JP2012118083A - Semen analysis - Google Patents
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Abstract
Description
本発明は、精液分析に関する。 The present invention relates to semen analysis.
ＷＴＯの統計によれば、妊娠しなかった全夫婦の８％から１０％は医療専門家に相談している。現在、４,０００万以上の夫婦が不妊治療を受けている。これらの不妊症の夫婦の中で、４０％の夫婦の不妊は男性に起因するものであり、また２０％は男性および女性の複合的な要因に起因するものである、と推定される。精液分析は、男性に起因する要因の検査における主要な技術である。 According to WTO statistics, 8% to 10% of all married couples who did not become pregnant consult a health care professional. Currently, more than 40 million couples are receiving infertility treatment. Of these infertile couples, it is estimated that 40% of the couple's infertility is due to men and 20% is due to the combined factors of men and women. Semen analysis is the primary technique in the examination of factors attributed to men.
標準的な精液分析プロトコルは、少なくとも３つの主要な精液パラメータの測定を要する：
１. 総精子濃度（ＴＳＣ）、
２. 運動精子率、および、
３. 正常精子形態率。
A standard semen analysis protocol requires the measurement of at least three major semen parameters:
1. Total sperm concentration (TSC),
2. Motility sperm rate and
3. Normal sperm morphology rate.
実際上、精液分析は、人間の男性の不妊治療医学における重要な要素であるが、１９３０年代以来変わっておらず、今日もなお顕微鏡検査によって行なわれている。実際のところ、それは、依然としてほぼ手作業による方法だけで行われる、非常に残り少ない生体外体液分析の１つである。 In fact, semen analysis is an important element in human male infertility medicine, but has not changed since the 1930s and is still performed by microscopy today. In fact, it is still one of the very few in vitro body fluid analyses, performed almost exclusively by manual methods.
この手作業による方法には、精子細胞を慎重に観察し、計数してその濃度を測定し、その運動性を分類し、その形態を識別すること等が含まれる。この作業は高度な専門技術を必要とする、非常に大きな労力を要するものであり、標準のプロトコルに従って行われる場合には１つの検査につき少なくとも１時間はかかる。 This manual method includes carefully observing sperm cells, counting and measuring their concentration, classifying their motility, identifying their morphology, and the like. This task requires a high degree of expertise and is very labor intensive and takes at least one hour per test when performed according to standard protocols.
手作業による評価は、誤りが生じる多くの原因があるために、かなり不正確であることが知られている。誤りの主要な原因は、以下の通りである：
・評価者の主観、
・異なる研究所や異なる評価者によって用いられる基準の多様性、
・分析される精子の数が限られていることに起因する、大きな統計誤差。
Manual evaluation is known to be quite inaccurate due to many causes of error. The main causes of errors are as follows:
・ Evaluator's subjectivity,
The diversity of standards used by different laboratories and different evaluators,
• Large statistical errors due to the limited number of sperm analyzed.
ＷＨＯマニュアル（WHO laboratory manual for the examination of human semen and sperm-cervical mucus interaction, 4th edition, Cambridge University Press, 1999）は、少なくとも２００個の精子を観察し、各々の形態および運動性を分類することを推奨している。作業が単調であること、また、作業に多大の時間を要する特質を持つことにより、この作業自体が誤りを起こす手順となっている。実際、多くとも５０個から１００個の精子が分析される。たとえ評価者がいかなる誤りも生じさせない場合でも、統計上の誤りだけで数１０パーセントに達する。 WHO laboratory manual for the examination of human semen and sperm-cervical mucus interaction, 4th edition, Cambridge University Press, 1999 Recommended. Due to the monotonous nature of the work and the nature of the work requiring a great deal of time, this work itself is a procedure that causes errors. In fact, at most 50 to 100 spermatozoa are analyzed. Even if the evaluator does not make any error, it reaches tens of percent with statistical errors alone.
上述の方法による結果として、精液分析検査結果は、非常に主観的であり、不正確であり、再現性に乏しいと世界的に認識されている。また、この問題が男性の不妊治療医学における大きな懸念となっており、それに関する大多数のシンポジウム、会議および会合の論議において未解決の問題となっているほど、研究室間および技術者間でばらつきがある。 As a result of the method described above, semen analysis test results are recognized worldwide as being very subjective, inaccurate and poorly reproducible. Also, this issue has become a major concern in male infertility medicine, and the more unresolved issues in the majority of symposiums, conferences and meeting discussions, the more variability between laboratories and engineers. There is.
これらの問題を克服するために、医療器具会社は、画像解析（ＣＡＳＡ - Computer Assisted Semen Analyzers）に基づいた、専用のコンピュータ化システムを採用した。その全ての結果が画像処理に基づくものであるため、これらのシステムは、極めて高品質の画像を必要とする。これらのシステムは、手作業による分析に取って代わること、業界で承認される規格を確立することを試みたが、そのいずれの目的にも成功しなかった。 To overcome these problems, medical device companies have adopted dedicated computerized systems based on image analysis (CASA-Computer Assisted Semen Analyzers). Since all of the results are based on image processing, these systems require extremely high quality images. These systems have attempted to replace manual analysis and establish industry-accepted standards, but have failed for either purpose.
分析結果は、手作業による設定や型の異なる器具に依存し続けているため、１番目の目的を達成することはできなかった。システムは極めて高価であり、複雑であり、また、操作が難しいため、ルーチンの手作業による分析から代えることは、全く実現不可能である。実際、このようなシステムは、ルーチンの精液分析においては見受けられず、研究センター、大学病院、また、時には高度専門不妊治療センターにおいてのみ、わずかに採用されている程度にすぎない。 The results of the analysis continued to depend on manual settings and different types of instruments, so the first objective could not be achieved. Because the system is extremely expensive, complex and difficult to operate, it is completely impossible to replace routine manual analysis. In fact, such a system is not found in routine semen analysis and is only marginally employed in research centers, university hospitals, and sometimes even highly specialized infertility centers.
精液測定のための更なる方法が、特許文献１および特許文献２において記載されており、これらの内容はここに含まれている。これらの特許には、電子光学手段およびアナログ信号解析器を用いて精子運動性を測定する方法が記載されている。精子細胞の懸濁は、精子の運動による光学濃度の変動を検出するために、所定の領域にて連続的に検査される。振幅変調されたアナログ電気記号がその変動に応じて発生し、また、この信号のピークおよび谷は、所定の期間にわたって計数され、精子運動指数（Sperm Motility Index：ＳＭＩ）と称する理論的なパラメータが提供される。このパラメータは、運動性に関するものであり、運動細胞の個数にそれぞれの速度を乗じたものに比例する数値を示す。 Further methods for semen measurement are described in US Pat. These patents describe methods for measuring sperm motility using electro-optic means and analog signal analyzers. The suspension of sperm cells is inspected continuously in a predetermined area to detect optical density variations due to sperm movement. An amplitude-modulated analog electrical symbol is generated in response to the variation, and the peaks and troughs of this signal are counted over a predetermined period of time, and a theoretical parameter called Sperm Motility Index (SMI) is obtained. Provided. This parameter relates to motility, and indicates a value proportional to the number of motor cells multiplied by the respective speed.
ＳＭＩパラメータを提供するSperm Quality Analyzer（ＳＱＡ）と称する自動精液分析器は、多年にわたって市販されている。この分析器は、次のように用いられる：精子の検体は、一端にサンプルを吸引するためのゴム球を有し、また、他端に薄い測定コンパートメントを有する使い捨てのチャンバによって取り上げられる。サンプルを吸引した後に、測定コンパートメントはＳＱＡに挿入され、サンプルのＳＭＩは自動的に測定される。ＳＭＩパラメータは、幾つかの応用分野においては有益であるとは言え、従来の顕微鏡の精液測定に対する実現可能な代替案としては、医学会に全く受け入れられなかった。 An automated semen analyzer called Sperm Quality Analyzer (SQA) that provides SMI parameters has been commercially available for many years. This analyzer is used as follows: The sperm specimen is picked up by a disposable chamber with a rubber ball for aspirating the sample at one end and a thin measuring compartment at the other end. After aspirating the sample, the measurement compartment is inserted into the SQA and the SMI of the sample is automatically measured. Although SMI parameters are beneficial in some applications, they have not been accepted by the medical society as a viable alternative to conventional microscope semen measurements.
