JP2013150592A5 - - Google Patents
Download PDFInfo
- Publication number
- JP2013150592A5 JP2013150592A5 JP2012148957A JP2012148957A JP2013150592A5 JP 2013150592 A5 JP2013150592 A5 JP 2013150592A5 JP 2012148957 A JP2012148957 A JP 2012148957A JP 2012148957 A JP2012148957 A JP 2012148957A JP 2013150592 A5 JP2013150592 A5 JP 2013150592A5
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- antibody
- seq
- amino acid
- acid sequence
- hvr
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Pending
Links
Description
幾つかの実施態様では、個体は、自己免疫疾患を有するか、又は自己免疫疾患を有すると診断されている。幾つかの実施態様では、個体は、炎症性腸疾患(クローン病、潰瘍性大腸炎、及び不確定大腸炎等)を有するか、又は炎症性腸疾患(クローン病、潰瘍性大腸炎、及び不確定大腸炎等)を有すると診断されている。 In some embodiments, the individual has or has been diagnosed with an autoimmune disease . In some embodiments, the individual has inflammatory bowel disease (such as Crohn's disease, ulcerative colitis, and indeterminate colitis), or inflammatory bowel disease (Crohn's disease, ulcerative colitis, and non- The patient is diagnosed as having confirmed colitis .
幾つかの実施態様では、抗CD83アゴニスト抗体はモノクローナル抗体である。幾つかの実施態様では、抗CD83アゴニスト抗体は抗原結合断片であり、例えばFab、Fab’-SH、Fv、scFv、及び(Fab’)2断片からなる群から選択される断片である。幾つかの実施態様では、抗CD83アゴニスト抗体はヒト化抗体である。幾つかの実施態様では、抗CD83アゴニスト抗体はヒト抗体である。幾つかの実施態様では、抗CD83アゴニスト抗体はキメラ抗体である。幾つかの実施態様では、抗CD83アゴニスト抗体は、配列番号:31のアミノ酸配列を含んでなるHVR-H1、配列番号:32のアミノ酸配列を含んでなるHVR-H2、及び配列番号:33のアミノ酸配列を含んでなるHVR-H3を重鎖可変ドメイン、及び/又は配列番号:37のアミノ酸配列を含んでなるHVR-L1、配列番号:38のアミノ酸配列を含んでなるHVR-L2、及び配列番号:39のアミノ酸配列を含んでなるHVR-L3を含んでなる軽鎖可変ドメインを有する。幾つかの実施態様では、抗CD83アゴニスト抗体は、配列番号:30のアミノ酸配列を含んでなる重鎖可変ドメイン、及び/又は配列番号:36のアミノ酸配列を含んでなる軽鎖可変ドメインを有する。 In some embodiments, the anti-CD83 agonist antibody is a monoclonal antibody. In some embodiments, the anti-CD83 agonist antibody is an antigen-binding fragment, eg, a fragment selected from the group consisting of Fab, Fab′-SH, Fv, scFv, and (Fab ′) 2 fragments. In some embodiments, the anti-CD83 agonist antibody is a humanized antibody. In some embodiments, the anti-CD83 agonist antibody is a human antibody. In some embodiments, the anti-CD83 agonist antibody is a chimeric antibody. In some embodiments, the anti-CD83 agonist antibody comprises HVR-H 1 comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 31, HVR-H2 comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 32, and SEQ ID NO: 33. HVR-H3 comprising an amino acid sequence, a heavy chain variable domain, and / or HVR-L 1 comprising an amino acid sequence of SEQ ID NO: 37, HVR-L2 comprising an amino acid sequence of SEQ ID NO: 38, and It has a light chain variable domain comprising HVR-L3 comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 39. In some embodiments, the anti-CD83 agonist antibody has a heavy chain variable domain comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 30 and / or a light chain variable domain comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 36.
またここで提供されるものは、(a)配列番号:31のアミノ酸配列を含んでなるHVR-H1;(b)配列番号:32のアミノ酸配列を含んでなるHVR-H2;(c)配列番号:33のアミノ酸配列を含んでなるHVR-H3;(d)配列番号:37のアミノ酸配列を含んでなるHVR-L1;(e)配列番号:38のアミノ酸配列を含んでなるHVR-L2;(f)配列番号:39のアミノ酸配列を含んでなるHVR-L3から成る群から選択される少なくとも1、2、3、4、5又は6つの超可変領域(HVR)を含んでなる可変ドメインを含んでなる単離された抗CD83抗体である。またここで提供されるものは、次の6つのHVR配列(a)配列番号:31のアミノ酸配列を含んでなるHVR-H1;(b)配列番号:32のアミノ酸配列を含んでなるHVR-H2;(c)配列番号:33のアミノ酸配列を含んでなるHVR-H3;(d)配列番号:37のアミノ酸配列を含んでなるHVR-L1;(e)配列番号:38のアミノ酸配列を含んでなるHVR-L2;(f)配列番号:39のアミノ酸配列を含んでなるHVR-L3、を含んでなる重鎖可変ドメイン及び軽鎖可変ドメインを含んでなる単離された抗CD83抗体である。 Also provided herein is (a) HVR-H 1 comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 31; (b) HVR-H2 comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 32; (c) the sequence ID NO: 33 comprises the amino acid sequence of the HVR-H3; (d) SEQ ID NO: 37 HVR-L 1 comprising the amino acid sequence of; (e) SEQ ID NO: 38 comprises the amino acid sequence of HVR-L2 (F) a variable domain comprising at least 1, 2, 3, 4, 5 or 6 hypervariable regions (HVRs) selected from the group consisting of HVR-L3 comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 39; An isolated anti-CD83 antibody comprising Also provided herein are the following six HVR sequences (a) HVR-H 1 comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 31; (b) HVR- comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 32 H2; (c) HVR-H3 comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 33; (d) HVR-L 1 comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 37; (e) the amino acid sequence of SEQ ID NO: 38 An isolated anti-CD83 antibody comprising a heavy chain variable domain and a light chain variable domain comprising: HVR-L2 comprising; (f) HVR-L3 comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 39. is there.
幾つかの実施態様では、抗体は、(a)配列番号:31のアミノ酸配列を含んでなるHVR-H1、(b)配列番号:32のアミノ酸配列を含んでなるHVR-H2、及び(c)配列番号:33のアミノ酸配列を含んでなるHVR-H3を有する。幾つかの実施態様では、抗体は、(a)配列番号:37のアミノ酸配列を含んでなるHVR-L1、(b)配列番号:38のアミノ酸配列を含んでなるHVR-L2、及び(c)配列番号:39のアミノ酸配列を含んでなるHVR-L3を更に有する。 In some embodiments, the antibody comprises (a) HVR-H 1 comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 31, (b) HVR-H2 comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 32, and (c ) HVR-H3 comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 33. In some embodiments, the antibody comprises (a) HVR-L 1 comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 37, (b) HVR-L2 comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 38, and (c ) It further has HVR-L3 comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 39.
幾つかの実施態様では、抗体は、(a)配列番号:37のアミノ酸配列を含んでなるHVR-L1、(b)配列番号:38のアミノ酸配列を含んでなるHVR-L2、及び(c)配列番号:39のアミノ酸配列を含んでなるHVR-L3を有する。 In some embodiments, the antibody comprises (a) HVR-L 1 comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 37, (b) HVR-L2 comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 38, and (c ) HVR-L3 comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 39.
またここで提供されるものは、抗CD83抗体を作成する方法において、ここに記載の抗CD83抗体をコードする核酸の発現に適した条件下で、ここに記載の宿主細胞を培養することを含んでなる前記方法である。幾つかの実施態様では、該方法は宿主細胞によって産生された抗CD83抗体を回収することを更に含んでなる。 What is also provided herein a method for creating anti-CD83 antibody, under conditions suitable for expression of the nucleic acid encoding the anti-CD83 antibodies described herein, include culturing a host cell as described herein Said method comprising: In some embodiments, the method further comprises recovering the anti-CD83 antibody produced by the host cell.
ここで使用される場合、「防止」なる用語は、個体における疾患の発生又は再発に対する予防を与えることを含む。個体は、自己免疫疾患に罹り易い、感受性である、又は自己免疫疾患を展開する危険性があり得るが、まだ該疾患と診断されていない。 As used herein, the term “preventing” includes providing prevention against the occurrence or recurrence of a disease in an individual. An individual may be susceptible to, susceptible to, or at risk of developing an autoimmune disease, but has not yet been diagnosed with the disease.
ここで使用される場合、自己免疫疾患を展開する危険性がある個体とは、ここに記載の治療方法の前に、検出可能な疾患又は疾患の症状を有し得、又は表示検出可能な疾患又は疾患の症状を有し得る。「危険性がある」とは、個体が、当技術分野で知られる、自己免疫疾患の発生と相関する測定可能なパラメーターである一又は複数のリスクファクターを有することを意味する。一又は複数のこれらのリスクファクターを有する個体は、一又は複数のこれらのリスクファクターを持たない個体と比べ、疾患を発生するより高い確率を有する。 As used herein, an individual at risk of developing an autoimmune disease may have a detectable disease or disease symptom or display detectable disease prior to the method of treatment described herein. Or it may have symptoms of the disease. “At risk” means that an individual has one or more risk factors that are measurable parameters known in the art that correlate with the occurrence of an autoimmune disease. An individual with one or more of these risk factors has a higher probability of developing the disease than an individual without one or more of these risk factors.
幾つかの実施態様では、抗CD83抗体は、ヒトCD83の細胞外領域に特異的に結合する。幾つかの実施態様では、ヒトCD83は、
に由来する成熟アミノ酸配列を有する。
In some embodiments, the anti-CD83 antibody specifically binds to the extracellular region of human CD83. In some embodiments, human CD83 is
It has a mature amino acid sequence derived from
幾つかの実施態様では、抗CD83抗体は、(a)配列番号:31のアミノ酸配列を含んでなるHVR-H1;(b)配列番号:32のアミノ酸配列を含んでなるHVR-H2;(c)配列番号:33のアミノ酸配列を含んでなるHVR-H3;(d)配列番号:37のアミノ酸配列を含んでなるHVR-L1;(e)配列番号:38のアミノ酸配列を含んでなるHVR-L2;及び(f)配列番号:39のアミノ酸配列を含んでなるHVR-L3から選択される少なくとも1、2、3、4、5又は6つのHVRを有する。 In some embodiments, the anti-CD83 antibody comprises (a) HVR-H 1 comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 31; (b) HVR-H2 comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 32; c) HVR-H3 comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 33; (d) HVR-L 1 comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 37; (e) comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 38 And (f) at least 1, 2, 3, 4, 5 or 6 HVRs selected from HVR-L3 comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 39.
幾つかの実施態様では、抗CD83抗体は、(a)配列番号:31のアミノ酸配列を含んでなるHVR-H1;(b)配列番号:32のアミノ酸配列を含んでなるHVR-H2;(c)配列番号:33のアミノ酸配列を含んでなるHVR-H3;(d)配列番号:37のアミノ酸配列を含んでなるHVR-L1;(e)配列番号:38のアミノ酸配列を含んでなるHVR-L2;及び(f)配列番号:39のアミノ酸配列を含んでなるHVR-L3を含んでなる6つのHVRを有する。 In some embodiments, the anti-CD83 antibody comprises (a) HVR-H 1 comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 31; (b) HVR-H2 comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 32; c) HVR-H3 comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 33; (d) HVR-L 1 comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 37; (e) comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 38 HVR-L2; and (f) 6 HVRs comprising HVR-L3 comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 39.
