JP2012162540A - Multivalent chelator for modifying and organizing of target molecule - Google Patents
Multivalent chelator for modifying and organizing of target molecule Download PDFInfo
- Publication number
- JP2012162540A JP2012162540A JP2012064302A JP2012064302A JP2012162540A JP 2012162540 A JP2012162540 A JP 2012162540A JP 2012064302 A JP2012064302 A JP 2012064302A JP 2012064302 A JP2012064302 A JP 2012064302A JP 2012162540 A JP2012162540 A JP 2012162540A
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- compound
- group
- chelator
- nta
- compound according
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Granted
Links
- 0 *=C(C(CCC(NCCCCC(C(O)=O)N(CC(O)=O)CC(O)=O)=O)N)NCCCCC(C(O)=O)N(CC(O)=O)CC(O)=O Chemical compound *=C(C(CCC(NCCCCC(C(O)=O)N(CC(O)=O)CC(O)=O)=O)N)NCCCCC(C(O)=O)N(CC(O)=O)CC(O)=O 0.000 description 2
Images
Abstract
Description
(発明の説明)
本発明は、多価キレーター(multivalent chelator)化合物、多価キレーター化合物の生成のための方法、ならびに金属−キレーター錯体に結合するアフィニティータグを有する標的分子の改変および/または固定化のための多価キレーター化合物の使用に関する。
(Description of the invention)
The present invention relates to multivalent chelator compounds, methods for the generation of multivalent chelator compounds, and multivalent for modification and / or immobilization of target molecules having affinity tags that bind to metal-chelator complexes. It relates to the use of chelator compounds.
(発明の背景)
分光学的もしくは微視的なプローブまたは(生)化学的な官能性のユニットを用いた、組換えタンパク質の選択的な非共有結合性の改変は、プロテオーム分析および生物工学用途に関する中心的な課題である。原理において、このような改変は、いわゆるアフィニティータグ(すなわち、遺伝子工学によってタンパク質中に導入される短いペプチド配列)の手段による部分的な特異性を用いて実現される。これらのアフィニティータグは、(生)化学的な認識単位によって特異的に認識される。精製のためには、数種のアフィニティータグが非常に首尾よく利用されたが、溶液中かつ表面への、分光学的もしくは微視的なプローブおよび他の生化学的な官能性のユニットの結合のためのアフィニティータグの使用は、その錯体が十分な安定性を示さないので、多くの場合、批判的である。
(Background of the Invention)
Selective non-covalent modification of recombinant proteins using spectroscopic or microscopic probes or (bio) chemical functional units is a central challenge for proteome analysis and biotechnology applications It is. In principle, such modifications are realized using partial specificity by means of so-called affinity tags (ie short peptide sequences introduced into proteins by genetic engineering). These affinity tags are specifically recognized by (bio) chemical recognition units. Several affinity tags have been used very successfully for purification, but binding of spectroscopic or microscopic probes and other biochemical functional units in solution and to the surface The use of affinity tags for is often critical since the complex does not exhibit sufficient stability.
1970年代半ば以来、キレーターイミノ二酢酸(IDA)は、既に、タンパク質を精製するために、数種の金属イオンと組み合わせて使用されている(非特許文献1)。 Since the mid 1970s, chelator iminodiacetic acid (IDA) has already been used in combination with several metal ions to purify proteins (Non-Patent Document 1).
1980年代半ばにおいて、ニトリロ三酢酸(NTA)は、タンパク質を精製するためのキレーターとして記載された(特許文献1、特許文献2)。さらに、(累積した)ヒスチジンタグは、組換えタンパク質の一般的な精製のために記載された(非特許文献2;特許文献3、特許文献4を参照のこと)。現在、圧倒的に最も一般的に使用されるアフィニティータグは、ヒスチジンタグによるものであり、そしてキレーターに結合した金属イオンとの相互作用に依存する最も多様なマトリックスおよび検出技術が、記載されている(非特許文献3)。それにもかかわらず、個々のNi−NTA−オリゴヒスチジン相互作用の結合親和性は、安定でありかつ化学量論的に定義された結合のためには低すぎる。部分的に安定な結合は、親和性マトリックス、または平面における高密度のNTA基によって達成され得る(例えば、非特許文献4;非特許文献5;非特許文献6;非特許文献7を参照のこと)。それにもかかわらず、多くの用途(特に、溶液またはインビボ(例えば、生細胞)におけるタンパク質の操作)のために、分子レベルにおける高い結合安定性が必要とされる。
In the mid 1980s, nitrilotriacetic acid (NTA) was described as a chelator for protein purification (
第1に、アフィニティータグと金属キレーターとの間の結合を改良するために、このアフィニティータグを操作することは、1つの可能性である。したがって、一方では、一般的な6個のヒスチジン残基の代わりに10個のヒスチジン残基を使用する伸長されたヒスチジンタグが、例えば、Guigetらによって記載される(非特許文献8)。それにもかかわらず、この様式において、化学量論的に定義てもいないし、安定でもない錯体しか得ることができない。他方では、2つのヒスチジンタグを有し、したがってNi−NTA−チップの表面に、より安定に結合するタンパク質およびタンパク質錯体が、記載されている(非特許文献9)。それにもかかわらず、全てのタンパク質に対して、その生物学的機能に大きく影響することなく、末端に1つより多いアフィニティータグが提供され得るとは限らない。 First, manipulating this affinity tag to improve the binding between the affinity tag and the metal chelator is one possibility. Thus, on the one hand, an extended histidine tag that uses 10 histidine residues instead of the general 6 histidine residues is described, for example, by Guiget et al. Nevertheless, in this manner, only complexes that are neither stoichiometrically defined nor stable are obtained. On the other hand, proteins and protein complexes that have two histidine tags and thus bind more stably to the surface of the Ni-NTA-chip have been described (9). Nonetheless, not all proteins can be provided with more than one affinity tag at the end without significantly affecting their biological function.
結合を上昇させるための他の可能性は、キレーター基自体を改良することからなる。したがって、特許文献5(および非特許文献10)においてEbrightおよびEbrightは、例えば、フルオロフォアのような検出可能な基によるタンパク質のインサイチュにおける標識のための、二価キレーター錯体を記載している。これらの錯体は、一価の錯体と比較して、Hisタグに対する改良された親和性を示す。それにもかかわらず、この2つのキレーター基(NTA)は、検出可能な基に直接結合され、このことがこの2つのキレーター基を広範な合成には利用しづらくしている。むしろ、それらの生成についての可能性は、常に、選択された検出可能な基の、合成に対する適合性に依存する。
他の二官能性のカルボキシメチル置換キレーターが、Klineらによって記載される(非特許文献11)。これらのキレーターは、標的タンパク質に共有結合し得、そして触媒活性を有する金属錯体を用いた標識のために開発された。
標的タンパク質の安定かつ選択的な標識または改変が、Griffinらによって記載される(非特許文献12)。4個のシステインを含む組換えタンパク質中の特定のモチーフ(Cys−Cys−Xaa−Xaa−Cys−Cys)を特異的に認識する二ヒ素錯体(bi−arsenic−complex)が、開示される。この二ヒ素錯体は、フルオロフォアのような検出可能な基を含み得、それによって標的タンパク質を改変するか、または標識する。この技術はまた、特許文献6においてTsienらによって記載され、そして特許文献7においてEbrightおよびEbrightによって記載される。それにもかかわらず、これらの二ヒ素錯体の使用は、それぞれの二ヒ素誘導体の困難な合成、ならびに特定のフルオロフォアおよび発色団のみが可能であるという事実によって制限される。さらに、必要とされるような、システインが豊富なアフィニティータグまたはモチーフは、遊離のチオール基の高い反応性に起因して、多くの使用に関して不利である。
Another possibility for increasing the coupling consists of improving the chelator group itself. Thus, in Patent Document 5 (and Non-Patent Document 10), Ebright and Ebright describe a divalent chelator complex for labeling in situ of a protein with a detectable group such as, for example, a fluorophore. These complexes show improved affinity for the His tag compared to monovalent complexes. Nevertheless, the two chelator groups (NTA) are directly linked to a detectable group, making it difficult to use the two chelator groups for extensive synthesis. Rather, the possibilities for their production always depend on the suitability of the selected detectable group for synthesis.
Other bifunctional carboxymethyl substituted chelators are described by Kline et al. These chelators have been developed for labeling with metal complexes that can covalently bind to target proteins and have catalytic activity.
Stable and selective labeling or modification of target proteins is described by Griffin et al. Disclosed is a bi-arsenic-complex that specifically recognizes a specific motif (Cys-Cys-Xaa-Xaa-Cys-Cys) in a recombinant protein containing four cysteines. The biarsenic complex may contain a detectable group such as a fluorophore, thereby modifying or labeling the target protein. This technique is also described by Tsien et al. In US Pat. Nevertheless, the use of these diarsenic complexes is limited by the difficult synthesis of the respective diarsenic derivatives and the fact that only specific fluorophores and chromophores are possible. Furthermore, cysteine-rich affinity tags or motifs, as required, are disadvantageous for many uses due to the high reactivity of free thiol groups.
したがって、本発明の目的は、当該分野において公知であり、そして広く使用されるアフィニティータグ(例えば、オリゴヒスチジンタグ)に結合するための多価キレーターを提供することであり、この多価キレーターは、化学量論的で、安定したアフィニティータグとの相互作用を示し、そして転換可能かつ可逆的に標的分子と相互作用する。これによって、標的分子は、一般的に、多数のプローブおよび他の生化学的に官能性のユニットを用いて、選択的かつ位置特異的な様式で改変され得る。さらに、この多価キレーターは、制御されかつ普遍的な、多数のプローブおよび他の生化学的に官能性のユニットとの結合体化のような方法で、合成的に利用しやすい。 Accordingly, an object of the present invention is to provide a multivalent chelator for binding to affinity tags (eg, oligohistidine tags) known and widely used in the art, Stoichiometric, stable interaction with the affinity tag, and convertible and reversibly interact with the target molecule. This allows target molecules to be modified in a selective and regiospecific manner, generally using a number of probes and other biochemically functional units. In addition, this multivalent chelator is synthetically accessible in a controlled and universal manner such as conjugation with numerous probes and other biochemically functional units.
本発明に従って、この目的は、一般式:
Xm−G−CLn
の化合物であって、ここで:
Gは、足場構造であり;
Xは、プローブFまたは官能性のユニットFに対するカップリング基であり;
CLは、少なくとも1つの金属配位中心を有するキレーター基であり;
mは、整数でありかつ少なくとも1であり;そして
nは、整数でありかつ少なくとも2である、
化合物、ならびにその互変異生体、異性体、無水物、酸および塩を提供することによって解決される。
In accordance with the present invention, this object has the general formula:
X m -G-CL n
Where:
G is the scaffold structure;
X is a coupling group for probe F or functional unit F;
CL is a chelator group having at least one metal coordination center;
m is an integer and is at least 1; and n is an integer and is at least 2.
Solved by providing compounds, and tautomeric organisms, isomers, anhydrides, acids and salts thereof.
好ましい実施形態において、足場構造Gは、2個〜25個の炭素原子、好ましくは2個〜20個の炭素原子、およびさらに好ましくは5個〜16個の炭素原子を有する飽和炭水化物鎖を含む。さらに、上記足場構造は、アミド結合、エステル結合および/またはエーテル結合を含む。 In a preferred embodiment, the scaffold structure G comprises a saturated carbohydrate chain having 2 to 25 carbon atoms, preferably 2 to 20 carbon atoms, and more preferably 5 to 16 carbon atoms. Further, the scaffold structure includes an amide bond, an ester bond, and / or an ether bond.
上記足場構造は、直鎖状であっても、分枝状であっても、閉じていてもよい。好ましい閉じた足場構造は、サイクラム環(cyclam ring)構造によって表される。好ましい足場構造は、アミノ酸エレメントを含む。 The scaffold structure may be linear, branched or closed. A preferred closed scaffold structure is represented by a cyclam ring structure. A preferred scaffold structure comprises amino acid elements.
好ましい実施形態において、少なくとも1種の金属イオンが、本発明に従う化合物のキレーター基の各々に結合される。それに関して、上記金属イオンは、Ni2+、Co2+、Cu2+、Zn2+、Fe2+、Fe3+、および全てのランタニドイオンからなる群より選択される。 In a preferred embodiment, at least one metal ion is bound to each of the chelator groups of the compound according to the invention. In that regard, the metal ion is selected from the group consisting of Ni 2+ , Co 2+ , Cu 2+ , Zn 2+ , Fe 2+ , Fe 3+ , and all lanthanide ions.
上記キレーター基は、好ましくは、ニトリロ三酢酸(NTA)、イミノ二酢酸(IDA)、ポルフィリン系の全ての改変体、サリチル酸誘導体、1,2−ジアミノエチル二酢酸、ジアミノエチル三酢酸、ヒドロキシエチルイミノ二酢酸、およびそれらの塩または組み合わせ、ならびに当業者に公知である他のキレーター基からなる群より選択される。好ましい実施形態において、上記キレーター基の反応基は、保護基を有する。例えば、カルボキシル基(例えば、NTAのカルボキシル基)は、OtBu基によって保護され得る。当業者に公知である全ての一般的な保護基が、使用され得る。 The chelator group is preferably nitrilotriacetic acid (NTA), iminodiacetic acid (IDA), all modified porphyrins, salicylic acid derivatives, 1,2-diaminoethyldiacetic acid, diaminoethyltriacetic acid, hydroxyethylimino. It is selected from the group consisting of diacetic acid, and salts or combinations thereof, and other chelator groups known to those skilled in the art. In a preferred embodiment, the reactive group of the chelator group has a protecting group. For example, a carboxyl group (eg, a carboxyl group of NTA) can be protected by an OtBu group. All common protecting groups known to those skilled in the art can be used.