周知のように、獣医学の繁殖力分析の幾つかの分野では、総精子濃度（ＴＳＣ）は、検体の光学的濁度を測定することによって評価される。このアプローチの根底にある物理的原理は、精子細胞が周囲の精漿より不透明であり、したがって、検体による光ビームの吸収はＴＳＣに比例する、ということである。 As is well known, in some areas of veterinary fertility analysis, total sperm concentration (TSC) is assessed by measuring the optical turbidity of the specimen. The physical principle underlying this approach is that sperm cells are more opaque than the surrounding seminal plasma, and thus the absorption of the light beam by the analyte is proportional to TSC.
例えば、特許文献３は、サンプルを含む精子の吸光度を測定することによって精子濃度を測定し、少なくとも３つの加算チャネルを用いて吸光度出力信号と濃度とを関連づける方法を開示している。開示された方法は、牧畜業界の人工受精に用いることを意図したものであり、４００〜７００ｎｍの範囲内で吸光度を測定する。 For example, Patent Document 3 discloses a method of measuring the sperm concentration by measuring the absorbance of sperm containing a sample, and associating the absorbance output signal with the concentration using at least three addition channels. The disclosed method is intended for use in artificial fertilization in the pastoral industry and measures absorbance within a range of 400-700 nm.
しかしながら、以下の理由によって、この技術をヒトに利用するために採用することはなかった。また、採用することはできなかった：
（１）正常範囲の（また、たとえ正常より高い場合でも）ヒト精子濃度は、この技術が採用されている分野である、動物の同等物のほとんどよりも１桁以上も低い。
（２）精子濃度がその正常レベルよりかなり低いときでさえ、ヒトの場合は治療を受ける。もちろん、動物の場合はこの限りではない。不妊症の動物は通常は処分され−いずれにせよ不妊治療を受けることはない。
（３）ヒトのＴＳＣは１つのパラメータであって、それだけでは不妊治療の調査には全く不十分であり、いずれにせよ、顕微鏡分析が、標準の精液分析プロトコルにおける他の全てのデータのために必要となる。これは、獣医学上の応用に有効である。この事実は、光吸収の測定を不必要なものにし、この分野において真の取り組みは行われてこなかった。
However, this technology has not been adopted for human use for the following reasons. Also, it could not be adopted:
(1) Human sperm concentrations in the normal range (and even if higher than normal) are more than an order of magnitude lower than most of the animal equivalents in which this technology is employed.
(2) Humans receive treatment even when sperm concentrations are well below their normal levels. Of course, this is not the case for animals. Infertile animals are usually disposed of-they do not receive infertility treatment anyway.
(3) Human TSC is a parameter, which is not enough for investigation of infertility treatment anyway, and in any case, microscopic analysis is used for all other data in the standard semen analysis protocol. Necessary. This is useful for veterinary applications. This fact renders the measurement of light absorption unnecessary and no real effort has been made in this area.
よって、ヒト精液のＴＳＣを測定するための容易且つ客観的な技術が必要である。 Therefore, there is a need for an easy and objective technique for measuring TSC of human semen.
ＷＴＯマニュアルによれば、（最も重要な単一の精液パラメータとおおかた考えられている）精子運動性評価は、顕微鏡下でグリッド方法を用いて手作業で実行されるか、または、ＣＡＳＡを用いて実行される。 According to the WTO manual, sperm motility assessment (which is mostly considered the single most important semen parameter) can be performed manually using the grid method under the microscope or using CASA Executed.
ＣＡＳＡは手作業による方法に比して幾つかの優位点がある。しかしながら、定量的なデータの精度およびその提供は、精密な精液準備技術および器具の設定に完全に依存している。このような器具類の非常に高い価格と同様に、これらの要素（高度な専門技術および先進技術環境）は、ルーチンの精液分析への応用を事実上妨げている。 CASA has several advantages over manual methods. However, the accuracy of quantitative data and its provision is entirely dependent on precise semen preparation techniques and instrument settings. As well as the very high cost of such instruments, these factors (high expertise and advanced technology environment) have virtually prevented their application to routine semen analysis.
特許文献４は、液体中の精子、バクテリアおよび粒子の動きを特徴づけるための運動性スキャナを開示している。このスキャナは、コリメータレンズ、集光レンズ、撮像レンズおよび一対の反射要素を含む光学系、照明源、放射検出手段、信号処理手段ならびに表示手段、を有する。撮像レンズは、その対物面に、少なくとも約0.2ｍｍの有効被写界深度を有する。 U.S. Patent No. 6,057,031 discloses a motility scanner for characterizing the movement of sperm, bacteria and particles in a liquid. This scanner has an optical system including a collimator lens, a condenser lens, an imaging lens, and a pair of reflecting elements, an illumination source, radiation detection means, signal processing means, and display means. The imaging lens has an effective depth of field of at least about 0.2 mm at its object plane.
本発明の目的は、ＴＳＣを測定する方法を提供することである。 An object of the present invention is to provide a method for measuring TSC.
本発明の他の目的は、運動精子濃度（ＭＳＣ）および運動率（% motility）を測定する方法を提供することである。 Another object of the present invention is to provide a method for measuring motility sperm concentration (MSC) and motility (% motility).
本発明の更に他の目的は、精液パラメータの測定に用いるサンプリング装置を提供することである。 Yet another object of the present invention is to provide a sampling device for use in measuring semen parameters.
本発明のもう１つの目的は、精液パラメータの測定のためのシステムを提供することである。 Another object of the present invention is to provide a system for measurement of semen parameters.
本発明の第１の形態において、サンプルにおける総精子濃度（ＴＳＣ）を測定する方法が提供される。その方法は、(i)共時的にパルス化された光源（共時的パルス光源）と光検出器と間の透明容器にサンプルを配置すること、および（ii)８００〜１,０００ｎｍの範囲でサンプルの吸光度を測定することを有し、サンプルのＴＳＣは、吸光度に比例する。 In a first aspect of the invention, a method for measuring total sperm concentration (TSC) in a sample is provided. The method includes (i) placing the sample in a transparent container between a synchronously pulsed light source (synchronous pulsed light source) and a photodetector, and (ii) in the range of 800-1,000 nm. The TSC of the sample is proportional to the absorbance.
本発明の方法は、画像解析に依存せず且つ人間のＴＳＣを測定することが可能な、ＴＳＣの客観的な測定を提供する。しかしながら、この方法は、動物のＴＳＣの測定にも用いることができる。 The method of the present invention provides an objective measurement of TSC that is independent of image analysis and can measure human TSC. However, this method can also be used to measure TSC in animals.
本発明の第２の形態において、体液の光学的な分析に用いられるサンプリング装置が提供されており、以下を有する：
(i)自装置に体液を吸引するための吸引器、
(ii)上壁と下壁とを有し、壁の間の距離が１００〜５００ミクロンの範囲内である薄型測定チャンバ、
(iii)上壁と下壁とを有し、壁の間の距離が０.５〜３０ｃｍの範囲内である厚型測定チャンバ、および、
(iv)これらの測定チャンバから空気を除去する手段。
In a second aspect of the present invention, a sampling device used for optical analysis of body fluids is provided and has the following:
(i) an aspirator for sucking body fluid into the device;
(ii) a thin measurement chamber having an upper wall and a lower wall, wherein the distance between the walls is in the range of 100 to 500 microns;
(iii) a thickness measuring chamber having an upper wall and a lower wall, wherein the distance between the walls is in the range of 0.5 to 30 cm; and
(iv) Means for removing air from these measurement chambers.