幾つかの実施態様では、抗CD83抗体は、(a)配列番号:31のアミノ酸配列を含んでなるHVR-H1;(b)配列番号:32のアミノ酸配列を含んでなるHVR-H2;及び(c)配列番号:33のアミノ酸配列を含んでなるHVR-H3から選択される少なくとも1、少なくとも2、又は全3つのVH HVR配列を有する。一実施態様では、抗体は、配列番号:33のアミノ酸配列を含んでなるHVR-H3を有する。別の実施態様では、抗体は、配列番号:33のアミノ酸配列を含んでなるHVR-H3及び配列番号:39のアミノ酸配列を含んでなるHVR-L3を有する。更なる実施態様では、抗体は、配列番号:33のアミノ酸配列を含んでなるHVR-H3、配列番号:39のアミノ酸配列を含んでなるHVR-L3、及び配列番号:32のアミノ酸配列を含んでなるHVR-H2を有する。更なる実施態様では、抗体は、(a)配列番号:31のアミノ酸配列を含んでなるHVR-H1;(b)配列番号:32のアミノ酸配列を含んでなるHVR-H2;及び(c)配列番号:33のアミノ酸配列を含んでなるHVR-H3を有する。 In some embodiments, the anti-CD83 antibody comprises (a) HVR-H 1 comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 31; (b) HVR-H2 comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 32; and (C) having at least 1, at least 2, or all three VH HVR sequences selected from HVR-H3 comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 33. In one embodiment, the antibody has HVR-H3 comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 33. In another embodiment, the antibody has HVR-H3 comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 33 and HVR-L3 comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 39. In a further embodiment, the antibody comprises HVR-H3 comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 33, HVR-L3 comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 39, and the amino acid sequence of SEQ ID NO: 32. HVR-H2 In a further embodiment, the antibody comprises: (a) HVR-H 1 comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 31; (b) HVR-H2 comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 32; and (c) It has HVR-H3 comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 33.
幾つかの実施態様では、抗CD83抗体は、(a)配列番号:37のアミノ酸配列を含んでなるHVR-L1;(b)配列番号:38のアミノ酸配列を含んでなるHVR-L2;及び(c)配列番号:39のアミノ酸配列を含んでなるHVR-L3から選択される少なくとも1、少なくとも2、又は全3つのVL HVR配列を有する。一実施態様では、抗体は、(a)配列番号:37のアミノ酸配列を含んでなるHVR-L1;(b)配列番号:38のアミノ酸配列を含んでなるHVR-L2;及び(c)配列番号:39のアミノ酸配列を含んでなるHVR-L3を有する。 In some embodiments, the anti-CD83 antibody comprises (a) HVR-L 1 comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 37; (b) HVR-L2 comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 38; and (C) having at least 1, at least 2, or all three VL HVR sequences selected from HVR-L3 comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 39. In one embodiment, the antibody comprises (a) HVR-L 1 comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 37; (b) HVR-L2 comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 38; and (c) the sequence HVR-L3 comprising the amino acid sequence of number 39.
幾つかの実施態様では、抗CD83抗体は、(a)(i)配列番号:31のアミノ酸配列を含んでなるHVR-H1、(ii)配列番号:32のアミノ酸配列を含んでなるHVR-H2、及び(iii)配列番号:33のアミノ酸配列を含んでなるHVR-H3から選択される少なくとも1、少なくとも2、又は全3つのVH HVR配列を含んでなるVHドメイン;及び(b)(i)配列番号:37のアミノ酸配列を含んでなるHVR-L1;(ii)配列番号:38のアミノ酸配列を含んでなるHVR-L2;及び(iii)配列番号:39のアミノ酸配列を含んでなるHVR-L3から選択される少なくとも1、少なくとも2、又は全3つのVL HVR配列を含んでなるVLドメインを有する。 In some embodiments, the anti-CD83 antibody comprises (a) (i) HVR-H 1 comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 31, and (ii) HVR- comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 32. H2, and (iii) a VH domain comprising at least one, at least two, or all three VH HVR sequences selected from HVR-H3 comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 33; and (b) (i HVR-L 1 comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 37; (ii) HVR-L2 comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 38; and (iii) comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 39. It has a VL domain comprising at least 1, at least 2, or all three VL HVR sequences selected from HVR-L3.
幾つかの実施態様では、抗CD83抗体は、(a)配列番号:31のアミノ酸配列を含んでなるHVR-H1;(b)配列番号:32のアミノ酸配列を含んでなるHVR-H2;(c)配列番号:33のアミノ酸配列を含んでなるHVR-H3;(d)配列番号:37のアミノ酸配列を含んでなるHVR-L1;(e)配列番号:38のアミノ酸配列を含んでなるHVR-L2;及び(f)配列番号:39のアミノ酸配列を含んでなるHVR-L3を有する。 In some embodiments, the anti-CD83 antibody comprises (a) HVR-H 1 comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 31; (b) HVR-H2 comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 32; c) HVR-H3 comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 33; (d) HVR-L 1 comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 37; (e) comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 38 HVR-L2; and (f) HVR-L3 comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 39.
幾つかの実施態様では、抗CD83抗体において、配列番号:30のアミノ酸配列と少なくとも90%、91%、92%、93%、94%、95%、96%、97%、98%、99%、又は100%配列同一性を有する重鎖可変ドメイン(VH)を有する抗体が提供される。ある実施態様では、少なくとも90%、91%、92%、93%、94%、95%、96%、97%、98%、又は99%同一性を有するVH配列は基準配列に対して置換(例えば保存的置換)、挿入、又は欠失を有するが、この配列を含んでなる抗CD83抗体はCD83に結合する能力を保持する。ある実施態様では、全部で1から10のアミノ酸が、配列番号:30において置換、挿入及び/又は欠失されている。ある実施態様では、置換、挿入、及び/又は欠失は、HVRの外の領域(すなわちFR)において生じる。場合によっては、抗CD83抗体は、配列番号:30におけるVH配列を有し、該配列の翻訳後修飾を含む。特定の実施態様では、VHは、(a)配列番号:31のアミノ酸配列を含んでなるHVR-H1、(b)配列番号:32のアミノ酸配列を含んでなるHVR-H2、及び(c)配列番号:33のアミノ酸配列を含んでなるHVR-H3から選択される1、2又は3つのHVRを有する。 In some embodiments, the anti-CD83 antibody comprises at least 90%, 91%, 92%, 93%, 94%, 95%, 96%, 97%, 98%, 99% of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 30. Or an antibody having a heavy chain variable domain (VH) with 100% sequence identity. In some embodiments, a VH sequence having at least 90%, 91%, 92%, 93%, 94%, 95%, 96%, 97%, 98%, or 99% identity is replaced with a reference sequence ( An anti-CD83 antibody comprising this sequence, for example having conservative substitutions, insertions or deletions, retains the ability to bind CD83. In certain embodiments, a total of 1 to 10 amino acids have been substituted, inserted, and / or deleted in SEQ ID NO: 30. In certain embodiments, substitutions, insertions, and / or deletions occur in regions outside HVR (ie, FR). In some cases, the anti-CD83 antibody has a VH sequence in SEQ ID NO: 30 and includes post-translational modifications of the sequence. In certain embodiments, VH comprises (a) HVR-H 1 comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 31, (b) HVR-H2 comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 32, and (c) It has 1, 2, or 3 HVRs selected from HVR-H3 comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 33.
幾つかの実施態様では、抗CD83抗体において、配列番号:36のアミノ酸配列と少なくとも90%、91%、92%、93%、94%、95%、96%、97%、98%、99%、又は100%配列同一性を有する軽鎖可変ドメイン(VL)を有する抗体が提供される。ある実施態様では、少なくとも90%、91%、92%、93%、94%、95%、96%、97%、98%、又は99%同一性を有するVL配列は基準配列に対して置換(例えば保存的置換)、挿入、又は欠失を有するが、この配列を含んでなる抗CD83抗体はCD83に結合する能力を保持する。ある実施態様では、全部で1から10のアミノ酸が、配列番号:36において置換、挿入及び/又は欠失されている。ある実施態様では、置換、挿入、及び/又は欠失は、HVRの外の領域(すなわちFR)において生じる。場合によっては、抗CD83抗体は、配列番号:36におけるVL配列を有し、該配列の翻訳後修飾を含む。特定の実施態様では、VLは、(a)配列番号:37のアミノ酸配列を含んでなるHVR-L1、(b)配列番号:38のアミノ酸配列を含んでなるHVR-L2、及び(c)配列番号:39のアミノ酸配列を含んでなるHVR-L3から選択される1、2又は3つのHVRを有する。 In some embodiments, the anti-CD83 antibody comprises at least 90%, 91%, 92%, 93%, 94%, 95%, 96%, 97%, 98%, 99% of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 36. Or an antibody having a light chain variable domain (VL) with 100% sequence identity. In certain embodiments, a VL sequence having at least 90%, 91%, 92%, 93%, 94%, 95%, 96%, 97%, 98%, or 99% identity is replaced with a reference sequence ( An anti-CD83 antibody comprising this sequence, for example having conservative substitutions, insertions or deletions, retains the ability to bind CD83. In certain embodiments, a total of 1 to 10 amino acids have been substituted, inserted, and / or deleted in SEQ ID NO: 36. In certain embodiments, substitutions, insertions, and / or deletions occur in regions outside HVR (ie, FR). In some cases, the anti-CD83 antibody has a VL sequence in SEQ ID NO: 36 and includes a post-translational modification of the sequence. In certain embodiments, the VL comprises (a) HVR-L 1 comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 37, (b) HVR-L2 comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 38, and (c) It has one, two or three HVRs selected from HVR-L3 comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 39.
酵母における誘発的プロモーターは、増殖条件によって転写が制御される付加的効果を有する。例示的な誘発的プロモーターは、アルコールデヒドロゲナーゼ2、イソチトクロムC、酸ホスファターゼ、窒素代謝と関連する分解性酵素、メタロチオネイン、グリセルアルデヒド-3-リン酸デヒドロゲナーゼ、及びマルトース及びガラクトースの利用を支配する酵素のプロモーター領域を含む。酵母の発現に好適に用いられるベクターとプロモーターは欧州特許73657に更に記載されている。また酵母エンハンサーも酵母プロモーターと共に好適に用いられる。 Inducible promoters in yeast have the added effect that transcription is controlled by growth conditions. Exemplary inducible promoters include alcohol dehydrogenase 2, isocytochrome C, acid phosphatase, degrading enzymes associated with nitrogen metabolism, metallothionein, glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase, and enzymes that govern the use of maltose and galactose Of the promoter region. Vector and promoter suitably used for yeast expression are further described in EP 73,657. Yeast enhancers are also preferably used with yeast promoters.
(5)エンハンサーエレメント成分
より高等の真核生物による、抗体又はその断片をコードしているDNAの転写は、ベクター中にエンハンサー配列を挿入することによってしばしば増強される。哺乳動物遺伝子由来の多くのエンハンサー配列が現在知られている(グロビン、エラスターゼ、アルブミン、α-フェトプロテイン及びインスリン)。しかしながら、典型的には、当業者は、真核細胞ウィルス由来のエンハンサーを用いるであろう。例としては、複製起点の後期側のSV40エンハンサー(100−270塩基対)、サイトメガロウィルス初期プロモーターエンハンサー、複製起点の後期側のポリオーマエンハンサー及びアデノウィルスエンハンサーが含まれる。真核生物プロモーターの活性化のための増強要素については、Yaniv, Nature, 297:17-18 (1982)もまた参照のこと。エンハンサーは、抗体又は抗体断片コード配列の5'又は3'位でベクター中にスプライシングされうるが、好ましくはプロモーターの5'位に位置している。
(5) Enhancer element component Transcription of DNA encoding an antibody or fragment thereof by higher eukaryotes is often enhanced by inserting an enhancer sequence into the vector. Many enhancer sequences are now known from mammalian genes (globin, elastase, albumin, α-fetoprotein and insulin). Typically, however, one skilled in the art will use an enhancer from a eukaryotic cell virus. Examples include the late SV40 enhancer (100-270 base pairs) of the origin of replication, the cytomegalovirus early promoter enhancer, the polyoma enhancer and the adenovirus enhancer late of the origin of replication. See also Yaniv, Nature, 297: 17-18 (1982) on enhancing elements for activation of eukaryotic promoters. Enhancers can be spliced into the vector at the 5 ′ or 3 ′ position of the antibody or antibody fragment coding sequence, but are preferably located at the 5 ′ position of the promoter.