さらなる実施形態において、スペーサー基Aが、上記キレーター基と上記足場構造との間に配置される。上記スペーサー基Aは、直鎖状であっても、分枝状であってもよい。当業者に公知である通常のスペーサー基が、使用され得る。好ましいスペーサー基は、ポリ(エチレングリコール)、オリゴ(エチレングリコール)、ペプチド、nが1〜8である(CH2)n、オリゴプロリンを含む。 In a further embodiment, a spacer group A is disposed between the chelator group and the scaffold structure. The spacer group A may be linear or branched. Conventional spacer groups known to those skilled in the art can be used. Preferred spacer groups are poly (ethylene glycol), oligo (ethylene glycol), including peptides, n is 1 to 8 (CH 2) n, oligo proline.
上記キレーター基は、アミド結合、エステル結合またはエーテル結合を介して上記足場構造に結合されることが、好ましい。 The chelator group is preferably bonded to the scaffold structure via an amide bond, an ester bond or an ether bond.
本発明に従って、足場構造G自体は、プローブまたは別の検出可能な基でないことが、好ましい。好ましくは、Gは、上記キレーター基およびプローブまたは官能性のユニットが結合される構造である。 According to the invention, it is preferred that the scaffold structure G itself is not a probe or another detectable group. Preferably, G is a structure to which the chelator group and probe or functional unit are bound.
好ましくは、本発明に従う化合物は、以下: Preferably, the compound according to the invention has the following:
好ましいカップリング基Xは、NHRからなる群より選択され、Rは、H、アルキル残基またはアリール残基、COOH、nが整数である(CH2)n−COOH、SH、マレイミド(maleinimide)、ヨードアセトアミド、イソチオシアネートまたはシアネ−トである。 Preferred coupling groups X are selected from the group consisting of NHR, wherein R is H, an alkyl or aryl residue, COOH, n is an integer (CH 2 ) n —COOH, SH, maleimide, Iodoacetamide, isothiocyanate or cyanate.
好ましい実施形態において、プローブFまたは官能性のユニットFは、本発明に従う化合物のカップリング基Xにおいて結合される。上記プローブFまたは官能性のユニットFは、好ましくは、フルオロフォア、FRET−フルオロフォア、蛍光消光剤、リン光化合物、発光化合物、吸収性化合物(absorbing compound)、ポリマー、PEG、オリゴ糖類、オリゴヌクレオチド、PNA、ビオチン、ハプテン、ペプチド、タンパク質、酵素、架橋剤、オリゴ(エチレングリコール)、脂質、ナノ粒子、電子密度増幅因子、金クラスター、金属クラスター、量子ドット、およびそれらの組み合わせからなる群より選択される。 In a preferred embodiment, the probe F or the functional unit F is bound at the coupling group X of the compound according to the invention. The probe F or the functional unit F is preferably a fluorophore, FRET-fluorophore, fluorescence quencher, phosphorescent compound, luminescent compound, absorptive compound, polymer, PEG, oligosaccharide, oligonucleotide , PNA, biotin, hapten, peptide, protein, enzyme, crosslinker, oligo (ethylene glycol), lipid, nanoparticle, electron density amplification factor, gold cluster, metal cluster, quantum dot, and combinations thereof Is done.
プローブとして適切であるフルオロフォアおよび発色団の例は、Haughland R.P.、1996、Handbook of Fluorescent Probes
and Research Chemicals、Molecular Probes、第6版(Spence,MTZ編)に見出され得る。
Examples of fluorophores and chromophores that are suitable as probes are described in Haughland R .; P. , 1996, Handbook of Fluorescent Probes
and Research Chemicals, Molecular Probes, 6th Edition (Spence, MTZ).
好ましくは、本発明に従う化合物は、以下: Preferably, the compound according to the invention has the following:
一般的に、上記多価キレーターは、ニトリロ三酢酸(NTA)のような数個の(独立した)キレーター基(それでもなお、好ましくは2個〜4個)が分子足場(足場G)に結合し得る一方で、同時に、官能基(カップリング基X)がプローブFまたは官能性のユニットFにカップリングするために提供されるという点で特徴付けられ得る。プローブまたは官能性のユニットに対する結合の重要な必要条件は、キレーター基の官能基(例えば、NTAの場合における3つのカルボキシル基)に対するこのカップリング基Xの化学的な直交性である。図1に示されるような多価キレーターの場合において、これは、カルボキシル基における保護基によって達成された(図2を参照のこと)。ここで、さらなる官能基(X)における選択的カップリング反応は、上記キレーター基に影響することなく行われ得る。 Generally, the polyvalent chelator has several (independent) chelator groups (still preferably 2-4) such as nitrilotriacetic acid (NTA) attached to a molecular scaffold (scaffold G). At the same time, it can be characterized in that a functional group (coupling group X) is provided for coupling to the probe F or the functional unit F. An important requirement for attachment to the probe or functional unit is the chemical orthogonality of this coupling group X to the functional group of the chelator group (eg, three carboxyl groups in the case of NTA). In the case of a multivalent chelator as shown in FIG. 1, this was achieved by a protecting group at the carboxyl group (see FIG. 2). Here, the selective coupling reaction in the further functional group (X) can be performed without affecting the chelator group.
さらに、上記目的は、本発明に従う化合物を生成するための方法を提供することによって解決される。この方法は、上記足場構造の合成後か、または合成の間における、少なくとも2つのキレーター基のその足場構造に対するカップリングを包含し、上記キレーター基は、適切な様式で保護され得る。本発明に従う方法の間、上記カップリング基Xはまた、適切に保護され得る。 Furthermore, the above object is solved by providing a method for producing the compounds according to the invention. This method involves the coupling of at least two chelator groups to the scaffold structure after or during the synthesis of the scaffold structure, which can be protected in a suitable manner. During the process according to the invention, the coupling group X can also be suitably protected.
本発明に従う上記足場構造の合成は、1種または数種の出発化合物(特に、アミノ酸(例えば、リジン)、オルニチン、1,3−ジアミノ酪酸、1,2−ジアミノプロピオン酸、グルタメートもしくはアスパルテートおよび/またはそれらの保護された誘導体(例えば、Z−Lys−OtBu、H−Glu(OtBu)−OBzl、Z−Glu−OH))からの足場構造の合成を包含する。 The synthesis of the scaffold structure according to the invention comprises one or several starting compounds (in particular amino acids (eg lysine), ornithine, 1,3-diaminobutyric acid, 1,2-diaminopropionic acid, glutamate or aspartate and And / or synthesis of scaffold structures from protected derivatives thereof (eg, Z-Lys-OtBu, H-Glu (OtBu) -OBzl, Z-Glu-OH)).
さらに好ましい出発化合物は、ブロモ酢酸−tert−ブチルエステル、BOC−ε−アミノカプロン酸および大環状ポリアミン(例えば、1,4,8,11−テトラアザシクロテトラデカン)である。
Further preferred starting compounds are bromoacetic acid-tert-butyl ester, BOC-ε-aminocaproic acid and macrocyclic polyamines (
好ましい中間体は、Nα,Nα−ビス[(tert−ブチルオキシカルボニル)メチル]−L−リジン−tert−ブチルエステル(「Lys−NTA−OtBu」、図25の化合物3)である。
Preferred intermediates, N α, N α - bis [(tert- butyloxycarbonyl) methyl] -L- lysine -tert- butyl ester ( "Lys-NTA-OtBu"
本発明に従う生成のための方法は、好ましくは、第1に上記足場構造の合成を包含する。次いで、上記キレーター基は、その足場構造とカップリングする。したがって、上記キレーター基は、適切な保護基を有し得る。したがって、上記足場構造は、好ましくは、環状足場構造(例えば、サイクラム環構造)である。 The method for production according to the invention preferably comprises firstly the synthesis of the above scaffold structure. The chelator group is then coupled to the scaffold structure. Thus, the chelator group can have a suitable protecting group. Accordingly, the scaffold structure is preferably an annular scaffold structure (eg, a cyclam ring structure).
本発明に従う生成のための方法は、上記足場構造が保護アミノ酸またはアミノ酸から誘導される化合物から構成され得ることを含む。このことのために、既に上記足場構造の合成の間に、保護キレーター基が含まれることが好ましい。上記足場構造のための出発化合物は、当業者に公知であるペプチド合成の代表的な出発産物を構成し得る。このことのために、好ましい足場構造は、直鎖状であるか、または分枝状(すなわち、デンドリマー状(dendrimeric))である。 The method for production according to the invention comprises that the scaffold structure can be composed of protected amino acids or compounds derived from amino acids. For this reason, it is preferred that a protective chelator group is already included during the synthesis of the scaffold structure. The starting compounds for the scaffold structure may constitute representative starting products for peptide synthesis known to those skilled in the art. For this reason, preferred scaffold structures are linear or branched (ie, dendrimeric).
カルボキシル官能化された足場構造が、アミノ官能化された保護キレーター基によって改変されるか、またはアミノ官能化された足場構造が、カルボキシル官能化された保護キレーター基によって改変されることが、好ましい。 It is preferred that the carboxyl functionalized scaffold structure is modified with an amino functionalized protective chelator group, or the amino functionalized scaffold structure is modified with a carboxyl functionalized protective chelator group.
スキームIにおいて、好ましい合成経路の概略図が、見出され得る。(A)において、アミノ官能化された保護キレーターエレメントによってカルボキシルベースの足場が、改変される(図3Aも参照のこと)。上記保護された官能基(カップリング基)X−Pは、選択的(I)か、または上記キレーター基と一緒(II)に脱保護され、次いでプローブFまたは官能性のユニットFとカップリングされ得る。(B)は、カルボキシル官能化された保護キレーターエレメントによって改変されるアミノ官能化された足場についての類似する合成経路を示す(図3Bも参照のこと)。次に、中間体1または2が、合成の第1工程においてキレーターエレメントとして使用され得る(実施例9も参照のこと)。 In Scheme I, a schematic diagram of a preferred synthetic route can be found. In (A), the carboxyl-based scaffold is modified by an amino-functionalized protective chelator element (see also FIG. 3A). The protected functional group (coupling group) XP can be selectively (I) or deprotected together with the chelator group (II) and then coupled to probe F or functional unit F. obtain. (B) shows a similar synthetic pathway for amino functionalized scaffolds modified by carboxyl functionalized protective chelator elements (see also FIG. 3B). Intermediate 1 or 2 can then be used as a chelator element in the first step of the synthesis (see also Example 9).
(スキームI) (Scheme I)
Xは、カップリング基であり;
Pは、保護基であり;
Fは、プローブまたは官能性のユニットであり;そして
CLは、キレーター基である。
X is a coupling group;
P is a protecting group;
F is a probe or functional unit; and CL is a chelator group.
2個、3個および4個の金属配位中心を有する多価キレーターが、デンドリマー状の足場および環状の足場(すなわち、化学的な基本足場)に基づいて合成された(図1および実施例を参照のこと)。 Multivalent chelators with 2, 3 and 4 metal coordination centers were synthesized based on dendrimer-like scaffolds and cyclic scaffolds (ie, chemical basic scaffolds) (FIG. 1 and Examples). See
ビス−NTA−OtBu、テトラキス−NTA−OtBuおよびビス−NTA−脂質の生成のために、実施例9および図25に示されるような合成の工程が、好ましい。 For the production of bis-NTA-OtBu, tetrakis-NTA-OtBu and bis-NTA-lipid, the synthetic steps as shown in Example 9 and FIG. 25 are preferred.
トリス−NTA−OtBuおよび異なるフルオロフォア(特に、フルオロフォアOregon Green 488、ATTO 565、FEW−S0387(これについては、図14も参照のこと)を含む)を有するそれらの誘導体の生成のために、実施例9および図26に示されるような合成の工程が、好ましい。 For the generation of Tris-NTA-OtBu and their derivatives with different fluorophores, including in particular the fluorophore Oregon Green 488, ATTO 565, FEW-S0387 (see also FIG. 14 for this) A synthetic step as shown in Example 9 and FIG. 26 is preferred.
さらに、上記目的は、アフィニティータグが金属−キレーター錯体に結合する、標的分子上のアフィニティータグに結合するための本発明に従う化合物の使用によって解決される。 Furthermore, the object is solved by the use of a compound according to the invention for binding to an affinity tag on a target molecule, wherein the affinity tag binds to a metal-chelator complex.
好ましくは、上記アフィニティータグは、4個と15個との間のアミノ酸を含むペプチドタグである。この4個〜15個のアミノ酸の場合において、これらは、好ましくは4個〜15個のヒスチジンである。さらに、0個〜4個の塩基性アミノ酸(例えば、リジンおよびアルギニン)が、上記ペプチドタグに含まれ得る。 Preferably, the affinity tag is a peptide tag comprising between 4 and 15 amino acids. In the case of these 4 to 15 amino acids, these are preferably 4 to 15 histidines. In addition, 0 to 4 basic amino acids (eg, lysine and arginine) can be included in the peptide tag.