好ましい実施の形態において、体液とは精液であり、最も好ましくはヒト精液である。この装置は、サンプラおよび二重検査チャンバの両方としての役目を果たし、ＴＳＣおよびＭＳＣの同時検査を可能にする。いかなる測定においても希釈は不必要である。このことにより、労力が省かれるだけでなく、誤りの重大な発生源、すなわち希釈の不正確性も排除される。 In a preferred embodiment, the body fluid is semen, most preferably human semen. This device serves as both a sampler and a dual inspection chamber, allowing simultaneous inspection of TSC and MSC. No dilution is necessary for any measurement. This not only saves labor, but also eliminates a significant source of errors, ie dilution inaccuracies.
また、この装置は（必要に応じて）検体を別の観察チャンバへ移すことなく、検体の備え付けの可視化を可能にする。厚型チャンバは、光学濃度計とも称する。 The device also allows visualization of the specimen installation without transferring the specimen (if necessary) to another observation chamber. The thick chamber is also referred to as an optical densitometer.
本発明の第３の形態において、精液サンプルにおける運動精子濃度（ＭＳＣ）を測定する方法が提供されており、以下を有する：
(i)光源と光検出器との間の透明容器にサンプルを配置し、サンプル中の精子の動きが透過光を変調し、これによって信号を生成すること、
(ii)信号をサンプリングし複数の信号サンプルを生成すること、
(iii)基準を満たす信号を選択すること、
(iv)基準を満たす信号サンプルの各々の絶対値を算出すること、
(v)絶対値の平均ａを算出すること、および、
(vi)平均ａに基づいてＭＳＣを算出すること。
In a third aspect of the invention, a method for measuring motile sperm concentration (MSC) in a semen sample is provided, comprising:
(i) placing the sample in a transparent container between the light source and the photodetector, the movement of sperm in the sample modulating the transmitted light, thereby generating a signal;
(ii) sampling the signal to generate a plurality of signal samples;
(iii) select a signal that meets the criteria;
(iv) calculating the absolute value of each signal sample meeting the criteria;
(v) calculating an average a of absolute values, and
(vi) Calculate the MSC based on the average a.
今日では、精液サンプルを通過する光線から生じるアナログ信号の波形の解析によりＭＳＣの表示が提供されることが判明している。適切に選択された基準を用いると、波形によってカバーされる平均化領域とＭＳＣとの間に高い相関が存在するということが判明している。精子サンプルのＭＳＣは、本発明に従いサンプルの光学的特性を分析することによって得られ、精子の運動性のためにやがて変化する。以下に更に詳細に述べるように、実際には、これは波形の主要部分における平均信号振幅である。 Today, it has been found that analysis of the waveform of the analog signal resulting from light passing through the semen sample provides an indication of the MSC. It has been found that with a properly selected criterion, there is a high correlation between the averaged area covered by the waveform and the MSC. The MSC of a sperm sample is obtained by analyzing the optical properties of the sample according to the present invention and will change over time due to sperm motility. As will be described in more detail below, in practice this is the average signal amplitude in the main part of the waveform.
本発明の第４の形態においては、精子細胞の平均速度（ＡＶ）を測定する方法が提供されており、以下を有する：
(i)米国特許第4,176,953号において定義されている精子細胞のSperm Motility Index（ＳＭＩ）を取得すること、
(ii)ＭＳＣを取得すること、および、
(iii)ＳＭＩ／ＭＳＣの比率を含む代数式を用いてＡＶを算出すること。
In a fourth aspect of the invention, there is provided a method for measuring average sperm cell velocity (AV), comprising:
(i) obtaining a Sperm Motility Index (SMI) of sperm cells as defined in US Pat. No. 4,176,953;
(ii) obtaining an MSC; and
(iii) Calculate AV using an algebraic expression including the ratio of SMI / MSC.
ここで、１９７９年１２月４日発行の米国特許第4,176,953号を参照する。これは、イスラエル国、Medical Electronic Systemsにより生産されたSperm Quality Analyzersの様々なバージョンにおいて実施化されている。この特許は、精液分析に適用される場合には、ＳＭＩ（Sperm Motility Index）と呼ばれるパラメータを提供する。上記特許において開示され且つ多数の裏付け研究で証明されているように、ＳＭＩとは運動細胞の濃度（ＭＳＣと称される）とそれらの平均速度（ＡＶ）との両方の関数である。簡約すると、ＳＭＩはＭＳＣ×ＡＶの関数、または、ＡＶはＳＭＩ／ＭＳＣの関数であると言える。精液サンプルの平均速度は、精子の運動性の品質の表示を提供することができる。 Reference is now made to US Pat. No. 4,176,953 issued Dec. 4, 1979. This has been implemented in various versions of Sperm Quality Analyzers produced by Medical Electronic Systems, Israel. This patent, when applied to semen analysis, provides a parameter called SMI (Sperm Motility Index). As disclosed in the above patent and proven in numerous supporting studies, SMI is a function of both the concentration of motor cells (referred to as MSC) and their average velocity (AV). To simplify, it can be said that SMI is a function of MSC × AV, or AV is a function of SMI / MSC. The average speed of the semen sample can provide an indication of the quality of sperm motility.
上述したことにもかかわらず、ＭＳＣおよびＡＶの関数としてのＳＭＩは、これらを直接乗算したものよりも更に複雑なものである。１００個以上の精液サンプルを観察し分析し測定した後に、それらの正確な相互関係（式）が見出されている。概括的な言葉で言えば、平均速度を得るための式は、次のように定義することができる：AV=f(SMI/MSC)、なお、「f」は３次多項式である。相関係数がr=0.82の場合、f(x) =1/1000x3+1/10x2+0.89xである。 Notwithstanding the above, SMI as a function of MSC and AV is more complex than the direct multiplication of these. After observing, analyzing and measuring more than 100 semen samples, their exact correlation (formula) has been found. In general terms, the formula for obtaining the average velocity can be defined as: AV = f (SMI / MSC), where “f” is a cubic polynomial. When the correlation coefficient is r = 0.82, f (x) = 1 / 1000x 3 + 1 / 10x 2 + 0.89x.
ほとんどの精液分析プロトコルは、平均速度よりは、むしろ前進運動性を持つ精子の割合についてのデータを要する、という点に注目すべきである。前進運動性とは、５ミクロン／秒以上の平均速度を有する精子として定義される。速度の標準的な分散が平均値に近いと想定される場合、このパラメータも平均速度から容易に得ることができる。速度分布が標準的ではない場合であっても、前進運動精子の割合の算出が大きく影響を受けて誤ることはない。さらに、異なる最低速度が前進運動性と定義される場合、この変化する閾値は容易に演算に算入されるので、このパラメータの提供に、更なる柔軟性を与える。このことは、異なる希釈媒体、異なる周囲温度、または、実際、動物の測定における異なる生物種で作業する場合に、重要である。 It should be noted that most semen analysis protocols require data on the proportion of sperm with forward motility rather than average velocity. Advance motility is defined as sperm with an average velocity of 5 microns / second or greater. This parameter can also be easily obtained from the average speed if the standard variance of speed is assumed to be close to the average value. Even if the velocity distribution is not standard, the calculation of the percentage of forward moving sperm is greatly affected and will not be mistaken. Furthermore, if a different minimum speed is defined as forward motility, this changing threshold is easily factored into the calculation, thus providing additional flexibility in providing this parameter. This is important when working with different dilution media, different ambient temperatures, or indeed different species in animal measurements.
本発明の第５の形態において、精子の生存度を分析するシステムが提供されており、以下を有する：
(i)ＴＳＣを測定する手段、
(ii)ＭＳＣを測定する手段、および、
(iii)映像可視化システム。
In a fifth aspect of the invention, a system for analyzing sperm viability is provided and has the following:
(i) means for measuring TSC;
(ii) means for measuring MSC, and
(iii) Video visualization system.
