JP2009153490A - Method for separating and refining agar oligosaccharide - Google Patents
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Abstract
Description
本発明は、寒天由来のオリゴ糖を分離精製する方法に関するものであって、より詳しくは、β−アガラーゼを使用して生産された寒天オリゴ糖からネオアガロテトラオース（４糖）とネオアガロヘキサオース（６糖）とを効率的に分離精製する方法に関する。 The present invention relates to a method for separating and purifying oligosaccharides derived from agar, and more specifically, neoagarotetraose (tetrasaccharide) and neoaa from agar oligosaccharides produced using β-agarase. The present invention relates to a method for efficiently separating and purifying gallohexaose (hexasaccharide).
天然に存在するヘテロ多糖類が多く知られている。この内、海藻由来のものとしては寒天、カラギーナン、アルギン酸などが知られており、増粘剤やゲル化剤として特に食品や化粧品の素材として広く利用されている。
寒天の主成分であるアガロースから得られる寒天オリゴ糖には、２糖、４糖、６糖等が混在している。近年、これらの寒天オリゴ糖には、抗炎症作用、ガン抑制機能や抗酸化作用、皮膚の美白・保湿効果など優れた生理活性が存在することが報告されている。
Many naturally occurring heteropolysaccharides are known. Among these, agar, carrageenan, alginic acid and the like are known as those derived from seaweed, and are widely used as materials for foods and cosmetics, particularly as thickeners and gelling agents.
The agar oligosaccharide obtained from agarose which is the main component of agar contains disaccharides, tetrasaccharides, hexasaccharides and the like. In recent years, it has been reported that these agar oligosaccharides have excellent physiological activities such as anti-inflammatory action, cancer suppressing function and antioxidant action, skin whitening and moisturizing effect.
寒天オリゴ糖の生産方法として、寒天を酸によって化学的に加水分解を行う方法や、寒天を市販のアガラーゼを用いて分解し、生産する方法が知られている。アガラーゼはα−アガラーゼとβアガラーゼに分類され、分解様式が夫々異なる。α−アガラーゼはアガロース中のα−１，３結合を切断し、アガロオリゴ糖を生産する。一方、β−アガラーゼは、β−１，４結合を切断し、ネオアガロオリゴ糖を生産する。 Known methods for producing agar oligosaccharides include a method in which agar is chemically hydrolyzed with an acid, and a method in which agar is decomposed and produced using a commercially available agarase. Agarase is classified into α-agarase and β-agarase, and the degradation modes are different. α-Agarase cleaves α-1,3 bonds in agarose to produce agarooligosaccharides. On the other hand, β-agarase cleaves β-1,4 bonds to produce neoagaro-oligosaccharides.
しかし、何れの方法によって寒天オリゴ糖が得られたとしても、単糖を含めて複数の糖の混合物（６糖、４糖、２糖類）が調製される結果となり、単一の寒天オリゴ糖を大量生産することは不可能であった。これまで、２糖、４糖、６糖等の個々の寒天オリゴ糖の物理的、生理化学的特性については研究されていない。単一の寒天オリゴ糖を得ることができれば、２糖、４糖、６糖夫々について生理化学的特性について評価を行うことができ、上述した優れた生理活性が２糖、４等、６糖の何れに存在するのかを特定することができる。 However, even if an agar oligosaccharide is obtained by any method, a mixture of a plurality of sugars including a monosaccharide (hexasaccharide, tetrasaccharide, disaccharide) is prepared. Mass production was impossible. So far, physical and physiochemical properties of individual agar oligosaccharides such as disaccharides, tetrasaccharides, and hexasaccharides have not been studied. If a single agar oligosaccharide can be obtained, it is possible to evaluate the physiochemical properties of each of disaccharides, tetrasaccharides, and hexasaccharides. It is possible to specify where it exists.
単一の寒天オリゴ糖を得るためには、クロマト分画などを用いた単離・精製の工程を行うことが考えられる。しかし、クロマト分画の工程は、極めて煩雑なものであって、簡易に大量生産をすることができないという問題が生じている。２糖、４糖、６糖夫々について生理化学的特性について評価するためには、夫々の単一の寒天オリゴ糖が大量に必要となり、より簡易な精製方法が開発されることが望まれている。 In order to obtain a single agar oligosaccharide, it is conceivable to carry out an isolation / purification process using chromatographic fractionation. However, the chromatographic fractionation process is extremely complicated, and there is a problem that mass production cannot be easily performed. In order to evaluate the physiochemical properties of each of the disaccharide, tetrasaccharide, and hexasaccharide, a large amount of each single agar oligosaccharide is required, and it is desired that a simpler purification method be developed. .