好ましいアフィニティータグは、(His)nタグであり、nは、4と15との間の整数である。 A preferred affinity tag is a (His) n tag, where n is an integer between 4 and 15.
好ましい標的分子は、ペプチド、ポリペプチド、タンパク質、ならびにペプチド模倣物(mimetic)およびタンパク質模倣物、ならびにペプチド改変ポリマーもしくはペプチド改変デンドリマーを含む。これに関して、タンパク質またはペプチドによって、翻訳後に修飾されたタンパク質またはペプチドがまた、認識される。ペプチド模倣物およびタンパク質模倣物は、ペプチドまたはタンパク質のような類似する側鎖官能性を含むが、骨格の組成においてペプチドまたはタンパク質と異なる化合物を含む。上記骨格の可能なバリエーションは、骨格原子の改変(骨格模倣物)、二環式ジペプチドアナログの導入、および非オリゴマー鎖構造中の官能基の配置(足場模倣物)を含む。例えば、オリゴ−N−アルキルグリシン(ペプトイド(peptoid))は、骨格模倣物に属し、これは、側鎖の結合点においてペプチドまたはタンパク質と異なる(Cαの代わりにNである)。 Preferred target molecules include peptides, polypeptides, proteins, and peptidomimetics and protein mimetics, and peptide-modified polymers or peptide-modified dendrimers. In this regard, proteins or peptides that are post-translationally modified are also recognized by the protein or peptide. Peptidomimetics and protein mimetics include compounds that contain similar side chain functionalities such as peptides or proteins, but differ in peptide composition from peptides or proteins. Possible variations of the backbone include backbone atom modifications (skeletal mimics), the introduction of bicyclic dipeptide analogs, and the placement of functional groups in non-oligomeric chain structures (scaffold mimics). For example, oligo-N-alkylglycine (peptoid) belongs to a skeletal mimetic, which differs from a peptide or protein at the point of attachment of the side chain (N instead of Cα).
好ましくは、本発明に従う化合物は、改変、固定化、カップリング、精製、検出、モニタリング、分析、またはインビトロ、インビボ、インサイチュ、固定細胞および生細胞もしくは脂質小胞における標的分子の検出のために使用され得る。 Preferably, the compounds according to the invention are used for modification, immobilization, coupling, purification, detection, monitoring, analysis or detection of target molecules in vitro, in vivo, in situ, fixed cells and living cells or lipid vesicles Can be done.
本発明に従う化合物のさらに好ましい使用は、標的分子(特に、タンパク質)の上記分子の官能性のユニットとの、制御されかつ可逆的な二量化またはオリゴマー化である。 A further preferred use of the compounds according to the invention is the controlled and reversible dimerization or oligomerization of the target molecules (in particular proteins) with the functional units of the molecules.
本発明に従う化合物は、当該分野において公知である多くのインビトロアッセイおよびインビボアッセイにおいて使用され得る。好ましいアッセイ法は、分光学的方法(例えば、吸収分光法、蛍光分光法、蛍光共鳴エネルギー転移(FRET)、蛍光相関分光法(FCS)、蛍光退色(fluorescence−bleaching)(フォトブリーチング後の蛍光回復(fluorescence recovery after photobleaching)、FRAP)、反射率測定干渉分光法(reflectometric interference−spectroscopy)(RIfS)、表面プラスモン分光法(表面プラズモン共鳴)/BIACORE、光走査カップリング(optical scanning coupling)、水晶発振子マイクロバランス(quartz−micro balance)、弾性表面波(SAW)、x/y−蛍光スキャニング(fluorescence−scanning)(FluorImaging))、および顕微鏡的方法(例えば、蛍光顕微鏡、共焦点顕微鏡、反射顕微鏡、コントラスト増強顕微鏡(contrast enhancing microscopy)、電子顕微鏡、走査型プローブ顕微鏡)を含むが、他の方法(例えば、磁気共鳴法、顕微鏡による断層撮影(microscopy and tomography)、インピーダンス分光法、電界効果トランジスタ、酵素結合免疫吸着検定法(ELISA)、蛍光標示式の細胞または粒子の分取(FACS)、放射性免疫測定法(RIA)、オートラジオグラフィー、分析用ゲル濾過、ストップトフロー技術、熱量測定、ハイスループットスクリーニング(HTS)、アレイ技術およびチップ技術(例えば、プロテインアレイ))も含む。 The compounds according to the invention can be used in a number of in vitro and in vivo assays known in the art. Preferred assay methods include spectroscopic methods (eg, absorption spectroscopy, fluorescence spectroscopy, fluorescence resonance energy transfer (FRET), fluorescence correlation spectroscopy (FCS), fluorescence-bleaching (fluorescence after photobleaching). Recovery (fluorescence recovery after photobleaching), FRAP), reflectometric interference-spectroscopy (RIfS), surface plasmon spectroscopy (surface plasmon resonance) / BIACORE, optical scanning coupling, optical scanning coupling Quartz-micro balance, surface acoustic wave (SAW), x / -Fluorescence-scanning (FluorImaging)) and microscopic methods (e.g. fluorescence microscope, confocal microscope, reflection microscope, contrast enhancing microscope, electron microscope, scanning probe microscope) , Other methods (eg, magnetic resonance, microscopic and tomography, impedance spectroscopy, field effect transistors, enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA), fluorescence-labeled cell or particle sorting ( FACS), radioimmunoassay (RIA), autoradiography, analytical gel filtration, stopped-flow technology, calorimetry, high-throughput screening (HTS), Array technology and chip technology (e.g., a protein array)) including.
標的分子の固定化のための本発明に従う化合物の使用が、さらに好ましい。 Further preferred is the use of a compound according to the invention for the immobilization of the target molecule.
このことのために、本発明の化合物は、表面上に結合されることもできるし、脂質単一層または脂質二重層中に含まれることもできる。したがって、上記表面は、好ましくは、ガラス型表面(例えば、メタロイド酸化物、金属酸化物および全てのガラス型/ガラス、金、銀、DAPEGで改変したガラス、PEGポリマーで改変したガラスもしくはPEGポリマーで改変した金、GOPTSでシラン処理したガラス、脂質単一層もしくは脂質二重層、セレン化金属、テルル化金属、および硫化金属を備えるガラス型表面ならびに貴金属表面から選択される。 To this end, the compounds of the invention can be bound on the surface or included in a lipid monolayer or lipid bilayer. Thus, the surface is preferably a glass-type surface (eg metalloid oxide, metal oxide and all glass types / glass, gold, silver, DAPEG modified glass, PEG polymer modified glass or PEG polymer). Selected from modified gold, GOPTS silanized glass, lipid monolayers or lipid bilayers, glass mold surfaces with metal selenides, metal tellurides, and metal sulfides and noble metal surfaces.
ガラス表面によって、ガラス型表面が、ガラスに加えて、水晶、雲母、金属酸化物、メタロイド酸化物もまた含むことが理解されるべきである。 By glass surface, it should be understood that in addition to glass, the glass mold surface also contains quartz, mica, metal oxides, metalloid oxides.
貴金属表面上に自己組織化単分子膜(SAM)を生成するための本発明に従う使用が、好ましい。SAMは、好ましくは、表面プラスモン分光法、インピーダンス分光法、走査型プローブ顕微鏡および水晶発振子マイクロバランスに基づく方法において使用される。 The use according to the invention for producing a self-assembled monolayer (SAM) on a noble metal surface is preferred. SAMs are preferably used in methods based on surface plasmon spectroscopy, impedance spectroscopy, scanning probe microscopy and quartz crystal microbalance.
さらに、本発明の化合物は、官能性のマイクロ構造表面および官能性のナノ構造表面の生産ならびに/またはプロテインアレイの生産のために使用され得る。 Furthermore, the compounds of the invention can be used for the production of functional microstructured surfaces and functional nanostructured surfaces and / or protein arrays.
多価キレーター(MCH)を介するいくつかの規模によってタンパク質とキレーターとの結合の安定性を増加させるために、過剰量のオリゴヒスチジンタグを使用することが、本発明の基本的な概念である。 The use of an excess amount of oligohistidine tag to increase the stability of protein-chelator binding by several scales through multivalent chelators (MCH) is the basic concept of the present invention.
金属−キレーター錯体に対するオリゴヒスチジンタグの結合は、一般的に、キレーターによって錯体化され、それによって一部、配位的に飽和されるNi2+における空いている(free)配位位置に対するオリゴヒスチジンタグのイミダゾール残基のN原子の配位結合によって起こる。Ni−NTA錯体の場合において、Ni2+の全部で6個の配位位置のうちの4個は、2個のヒスチジン残基の結合に対する2個の空いている配位位置が残るように、NTAによって飽和される(図4A)。したがって、この錯体形成は、以下の2つの工程を必要とする(図4B):(1)(例えば、Ni2+のような)金属イオンの結合によるキレーターの活性化、および(2)空いている配位位置に対するオリゴヒスチジンタグのヒスチジン残基の結合。過度な遊離のイミダゾールの添加によって、Ni(II)−キレーター錯体に対するオリゴヒスチジンタグの結合は、タンパク質とキレーターとの結合が可逆的であり、そして転換可能であるように無効にされ得る。さらに、上記キレーターは、EDTAを使用してキレート錯体からNi2+の除去することによって非活性化され得る(図4B)。 The binding of an oligohistidine tag to a metal-chelator complex is generally complexed by a chelator and thereby partially coordinatively saturated with an oligohistidine tag in a free coordination position in Ni2 + . This is caused by the coordinate bond of the N atom of the imidazole residue. In the case of the Ni-NTA complex, 4 out of all 6 coordination positions of Ni 2+ are left in two free coordination positions for the binding of 2 histidine residues. (FIG. 4A). This complex formation therefore requires the following two steps (FIG. 4B): (1) chelator activation by binding of metal ions (eg, Ni 2+ ), and (2) vacant Binding of the histidine residue of the oligohistidine tag to the coordinate position. By the addition of excessive free imidazole, the binding of the oligohistidine tag to the Ni (II) -chelator complex can be disabled so that the binding of the protein to the chelator is reversible and convertible. Furthermore, the chelator can be deactivated by removing Ni 2+ from the chelate complex using EDTA (FIG. 4B).
2個だけのヒスチジン残基による金属キレート錯体に対する上記オリゴヒスチジンタグの結合は、比較的不安定である(実施例4および実施例8を参照のこと)。金属キレーターが高密度で固定化される場合、上記オリゴヒスチジンタグの数個のヒスチジン残基は、数個の金属−キレートユニットに対して同時に結合して、より強い結合を生じ得る(図5B)。1分子中に数個の金属−キレートユニットを含む多価キレーターの使用によって、分子レベルでのオリゴヒスチジンタグに対する安定な結合が、達成され得る。上記キレーターに対するさらなる官能性のユニットのカップリングによって、オリゴヒスチジンタグを含むタンパク質は、安定であるが、可逆的かつ転換可能に改変され得る(図5C)。 The binding of the oligohistidine tag to a metal chelate complex with only two histidine residues is relatively unstable (see Example 4 and Example 8). When the metal chelator is immobilized at high density, several histidine residues of the oligohistidine tag can simultaneously bind to several metal-chelate units, resulting in stronger binding (FIG. 5B). . By using a multivalent chelator containing several metal-chelate units in one molecule, stable binding to the oligohistidine tag at the molecular level can be achieved. By coupling an additional functional unit to the chelator, a protein containing an oligohistidine tag is stable but can be modified reversibly and convertibly (FIG. 5C).