本発明のシステムは、２つの主要な精子パラメータであるＴＳＣおよびＭＳＣの測定を、精子の伝統的な可視化と組み合わせることにより、第３のパラメータである精子形態を得ることを可能とする。好適な実施の形態において、ＴＳＣおよび／またはＭＳＣは、本発明の方法に従って測定される。他の好適な実施の形態においては、そのシステムは更に本発明のサンプリング装置を有する。 The system of the present invention makes it possible to obtain a third parameter, sperm morphology, by combining the measurement of the two main sperm parameters, TSC and MSC, with traditional visualization of sperm. In a preferred embodiment, TSC and / or MSC are measured according to the method of the present invention. In another preferred embodiment, the system further comprises the sampling device of the present invention.
本発明のシステムにおいて用いられる映像可視化システムと、その他の精子可視化システム（例えばＣＡＳＡ）との間には、基本的な差異があることを重視する必要がある。その他のシステムでは、全ての結果が画像処理に基づいているため、極めて高品質の画像が必要とされる。一方で本発明においては、可視化は特殊または疑わしいケースを目視検査し、処理結果に対する信頼性を高め、特殊な病理を特定し、手作業による精子形態評価を可能とするための単なる補足的なツールとして、必要に応じて用いられているにすぎない。 It should be emphasized that there is a basic difference between the video visualization system used in the system of the present invention and other sperm visualization systems (for example, CASA). Other systems require extremely high quality images because all results are based on image processing. On the other hand, in the present invention, visualization is a mere supplementary tool for visually inspecting special or suspicious cases, increasing the reliability of processing results, identifying special pathologies, and enabling manual sperm morphology evaluation It is only used as needed.
これらの作業を遂行するために、本発明において用いられる映像可視化システムは、小型で安価なサブシステムとして設計されており、スタンドアロンとしての限られた用途にもかかわらず、まさに本発明のシステムにおける補足的な役割を果たしている。顕微鏡による手順と比較すると、この可視化システムの更なる重要な効果とは、ピペット操作、スライドの準備、希釈、および血球計算板の充填が不必要なことである。本発明の装置を、映像可視化システムと共に用いると、完全な検査チャンバを兼ねることとなり、上述の全てを不要とする。これらの特徴により、実際にいかなる小規模のクリニック、またはオフィス環境においてもそのシステムが利用できるようになる。 In order to perform these tasks, the video visualization system used in the present invention is designed as a small and inexpensive subsystem and, despite its limited use as a stand alone, is exactly the supplement in the system of the present invention. Plays an important role. Compared to the microscopic procedure, a further important effect of this visualization system is that no pipetting, slide preparation, dilution and hemacytometer filling are required. When the apparatus of the present invention is used with an image visualization system, it also serves as a complete inspection chamber, eliminating all of the above. These features allow the system to be used in virtually any small clinic or office environment.
映像可視化システムによって、検査済みサンプルに関する以下の補助的情報を得ることができる： The following visualization information about the tested sample can be obtained by the video visualization system:
１． 極低精子濃度の測定
極めて低濃度（精子５００万個／ｍｌ以下）での、ＴＳＣの測定は、その精度において、本質的に限界がある。このことは、かような低レベルでは、精子細胞以外の要素による光吸収が相対的に大きくなる、という事実に起因する。光吸収は、精漿可変性、または精子以外の細胞の存在に起因しても起こり得る。後者は、ＷＢＣ（感染を示す白血球）、および、多様な原因による他の未分化細胞または非精子細胞等を含む。本発明によれば、ＴＳＣは光吸収によって測定されるため、上述した点を考慮すると、可視化しなければ、極めて低いレンジで精度の得られない結果となる可能性があるであろう。低いレンジにおいてＴＳＣが重要であるとみなされるとき、可視化は、光吸収に寄与する異なる細胞の区別を可能にする。ＭＳＣが光吸収とは別に測定されるので、視覚的に測定されたＴＳＣパラメータを用いて、運動率（ＭＳＣ／ＴＳＣ）を算出することができる。
1. Measurement of extremely low sperm concentration Measurement of TSC at very low concentrations (less than 5 million sperm / ml) is inherently limited in its accuracy. This is due to the fact that at such low levels, light absorption by elements other than sperm cells is relatively large. Light absorption can also occur due to seminal variability or the presence of cells other than sperm. The latter includes WBC (white blood cells indicating infection) and other undifferentiated cells or non-sperm cells due to various causes. According to the present invention, since TSC is measured by light absorption, in view of the above points, if visualization is not performed, there may be a result that accuracy cannot be obtained in a very low range. Visualization allows differentiation of different cells that contribute to light absorption when TSC is considered important in the lower range. Since MSC is measured separately from light absorption, the moment rate (MSC / TSC) can be calculated using visually measured TSC parameters.
２． 精液中の異質細胞の識別
本システムは、精液の質へ影響を与え、および／または、患者の疾患の診断に役立つ他の細胞の存在を識別するのに有効である。例えば、白血球は感染を示し、未成熟細胞は精子形成における問題を示し、また、細胞の凝集反応は幾つかの原因によって起こり得る。
2. Identification of foreign cells in semen The system is effective in identifying the presence of other cells that affect semen quality and / or help diagnose a patient's disease. For example, leukocytes indicate infection, immature cells indicate problems in spermatogenesis, and cell agglutination can occur due to several causes.
３． 手作業による精子形態の評価
本発明のシステムは、正常精子形態率を自動的に評価するが、それは一定基準（例えばＷＨＯ基準）に従って行われる。残念なことに、この基準は、世界的に認められてはいない。このような世界的に認められた基準はまだ存在しておらず、しばしばその応用に委ねられている。例えば、ＩＶＦおよびＩＣＳＩへの応用に対する形態基準は、通常の場合よりかなり厳しくなっている。他の国際標準（例えば厳密なまたはクルーガー基準）もまた、広く用いられている。可視化することにより、不妊治療の専門家が、自分自身の基準を選択して特定の欠陥の存在（頭部形態異常、尾部形態異常等）を特定することも可能となる。
3. Assessment of sperm morphology by hand The system of the present invention automatically assesses the normal sperm morphology rate, which is done according to certain criteria (eg WHO criteria). Unfortunately, this standard is not recognized worldwide. Such globally recognized standards do not yet exist and are often left to their application. For example, morphological standards for IVF and ICSI applications are much stricter than usual. Other international standards (eg strict or Kruger standards) are also widely used. Visualization also allows infertility specialists to select their own criteria to identify the presence of specific defects (head shape abnormalities, tail shape abnormalities, etc.).
４． 精管切除検証および無精子症診断
精管切除の予後を十分に検証するため、または、無精子症の最終的な診断を得るために、検査対象の精液中に精子が全く存在しないことを判定する必要がある。測定する濃度が極めて低くなるので、この判定は光吸収技術を用いたのでは、一般的には不可能である。この場合、個々の精子細胞の検査において広範囲の検査視野を慎重にスキャンするために、手作業による可視化が必要である。本発明のシステムにおける精子可視化システムは、これらの応用に対して最適に対処するために、とりわけ特化されたものである。
4). Vasectomy verification and azoospermia diagnosis To fully verify the prognosis of vasectomy or to obtain a final diagnosis of azoospermia, determine that there is no sperm in the semen being examined There is a need to. Since the concentration to be measured is extremely low, this determination is generally not possible using a light absorption technique. In this case, manual visualization is required in order to carefully scan a wide examination field in the examination of individual sperm cells. The sperm visualization system in the system of the present invention is particularly specialized to optimally address these applications.
５． ハードコピー
映像可視化システムでは、任意の選択映像（または数個の映像）の動きを止める（フリーズする）ことができ、さらにこれを印刷して精液分析報告書に添付することができる。これは、診察や治療効果の検証において、大きな価値を持つ。フリーズオプションの副次的な成果は、静止状態で精液サンプルを観察できることである。これは、分析および計数を非常に容易にする。顕微鏡による評価では、観察前に精子の動きを停止させる（死滅させる）ことによってのみ、これを成すことができる。そのときでさえ、死滅した精子は１つの層に集中して重なり合ってしまうこととなり、通常、これは分析を複雑にしてしまう状況を作り出す。
5. The hard copy video visualization system can stop (freeze) the movement of any selected video (or several videos), which can be printed and attached to a semen analysis report. This has great value in examination and verification of therapeutic effects. A secondary outcome of the freeze option is the ability to observe semen samples in a quiescent state. This makes analysis and counting very easy. In microscopic evaluation, this can only be done by stopping (killing) the movement of the sperm before observation. Even then, dead sperm will concentrate in one layer and overlap, which usually creates a situation that complicates analysis.
