JP2012115250A - Method for transporting live fish by use of nitrification bacteria - Google Patents

Method for transporting live fish by use of nitrification bacteria Download PDF

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Abstract

PROBLEM TO BE SOLVED: To provide a method for stably maintaining oxygen and water quality in a sealed container over a long time in transportation of live fish.SOLUTION: Fish is contained in fresh water or salt water filled with micro-nano bubbles, and oxygen is filled in the sealed container. In addition, carbon dioxide remover is used to maintain a high oxygen state, so that respiration of fish is enabled over a long period. By further inserting foam resin where nitrification bacteria is implanted, and adding copper, iron, phosphoric acid, oil and fat, or aliphatic acid, that is necessary for its activation, nitrification action is accelerated, thereby water quality is stably maintained.

Description

本発明は、活魚輸送において、魚の呼吸のための酸素供給、二酸化炭素の除去、および排泄で汚染された水質の改善を行なうための技術に関する。  TECHNICAL FIELD The present invention relates to a technique for improving the quality of water contaminated by oxygen supply, removal of carbon dioxide, and excretion in live fish transportation.

活魚輸送は寿司ブームの台頭とともに世界的な需要が増大して来ている。新鮮な魚肉を提供するには、1)活締め、2)チルド保存、3)急速凍結保存、4)極低温保存、5)活魚輸送が主な方法として利用されている。活締めは、魚の神経系を切断することにより即殺し、鮮度を保持するものである。チルド保存は凍結直前の温度で保存し、鮮度を保持する技術である。最近は冷蔵庫に常備されているものもあり、一般的な技術として定着している。急速冷凍は、凍結の際に針状の氷結晶が形成される温度帯を急速に通過することで、細胞を破壊する結晶形成を抑える技術である。このため、凍結を融解した際に細胞から滲出するドリップが少なく、鮮度が維持される。低い凍結温度はこれまで多く使われていた−20℃を遥かに越えた低温、すなわち−40℃から−60℃で保存する技術である。それぞれが従来技術を越え、新鮮さが実感出来る。  The demand for live fish transport is increasing worldwide with the rise of the sushi boom. In order to provide fresh fish meat, 1) live tightening, 2) chilled storage, 3) rapid freezing storage, 4) cryogenic storage, and 5) live fish transportation are used as the main methods. Live tightening kills fish by severing the nervous system and maintains freshness. Chilled storage is a technique for storing freshness at a temperature just before freezing. Recently, there are things that are always available in refrigerators, and they are well established as general technology. Rapid freezing is a technique that suppresses the formation of crystals that destroy cells by rapidly passing through a temperature zone in which needle-like ice crystals are formed during freezing. For this reason, there are few drips which exude from a cell when thawing freezing, and freshness is maintained. The low freezing temperature is a technique for storing at a low temperature far exceeding -20 ° C, which has been widely used so far, that is, at -40 ° C to -60 ° C. Each is beyond the conventional technology, you can feel the freshness.

保存と比べ、活魚輸送は、直前まで活かしているので最も新鮮な魚肉を提供出来る。しかしながら、輸送のために魚を容器に密閉することは多くの問題を生み、これまで十分解決されていない。
活魚輸送は、主として養殖魚に適用されるが、現在までに養殖場から都市部への確立した輸送形態がある。その技術は日々向上しているが、主要な輸送手段は活魚車もしくは活魚船である。しかしながら、両者とも浄化槽は設けられていない。活魚船は移動中に海水が船に入り込み、灌水出来る構造になっているが、活魚車には通常、通気装置だけが設置されている。
浄化槽は1)自体の占有面積が大きいこと、2)経済性を上げるため、魚の輸送密度が高く、相当な浄化能力が要求されるため、の理由により、活魚車に設置することは困難である。
Compared to preservation, live fish transportation is utilized until just before, so it can provide the freshest fish meat. However, sealing a fish in a container for transport creates many problems and has not been fully solved so far.
Live fish transportation is mainly applied to cultured fish, but to date there are established forms of transportation from farms to urban areas. The technology is improving day by day, but the main means of transportation is a live fish cart or a live fish boat. However, both have no septic tank. Live fish boats are structured to allow seawater to enter and irrigate during movement, but live fish carts usually have only a ventilation device.
It is difficult to install a septic tank in a live fish cart because of the following reasons: 1) The area occupied by the septic tank is large, and 2) The transportation density of fish is high and considerable purification capacity is required to increase economy. .

流通上、活魚車もしくは活魚船以外の活魚輸送手段は、十分確立していない。すなわち、観賞魚などの場合には、ビニール袋などに魚を入れ、空気あるいは酸素を袋に充填し、輸送する。また一部食用の活魚輸送に用いられており、水温を下げて魚の代謝を落とし、水質悪化を避けている。しかし、短時間の場合にはこのような方法でも輸送は可能であるが、遠距離で数日に渡る場合には、浄化槽がない限り水質の悪化が進み、魚は死滅してしまうので、極めて困難である。  In terms of distribution, live fish transportation means other than live fish carts or live fish boats are not well established. That is, in the case of ornamental fish, the fish is put in a plastic bag or the like, and the bag is filled with air or oxygen and transported. It is also used for transporting some live fish for edible use, lowering the water temperature to reduce fish metabolism and avoiding water quality deterioration. However, in the case of a short time, it is possible to transport by this method, but when it is several days at a long distance, the water quality will deteriorate unless there is a septic tank, and the fish will be killed. Have difficulty.