単一の寒天オリゴ糖を得る方法として、特許文献１には、セルビプリオ属に属する新規微生物に寒天を分解させてネオアガロビオース（２糖）を生産し、さらに硫酸アンモニウム若しくは塩化アンモニウム処理を施してネオアガロビオース（２糖）を単糖に分解する酵素の活性を選択的に低下させることにより、単一の寒天オリゴ糖としてネオアガロビオース（２糖）のみを生産することを可能とする方法が提案されている。
この方法により、寒天を分解して得られる寒天オリゴ糖のうち、２糖であるネオアガロビオースのみを生産することが可能となっている。
As a method for obtaining a single agar oligosaccharide,
According to this method, it is possible to produce only neoagarobiose which is a disaccharide among agar oligosaccharides obtained by degrading agar.
しかしながら、この方法では、他の寒天オリゴ糖であるネオアガロテトラオース（４糖）若しくはネオアガロヘキサオース（６糖）を単一のオリゴ糖として生産することはできない。ネオアガロテトラオース（４糖）とネオアガロヘキサオース（６糖）とを効率よく分離することができれば、ネオアガロテトラオース（４糖）とネオアガロヘキサオース（６糖）夫々ついて生理化学的特性について評価することができ、生理生化学的特性評価に応じた夫々の単一のオリゴ糖として大量生産することができる。 However, in this method, other agar oligosaccharides such as neoagarotetraose (tetrasaccharide) or neoagarohexaose (hexasaccharide) cannot be produced as a single oligosaccharide. If neo-agarotetraose (tetrasaccharide) and neoagarohexaose (hexasaccharide) can be separated efficiently, neoagarotetraose (tetrasaccharide) and neoagarohexaose (hexasaccharide) It can be evaluated for physiochemical properties and can be mass-produced as each single oligosaccharide according to the physiobiochemical property evaluation.
本発明の課題は、β−アガラーゼによる寒天オリゴ糖の生産において、生産された寒天オリゴ糖からネオアガロテトラオース（４糖）とネオアガロヘキサオース（６糖）とを簡単に分離精製する方法を提供することである。 An object of the present invention is to easily separate and purify neoagarotetraose (tetrasaccharide) and neoagarohexaose (hexasaccharide) from the produced agar oligosaccharide in the production of agar oligosaccharide by β-agarase. Is to provide a method.
本発明者らは、寒天をβ−アガラーゼによって分解することによって生産されたオリゴ糖を、水分が含有された有機溶媒に溶解させることによって４糖であるネオアガロテトラオースを選択的に抽出することができることを見出し、本発明に至った。 The present inventors selectively extract neo-agarotetraose, which is a tetrasaccharide, by dissolving an oligosaccharide produced by degrading agar with β-agarase in an organic solvent containing water. The present inventors have found that it is possible to achieve the present invention.
請求項１に係る発明は、基質として使用される寒天に、寒天分解酵素として使用されるβ−アガラーゼを添加して生産された寒天オリゴ糖を分離精製する方法であって、前記寒天オリゴ糖を水分が含有された有機溶媒に溶解させ、残渣を分離した後、前記有機溶媒を乾燥させることによってネオアガロテトラオースを選択的に分離、精製することを特徴とする寒天オリゴ糖の分離精製方法に関する。
The invention according to
請求項２に係る発明は、前記β−アガラーゼが、β−アガラーゼＩであることを特徴とする請求項１に記載の寒天オリゴ糖の分離精製方法に関する。
The invention according to
請求項３に係る発明は、前記有機溶媒が、アセトン又はアセトニトリルであることを特徴とする請求項１または２に記載の寒天オリゴ糖の分離精製方法に関する。
The invention according to
請求項４に係る発明は、前記有機溶媒に、さらに塩化ナトリウムを添加することを特徴とする請求項１〜３いずれかに記載の寒天オリゴ糖の分離精製方法に関する。
The invention according to
請求項５に係る発明は、前記有機溶媒に、さらにフェニルホウ酸を添加することを特徴とする請求項１〜４いずれかに記載の寒天オリゴ糖の分離精製方法に関する。
The invention according to
請求項１に係る発明によれば、有機溶媒に水分が含有されることから、寒天分解酵素としてβ−アガラーゼを使用して生産された寒天オリゴ糖を有機溶媒に溶解させることができる。寒天オリゴ糖を、有機溶媒に溶解させることから、ネオアガロヘキサオース（６糖）よりもネオアガロテトラオース（４糖）の方が有機溶媒に溶解しやすいため、有機溶媒中にネオアガロテトラオース（４糖）を選択的に溶解させることができる。ネオアガロテトラオース（４糖）が選択的に溶解された有機溶媒を乾燥させることにより、ネオアガロテトラオース（４糖）を精製することができる。また、有機溶媒に溶解しなかった残渣からネオアガロヘキサオース（６糖）を得ることができる。
According to the invention of
請求項２に係る発明によれば、前記β−アガラーゼがβ−アガラーゼＩであることから、寒天を基質として使用するため、主にネオアガロテトラオース（４糖）を生産することができ、ネオアガロビオース（２糖）の生産を少なくすることができる。
According to the invention of
