoylglutathione by hGLOI, SD-lactoylglutathione (ε 240 nm = 3370 M −1 cm −1) generated by the enzyme reaction. ) Was measured and the enzyme activity was calculated.
<Reaction solution>
200 mM imidazole ・ HCl, 16 mM MgSO 4 (pH 7.0) 2.73 mL
100 mM methylglyoxal (MG) 237 μL
100 mM reduced glutathione (GSH) 30 μL
Total 3.0 mL

反応液を各々調製して混合した後、確実に平衡化させるため25℃で90分間インキュベートした。平衡後、反応はhGLO I精製酵素液5 μL (タンパク質量で1μg) を3.0 mLの反応液に加えることで開始し、240 nmにおける吸光度の増加を25℃で2分間測定した。初速度は吸光度 対時間プロットにおける直線部の傾きによって決定した。なお、ブランクには酵素液の代わりに保存用bufferを5 μL加えたものを用いた。   Each reaction was prepared and mixed and then incubated at 25 ° C. for 90 minutes to ensure equilibration. After equilibration, the reaction was started by adding 5 μL of hGLO I purified enzyme solution (1 μg protein amount) to the 3.0 mL reaction solution, and the increase in absorbance at 240 nm was measured at 25 ° C. for 2 minutes. The initial velocity was determined by the slope of the straight line in the absorbance versus time plot. The blank used was 5 μL of storage buffer instead of the enzyme solution.

得られた初速度ΔA240より酵素活性および比活性を以下の式より求めた。さらに、BBG及び阻害剤候補の比活性からブランクに対する阻害率%を求めた。なお、BBGの酵素活性GLO I活性の1単位は上述の酵素活性測定条件において、1分間当たり1 μmolのS -D-lactoylglutathionの生成を触媒する酵素量と定義した。また、比活性を、タンパク質1 mg単位当たりの酵素活性と定義した。結果を図1及び表2に示す。
酵素活性=ΔA240×3×103/ε
比活性=酵素活性/タンパク質量(mg)
The resulting enzyme activity and specific activity than the initial speed .DELTA.A 240 was calculated from the following equation. Furthermore, the inhibition rate% relative to the blank was determined from the specific activities of BBG and inhibitor candidate. In addition, 1 unit of the enzyme activity GLO I activity of BBG was defined as the amount of enzyme that catalyzes the production of 1 μmol of S-D-lactoylglutathion per minute under the above-mentioned enzyme activity measurement conditions. The specific activity was defined as the enzyme activity per 1 mg of protein. The results are shown in FIG.
Enzyme activity = ΔA 240 × 3 × 10 3 / ε
Specific activity = enzyme activity / protein amount (mg)

(IC50値の算出)
DMSOに溶解した阻害剤候補化合物を、平衡後の反応液に終濃度5μM、10μM、25μM、50μM、75μM、100μMとなるように加えた。次いでhGLOI精製酵素液5μL(タンパク質量で1μg)を加えて上記と同様に各々活性測定し比活性を求めた。その比活性を阻害剤のcontrolであるBBGと比較し、グラフ化(濃度対%inhibition)することによりIC50値を求め阻害活性の濃度依存性評価を行った。結果を表3に示す。
(Calculation of IC 50 value)
The inhibitor candidate compound dissolved in DMSO was added to the reaction solution after equilibration so as to have final concentrations of 5 μM, 10 μM, 25 μM, 50 μM, 75 μM, and 100 μM. Subsequently, 5 μL of hGLOI purified enzyme solution (1 μg in protein amount) was added, and the activity was measured in the same manner as above to determine the specific activity. The specific activity was compared with BBG which is the control of the inhibitor and graphed (concentration vs.% inhibition) to obtain an IC 50 value, and the concentration dependency of the inhibitory activity was evaluated. The results are shown in Table 3.

図1及び表2に示すように、14種類のイソフラボン化合物のうち、化合物11を除いて、いずれもBBGとほぼ同等またはそれ以上の阻害活性を示し、強力なGLOI阻害活性を有することがわかった。また、表3に示すように、いずれの化合物もBBGよりも低いIC50値を示し、強力なGLOI阻害活性を有することが示された。 As shown in FIG. 1 and Table 2, it was found that all of the 14 types of isoflavone compounds, except for Compound 11, showed almost the same or higher inhibitory activity as BBG and had strong GLOI inhibitory activity. . In addition, as shown in Table 3, all of the compounds showed lower IC 50 values than BBG, indicating that they have potent GLOI inhibitory activity.