(3)ヒト化抗体
本発明の抗体(抗CD83アゴニスト抗体等)又は抗体断片には、さらにヒト化又はヒト抗体が含まれる。非ヒト(例えばマウス)抗体のヒト化形とは、キメライムノグロブリン、イムノグロブリン鎖あるいはその断片(例えばFab、Fab'-SH、Fv、scFv、F(ab')2又は抗体の他の抗原結合サブ配列)であって、非ヒトイムノグロブリン由来の最小配列を含むものである。ヒト化抗体はレシピエントの相補性決定領域(CDR)の残基が、所望の特異性、親和性及び能力を有するマウス、ラット、ハムスター、又はウサギのような非ヒト種(ドナー抗体)のCDRの残基によって置換されたヒトイムノグロブリン(レシピエント抗体)を含む。ある場合には、ヒトイムノグロブリンのFvフレームワーク残基は、対応する非ヒト残基によって置換されている。また、ヒト化抗体は、レシピエント抗体にも、移入されたCDRもしくはフレームワーク配列にも見出されない残基を含んでいてもよい。一般に、ヒト化抗体は、少なくとも1つの、また典型的には2つの可変ドメインの全てを実質的に含み、この場合、CDR領域の全て若しくは実質的に全てが、非ヒトイムノグロブリンのものに相当し、FR領域の全て若しくは実質的に全てが、ヒトイムノグロブリンコンセンサス配列である。ヒト化抗体は、最適には免疫グロブリン定常領域(Fc)、典型的にはヒトのイムノグロブリンの定常領域の少なくとも一部も含む。Jones等, Nature, 321:522-525 (1986); Riechmann等, Nature, 332:323-329 (1988); 及びPresta, Curr. Op Struct. Biol., 2:593-596 (1992)。
(3) Humanized antibody The antibody (anti-CD83 agonist antibody and the like) or antibody fragment of the present invention further includes a humanized or human antibody. A humanized form of a non-human (eg, mouse) antibody is a chimeric immunoglobulin, immunoglobulin chain or fragment thereof (eg, Fab, Fab′-SH, Fv, scFv, F (ab ′) 2 or other antigen binding of an antibody) Subsequence), which includes a minimal sequence derived from non-human immunoglobulin. A humanized antibody is a CDR of a non-human species (donor antibody) such as a mouse, rat, hamster, or rabbit in which the recipient complementarity determining region (CDR) residues have the desired specificity, affinity and ability. Human immunoglobulins (recipient antibodies) substituted by these residues. In some cases, Fv framework residues of the human immunoglobulin are replaced by corresponding non-human residues. Humanized antibodies may also contain residues which are found neither in the recipient antibody nor in the imported CDR or framework sequences. In general, a humanized antibody comprises substantially all of at least one and typically two variable domains, wherein all or substantially all of the CDR regions correspond to those of a non-human immunoglobulin. However, all or substantially all of the FR region is a human immunoglobulin consensus sequence. A humanized antibody optimally also comprises at least a portion of an immunoglobulin constant region (Fc), typically that of a human immunoglobulin. Jones et al., Nature, 321: 522-525 (1986); Riechmann et al., Nature, 332: 323-329 (1988); and Presta, Curr. Op Struct. Biol., 2: 593-596 (1992).
抗体断片を生産するために様々な技術が開発されている。伝統的には、これらの断片は、完全な抗体のタンパク分解性消化を介して誘導されていた(例えば、Morimotoら, Journal of Biochemical and Biophysical Methods 24:107-117 (1992)及びBrennanら, Science, 229:81(1985)を参照されたい)。しかしながら、これらの断片は現在は組換え宿主細胞により直接生産することが可能であり、例えば上で検討したCD83に対する抗体をコードする核酸を使用する。Fab、Fv及びscFv抗体断片はすべて大腸菌内で発現され分泌されるため、これら断片を大量に産生することが容易である。抗体断片は上記した抗体ファージライブラリーから単離することができる。あるいは、Fab'-SH断片は大腸菌から直接回収することができ、化学的に結合してF(ab')2断片を形成することができる(Carterら, Bio/Technology 10:163-167(1992))。他のアプローチ法では、F(ab')2断片を組換え宿主細胞培養から直接分離することができる。インビボ半減期が延長したFab及びF(ab’)2抗体断片の産生は米国特許第5,869,046号に記載されている。他の実施態様では、選択抗体は単鎖Fv断片(scFV)である。国際公開第93/16185号;米国特許第5,571,894号;及び米国特許第5,587,458号を参照のこと。また、抗体断片は、例えば米国特許第5,641,870号に記載されているような「直鎖状抗体」であってもよい。このような直鎖状抗体断片は単一特異性又は二重特異性であってよい。 Various techniques have been developed to produce antibody fragments. Traditionally, these fragments have been derived through proteolytic digestion of intact antibodies (e.g. Morimoto et al., Journal of Biochemical and Biophysical Methods 24: 107-117 (1992) and Brennan et al., Science , 229: 81 (1985)). However, these fragments can now be possible you to produced directly by recombinant host cells, using nucleic acid encoding an antibody against CD83 discussed above, for example. Since Fab, Fv and scFv antibody fragments are all expressed and secreted in E. coli, it is easy to produce these fragments in large quantities. Antibody fragments can be isolated from the antibody phage libraries described above. Alternatively, Fab′-SH fragments can be recovered directly from E. coli and chemically combined to form F (ab ′) 2 fragments (Carter et al., Bio / Technology 10: 163-167 (1992). )). In another approach, F (ab ′) 2 fragments can be isolated directly from recombinant host cell culture. Production of Fab and F (ab ′) 2 antibody fragments with increased in vivo half-life is described in US Pat. No. 5,869,046. In other embodiments, the selection antibody is a single chain Fv fragment (scFV). See WO 93/16185; US Pat. No. 5,571,894; and US Pat. No. 5,587,458. The antibody fragment may also be a “linear antibody” as described in, for example, US Pat. No. 5,641,870. Such linear antibody fragments may be monospecific or bispecific.
異なったアプローチ法では、所望の結合特異性を有する抗体可変ドメイン(抗原-抗体結合部位)を免疫グロブリン定常ドメイン配列と融合させる。該融合は好ましくは、少なくともヒンジの一部、CH2及びCH3領域を含む免疫グロブリン重鎖定常ドメインとの融合である。軽鎖の結合に必要な部位を含む第一の重鎖定常領域(CH1)を、融合の少なくとも一つに存在させることが望ましい。免疫グロブリン重鎖の融合、望まれるならば免疫グロブリン軽鎖をコードしているDNAを、別個の発現ベクター中に挿入し、適当な宿主生物に同時に形質移入する。これにより、組立に使用される三つのポリペプチド鎖の等しくない比率が最適な収率をもたらす態様において、三つのポリペプチド断片の相互の割合の調節に大きな融通性が与えられる。しかし、少なくとも二つのポリペプチド鎖の等しい比率での発現が高収率をもたらすとき、又はその比率が特に重要性を持たないときは、2または3個全てのポリペプチド鎖のためのコード化配列を一つの発現ベクターに挿入することが可能である。 In a different approach, antibody variable domains with the desired binding specificities (antigen-antibody combining sites) are fused to immunoglobulin constant domain sequences. The fusion is preferably a fusion with an immunoglobulin heavy chain constant domain comprising at least part of the hinge, CH2 and CH3 regions. It is desirable to have a first heavy chain constant region (CH1) containing the site necessary for light chain binding, present in at least one of the fusions. Fusion of an immunoglobulin heavy chain, a DNA if it encodes an immunoglobulin light chain is desired, it is inserted into separate expression vectors, and are co-transfected into a suitable host organism. This provides great flexibility in adjusting the mutual proportions of the three polypeptide fragments in an embodiment where unequal proportions of the three polypeptide chains used in the assembly result in optimal yield. However, when expression at an equal ratio of at least two polypeptide chains yields a high yield, or when the ratio is not particularly important, the coding sequence for all two or three polypeptide chains Can be inserted into one expression vector.
組換え細胞培養から直接的に二価抗体断片を作成し単離する様々な技術もまた記述されている。例えば、二価ヘテロ二量体はロイシンジッパーを使用して生産されている。Kostelnyら, J.Immunol. 148(5):1547-1553 (1992)。Fos及びJunタンパク質からのロイシンジッパーペプチドを遺伝子融合により二つの異なった抗体のFab'部分に結合させる。抗体ホモダイマーをヒンジ領域で還元してモノマーを形成し、ついで再酸化して抗体ヘテロダイマーを形成する。Hollingerら, Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 90:6444-6448 (1993)により記述された「ダイアボディ」技術は二重特異性/二価抗体断片を作成する別のメカニズムを提供した。断片は、同一鎖上の2つのドメイン間の対形成を可能にするには十分に短いリンカーにより軽鎖可変ドメイン(VL)に重鎖可変ドメイン(VH)を結合してなる。従って、一つの断片のVH及びVLドメインは他の断片の相補的VL及びVHドメインと強制的に対形成させられ、2つの抗原結合部位を形成する。単鎖Fv(sFv)ダイマーの使用により二重特異性/二価抗体断片を製造する他の方策もまた報告されている。Gruberら, J.Immunol. 152:5368 (1994)を参照されたい。 Various techniques for making and isolating bivalent antibody fragments directly from recombinant cell culture have also been described. For example, divalent heterodimers have been produced using leucine zippers. Kostelny et al., J. Immunol. 148 (5): 1547-1553 (1992). Leucine zipper peptides from Fos and Jun proteins are linked to the Fab ′ portions of two different antibodies by gene fusion. Antibody homodimers are reduced at the hinge region to form monomers and then reoxidized to form antibody heterodimers. The “diabody” technique described by Hollinger et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 90: 6444-6448 (1993) provided an alternative mechanism for generating bispecific / bivalent antibody fragments. A fragment consists of a heavy chain variable domain (VH) joined to a light chain variable domain (VL) by a linker that is short enough to allow pairing between two domains on the same chain. Thus, the VH and VL domains of one fragment are forced to pair with the complementary VL and VH domains of the other fragment to form two antigen binding sites. Other strategies for producing bispecific / bivalent antibody fragments by using single chain Fv (sFv) dimers have also been reported. See Gruber et al., J. Immunol. 152: 5368 (1994).
(9)エフェクター機能の操作
エフェクター機能を変更及び/又は抗体の血清半減期を増加するように本発明の抗体を改変することが所望されうる。例えば、定常領域のFc受容体結合部位が、特定のFc受容体、FcγRI、FcγRII、及び/又はFcγRIIIに対する結合親和性を除去又は低減するように改変又は変異されうる。幾つかの実施態様では、エフェクター機能は、抗体のFc領域(例えば、IgGのCH2において)のN-グリコシル化を除去することによって損なわれる。幾つかの実施態様では、エフェクター機能は、ヒトIgGの233−236、297、及び/又は327−331等の領域を修飾することによって損なわれ、PCTWO99/58572及びArmour等, Molecular Immunology 40: 585-593 (2003); Reddy等, J. Immunology 164:1925-1933 (2000)に記載される。
(9) Manipulation of effector function It may be desirable to modify the antibody of the present invention to alter the effector function and / or increase the serum half-life of the antibody. For example, Fc receptor binding site of the constant region, certain Fc receptors, Fc gamma RI, may be modified or mutated to remove or reduce binding affinity to Fc gamma RII, and / or Fc gamma RIII. In some embodiments, effector function is impaired by removing N-glycosylation of the Fc region of an antibody (eg, in the CH2 of IgG). In some embodiments, effector function is impaired by modifying regions such as 233-236, 297, and / or 327-331 of human IgG, and PCTWO 99/58572 and Armour et al., Molecular Immunology 40: 585- 593 (2003); Reddy et al., J. Immunology 164: 1925-1933 (2000).