請求項３に係る発明によれば、前記有機溶媒がアセトン又はアセトニトリルであることから、有機溶媒中にネオアガロヘキサオース（６糖）に対してネオアガロテトラオース（４糖）をより選択的に溶解させることができ、有機溶媒に溶解しなかった残渣には、より多くのネオアガロヘキサオース（６糖）を残存させることができる。
According to the invention of
請求項４に係る発明によれば、前記有機溶媒にさらに塩化ナトリウムを添加することから、有機溶媒中にネオアガロヘキサオース（６糖）に対してネオアガロテトラオース（４糖）をより選択的に溶解させることができ、有機溶媒に溶解しなかった残渣には、より多くのネオアガロヘキサオース（６糖）を残存させることができる。
According to the invention according to
請求項５に係る発明によれば、前記有機溶媒に、さらにフェニルホウ酸を添加することから、ネオアガロヘキサオース（６糖）に対するネオアガロテトラオース（４糖）の濃度比を維持しつつ、有機溶媒中に溶解する糖濃度を上昇させることができ、より効率的にネオアガロテトラオース（４糖）を分離精製することができる。
According to the invention according to
本発明に係る寒天オリゴ糖の分離精製方法は、寒天を基質とし、寒天分解酵素としてβ−アガラーゼを使用することにより寒天を分解し、生産された寒天オリゴ糖を分離精製する方法である。分解、生産された当該オリゴ糖を水分が含有された有機溶媒に溶解させることよってネオアガロテトラオース（４糖）が選択的に有機溶媒に溶解し、当該有機溶媒を減圧乾燥させることにより、ネオアガロテトラオース（４糖）を選択的に得ることができる。また、有機溶媒溶解後の残渣物からネオアガロヘキサオース（６糖）を得ることができる。 The method for separating and purifying agar oligosaccharides according to the present invention is a method for separating and purifying produced agar oligosaccharides by degrading agar by using agar as a substrate and using β-agarase as an agar-degrading enzyme. By dissolving the oligosaccharide thus decomposed and produced in an organic solvent containing water, neoagarotetraose (tetrasaccharide) is selectively dissolved in the organic solvent, and the organic solvent is dried under reduced pressure, Neoagarotetraose (tetrasaccharide) can be selectively obtained. Moreover, neoagarohexaose (hexasaccharide) can be obtained from the residue after dissolving the organic solvent.
寒天は、ガラクトースを基本骨格とする多糖類であって、中性のゲル化能に富むアガロースとイオン性のゲル化能を持たないアガロペクチンとからなる。本発明では、テングサ、オゴノリ、オバクサ、イタニグサ等を原料とした寒天を使用することができる。一般に市販されている寒天を使用することができ、粉末状、フレーク状、固形状、角寒天、糸寒天等、その他種々の形状ものを使用することができる。 Agar is a polysaccharide having galactose as a basic skeleton, and is composed of agarose rich in neutral gelling ability and agaropectin not having ionic gelling ability. In the present invention, agar made from a proboscis, a primrose, a duckweed, a crabs and the like can be used. Commercially available agar can be used, and various other shapes such as powder, flakes, solid, square agar, and thread agar can be used.
本発明において寒天分解酵素として使用されるβ−アガラーゼは、β−１，４結合を切断し、ネオアガロオリゴ糖を生産する。βアガラーゼにはβ−アガラーゼＩとＩＩがあり、双方使用することが可能であるが、βアガラーゼＩを使用することが好ましい。β−アガラーゼＩＩは寒天を基質とした場合、主としてネオアガロビオース（２糖）が得られ、ネオアガロテトラオース（４糖）は少量しか得られないが、β−アガラーゼＩは寒天を基質とした場合、主としてネオアガロテトラオース（４糖）を得ることができ、ネオアガロビオース（２糖）は少量しか得られないからである。本発明においては、Pseudomonas atlantica由来のβ−アガラーゼＩを使用することができる。 In the present invention, β-agarase used as an agar-degrading enzyme cleaves β-1,4 bonds to produce neoagaro-oligosaccharides. β-Agarase includes β-Agarase I and II, and both can be used, but β-Agarase I is preferably used. When agar is used as a substrate for β-agarase II, neoagarobiose (disaccharide) is mainly obtained, and only a small amount of neoagarotetraose (tetrasaccharide) is obtained, while β-agarase I is a substrate for agar. This is because neoagarotetraose (tetrasaccharide) can be obtained mainly, and only a small amount of neoagarobiose (disaccharide) can be obtained. In the present invention, β-agarase I derived from Pseudomonas atlantica can be used.