なお、hGLOIは以下のとおり調製した。
(1)ヒト肺cDNAライブラリーを鋳型として、hGLOIのアミノ酸コード領域(配列番号1)を増幅するため、開始コドンを含むセンスプライマーと終始コドンを含むアンチセンスプライマーの設計を行った。
In addition, hGLOI was prepared as follows.
(1) In order to amplify the amino acid coding region (SEQ ID NO: 1) of hGLOI using a human lung cDNA library as a template, a sense primer containing an initiation codon and an antisense primer containing a termination codon were designed.

sense primer:5’-TAGCATATG ATG GCAGAACCGCAGCCCCCGTC-3’(配列番号3)
Nde I 開始コドン
antisense primer:5’-CACGTCGACCTCACAGCA CTA CATTAAGGTTGCC-3’(配列番号4) Sal I 終止コドン
sense primer: 5'-TAG CATATG ATG GCAGAACCGCAGCCCCCGTC-3 '(SEQ ID NO: 3)
Nde I start codon
antisense primer: 5'-CAC GTCGAC CTCACAGCA CTA CATTAAGGTTGCC-3 '(SEQ ID NO: 4) Sal I stop codon

(2)ヒト肺cDNAを鋳型として、開始コドンを含むセンスプライマーと、終始コドンを含むアンチセンセプライマーを用いて、アミノ酸コード領域を増幅するため以下の条件でPCRを行った。
〈反応混合液〉
cDNA(human lung cDNA) 1 μL
10×LA buffer(Mg2+free) 2.5 μL
2.5mM dNTP 4 μL
25mM MgCl2 2.5 μL
LA Taq DNA polymerase(5units/μL) 0.25 μL
Sense primer(10μM) 2.5 μL
Antisense primer(10μM) 2.5 μL
QW 9.75 μL
全量 25μL
〈反応条件〉
装置:TaKaRa PCR Thermal Cycler SP
94℃で3min後、
94℃で45sec、58℃で1min、72℃で1minを35サイクル行った後、72℃で3minとした。
(2) Using human lung cDNA as a template, PCR was carried out under the following conditions to amplify the amino acid coding region using a sense primer containing an initiation codon and an antisense primer containing a termination codon.
<Reaction mixture>
cDNA (human lung cDNA) 1 μL
10 × LA buffer (Mg 2+ free) 2.5 μL
2.5 mM dNTP 4 μL
25 mM MgCl 2 2.5 μL
LA Taq DNA polymerase (5units / μL) 0.25 μL
Sense primer (10μM) 2.5 μL
Antisense primer (10μM) 2.5 μL
QW 9.75 μL
Total volume 25μL
<Reaction conditions>
Equipment: TaKaRa PCR Thermal Cycler SP
After 3 min at 94 ° C
After 35 cycles of 94 seconds at 94 ° C., 1 minute at 58 ° C. and 1 minute at 72 ° C., the temperature was set to 3 minutes at 72 ° C.

(3)PCR産物をエチジウムブロミド(0.5μg/mL)存在下、1%アガロースゲル電気泳動し、目的とするバンド(アミノ酸コード領域;約580bp)をUV照射によって確認しながらゲルを切り取った。その後、常法によりDNAを精製した。このDNA断片を組み込んだpGEM−TEasy VectorをNdeI及びSalIで処理後、hGLOIをHis-tagとの融合タンパク質として発現させるように、pET-Vector(Novagen社) を用いて発現ベクターを作製した。 (3) The PCR product was subjected to 1% agarose gel electrophoresis in the presence of ethidium bromide (0.5 μg / mL), and the gel was cut while confirming the target band (amino acid coding region; about 580 bp) by UV irradiation. Thereafter, DNA was purified by a conventional method. After treating pGEM-TEasy Vector incorporating this DNA fragment with NdeI and SalI, an expression vector was prepared using pET-Vector (Novagen) so as to express hGLOI as a fusion protein with His-tag.