閉鎖状態で魚の排泄物が水質の悪化を招くが、その中で魚の生存に影響を及ぼすのはアンモニアである。アンモニアは毒性が強いため、陸上動物の体内ではすぐに無害な尿素や尿酸に転換され、これが尿中に排泄される。しかし、魚類は体内で生成するアンモニアの殆どを鰓から、残りを尿の成分として水中に放出している。一般に、餌を構成する蛋白質重量のうち約16%が窒素原子であるが、その約半分がアンモニアとして放出されると言われている。
アンモニアはpH、温度によってその存在様式が異なる。酸性、すなわち水素イオン濃度が高い状態にあれば、ほとんどがアンモニウムイオンに変わり、アンモニアほどの毒性はない。しかし、塩基性ではアンモニアとして存在するので、極めて有毒となる。
このアンモニアを除去出来れば、魚は生存が出来るが、魚は常時排泄をしているので、アンモニアは常に増加している。活性炭などの吸着剤で増え続けるアンモニアを除去しようとする方法もあるが、増え続けるアンモニアに対しては圧倒的大量の吸着剤を使用しなければならず、実用的ではない。これに対応出来るのは生物的浄化方法しかあり得ないが、これは一般の水槽で自然に立ち上がり、安定している浄化槽でしか見られない活性である。
In the closed state, fish excrement causes water quality deterioration, among which ammonia affects fish survival. Since ammonia is highly toxic, it is immediately converted into harmless urea and uric acid in the body of terrestrial animals, which are excreted in the urine. However, fishes release most of the ammonia produced in the body from the salmon and the rest as urine components into the water. In general, about 16% of the protein weight constituting the bait is nitrogen atoms, and it is said that about half of the weight is released as ammonia.
Ammonia exists in a different manner depending on pH and temperature. If it is acidic, that is, in a state where the hydrogen ion concentration is high, most of it is converted to ammonium ion, which is not as toxic as ammonia. However, it is extremely toxic because it exists as ammonia in basic form.
If this ammonia can be removed, the fish can survive, but since the fish is constantly excreted, the ammonia is constantly increasing. Although there is a method of trying to remove ammonia that is increasing with an adsorbent such as activated carbon, an overwhelmingly large amount of adsorbent must be used for ammonia that is increasing, which is not practical. Only biological purification methods can cope with this, but this is an activity that can be found only in a septic tank that stands up naturally in a general water tank and is stable.

水槽の浄化槽には様々な形態があるが、基本的にはポンプで水を循環させ、多孔性素材あるいは繊維を通して浄化する。多孔性素材あるいは繊維には硝化細菌が棲み付き、これら細菌の働きでアンモニアが浄化される。硝化作用を担う硝化細菌は、アンモニア態窒素を亜硝酸塩に酸化する「アンモニア酸化細菌」(あるいは亜硝酸菌とも言う)と、亜硝酸塩を硝酸塩に酸化する「亜硝酸酸化細菌」(あるいは硝酸菌とも言う)の2つの細菌群からなる。これらの細菌は二酸化炭素(CO)を唯一の炭素源とする独立栄養細菌であり、アンモニアあるいは亜硝酸を酸化することでエネルギーを獲得し、代謝を行なっている。
硝化菌はほとんどが個体表面に定着しており、定着部位から離脱した分裂細菌は約15%あるが、定着していることが活性の高さにほぼ比例している。従って、硝化菌は担体に定着したものが有効である。担体の表面積が大きい物体ほど多くの細菌が付着出来る。
There are various forms of septic tanks for water tanks, but basically water is circulated with a pump and purified through porous materials or fibers. Nitrifying bacteria are found in the porous material or fiber, and ammonia is purified by the action of these bacteria. The nitrifying bacteria responsible for nitrification are ammonia-oxidizing bacteria (or nitrite bacteria) that oxidize ammonia nitrogen to nitrite, and nitrite-oxidizing bacteria (or nitrate bacteria that oxidize nitrite to nitrate). 2) bacteria group. These bacteria are autotrophic bacteria that use carbon dioxide (CO 2 ) as their only carbon source, and oxidize ammonia or nitrite to acquire energy and perform metabolism.
Most of the nitrifying bacteria have settled on the surface of the individual, and about 15% of the dividing bacteria have detached from the colonization site, but the colonization is almost proportional to the height of activity. Therefore, nitrifying bacteria that are fixed on a carrier are effective. Objects with a larger surface area of the carrier can attach more bacteria.

本発明者らは先の「魚及び水棲動物の水槽浄化用フィルター、同浄化用フィルターの製造方法、浄化用フィルターの保存方法及び魚及び水棲動物の水槽の浄化方法」(特許文献1)、および「浄化用フィルター及びその製造法並びに同フィルターの保存法」(特許文献2)において、炭化綿(木綿の炭化物)をこの原理に基づいて提唱した。しかし、活魚輸送においては、炭化綿の粉体が次第に水に流出し、魚の鰓を目詰まりさせ、呼吸を阻害するなどの問題があった。親水性で多孔質であり、よく菌を吸着させる上、安定な素材が必要である。  The present inventors previously described a “fish and aquatic animal tank purification filter, a method for producing the purification filter, a purification filter storage method, and a fish and aquatic animal tank purification method” (Patent Document 1), and In “Purification Filter and its Manufacturing Method and Preservation Method of the Filter” (Patent Document 2), carbonized cotton (carbonized cotton) was proposed based on this principle. However, in live fish transportation, the carbonized cotton powder gradually flows out into the water, clogging the fish traps, and hindering breathing. It is hydrophilic and porous, and requires a stable material to absorb bacteria well.

魚を飼育している水槽では、時間が経過すれば自然に硝化菌が増殖し、安定化する。アンモニア態窒素が蓄積した水槽には、始めアンモニア酸化細菌が立ち上がり、アンモニア態窒素を亜硝酸態窒素に変えて行くが、十分な亜硝酸態窒素が蓄積してから、亜硝酸酸化細菌が立ち上がる。このように硝化菌が安定して活性を持つには通常数ヶ月程度かかる。
アンモニア酸化細菌の場合、生育に必要な要素が十分に揃っていれば、最少24時間で一分裂する。亜硝酸酸化菌の場合には最少48時間で一分裂する。1モルのアンモニア態窒素を酸化する時に得られるエネルギーは39.5kcalであり、また1モルの亜硝酸態窒素を酸化して得られるエネルギーは21.6kcalに過ぎず、好気的細菌がブドウ糖1モル(180g)から呼吸により得られるエネルギー、686kcalと比べると非常に少ない。この増殖速度は大腸菌などのバクテリアが1時間以内に一分裂する速度と比べると極端に遅い。この増殖の遅さが、硝化菌を利用するあらゆる場面で問題となって来た。
In the aquarium where fish are raised, nitrifying bacteria grow and stabilize naturally over time. In the water tank in which ammonia nitrogen has accumulated, ammonia-oxidizing bacteria will start up first, and ammonia nitrogen will be changed to nitrite nitrogen, but after sufficient nitrite nitrogen has accumulated, nitrite-oxidizing bacteria will start up. Thus, it usually takes several months for nitrifying bacteria to have stable activity.
In the case of ammonia-oxidizing bacteria, if the elements necessary for growth are sufficient, the cells divide in a minimum of 24 hours. In the case of nitrite oxidizing bacteria, it divides in a minimum of 48 hours. The energy obtained when oxidizing 1 mol of ammonia nitrogen is 39.5 kcal, and the energy obtained by oxidizing 1 mol of nitrite nitrogen is only 21.6 kcal. Very little compared to 686 kcal, the energy obtained by respiration from a mole (180 g). This growth rate is extremely slow compared to the rate at which bacteria such as E. coli divide within one hour. This slow growth has become a problem in all situations where nitrifying bacteria are used.