（例１）
上述のように、動物サンプルと相反して、ヒト精液サンプルのＴＳＣの自動光学測定は、従来、精子細胞が低濃度であるために阻まれてきた。これは、例えば精漿の可変性による高いバックグラウンドの電子的および光学的ノイズと共に、動物の受精能力分析で通常用いられる方法を応用することを妨げてきた。本発明の方法では、以下の特徴を組み合わせることによって、これらの障害を克服する：
（i）サンプルを、共時的パルス光源および共時的に使用可能な光検知器の間の透明容器に配置する。共時的パルス光源および光検知器を使用することにより、電子ノイズレベルから低濃度の精子細胞を分けて識別することが可能となる。
(Example 1)
As described above, contrary to animal samples, automatic optical measurement of TSC of human semen samples has been hampered by the low concentration of sperm cells. This, along with high background electronic and optical noise due to, for example, seminal variability, has prevented the application of methods commonly used in animal fertility analysis. The method of the present invention overcomes these obstacles by combining the following features:
(I) Place the sample in a transparent container between the synchronic pulse light source and the synchronically usable photodetector. By using a synchronic pulse light source and a light detector, it is possible to distinguish and identify low-concentration sperm cells from the electronic noise level.
（ii)８００〜１,０００ｎｍの範囲内でサンプルの吸光度を測定する。近赤外線域において吸光度の測定を行なうことで、精子細胞による強い吸光および精漿による弱い吸光を得るための光学的条件が得られることが判明した。好ましくは、測定範囲は、８５０〜９５０ｎｍである。最も好ましい範囲は、８８０〜９００ｎｍである。 (Ii) The absorbance of the sample is measured within the range of 800 to 1,000 nm. By measuring the absorbance in the near-infrared region, it has been found that optical conditions for obtaining strong absorption by sperm cells and weak absorption by seminal plasma can be obtained. Preferably, the measurement range is 850 to 950 nm. The most preferable range is 880 to 900 nm.
本発明の方法を用いることにより、サンプルのＴＳＣを吸光度関数として測定することができる。本発明の方法は、望ましくはヒト精液またはヒト精子のサンプルに用いられるものであるが、動物精液や動物精子にも、できれば適度に希釈した後で用いることができる。 By using the method of the present invention, the TSC of a sample can be measured as an absorbance function. The method of the present invention is desirably used for human semen or human sperm samples, but can also be used for animal semen and animal sperm after being appropriately diluted if possible.
図１は、本発明の方法の一実施の形態を用いた光学システムの例を示す。全体として参照符号２で示されるこのシステムは、光源４、光検出器６、および、その間に設けられたサンプルホルダ８を有する。好適な光源は、近赤外線域の光を発する高速スイッチング共時パルス発光ダイオード（ＬＥＤ）であってもよい。光源は、順に変調器１２によって調整される光強度制御器１０によって制御される。光検出器は、共時的パルス光を検出することができる。光検出器は、測定されたアナログ信号を、同様に変調器１２によって調整される復調器１４に送信し、そこからディジタル信号出力部１６へ送る。
FIG. 1 shows an example of an optical system using an embodiment of the method of the present invention. This system, indicated generally by the reference numeral 2, comprises a light source 4, a photodetector 6, and a sample holder 8 provided therebetween. A suitable light source may be a fast switching synchronic pulsed light emitting diode (LED) that emits light in the near infrared range. The light source is controlled by a
サンプルを通過するビーム路は、好ましくは垂線形である。サンプルを通過するビーム路の長さは、通常５ｍｍから１５ｍｍの間であるが、好ましくは１０ｍｍである。サンプルホルダは、８００ｎｍおよび１,０００ｎｍの間の近赤外線領域の光波を完全に透過せねばならない。サンプルホルダが作られる塑性材料は、精子に対して全く無毒である必要があり、好適な材料は、ポリスチレンＰＧ−７９である。サンプルホルダは、好ましくは光測定を妨げる、サンプルへの空気の侵入や気泡の形成を完全に防ぐように、設計されねばならない。 The beam path through the sample is preferably vertical. The length of the beam path through the sample is usually between 5 mm and 15 mm, but preferably 10 mm. The sample holder must completely transmit light waves in the near infrared region between 800 nm and 1,000 nm. The plastic material from which the sample holder is made must be completely non-toxic to sperm, a suitable material is polystyrene PG-79. The sample holder should be designed to completely prevent air intrusion and bubble formation into the sample, which preferably prevents light measurement.
本発明の方法を用いることによって、およそ、細胞２００万個／ｍｌにまでＴＳＣ検出レベルを下げることが達成された。このレベルは、すでに極度の精液病理を示唆している。 By using the method of the present invention, it was achieved to reduce the TSC detection level to approximately 2 million cells / ml. This level already suggests extreme semen pathology.
（例２）
図２は、本発明に係る精液測定に用いるサンプリング装置２０の一実施の形態を示している。その装置は、前方に光学的観察部２２、後方に吸引器２４、および、中間に排除部２６を有する。
(Example 2)
FIG. 2 shows an embodiment of a
この光学的観察部２２は、薄型測定チャンバ２８と、厚型測定チャンバ３０とを有する。薄型チャンバは、ＭＳＣ測定および／または可視化のために用いられ、一方、厚型チャンバはＴＳＣ測定に用いられる。このような方法で、複数のパラメータを、同じサンプリング装置、および、サンプリングステップを用いて、同時に測定することができる。
The
吸引器２４は、シリンダ３２と、その中に摺動しながら挿入されるプランジャ３４とを有する。これらのパーツは、相互にぴったり組み合わされ、普通のシリンジとしての機能を果たす。この吸引器は、測定チャンバに精液サンプルを吸引する役割を果たす。
The
排除部２６は、測定チャンバと充填後のシリンダの内容物を分離するための分離弁３６を有する。吸引器、薄型測定チャンバ、厚型測定チャンバ、および、排除部は、それらのすべてが、流体が流れるように連通している。
The
矩形横棒状のアダプタ３８は、装置２０の一方に沿って延びるように設けられており、サンプルを検査する光学機器へ挿入する際に、正確に機器へスライドさせ、位置決めを行なう役割を果たす。更に、それは電気光学測定を精密にするために必要とされる機械的サポートと安定性を提供する。
The rectangular bar-shaped
装置の各部は、図３に更に明確に示されている。薄型測定チャンバ２８は、光ビームを透過する平行で透明な上壁４０および下壁４２を有する内空洞である。壁の間の距離は、１００〜５００ミクロン、好ましくは２５０〜３５０ミクロンの範囲であり、最も好ましくは、およそ３００ミクロンである。この後者のケースにおいては、チャンバ内の液体容量は、およそ２５μｌである。チャンバの前端４４は、サンプルを装置に吸引する開口部を有する。図示された実施の形態では、チャンバの幅はほぼ４ｍｍである。
Each part of the device is shown more clearly in FIG. The
薄型測定チャンバは、精子運動性の評価を行ない、例えば下壁４２に対向する光源と、上壁４０に対向する光検出器との間に位置する。また、光源と光検出器とを、これとは逆になるようにチャンバを介して位置させることもできることが理解できるであろう。光ビームは、精液サンプルが入っているチャンバを通過する。チャンバの反対側の検出器は、精子細胞の運動によって生じる光学濃度の変動をレジスタする。光学濃度の変動は、光検出器によって電気信号に変換され、次に、フィルタリング、ディジタル化、処理のために電子回路へ送られて、ＭＳＣが表示される。以下に更に説明するように、薄型測定チャンバはまた、映像可視化システムと共に用いることもできる。
The thin measurement chamber evaluates sperm motility, and is located, for example, between a light source facing the
厚型測定チャンバ３０は、光ビームが通過できる透明な上壁４６および下壁４８を有する。壁間の距離は、０.５〜３ｃｍ、好ましくは０.８〜１.２ｃｍの範囲であり、最も好ましくはおよそ１ｃｍである。この後者のケースでは、厚型チャンバに入る容量は、ほぼ０.５ｍｌである。
The
このチャンバは、精子濃度の電気光学吸収度測定を行なう役割を果たす。薄型チャンバ２８の光ビームと同じまたは異なる光ビームは、チャンバの上下の壁を通過し、光検出器によって検出される。チャンバの容積は、気泡に起因する誤りを回避するために、精子サンプルで完全に満たされなければならない。チャンバを通過する際の光ビームの減衰量は、精子濃度に比例する。光ビーム強度は、チャンバを通過後に測定され、電子的方法によって、ＴＳＣの単位に変換される。サンプリング装置内のチャンバの順序は、交換することができる。
This chamber serves to perform electro-optic absorbance measurements of sperm concentration. A light beam that is the same as or different from the light beam in the