以下の図面および実施例において記載される実験は、多価キレーター化合物がアフィニティータグ(例えば、ヒスチジンタグ)に対する、化学的な、高い親和性(highly−affine)の転換可能な認識構造を表すことを示す。したがって、それらは、伝統的なキレーターの改良を表すだけでなく、主に、使用の新規の領域を公開する。それらは、ほとんどの任意の化合物と連関され得るので、これらのキレーターに関して、ほとんどの任意の種類の分光学的もしくは微視的なプローブまたは官能性のユニットが、位置特異的かつ可逆的に、標的分子(例えば、組換えタンパク質)に結合し得る。また、例えば、オリゴ糖類、PEGまたは他の生物学的な官能性のユニットは、このような方法で標的分子を改変するために、標的分子に可逆的に対して結合され得る。次に、MCHはまた、分子足場上に配置され得、そしてこのような方法によって、例えば、タンパク質のような標的分子を二量体構造または多量体構造で立体的に組織化する。再びここで、可変性の転換性能(switchability)は、中心的な特徴である。さらなる可能性は、オリゴヌクレオチドまたはPNAとのカップリングから生じる。したがって、DNAマイクロアレイの多重化の実現性は、プロテインアレイの生産のために使用され得る。
以下の略語が、使用される:
AU:吸光度単位
Boc:tert−ブチルオキシカルボニル(保護基)
Bzl:ベンジル(保護基)
DAPEG:α,ω−ジアミノポリ(エチレングリコール)
DIC:ジイソプロピルカルボジイミド
DMF:ジメチルホルムアミド
DIPEA:ジイソプロピルエチルアミン
EDTA:エチレンジアミン四酢酸
FL:フルオレセイン
FRET:蛍光共鳴エネルギー転移
Glu:グルタミン酸
GOPTS:グリシジルオキシプロピルトリエトキシシラン
H10:デカ−ヒスチジン
H6:ヘキサ−ヒスチジン
IDA:イミノ二酢酸
Ifnar2:1型インターフェロンレセプター2の細胞外ドメイン
IFNα2、IFNβ:I型インターフェロンα2およびI型インターフェロンβ
MBP:マルトース結合タンパク質
MCH:多価キレーター
NTA:ニトリロ三酢酸
OG:Oregon Green 488(登録商標)
PEG:ポリ(エチレングリコール)
PNA:ペプチド核酸
RIfS:反射率測定干渉分光法
RT:室温
SAM:自己組織化単分子膜
TBTU:O−(ベンゾトリアゾール−1−イル)−N,N,N’,N’−テトラメチルウロニウムテトラフルオロボラート
tBu:三級ブチル(保護基)
TEA:トリエチルアミン
TFA:トリフルオロ酢酸
Z:ベンジルオキシカルボニル(保護基)
例えば、本発明は以下の項目を提供する。
(項目1)
一般式:
X m −G−CL n
の化合物、ならびにその互変異生体、異性体、無水物、酸および塩であって、ここで:
Gは、2個〜20個の炭素原子を有する飽和炭水化物鎖を含み、アミド結合、エステル結合および/またはエーテル結合をさらに含む足場構造であり;
Xは、プローブFまたは官能性のユニットFに対するカップリング基であり;
CLは、金属配位中心を有するキレーター基であり;
mは、整数であり、そして少なくとも1であり;そして
nは、整数であり、そして少なくとも2である、
化合物。
(項目2)
項目1に記載の化合物であって、該化合物は、金属イオンが、キレーター基の各々に結合されることによって特徴付けられる、化合物。
(項目3)
前記金属イオンが、Ni 2+ 、Co 2+ 、Cu 2+ 、Zn 2+ 、Fe 2+ 、Fe 3+ 、および全てのランタニドイオンからなる群より選択される、項目2に記載の化合物。
(項目4)
項目1〜3のいずれか1項に記載の化合物であって、該化合物は、前記キレーター基が、ニトリロ三酢酸(NTA)、イミノ二酢酸(IDA)、ポルフィリン系、サリチル酸誘導体、1,2−ジアミノエチル二酢酸、ジアミノエチル三酢酸、ヒドロキシエチルイミノ二酢酸、およびそれらの塩または組み合わせからなる群より選択されることによって特徴付けられる、化合物。
(項目5)
前記キレーター基の反応基が、保護基を有する、項目1〜4のいずれか1項に記載の化合物。
(項目6)
項目1〜5のいずれか1項に記載の化合物であって、該化合物は、スペーサー基Aが、CLとGとの間に配置されることによって特徴付けられる、化合物。
(項目7)
Aが、直鎖状であるか、または分枝状である、項目6に記載の化合物。
(項目8)
項目1〜7のいずれか1項に記載の化合物であって、該化合物は、前記キレーター基が、アミド結合、エステル結合またはエーテル結合を介してGに結合されることによって特徴付けられる、化合物。
(項目9)
項目1〜8のいずれか1項に記載の化合物であって、該化合物は、Gが、直鎖状であるか、分枝状であるか、または閉じられることによって特徴付けられる、化合物。
(項目10)
項目1〜9のいずれか1項に記載の化合物、ならびにその互変異生体、異性体、無水物、酸および塩であって、該化合物は、以下:
から選択される、化合物。
(項目11)
項目1〜10のいずれか1項に記載の化合物であって、該化合物は、カップリング基Xが、NHRからなる群より選択されることによって特徴付けられ、Rは、H、アルキルもしくはアリール、COOH、nが整数である(CH 2 ) n −COOH、SH、マレイミド、アセトアミド、イソチオシアネートまたはシアネートである、化合物。
(項目12)
項目1〜11のいずれか1項に記載の化合物であって、該化合物は、プローブFまたは官能性のユニットFが、カップリング基Xにおいて結合されることによって特徴付けられる、化合物。
(項目13)
項目12に記載の化合物であって、該化合物は、前記プローブFまたは官能性のユニットFが、フルオロフォア、FRET−フルオロフォア、蛍光消光剤、リン光化合物、発光化合物、吸収性化合物、ポリマー、PEG、オリゴ糖類、オリゴヌクレオチド、PNA、ビオチン、ハプテン、ペプチド、タンパク質、酵素、架橋剤、オリゴエチレングリコール、脂質、ナノ粒子、電子密度増幅因子、金クラスター、金属クラスター、量子ドット、およびそれらの組み合わせからなる群より選択されることによって特徴付けられる、化合物。
(項目14)
項目1〜13のいずれか1項に記載の化合物であって、該化合物が、以下:
から選択される、化合物、ならびにその互変異生体、異性体、無水物、酸および塩。
(項目15)
項目1〜14のいずれか1項に記載の化合物を生成するための方法であって、該方法は、前記足場構造の合成後か、または合成の間において、少なくとも2つのキレーター基を該足場構造に対してカップリングする工程を包含する、方法。
(項目16)
項目15に記載の方法であって、該方法は、保護されたまたは保護されていないアミノ酸およびアミノ酸誘導体、Z−Lys−OtBu、H−Glu(OtBu)−OBzl、Z−Glu−OH、大環状ポリアミン、1,4,8,11−テトラアザシクロテトラデカン、ブロモ酢酸−OtBu、BOC−ε−アミノカプロン酸からなる群より選択される1種以上の出発化合物から足場構造を合成する工程を包含する、方法。
(項目17)
前記キレーター基が、保護されている、項目15または16に記載の方法。
(項目18)
標的分子におけるアフィニティータグへの結合のための項目1〜14のいずれか1項に記載の化合物の使用であって、該アフィニティータグは、金属−キレーター錯体に結合する、使用。
(項目19)
前記アフィニティータグは、4個〜15個のヒスチジンおよび0個〜4個の塩基性アミノ酸を含む4個〜15個のアミノ酸を含むペプチドタグである、項目18に記載の使用。
(項目20)
前記標的分子は、ペプチド、ポリペプチド、タンパク質、ペプチド模倣物もしくはタンパク質模倣物、またはペプチド改変ポリマーもしくはペプチド改変デンドリマーである、項目18または19に記載の使用。
(項目21)
改変、カップリング、オリゴマー化、検出、モニタリング、分析のため、またはインビトロ、インビボ、インサイチュ、生細胞もしくは脂質小胞における標的分子の検出のための、項目1〜14のいずれか1項に記載の化合物の使用。
(項目22)
標的分子の固定化のための、項目1〜14のいずれか1項に記載の化合物の使用。
(項目23)
項目22に記載の使用であって、該使用は、前記化合物が、表面結合または脂質単一層もしくは脂質二重層に含まれることによって特徴付けられる、使用。
(項目24)
前記表面は、ガラス型表面、金、銀、DAPEGで改変したガラス、PEGポリマーで改変したガラスもしくはPEGポリマーで改変した金、GOPTSでシラン処理したガラス、脂質単一層もしくは脂質二重層、セレン化金属、テルル化金属、および硫化金属を備えるガラス型表面および金表面から選択される、項目23に記載の使用。
(項目25)
自己組織化単分子膜(SAM)の生産のための、項目1〜14のいずれか1項に記載の化合物の使用。
(項目26)
官能性のマイクロ構造表面および官能性のナノ構造表面の生産ならびに/またはプロテインアレイの生産のための、項目1〜14のいずれか1項に記載の化合物の使用。
(項目27)
標的分子の精製のための、項目1〜14のいずれか1項に記載の化合物の使用。
(図面および実施例)
本発明は、添付の図面に関した以下の実施例によってさらに明らかにされるが、それにかかわらず、本発明は、これらの実施例に限定されない。
The experiments described in the following figures and examples show that multivalent chelator compounds represent a chemically, high-affinity, convertible recognition structure for affinity tags (eg, histidine tags). Show. Thus, they not only represent improvements to traditional chelators, but primarily expose new areas of use. Since they can be associated with almost any compound, for these chelators, almost any kind of spectroscopic or microscopic probe or functional unit can be regiospecifically and reversibly targeted. It can bind to a molecule (eg, a recombinant protein). Also, for example, oligosaccharides, PEG or other biological functional units can be reversibly coupled to a target molecule to modify the target molecule in such a manner. Next, the MCH can also be placed on a molecular scaffold, and by such methods, for example, target molecules such as proteins are sterically organized in a dimeric or multimeric structure. Here again, variable switchability is a central feature. Further possibilities arise from coupling with oligonucleotides or PNA. Thus, the feasibility of DNA microarray multiplexing can be used for the production of protein arrays.
The following abbreviations are used:
AU: absorbance unit Boc: tert-butyloxycarbonyl (protecting group)
Bzl: benzyl (protecting group)
DAPEG: α, ω-diaminopoly (ethylene glycol)
DIC: diisopropylcarbodiimide DMF: dimethylformamide DIPEA: diisopropylethylamine EDTA: ethylenediaminetetraacetic acid FL: fluorescein FRET: fluorescence resonance energy transfer Glu: glutamic acid GOPTS: glycidyloxypropyltriethoxysilane H10: deca-histidine H6: hexa-histidine IDA: imino Diacetate Ifnar2: extracellular domain of
MBP: Maltose binding protein MCH: Multivalent chelator NTA: Nitrilotriacetic acid OG: Oregon Green 488 (registered trademark)
PEG: Poly (ethylene glycol)
PNA: peptide nucleic acid RIfS: reflectometry interferometry RT: room temperature SAM: self-assembled monolayer TBTU: O- (benzotriazol-1-yl) -N, N, N ′, N′-tetramethyluronium Tetrafluoroborate tBu: tertiary butyl (protecting group)
TEA: triethylamine TFA: trifluoroacetic acid Z: benzyloxycarbonyl (protecting group)
For example, the present invention provides the following items.
(Item 1)
General formula:
X m -G-CL n
And tautomeric organisms, isomers, anhydrides, acids and salts thereof, wherein:
G is a scaffold structure comprising a saturated carbohydrate chain having 2 to 20 carbon atoms and further comprising an amide bond, an ester bond and / or an ether bond;
X is a coupling group for probe F or functional unit F;
CL is a chelator group having a metal coordination center;
m is an integer and is at least 1; and
n is an integer and is at least 2.
Compound.
(Item 2)
2. A compound according to
(Item 3)
(Item 4)
Item 4. The compound according to any one of
(Item 5)
(Item 6)
6. The compound according to any one of items 1-5, wherein the compound is characterized by the spacer group A being placed between CL and G.
(Item 7)
(Item 8)
8. The compound according to any one of
(Item 9)
9. A compound according to any one of items 1-8, wherein the compound is characterized by G being linear, branched or closed.
(Item 10)
The compound according to any one of
A compound selected from:
(Item 11)
(Item 12)
12. A compound according to any one of
(Item 13)
(Item 14)
14. The compound according to any one of
And tautomers, isomers, anhydrides, acids and salts thereof selected from
(Item 15)
(Item 16)
(Item 17)
17. A method according to
(Item 18)
15. Use of a compound according to any one of items 1-14 for binding to an affinity tag in a target molecule, wherein the affinity tag binds to a metal-chelator complex.
(Item 19)
19. Use according to
(Item 20)
20. Use according to
(Item 21)
(Item 22)
Use of the compound according to any one of
(Item 23)
23. Use according to
(Item 24)
The surface is a glass mold surface, gold, silver, DAPEG modified glass, PEG polymer modified glass or PEG polymer modified gold, GOPTS silane treated glass, lipid monolayer or lipid bilayer,
(Item 25)
15. Use of a compound according to any one of
(Item 26)
15. Use of a compound according to any one of items 1-14 for the production of functional microstructured surfaces and functional nanostructured surfaces and / or protein arrays.
(Item 27)
15. Use of a compound according to any one of items 1-14 for purification of a target molecule.
(Drawings and examples)
The invention will be further clarified by the following examples with reference to the accompanying drawings, but the invention is nevertheless not limited to these examples.
(実施例1:表面に対するMCHの結合)
表面上へのヒスチジンタグ化タンパク質の固定化のために、上記キレーターを、ガラス表面および金表面上に共有結合させた。このことのために、異なるストラテジーを使用した。第1に、金表面を、α,ω−ジアミノ−ポリ(エチレングリコール)(DAPEG、2000g/mol)の単一層によって保護した。これを、Piehlerら、2000年(Piehler J、Brecht A、Valiokas R、Liedberg
B、Gauglitz G、2000、 A high−density poly(ethylene glycol)polymer brush for immobilization on glass−type surfaces,Biosensors & Bioelectronics,15(9−10):473−481)によって記載された、非特異的なタンパク質結合に対するプロトコルにしたがって行った。
(Example 1: MCH binding to surface)
The chelator was covalently bound on the glass and gold surfaces for immobilization of histidine-tagged protein on the surface. For this, a different strategy was used. First, the gold surface was protected by a single layer of α, ω-diamino-poly (ethylene glycol) (DAPEG, 2000 g / mol). This is described in Piehler et al., 2000 (Piehler J, Brecht A, Variokas R, Liedberg.
B, Gauglitz G, 2000, A high-density poly (ethylene glycol) polymer brush for immobilization on glass-type surfaces, non-specific 1) This was done according to the protocol for protein binding.