本発明で使用可能な有機溶媒としては、鎖式炭化水素、アルコール類、エステル類、ケトン類、エーテル類、含窒素化合物類、芳香族炭化水素等が挙げられる。本発明においては、溶媒の回収再利用も考慮して揮発性がある程度高い溶媒を用いることが好ましく、例えばアセトン、アセトニトリル、ブタノール、２メチル２ブタノールが好ましく用いられる。さらには、アセトン、アセトニトリルを使用することがより好ましい。寒天をβ−アガラーゼによって分解して得られた寒天オリゴ糖を、アセトンとアセトニトリルに溶解させることよってネオアガロテトラオース（４糖）がより選択的に有機溶媒に溶解され抽出することができるからである。 Examples of the organic solvent that can be used in the present invention include chain hydrocarbons, alcohols, esters, ketones, ethers, nitrogen-containing compounds, and aromatic hydrocarbons. In the present invention, it is preferable to use a solvent having a certain degree of volatility in consideration of recovery and reuse of the solvent. For example, acetone, acetonitrile, butanol, and 2-methyl-2-butanol are preferably used. Furthermore, it is more preferable to use acetone and acetonitrile. Since agar oligosaccharide obtained by degrading agar with β-agarase is dissolved in acetone and acetonitrile, neoagarotetraose (tetrasaccharide) can be more selectively dissolved and extracted in an organic solvent. It is.
有機溶媒には糖類がほとんど溶解しないため、本発明においては、寒天オリゴ糖を溶解させるために水分が含有される。水分の含有量は、特に限定はされないが、溶媒の全体積のうち、１％〜２０％程度が水分となるように含有されるのが好ましい。最適な水分量は、各有機溶媒によって異なる。例えば、有機溶媒としてアセトンを選択した場合は５％の水分の含有が、アセトニトリルを使用した場合は、１０％の水分の含有が最適となっている。 In the present invention, water is contained in order to dissolve the agar oligosaccharide, since saccharides hardly dissolve in the organic solvent. The moisture content is not particularly limited, but it is preferably contained so that about 1% to 20% of the total volume of the solvent becomes moisture. The optimal amount of water varies with each organic solvent. For example, when acetone is selected as the organic solvent, 5% water content is optimal, and when acetonitrile is used, 10% water content is optimal.
前記有機溶媒には、さらに塩化ナトリウムが添加されるのが好ましい。塩化ナトリウムを添加すると溶液の親水性が上昇し、寒天オリゴ糖に配位する水分が減少するため、ネオアガロテトラオース（４糖）より親水性の高いネオアガロヘキサオース（６糖）が有機溶媒中に溶解しにくくなり、ネオアガロテトラオース（４糖）がより選択的に有機溶媒に溶解するからである。
添加される塩化ナトリウムの量は、特に限定はされないが、０．１〜５ｇ／ｌが好ましい。
It is preferable that sodium chloride is further added to the organic solvent. When sodium chloride is added, the hydrophilicity of the solution increases and the water coordinated to the agar oligosaccharide decreases. Therefore, neoagarohexaose (hexasaccharide) is more hydrophilic than neoagarotetraose (tetrasaccharide). This is because it becomes difficult to dissolve in an organic solvent, and neoagarotetraose (tetrasaccharide) is more selectively dissolved in an organic solvent.
The amount of sodium chloride to be added is not particularly limited, but is preferably 0.1 to 5 g / l.
前記有機溶媒には、さらにフェニルホウ酸が添加されるのが好ましい。オリゴ糖を水分が含有された有機溶媒に溶解させることよって、ネオアガロテトラオース（４糖）がネオアガロヘキサオース（６糖）より選択的に有機溶媒に溶解する。フェニルホウ酸を有機溶媒中に添加すると、ネオアガロテトラオース（４糖）が有機溶媒にネオアガロヘキサオース（６糖）より選択的に溶解する割合がフェニルホウ酸の添加前と添加後とで変更されることなく、且つ、有機溶媒に溶解する寒天オリゴ糖の糖濃度が上昇するため、より効率よくネオアガロテトラオース（４糖）を抽出することができるからである。
有機溶媒に添加されるフェニルホウ酸の添加量は、特に限定はされないが、５ｇ〜２００ｇ／ｌが好ましい。最適なフェニルホウ酸の添加量は選択した有機溶媒により夫々異なる。例えば、有機溶媒としてアセトニトリルを使用した場合は１２ｇ／ｌ、アセトンを使用した場合は８ｇ／ｌ、ブタノールを使用した場合は１２０ｇ／ｌである。
It is preferable that phenylboric acid is further added to the organic solvent. By dissolving the oligosaccharide in an organic solvent containing water, neoagarotetraose (tetrasaccharide) is selectively dissolved in the organic solvent over neoagarohexaose (hexasaccharide). When phenylboric acid is added to an organic solvent, the ratio of neoagarotetraose (tetrasaccharide) selectively dissolved in organic solvent from neoagarohexaose (hexasaccharide) is increased before and after the addition of phenylboric acid. This is because the sugar concentration of the agar oligosaccharide dissolved in the organic solvent is increased without being changed, so that neoagarotetraose (tetrasaccharide) can be extracted more efficiently.