シリンダ３２は、２つの測定チャンバ２８および３０と流体連通しており、プランジャ３４を引くことによって、流体はチャンバに吸引される。この吸引方法によって、多量のサンプルを装置に吸引することができる。気泡が測定チャンバに残ることを防止するために、分離弁３６が、シリンダと測定チャンバの間に配置されており、それらと流体連通している。弁は図４に詳細に示されており、弁筐体５２に摺動しながら入るピストン５０を有する。測定チャンバ３０とシリンダ３２を接続している接続孔５４は、ピストン５０を通り抜ける。
The
弁が上部に位置するときには、測定チャンバと吸引シリンダとの間が接続している。弁を押し下げることにより、その接続を遮断し、サンプルを測定する測定チャンバに空気が残存しないこと、また、温度変化があった場合でさえも漏出が起こらないことを確実にする。この技術は、空気が測定された流体内容物（前端４４を除く）から排除されるため、ポジティブディスプレースメントと同等である。この設計は、実質的にあらゆる粘度を持つサンプルでの作業を可能にすると共に、同時に、分析される検体物からの漏出や気泡浸入を防止する。 When the valve is located at the top, there is a connection between the measurement chamber and the suction cylinder. By depressing the valve, the connection is cut off, ensuring that no air remains in the measuring chamber for measuring the sample and that no leakage occurs even when there is a temperature change. This technique is equivalent to positive displacement because air is excluded from the measured fluid content (except for the front end 44). This design allows working with samples of virtually any viscosity and at the same time prevents leakage and bubble ingress from the analyte being analyzed.
測定チャンバから空気を排除する方法は、分離弁によって例示されているが、ポジティブディスプレースメントピペットなどの他の方法を用いても良い。 The method of evacuating air from the measurement chamber is exemplified by a separation valve, but other methods such as a positive displacement pipette may be used.
装置の全ての部分は、測定細胞に対して無毒の材料により製造されねばならない。好ましくは、材料はプラスチック材のように比較的安価であり、装置が使い捨て可能であることが好ましい。装置の製造に用いるポリマーの例として、ポリスチレンＰＧ−７９がある。分離弁、シリンダ、および、ピストンは、ポリプロピレンからなる。薄型測定コンパートメントは、その部分の精液の容積比が非常に高い領域であるため、装置の中で最も毒性に対して敏感な部分である。 All parts of the device must be made of materials that are non-toxic to the measuring cells. Preferably, the material is relatively inexpensive, such as a plastic material, and the device is preferably disposable. An example of a polymer used to manufacture the device is polystyrene PG-79. The separation valve, cylinder, and piston are made of polypropylene. The thin measurement compartment is the most sensitive part of the device because it is an area where the volume ratio of semen is very high.
装置２０にサンプルを吸引するために、薄型測定コンパートメント２８の先端部４４は、約５ｍｍの深さまで精液サンプルに浸液され、それから分離弁３６を通過して装置に吸引される。装置を完全に充填するには、約０.６ｃｃだけが必要である。次に分離弁が押し下げられ、装置は光測定器に挿入される。
In order to aspirate the sample into the
（例３）
上述のように、本発明に係るＭＳＣの測定は、ＭＳＣに比例する電圧信号の発生を必要とする。図５は、このような信号を生成することのできる精液分析システムの一実施の形態を示す。
(Example 3)
As mentioned above, the measurement of MSC according to the present invention requires the generation of a voltage signal proportional to the MSC. FIG. 5 shows one embodiment of a semen analysis system capable of generating such a signal.
矩形の横断面を有する光キャピラリ１００は、精液サンプル１０２を入れるために用いられる。キャピラリ１００は、光源１１０が発する入射光ビーム１０５で照射される。キャピラリ１００は、光ビーム１０５が通過する３００μｍの光路長を有する。キャピラリを通過後、拡散ビーム１０６は、７０μｍの直径を持つ円形の開口部１０８によって平行となる。平行ビーム１０７は、光検出器１１５に当たる。光検出器１１５が、ビーム１０７の強度に比例したアナログ電圧記号１２０を発する。アナログ信号は、例えば図８に示されるように、精液サンプル１０２の精子運動性によって、時間と共に変化する。アナログ信号１２０は、例えば８,０００Ｈｚのレートでアナログ信号１２０をサンプリングしてディジタル出力信号１２８を生成するアナログ／ディジタル変換器１２５に入力される。ディジタル出力信号は、メモリ１３０に記憶される。サンプル１０２の精子運動は、ビーム１０７の強度の変化をもたらし、アナログ信号１２０、および、ディジタル信号１２８に順番に影響を及ぼす。
An
プロセッサ１３５は、精液サンプル１０２の分析を実行するために、メモリ１３０に記憶されるデータの分析を行なう構成を採る。分析結果は、パーソナルコンピュータ１４５のＣＲＴスクリーン１４０などの表示装置、または内部のＬＣＤスクリーン１４８上に表示される。
The
図６は、例えば図５のプロセッサ１３５によって行なわれるように、本発明に従い、ＭＳＣを算出するアルゴリズムの一実施の形態を示すフローチャートである。
FIG. 6 is a flowchart illustrating one embodiment of an algorithm for calculating an MSC in accordance with the present invention as performed, for example, by
ステップ２００において、図５のディジタル信号１２８は、精液サンプル１０２の運動特性によって決まる信号の主要な周波数に該当しない高周波数および低周波を除去するために、ディジタル的にフィルタされる。これは、信号対雑音比を最適化するために行なわれる。信号１２８のＤＣ成分もまた、除去される。ヒト精子サンプルには、例えば、最適の周波数範囲は、５〜３０Ｈｚの間であることが判明した。ステップ２０５において、経験的に決められる第１の所定の閾値より低い絶対値を有するディジタルサンプルは除外される。ステップ２１０において、同じ閾値が、全ての残留サンプルから減算される。
In
ステップ２１５では、例えば無関係な細胞からの影響（アーティファクト）による全ての波形を除くために、波形選択手順が実行される。ヒト精子に関する波形選択の好ましい実施の形態は、以下の基準を満たさない全ての波形を除外することである：
最小高さ−１０ミリボルト
最小幅−３７.５ミリ秒
最大幅−５００ミリ秒
最小上昇／落下時間−２.５ミリ秒
In
Minimum height-10 millivolts Minimum width-37.5 milliseconds Maximum width-500 milliseconds Minimum rise / fall time-2.5 milliseconds
精子に関連する波形の先端と末端の正しい定義（および検波）は、波形方向に著しい変化が起こるところと定義される。このような２ポイント間の時間差により、所与の波の時間幅が定義される。選択方法は、図８（目盛りに示さない）を一例として参照して、理解することができ、これは時間関数としてのアナログ信号（図５における１２０）の振幅を示す。閾値３０２は、出力信号と顕微鏡によって測定されたＭＳＣとの間の最適な線形性を提供するために経験的に決められる。ＭＳＣの算出に用いられる波形は、３０４、３０５、３０６、および、３０７で示されている。その他の波形は、様々な理由により採用されなかった：３０８は、そのピークが閾値未満である；３１０は、広すぎる；また、３１２は、狭すぎる。
The correct definition (and detection) of the waveform tip and end associated with sperm is defined as a significant change in the waveform direction. The time difference between these two points defines the time width of a given wave. The selection method can be understood with reference to FIG. 8 (not shown on the scale) as an example, which shows the amplitude of the analog signal (120 in FIG. 5) as a function of time. The
図６のステップ２２０では、選択された全てのサンプルの絶対値が算出され、ステップ２２５では、絶対値の平均値ａが算出される。ステップ２３０では、サンプル１０２のＭＳＣが平均値ａを基に算出される。例えば、ＭＳＣのａへの依存性は、１次方程式の形式で表現することができる。：
MSC=αa
In
MSC = αa
ここでは、αは、経験的に得られた定数である。好ましい実施の形態において、ＭＳＣのａへの依存性は、２次方程式の形式で表現することができる：
MSC=Aa2+Ba
Here, α is a constant obtained empirically. In a preferred embodiment, the dependence of MSC on a can be expressed in the form of a quadratic equation:
MSC = Aa 2 + Ba
図９を参照する。特定のヒト精子サンプルが、本発明に基づいて分析された。ＭＳＣのａaへの依存性は、以下の代数式により表現できることが判明された：
MSC=0.0047a2+0.869a (I)
Please refer to FIG. Specific human sperm samples were analyzed according to the present invention. It was found that the dependence of MSC on aa can be expressed by the following algebraic expression:
MSC = 0.0047a 2 + 0.869a (I)
小さい値のａに関しては、望ましい線形相関が存在することが判明した。式(I)を用いると、全範囲にわたる未処理の精子の相関因数（ｒ）は、0.98より大きかった。 For small values of a, it has been found that the desired linear correlation exists. Using formula (I), the correlation factor (r) of untreated sperm over the entire range was greater than 0.98.