これらの表面に対する上記キレーターの化学的結合を、図6に概略的に示す。カルボキシル官能化されたキレーターの先端(図2Aを参照のこと)を、上記表面の濃度がカップリングの持続期間によって変化する、DAPEGの空いているアミノ基に直接カップリングさせた(図6、経路III)。アミノ官能化されたキレーターのカップリングのために、上記表面を、最初に、グルタル酸アルデヒドによって再度官能化した(図6、経路I)。カルボキシル基の表面の濃度を、無水酢酸を同時に添加することによって変化させた(図6、経路II)。上記MCHを、そのようにして生成されたカルボキシル基にカップリングさせた。その後、保護基を、トリフルオロ酢酸によって除去した。 The chemical binding of the chelator to these surfaces is shown schematically in FIG. The tip of a carboxyl functionalized chelator (see FIG. 2A) was directly coupled to the vacant amino group of DAPEG, where the surface concentration varies with the duration of coupling (FIG. 6, pathway). III). For coupling of amino-functionalized chelators, the surface was first re-functionalized with glutaric aldehyde (FIG. 6, pathway I). The surface concentration of the carboxyl group was changed by simultaneously adding acetic anhydride (FIG. 6, pathway II). The MCH was coupled to the carboxyl group thus generated. The protecting group was then removed with trifluoroacetic acid.
(実施例2〜5:MCHによるタンパク質の固定化)
(実施例2:特異的な固定化および官能性)
ヒスチジンタグ化タンパク質と、実施例1において生成されるような表面との相互作用を、反射率測定干渉分光法(RIfS)によって詳細に特徴付けた。この方法を使用して、表面に対するタンパク質の結合を、PiehlerおよびSchreiber、2001年(Piehler J、Schreiber G.、2001、Fast transient cytokine−receptor interactions monitored in real time by reflectometric interference spectroscopy、Anal.Biochem.289(2):173−186)に記載されるように、リアルタイムで定量化し得る。
(Examples 2 to 5: protein immobilization with MCH)
Example 2: Specific immobilization and functionality
The interaction of the histidine-tagged protein with the surface as generated in Example 1 was characterized in detail by reflectometric interferometry (RIfS). Using this method, the binding of proteins to the surface was determined by the method of Piehler and Schreiber, 2001 (Piehler J, Schreiber G., 2001, Fast transient antibody kinetic bioreceptor kinetics in vitro. (2): 173-186) and can be quantified in real time.
トリス−NTAで改変された表面に対する、C末端にデカ−ヒスチジンタグを有するifnar2の細胞外ドメイン(ifnar2−H10)の固定化(図7A)を、図7Bに示す。結合は、Ni(II)イオンによる表面にカップリングされるキレーターのロード前に検出可能ではなかったが、その後、約1.5ng/mm2のタンパク質の全体的な結合が観察され、この結合はまた、リンスの間、安定に固定され続けた。それにもかかわらず、このタンパク質は、競合剤としての200mMのイミダゾールによって定量的に除去され得る。 Immobilization of the extracellular domain of ifnar2 (ifnar2-H10) with a deca-histidine tag at the C-terminus to the surface modified with Tris-NTA (FIG. 7A) is shown in FIG. 7B. Binding was not detectable prior to loading of the chelator coupled to the surface with Ni (II) ions, but afterwards an overall binding of about 1.5 ng / mm 2 of protein was observed and this binding was Moreover, it was kept stably fixed during rinsing. Nevertheless, this protein can be quantitatively removed by 200 mM imidazole as a competitor.
上記固定化されたタンパク質の官能性を、リガンドインターフェロンα2(IFNα2)の結合によって調べた(図8)。したがって、90%より多くの固定化されたifnar2−H10が活性であり、そして上記リガンドとの特異的で可逆的な相互作用を示したことが、見出され得る。 The functionality of the immobilized protein was examined by binding of the ligand interferon α2 (IFNα2) (FIG. 8). It can thus be found that more than 90% of the immobilized ifnar2-H10 was active and showed a specific and reversible interaction with the ligand.
(実施例3:MCHを有する自己組織化単分子膜(SAM))
金表面上で、自己組織化単分子膜(SAM)の技術(Sigal GB、Bamdad
C、Barberis A、Strominger J、Whitesides GM、1996、A self−assembled mono layer for the binding and study of histidine−tagged proteins by surface plasmon resonance、Anal Chem、68:490−7)を使用した。
(Example 3: Self-assembled monolayer (SAM) having MCH)
On the gold surface, self-assembled monolayer (SAM) technology (Sigal GB, Bamdad
C, Barberis A, Stromminger J, Whitesides GM, 1996, A self-assembled mono layer for the binding and study of the ce sine s
このことのために、ビス−NTA先端基を有するアルキルチオールを、合成した(図9A)。上記官能化表面との非特異的なタンパク質相互作用を最小化するために、オリゴ(エチレングリコール)残基を、上記先端基とアルキル基との間に導入した。このビス−NTA−チオールを、MCHの異なる表面の濃度によってSAMをもたらすために、MCHの先端基を有さないマトリックスチオールと混合した(図9A)。ifnar2−H6の特定の可逆的な固定化および上記固定化されたタンパク質に対するリガンドIFNα2の特異的な結合が、検出できる(図9B)。 For this, an alkyl thiol with a bis-NTA head group was synthesized (FIG. 9A). In order to minimize non-specific protein interactions with the functionalized surface, an oligo (ethylene glycol) residue was introduced between the head group and the alkyl group. This bis-NTA-thiol was mixed with a matrix thiol without the MCH head group to yield a SAM with different surface concentrations of MCH (FIG. 9A). Specific reversible immobilization of ifnar2-H6 and specific binding of the ligand IFNα2 to the immobilized protein can be detected (FIG. 9B).
(実施例4:MCHを介する結合の安定性)
表面におけるモノ−NTAの結合の比較的低い安定性は、上記キレーターの高い表面濃度によって部分的に補填され得る。一価のキレーターとは対照的に、MCHは、低い表面濃度においても、表面に対するヒスチジンタグ化タンパク質の安定な結合を可能にし、このことは、本使用に対する一連の利益を提供する。図10Aは、主に、モノ−NTA官能化された表面に対するMBP−H10の結合を示す。
Example 4: Stability of binding via MCH
The relatively low stability of mono-NTA binding at the surface can be partially compensated by the high surface concentration of the chelator. In contrast to monovalent chelators, MCH allows stable binding of histidine-tagged proteins to the surface even at low surface concentrations, which provides a series of benefits for this use. FIG. 10A mainly shows the binding of MBP-H10 to a mono-NTA functionalized surface.
タンパク質(MBP−H10)による上記表面の最初の完全なロード後に、顕著な解離が観察された:400秒後に、最初に結合したタンパク質の50%より多くが、上記表面から解離する。観察された解離動態は、モノ−NTAを介する結合について代表的である表面における再結合効果および配位効果によって説明され得る。 Significant dissociation was observed after the first complete loading of the surface with protein (MBP-H10): After 400 seconds, more than 50% of the initially bound protein dissociates from the surface. The observed dissociation kinetics can be explained by recombination and coordination effects on the surface that are typical for binding via mono-NTA.
このことと比較して、上記MCHの場合においては、同じ期間において、非常に安定な結合を観察することができ、そして有意な解離は観察することができなかった(図10B)。MCHについては、解離は観察できなかったために、上記結合安定性をイミダゾールによって減少させた。 Compared to this, in the case of the MCH, very stable binding could be observed over the same period, and no significant dissociation could be observed (FIG. 10B). For MCH, dissociation could not be observed, so the binding stability was reduced by imidazole.
図11Aにおいて、イミダゾールの異なる濃度におけるモノ−NTA表面のMBP−H10の解離を示す。平衡ロードReqを、結合モデルの適合によって決定した。 In FIG. 11A, the dissociation of MBP-H10 on the mono-NTA surface at different concentrations of imidazole is shown. The equilibrium load R eq was determined by fitting the binding model.
モノ−NTA、ビス−NTA、およびトリス−NTAについて、イミダゾール濃度に由来するReqの依存性を、図11Bに比較して示す。より高いイミダゾール濃度への顕著なシフトは、多価性(multivalence)の関数として、結合安定性の増加を示す。さらに、勾配がより急激な変化が観察され、このことは、モノ−NTAの表面協同性と対照的に、分子協同性への変化を示唆する。 The dependence of R eq derived from imidazole concentration for mono-NTA, bis-NTA, and tris-NTA is shown in comparison with FIG. 11B. A noticeable shift to higher imidazole concentrations indicates an increase in binding stability as a function of multivalence. In addition, a more rapid change in slope was observed, suggesting a change to molecular cooperativity, in contrast to mono-NTA surface cooperativity.
同じ方法を使用することによって、さらに、異なるヒスチジンタグによる結合の安定性を説明した。このことのために、C末端にヘキサ−ヒスチジンタグ(MBP−H6)を有するマルトース結合タンパク質およびC末端にデカ−ヒスチジンタグを有するマルトース結合タンパク質(MBP−H10)を、使用した。図12Aは、トリス−NTAで改変された表面のこれらのタンパク質について、イミダゾール誘導性の解離の比較を示す。上記結合安定性における違いは著しいので、30mMのイミダゾールにおける定量的な区別が可能である。モノ−NTAとMBP−H10との間の相互作用と比較して、顕著に勾配がより急激な変化は、ここでも、分子協同性を示す(図12B)。 By using the same method, the stability of binding by different histidine tags was further explained. For this, a maltose binding protein with a hexa-histidine tag (MBP-H6) at the C-terminus and a maltose binding protein (MBP-H10) with a deca-histidine tag at the C-terminus were used. FIG. 12A shows a comparison of imidazole-induced dissociation for these proteins on the surface modified with Tris-NTA. Since the difference in the binding stability is significant, a quantitative distinction in 30 mM imidazole is possible. Changes markedly more steeply compared to the interaction between mono-NTA and MBP-H10 again show molecular cooperativity (FIG. 12B).
(実施例5:非特異的な結合)
タンパク質とキレーターとの非特異的な結合(静電気的かまたは配位した金属イオンを介するかのいずれか)は、タンパク質の固定化のためのキレーターの使用における中心的な問題である。なぜなら、モノ−NTAによる安定な固定化は、非常に過剰なNTA基を必要とするからである。この効果を、図13Aに示す。
(Example 5: Non-specific binding)
Non-specific binding between proteins and chelators (either electrostatic or via coordinated metal ions) is a central issue in the use of chelators for protein immobilization. This is because stable immobilization with mono-NTA requires very excess NTA groups. This effect is illustrated in FIG. 13A.
高い程度までのリガンドIFNβが、モノ−NTAによって高度に官能化された表面に対して非特異的に結合し、その結果、妥当ではない結合動態が、示され得る。トリス−NTAに関して、既に、顕著に低い非特異的な結合が、低いキレーター濃度に起因して認識され得る(図13B)。中性のタンパク質(MBP−H10)による結合部位のブロッキングによって、上記非特異的な結合を、完全に排除し、それによってひずみのない結合動態を測定する。上記表面における配位部位は、定量的にブロックされ得るので、この様式において、ヒスチジンタグ化タンパク質との特異的相互作用がまた、説明され得る。 To a high degree, the ligand IFNβ binds nonspecifically to a surface highly functionalized with mono-NTA, so that unreasonable binding kinetics can be shown. For Tris-NTA, already significantly low non-specific binding can be recognized due to the low chelator concentration (FIG. 13B). By blocking the binding site with a neutral protein (MBP-H10), the non-specific binding is completely eliminated, thereby measuring the strain-free binding kinetics. Because coordination sites on the surface can be blocked quantitatively, in this manner, specific interactions with histidine-tagged proteins can also be explained.
MCHの結合の高い安定性のさらなる利点は、溶液中に、金属イオンがロードされたMCHを添加することによって、ヒスチジンタグ化タンパク質と、キレーターで改変された表面との結合を効率的にブロックする可能性において見出される。したがって、ヒスチジンタグ化タンパク質との特異的相互作用は、ヒスチジンタグ化タンパク質が、上記表面にて必要以上のキレーターと結合することなく説明され得る。これを、図14に示す。溶液中のあまり過剰ではないトリス−NTAによって、トリス−NTAで改変された表面に対するifnar1−H10の結合は、ほぼ完全に抑制され得る(図14A)。 A further advantage of the high stability of MCH binding is the efficient blocking of the binding of histidine-tagged proteins and chelator-modified surfaces by adding MCH loaded with metal ions in solution. Found in the possibilities. Thus, specific interactions with histidine-tagged proteins can be explained without the histidine-tagged proteins binding to more chelators than necessary at the surface. This is shown in FIG. The binding of ifnar1-H10 to a surface modified with Tris-NTA can be almost completely inhibited by tris-NTA in less excess (FIG. 14A).
この原理に基づいて、結合アッセイを行った。このことのために、最初に、ifnar2−H10を、トリス−NTAで改変された表面上に固定化した。MBP−H10を用いた過剰なキレーターのブロッキングの後、ifnar2の結合部位を、IFNβによって飽和させた。トリス−NTA−フルオレセインによって提供されるifnar1−H10とのその後の結合アッセイ(下の実施例8を参照のこと)を、図14Bに示す。排他的な特異的相互作用を検出した一方で、IFNβの結合部位における(不活性な)変異W129Aについては、結合は観察されなかった。 Based on this principle, a binding assay was performed. To this end, ifnar2-H10 was first immobilized on a surface modified with Tris-NTA. After blocking excess chelator with MBP-H10, the binding site of ifnar2 was saturated with IFNβ. A subsequent binding assay with ifnar1-H10 provided by Tris-NTA-fluorescein (see Example 8 below) is shown in FIG. 14B. While an exclusive specific interaction was detected, no binding was observed for the (inactive) mutation W129A in the binding site of IFNβ.