(4)His-tag融合hGLOIタンパク発現用ベクターを、エレクトロポレーション法により大腸菌BL21 (DE3) 株に導入後、LA寒天平板培地に塗布して37℃で一晩培養し、His-tag融合hGLO Iタンパク質発現プラスミドを組み込んだコロニーを得た。このコロニーをLA培地2.5 mLに植菌し、37℃で一晩振とう培養した。次にこの培養液全量をLA培地250 mLに植菌し、37℃で4時間振とう培養した後、IPTG (終濃度1 mM) を添加して、さらに4時間振とう培養してタンパク質の発現誘導を行った。タンパク質発現誘導後の培養液を7,000 rpm、4℃で5分間遠心して集菌した後、Homogenize buffer (30mM Tris-HCl (pH7.5)、1 mM DTT) を加え、sonication (30秒×6回) を行った。その後、100,000 rpm、4℃で15分間遠心して得た上清をhGLO I粗酵素液とした。hGLO I粗酵素液をPD-10ゲルろ過カラム (GE Healthcare社) を用いて脱塩し、溶媒をBinding buffer (20 mM Na-PB、500 mM NaCl、20 mM Imidazol (pH7.4) )に置換した後、以下の条件でアフィニティークロマトグラフィーを行い、hGLO Iを精製した。回収したhGLO IをPD-10ゲルろ過カラムで脱塩し、溶媒を保存用buffer (50 mM Imidazol、20% glycerol、20 mM GSH、5 mM MgSO4 (pH 7.2) ) に置換し、精製酵素溶液とした。 (4) His-tag fused hGLOI protein expression vector was introduced into E. coli BL21 (DE3) strain by electroporation, applied to LA agar plate medium and cultured overnight at 37 ° C, and His-tag fused hGLO. Colonies incorporating the I protein expression plasmid were obtained. This colony was inoculated into 2.5 mL of LA medium and cultured overnight at 37 ° C. with shaking. Next, inoculate 250 ml of this culture medium into LA culture medium and incubate with shaking at 37 ° C for 4 hours. Add IPTG (final concentration 1 mM), and further shake culture for 4 hours to express protein. Guidance was performed. The culture after induction of protein expression is collected by centrifugation at 7,000 rpm for 5 minutes at 4 ° C, then added with Homogenize buffer (30 mM Tris-HCl (pH 7.5), 1 mM DTT), and sonication (30 sec x 6 times). ) Thereafter, the supernatant obtained by centrifugation at 100,000 rpm and 4 ° C. for 15 minutes was used as the hGLO I crude enzyme solution. Dehydrate the hGLO I crude enzyme solution using a PD-10 gel filtration column (GE Healthcare), and replace the solvent with a Binding buffer (20 mM Na-PB, 500 mM NaCl, 20 mM Imidazol (pH 7.4)). After that, affinity chromatography was performed under the following conditions to purify hGLO I. The recovered hGLO I is desalted with a PD-10 gel filtration column, and the solvent is replaced with a storage buffer (50 mM Imidazol, 20% glycerol, 20 mM GSH, 5 mM MgSO 4 (pH 7.2)), and purified enzyme solution It was.

〈測定条件〉
Column:HisTrapTMHP 5 mL (GE Healthcare社)
Controller:Gradi Frac (GE Healthcare社)
Detector:Optical Unit UV-1 (280 nm)
Mobile phase:
・Binding buffer (20 mM Na-PB、500 mM NaCl、20 mM Imidazol (pH7.4) )
・Elution buffer (20 mM Na-PB、500 mM NaCl、500 mM Imidazol (pH7.4) )
<Measurement condition>
Column: HisTrap TM HP 5 mL (GE Healthcare)
Controller: Gradi Frac (GE Healthcare)
Detector: Optical Unit UV-1 (280 nm)
Mobile phase:
・ Binding buffer (20 mM Na-PB, 500 mM NaCl, 20 mM Imidazol (pH7.4))
・ Elution buffer (20 mM Na-PB, 500 mM NaCl, 500 mM Imidazol (pH7.4))

(ヒト白血病細胞株HL-60に対する抗増殖活性の評価)
本例では、in vitroにおいて強力なGLOI阻害作用を有することが示されたイソフラボン化合物のうち、化合物8、9および14、さらに、BBGよりも弱いGLOI阻害活性を示した化合物11についても培養細胞における抗増殖活性を測定した。
(Evaluation of antiproliferative activity against human leukemia cell line HL-60)
In this example, among isoflavone compounds that were shown to have a potent GLOI inhibitory action in vitro, compounds 8, 9 and 14, and also compound 11 that showed a weaker GLOI inhibitory activity than BBG were also observed in cultured cells. Antiproliferative activity was measured.