アンモニア酸化細菌には、ニトロソモナス(Nitrosomonas)属、ニトロソロブス(Nitrosolobus)属、ニトロソコッカス(Nitrosococcus)属、ニトロソスピラ(Nitrosospira)属、ニトロスピラ(Nitrospira)属などがあり、種としては非常に種類が多い。また、亜硝酸酸化細菌もニトロバクター(Nitrobacter)属以外に、ニトロコッカス(Nitrococcus)属、ニトロスピナ(Nitrospina)属が知られている。  Ammonia-oxidizing bacteria include the genus Nitrosomonas, the genus Nitrosolobus, the genus Nitrosococcus, the genus Nitrosospira, and the genus Nitrospira. . In addition to the genus Nitrobacter, nitrite-oxidizing bacteria are also known in the genus Nitrococcus and Nitrospina.

魚が代謝を行なうこととは、第一義に酸素呼吸をし、栄養物を酸化によって分解し、エネルギーを得たり、異化作用で新しい物質を生合成することである。その結果、二酸化炭素を排出する。一方、上述した水浄化の硝化菌も同様であり、酸素を非常に多く消費する。
活魚輸送で大きな問題はこの酸素供給と、二酸化炭素処理である。閉鎖されている空間では、限られた酸素しか存在しないため、魚や硝化菌に酸素が消費されて減少するばかりではなく、呼吸により生じた二酸化炭素が、残存する酸素分圧を大幅に下げて行く。
The fact that fish metabolizes is to breathe oxygen primarily, decompose nutrients by oxidation, gain energy, and biosynthesize new substances by catabolism. As a result, it emits carbon dioxide. On the other hand, the above-mentioned nitrifying bacteria for water purification are the same, and consume a great deal of oxygen.
The major problem in live fish transportation is this oxygen supply and carbon dioxide treatment. In a closed space, there is only limited oxygen, so not only is oxygen consumed and reduced by fish and nitrifying bacteria, but carbon dioxide produced by respiration significantly lowers the residual oxygen partial pressure. .

特開2005−117925JP-A-2005-117925 特開2005−87083JP-A-2005-87083 特願2010−159127Japanese Patent Application No. 2010-159127

本発明の目的は、活魚輸送用の容器内で、1)魚が長期間限られた酸素で呼吸が出来る方法、2)魚の呼吸により排出される二酸化炭素を処理する方法、3)硝化菌が活性化される酸素条件、および4)常時排泄される大量のアンモニアを無害化する方法を、提供することである。  The objectives of the present invention are: 1) a method in which the fish can breathe with limited oxygen for a long time in a container for transporting live fish; It is to provide a method for detoxifying activated oxygen conditions and 4) a large amount of ammonia that is constantly excreted.

本発明者らは先に「硝化および脱窒作用の活性化物質」(特許文献1)を提案した。本発明は、この先の発明の硝化細菌の活性化に着眼して、活魚輸送への利用を創案するものである。しかしながら、上記目的の達成にはさらに条件の付与が必要であり、鋭意研究を重ねた結果、マイクロナノバブル水と純酸素の併用、硝化菌活性化の最少物質の添加、および安定な硝化菌着床素材の使用により、上記の問題を解決できるとの知見を得た。
本発明は、この知見に基づいて、
1.高酸素濃度下、硝化菌活性化物質の存在下、硝化菌を着床させた素材の存在下、適正なpH下および水温下で、魚の呼吸を保障し、かつ硝化菌の硝化作用を直ちに発現させることにより水質を維持し、閉鎖容器内で魚を長期間生存させること、を特徴とする活魚輸送法、
2.高酸素濃度が、輸送魚の入る水相では、酸素のマイクロナノバブルに満たされた淡水あるいは海水を使用し、また気相では、密閉容器内に純酸素を封入し、さらに魚の呼吸によって生ずる二酸化炭素はポリエチレンの袋に充填した吸収剤で除き、高酸素分圧を維持すること、を特徴とする1に記載の活魚輸送法、
3.硝化菌活性化物質の組成が、1)リン酸緩衝液(淡水の場合pH7.0、海水の場合pH8.2)であり、その最終濃度が0.1から5mM、好ましくは1mMであること、2)鉄塩(II)であり、その最終濃度が150から500μg/L、好ましくは200から400μg/Lであること、3)銅塩(II)であり、その最終濃度20から200μg/L、好ましくは40から80μg/Lであること、また4)油脂あるいはその構成成分である脂肪酸が長鎖、好ましくは炭素数が12から24、より好ましくは炭素数が18であること、また好ましくは不飽和脂肪酸、あるいは不飽和脂肪酸で構成される油脂であること、最終添加量が0.1〜50μL/L、好ましくは10μL/Lであること、5)炭素源が炭酸塩硬度(KH)を指標として8以上、好ましくは12以上であること、を特徴とする、1〜2のそれぞれに記載の活魚輸送法、
4.硝化菌着床素材が、親水性樹脂の発泡体、好ましくはメラミン樹脂の発泡体(メラミンフォーム)、あるいは繊維、好ましくは炭素系繊維であることを特徴とする、1〜3のそれぞれに記載の活魚輸送法、
5.適正なpHが、淡水の場合5.0から9.2、好ましくは7.0から8.0であること、海水の場合7.5から9.0、好ましくは8.0から8.5であることを特徴とする、1〜4のそれぞれに記載の活魚輸送法、
6.適正な水温が、4℃から30℃、好ましくは10℃から25℃であることを特徴する、1〜5のそれぞれに記載の活魚輸送法、
を提供する。
The inventors of the present invention previously proposed “Activating substances for nitrification and denitrification” (Patent Document 1). The present invention is intended to devise a use for live fish transport, focusing on the activation of nitrifying bacteria of the previous invention. However, it is necessary to add more conditions to achieve the above objectives. As a result of extensive research, the combined use of micro-nano bubble water and pure oxygen, the addition of a minimum substance for nitrifying bacteria activation, and stable nitrifying implantation The knowledge that the above problem can be solved by using the material was obtained.
The present invention is based on this finding.
1. Under high oxygen concentration, in the presence of nitrifying bacteria activating substance, in the presence of nitrifying bacteria-implanted material, under proper pH and water temperature, ensure fish respiration and immediately develop nitrifying action of nitrifying bacteria A live fish transportation method characterized by maintaining water quality by allowing the fish to survive in a closed container for a long period of time,
2. In the water phase where the transported fish enters, high-oxygen concentration uses fresh water or seawater filled with micro-nano bubbles of oxygen, and in the gas phase, pure oxygen is enclosed in a sealed container, and the carbon dioxide generated by the respiration of the fish is 2. The live fish transportation method according to 1, characterized in that the high oxygen partial pressure is maintained by removing with an absorbent filled in a polyethylene bag,
3. The composition of the nitrifying bacteria activating substance is 1) a phosphate buffer (pH 7.0 for fresh water, pH 8.2 for seawater), and its final concentration is 0.1 to 5 mM, preferably 1 mM, 2) It is an iron salt (II) and its final concentration is 150 to 500 μg / L, preferably 200 to 400 μg / L, 3) It is a copper salt (II), its final concentration 20 to 200 μg / L, Preferably 40 to 80 μg / L, and 4) Fats and oils or their constituent fatty acids are long chains, preferably have 12 to 24 carbon atoms, more preferably 18 carbon atoms, and preferably not. Fats and oils composed of saturated fatty acids or unsaturated fatty acids, final addition amount is 0.1 to 50 μL / L, preferably 10 μL / L, 5) Carbon source indicates carbonate hardness (KH) To 8 or more, preferably 12 or more, and a live fish transport method according to each of 1-2,
4). The nitrifying bacteria implantation material is a foam of a hydrophilic resin, preferably a foam of melamine resin (melamine foam), or a fiber, preferably a carbon fiber, according to each of 1 to 3 Live fish transport method,
5. The appropriate pH is 5.0 to 9.2, preferably 7.0 to 8.0 for fresh water, 7.5 to 9.0 for seawater, preferably 8.0 to 8.5. The live fish transportation method according to each of 1 to 4, characterized in that:
6). The live water transportation method according to each of 1 to 5, characterized in that an appropriate water temperature is 4 ° C to 30 ° C, preferably 10 ° C to 25 ° C,
I will provide a.