(実施例6:脂質との結合体)
脂質膜に対するタンパク質の結合のために、図15Aに示すビス−NTAの脂質アナログ結合体を、合成した。
(Example 6: Conjugate with lipid)
For protein binding to the lipid membrane, a lipid analog conjugate of bis-NTA shown in FIG. 15A was synthesized.
この脂質を、ガラス表面上で、固体に支持された流動性の脂質二重層を自発的に形成するステアロイル−オレオイル−ホスファチジルコリンの単層の小胞中に組み込んだ(図15B)。ifnar2−H10は、これらの膜において特異的に固定され得、結合活性が、完全に妨げられた(図15B)。膜に固定されたifnar2−H10の側方拡散を、蛍光退色(フォトブリーチング後の蛍光回復、FRAP)によって分析した(図16)。それによって、1μm2/秒の拡散定数を、決定した。 This lipid was incorporated into a monolayer vesicle of stearoyl-oleoyl-phosphatidylcholine that spontaneously forms a fluid-supported lipid bilayer supported on a solid surface on a glass surface (FIG. 15B). ifnar2-H10 could be specifically immobilized in these membranes and binding activity was completely prevented (FIG. 15B). Lateral diffusion of ifnar2-H10 immobilized on the membrane was analyzed by fluorescence fading (fluorescence recovery after photobleaching, FRAP) (FIG. 16). Thereby, a diffusion constant of 1 μm 2 / sec was determined.
(実施例7および実施例8:フルオロフォアとの結合体)
(実施例7:異なるフルオロフォアおよび分光学的特性)
溶液におけるヒスチジンタグ化タンパク質の非共有結合性の蛍光標識のために、トリス−NTAと以下の3種の異なるフルオロフォアとの結合体を合成した(図17):Oregon Green 488、ATTO 565、FEW−S0387。
(Example 7 and Example 8: Conjugate with fluorophore)
Example 7: Different fluorophores and spectroscopic properties
For non-covalent fluorescent labeling of histidine-tagged proteins in solution, conjugates of Tris-NTA with the following three different fluorophores were synthesized (FIG. 17): Oregon Green 488, ATTO 565, FEW -S0387.
Ni(II)イオンを用いたロードの後、ifnar2−H10を、これらの結合体に添加し、そして過剰の結合体を、ゲル濾過によって分離した。 After loading with Ni (II) ions, ifnar2-H10 was added to these conjugates, and excess conjugate was separated by gel filtration.
ifnar2−H10の安定な標識が、全ての結合体について観察され:第2のゲル濾過の実行において、遊離の色素は、検出できなかった(図18A)。上記リガンドの添加の際に、さらに、より高い波長へのシフトが観察され(図18A)、このことによって、上記タンパク質の機能がこの位置特異的な標識によって保存されたことを確認した。この標識は、完全に可逆的であった:上記MCH−フルオロフォア結合体は、イミダゾールの添加によって完全に分離され得る。 A stable label of ifnar2-H10 was observed for all conjugates: In the second gel filtration run, no free dye was detectable (FIG. 18A). Upon addition of the ligand, further shifts to higher wavelengths were observed (FIG. 18A), confirming that the protein function was conserved by this position-specific label. This label was completely reversible: the MCH-fluorophore conjugate can be completely separated by the addition of imidazole.
上記MCH−フルオロフォア結合体の異なる状態を、蛍光量子収量によって追跡し得る(図18B)。Ni(II)イオンによるキレーター基のロードの後、約50%までの蛍光の顕著な減少が観察され、そして上記タンパク質に対する結合後に、約40%までの蛍光の顕著な減少が観察された。この効果はまた、他の蛍光色素において観察され得、そしてさらに、蛍光色素ATTO 565において、より明確ですらあった(図19)。 Different states of the MCH-fluorophore conjugate can be followed by fluorescence quantum yield (FIG. 18B). A significant decrease in fluorescence up to about 50% was observed after loading of the chelator group with Ni (II) ions, and a significant decrease in fluorescence up to about 40% was observed after binding to the protein. This effect could also be observed with other fluorescent dyes, and even more pronounced with the fluorescent dye ATTO 565 (FIG. 19).
(実施例8:溶液中の結合安定性)
溶液中の結合安定性の試験のために、モノ−NTAとフルオレセインとの結合体、ビス−NTAとフルオレセインとの結合体、トリス−NTAとフルオレセインとの結合体、およびテトラキス−NTAとフルオレセインとの結合体を合成し、そしてNi(II)イオンをロードした(図20)。これらの結合体と、ヘキサ−ヒスチジンタグ化タンパク質およびデカ−ヒスチジンタグ化タンパク質との相互作用を、分析用ゲル濾過、等温滴定熱量測定、および蛍光分光法の手段によって、熱力学的および動力学的に特徴付けた。
(Example 8: Binding stability in solution)
To test the binding stability in solution, mono-NTA and fluorescein conjugates, bis-NTA and fluorescein conjugates, tris-NTA and fluorescein conjugates, and tetrakis-NTA and fluorescein conjugates. The conjugate was synthesized and loaded with Ni (II) ions (FIG. 20). The interaction of these conjugates with hexa-histidine-tagged protein and deca-histidine-tagged protein was determined by thermodynamic and kinetics by means of analytical gel filtration, isothermal titration calorimetry, and fluorescence spectroscopy. Characterized.
((A)分析用ゲル濾過)
分析用ゲル濾過の手段による試験のために、MBP−H6およびMBP−H10を、化学量論的に過剰の結合体で提供し、そしてこれらの混合物を、ゲル濾過カラム上にロードし、そしてその吸光度を、このカラムの出口において、280nm(タンパク質)および490nm(フルオレセイン)にて同時にモニタリングした。これらのシグナルの比を使用して、標識のレベル、したがって結合安定性が、推定され得る。このクロマトグラムを、図21にまとめる。モノ−NTA(図21A)(MBP−H6およびMBP−H10)について、結合した結合体は、ほとんど検出できなかった。ビス−NTA(図21B)について、MBP−H6と比較して、MBP−H10の著しくより安定な結合が、検出できた。トリス−NTAおよびテトラキス−NTA(図21Cおよび図21D)について、標識の化学量論的なレベル、およびMBP−H6とMBP−H10との間の小さな違差異が、検出できた。
((A) Gel filtration for analysis)
For testing by means of analytical gel filtration, MBP-H6 and MBP-H10 are provided in a stoichiometric excess of conjugate, and the mixture is loaded onto a gel filtration column and Absorbance was monitored simultaneously at 280 nm (protein) and 490 nm (fluorescein) at the outlet of the column. Using the ratio of these signals, the level of label and hence binding stability can be estimated. This chromatogram is summarized in FIG. For mono-NTA (FIG. 21A) (MBP-H6 and MBP-H10), almost no bound conjugate was detectable. For bis-NTA (FIG. 21B), a significantly more stable binding of MBP-H10 could be detected compared to MBP-H6. For Tris-NTA and Tetrakis-NTA (FIGS. 21C and 21D), stoichiometric levels of label and small differences between MBP-H6 and MBP-H10 could be detected.
これらの結果は、トリス−NTAおよびテトラキス−NTAと、ヘキサ−ヒスチジンタグおよびデカ−ヒスチジンタグとの相互作用の安定性が非常に高いので、安定かつ化学量論的な蛍光標識が達成され得ることを示す。さらに、これらの結果は、伝統的なモノ−NTAと比較して、ヒスチジンタグ化タンパク質との相互作用の安定性の観点から、MCHの優位性を印象的に示した。 These results show that the stability of the interaction of Tris-NTA and Tetrakis-NTA with hexa-histidine and deca-histidine tags is so high that stable and stoichiometric fluorescent labeling can be achieved. Indicates. Furthermore, these results impressively demonstrated the superiority of MCH in terms of stability of interaction with histidine-tagged proteins compared to traditional mono-NTA.
((B)蛍光分光法)
MCHとヒスチジンタグとの間の相互作用の動態を、蛍光分光法によって試験した。このことのために、フルオレセイン標識オリゴヒスチジンペプチドを使用した。上記MCHに対するこれらのペプチドの結合において、強い蛍光消光が観察された。蛍光の変化を、高い需要時限において、ストップフロー技術によってモニタリングした(図22を参照のこと)。これらの曲線から、1.5〜5・105M−1s−1の会合速度定数を、曲線のあてはめによって決定した。それらによると、デカ−ヒスチジンに対する上記速度定数は、ヘキサ−ヒスチジンに対するものより顕著に高かった。
((B) Fluorescence spectroscopy)
The kinetics of interaction between MCH and the histidine tag were examined by fluorescence spectroscopy. For this, a fluorescein labeled oligohistidine peptide was used. Strong fluorescence quenching was observed in the binding of these peptides to the MCH. Changes in fluorescence were monitored by stop flow technology at high demand times (see FIG. 22). From these curves, association rate constants of 1.5 to 5 · 10 5 M −1 s −1 were determined by curve fitting. According to them, the rate constant for deca-histidine was significantly higher than that for hexa-histidine.
同じ蛍光消光効果をまた、解離動態の試験のために使用した。このことのために、最初に、高濃度の化学量論的な錯体を生成し、そして(モノ−NTAに対する)緩衝液または(MCHに対する)10倍過剰のMBP−H10のいずれかによって希釈した。図23Aにおいて、モノ−NTA H10−フルオレセイン錯体の希釈において観察された蛍光シグナルを示す。この曲線から、1.5s−1の解離速度定数を算出した。これは、分子のNi:モノ−NTA−ヒスチジンタグ錯体の非常に低い安定性を証明している。 The same fluorescence quenching effect was also used for dissociation kinetic studies. For this, first a high concentration of stoichiometric complex was generated and diluted with either buffer (for mono-NTA) or 10-fold excess of MBP-H10 (for MCH). In FIG. 23A, the fluorescent signal observed upon dilution of the mono-NTA H10-fluorescein complex is shown. From this curve, a dissociation rate constant of 1.5 s −1 was calculated. This demonstrates the very low stability of the molecular Ni: mono-NTA-histidine tag complex.
MCH−オリゴヒスチジン錯体の安定性は、顕著に高く、その結果、解離を観察するために競合剤を必要とした。そのようにして得た解離曲線を、図23Bに示す。これらの曲線から、顕著に低い解離速度定数を、モノ−NTAについて得た(図24A)。得られた平衡−解離定数を、図24Bに示す。このことは、モノ−NTA(約10μM)と比較してほぼ5倍(<1nMまで)の、MCHの結合親和性の増加を印象的に支持する。 The stability of the MCH-oligohistidine complex was remarkably high and consequently required a competitor to observe the dissociation. The dissociation curve thus obtained is shown in FIG. 23B. From these curves, a significantly lower dissociation rate constant was obtained for mono-NTA (FIG. 24A). The resulting equilibrium-dissociation constant is shown in FIG. 24B. This impressively supports an increase in binding affinity of MCH, almost 5-fold (up to <1 nM) compared to mono-NTA (about 10 μM).
(実施例9:合成についての教授)
((A)Lys−NTA−OtBu(3)の合成(図25も参照のこと))
ブロモ酢酸tert−ブチルエステル(1.59ml;10.8mmol)およびDIPEA(2.30ml;13.5mmol)を、DMF(25ml)中のNε−ベンジルオキシカルボニル−L−リジンtert−ブチルエステル(1)(1.00g;2.7mmol)の溶液に添加する。反応フラスコを、窒素でリンスし、次いで55℃にて一晩攪拌する。揮発性成分を、60℃にて真空中で取り除く。残留物を、シクロヘキサン/酢酸エチル(3:1、15ml)中に再溶解し、取り除き、そして沈殿物を、同じ溶媒で3回洗浄する(3×10ml)。濾液を、濃縮し、そして溶出相としてシクロヘキサン/エチルアセテート(3:1)を用いてシリカカラム上で精製した。収量:1.3g(2.3mmol)のNα,Nα−ビス[(tert−ブチルオキシ−カルボニル)メチル]−Nε−ベンジルオキシカルボニル−L−リジンtert−ブチルエステル(2)、85%o.th.。TLC:シクロヘキサン/酢酸エチル(3:1)においてRf=0.5。
(Example 9: Professor of synthesis)
((A) Synthesis of Lys-NTA-OtBu (3) (see also FIG. 25))
Bromoacetic acid tert-butyl ester (1.59 ml; 10.8 mmol) and DIPEA (2.30 ml; 13.5 mmol) were added to N ε -benzyloxycarbonyl-L-lysine tert-butyl ester (1 ) (1.00 g; 2.7 mmol). The reaction flask is rinsed with nitrogen and then stirred at 55 ° C. overnight. Volatile components are removed in vacuo at 60 ° C. The residue is redissolved in cyclohexane / ethyl acetate (3: 1, 15 ml), removed and the precipitate is washed 3 times with the same solvent (3 × 10 ml). The filtrate was concentrated and purified on a silica column using cyclohexane / ethyl acetate (3: 1) as the elution phase. Yield: 1.3 g (2.3 mmol) of N [ alpha] , N [ alpha ] -bis [(tert-butyloxy-carbonyl) methyl] -N [ epsilon ] -benzyloxycarbonyl-L-lysine tert-butyl ester (2), 85% o . th. . TLC: Rf = 0.5 in cyclohexane / ethyl acetate (3: 1).