変化する粘性を持つ処理精子サンプルの分析は、粘性を人工的に高くされた２０％グリセロールを含むサンプルと合わせて、解凍サンプル、洗浄精子、希釈サンプル（３％のクエン酸ナトリウムおよびテストヨークバッファ内）を用いて行なわれた。変化するサンプル粘性（したがって、精子速度）は、ＭＳＣと平均信号との間の相関に著しい影響を及ぼさない（すべてのケースにおいて、「ｒ」は依然として0.96以上である）ことが分かった。 Analysis of treated sperm samples with varying viscosities was combined with samples containing 20% glycerol with artificially increased viscosity, and thawed, washed sperm, diluted samples (in 3% sodium citrate and test yoke buffer) ). It was found that changing sample viscosity (and hence sperm velocity) did not significantly affect the correlation between MSC and mean signal (in all cases “r” is still greater than 0.96).
遠心性の濃縮技術を用いて、非常に広範囲の運動型ヒト精子濃度が測定された（最高２５０Ｍ／ｍｌ）が、著しい飽和度は見られなかった。最も高い範囲でのわずかな非線形性は、上述の簡単な２次多項式による補正によって、容易に修正される。 Using a centrifugal concentration technique, a very wide range of motile human sperm concentrations were measured (up to 250 M / ml), but no significant saturation was found. Slight non-linearities in the highest range are easily corrected by correction with the simple second-order polynomial described above.
また、ウシ精液の分析も行なわれ、ウシのＭＳＣと全く同様に平均化された信号との間の相関因子（ヒトに関するものと同様の手順）は、同じように優れた結果を出した。しかしながら、ウシ精液は、測定前に希釈されねばならないことに留意すべきである。これは、一般的にウシ精液のＭＳＣが、ヒトのそれより桁違いに大きいことによるものである。 Bovine semen was also analyzed, and the correlation factor between the bovine MSC and the signal averaged in exactly the same way (similar procedure as for humans) gave equally good results. However, it should be noted that bovine semen must be diluted before measurement. This is generally due to the fact that the MSC of bovine semen is orders of magnitude greater than that of humans.
（例４）
上述のとおり、平均速度はＳＭＩおよびＭＳＣの関数である。図７を参照すると、ＳＭＩはステップ２３５で算出される。これは、例えば米国特許第4,176,953号に開示されるように、またはＳＱＡ分析器を用いて行なわれる。ステップ２４０において、ＭＳＣは周知のいかなる方法によっても算出される。好ましい実施の形態においては、ＭＳＣは本発明のアルゴリズムにより算出される（上述の例３を参照）。ステップ２４５では、ＳＭＩ／ＭＳＣ比を含む代数式を用いて、平均速度ＡＶが算出される。一実施の形態において、ＡＶは、その代数式を用いて算出される：
As mentioned above, the average speed is a function of SMI and MSC. Referring to FIG. 7, the SMI is calculated at
ステップ２５０では、算出結果が表示装置１４５または１４８（図５）に表示される。
In
（例５）
本発明の分析システムと共に用いられる、映像可視化サブシステム（ＶＶＳ）の一実施の形態が図１０に示されている。精液サンプル３００は、拡散位相造影反射鏡３０５の前に配置される。サンプルは標準の実験用スライドまたはスミアに入れられるか、または本発明のサンプリング装置に入れられる。反射鏡３０５からの光は、サンプル３００、および、好ましくは２０および４０の増幅を有する切替可能な二相レンズシステム３１０を通過する。増幅された光は、次に小型のＣＣＤビデオカメラ３１５へ伝達される。結果として生じる画像は、内蔵された観察スクリーン３２０に、または、例えばＰＣ、スクリーン、印刷装置等の外部表示手段３２５に表示される。
(Example 5)
One embodiment of a video visualization subsystem (VVS) used with the analysis system of the present invention is shown in FIG.
好ましい実施の形態において、ＶＶＳは本発明のサンプリング装置、特に薄型測定コンパートメントの周辺に組み込まれる。この特徴の目的は、通常の検査手順にこの機能を取り入れるための特別な準備を不必要にすることである。単に、自動検査が行われる、精液で満たされた装置を取り、それを観察ポートに挿入すれだけである。しかしながら、ＶＶＳは本発明のサンプリング装置と共にのみ用いられるとは限られておらず、標準の実験用スライドまたはスミアと共に用いることもできる。 In a preferred embodiment, the VVS is incorporated in the periphery of the sampling device of the present invention, in particular the thin measuring compartment. The purpose of this feature is to eliminate the need for special preparation for incorporating this function into normal inspection procedures. Simply take a semen-filled device that will be automatically tested and insert it into the observation port. However, VVS is not necessarily used only with the sampling device of the present invention and can be used with standard laboratory slides or smears.
ＶＶＳの前端は、顕微鏡の前端と同様である。２つの対物レンズは、適用（２０倍または４０倍）に応じて、倍率および検査視野を最適化するために選択可能である。しかしながら、顕微鏡の接眼レンズではなく対物レンズからの画像が、小型のＣＣＤビデオカメラへ送られる。ＣＣＤの寸法（対角）は６ｍｍであり、観察スクリーンは、１００ｍｍのＬＣＤである。これにより、約１７倍の拡大映像が得られる。そしてこれにより、実質上、潜在的な全体の増幅が３４０または６８０となる。２００および４００の増幅係数が要求されるだけであるにもかかわらずこの設定が選択され、非常に小さな構成で上記の増幅に達することができる。これは、例えば小型且つ丈夫なデスクトップユニットにとって望ましい（特定の像距離を縮めることは、必要とされるところまで増幅を減少させる）。 The front end of the VVS is the same as the front end of the microscope. Two objectives can be selected to optimize magnification and inspection field depending on the application (20x or 40x). However, the image from the objective lens instead of the microscope eyepiece is sent to a small CCD video camera. The dimension (diagonal) of the CCD is 6 mm, and the observation screen is a 100 mm LCD. Thereby, an enlarged image of about 17 times is obtained. This in effect results in a potential overall amplification of 340 or 680. Even though only 200 and 400 amplification factors are required, this setting is chosen and the above amplification can be reached with very small configurations. This is desirable, for example, for small and rugged desktop units (reducing the specific image distance reduces the amplification to the extent required).