The amount of phenylboric acid added to the organic solvent is not particularly limited, but is preferably 5 g to 200 g / l. The optimum amount of phenylboric acid varies depending on the selected organic solvent. For example, it is 12 g / l when acetonitrile is used as the organic solvent, 8 g / l when acetone is used, and 120 g / l when butanol is used.
本発明に係る寒天オリゴ糖の分離精製方法を複数回行うことにより、有機溶媒に溶解されたネオアガロテトラオース（４糖）をより選択的に得ることができ、より純度の高いネオアガロテトラオース（４糖）を得ることができる。同時に、有機溶媒に溶解後の残渣についても、本発明に係る寒天オリゴ糖の分離精製方法を複数回行うことにより、さらに有機溶媒からは残渣に残存したネオアガロテトラオース（４糖）が抽出され、残渣にはネオアガロヘキサオース（６糖）が残存するため、残渣のネオアガロヘキサオース（６糖）の純度を高めることができる。また、複数回分離精製を行うごとに、有機溶媒の種類を変更してもよい。例えば、１回目の精製時に有機溶媒としてブタノールを使用し、２回目の精製時にはアセトンを、３回目の精製時にはアセトニトリルを使用することもできる。 By performing the method for separating and purifying agar oligosaccharides according to the present invention a plurality of times, neoagarotetraose (tetrasaccharide) dissolved in an organic solvent can be obtained more selectively, and neoagaro with higher purity can be obtained. Tetraose (tetrasaccharide) can be obtained. At the same time, the residue after dissolution in an organic solvent is extracted several times from the organic solvent by performing the method for separating and purifying agar oligosaccharides according to the present invention multiple times. In addition, since neoagarohexaose (hexasaccharide) remains in the residue, the purity of the residue neoagarohexaose (hexasaccharide) can be increased. Moreover, you may change the kind of organic solvent every time it isolate | separates and refines several times. For example, butanol can be used as the organic solvent during the first purification, acetone can be used during the second purification, and acetonitrile can be used during the third purification.
以下、実施例を示すことにより、本発明を明確に説明するが、本発明はこれらの実施例のみに限定されない。 EXAMPLES Hereinafter, the present invention will be described clearly by showing examples, but the present invention is not limited only to these examples.
（酵素液の調製）
寒天分解酵素は、Pseudomonas atlantica由来のβ−アガラーゼ（Ｓｉｇｍａ社製）を精製せずに使用した。２０ｍＭリン酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ７．０）に７１．４Ｕ／ｍｌの濃度になるように酵素液を調製し、エッペンドルフチューブに１ｍｌずつ分注し、−２０℃で冷凍保存した。冷凍保存したものをその都度解凍を行い使用した。
(Preparation of enzyme solution)
As the agar-degrading enzyme, β-agarase derived from Pseudomonas atlantica (manufactured by Sigma) was used without purification. An enzyme solution was prepared in 20 mM sodium phosphate buffer (pH 7.0) to a concentration of 71.4 U / ml, dispensed 1 ml each into an Eppendorf tube, and stored frozen at -20 ° C. The frozen product was thawed and used each time.
（寒天オリゴ糖の調製）
粉末アガロース（和光純薬社製）１５ｍｇと酵素液１００μｌを２０ｍＭリン酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ７．０）９００μｌに加えた。２５℃で２４０時間反応後、未反応の粉末アガロースを遠心分離機（１０，０００ｒｐｍ、５分間、４℃）により取り除き、上清液を１００℃、５分間煮沸することで酵素反応を停止した。
この上清液中の溶解した寒天オリゴ糖の定量分析を液体クロマトグラフィ（Ｄ−７０００、日立製作所社製）、カラム（Ｓｕｇａｒ ＫＳ−８０２、Ｓｈｏｄｅｘ社製）を用い、カラム温度は５０℃、流速０．８ｍｌ／分、移動相は蒸留水とし、検出器（refractive index detector、日立製作所社製Ｌ−７４９０）を用いて行った。
結果を図１に示す。
(Preparation of agar oligosaccharide)
15 mg of powdered agarose (manufactured by Wako Pure Chemical Industries, Ltd.) and 100 μl of enzyme solution were added to 900 μl of 20 mM sodium phosphate buffer (pH 7.0). After reacting at 25 ° C. for 240 hours, unreacted powdered agarose was removed by a centrifuge (10,000 rpm, 5 minutes, 4 ° C.), and the supernatant was boiled at 100 ° C. for 5 minutes to stop the enzyme reaction.