(10)他の抗体修飾
本発明の抗体又は抗体断片は、当技術分野で知られ容易に入手可能である更なる非タンパク質性部分を持つよう更に修飾されることができる。好ましくは、抗体の誘導体化に適した部分は水溶性ポリマーである。水溶性ポリマーの非制限的な例は、限定するものではないが、ポリエチレングリコール(PEG)、エチレングリコール/プロピレングリコールのコポリマー、カルボキシメチルセルロース、デキストラン、ポリビニルアルコール、ポリビニルピロリドン、ポリ-1、3-ジオキソラン、ポリ-1,3,6-トリオキサン、エチレン/無水マレイン酸コポリマー、ポリアミノ酸(ホモポリマー又はランダムコポリマー)、及びデキストラン又はポリ(n-ビニルピロリドン)ポリエチレングリコール、ポリプロピレングリコールホモポリマー、ポリプロピレンオキシド/エチレンオキシドコポリマー、ポリオキシエチレンポリオール(例えば、グリセロール)、ポリビニルアルコール、及びその混合を含む。ポリエチレングリコールプロピオンアルデヒドは、水中のその安定性により製造において利点を有しうる。ポリマーは、任意の分子量であり得、分岐又は非分岐でありうる。抗体に結合されるポリマーの数は様々であり得、一以上のポリマーが結合される場合は、それらは同じもしくは異なる分子であってもよい。一般に、誘導体化に使用されるポリマーの数及び/又はタイプは考察に基づいて決定されることが可能であり、限定するものではないが、改良される抗体の特定の特性又は機能、抗体誘導体が決められた条件下の治療で使用されるかどうか等を含む。このような技術及び多の適切な製剤は、Remington: The Science and Practice of Pharmacy, 20th Ed., Alfonso Gennaro, Ed., Philadelphia College of Pharmacy and Science (2000)に開示されている。
(10) Other antibody modifications The antibodies or antibody fragments of the present invention can be further modified to have additional non-proteinaceous moieties known in the art and readily available. Preferably, the moiety suitable for derivatization of the antibody is a water soluble polymer. Non-limiting examples of water-soluble poly M a include, but are not limited to, polyethylene glycol (PEG), copolymers of ethylene glycol / propylene glycol, carboxymethylcellulose, dextran, polyvinyl alcohol, polyvinyl pyrrolidone, poly-1,3 -Dioxolane, poly-1,3,6-trioxane, ethylene / maleic anhydride copolymer, polyamino acid (homopolymer or random copolymer), and dextran or poly (n-vinylpyrrolidone) polyethylene glycol, polypropylene glycol homopolymer, polypropylene oxide / Ethylene oxide copolymer, polyoxyethylene polyol (eg glycerol), polyvinyl alcohol, and mixtures thereof. Polyethylene glycol propionaldehyde may have advantages in manufacturing due to its stability in water. The polymer can be of any molecular weight and can be branched or unbranched. The number of polymers attached to the antibody can vary, and if more than one polymer is attached, they can be the same or different molecules. In general, the number and / or type of polymers used for derivatization can be determined based on considerations, including, but not limited to, the specific properties or functions of the antibody being improved, Including whether or not to be used in the treatment under defined conditions. Such techniques and many suitable formulations are disclosed in Remington: The Science and Practice of Pharmacy, 20th Ed., Alfonso Gennaro, Ed., Philadelphia College of Pharmacy and Science (2000).
実施例1.CD83は細胞表面でのホモタイプ結合に関与する
細胞表面上に発現されるCD83に可溶性CD83が結合するか決定するために、アミノ酸配列
TPEVKVACSEDVDLPCTAPWDPQVPYTVSWVKLLEGGEERMETPQEDHLRGQHYHQKGQNGSFDAPNERPYSLKIRNTTSCNSGTYRCTLQDPDGQRNLSGKVILRVTGCPAQRKEETFKKYGRAQVTDKAAHYTLCPPCPAPELLGGPSVFLFPPKPKDTLMISRTPEVTCVVVDVSHEDPEVKFNWYVDGVEVHNAKTKPREEQYNSTYRVVSVLTVLHQDWLNGKEYKCKVSNKALPAPIEKTISKAKGQPREPQVYTLPPSREEMTKNQVSLTCLVKGFYPSDIAVEWESNGQPENNYKTTPPVLDSDGSFFLYSKLTVDKSRWQQGNVFSCSVMHEALHNHYTQKSLSLSPGK(配列番号:3)
を含んでなるCD83.fcを生成し、CHO細胞(CHO-hCD83)上に安定的に発現されるヒトCD83、又はMUTZ-3由来成熟樹状細胞(mDC)上で発現される内因性CD83の何れかに結合するその能力を評価した。安定CHO-hCD83細胞株の産生のための発現ベクターを生成するために、N末端HISタグヒトCD83(hCD83)をコードするDNA断片を、位置XbaI及びXhoIで、ネオマイシン耐性プラスミド、pRKneo(Crowley等, Proc Natl Acad Sci USA., 90(11):5021-5025, 1993)にクローニングしてhCD83.pRKneoを生成した。CHO細胞をFugene(Roche)を使用してhCD83.pRKneoで形質移入し、上位10%のCD83陽性細胞をFACSで選別し、次いでG418(400μg/ml;GIBCO)を用いて選択し、安定CHO-hCD83細胞株を生成した。MUTZ-3細胞から未熟DC(iDC)を得るため、細胞を、150ng/mlのrhGM-CSF及び50ng/mlのrhIL-4を含有するMEMα+glutamax/20%加熱不活性化FBSにおいて培養した。DCを、25ng/mlのrhIL-1b、100ng/mlのrhIL-6、50ng/mlのrhTNFα及び1μg/mlのPGE-2を含有するサイトカインカクテルを用いて、CD83の表面発現に対して成熟させた。
Example 1. CD83 in order to determine whether soluble CD83 binds to CD83 expressed on the cell surface involved in homotypic binding at the cell surface, the amino acid sequence TPEVKVACSEDVDLPCTAPWDPQVPYTVSWVKLLEGGEERMETPQEDHLRGQHYHQKGQNGSFDAPNERPYSLKIRNTTSCNSGTYRCTLQDPDGQRNLSGKVILRVTGCPAQRKEETFKKYGRAQVTDKAAHYTLCPPCPAPELLGGPSVFLFPPKPKDTLMISRTPEVTCVVVDVSHEDPEVKFNWYVDGVEVHNAKTKPREEQYNSTYRVVSVLTVLHQDWLNGKEYKCKVSNKALPAPIEKTISKAKGQPREPQVYTLPPSRE EMTKNQVSLTCLVKGFYPSDIAVEWENGNGPEPENYKTTTPPVLDSDGSFFLYSKLTVDKSRWQQGNVFFSCSVMHEALHNHYTQKSLSLSPGK (SEQ ID NO: 3)
CD83. It produces fc and binds to either human CD83 stably expressed on CHO cells (CHO-hCD83) or endogenous CD83 expressed on MUTZ-3-derived mature dendritic cells (mDC) The ability was evaluated. To generate an expression vector for production of a stable CHO-hCD83 cell line, a DNA fragment encoding an N-terminal HIS-tagged human CD83 (hCD83) was placed at positions XbaI and XhoI at the neomycin resistance plasmid, pRKneo (Crowley et al., Proc Natl Acad Sci USA., 90 (11): 5021-5025, 1993) and cloned into hCD83. pRKneo was generated. CHO cells were washed with hCD83. Using Fugene (Roche). Transfected with pRKneo and top 10% CD83 positive cells were sorted by FACS and then selected using G418 (400 μg / ml; GIBCO) to generate a stable CHO-hCD83 cell line. To obtain immature DC (iDC) from MUTZ-3 cells, the cells were cultured in MEM α + glutamax / 20% heat inactivated FBS containing 150 ng / ml rhGM-CSF and 50 ng / ml rhIL-4. The DC, with a cytokine cocktail containing 25 ng / ml of rhIL-1b, 100ng / ml of rhIL-6,50ng / ml of rhTNF alpha and 1 mu g / ml of PGE-2, to the surface expression of CD83 And matured.
CD83.fc結合に細胞表面CD83が必要か確認するために、CHO-hCD83細胞を1μg/mlの抗CD83抗体(HB15e; Santa Cruz Biotechnology)でインキュベートし、これがCD83.fc結合を阻止するか決定した。データ解析は、CD83.fcはCHO-hCD83細胞(黒線)に結合するが、結合は、アイソタイプコントロール(灰色線)ではなくHB15e(破線)によってブロックされることを示した(図2A)。CD83.fc結合のためのCD83発現の必要性を、CD83を発現していないMUTZ-3由来DCにおいて更に検定した。MUTZ-3 iDCを、150ng/mlのrhGM-CSF及び50ng/mlのrhIL-4を含有するMEMα+glutamax/20%加熱不活性化FBSにおける培養の4日後、CD83を標的にするAccell siRNA(Cat. No. E-012680; Dharmacon)又は非標的化コントロール(Cat. No. D-001910; Dharmacon)で形質移入した。MUTZ-3 iDCを、10uMのsiRNAを含有し、3%加熱不活性化FBS、150ng/mlのGM-CSF及び50ng/mlのIL-4で補充されたAccell delivery media(Cat. No. B-005000; Dharmacon)において、5%CO2で37°Cで72時間インキュベートした。7日目、上述したようにmDCを産生するために成熟刺激でDCを処理した。siRNA媒介によるCD83 RNA及びタンパク質発現ノックダウンの効果を、それぞれtaqman qPCR並びにウエスタンブロット(全細胞溶解物)によって評価した。18Sに正規化した、非標的化コントロール(siNTC)siRNA又はCD83特異的siRNA(siCD83)で処理したMUTZ-3 mDCからの全RNAの分析は、CD83 siRNAで形質移入されたDCが、CD83 RNAレベルの有意なダウンレギュレーションを呈することを実証した(図2B)。MUTZ-3 mDCにおけるCD83のノックダウンを、CD83に対する蛍光色素コンジュゲート抗体で細胞を染色し、フローサイトメトリーによって細胞を解析することによって確認した。データ解析及び全結合を示すヒストグラムの構築は、CD83は、siNTCで処理されたmDCの表面に発現されるが(黒線)、siCD83で処理されたiDC(灰色線)又は成熟DC(破線)では発現されないことを示した(図2C)。中実ヒストグラムはアイソタイプコントロールを示す。CD83発現のノックダウンの確認の後、iDC、siNTC mDC、及びsiCD83 mDCを、上述のようにPE-標識CD83.Fc又は標識IgG.Fcコントロールタンパク質でインキュベートし、フローサイトメトリーに課した。データ解析は、CD83.fcはsiNTC mDCに結合するが、iDC又はsiCD83 mDCに結合しないことを実証し、成熟DCに対するCD83.fc結合がCD83発現を必要とすることを示した(図2D)。CD83のノックダウンはまた、MHCIIの低下した発現をもたらしたが、CD86等の他の活性マーカーには何の変化もなかった(図2E及びF)。 CD83. To confirm whether cell surface CD83 is required for fc binding, CHO-hCD83 cells were incubated with 1 μg / ml of anti-CD83 antibody (HB15e; Santa Cruz Biotechnology), which was CD83. It was determined whether to block fc binding. Data analysis was performed on CD83. Although fc binds to CHO-hCD83 cells (black line), it was shown that the binding is blocked by HB15e (dashed line) rather than isotype control (gray line) (FIG. 2A). CD83. The need for CD83 expression for fc binding was further assayed in MUTZ-3-derived DCs that did not express CD83. MUTZ-3 iDC were treated with Accel αRNA targeting CD83 after 4 days of culture in MEM α + glutamax / 20% heat inactivated FBS containing 150 ng / ml rhGM-CSF and 50 ng / ml rhIL-4. No. E-012680; Dharmacon) or non-targeting control (Cat. No. D-001910; Dharmacon). MUTZ-3 iDC containing 10 uM siRNA, supplemented with 3% heat inactivated FBS, 150 ng / ml GM-CSF and 50 ng / ml IL-4 (Cat. No. B- 005000; Dharmacon) and incubated at 37 ° C. with 5% CO 2 for 72 hours. On day 7, DCs were treated with maturation stimuli to produce mDCs as described above. The effects of siRNA-mediated CD83 RNA and protein expression knockdown were assessed by taqman qPCR and Western blot (whole cell lysate), respectively. Analysis of total RNA from MUTZ-3 mDCs treated with non-targeting control (siNTC) siRNA or CD83-specific siRNA (siCD83) normalized to 18S shows that DCs transfected with CD83 siRNA showed CD83 RNA levels Was demonstrated to exhibit significant down-regulation (Fig. 2B). Knockdown of CD83 in MUTZ-3 mDC was confirmed by staining the cells with a fluorescent dye-conjugated antibody against CD83 and analyzing the cells by flow cytometry. Data analysis and the construction of a histogram showing total binding show that CD83 is expressed on the surface of mDCs treated with siNTC (black line), whereas iDCs treated with siCD83 (gray line) or mature DC (dashed line). It was shown not to be expressed (FIG. 2C). A solid histogram shows isotype control. After confirmation of knockdown of CD83 expression, iDC, siNTC mDC, and siCD83 mDC were treated with PE-labeled CD83. Fc or labeled IgG. Incubated with Fc control protein and subjected to flow cytometry. Data analysis was performed on CD83. fc demonstrates binding to siNTC mDC but not iDC or siCD83 mDC, CD83. It was shown that fc binding requires CD83 expression (FIG. 2D). CD83 knockdown also resulted in decreased expression of MHCII, but no other activity markers such as CD86 were altered (FIGS. 2E and F).