なお、本実施例では、GLOIの既知の阻害剤であるBBGは細胞膜透過性が乏しく、培養液への添加では効果を示さないと考えられるため、細胞膜透過性を増大させるために、BBGのシクロペンチルエステル体であるBBGCを用いて培養細胞に対する効果を評価した。BBGCは細胞膜透過後、細胞内でエステル基が加水分解され、BBGに変換されると考えられる。   In this example, BBG, which is a known inhibitor of GLOI, is poor in cell membrane permeability and is considered to have no effect when added to a culture solution. Therefore, in order to increase cell membrane permeability, BBG cyclopentyl is used. The effect on cultured cells was evaluated using BBGC which is an ester form. It is considered that BBGC is converted into BBG after permeation of the cell membrane, where the ester group is hydrolyzed in the cell.

ヒト白血病細胞株HL−60細胞を96ウェルプレート上に播種し (8.25×103 個、100μL / well) 、37℃にて24時間培養した。その後、各濃度に調製した阻害剤候補化合物及びBBGC (control) を培地に溶かし、80μL/well で添加し、48時間培養した。なお、化合物の溶解、希釈にはDMSOを用い、DMSO終濃度が0.2〜0.5%となるように薬液を調製した。 Human leukemia cell line HL-60 cells were seeded on a 96-well plate (8.25 × 10 3 cells, 100 μL / well) and cultured at 37 ° C. for 24 hours. Thereafter, the inhibitor candidate compound and BBGC (control) prepared at each concentration were dissolved in a medium, added at 80 μL / well, and cultured for 48 hours. DMSO was used for dissolution and dilution of the compound, and a chemical solution was prepared so that the final DMSO concentration was 0.2 to 0.5%.

次いで、薬液処理後の96ウェルプレート中の細胞培養液に1wellあたり、MTS 試薬 (CellTiter 96 Aqueous One Solution reagent; Promega社) 30 μLと培地(10% FBS / RPMI )10 μLとなるように調製したものを添加し、継代培養条件下にて1.5時間インキュベートした。その後、生成したformazan色素の490 nmにおける吸光度をマルチラベルカウンター ( Wallac 1420 ARVOsx 、PerkinElmer社) により測定した。MTSは生細胞中のミトコンドリアに含まれるデヒドロゲナーゼによって還元されることによって褐色のformazanを生成するため、490 nmにおける吸光度は、生細胞数に比例する。結果を図2に示す。   Next, 30 μL of MTS reagent (CellTiter 96 Aqueous One Solution reagent; Promega) and 10 μL of medium (10% FBS / RPMI) were prepared per well of the cell culture solution in the 96-well plate after chemical treatment. Was added and incubated for 1.5 hours under subculture conditions. Thereafter, the absorbance of the produced formazan dye at 490 nm was measured with a multi-label counter (Wallac 1420 ARVOsx, PerkinElmer). Since MTS is reduced by dehydrogenase contained in mitochondria in living cells to produce brown formazan, the absorbance at 490 nm is proportional to the number of living cells. The results are shown in FIG.

図2に示すように、化合物9を除く化合物8,11及び14はいずれも細胞増殖抑制作用を有することが示された。HL−60細胞の増殖に対する化合物8、11および14のIC50値はそれぞれ33.5μM、2.2μMおよび35.3μMであった。in vitroにおいてはBBGよりも弱いGLOI阻害活性しか示さなかった化合物11がBBGCよりも強い細胞増殖抑制活性を示した。このことは化合物11が水に溶けにくく、細胞膜を透過しやすい性質を反映していると考えられる。一方、in vitroにおいてBBGよりも強力なGLOI阻害活性を有することが示された化合物9が細胞増殖抑制活性を示さなかったことは、化合物9の細胞透過性が低いということが示唆された。 As shown in FIG. 2, it was shown that all of compounds 8, 11 and 14 except for compound 9 have a cell growth inhibitory action. The IC 50 values of compounds 8, 11 and 14 for the growth of HL-60 cells were 33.5 μM, 2.2 μM and 35.3 μM, respectively. In vitro, Compound 11, which showed only weaker GLOI inhibitory activity than BBG, showed stronger cell growth inhibitory activity than BBGC. This is considered to reflect the property that the compound 11 is hardly soluble in water and easily permeates the cell membrane. On the other hand, the fact that Compound 9, which was shown to have a stronger GLOI inhibitory activity than BBG in vitro, did not show cytostatic activity, suggests that Compound 9 has low cell permeability.