3(1.00g;2.3mmol)を、乾燥ジクロロメタン(40ml)に溶解し、そして4(0.29g;1.0mmol)、TBTU(0.96g;2.9mmol)およびDIPEA(0.6ml;3.5mmol)を添加する。得られたスラリーを、窒素でリンスし、そして室温にて一晩攪拌する。次いで揮発性成分を、真空中で除去し、残留物を、ジクロロメタン(100ml)でスラリーにし、そしてMQ水で3回洗浄(各30ml)する。有機相を、無水硫酸ナトリウム上で乾燥し、そして真空中で濃縮する。油状の残留物を、溶離剤としてシクロヘキサン/酢酸エチル(3:1)を用いてシリカカラム上で精製する。収量:0.99g(0.9mmol)Z−ビス−NTA−OtBu(5)、理論の90%。TLC:シクロヘキサン/酢酸エチル(3:1)においてRf=0.3
3 (1.00 g; 2.3 mmol) was dissolved in dry dichloromethane (40 ml) and 4 (0.29 g; 1.0 mmol), TBTU (0.96 g; 2.9 mmol) and DIPEA (0.6 ml; 3.5 mmol) is added. The resulting slurry is rinsed with nitrogen and stirred overnight at room temperature. The volatile components are then removed in vacuo, the residue is slurried with dichloromethane (100 ml) and washed three times with MQ water (30 ml each). The organic phase is dried over anhydrous sodium sulfate and concentrated in vacuo. The oily residue is purified on a silica column using cyclohexane / ethyl acetate (3: 1) as eluent. Yield: 0.99 g (0.9 mmol) Z-bis-NTA-OtBu (5), 90% of theory. TLC: R f = 0.3 in cyclohexane / ethyl acetate (3: 1)
、加水分解して除去する。収量:0.83g(0.85mmol)のビス−NTA−OtBu(6)、理論の94%。TLC:クロロホルム/メタノール(5:2)においてRf=0.3。
6(1.00g;1.03mmol)を、乾燥ジクロロメタン(30ml)に溶解し、次いで4(130mg;0.46mmol)、TBTU(1.40mmol;450mg)、およびDIPEA(0.44ml;2.6mmol)を、添加する。得られた反応混合物を、窒素でリンスし、そして室温にて一晩攪拌する。次いで揮発性成分を、真空中で除去し、残留物を、ジクロロメタン(100ml)でスラリーにし、そしてMQ水で3回洗浄(各30ml)する。有機相を、無水硫酸ナトリウム上で乾燥し、そして真空中で濃縮する。油状の残留物を、溶離剤として酢酸エチルを用いてシリカカラム上で精製する。収量:0.70g(0.32mmol)のZ−テトラキス−NTA−OtBu(7)、70%o.th.。TLC:酢酸エチルにおいてRf=0.3。
MS(MALDI、ESI、C111H189N11O32);MH+2189
7(1.00g;0.46mmol)のZ−保護基を、2について上で記載される通り、加水分解して除去する。収量:0.86g(0.42mmol)、91%。テトラキス−NTA−OtBu(8)、理論の91%。TLC:クロロホルム/メタノール(5:3)においてRf=0.3。
MS(MALDI、ESI、C103H183N11O30);MH+2055。
6 (1.00 g; 1.03 mmol) was dissolved in dry dichloromethane (30 ml), then 4 (130 mg; 0.46 mmol), TBTU (1.40 mmol; 450 mg), and DIPEA (0.44 ml; 2.6 mmol). ) Is added. The resulting reaction mixture is rinsed with nitrogen and stirred overnight at room temperature. The volatile components are then removed in vacuo, the residue is slurried with dichloromethane (100 ml) and washed three times with MQ water (30 ml each). The organic phase is dried over anhydrous sodium sulfate and concentrated in vacuo. The oily residue is purified on a silica column using ethyl acetate as eluent. Yield: 0.70 g (0.32 mmol) of Z-tetrakis-NTA-OtBu (7), 70% o. th. . TLC: R f = 0.3 in ethyl acetate.
MS (MALDI, ESI, C 111 H 189 N 11 O 32); MH + 2189
7 (1.00 g; 0.46 mmol) of the Z-protecting group is removed by hydrolysis as described above for 2. Yield: 0.86 g (0.42 mmol), 91%. Tetrakis-NTA-OtBu (8), 91% of theory. TLC: Rf = 0.3 in chloroform / methanol (5: 3).
MS (MALDI, ESI, C 103 H 183 N 11 O 30); MH + 2055.
((D)トリス−NTA−OtBuの合成(17または18)(図26も参照のこと))
ブロム酢酸tert−ブチルエステル(5.9ml;40mmol)、およびDIPEA(8.6ml;50mmol)を、DMF(75ml)中のH−Glu(OtBu)−OBzl 13(3.3g;10mmol)の溶液に添加する。反応フラスコを、窒素でリンスし、次いで55℃にて一晩攪拌する。揮発性成分を、60℃にて真空中で取り除く。残留物を、酢酸エチル(20ml)においてスラリーにし、濾別し、そしてシクロヘキサン:酢酸エチルで3回洗浄する(3:1、3×40ml)。濾液を、真空中で濃縮し、そして溶離剤としてシクロヘキサン:酢酸エチル(3:1)を用いてシリカカラム上で濾過した。収量:4.6g(8.8mmol)のBzl−Glu−NTA(14)、88%
d.Th.。TLC:シクロヘキサン:酢酸エチル(3:1)においてRf=0.6。MS(MALDI、ESI、C28H43NO8);MH+522。
((D) Synthesis of Tris-NTA-OtBu (17 or 18) (see also FIG. 26))
Bromoacetic acid tert-butyl ester (5.9 ml; 40 mmol) and DIPEA (8.6 ml; 50 mmol) were added to a solution of H-Glu (OtBu) -OBzl 13 (3.3 g; 10 mmol) in DMF (75 ml). Added. The reaction flask is rinsed with nitrogen and then stirred at 55 ° C. overnight. Volatile components are removed in vacuo at 60 ° C. The residue is slurried in ethyl acetate (20 ml), filtered off and washed three times with cyclohexane: ethyl acetate (3: 1, 3 × 40 ml). The filtrate was concentrated in vacuo and filtered over a silica column using cyclohexane: ethyl acetate (3: 1) as eluent. Yield: 4.6 g (8.8 mmol) of Bzl-Glu-NTA (14), 88%
d. Th. . Rf = 0.6 in TLC: cyclohexane: ethyl acetate (3: 1). MS (MALDI, ESI, C 28 H 43 NO 8); MH + 522.
14(1.00g;1.9mmol)のBzl−保護基を、2のZ−保護基の除去について上で記載される通り、加水分解して除去する。収量:0.76g(1.76mmol)Glu−NTA(15)、92% d.Th.。TLC:クロロホルム/メタノール(3:2)においてRf=0.4
MS(MALDI、ESI、C21H37NO8);MH+431。
14 (1.00 g; 1.9 mmol) of the Bzl-protecting group is removed by hydrolysis as described above for the removal of the 2 Z-protecting group. Yield: 0.76 g (1.76 mmol) Glu-NTA (15), 92% d. Th. . TLC: R f = 0.4 in chloroform / methanol (3: 2)
MS (MALDI, ESI, C 21 H 37 NO 8); MH + 431.
15(431mg;1.0mmol)を、乾燥ジクロロメタン(30ml)に溶解し、次いで16(67mg;0.33mmol)、TBTU(417mg;1.3mmol)、およびDIPEA(0.3ml;1.75mmol)を、添加する。得られた反応混合物を、窒素でリンスし、そして室温にて一晩攪拌する。次いで揮発性成分を、真空中で取り除き、残留物を、ジクロロメタン(50ml)でスラリーにし、そしてMQ水で3回洗浄(各15ml)する。有機相を、無水硫酸ナトリウム上で乾燥し、そして真空中で濃縮する。油状の残留物を、カラムの5容量のメタノールにおける100%酢酸エチルから50%酢酸エチルまでの勾配を用いてシリカカラム上で精製する。
収量:0.37g(0.26mmol)のトリス−NTA−OtBu(17)、79% o.th.TLC:酢酸エチル/メタノール(3:1)においてRf=0.5。
MS(MALDI、ESI、C73H129N7O21);MH+1441。
15 (431 mg; 1.0 mmol) was dissolved in dry dichloromethane (30 ml), then 16 (67 mg; 0.33 mmol), TBTU (417 mg; 1.3 mmol), and DIPEA (0.3 ml; 1.75 mmol). ,Added. The resulting reaction mixture is rinsed with nitrogen and stirred overnight at room temperature. The volatile components are then removed in vacuo, the residue is slurried with dichloromethane (50 ml) and washed three times with MQ water (15 ml each). The organic phase is dried over anhydrous sodium sulfate and concentrated in vacuo. The oily residue is purified on a silica column using a gradient from 100% ethyl acetate to 50% ethyl acetate in 5 volumes of methanol in the column.
Yield: 0.37 g (0.26 mmol) Tris-NTA-OtBu (17), 79% o. th. TLC: R f = 0.5 in ethyl acetate / methanol (3: 1).
MS (MALDI, ESI, C 73 H 129 N 7 O 21); MH + 1441.
17(1.44g;1.0mmol)を、乾燥クロロホルム(30ml)に溶解し、そして無水コハク酸(300mg;3.0mmol)およびTEA(0.7ml;5.0mmol)を、添加する。得られた反応混合物を、窒素でリンスし、そして室温にて一晩撹拌する。次いで揮発性成分を、真空中で取り除き、残留物を、ジクロロメタン(120ml)でスラリーにし、そしてMQ水で3回洗浄(各40ml)する。有機相を、無水硫酸ナトリウム上で乾燥し、そして真空中で濃縮する。油状の残留物を、カラムの5容量のメタノールにおける100%酢酸エチルから50%酢酸エチルまでの勾配を用いてシリカカラム上で精製する。収量:1.4g(0.91mmol)のトリス−NTA−OtBu−COOH(18)、91% o.th.TLC:酢酸エチル/メタノール(3:1)においてRf=0.4。
MS(MALDI、ESI、C76H133N7O24);MH+1541。
17 (1.44 g; 1.0 mmol) is dissolved in dry chloroform (30 ml) and succinic anhydride (300 mg; 3.0 mmol) and TEA (0.7 ml; 5.0 mmol) are added. The resulting reaction mixture is rinsed with nitrogen and stirred overnight at room temperature. The volatile components are then removed in vacuo, the residue is slurried with dichloromethane (120 ml) and washed three times with MQ water (40 ml each). The organic phase is dried over anhydrous sodium sulfate and concentrated in vacuo. The oily residue is purified on a silica column using a gradient from 100% ethyl acetate to 50% ethyl acetate in 5 volumes of methanol in the column. Yield: 1.4 g (0.91 mmol) Tris-NTA-OtBu-COOH (18), 91% o. th. TLC: R f = 0.4 in ethyl acetate / methanol (3: 1).
MS (MALDI, ESI, C 76 H 133 N 7 O 24); MH + 1541.
((E)トリス−NTA蛍光結合体の合成(図26も参照のこと))
17(1.44g、1.0mmol)を、乾燥ジクロロメタン(30ml)に溶解し、次いでBOC−D−アミノカプロン酸(230mg;1.0mmol)、TBTU(450mg;1.40mmol)、およびDIPEA(0.33ml;1.9mmol)を、添加する。反応混合物を、窒素でリンスし、そして室温にて12時間撹拌する。次いで揮発性成分を、真空中で取り除き、残留物を、ジクロロメタン(70ml)でスラリーにし、そしてMQ水で3回洗浄(各25ml)する。有機相を、無水硫酸ナトリウム上で乾燥し、そして真空中で濃縮する。油状の残留物を、カラムの5容量のメタノールにおける100%酢酸エチルから10%酢酸エチルまでの勾配を用いてシリカカラム上で精製する。TLC:収量:1.4g(0.84mmol)のトリス−NTA−OtBu−アミノカプロン酸−BOC(19)、84% o.th.。酢酸エチルにおいてRf=0.3。
MS(MALDI、ESI、C84H148N8O24);MH+1654。
((E) Synthesis of Tris-NTA fluorescent conjugate (see also FIG. 26))
17 (1.44 g, 1.0 mmol) was dissolved in dry dichloromethane (30 ml), then BOC-D-aminocaproic acid (230 mg; 1.0 mmol), TBTU (450 mg; 1.40 mmol), and DIPEA (0. 33 ml; 1.9 mmol) is added. The reaction mixture is rinsed with nitrogen and stirred at room temperature for 12 hours. The volatile components are then removed in vacuo, the residue is slurried with dichloromethane (70 ml) and washed three times with MQ water (25 ml each). The organic phase is dried over anhydrous sodium sulfate and concentrated in vacuo. The oily residue is purified on a silica column using a gradient from 100% ethyl acetate to 10% ethyl acetate in 5 volumes of methanol in the column. TLC: Yield: 1.4 g (0.84 mmol) Tris-NTA-OtBu-aminocaproic acid-BOC (19), 84% o. th. . R f = 0.3 in ethyl acetate.