CD83がホモタイプ結合を通した細胞対細胞接着を媒介するか決定するために、hCD83を発現するCHO細胞において細胞凝集を検定した。CHO細胞及びCHO-hCD83細胞を2mMのEDTAでフラスコから脱離させ、洗浄し、2%FBS/10mMEDTAを含有するがCa2+又はMg2+を欠くHBSSに再懸濁させた。その後、細胞を106/mlで再懸濁させ、70μmフィルターを通過させて、低接着10cm培養皿にプレーティングするための単個細胞浮遊液を得た。軌道プラットフォームシェーカーにおける37℃で90分間のインキュベーションの後、細胞を4%のPFAで固定して細胞凝集を評価した。細胞の顕微鏡イメージングは、CD83発現を欠くコントロールCHO細胞は凝集せず、hCD83を発現するCHO-hCD83細胞は懸濁培養中でクラスターを形成したことを示した(図3A及びB)。1μgのCD83.fcタンパク質でのCHO-hCD83細胞の前処理は凝集を阻止したが、Igコントロールでの処理は阻止しなかった(図3C及びD)。これらの結果は、CD83の表面発現が細胞対細胞接着に十分であり、この相互作用はホモタイプ結合に対する競合のため可溶性CD83の添加により阻止できることを示す。 To determine if CD83 mediates cell-to-cell adhesion through homotypic binding, cell aggregation was assayed in CHO cells expressing hCD83. CHO cells and CHO-hCD83 cells were detached from the flask with 2 mM EDTA, washed and resuspended in HBSS containing 2% FBS / 10 mM EDTA but lacking Ca 2+ or Mg 2+ . Thereafter, the cells were resuspended at 10 6 / ml and passed through a 70 μm filter to obtain a single cell suspension for plating on low adhesion 10 cm culture dishes. After 90 minutes incubation at 37 ° C. in an orbital platform shaker, cells were fixed with 4% PFA to assess cell aggregation. Microscopic imaging of the cells showed that control CHO cells lacking CD83 expression did not aggregate and CHO-hCD83 cells expressing hCD83 formed clusters in suspension culture (FIGS. 3A and B). 1 μg of CD83. Pretreatment of CHO-hCD83 cells with fc protein prevented aggregation but not with Ig control (FIGS. 3C and D). These results indicate that surface expression of CD83 is sufficient for cell-to-cell adhesion and this interaction can be blocked by addition of soluble CD83 due to competition for homotypic binding.
実施例2.DCの可溶性CD83処理は、DC成熟及び炎症促進性サイトカイン放出の阻害により抗炎症性表現型となる。
可溶性CD83処理によりDCに誘導される免疫反応を特徴付けるために、mDC表面活性化マーカーへのCD83処理の効果を評価した。MUTZ-3細胞からiDCを得るために、細胞を150ng/mlのrhGM-CSF及び50ng/mlのrhIL-4を含有するMEMα+glutamax/20%加熱不活性化FBSにおいて6日間培養した。iDCを、25ng/mlのrhIL-1β、100ng/mlのrhIL-6、50ng/mlのrhTNFα及び1μg/mlのPGE-2を含有する成熟刺激サイトカインカクテルで処理した。10μg/mlのCD83.fc、1μg/mlのHB15e、又はコントロールIgG.fcでのmDCの処理を成熟刺激と同時に行った。MUTZ-3由来mDCにおける細胞表面活性化マーカー、CD83及びHLA-DR(MHCII)の発現を、CD83又はMHCIIに対する蛍光色素コンジュゲート抗体で細胞を染色し、フローサイトメトリーによって細胞を分析することによって検査した。非特異的染色のレベルを決定するために、標識アイソタイプ適合抗体を使用した。データ解析及び全結合を示すヒストグラム構築は、CD83及びMHCIIはMUTZ-3由来mDCで発現されたが(黒線)、iDC(中実線ヒストグラム)では低レベルであることを示した(図4)。中実非線ヒストグラムはアイソタイプコントロールを表す。CD83及びMHCII双方の発現は、CD83.fc(灰色線)又はHB15e(破線)処置で低減され、CD83処理がmDCにおける表面活性化マーカーの発現を低減することを示す。
Example 2 Soluble CD83 treatment of DC results in an anti-inflammatory phenotype due to inhibition of DC maturation and pro-inflammatory cytokine release.
To characterize the immune response induced by DC by soluble CD83 treatment, the effect of CD83 treatment on mDC surface activation markers was evaluated. To obtain iDCs from MUTZ-3 cells, the cells were cultured for 6 days in MEM α + glutamax / 20% heat inactivated FBS containing 150 ng / ml rhGM-CSF and 50 ng / ml rhIL-4. iDC and, rhIL-1 beta in 25 ng / ml, and treated with a maturation stimulus cytokine cocktail containing rhIL-6,50ng / ml of rhTNF alpha and 1 mu g / ml of PGE-2 in 100 ng / ml. 10 μg / ml of CD83. fc, 1 μg / ml HB15e, or control IgG. Treatment of mDC with fc was performed simultaneously with maturation stimulation. The expression of cell surface activation markers, CD83 and HLA-DR (MHCII) in MUTZ-3-derived mDCs is examined by staining the cells with a fluorescent dye-conjugated antibody against CD83 or MHCII and analyzing the cells by flow cytometry did. In order to determine the level of non-specific staining, labeled isotype matched antibodies were used. Data analysis and histogram construction showing total binding showed that CD83 and MHCII were expressed in MUTZ-3-derived mDCs (black line) but at low levels in iDC (solid line histogram) (FIG. 4). The solid non-linear histogram represents the isotype control. The expression of both CD83 and MHCII is CD83. It is reduced with fc (gray line) or HB15e (dashed line) treatment, indicating that CD83 treatment reduces the expression of surface activation markers in mDC.
DCはサイトカインの生成を介し免疫反応を調節することが知られているため、可溶性CD83処理のDCへの効果を、処理されたヒト単球由来DC(MDDC)からのサイトカイン分泌の検出によって評価した。MDDCを複数ドナーの全血から単離し、成熟させるためにCD83.Fc又はHBI5eの有無においてサイトカインを用いて刺激した。単離及び処理のために、ヒト全血をPBSで希釈し、Ficoll Paque(GE healthcare)上に重層し30分間1500rpmで回転させた。白血球層を取り除き、PBSで洗浄した。単球をHuman monocyte isolation kit II (Miltenyi)を用いて単離し、125ng/mlのrhIL-4及び50ng/mlのrhGM-CSF(R&D systems)を含有するRPM/10%FBS/1Xpen/strepにおいて6日間培養した。未熟DCを得るために、培地を一日おきに変えた。10μg/mlCD83.Fc又は1μg/ml抗CD83抗体(HBI5e;Santa Cruz)を用いた全処理は成熟刺激と同時に行った。細胞培養上澄部をDCの成熟後48時間で集め、分泌されたサイトカインを、標準の製造者の指示に従って、MCP-1、IL12-p40及びIL-8(Invitrogen)、並びにIL-1ra(Cell Sciences)についてキットを使用してELISAによって解析した。DCによって分泌されたサイトカインの解析は、成熟刺激を共に用いたCD83.Fcでの処理が、DCサイトカインの分泌を変化させ、IL-1受容体に結合し下流の炎症性シグナル伝達をブロックするインターロイキン-1受容体アンタゴニスト(IL-1ra)を増加し(図5B)、炎症促進性サイトカイン単球走化性タンパク質-1(MCP-1)及びインターロイキン-12(lL-12p40)のサブユニットβの産生を低下させた(図5A及びC)。CD83.Fc又はHBI5eを用いた処理は、炎症性サイトカインIL-8の産生に何の効果も持たなかった(図5D)。 Since DCs are known to modulate immune responses through cytokine production, the effect of soluble CD83 treatment on DCs was assessed by detection of cytokine secretion from treated human monocyte-derived DCs (MDDCs). . CD83. To isolate and mature MDDC from whole donor whole blood. Stimulation with cytokines in the presence or absence of Fc or HBI5e. For isolation and processing, human whole blood was diluted with PBS, layered on Ficoll Paque (GE healthcare) and spun at 1500 rpm for 30 minutes. The leukocyte layer was removed and washed with PBS. Monocytes are isolated using Human monocyte isolation kit II (Miltenyi) and 6 in RPM / 10% FBS / 1Xpen / strep containing 125 ng / ml rhIL-4 and 50 ng / ml rhGM-CSF (R & D systems). Cultured for days. To obtain immature DC, the medium was changed every other day. 10 μg / ml CD83. All treatments with Fc or 1 μg / ml anti-CD83 antibody (HBI5e; Santa Cruz) were performed simultaneously with maturation stimulation. Cell culture supernatants were collected 48 hours after DC maturation and secreted cytokines were collected according to standard manufacturer's instructions for MCP-1, IL12-p40 and IL-8 (Invitrogen), and IL-1ra (Cell Sciences) was analyzed by ELISA using a kit. Analysis of cytokines secreted by DC was performed using CD83. Treatment with Fc alters secretion of DC cytokines and increases interleukin-1 receptor antagonist (IL-1ra) that binds to IL-1 receptor and blocks downstream inflammatory signaling (FIG. 5B) Reduced the production of subunit β of pro-inflammatory cytokine monocyte chemotactic protein-1 (MCP-1) and interleukin-12 (1L-12p40) (FIGS. 5A and C). CD83. Treatment with Fc or HBI5e had no effect on the production of the inflammatory cytokine IL-8 (FIG. 5D).