(HL−60細胞培養上清中のMG量の評価)
本実施例では、イソフラボン化合物の細胞に対する抗増殖活性がGLOI阻害作用に基づくものであることを確認するために、培養上清中のMG量を評価した。
(Evaluation of MG content in HL-60 cell culture supernatant)
In this example, the amount of MG in the culture supernatant was evaluated in order to confirm that the antiproliferative activity of the isoflavone compound on cells was based on the GLOI inhibitory action.

(阻害剤候補化合物への細胞の暴露)
HL−60細胞を6 cmディッシュに播種し (2.8×105 個、5mL / dish ) 、37℃にて24時間培養後、各濃度に調製した阻害剤候補化合物とBBGC (control) を終濃度10 μMとなるよう添加し、さらに24時間培養した。なお、阻害剤候補化合物の溶解、希釈にはDMSOを用い、DMSO 終濃度が0.2〜0.5%となるように薬液を調製した。
(Exposure of cells to candidate inhibitor compounds)
HL-60 cells are seeded in a 6 cm dish (2.8 × 10 5 cells, 5 mL / dish), cultured at 37 ° C. for 24 hours, and then the inhibitor candidate compound and BBGC (control) prepared at each concentration are added to a final concentration of 10 It was added so that it might become μM, and further cultured for 24 hours. DMSO was used for dissolution and dilution of the inhibitor candidate compound, and a chemical solution was prepared so that the final DMSO concentration was 0.2 to 0.5%.

(培養上清中のMGの測定)
薬液処理後の培養液を回収後、遠心して得た上清をサンプルとして使用した。回収した上清4.5 mLに60%過塩素酸 (PCA) 450μLを加え(終濃度0.45M )、10分間氷上でインキュベートした。その後、遠心(12000rpm 、15min )して得た上清をSep-Pak(R) Light tC18カートリッジ (Waters社) にアプライした。なお、tC18カートリッジは前処理としてアセトニトリル 6〜8 mLで洗浄後、10 mM KH2PO4(pH 2.5) を6〜8 mL流したものを使用した。この溶出液にPBSに溶解させたo-phenylenediamine (o-PD) および、内部標準としてQWに溶解させた5-methylquinoxaline (5-MQ) をそれぞれ終濃度25μM (125 nmol)、および0.5 μM (2.5 nmol) となるよう添加し、室温で3.5時間反応させた。o-PDは培養液中のMGと反応し、2-methylquinoxaline (2-MQ) を生成するため、2-MQならびに5-MQをHPLC / UV法によって定量した。
(Measurement of MG in culture supernatant)
The supernatant obtained by centrifugation after recovering the culture solution after the chemical treatment was used as a sample. To 4.5 mL of the collected supernatant, 450 μL of 60% perchloric acid (PCA) was added (final concentration 0.45 M) and incubated on ice for 10 minutes. Thereafter, the supernatant obtained by centrifugation (12000 rpm, 15 min) was applied to a Sep-Pak® Light tC18 cartridge (Waters). The tC18 cartridge was pretreated by washing with 6-8 mL of acetonitrile and then flowing 6-8 mL of 10 mM KH 2 PO 4 (pH 2.5). In this eluate, o-phenylenediamine (o-PD) dissolved in PBS and 5-methylquinoxaline (5-MQ) dissolved in QW as an internal standard were respectively added to a final concentration of 25 μM (125 nmol) and 0.5 μM (2.5 nmol) and allowed to react at room temperature for 3.5 hours. Since o-PD reacts with MG in the culture medium to produce 2-methylquinoxaline (2-MQ), 2-MQ and 5-MQ were quantified by HPLC / UV method.