MS (MALDI, ESI, C 84 H 148 N 8 O 24); MH + 1654.
19(500mg;0.3mmol)を、10%のTFAおよび1%の1,2−エタンジチオールを含むジクロロメタンに溶解し、そして1時間撹拌する。次いで、生成物を、エーテルで沈殿させる。収量:300mg(0.3mmol)のトリス−NTA−アミノカプロン酸(20)、95% o.th.。
MS(MALDI、ESI、C43H68N8O22);MH+1049。
19 (500 mg; 0.3 mmol) is dissolved in dichloromethane containing 10% TFA and 1% 1,2-ethanedithiol and stirred for 1 hour. The product is then precipitated with ether. Yield: 300 mg (0.3 mmol) Tris-NTA-aminocaproic acid (20), 95% o. th. .
MS (MALDI, ESI, C 43 H 68 N 8 O 22); MH + 1049.
20(10mg;0.05mmol)を、100μlのDMFに溶解し、そして対応する蛍光色素の化学量論的な量のNHS−活性エステルを得る。12時間後、生成物を、最初に分取用薄層クロマトグラフィーによって精製し、次いでアニオン交換クロマトグラフィーによって精製する。 20 (10 mg; 0.05 mmol) is dissolved in 100 μl of DMF and a stoichiometric amount of NHS-active ester of the corresponding fluorescent dye is obtained. After 12 hours, the product is first purified by preparative thin layer chromatography and then purified by anion exchange chromatography.
オクタデシルアミン(2.7g;10mmol)、1−ブロモ−cis−9−オクタデセン(3.3g;10mmol)およびTEA(7ml、50mmol)を、混合する。反応フラスコを、窒素でリンスし、そして55℃にて2日間撹拌する。粗生成物を、クロロホルム(200ml)に溶解し、そして水で3回洗浄する(各50ml)。有機相を、濃縮し、そしてカラムの5容量のメタノールにおける100%クロロホルムから60%クロロホルムまでの勾配を用いてシリカカラム上で精製する。収量:2.1g(4.05mmol)のステロイル−オレオイル−アミン(SOA(9))、40% o.th.。
Octadecylamine (2.7 g; 10 mmol), 1-bromo-cis-9-octadecene (3.3 g; 10 mmol) and TEA (7 ml, 50 mmol) are mixed. The reaction flask is rinsed with nitrogen and stirred at 55 ° C. for 2 days. The crude product is dissolved in chloroform (200 ml) and washed 3 times with water (50 ml each). The organic phase is concentrated and purified on a silica column using a gradient from 100% chloroform to 60% chloroform in 5 volumes of methanol in the column. Yield: 2.1 g (4.05 mmol) of steroyl-oleoyl-amine (SOA (9)), 40% o. th. .
Claims (27)
X X mm −G−CL-G-CL nn
の化合物、ならびにその互変異生体、異性体、無水物、酸および塩であって、ここで:And tautomeric organisms, isomers, anhydrides, acids and salts thereof, wherein:
Gは、2個〜20個の炭素原子を有する飽和炭水化物鎖を含み、アミド結合、エステル結合および/またはエーテル結合をさらに含む足場構造であり; G is a scaffold structure comprising a saturated carbohydrate chain having 2 to 20 carbon atoms and further comprising an amide bond, an ester bond and / or an ether bond;
Xは、プローブFまたは官能性のユニットFに対するカップリング基であり; X is a coupling group for probe F or functional unit F;
CLは、金属配位中心を有するキレーター基であり; CL is a chelator group having a metal coordination center;
mは、整数であり、そして少なくとも1であり;そして m is an integer and is at least 1; and
nは、整数であり、そして少なくとも2である、 n is an integer and is at least 2.
化合物。Compound.
Applications Claiming Priority (4)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DE102004038134.8 | 2004-08-05 | ||
DE102004038134A DE102004038134B4 (en) | 2004-08-05 | 2004-08-05 | Multivalent chelators for modifying and organizing target molecules, methods for their preparation and their use |
US61495004P | 2004-09-29 | 2004-09-29 | |
US60/614,950 | 2004-09-29 |
Related Parent Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP2007524229A Division JP2008508333A (en) | 2004-08-05 | 2005-07-26 | Multivalent chelators for modification and organization of target molecules |
Publications (3)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JP2012162540A true JP2012162540A (en) | 2012-08-30 |
JP2012162540A5 JP2012162540A5 (en) | 2013-05-16 |
JP5596731B2 JP5596731B2 (en) | 2014-09-24 |
Family
ID=39294125
Family Applications (2)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP2007524229A Pending JP2008508333A (en) | 2004-08-05 | 2005-07-26 | Multivalent chelators for modification and organization of target molecules |
JP2012064302A Active JP5596731B2 (en) | 2004-08-05 | 2012-03-21 | Multivalent chelators for modification and organization of target molecules |
Family Applications Before (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP2007524229A Pending JP2008508333A (en) | 2004-08-05 | 2005-07-26 | Multivalent chelators for modification and organization of target molecules |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (2) | JP2008508333A (en) |
Families Citing this family (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US20220023851A1 (en) * | 2018-11-28 | 2022-01-27 | Cube Biotech Gmbh | Solid-phase chelator material, method for producing thereof and use thereof for the purification of proteins |
Citations (10)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPH01139555A (en) * | 1987-08-24 | 1989-06-01 | Schering Ag | Polynuclear substituted complex forming agent, complex and complex salt, production thereof, drug containing the same, nmr-, x-ray or ultrasonic wave diagnostic agent, radiation diagnostic agent and radiation treatment agent, production of drug and antibody conjugate |
WO1995032004A1 (en) * | 1994-05-20 | 1995-11-30 | Mallinckrodt Medical, Inc. | Functionalized bicyclo[2.2.1] heptane and [2.2.2] octane system as preorganized ligands for imaging applications |
JPH09500660A (en) * | 1994-05-11 | 1997-01-21 | ブラッコ インターナショナル ベスローテン フェンノートシャップ | Highly relaxing monomer compound and multimeric compound |
JP2000506152A (en) * | 1996-03-08 | 2000-05-23 | ブラッコ・エッセ・ピ・ア | Polychelants, their complexes with metal ions, their preparation and their use |
JP2001518471A (en) * | 1997-09-26 | 2001-10-16 | シエーリング アクチエンゲゼルシヤフト | Contrast agents for infarction and necrosis imaging |
JP2002187948A (en) * | 2000-10-11 | 2002-07-05 | Sumitomo Chem Co Ltd | Production method for amide compound |
JP2002536428A (en) * | 1999-02-08 | 2002-10-29 | オーストラリアン・メンブレイン・アンド・バイオテクノロジー・リサーチ・インスティチュート | Improved compounds for protein binding |
WO2003011115A2 (en) * | 2001-07-30 | 2003-02-13 | Epix Medical, Inc. | Peptide-based multimeric targeted contrast agents |
JP2003525306A (en) * | 2000-02-29 | 2003-08-26 | ブラッコ イメージング エッセ ピ ア | Bile acid complexes with metal ion chelates and uses thereof |
JP2007505141A (en) * | 2003-09-11 | 2007-03-08 | エンテロス・インコーポレーテッド | Treatment of rheumatoid arthritis with CD99 antagonists |
-
2005
- 2005-07-26 JP JP2007524229A patent/JP2008508333A/en active Pending
-
2012
- 2012-03-21 JP JP2012064302A patent/JP5596731B2/en active Active
Patent Citations (10)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPH01139555A (en) * | 1987-08-24 | 1989-06-01 | Schering Ag | Polynuclear substituted complex forming agent, complex and complex salt, production thereof, drug containing the same, nmr-, x-ray or ultrasonic wave diagnostic agent, radiation diagnostic agent and radiation treatment agent, production of drug and antibody conjugate |
JPH09500660A (en) * | 1994-05-11 | 1997-01-21 | ブラッコ インターナショナル ベスローテン フェンノートシャップ | Highly relaxing monomer compound and multimeric compound |
WO1995032004A1 (en) * | 1994-05-20 | 1995-11-30 | Mallinckrodt Medical, Inc. | Functionalized bicyclo[2.2.1] heptane and [2.2.2] octane system as preorganized ligands for imaging applications |
JP2000506152A (en) * | 1996-03-08 | 2000-05-23 | ブラッコ・エッセ・ピ・ア | Polychelants, their complexes with metal ions, their preparation and their use |
JP2001518471A (en) * | 1997-09-26 | 2001-10-16 | シエーリング アクチエンゲゼルシヤフト | Contrast agents for infarction and necrosis imaging |
JP2002536428A (en) * | 1999-02-08 | 2002-10-29 | オーストラリアン・メンブレイン・アンド・バイオテクノロジー・リサーチ・インスティチュート | Improved compounds for protein binding |
JP2003525306A (en) * | 2000-02-29 | 2003-08-26 | ブラッコ イメージング エッセ ピ ア | Bile acid complexes with metal ion chelates and uses thereof |
JP2002187948A (en) * | 2000-10-11 | 2002-07-05 | Sumitomo Chem Co Ltd | Production method for amide compound |
WO2003011115A2 (en) * | 2001-07-30 | 2003-02-13 | Epix Medical, Inc. | Peptide-based multimeric targeted contrast agents |
JP2007505141A (en) * | 2003-09-11 | 2007-03-08 | エンテロス・インコーポレーテッド | Treatment of rheumatoid arthritis with CD99 antagonists |
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
MIER, WALTER; GRAHAM, KEITH A. N.; WANG, QIN; KRAMER, SUSANNE; HOFFEND, JOHANNES; EISENHUT, MICH: "Synthesis of peptide conjugated chelator oligomers for endoradiotherapy and MRT imaging", TETRAHEDRON LETTERS, vol. 45(28), JPN6011050232, 2004, GB, pages 5453 - 5455, ISSN: 0002857016 * |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JP2008508333A (en) | 2008-03-21 |
JP5596731B2 (en) | 2014-09-24 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
US9606114B2 (en) | Multivalent chelators containing a scaffold structure for modifying and organizing of target molecules | |
US10544449B2 (en) | Bis-biotinylation tags | |
JP4298201B2 (en) | Metal chelating composite | |
Günay et al. | Identification of soft matter binding peptide ligands using phage display | |
KR100920729B1 (en) | Method for preparing antibody monolayers which have controlled orientation using peptide hybrid | |
EP2576502B1 (en) | Novel chelator and use thereof | |
Giusti et al. | Synthesis of a polyhistidine-bearing amphipol and its use for immobilizing membrane proteins | |
JP3970811B2 (en) | LINKER COMPOUND AND LIGAND AND METHOD FOR PRODUCING THEM | |
JPH10510277A (en) | Peptides and synthetic cell membranes | |
WO2005075996A1 (en) | Baseboard for constructing surface plasmon resonane antibody array sensor and method of constructing the same | |
JP5596731B2 (en) | Multivalent chelators for modification and organization of target molecules | |
EP3137898B1 (en) | Fluorescent molecular sensor for targeting changes in protein surfaces, and methods of use thereof | |
JP3847591B2 (en) | Ligand and support for analysis of heparin-binding protein, and oligosaccharide chain immobilization method | |
CN104931687B (en) | A kind of three dimensional biological surface and preparation method thereof and a kind of three-dimensional biochip and application thereof | |
Furuya et al. | Reduction of nonspecific binding proteins to self-assembled monolayer on gold surface | |
Bi et al. | Complexation of copper ions with histidine-containing tripeptides immobilized on solid surfaces | |
EP1628998B1 (en) | A tag for purification of peptides | |
KR102006997B1 (en) | A site-selective binding peptide for IgG Fc and a hybrid molecule comprising the same | |
JP2007225586A (en) | Method of immobilizing protein | |
KR101317321B1 (en) | Molecular imprinting chip for serum amyloid p component protein | |
Harada et al. | Supramolecular formation of porphyrins and antibodies | |
Popot et al. | Amphipol-Mediated Immobilization of Membrane Proteins and Its Applications | |
US7381420B2 (en) | Labeling reactant | |
KR101946488B1 (en) | Linker compound and preparation method thereof | |
JP2009096929A (en) | Pseudopeptide library |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
A521 | Request for written amendment filed |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523 Effective date: 20130321 |
|
A131 | Notification of reasons for refusal |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131 Effective date: 20131021 |
|
A601 | Written request for extension of time |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A601 Effective date: 20140120 |
|
A602 | Written permission of extension of time |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A602 Effective date: 20140123 |
|
A521 | Request for written amendment filed |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523 Effective date: 20140221 |
|
TRDD | Decision of grant or rejection written | ||
A01 | Written decision to grant a patent or to grant a registration (utility model) |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A01 Effective date: 20140716 |
|
A61 | First payment of annual fees (during grant procedure) |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A61 Effective date: 20140807 |
|
R150 | Certificate of patent or registration of utility model |
Ref document number: 5596731 Country of ref document: JP Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R150 |
|
R250 | Receipt of annual fees |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250 |
|
R250 | Receipt of annual fees |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250 |
|
R250 | Receipt of annual fees |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250 |
|
R250 | Receipt of annual fees |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250 |
|
R250 | Receipt of annual fees |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250 |
|
R250 | Receipt of annual fees |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250 |
|
R250 | Receipt of annual fees |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250 |