本発明者は、先願(文献1)により硝化菌の活性化が可能であることを示した。しかしながら、閉鎖された容器内で、限られた酸素しかなく、かつ常時二酸化炭素が呼吸によって生産され、さらにアンモニアが排泄される環境下ではより酸素供給を十分に行わせる条件、および硝化菌をさらに活性化した条件を得る必要がある。そのために、まず酸素供給が十分可能な条件を求めた。
魚の輸送容器は、封入した水(淡水もしくは海水)が輸送中に洩れ出ないように密閉されたものを用いる。従って、魚の呼吸のための酸素は容器内に充填する。1気圧の酸素を容器に充填した場合には、酸素が水に溶け込む量は温度で決まる。例えば、1気圧、室温(25℃)であれば、溶存酸素量は約8mg/Lであり、海水の場合には約6.5mg/Lである。
The present inventor has shown that nitrifying bacteria can be activated by the prior application (Reference 1). However, in a closed container, there is limited oxygen, and conditions that allow oxygen to be sufficiently supplied in an environment where carbon dioxide is constantly produced by respiration and ammonia is excreted, and nitrifying bacteria are further reduced. It is necessary to obtain activated conditions. For this purpose, first, conditions under which oxygen can be sufficiently supplied were obtained.
The fish transport container is sealed so that the enclosed water (fresh water or seawater) does not leak during transport. Thus, oxygen for fish respiration fills the container. When a container is filled with 1 atmosphere of oxygen, the amount of oxygen dissolved in water is determined by temperature. For example, the dissolved oxygen amount is about 8 mg / L at 1 atmosphere and room temperature (25 ° C.), and about 6.5 mg / L in the case of seawater.

高酸素状態を維持するため、マイクロナノバブル水が有効であるかどうかを検討した。
マイクロナノバブル水は強制的に酸素ガスを水中に泡の形で供給し、そのサイズがマイクロ〜ナノレベルであることから、拡大化せず、小さな泡のまま長く水中に止まることが知られている。いずれは縮小して水に溶解し、溶存酸素となるが、数週間は泡のまま存在出来る。マイクロナノバブル水の溶存酸素量は測定方法によって大きく変わり、実際の溶存酸素(DO)がどの程度かを判別するのが困難である。DOメーター(隔膜電極法)で測定すると32mg/L程度にもなるが、アジ化ウィンクラー変法では20mg/L程度と測定された。いずれも環境基準測定の公定法である。
In order to maintain a high oxygen state, it was examined whether micro-nano bubble water is effective.
It is known that micro-nano bubble water forcibly supplies oxygen gas into the water in the form of bubbles, and its size is micro to nano level, so it does not expand and remains in the water for a long time with small bubbles. . Eventually, it shrinks and dissolves in water to become dissolved oxygen, but it can exist as foam for several weeks. The amount of dissolved oxygen in micro-nano bubble water varies greatly depending on the measurement method, and it is difficult to determine how much actual dissolved oxygen (DO) is. When measured with a DO meter (diaphragm electrode method), it was about 32 mg / L, but with the modified azide Winkler method, it was about 20 mg / L. Both are official methods of measuring environmental standards.