可溶性CD83処理によりDCに誘発された免疫反応を更に特徴付けるために、mDCによる炎症促進性サイトカイン分泌へのCD83処置の効果を評価した。MUTZ-3細胞から未熟DCを得るために、細胞を150ng/mlのrhGM-CSF及び50ng/mlのrhIL-4を含有するMEMα+glutamax/20%加熱不活性化FBSにおいて6日間培養した。DCを、25ng/mlのrhIL-1β、100ng/mlのrhIL-6、50ng/mlのrhTNFa及び1μg/mlのPGE-2を含有するサイトカインカクテルを用い、CD83の表面発現について成熟させた。10μg/mlのCD83.fc、1μg/mlのHB15e、又はコントロールIgG.fcでのmDCの処理を成熟刺激と同時に行った。細胞培養上澄部をDCの成熟後48時間で集め、分泌されたサイトカインを、標準の製造者の指示に従って、MCP-1、IL12-p40及びIL-8キット(Invitrogen)、並びにIL-1ra(Cell Sciences)を使用してELISAによって解析した。DCによって分泌されたサイトカインの解析は、炎症促進性サイトカインMCP-1(図6A)及びIL-12p40(図6C)が、CD83.Fc又はHBI5e処理によりmDCにおいて低下されたことを示した。対照的に、抗炎症性サイトカインIL-1raは、CD83処理mDCにおいて有意に増加された(図6B)。放出IL-8のレベルは、CD83処理又はコントロール処理mDC間に差異を示さなかった(図6D)。各ウェルからの上澄部を3重で実施し、*は値が有意に異なることを示す、*p<0.0l、**p<0.001。各ドットは個々のウェルの平均を表す。グラフは少なくとも3回の独立実験の代表である。 To further characterize DC-induced immune responses by soluble CD83 treatment, the effect of CD83 treatment on pro-inflammatory cytokine secretion by mDC was evaluated. To obtain immature DCs from MUTZ-3 cells, cells were cultured for 6 days in MEM α + glutamax / 20% heat inactivated FBS containing 150 ng / ml rhGM-CSF and 50 ng / ml rhIL-4. DCs were matured for CD83 surface expression using a cytokine cocktail containing 25 ng / ml rhIL-1β, 100 ng / ml rhIL-6, 50 ng / ml rhTNFa and 1 μg / ml PGE-2. . 10 μg / ml of CD83. fc, 1 μg / ml HB15e, or control IgG. Treatment of mDC with fc was performed simultaneously with maturation stimulation. Cell culture supernatants were collected 48 hours after DC maturation and secreted cytokines were collected according to standard manufacturer's instructions for MCP-1, IL12-p40 and IL-8 kits (Invitrogen), and IL-1ra ( Analysis by ELISA using Cell Sciences). Analysis of cytokines secreted by DCs showed that the pro-inflammatory cytokines MCP-1 (FIG. 6A) and IL-12p40 (FIG. 6C) were CD83. It was shown that it was decreased in mDC by Fc or HBI5e treatment. In contrast, the anti-inflammatory cytokine IL-1ra was significantly increased in CD83 treated mDC (FIG. 6B). The level of released IL-8 showed no difference between CD83 treated or control treated mDCs (FIG. 6D). Supernatant from each well was performed in triplicate, * indicates significantly different values, * p <0.01, ** p <0.001. Each dot represents the average of an individual well. The graph is representative of at least 3 independent experiments.
実施例3.可溶性CD83処理は、創傷治癒に関与する遺伝子のアップレギュレーションとなる。
CD83.fc又はHB15eで処理されたDCに誘導される遺伝子発現における変更を更に特徴づけるため、処理後、DCから単離されたRNAにマイクロアレイ分析を実施した。マイクロアレイに関する統計解析をR project(http://r-project.org)及びBioconductor project(http://bioconductor.org)からのソフトウェアを使用して行った。バックグラウンド減算マイクロアレイデータを、アレイ内でLOESS正規化、アレイ間で分位数正規化した。次いで、正規化データをlog2変換し、プローブをBioconductorの「genefilter」パッケージを使用してフィルター処理した(例えば、Entrez遺伝子にマッピングされるプローブのみ保持される)。次に、50%最小可変プローブを除去する非特異的フィルターを使用した(Bourgon等, Proc Natl Acad Sci USA., 107(21):9546-51, 2010)。異なって発現される遺伝子を同定するために、limmaパッケージを使用して(Smyth., Stat Appl Genet Mol Biol., 3:Article 3, 2004)、減衰t検定を算出した。線形モデルを、未熟及び成熟DC間、並びにCD83連結サンプル(CD83fc-及びHB15e-処理成熟DC)及びコントロールサンプル(IgG-及び非処理成熟DC)間の異なる発現に対して試験した。false discovery rate(FDR)をBenjamini-Hochberg法を使用して算出した。0.01未満のFDRを有する場合、遺伝子は異なって発現されると考えた。5つの異なるドナーからのDCの分析は、CD83.fc及びHB15e処理細胞が分離し、未処理mDC並びにiDCから独立してクラスタとなることを示し、処理が創傷治癒に関与する遺伝子のアップレギュレーションとなることを示した。マイクロアレイデータを、CD83.fc又はHB15eで処理したmDCからの単離された全RNAのtaqman qPCR分析によって確認した(図7)。gapdhに対する正規化後、遺伝子発現解析は、創傷治癒に関与する遺伝子vcan、spock2、及びfbn2がアップレギュレートされたことを示した。示した平均相対発現は2^ΔCT+標準誤差(SEM)である。これらのインビトロ結果は、可溶性CD83処理が、炎症性疾患により引き起こされる組織損傷の治癒のための、正常な細胞増殖及び遊走を促進しうることを示す。
Example 3 Soluble CD83 treatment results in upregulation of genes involved in wound healing.
CD83. To further characterize changes in gene expression induced in DCs treated with fc or HB15e, microarray analysis was performed on RNA isolated from DCs after treatment. Statistical analysis on microarrays was performed using software from R project (http://r-project.org) and Bioconductor project (http://bioconductor.org). Background subtracted microarray data was LOESS normalized within the array and quantile normalized between arrays. The normalized data was then log2 transformed and the probes were filtered using Bioconductor's “genefilter” package (eg, only probes that map to the Entrez gene are retained). Next, a non-specific filter that removes 50% minimal variable probe was used (Bourgon et al., Proc Natl Acad Sci USA., 107 (21): 9546-51, 2010). In order to identify differentially expressed genes, the lmma package was used (Smyth., Stat Appl Genet Mol Biol., 3: Article 3, 2004) to calculate the decay t-test. Linear models were tested for differential expression between immature and mature DCs and between CD83-linked samples (CD83fc- and HB15e-treated mature DCs) and control samples (IgG- and untreated mature DCs). The false discovery rate (FDR) was calculated using the Benjamini-Hochberg method. A gene was considered to be differentially expressed if it had an FDR of less than 0.01. Analysis of DCs from 5 different donors is CD83. We showed that fc and HB15e treated cells were separated and clustered independently from untreated mDCs and iDCs, indicating that the treatment up-regulated genes involved in wound healing. The microarray data was recorded on CD83. The isolated total RNA from mDC treated with fc or HB15e was confirmed by taqman qPCR analysis (FIG. 7). After normalization to gapdh, gene expression analysis showed that the genes vcan, spike2, and fbn2 involved in wound healing were upregulated. Average relative expression shown is 2 ^ delta CT + standard error of the mean (SEM). These in vitro results indicate that soluble CD83 treatment can promote normal cell proliferation and migration for the healing of tissue damage caused by inflammatory diseases.
実施例4.CD83ホモタイプ相互作用は抗炎症性反応を媒介する。
抗炎症性反応を調節するCD83相互作用を更に特徴付けるために、DCを、hCD83を過剰発現するCHO細胞と共培養した時に、抗炎症性反応についてモニタした。MUTZ-3細胞からiDCを得るために、細胞を150ng/mlのrhGM-CSF及び50ng/mlのrhIL-4を含有するMEMα+glutamax/20%加熱不活性化FBSにおいて6日間培養した。生成されたiDCを、コントロールCHO細胞株又はヒトCD83を安定に発現するCHO細胞と共培養した。その後、混合細胞の培養物を未処理か、もしくは25ng/mlのrhIL-1β、100ng/mlのrhIL-6、50ng/mlのrhTNFα及び1μg/mlのPGE-2を含有するサイトカインカクテルで処理してmDCを生成した。細胞培養上澄み液をDCの成熟48時間後収集し、分泌されたサイトカインIL12-p40及びMCP-1を標準の製造者指示に従ってELISA(Invitrogen)によって分析した。分泌されたIL12-p40及びMCP-1レベルの分析は、炎症促進性サイトカインの放出が、CD83発現を欠くCHO細胞と比較して、hCD83を発現するCHO細胞と共培養されたmDCにおいて有意に低減されることを示した(図8A及びB)。このデータは、CD83がトランスホモタイプ相互作用に関与して抗炎症性反応を媒介することが可能であることを実証する。このデータは、CD83が、抗炎症性反応を媒介するためにトランスホモタイプ相互作用に関与することが可能なことを示す。これらの結果は、複数ドナーの全血から単離されたヒト単球由来DC(MDDC)を使用して確認した。刺激後、CHO-hCD83細胞と共に培養したDCは、CD83発現を欠くCHO細胞と共に培養したものより有意に少ないIL12-p40を産生した。
Example 4 CD83 homotype interactions mediate anti-inflammatory responses.
To further characterize CD83 interactions that regulate anti-inflammatory responses, DCs were monitored for anti-inflammatory responses when co-cultured with CHO cells overexpressing hCD83. To obtain iDCs from MUTZ-3 cells, the cells were cultured for 6 days in MEM α + glutamax / 20% heat inactivated FBS containing 150 ng / ml rhGM-CSF and 50 ng / ml rhIL-4. The generated iDCs were co-cultured with a control CHO cell line or a CHO cell stably expressing human CD83. Thereafter, either untreated cultures of mixed cell, or 25 ng / ml of rhIL-1 β, 100ng / ml of rhIL-6,50ng / ml of rhTNF alpha and 1 mu g / ml cytokine containing PGE-2 in Treatment with cocktail produced mDC. Cell culture supernatants were collected 48 hours after DC maturation and secreted cytokines IL12-p40 and MCP-1 were analyzed by ELISA (Invitrogen) according to standard manufacturer's instructions. Analysis of secreted IL12-p40 and MCP-1 levels revealed that pro-inflammatory cytokine release was significantly reduced in mDC co-cultured with CHO cells expressing hCD83 compared to CHO cells lacking CD83 expression (FIGS. 8A and 8B). This data demonstrates that CD83 can participate in trans-homotype interactions and mediate anti-inflammatory responses. This data indicates that CD83 can participate in trans-homotypic interactions to mediate anti-inflammatory responses. These results were confirmed using human monocyte-derived DC (MDDC) isolated from whole blood from multiple donors. After stimulation, DCs cultured with CHO-hCD83 cells produced significantly less IL12-p40 than those cultured with CHO cells lacking CD83 expression.