For quantitative analysis of the dissolved agar oligosaccharide in the supernatant, liquid chromatography (D-7000, manufactured by Hitachi, Ltd.) and a column (Sugar KS-802, manufactured by Shodex) were used, the column temperature was 50 ° C., and the flow rate was 0. 8 ml / min, the mobile phase was distilled water, and a detector (refractive index detector, L-7490 manufactured by Hitachi, Ltd.) was used.
The results are shown in FIG.
図１の通り、ネオアガロヘキサオース（６糖）は９．６分、ネオアガロテトラオース（４糖）は１０．３分の位置にピークが現れている。１１．５分の位置に現れている小さいピークは、ネオアガロビオース（２糖）である。
ネオアガロヘキサオース（６糖）の生産量は１．８ｇ／ｌ、ネオアガロテトラオース（４糖）の生産量は２．６９ｇ／ｌである。従って、ネオアガロヘキサオース（６糖）に対するネオアガロテトラオース（４糖）の生成比は、１：１．５となっている。
Pseudomonas atlantica由来のβ−アガラーゼＩを使用していることから、ネオアガロテトラオース（４糖）の生産量が多く、ネオアガロビオース（２糖）の生産量が少なくなっている。
As shown in FIG. 1, neoagarohexaose (hexasaccharide) has a peak at 9.6 minutes and neoagarotetraose (tetrasaccharide) has a peak at 10.3 minutes. The small peak appearing at the 11.5 minute position is neoagarobiose (disaccharide).
The production amount of neoagarohexaose (hexasaccharide) is 1.8 g / l, and the production amount of neoagarotetraose (tetrasaccharide) is 2.69 g / l. Therefore, the production ratio of neoagarotetraose (tetrasaccharide) to neoagarohexaose (hexasaccharide) is 1: 1.5.
Since β-agarase I derived from Pseudomonas atlantica is used, the production amount of neoagarotetraose (tetrasaccharide) is large and the production amount of neoagarobiose (disaccharide) is small.
（寒天オリゴ糖の分離）
上記上清液（寒天オリゴ糖溶液）を凍結乾燥機（島津製作所社製）を用いて凍結乾燥させ水を含む溶媒を取り除いた。乾燥後、乳鉢を用いて摩砕した。得られた寒天オリゴ糖粉末を所定量採取し、蒸留水が２０％含有された有機溶媒（アセトニトリル）１ｍｌに溶解させた。所定温度（２５℃）で３時間振とうした後、未溶解の固形物（残渣）を遠心分離機（１０，０００ｒｐｍ、５分間）により取り除いた。上清液を試験管エバポレータにて減圧乾燥し、精製された寒天オリゴ糖の乾燥粉末が得られた。
精製された寒天オリゴ糖の乾燥粉末を採取した上清液と同量の蒸留水に溶解した。その後、液体クロマトグラフィ（Ｄ−７０００、日立製作所社製）、カラム（Ｓｕｇａｒ ＫＳ−８０２、Ｓｈｏｄｅｘ社製）を用い、カラム温度は５０℃、流速０．８ｍｌ／分、移動相は蒸留水とし、検出器（refractive index detector、日立製作所社製Ｌ−７４９０）を用いて寒天オリゴ糖の定量分析を行った。
結果を図２に示す。
(Separation of agar oligosaccharide)
The supernatant (agar oligosaccharide solution) was lyophilized using a freeze dryer (manufactured by Shimadzu Corporation) to remove the solvent containing water. After drying, it was ground using a mortar. A predetermined amount of the obtained agar oligosaccharide powder was sampled and dissolved in 1 ml of an organic solvent (acetonitrile) containing 20% distilled water. After shaking at a predetermined temperature (25 ° C.) for 3 hours, undissolved solids (residues) were removed by a centrifuge (10,000 rpm, 5 minutes). The supernatant was dried under reduced pressure using a test tube evaporator to obtain a purified dry powder of agar oligosaccharide.
The purified dried powder of agar oligosaccharide was dissolved in the same amount of distilled water as the collected supernatant. Thereafter, using liquid chromatography (D-7000, manufactured by Hitachi, Ltd.) and a column (Sugar KS-802, manufactured by Shodex), the column temperature was 50 ° C., the flow rate was 0.8 ml / min, the mobile phase was distilled water, and detection was performed. Quantitative analysis of agar oligosaccharides was carried out using a vessel (refractive index detector, L-7490, manufactured by Hitachi, Ltd.).
The results are shown in FIG.