(実験1)
[マイクロナノバブル水の効果]
市販ミネラルウォーターと酸素とを、気液混合剪断方式によってマイクロナノバブル水化し、これに人工海水塩類を溶解した。魚(クサフグ、約30g)とマイクロナノバブル海水を密閉容器に入れ、空気を入れない状態で、25℃で飼育すると、45分で呼吸困難になり、横転した。この時のDOをアジ化ウィンクラー変法で測定すると、始めは20.2mg/Lであり、魚の回収後は4.64mg/Lであった。一方、同じ体重の魚を使って、人工海水と比較すると7分で呼吸困難となり、横転した。この時のDOは、始めは6.7mg/Lであり、魚の回収後は4.50mg/Lであった。時間当たりの酸素消費量を比較すると、
マイクロナノバブル人工海水:20.2−4.64mg/L/45min= 0.346mg/L/min
人工海水: 6.7−4.5mg/L/7min= 0.314mg/L/min
となった。従って、この魚の1分当たりの酸素消費量はそれぞれ約0.3mg/Lであり、ほとんど差がないことが解った。つまり、マイクロナノバブル人工海水のDOはアジ化ウィンクラーで測定した数値に従って良いことを意味している。マイクロナノバブル水は魚の呼吸を長時間補助することは出来ないが、商用的な活魚輸送の操作中に、魚封入後の酸素供給を急がなくても良く、このことは同時操作が数多く出来る利点がある。
(Experiment 1)
[Effect of micro / nano bubble water]
Commercial mineral water and oxygen were converted into micro / nano bubble water by gas-liquid mixing shearing method, and artificial sea salt was dissolved therein. When fish (Cuffoonfish, about 30 g) and micro / nano bubble seawater were placed in a sealed container and kept at 25 ° C. without air, they became difficult to breathe in 45 minutes and tumbled. When DO at this time was measured by the modified azide Winkler method, it was 20.2 mg / L at the beginning, and 4.64 mg / L after the fish was recovered. On the other hand, using the same weight fish, it became difficult to breathe in 7 minutes compared to artificial seawater, and it overturned. The DO at this time was 6.7 mg / L at the beginning and 4.50 mg / L after the fish was recovered. When comparing oxygen consumption per hour,
Micro-nano bubble artificial seawater: 20.2-4.64 mg / L / 45 min = 0.346 mg / L / min
Artificial seawater: 6.7-4.5 mg / L / 7 min = 0.314 mg / L / min
It became. Therefore, it was found that the oxygen consumption per minute of this fish was about 0.3 mg / L, and there was almost no difference. In other words, the DO of the micro / nano bubble artificial seawater means that the numerical value measured by the azide winkler is good. Micro-nano bubble water does not support the respiration of fish for a long time, but it is not necessary to urgently supply oxygen after fish entrapment during the operation of commercial live fish transportation, which is advantageous in that many simultaneous operations are possible. There is.

(実験2)
[マイクロナノバブル水の硝化菌に対する効果]
次に、好気性の硝化菌に対するマイクロナノバブル水の効果を検証した。本発明者は、硝化菌の酸素供給を十分に行なうと、硝化作用が早く立ち上がることを見いだしていたからである。また、硝化作用の活性剤は特許文献1に記載されている方法によった。すなわち、マイクロナノバブル水で作った人工海水100mLと、イオン交換水で作った人工海水100mLを150mLビーカーに入れ、それぞれに5g/Lキレート鉄(FeSO
0.5g、HSO 50μL、およびEDTA0.14gを100mLのイオン交換水に溶かしたもの)5.6μL、1g/Lキレート銅(CuSO・5HO 0.5g、HSO 50μL、およびEDTA 0.14gを100mLのイオン交換水に溶かしたもの)5.6μL、0.2Mリン酸緩衝液(pH7.0)0.15mL、50g/L炭酸水素ナトリウム1mL、オリーブオイル5μLを添加した。これに硝化菌ストック5mL、着床用素材としてメラニンフォームブロック(1cmx1cmx2cm)を入れ、アンモニアとして硫酸アンモニウムを最終5mg/Lになるように加えた。エアポンプでビーカー内に通気しながら室温(17℃)で保存した。
結果は表1に示してある。アンモニア態窒素を測定して両者の水質を比較すると、明らかに純水だけで行なうより、マイクロナノバブル水を使った方が硝化反応は早く立ち上がった。

Figure 2012115250
(Experiment 2)
[Effect of micro / nano bubble water on nitrifying bacteria]
Next, the effect of micro-nano bubble water on aerobic nitrifying bacteria was verified. This is because the present inventor has found that the nitrification action rises quickly when the oxygen supply of nitrifying bacteria is sufficiently performed. The activator for nitrification was according to the method described in Patent Document 1. That is, 100 mL of artificial seawater made with micro-nano bubble water and 100 mL of artificial seawater made with ion-exchanged water were put into a 150 mL beaker, and 5 g / L chelated iron (FeSO 4) was added to each.
0.5 g, H 2 SO 4 50 μL, and EDTA 0.14 g dissolved in 100 mL of ion-exchanged water) 5.6 μL, 1 g / L chelating copper (CuSO 4 .5H 2 O 0.5 g, H 2 SO 4 50 μL , 0.14 g of EDTA dissolved in 100 mL of ion-exchange water) 5.6 μL, 0.15 mL of 0.2 M phosphate buffer (pH 7.0), 1 mL of 50 g / L sodium bicarbonate, 5 μL of olive oil added did. To this, 5 mL of nitrifying bacteria stock, melanin foam block (1 cm × 1 cm × 2 cm) as a material for implantation were added, and ammonium sulfate was added as ammonia to a final concentration of 5 mg / L. It stored at room temperature (17 degreeC), ventilating in a beaker with an air pump.
The results are shown in Table 1. When ammonia nitrogen was measured and the water quality of both was compared, the nitrification reaction started more quickly with micro / nano bubble water than with pure water.
Figure 2012115250