細胞表面CD83との相互作用を必要とするCD83処理により媒介される抗炎症性反応を検証するために、CD83を発現していないDCにおいて処理を検定した。MUTZ-3 iDCを、150ng/mlのrhGM-CSF及び50ng/mlのrhIL-4を含有するMEMα+glutamax/20%加熱不活性化FBSにおける培養の4日後、CD83を標的にするAccell siRNA(Cat. No. E-012680; Dharmacon)又は非標的化コントロール(Cat. No. D-001910; Dharmacon)で形質移入した。MUTZ-3 iDCを、10uMのsiRNAを含有し、3%加熱不活性化FBS、150ng/mlのGM-CSF及び50ng/mlのIL-4で補充されたAccell delivery media(Cat. No. B-005000; Dharmacon)において、5%CO2で37°Cで72時間インキュベートした。7日目、iDCを、25ng/mlのrhIL-1β、100ng/mlのrhIL-6、50ng/mlのrhTNFα及び1μg/mlのPGE-2を含有するサイトカインカクテルで処理してmDCを生成した。10μg/mlのCD83.fc、1μg/mlのHB15e、又はコントロールIgG.fcでのmDCの処理を成熟刺激と同時に行った。細胞培養上澄部をDCの成熟後48時間で集め、分泌されたサイトカインを、標準の製造者の指示に従って、MCP-1キット(Invitrogen)を使用してELISAによって解析した。DCによって放出されたMCP-1の解析は、CD83のsiRNAノックダウン(siCD83)がCD83.fc及びHB15e抗体への反応を抑止したことを示した(図9)。従って、このデータは、CD83処理による抗炎症性反応を媒介するために細胞表面にCD83が必要であることを示す。これらの結果は分泌されたIL-12p40の検出によって確認された。mDCによって放出されたIL-12p40の解析は、CD83のsiRNAノックダウン(siCD83)がCD83.fc及びHB15e抗体への反応を抑止したことを示した。 In order to verify the anti-inflammatory response mediated by CD83 treatment requiring interaction with cell surface CD83, treatment was assayed in DCs that did not express CD83. MUTZ-3 iDC were treated with Accel αRNA targeting CD83 after 4 days of culture in MEM α + glutamax / 20% heat inactivated FBS containing 150 ng / ml rhGM-CSF and 50 ng / ml rhIL-4. No. E-012680; Dharmacon) or non-targeting control (Cat. No. D-001910; Dharmacon). MUTZ-3 iDC containing 10 uM siRNA, supplemented with 3% heat inactivated FBS, 150 ng / ml GM-CSF and 50 ng / ml IL-4 (Cat. No. B- 005000; Dharmacon) and incubated at 37 ° C. with 5% CO 2 for 72 hours. Day 7, the iDC, 25 ng / ml of rhIL-1 beta, and treated with cytokine cocktail containing PGE-2 in 100 ng / ml of rhIL-6,50ng / ml of rhTNF alpha and 1 μ g / ml mDC Was generated. 10 μg / ml of CD83. fc, 1 μg / ml HB15e, or control IgG. Treatment of mDC with fc was performed simultaneously with maturation stimulation. Cell culture supernatants were collected 48 hours after DC maturation and secreted cytokines were analyzed by ELISA using the MCP-1 kit (Invitrogen) according to standard manufacturer's instructions. Analysis of MCP-1 released by DC showed that CD83 siRNA knockdown (siCD83) was CD83. It was shown that the reaction to the fc and HB15e antibodies was suppressed (FIG. 9). Therefore, this data indicates that CD83 is required on the cell surface to mediate the anti-inflammatory response by CD83 treatment. These results were confirmed by detection of secreted IL-12p40. Analysis of IL-12p40 released by mDC showed that CD83 siRNA knockdown (siCD83) was CD83. It was shown that the reaction to fc and HB15e antibodies was suppressed.
CD83処理中の抗炎症性反応がホモタイプ結合、及び細胞表面CD83を介した下流シグナル伝達を必要とするか決定するために、細胞質内切断型CD83コンストラクトを発現するDCにおいて処理を評価した。CD83レンチウイルス発現コンストラクトはpGCMV.IRES.eGFP(pGIPZ誘導体; Openbiosystems)から得られ、完全長hCD83遺伝子(CD83FL)又は細胞質領域(Δ172−205)切断hCD83遺伝子のセグメントをPCR増幅し、これらの断片をXhoI/EcoRIクローニング部位に挿入することによって作成した(図9B)。DCの感染のためのレンチウィルスを生成するために、293T細胞をゼラチン化された10cmの培養皿に1X107で播種し、80−90%の培養密度に達するまで〜20時間増殖させた。培地を5mlのDMEM、10%FBS、2mMのL-グルタミンで補充し、37℃で6時間、Lipofectamine 2000 (Invitrogen)を使用して、1:2.3:0.2のモル比で5μg発現プラスミド、デルタ8.9及びVSVGを含有するDNAミックスで細胞を形質移入した。形質移入培地を6mlの通常の増殖培地で補充し、細胞を更に40時間37℃でインキュベートした。上澄部を回収し、0.45μmのtube top filter(Corning)を通して濾過することによって精製し、製造者の指示に従ってLenti-X-concentrator(Clonetech)を使用して濃縮した。MUTZ-3細胞を、MEMα+Glutamax/20%加熱不活性化FBS/15%HTB-9馴化培地を含有する維持培地における24ウェル培養プレートに0.5x106/mlで播種した。ポリブレン及び濃縮レンチウィルス上澄み部をそれぞれ4μg/mlの最終濃度及び10のMOIで細胞に加えた。細胞を、室温で30分間Allegra X-12R卓上遠心分離機において1800rpmでスピンさせ、次いで37℃で一晩インキュベートした。レンチウィルスを含有する培地を除去し、新鮮な維持培地と交換した。2−3日の培養後、上位10%のGFP陽性細胞を選別し、150ng/mlのrhGM-CSF及び50ng/mlのrhIL-4で補充されたMEMα+Glutamax/20%加熱不活性化FBSにおいて6日間培養し、iDCとして使用した。細胞を48時間、成熟刺激、並びにCD83.Fc、HB15e又はアイソタイプコントロールで処理した。その後、上澄み部を収集し、MCP-1放出をELISAによって解析した。分泌されたMCP-1の解析は、完全長CD83のレンチウィルス過剰発現は、CD83.fc又はHB15eへのmDC反応を阻害しなかったが、細胞質切断型CD83の発現はCD83処理の抗炎症性作用を阻止したことを示した(図9C)。これらの結果を分泌されたIL-12p40の検出によって確認した。分泌されたIL-12p40の解析は、完全長CD83のレンチウィルス過剰発現は、CD83.fc又はHB15eへのmDC反応を阻害しなかったが、細胞質切断型CD83の発現はCD83処理の抗炎症性作用を阻止したことを示した。 To determine if the anti-inflammatory response during CD83 treatment requires homotypic binding and downstream signaling via cell surface CD83, the treatment was evaluated in DCs expressing cytoplasmic truncated CD83 constructs. The CD83 lentiviral expression construct is pGCMV. IRES. By PCR amplification of segments of the full-length hCD83 gene (CD83FL) or cytoplasmic region (Δ172-205) cleaved hCD83 gene obtained from eGFP (pGIPZ derivative; Openbiosystems) and inserting these fragments into the XhoI / EcoRI cloning site Created (FIG. 9B). To generate lentivirus for DC infection, 293T cells were seeded at 1 × 10 7 in gelatinized 10 cm culture dishes and allowed to grow for ˜20 hours until reaching 80-90% culture density. Medium supplemented with 5 ml DMEM, 10% FBS, 2 mM L-glutamine and expressed 5 μg at a molar ratio of 1: 2.3: 0.2 using Lipofectamine 2000 (Invitrogen) for 6 hours at 37 ° C. Cells were transfected with a DNA mix containing the plasmid, Delta 8.9 and VSVG. The transfection medium was supplemented with 6 ml normal growth medium and the cells were further incubated at 37 ° C. for 40 hours. The supernatant was collected and purified by filtration through a 0.45 μm tube top filter (Corning) and concentrated using a Lenti-X-concentrator (Clonetech) according to the manufacturer's instructions. MUTZ-3 cells were seeded at 0.5 × 10 6 / ml in 24-well culture plates in maintenance medium containing MEM α + Glutamax / 20% heat inactivated FBS / 15% HTB-9 conditioned medium. Polybrene and concentrated lentiviral supernatants were added to the cells at a final concentration of 4 μg / ml and an MOI of 10, respectively. The cells were spun at 1800 rpm in an Allegra X-12R tabletop centrifuge for 30 minutes at room temperature and then incubated overnight at 37 ° C. The medium containing lentivirus was removed and replaced with fresh maintenance medium. After 2-3 days of culture, the top 10% GFP positive cells were sorted and in MEM α + Glutamax / 20% heat inactivated FBS supplemented with 150 ng / ml rhGM-CSF and 50 ng / ml rhIL-4. It was cultured for 6 days and used as iDC. Cells were stimulated for 48 hours, maturation stimulation, as well as CD83. Treated with Fc, HB15e or isotype control. The supernatant was then collected and MCP-1 release was analyzed by ELISA. Analysis of secreted MCP-1 shows that lentiviral overexpression of full-length CD83 is CD83. Although it did not inhibit the mDC response to fc or HB15e, the expression of cytoplasmic truncated CD83 showed that the anti-inflammatory effect of CD83 treatment was blocked (FIG. 9C). These results were confirmed by detection of secreted IL-12p40. Analysis of secreted IL-12p40 shows that lentiviral overexpression of full-length CD83 is CD83. Although it did not inhibit the mDC response to fc or HB15e, it was shown that expression of cytoplasmic truncated CD83 blocked the anti-inflammatory effect of CD83 treatment.
CD83ホモタイプ相互作用の免疫抑制作用が更なるシグナル伝達経路によって媒介されるか決定するために、CD83.fc又はHB15eで5分間処理されたmDCからの細胞溶解物にホスホキナーゼアッセイを実施した。ヒトホスホキナーゼアッセイ(R&D systems)を、製造者の指示に従って実施した。簡単には、MUTZ-3 DCを冷却PBSで洗浄し、Lysis Buffer6において可溶化させ、4℃で30分間揺動させた。溶解物を14,000Xgで5分間遠心分離し、Bradford(Bio-Rad)による全タンパク質の分析のために上澄部を新しい管に移した。二重にスポッティングされた46の抗体を有するアレイ膜を1時間室温でブロックし、次いで希釈細胞溶解物で一晩4℃でインキュベートした。膜を洗浄し、次いで検出抗体を用い2時間室温でインキュベートした。洗浄後、膜をStreptavidin-HRPにおいて30分間室温でインキュベートし、ECL Plus試薬(Amersham)での検出の前に再び洗浄した。膜をFUJI FILM Image Reader LAS-3000に露出し、平均強度をMulti Gauge v3.1(FUJI FILM)によって分析した。HB15e処理はmTOR、p=0.046(図12A)、p38、p=0.008(図12B)並びにCREB、p=0.0104(図12C)のリン酸化において有意な低下となった。対照的に、HB15e抗体処理は、成熟刺激の要素であるTNFαのTNF受容体結合によって活性化されるSTAT3のリン酸化を阻害しなかった(図12D)。CD83.Fc又はαCD83(HB15e)で処理したヒト単球由来DC(MDDC)からの全細胞溶解物のウェスタンブロット解析は、リン酸化p38MAPK(図12E)の低下を確証したが、STAT3リン酸化に有意な効果を示さなかった(図12F)。これらの新規な発見は、CD83ホモタイプ相互作用の抗炎症性作用がp38 MAPK並びにmTORタンパク質シグナル伝達によって媒介されたことを示す。 To determine if the immunosuppressive effect of the CD83 homotype interaction is mediated by additional signaling pathways, CD83. Phosphokinase assays were performed on cell lysates from mDCs treated with fc or HB15e for 5 minutes. Human phosphokinase assay (R & D systems) was performed according to the manufacturer's instructions. Briefly, MUTZ-3 DC was washed with cold PBS, solubilized in Lysis Buffer 6 and rocked at 4 ° C. for 30 minutes. The lysate was centrifuged at 14,000 × g for 5 minutes and the supernatant was transferred to a new tube for analysis of total protein by Bradford (Bio-Rad). Array membranes with 46 antibodies spotted in duplicate were blocked for 1 hour at room temperature and then incubated with diluted cell lysate overnight at 4 ° C. The membrane was washed and then incubated with detection antibody for 2 hours at room temperature. After washing, the membrane was incubated in Streptavidin-HRP for 30 minutes at room temperature and washed again before detection with ECL Plus reagent (Amersham). Membranes were exposed to FUJI FILM Image Reader LAS-3000 and average intensity was analyzed by Multi Gauge v3.1 (FUJI FILM). HB15e treatment resulted in a significant decrease in phosphorylation of mTOR, p = 0.046 (FIG. 12A), p38, p = 0.008 (FIG. 12B) and CREB, p = 0.0104 (FIG. 12C). In contrast, HB15e antibody treatment did not inhibit the phosphorylation of STAT3 activated by TNF receptor binding of TNF alpha is a component of maturation stimulus (Figure 12D). CD83. Western blot analysis of whole cell lysates from human monocyte-derived DCs (MDDC) treated with Fc or αCD83 (HB15e) confirmed a decrease in phosphorylated p38 MAPK (FIG. 12E) but had a significant effect on STAT3 phosphorylation Was not shown (FIG. 12F). These novel findings indicate that the anti-inflammatory effect of CD83 homotype interaction was mediated by p38 MAPK as well as mTOR protein signaling.