反応後のサンプルを再度tC18カートリッジを用いて、約1〜2 mL/minのスピードでアプライし、tC18 カートリッジに2-MQおよび5-MQを保持させた。次に、10mM KH2PO4 (pH 2.5) でtC18カートリッジを洗浄した後、2 mLのアセトニトリルで目的化合物を溶出した。この溶出液を約100μL程度まで濃縮し(SpeedVac SPD1010;ThermoFisher SCIENTIFIC社 ) 、PVDFメンブレンフィルター (0.45μm; MILLIPORE社) でろ過した後、以下の条件でHPLC / UV法によって定量した。結果を図3に示す。
〈測定条件〉
Column:Develosil C30-UG-5 4.6 mm i.d.×150 mm
(Nomura Chemical社)
Controller:Jasco PU-980 (日本分光株式会社)
Detector:Jasco UV-1570 (315 nm; 日本分光株式会社)
Mobile phase:20% acetonitrile、80% 10 mM KH2PO4 (pH 2.5)
Flow rate:1.5 mL/min
Sample volume:50 μL
〈レコーダー条件〉
Recorder:クロマトパックC-R5A (Shimadzu社)
Chart speed:0.2 cm/ min
The sample after the reaction was applied again at a speed of about 1 to 2 mL / min using a tC18 cartridge, and 2-MQ and 5-MQ were retained on the tC18 cartridge. Next, after washing the tC18 cartridge with 10 mM KH 2 PO 4 (pH 2.5), the target compound was eluted with 2 mL of acetonitrile. The eluate was concentrated to about 100 μL (SpeedVac SPD1010; ThermoFisher SCIENTIFIC), filtered through a PVDF membrane filter (0.45 μm; MILLIPORE), and then quantified by the HPLC / UV method under the following conditions. The results are shown in FIG.
<Measurement condition>
Column: Develosil C30-UG-5 4.6 mm id × 150 mm
(Nomura Chemical)
Controller: Jasco PU-980 (JASCO Corporation)
Detector: Jasco UV-1570 (315 nm; JASCO Corporation)
Mobile phase: 20% acetonitrile, 80% 10 mM KH 2 PO 4 (pH 2.5)
Flow rate: 1.5 mL / min
Sample volume: 50 μL
<Recorder conditions>
Recorder: Chromatopack C-R5A (Shimadzu)
Chart speed: 0.2 cm / min

図3に示すように、コントロール(DMSOで処理した細胞) の培養上清中のMG濃度は0.024 μMであったのに対し、ポジティブコントロールとして用いたBBGCは0.076±0.016 μMであった。また、化合物8および14で処理した培養上清中では、それぞれ0.01±0.002 μMおよび0.016μMのMGが検出され、BBGCと比較して10〜20%程度のMGしか検出されなかった。これに対し、化合物11では0.352±0.012 μMのMGが検出され、BBGCと比較して4倍以上ものMGが検出された。これらの結果から、化合物11はHL−60細胞内のGLOIを阻害することにより、MGの蓄積を引き起こし、その結果として細胞増殖抑制を誘導するものと考えられた。   As shown in FIG. 3, the MG concentration in the culture supernatant of the control (cells treated with DMSO) was 0.024 μM, whereas BBGC used as a positive control was 0.076 ± 0.016 μM. Further, 0.01 ± 0.002 μM and 0.016 μM MG were detected in the culture supernatants treated with compounds 8 and 14, respectively, and only about 10-20% MG was detected as compared with BBGC. On the other hand, 0.352 ± 0.012 μM MG was detected in Compound 11, and more than 4 times as much MG was detected as compared with BBGC. From these results, it was considered that Compound 11 inhibits GLOI in HL-60 cells, thereby causing MG accumulation and, as a result, inducing cell growth suppression.

(化合物11のアポトーシス誘導効果の確認)
本実施例では、化合物11のアポトーシス誘導効果について確認した。
(Confirmation of apoptosis-inducing effect of compound 11)
In this example, the apoptosis-inducing effect of Compound 11 was confirmed.

(化合物11への細胞の暴露)
HL−60細胞を24ウェルプレート上に播種し(4.0×104 個、500μL / well) 、化合物11を終濃度10μMとなるようにメディウムに溶かし、100μL / wellで添加し、37℃にて12時間培養した。なお、天然化合物の溶解、希釈にはDMSOを用い、DMSO 終濃度が0.2~0.5%となるように薬液を調製した。
(Exposure of cells to compound 11)
HL-60 cells were seeded on a 24-well plate (4.0 × 10 4 cells, 500 μL / well), compound 11 was dissolved in medium to a final concentration of 10 μM, added at 100 μL / well, and added at 37 ° C. Incubate for hours. Note that DMSO was used for dissolution and dilution of the natural compound, and a chemical solution was prepared so that the final DMSO concentration was 0.2 to 0.5%.