(実験3)
[硝化菌の培養法]
硝化菌は別途培養が必要である。硝化菌は本発明者が自然界から採取したニトロソモナスおよびニトロバクターの混合菌を用いた。培養は(文献1)に記載されている通りに行なった。すなわち、培地には、1Lのイオン交換水に対して、NaCl 35g、KHPO 0.5g、MgSO・7HO 0.5g、0.2g/L MnCl 2.3mL、10mg/L CaCl 0.5mL、0.05mg/L NaMoO・2HO 0.5mL、0.05mg/LZnSO・7HO 0.5mL、0.001mg/L CoCl・6HO 0.5mL、5g/Lキレート鉄280μL、および1g/Lキレート銅280μL、を溶解し、50g/LNaHCO 2mLを添加し、pHを塩酸で8.2に調製した。この培地6Lに硝化菌を植え、(NHSOを最終0.2g/Lになるように加え、30℃で、循環ポンプで循環させながらアンモニア、亜硝酸、硝酸が検出されなくなるまで培養した。
(NHSOを再び加え、完全に硝化されるまで培養を続け、これを4回繰り返し、ストック菌とした。
メラミンフォームは厚さ2cm、縦16cm、横8cmのシートを循環ポンプの中に入れ、硝化菌の着床を行なった。循環しながら硝化菌は次第にメラミンフォームに着床を始め、活性が立ち上がる。着床したメラミンフォームはカッターナイフなどで、ブロックに切り、使用した。
(Experiment 3)
[Cultivation method of nitrifying bacteria]
Nitrifying bacteria must be cultured separately. As the nitrifying bacteria, a mixed bacterium of nitrosomonas and nitrobacter collected from the natural world by the present inventor was used. The culture was performed as described in (Reference 1). That is, for the medium, NaCl 35 g, K 2 HPO 4 0.5 g, MgSO 4 .7H 2 O 0.5 g, 0.2 g / L MnCl 2 2.3 mL, 10 mg / L with respect to 1 L of ion-exchanged water. CaCl 2 0.5 mL, 0.05 mg / L Na 2 MoO 4 .2H 2 O 0.5 mL, 0.05 mg / LZnSO 4 .7H 2 O 0.5 mL, 0.001 mg / L CoCl 2 .6H 2 O 0. 5 mL, 5 g / L chelated iron 280 μL, and 1 g / L chelated copper 280 μL were dissolved, 50 g / L NaHCO 3 2 mL was added, and the pH was adjusted to 8.2 with hydrochloric acid. Nitrifying bacteria are planted in 6 L of this medium, (NH 4 ) 2 SO 4 is added so that the final concentration is 0.2 g / L, and it is circulated with a circulation pump at 30 ° C. until ammonia, nitrous acid and nitric acid are not detected. Cultured.
(NH 4 ) 2 SO 4 was added again, and the culture was continued until it was completely nitrified. This was repeated four times to obtain stock bacteria.
The melamine foam was placed in a circulation pump with a sheet having a thickness of 2 cm, a length of 16 cm, and a width of 8 cm, and nitrifying bacteria were implanted. While circulating, nitrifying bacteria gradually begin to implant into melamine foam, and the activity rises. The melamine foam on the floor was cut into blocks with a cutter knife and used.

実施例及び比較例Examples and Comparative Examples

次に、本発明の実施例及び比較例について説明する。なお、以下に示す実施例は、本発明の理解を容易にするためのものであって、本発明はこれらの実施例に制限されるものではない。すなわち、本発明の技術思想に基づく、他の例又は変形は、当然本発明に包含されるものである。  Next, examples and comparative examples of the present invention will be described. In addition, the Example shown below is for making an understanding of this invention easy, and this invention is not restrict | limited to these Examples. That is, other examples or modifications based on the technical idea of the present invention are naturally included in the present invention.

[二酸化炭素除去剤の検討]
ビニール袋にクサフグ(Takifugu niphobles)(体重約30g)を人工海水あるいはマイクロナノバブル人工海水と共に入れ、酸素を封入し、室温で保存した時に、二酸化炭素除去剤を入れた場合と、入れなかった場合とで、生存時間の差がどの程度になるか比較検証した。人工海水またはマイクロナノバブル人工海水400mLに実験2の要領で、鉄、銅、リン酸緩衝液(pH7.0)をそれぞれ添加し、さらにKH=10になるようNaHCOを約1mLそれぞれ添加後、pHは塩酸で調整しpH8.2とした。
硝酸菌は、実験3で記載した要領でメラミンフォームに着床し、このブロック(2cmx2cmx2cm)にオリーブオイル2μLを染み込ませた後、それぞれのビニール袋に入れ、一方はそのまま(A)、一方は二酸化炭素除去剤(ソーダ石灰(水:約20%、水酸化カルシウム:約75%、水酸化ナトリウム:約3%、水酸化カリウム:約1%))10gをポリエチレン袋に入れ、熱シールし密閉した(B)。用いたポリエチレン袋は、低密度ポリエチレンであり、密度は0.90〜0.925である。酸素ガス、二酸化炭素などの無機ガスはよく通すが、水分子はほとんど通さない。次いで、酸素を封入したが、それぞれ約800mLであった。圧力はほぼ140%前後であった。なお、海水と硝化菌着床メラミンフォームを入れただけのコントロール(C)も比較のために用意した。
[Examination of carbon dioxide removal agent]
When Takifugu niphobles (weight approximately 30g) is put together with artificial seawater or micro-nanobubble artificial seawater in a plastic bag, oxygen is sealed, and when stored at room temperature, with or without carbon dioxide removal agent Then, we verified the difference in survival time. Add iron, copper, and phosphate buffer solution (pH 7.0) to 400 mL of artificial seawater or micro-nanobubble artificial seawater as described in Experiment 2, and then add about 1 mL of NaHCO 3 so that KH = 10. Was adjusted to pH 8.2 with hydrochloric acid.
Nitric acid bacteria are placed on melamine foam as described in Experiment 3, and 2 μL of olive oil is infiltrated into this block (2 cm × 2 cm × 2 cm), and then put in each plastic bag, one as it is (A), and one is carbon dioxide. 10 g of carbon removing agent (soda lime (water: about 20%, calcium hydroxide: about 75%, sodium hydroxide: about 3%, potassium hydroxide: about 1%)) was put in a polyethylene bag, heat sealed and sealed. (B). The polyethylene bag used is low density polyethylene, and the density is 0.90 to 0.925. Oxygen gas, carbon dioxide and other inorganic gases pass well, but water molecules hardly pass. Then, oxygen was enclosed, and each was about 800 mL. The pressure was approximately 140%. A control (C) in which seawater and nitrifying melamine foam were added was also prepared for comparison.

室温(25℃)のまま保存し、生存を比較した。結果を表2に示したが、(B)は67.5時間まで生存した。飼育後の人工海水のアンモニア態窒素濃度はほぼ0になっており、硝化菌のうちアンモニア酸化菌が極めてよく活性化されていることが判った。一方、亜硝酸態窒素はやや高いが生存を危うくする濃度では無く、亜硝酸酸化菌も同様に活性化されていた。(A)と(B)の違いは二酸化炭素の吸収があったか、無かったであるので、二酸化炭素の蓄積した(A)は、二酸化炭素によって酸素分圧が低下し、魚への酸素供給も十分行なわれず、また硝化菌も十分活性化されなかったことを示している。pHも死亡した順に低くなっており、水質悪化と比例していた。海水だけのコントロールでは、活性化剤が無いために、硝化菌の活性が見られず、高いアンモニア態窒素が蓄積し、亜硝酸態窒素も硝酸態窒素も検出されなかった。