レンズおよびそれらの倍率設定は、薄型測定コンパートメント（例えば３００ミクロン）の深さ全域にわたる走査を可能にするために（対象物からレンズまでの）「作動距離」を変更できるよう選択される。これは、このような走査を必要としない通常の顕微鏡観察に相反する。通常、対象物は、深さがたった２０ミクロンのスライドに入れられ、走査または再フォーカスすることなく深さ全域を観察できるからである。 The lenses and their magnification settings are selected so that the “working distance” (from the object to the lens) can be changed to allow scanning across the depth of the thin measurement compartment (eg, 300 microns). This is contrary to normal microscopic observation that does not require such scanning. This is because the object is usually placed on a slide that is only 20 microns in depth and the entire depth can be observed without scanning or refocusing.
上述したように、２００または４００の全体増幅係数が選択される。非精子細胞（白血球、円形細胞、等）の識別が必要なとき、また、精子細胞の各種形態上の病理（凝集反応、未成熟細胞、精子の頭部または尾部の欠損、等）の調査および評価が必要なとき、４００の増幅が選択されることになる。２００の増幅は、それらが精子であるかまたは他細胞であるかにかかわらず、細胞数の計数に好適である。低い方の増幅は、より広い視野（４倍以上広い）を提供し、それによって、計数統計が改善された。画像をフリーズする可能性は、双方の適用を大いに良くする。 As described above, an overall amplification factor of 200 or 400 is selected. When it is necessary to identify non-sperm cells (white blood cells, round cells, etc.), and also to investigate pathologies of various types of sperm cells (agglutination, immature cells, sperm head or tail defects, etc.) and When an evaluation is required, 400 amplifications will be selected. An amplification of 200 is suitable for counting the number of cells, whether they are sperm or other cells. The lower amplification provided a wider field of view (more than 4 times wider), thereby improving counting statistics. The possibility of freezing the image greatly improves both applications.
ＶＶＳを用いることによって細胞計数を容易にして真に定量的な結果を得るために、好ましい実施の形態においては、目盛り付きのグリッドが、ＬＣＤ観察スクリーンに直接示される。グリッドは２ｃｍの正方形から成り、これは精液が充填された測定コンパートメントにおける、増幅前のサイズで０.１ｍｍに相当する（増幅係数は２００）。この方法により、測定コンパートメント自体に細かいグリッドを正確に記録するという、非常に困難な作業が不要となる。後者の高価な解決策は、他の幾つかの血球計数器と同様にマックラー血球計算板に盛り込まれており、使い捨てとして使用することを妨げている。本発明においては、これは不要であり、ＶＶＳによって、グリッドが観察スクリーンの一部分となることを可能とする。 In order to facilitate cell counting and obtain truly quantitative results by using VVS, in a preferred embodiment, a graduated grid is shown directly on the LCD viewing screen. The grid consists of a 2 cm square, which corresponds to a pre-amplification size of 0.1 mm (amplification factor of 200) in the measurement compartment filled with semen. This method eliminates the very difficult task of accurately recording a fine grid in the measurement compartment itself. The latter expensive solution, like some other hemocytometers, is included in the McLaugh hemocytometer, preventing it from being used as a disposable. In the present invention this is not necessary and VVS allows the grid to become part of the viewing screen.
ＶＶＳは、以下の応用に有効である：
(a) 非常に低い精子濃度の測定、
(b) 精液中の異質細胞（精子細胞以外）の識別、
(c) 任意の選択基準に従った手作業による形態分析、
(d) 精管切除術の有効性確認、
(e) 無精子症の診断、
(f) 視覚的な分析を伴うコンピュータ化された結果の実地比較、および、
(g) 様々な精液層の運動停止状態の画像のハードコピー「スナップショット」の提供。運動停止状態は、画像の動きを電子的に止めることによって達成される。
VVS is useful for the following applications:
(a) measurement of very low sperm concentration,
(b) Identification of foreign cells (other than sperm cells) in semen,
(c) manual morphological analysis according to any selection criteria;
(d) Confirmation of effectiveness of vasectomy,
(e) Diagnosis of azoospermia,
(f) Field comparison of computerized results with visual analysis, and
(g) Providing “snapshots” of hard copy images of various semen layer motions. The motion stop state is achieved by electronically stopping the movement of the image.
Claims (7)
(i) 光源と光検出器との間の透明容器に前記サンプルを配置し、前記サンプル中の精子の動きが透過光を変調し、これによってアナログ電圧信号の波形を生成することと、
(ii) その信号をサンプリングし複数の信号サンプルを生成することと、
(iii) 波形選択手順により、基準を満たす信号を選択することと、
(iv) 基準を満たす信号サンプルの各々の絶対値を算出することと、
(v) 絶対値の平均を算出することと、
(vi) 平均値ａに基づいて運動精子濃度（ＭＳＣ）を算出することと、
を有する、方法。 A method for measuring motile sperm concentration (MSC) in a semen sample, comprising:
(i) placing the sample in a transparent container between a light source and a photodetector, the movement of sperm in the sample modulating the transmitted light, thereby generating an analog voltage signal waveform;
(ii) sampling the signal to generate a plurality of signal samples;
(iii) Select a signal that meets the criteria by the waveform selection procedure;
(iv) calculating the absolute value of each signal sample that meets the criteria;
(v) calculating an average of absolute values;
(vi) calculating a motor sperm concentration (MSC) based on the mean value a;
Having a method.
(i) 米国特許第4,176,953号において定義されている、精子細胞の精子運動指数（ＳＭＩ）を取得することと、
(ii) 運動精子濃度（ＭＳＣ）を取得することと、
(iii) 精子運動指数／運動精子濃度（ＳＭＩ／ＭＳＣ）比を含む代数式を用いて平均速度（ＡＶ）を算出することと、
を有する、方法。 A method for measuring the average velocity (AV) of sperm cells, comprising:
(i) obtaining a sperm motility index (SMI) of a sperm cell as defined in US Pat. No. 4,176,953;
(ii) obtaining a motor sperm concentration (MSC);
(iii) calculating an average velocity (AV) using an algebraic equation including a sperm motility index / motility sperm concentration (SMI / MSC) ratio;
Having a method.
請求項４の方法に従って精子細胞の平均速度（ＡＶ）を測定し、前記サンプル内で平均速度（ＡＶ）＞５ミクロン／秒である精子の割合を測定する、方法。
A method for measuring the proportion of sperm in a sample with forward motility,
5. A method of measuring the average sperm cell velocity (AV) according to the method of claim 4 and measuring the percentage of sperm in the sample with an average velocity (AV)> 5 microns / second.
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Citations (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US4176953A (en) * | 1978-05-22 | 1979-12-04 | SEM Israel Limited | Method and apparatus for measuring the motility of sperm cells |
| US4603977A (en) * | 1984-10-31 | 1986-08-05 | Research Corporation | Micromotility meter |
| US4896967A (en) * | 1986-08-15 | 1990-01-30 | Hamilton-Thorn Research | Motility scanner and method |
| WO1999042557A1 (en) * | 1998-02-19 | 1999-08-26 | Introtech | Sperm analysis system |
-
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Patent Citations (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US4176953A (en) * | 1978-05-22 | 1979-12-04 | SEM Israel Limited | Method and apparatus for measuring the motility of sperm cells |
| US4603977A (en) * | 1984-10-31 | 1986-08-05 | Research Corporation | Micromotility meter |
| US4896967A (en) * | 1986-08-15 | 1990-01-30 | Hamilton-Thorn Research | Motility scanner and method |
| WO1999042557A1 (en) * | 1998-02-19 | 1999-08-26 | Introtech | Sperm analysis system |
Cited By (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2020059522A1 (en) * | 2018-09-21 | 2020-03-26 | 公立大学法人横浜市立大学 | Reproductive medicine support system |
| JPWO2020059522A1 (en) * | 2018-09-21 | 2021-08-30 | 公立大学法人横浜市立大学 | Reproductive medical support system |
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