(核染色)
薬液処理後のHL−60細胞を1.5mLマイクロチューブに回収し、phosphate buffered saline (PBS) 1mLで2回洗浄した後、2% formaldehyde / PBSを1mL加え、20分間放置して固定した。次いで、100μg / mLのHoechst33342 (DOJINDO社)を20μL加え、転倒混和した後、40分間遮光しながら放置することで、核染色した。次いで、900 rpmで3分間遠心した後に上清を破棄し、再度PBS 1mLを加えることで細胞を洗浄し、この操作を3回行った。続いて、細胞懸濁液をスライドガラスに滴下しカバーガラスをかぶせ、マニキュアでカバーガラスの周囲を固定した。これをHSオールインワン蛍光顕微鏡(BZ-9000; KEYENCE社) で観察した。結果を図4に示す。
(Nuclear staining)
The HL-60 cells after chemical solution treatment were collected in a 1.5 mL microtube, washed twice with 1 mL of phosphate buffered saline (PBS), added with 1 mL of 2% formaldehyde / PBS, and allowed to stand for 20 minutes for fixation. Next, 20 μL of 100 μg / mL Hoechst33342 (DOJINDO) was added, and the mixture was inverted and mixed, and then left to stand for 40 minutes while being shielded from the nucleus. Subsequently, after centrifuging at 900 rpm for 3 minutes, the supernatant was discarded, and the cells were washed again by adding 1 mL of PBS, and this operation was performed three times. Subsequently, the cell suspension was dropped onto a slide glass, covered with a cover glass, and the periphery of the cover glass was fixed with nail polish. This was observed with an HS all-in-one fluorescence microscope (BZ-9000; KEYENCE). The results are shown in FIG.

図4において、矢印が核断裂箇所を示している。図4に示すように、化合物11で処理した細胞においては、アポトーシスに特徴的な核の断裂が認められた。化合物11の抗増殖活性は、アポトーシスの誘導を介した細胞増殖抑制作用に基づくものであることがわかった。   In FIG. 4, the arrow has shown the nuclear fracture location. As shown in FIG. 4, in the cells treated with compound 11, nuclear rupture characteristic of apoptosis was observed. It was found that the antiproliferative activity of Compound 11 is based on the cell growth inhibitory action through induction of apoptosis.

以上、本発明の実施形態および実施例について詳細に説明したが、これらは例示に過ぎず、特許請求の範囲を限定するものではない。特許請求の範囲に記載の技術には、以上に例示した具体例を様々に変形、変更したものが含まれる。   As mentioned above, although embodiment and the Example of this invention were described in detail, these are only illustrations and do not limit a claim. The technology described in the claims includes various modifications and changes of the specific examples illustrated above.

本明細書または図面に説明した技術要素は、単独であるいは各種の組合せによって技術的有用性を発揮するものであり、出願時請求項記載の組合せに限定されるものではない。また、本明細書または図面に例示した技術は複数目的を同時に達成し得るものであり、そのうちの一つの目的を達成すること自体で技術的有用性を持つものである。   The technical elements described in this specification or the drawings exhibit technical usefulness alone or in various combinations, and are not limited to the combinations described in the claims at the time of filing. In addition, the technology exemplified in this specification or the drawings can achieve a plurality of objects at the same time, and has technical usefulness by achieving one of the objects.

配列番号3、4:プライマー   SEQ ID NOs: 3, 4: Primers

Claims (10)