図２の通り、ネオアガロヘキサオース（６糖）は９．５４分、ネオアガロテトラオース（４糖）は１０．２７分の位置にピークが現れている。図１と比較して図２では、ネオアガロヘキサオース（６糖）のピークが、ネオアガロテトラオース（４糖）のピークよりもかなり低くなっていることがわかる。
図１では、精製前のネオアガロヘキサオース（６糖）に対するネオアガロテトラオース（４糖）の比率は１：１．５であった。一方、図２では、ネオアガロヘキサオース（６糖）に対するネオアガロテトラオース（４糖）の比率は、１：５．１となっている。これにより、精製前よりもネオアガロテトラオース（４糖）の濃度が増加していることがわかる。
従って、本発明による寒天オリゴ糖の生成方法によって、ネオアガロテトラオース（４糖）が選択的に有機溶媒に溶解していることがわかる。
As shown in FIG. 2, neoagarohexaose (hexasaccharide) has a peak at 9.54 minutes and neoagarotetraose (tetrasaccharide) has a peak at 10.27 minutes. In FIG. 2, it can be seen that the peak of neoagarohexaose (hexasaccharide) is considerably lower than the peak of neoagarotetraose (tetrasaccharide) in FIG. 2.
In FIG. 1, the ratio of neoagarotetraose (tetrasaccharide) to neoagarohexaose (hexasaccharide) before purification was 1: 1.5. On the other hand, in FIG. 2, the ratio of neoagarotetraose (tetrasaccharide) to neoagarohexaose (hexasaccharide) is 1: 5.1. This shows that the concentration of neoagarotetraose (tetrasaccharide) is higher than that before purification.
Therefore, it can be seen that neoagarotetraose (tetrasaccharide) is selectively dissolved in an organic solvent by the method for producing an agar oligosaccharide according to the present invention.
（添加水分量の調整）
上記得られた寒天オリゴ糖粉末を所定量採取し、蒸留水が夫々０、５、１０、１５、２０％含有された有機溶媒（メタノール、エタノール、プロパノール、ブタノール、アセトニトリル、アセトン、２メチル２ブタノール）１ｍｌに夫々溶解させた。所定温度（２５℃）で３時間振とうした後、未溶解の固形物（残渣）を遠心分離機（１０，０００ｒｐｍ、５分間）により取り除いた。上清液を試験管エバポレータにて減圧乾燥し、精製された寒天オリゴ糖の乾燥粉末が得られた。
精製された寒天オリゴ糖の乾燥粉末を採取した上清液と同量の蒸留水に溶解し、液体クロマトグラフィ（Ｄ−７０００、日立製作所社製）、カラム（Ｓｕｇａｒ ＫＳ−８０２、Ｓｈｏｄｅｘ社製）を用い、カラム温度は５０℃、流速０．８ｍｌ／分、移動相は蒸留水とし、検出器（refractive index detector、日立製作所社製Ｌ−７４９０）を用いて寒天オリゴ糖の定量分析を行い、ネオアガロヘキサオース（６糖）に対するネオアガロテトラオース（４糖）の濃度比を算出した。
結果を図３に示す。
(Adjusting the amount of added water)
A predetermined amount of the agar oligosaccharide powder obtained above was collected, and an organic solvent (methanol, ethanol, propanol, butanol, acetonitrile, acetone, 2-methyl-2-butanol containing 0, 5, 10, 15, 20% of distilled water, respectively. ) Each was dissolved in 1 ml. After shaking at a predetermined temperature (25 ° C.) for 3 hours, undissolved solids (residues) were removed by a centrifuge (10,000 rpm, 5 minutes). The supernatant was dried under reduced pressure using a test tube evaporator to obtain a purified dry powder of agar oligosaccharide.
The purified dry powder of agar oligosaccharide was dissolved in the same amount of distilled water as the collected supernatant, and liquid chromatography (D-7000, manufactured by Hitachi, Ltd.) and column (Sugar KS-802, manufactured by Shodex) were used. The column temperature is 50 ° C., the flow rate is 0.8 ml / min, the mobile phase is distilled water, and quantitative analysis of the agar oligosaccharide is performed using a detector (refractive index detector, L-7490 manufactured by Hitachi, Ltd.). The concentration ratio of neoagarotetraose (tetrasaccharide) to agarohexaose (hexasaccharide) was calculated.
The results are shown in FIG.