細胞表面CD83のアゴニスト抗CD83抗体による結合:
樹状細胞上の細胞表面CD83に結合する抗体を同定するために、生成された抗体の結合親和性をフローサイトメトリー分析によってスクリーニングした。簡単には、未熟樹状細胞(iDC)をサイトカインカクテルで処理して、DC成熟及びCD83の表面発現を誘導した。固定及びフローサイトメトリーの前に、mDCを、DC成熟刺激と同時に生成された抗体で処理した。mDCの表面に発現されたCD83に特異的に結合する抗体をフローサイトメトリーデータを分析することによって同定した。あるいは、生成された抗CD83抗体を細胞凝集アッセイを使用してスクリーニングした。簡単には、hCD83(CHO-hCD83)を発現するCHO細胞を2mMのEDTAを用いてフラスコから脱離させ、洗浄し、2%FBS/10mMEDTAを含有するがCa2+又はMg2+を欠くHBSS培地に再懸濁させた。その後細胞を、106/mlで再懸濁させ、70μmフィルターを通過させて、低接着10cm培養皿にプレーティングするための単個細胞浮遊液を得た。その後、CHO-hCD83細胞を生成された抗体で処理し、4%のPFAでの固定の前に、37℃で90分間、軌道プラットフォームシェーカーでインキュベートした。CD83ホモタイプ結合の競合によりCHO-hCD83細胞の凝集を阻止する抗体を、細胞の顕微鏡イメージングによって同定した。これらの抗体は、それらのヒトCD83に対する結合及びアゴニスト活性について更に特徴付けられてもよい。
Binding of cell surface CD83 by agonist anti-CD83 antibody:
In order to identify antibodies that bind to cell surface CD83 on dendritic cells, the binding affinity of the antibodies produced was screened by flow cytometric analysis. Briefly, immature dendritic cells (iDC) were treated with a cytokine cocktail to induce DC maturation and surface expression of CD83. Prior to fixation and flow cytometry, mDCs were treated with antibodies generated simultaneously with DC maturation stimuli. Antibodies that specifically bind to CD83 expressed on the surface of mDCs were identified by analyzing flow cytometry data. Alternatively, the produced anti-CD83 antibody was screened using a cell aggregation assay. Briefly, CHO cells expressing hCD83 (CHO-hCD83) are detached from the flask using 2 mM EDTA, washed, and washed with HBSS medium containing 2% FBS / 10 mM EDTA but lacking Ca 2+ or Mg 2+. Resuspended. The cells were then resuspended at 10 6 / ml and passed through a 70 μm filter to obtain a single cell suspension for plating on low adhesion 10 cm culture dishes. CHO-hCD83 cells were then treated with the generated antibody and incubated on an orbital platform shaker at 37 ° C. for 90 minutes prior to fixation with 4% PFA. Antibodies that block CHO-hCD83 cell aggregation by competition for CD83 homotype binding were identified by microscopic imaging of the cells. These antibodies may be further characterized for their binding to human CD83 and agonist activity.
実施例11.抗CD83抗体はmDCからの炎症促進性サイトカインの放出を低減する。
樹状細胞(DC)を、抗CD83抗体60B10、35G10、40A11、54D1、59G10、75AI、又は7C7で処理した場合の抗炎症性反応についてモニタした。アッセイでは、単球由来樹状細胞を未熟DC(iDC)のまま残すか、又は25ng/mlのrhIL-1β、100ng/mlのrhIL-6、50ng/mlのrhTNFα及び1μg/mlのPGE-2を含有するサイトカインカクテルで処理して成熟DC(mDC)を生成した。成熟DCを10μg/mlの示した抗CD83抗体で処理し、48時間インキュベートした。インキュベート後、細胞培養上澄部を集め、分泌された炎症促進性サイトカインを標準の製造者の指示に従ってELISA(Invitrogen)によって解析した。分泌サイトカインレベルの解析は、炎症促進性サイトカインMCP-lの放出が、抗CD83抗体60B10、35G10、40A11、又は7C7で処理したmDCにおいて有意に低減されたことを示した(図19)。抗CD83抗体54D1、59G10、又は75AIでの処理は、mDCからのMCP-lの産生を有意には低減しなかった(図19A)。
Example 11 Anti-CD83 antibodies reduce the release of pro-inflammatory cytokines from mDC.
Dendritic cells (DC) were monitored for anti-inflammatory response when treated with anti-CD83 antibodies 60B10, 35G10, 40A11, 54D1, 59G10, 75AI, or 7C7. Assays leave monocyte-derived dendritic cells as immature DC (iDC), or 25 ng / ml rhIL-1β, 100 ng / ml rhIL-6, 50 ng / ml rhTNF α and 1 μg / ml. Treatment with a cytokine cocktail containing PGE-2 produced mature DC (mDC). Mature DCs were treated with the indicated anti-CD83 antibody at 10 μg / ml and incubated for 48 hours. Following incubation, cell culture supernatants were collected and secreted pro-inflammatory cytokines were analyzed by ELISA (Invitrogen) according to standard manufacturer's instructions. Analysis of secreted cytokine levels showed that the release of pro-inflammatory cytokine MCP-1 was significantly reduced in mDCs treated with anti-CD83 antibodies 60B10, 35G10, 40A11, or 7C7 (FIG. 19). Treatment with anti-CD83 antibody 54D1, 59G10, or 75AI did not significantly reduce MCP-1 production from mDC (FIG. 19A).
Claims (38)
(b)配列番号:32のアミノ酸配列を含んでなるHVR-H2;
(c)配列番号:33のアミノ酸配列を含んでなるHVR-H3;
(d)配列番号:37のアミノ酸配列を含んでなるHVR-L1;
(e)配列番号:38のアミノ酸配列を含んでなるHVR-L2;
(f)配列番号:39のアミノ酸配列を含んでなるHVR-L3
から成る群から選択される少なくとも1、2、3、4、5又は6つの超可変領域(HVR)配列を含んでなる可変ドメインを含んでなる単離された抗CD83抗体。 (A) HVR-H1 comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 31;
(B) HVR-H2 comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 32;
(C) HVR-H3 comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 33;
(D) HVR-L1 comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 37;
(E) HVR-L2 comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 38;
(F) HVR-L3 comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 39
An isolated anti-CD83 antibody comprising a variable domain comprising at least 1, 2, 3, 4, 5 or 6 hypervariable region (HVR) sequences selected from the group consisting of:
(a)配列番号:31のアミノ酸配列を含んでなるHVR-H1;
(b)配列番号:32のアミノ酸配列を含んでなるHVR-H2;
(c)配列番号:33のアミノ酸配列を含んでなるHVR-H3;
(d)配列番号:37のアミノ酸配列を含んでなるHVR-L1;
(e)配列番号:38のアミノ酸配列を含んでなるHVR-L2;
(f)配列番号:39のアミノ酸配列を含んでなるHVR-L3
を含んでなる重鎖可変ドメイン及び軽鎖可変ドメインを含んでなる単離された抗CD83抗体。 The following six HVR sequences:
(A) HVR-H1 comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 31;
(B) HVR-H2 comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 32;
(C) HVR-H3 comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 33;
(D) HVR-L1 comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 37;
(E) HVR-L2 comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 38;
(F) HVR-L3 comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 39
An isolated anti-CD83 antibody comprising a heavy chain variable domain and a light chain variable domain comprising
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP2012148957A JP2013150592A (en) | 2011-07-01 | 2012-07-02 | Use of anti-cd83 agonist antibody for treating autoimmune disease |
Applications Claiming Priority (5)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
US201161504127P | 2011-07-01 | 2011-07-01 | |
US61/504,127 | 2011-07-01 | ||
JP2011285595 | 2011-12-27 | ||
JP2011285595 | 2011-12-27 | ||
JP2012148957A JP2013150592A (en) | 2011-07-01 | 2012-07-02 | Use of anti-cd83 agonist antibody for treating autoimmune disease |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JP2013150592A JP2013150592A (en) | 2013-08-08 |
JP2013150592A5 true JP2013150592A5 (en) | 2015-08-20 |
Family
ID=49047566
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP2012148957A Pending JP2013150592A (en) | 2011-07-01 | 2012-07-02 | Use of anti-cd83 agonist antibody for treating autoimmune disease |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JP2013150592A (en) |
Families Citing this family (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN108339120B (en) * | 2017-01-25 | 2021-08-06 | 苏州大学 | Application of protein kinase A activator in preparing medicine for treating diseases related to platelet quantity reduction |
SG11202007755YA (en) * | 2018-02-23 | 2020-09-29 | H Lee Moffitt Cancer Ct & Res | Cd83-binding chimeric antigen receptors |
US20220289813A1 (en) * | 2019-08-16 | 2022-09-15 | H. Lee Moffitt Cancer Center And Research Institute, Inc. | Chimeric antigen receptors for treating myeloid malignancies |
JP2022544581A (en) * | 2019-08-16 | 2022-10-19 | エイチ リー モフィット キャンサー センター アンド リサーチ インスティテュート インコーポレイテッド | Regulatory T cells expressing anti-CD38 chimeric antigen receptor |
Family Cites Families (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CA2466845A1 (en) * | 2001-11-21 | 2003-06-05 | Fred Ramsdell | Manipulation of cytokine levels using cd83 gene products |
AU2002950779A0 (en) * | 2002-08-15 | 2002-09-12 | The Corporation Of The Trustees Of The Order Of The Sisters Of Mercy In Queensland | A method of immunomodulation |
EP2258724A1 (en) * | 2002-11-21 | 2010-12-08 | Celltech R & D, Inc. | Modulating immune responses using multimerized anti-CD83 antibodies |
JP2013040160A (en) * | 2011-07-01 | 2013-02-28 | Genentech Inc | Use of anti-cd83 agonist antibody for treating autoimmune disease |
-
2012
- 2012-07-02 JP JP2012148957A patent/JP2013150592A/en active Pending
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
AU2020210185B2 (en) | Chimeric antigen receptors and uses thereof | |
JP4880155B2 (en) | APRIL receptor (BCMA) and uses thereof | |
JP4638876B2 (en) | GITR ligand, GITR ligand-related molecule and antibody and use thereof | |
KR100897082B1 (en) | Baff receptorbcma, an immunoregulatory agent | |
RU2769352C2 (en) | Antibodies and polypeptides against cd127 | |
TW201920653A (en) | Binding molecules that modulate a biological activity expressed by a cell | |
JP2018523485A (en) | Chimeric cytokine receptor | |
CN105452288A (en) | Anti-human papillomavirus 16 e6 t cell receptors | |
KR102090969B1 (en) | Methods for the treatment of b cell-mediated inflammatory diseases | |
JP4915919B2 (en) | Interferon-producing cell activity regulator | |
CN114206929A (en) | anti-TIGIT (tungsten inert gas) immunosuppressant and application thereof | |
JP2013150592A5 (en) | ||
AU2014352891B2 (en) | Identification of a novel B cell cytokine | |
ZA200509143B (en) | GITR ligand and GITR ligand-related molecules and antibodies and uses thereof | |
WO2021190431A1 (en) | Development and application of immune cell activator | |
CN116635427A (en) | Chimeric antigen receptor | |
JP7101433B2 (en) | Epitope region cross-linked biparatopic antibody and method for producing it | |
WO2024083226A1 (en) | Antibody fusion protein and preparation and use thereof | |
WO2023093811A1 (en) | Combination of molecular switch regulation type chimeric antigen receptor cell and antibody, and use thereof | |
WO2023274007A1 (en) | Antibody for specific recognition of cd40 and application thereof | |
JP7280586B2 (en) | Dendritic cell maturation inhibitor, method for inhibiting maturation, and pharmaceutical composition | |
CN102257002B (en) | Truncated cd20 protein, deltacd20 | |
WO2023037125A1 (en) | Binding domain | |
TW202405177A (en) | Methods and compositions for treating autoimmune disease | |
WO2022165419A1 (en) | Methods for increasing t-cell function |