以下の式(1)で表される化合物を含むグリオキサラーゼI阻害剤。
(上記式中、R1、R2、R4、R5、R7、R8、R9、R11、R12及びR13は、それぞれ独立して水素原子、水酸基又は置換されていてもよい炭素数1〜4のアルキル基を表し、R3、R6及びR10は、それぞれ独立して水素原子又は置換されていてもよい炭素数1〜4のアルキル基を表す。)
A glyoxalase I inhibitor comprising a compound represented by the following formula (1):
(In the above formula, R 1 , R 2 , R 4 , R 5 , R 7 , R 8 , R 9 , R 11 , R 12 and R 13 may each independently be a hydrogen atom, hydroxyl group or substituted. Represents a good alkyl group having 1 to 4 carbon atoms, and R 3 , R 6 and R 10 each independently represent a hydrogen atom or an optionally substituted alkyl group having 1 to 4 carbon atoms.)
1〜R8、10、12及びR13は水素原子を表し、R9及びR11はメチル基を表す、請求項1に記載のグリオキサラーゼI阻害剤。 R 1 ~R 8, R 10, R 12 and R 13 represents a hydrogen atom, R 9 and R 11 represents a methyl group, glyoxalase I inhibitor according to claim 1. 以下の式(1)で表される化合物を含む抗腫瘍剤。
(上記式中、R1、R2、R4、R5、R7、R8、R9、R11、R12及びR13は、それぞれ独立して水素原子、水酸基又は置換されていてもよい炭素数1〜4のアルキル基を表し、R3、R6及びR10は、それぞれ独立して水素原子又は置換されていてもよい炭素数1〜4のアルキル基を表す。)
An antitumor agent comprising a compound represented by the following formula (1).
(In the above formula, R 1 , R 2 , R 4 , R 5 , R 7 , R 8 , R 9 , R 11 , R 12 and R 13 may each independently be a hydrogen atom, hydroxyl group or substituted. Represents a good alkyl group having 1 to 4 carbon atoms, and R 3 , R 6 and R 10 each independently represent a hydrogen atom or an optionally substituted alkyl group having 1 to 4 carbon atoms.)
1〜R8、10、12及びR13は水素原子を表し、R9及びR11はメチル基を表す、請求項3に記載の抗腫瘍剤。 The antitumor agent according to claim 3, wherein R 1 to R 8, R 10, R 12 and R 13 represent a hydrogen atom, and R 9 and R 11 represent a methyl group. 請求項1又は2に記載のグリオキサラーゼI阻害剤を有効成分として含有する、医薬組成物。   A pharmaceutical composition comprising the glyoxalase I inhibitor according to claim 1 or 2 as an active ingredient. イソフラボノイド骨格を有する被験化合物のグリオキサラーゼI阻害活性を評価する工程、
を備える、グリオキサラーゼI阻害剤のスクリーニング方法。
Evaluating glyoxalase I inhibitory activity of a test compound having an isoflavonoid skeleton,
A screening method for a glyoxalase I inhibitor.
イソフラボノイド骨格を有する被験化合物のグリオキサラーゼI阻害活性を評価する工程、
を備える、抗腫瘍剤のスクリーニング方法。
Evaluating glyoxalase I inhibitory activity of a test compound having an isoflavonoid skeleton,
A screening method for an antitumor agent.
さらに、グリオキサラーゼI阻害活性を有することが肯定された前記被験化合物についてガン細胞に対する抗増殖活性を評価する工程、を備える、請求項7に記載のスクリーニング方法。   Furthermore, the screening method of Claim 7 provided with the process of evaluating the antiproliferative activity with respect to a cancer cell about the said test compound affirmed having glyoxalase I inhibitory activity. さらに、グリオキサラーゼI阻害活性と抗増殖活性を有することが肯定された前記被験化合物について、当該被験化合物の存在下において前記ガン細胞の分泌するメチルグリオキサール量を評価する工程、を備える、請求項8に記載のスクリーニング方法。   The method further comprises the step of evaluating the amount of methylglyoxal secreted by the cancer cells in the presence of the test compound for the test compound affirmed to have glyoxalase I inhibitory activity and antiproliferative activity. 9. The screening method according to 8. 以下の式(1)で表される被験化合物及びその誘導体から選択される1種以上のグリオキサラーゼI阻害活性を評価する工程を、備える、抗腫瘍剤のスクリーニング方法。
(上記式中、R1、R2、R4、R5、R7、R8、R9、R11、R12及びR13は、それぞれ独立して水素原子、水酸基又は置換されていてもよい炭素数1〜4のアルキル基を表し、R3、R6及びR10は、それぞれ独立して水素原子又は置換されていてもよい炭素数1〜4のアルキル基を表す。)
A screening method for an antitumor agent, comprising a step of evaluating one or more glyoxalase I inhibitory activities selected from test compounds represented by the following formula (1) and derivatives thereof.
(In the above formula, R 1 , R 2 , R 4 , R 5 , R 7 , R 8 , R 9 , R 11 , R 12 and R 13 may each independently be a hydrogen atom, hydroxyl group or substituted. Represents a good alkyl group having 1 to 4 carbon atoms, and R 3 , R 6 and R 10 each independently represent a hydrogen atom or an optionally substituted alkyl group having 1 to 4 carbon atoms.)
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