Figure 2012115250
Stored at room temperature (25 ° C.) and compared for survival. The results are shown in Table 2, and (B) survived up to 67.5 hours. The concentration of ammonia nitrogen in the artificial seawater after breeding was almost 0, and it was found that among the nitrifying bacteria, ammonia oxidizing bacteria were very well activated. On the other hand, nitrite nitrogen was slightly higher but not at a concentration that would endanger survival, and nitrite-oxidizing bacteria were also activated. The difference between (A) and (B) was whether carbon dioxide was absorbed or not, so in (A) where carbon dioxide accumulated, the oxygen partial pressure was lowered by carbon dioxide, and oxygen supply to fish was sufficient It was not performed, and the nitrifying bacteria were not fully activated. The pH also decreased in the order of death, and was proportional to the deterioration of water quality. In the control using only seawater, since there was no activator, the activity of nitrifying bacteria was not observed, high ammonia nitrogen was accumulated, and neither nitrite nitrogen nor nitrate nitrogen was detected.
Figure 2012115250

[エゾメバルによる室温保存実験]
実施例1で保存条件が整ったため、別の魚でその効果を確認した。用いた魚はエゾメバル(Sebastes taczanowskii)、体重約60gであった。ナノバブル人工海水800mLに対し、実施例1(B)の要領で、全てを添加し、酸素を充填した。同じものを3組用意した。それぞれ酸素量は2Lであった。室温で保存し、その生存を調べた。結果は表3に示してある。いずれも70時間袋の中で生存し、回収後も生存した。アンモニア態窒素も実施例1と同様の傾向を示し、平均で0.3mg/Lであり、亜硝酸態窒素は平均で4.3mg/L、硝酸態窒素は平均で7.1mg/Lであった。

Figure 2012115250
[Experiment at room temperature using ezomeval]
Since the storage conditions were prepared in Example 1, the effect was confirmed with another fish. The fish used was Sebastes taczanowski and weighed about 60 g. All were added and filled with oxygen in the manner of Example 1 (B) to 800 mL of nanobubble artificial seawater. Three sets of the same thing were prepared. Each oxygen amount was 2L. It was stored at room temperature and examined for its survival. The results are shown in Table 3. All survived in the bag for 70 hours and survived after collection. Ammonia nitrogen also showed the same tendency as in Example 1, with an average of 0.3 mg / L, nitrite nitrogen with an average of 4.3 mg / L, and nitrate nitrogen with an average of 7.1 mg / L. It was.
Figure 2012115250

[エゾメバルによる低温保存実験]
実際の輸送の場合には、室温(通常25℃)を維持するのは困難である。季節はもとより、夏期の場合、日照がある日では例えば、トラック荷台の温度が40℃を越えることがある。また、逆に冬期では、寒冷地では氷点下になることもあり、いずれも活魚には好ましい温度ではない。しかしながら、低温での輸送は、冷蔵車の利用により確立している。この状況を鑑み、低温での保存実験を行なった。実施例2と同様の魚と手順で行なった。但し、保存は冷蔵庫内で行なった(平均4℃)。結果は表4に示してある。いずれも170時間生存し、3尾中1尾は死亡したが、それはさらに3時間保存を続け、その結果酸欠になったためである。しかしながら、水質は極めてよく維持されていることが判った。

Figure 2012115250
[Low-temperature storage experiment by ezomebaru]
In the case of actual transportation, it is difficult to maintain room temperature (usually 25 ° C.). In the summer season as well as the season, the temperature of the truck bed may exceed 40 ° C. on a day with sunshine. On the other hand, in winter, the temperature may be below freezing in cold regions, which is not a preferable temperature for live fish. However, transportation at low temperatures has been established through the use of refrigerated vehicles. In view of this situation, a low temperature storage experiment was conducted. The same fish and procedure as in Example 2 were used. However, storage was performed in a refrigerator (average 4 ° C.). The results are shown in Table 4. All survived for 170 hours, and one of the three died, because of continued storage for an additional 3 hours, resulting in a lack of oxygen. However, it was found that the water quality was maintained very well.
Figure 2012115250

発明の効果The invention's effect

本発明の活魚輸送法は、十分な酸素供給量と、硝化菌の活性化を図っており、輸送期間中に素早く水質を浄化し、魚の長期に渡る輸送を安定して行なうことが出来る。このため、個別の魚輸送が可能になり、全国的な宅配便を利用することが可能となるばかりか、世界を対象にグローバルな輸送が可能となる。室温では3日間の輸送が可能であり、冷蔵では約1週間の輸送が可能である。長期輸送、保存が可能であるため、幅広く活魚輸送に利用することが可能である。
〔図表の簡単な説明〕
The method for transporting live fish of the present invention aims at sufficient oxygen supply and activation of nitrifying bacteria, and can quickly purify water during the transport period and stably transport fish for a long period of time. For this reason, individual fish transportation becomes possible, and not only it becomes possible to use a courier nationwide, but also global transportation is possible for the world. It can be transported for 3 days at room temperature, and can be transported for about 1 week in refrigeration. Since it can be transported and stored for a long time, it can be widely used for transporting live fish.
[Brief description of chart]


〔表1〕
マイクロナノバブル水の魚に対する効果
硝化菌の活性を、酸素のマイクロナノバブル水で調製した人工海水と、イオン交換水で調製した人工海水とで比較した表である。
〔表2〕
トラフグによる二酸化炭素除去剤の検討
二酸化炭素除去剤を使用した場合としなかった場合とで魚の生存を比較した表である。〔表3〕
エゾメバルによる室温保存実験
エゾメバルを用いて、室温で保存実験を行なった結果を表わした表である。
〔表3〕
エゾメバルによる低温保存実験
エゾメバルを用いて、低温で保存実験を行なった結果を表わした表である。

[Table 1]
Effect of Micro-Nano Bubble Water on Fish Tables comparing the activity of nitrifying bacteria between artificial seawater prepared with oxygen micro-nano bubble water and artificial seawater prepared with ion-exchanged water.
[Table 2]
Examination of carbon dioxide removal agent by trough It is a table comparing the survival of fish with and without carbon dioxide removal agent. [Table 3]
It is the table | surface showing the result of having performed the storage experiment at room temperature using the Esomeval.
[Table 3]
It is a table showing the results of a low temperature storage experiment using ezomebaru.

Claims (6)

高酸素濃度下、硝化菌活性化物質の存在下、硝化菌を着床させた素材の存在下、適正なpH下および水温下で、魚の呼吸を保障し、かつ硝化菌の硝化作用を直ちに発現させることにより水質を維持し、閉鎖容器内で魚を長期間生存させること、を特徴とする活魚輸送法。  Under high oxygen concentration, in the presence of nitrifying bacteria activating substance, in the presence of nitrifying bacteria-implanted material, under proper pH and water temperature, ensure fish respiration and immediately develop nitrifying action of nitrifying bacteria A live fish transport method characterized by maintaining water quality by allowing the fish to survive in a closed container for a long period of time. 高酸素濃度が、輸送魚の入る水相では、酸素のマイクロナノバブルに満たされた淡水あるいは海水を使用し、また気相では、密閉容器内に純酸素を封入し、さらに魚の呼吸によって生ずる二酸化炭素はポリエチレンの袋に充填した吸収剤で除き、高酸素分圧を維持すること、を特徴とする請求項1に記載の活魚輸送法。  In the water phase where the transported fish enters, high-oxygen concentration uses fresh water or seawater filled with micro-nano bubbles of oxygen, and in the gas phase, pure oxygen is enclosed in a sealed container, and the carbon dioxide generated by the respiration of the fish is 2. The live fish transportation method according to claim 1, wherein a high oxygen partial pressure is maintained except for an absorbent filled in a polyethylene bag. 硝化菌活性化物質の組成が、1)リン酸緩衝液(淡水の場合pH7.0、海水の場合pH8.2)であり、その最終濃度が0.1から5mM、好ましくは1mMであること、2)鉄塩(II)であり、その最終濃度が150から500μg/L、好ましくは200から400μg/Lであること、3)銅塩(II)であり、その最終濃度20から200μg/L、好ましくは40から80μg/Lであること、また4)油脂あるいはその構成成分である脂肪酸が長鎖、好ましくは炭素数が12から24、より好ましくは炭素数が18であること、また好ましくは不飽和脂肪酸、あるいは不飽和脂肪酸で構成される油脂であること、最終添加量が0.1〜50μL/L、好ましくは10μL/Lであること、5)炭素源が炭酸塩硬度(KH)を指標として8以上、好ましくは12以上であること、を特徴とする、請求項1〜2のそれぞれに記載の活魚輸送法。  The composition of the nitrifying bacteria activating substance is 1) a phosphate buffer (pH 7.0 for fresh water, pH 8.2 for seawater), and its final concentration is 0.1 to 5 mM, preferably 1 mM, 2) It is an iron salt (II) and its final concentration is 150 to 500 μg / L, preferably 200 to 400 μg / L, 3) It is a copper salt (II), its final concentration 20 to 200 μg / L, Preferably 40 to 80 μg / L, and 4) Fats and oils or their constituent fatty acids are long chains, preferably have 12 to 24 carbon atoms, more preferably 18 carbon atoms, and preferably not. Fats and oils composed of saturated fatty acids or unsaturated fatty acids, final addition amount is 0.1 to 50 μL / L, preferably 10 μL / L, 5) Carbon source indicates carbonate hardness (KH) To 8 or more, preferably 12 or more, and a live fish transport method according to each of claims 1-2. 硝化菌着床素材が、親水性樹脂の発泡体、好ましくはメラミン樹脂の発泡体(メラミンフォーム)、あるいは繊維、好ましくは炭素系繊維であることを特徴とする、請求項1〜3のそれぞれに記載の活魚輸送法。  Each of claims 1 to 3, characterized in that the nitrifying bacteria implantation material is a hydrophilic resin foam, preferably a melamine resin foam (melamine foam), or a fiber, preferably a carbon fiber. The live fish transportation method described. 適正なpHが、淡水の場合5.0から9.2、好ましくは7.0から8.0であること、海水の場合7.5から9.0、好ましくは8.0から8.5であることを特徴とする、請求項1〜4のそれぞれに記載の活魚輸送法。  The appropriate pH is 5.0 to 9.2, preferably 7.0 to 8.0 for fresh water, 7.5 to 9.0 for seawater, preferably 8.0 to 8.5. The live fish transport method according to claim 1, wherein the live fish transport method is provided. 適正な水温が、4℃から30℃、好ましくは10℃から25℃であることを特徴する、請求項1〜5のそれぞれに記載の活魚輸送法。  The method for transporting live fish according to each of claims 1 to 5, wherein an appropriate water temperature is 4 ° C to 30 ° C, preferably 10 ° C to 25 ° C.
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Cited By (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN103529795A (en) * 2013-10-18 2014-01-22 上海锦江电子技术工程有限公司 Logistic monitoring equipment and method for fresh and live aquatic product
JP2015104337A (en) * 2013-11-29 2015-06-08 株式会社羽根 Live fish transport container, live fish transport system, and live fish transporting method
WO2017126088A1 (en) * 2016-01-21 2017-07-27 憲司 久木野 Fish hatchery tank system having function to adjust dissolved oxygen by highly efficient oxygen supply
WO2018151282A1 (en) * 2017-02-17 2018-08-23 日本水産株式会社 Aquaculture system and production method for aquatic organisms
JP2020127383A (en) * 2019-02-08 2020-08-27 学校法人 東洋大学 Culture method, culture apparatus, waste water treatment method, and waste water treatment apparatus

Cited By (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN103529795A (en) * 2013-10-18 2014-01-22 上海锦江电子技术工程有限公司 Logistic monitoring equipment and method for fresh and live aquatic product
JP2015104337A (en) * 2013-11-29 2015-06-08 株式会社羽根 Live fish transport container, live fish transport system, and live fish transporting method
WO2017126088A1 (en) * 2016-01-21 2017-07-27 憲司 久木野 Fish hatchery tank system having function to adjust dissolved oxygen by highly efficient oxygen supply
WO2018151282A1 (en) * 2017-02-17 2018-08-23 日本水産株式会社 Aquaculture system and production method for aquatic organisms
KR20190111055A (en) * 2017-02-17 2019-10-01 닛폰 스이산 가부시키가이샤 Aquaculture system and production method of aquatic organisms
JPWO2018151282A1 (en) * 2017-02-17 2019-12-12 日本水産株式会社 Aquaculture system and aquatic product production method
JP7126957B2 (en) 2017-02-17 2022-08-29 日本水産株式会社 Aquaculture system and method for producing aquatic products
KR102655729B1 (en) 2017-02-17 2024-04-09 가부시키가이샤 닛스이 Aquaculture systems and production methods of aquatic organisms
JP2020127383A (en) * 2019-02-08 2020-08-27 学校法人 東洋大学 Culture method, culture apparatus, waste water treatment method, and waste water treatment apparatus

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