図１に示される通り、精製前の濃度比は、ネオアガロヘキサオース（６糖）：ネオアガロテトラオース（４糖）＝１：１．５であった。これに対して、図３では、アセトン、アセトニトリル、ブタノール、２メチル２ブタノール夫々に水分５〜２０％含有させた場合、精製後の濃度比が大幅に変化し、ネオアガロヘキサオース（６糖）：ネオアガロテトラオース（４糖）＝１：４．５〜１：１７であった。これにより、ネオアガロテトラオース（４糖）の濃度比が精製後に大幅に増加しているのがわかる。また、水分の含有濃度によって、６糖と４糖の濃度比が変化していることから、有機溶媒中の水分の含有量によってネオアガロヘキサオース（６糖）とネオアガロテトラオース（４糖）の濃度比を制御することができることがわかる。
一方、メタノール、エタノール、プロパノールについては、水分の含有量を増減させたとしてもネオアガロテトラオース（４糖）の濃度比の増減は少ないことがわかる。
As shown in FIG. 1, the concentration ratio before purification was neoagarohexaose (hexasaccharide): neoagarotetraose (tetrasaccharide) = 1: 1.5. On the other hand, in FIG. 3, when each of acetone, acetonitrile, butanol, and 2-methyl-2-butanol contains 5 to 20% of water, the concentration ratio after purification greatly changes, and neoagarohexaose (hexasaccharide) ): Neoagarotetraose (tetrasaccharide) = 1: 4.5-1: 17. Thereby, it can be seen that the concentration ratio of neoagarotetraose (tetrasaccharide) is greatly increased after purification. Further, since the concentration ratio of hexasaccharide to tetrasaccharide is changed depending on the moisture content, neoagarohexaose (hexasaccharide) and neoagarotetraose (4 It can be seen that the concentration ratio of sugar) can be controlled.
On the other hand, regarding methanol, ethanol, and propanol, even if the water content is increased or decreased, the concentration ratio of neoagarotetraose (tetrasaccharide) increases and decreases.
（塩化ナトリウムの添加）
上記得られた寒天オリゴ糖粉末を所定量採取し、塩化ナトリウムを０、１、２、３、４、５ｇ／ｌを夫々添加した有機溶媒（メタノール、エタノール、アセトニトリル、アセトン）１ｍｌに夫々溶解させた。前記有機溶媒には、メタノールとエタノールについては蒸留水が含有されておらず、アセトニトリルについては蒸留水を２０％含有させ、アセトンについては蒸留水を夫々１０、１５、２０％含有させた。所定温度（２５℃）で３時間振とうした後、未溶解の固形物を遠心分離機（１０，０００ｒｐｍ、５分間）により取り除いた。上清液を試験管エバポレータにて減圧乾燥し、精製された寒天オリゴ糖の乾燥粉末が得られた。
精製された寒天オリゴ糖の乾燥粉末を採取した上清液と同量の蒸留水に溶解し、液体クロマトグラフィ（Ｄ−７０００、日立製作所社製）、カラム（Ｓｕｇａｒ ＫＳ−８０２、Ｓｈｏｄｅｘ社製）を用い、カラム温度は５０℃、流速０．８ｍｌ／分、移動相は蒸留水とし、検出器（refractive index detector、日立製作所社製Ｌ−７４９０）を用いて寒天オリゴ糖の定量分析を行った。その後、ネオアガロヘキサオース（６糖）に対するネオアガロテトラオース（４糖）の濃度比を算出した。
メタノール、エタノール、アセトニトリルの結果について図４に、アセトンの結果については図５に示す。
(Addition of sodium chloride)
A predetermined amount of the agar oligosaccharide powder obtained above is collected and dissolved in 1 ml of an organic solvent (methanol, ethanol, acetonitrile, acetone) to which 0, 1, 2, 3, 4, 5 g / l of sodium chloride is added. It was. The organic solvent did not contain distilled water for methanol and ethanol, 20% distilled water for acetonitrile, and 10, 15, 20% distilled water for acetone, respectively. After shaking at a predetermined temperature (25 ° C.) for 3 hours, undissolved solids were removed by a centrifuge (10,000 rpm, 5 minutes). The supernatant was dried under reduced pressure using a test tube evaporator to obtain a purified dry powder of agar oligosaccharide.
The purified dry powder of agar oligosaccharide was dissolved in the same amount of distilled water as the collected supernatant, and liquid chromatography (D-7000, manufactured by Hitachi, Ltd.) and column (Sugar KS-802, manufactured by Shodex) were used. The column temperature was 50 ° C., the flow rate was 0.8 ml / min, the mobile phase was distilled water, and quantitative analysis of the agar oligosaccharide was performed using a detector (refractive index detector, L-7490 manufactured by Hitachi, Ltd.). Thereafter, the concentration ratio of neoagarotetraose (tetrasaccharide) to neoagarohexaose (hexasaccharide) was calculated.
FIG. 4 shows the results for methanol, ethanol, and acetonitrile, and FIG. 5 shows the results for acetone.
アセトンに水分が１５％含有されている場合、図３によれば濃度比はネオアガロヘキサオース（６糖）：ネオアガロテトラオース（４糖）＝１：２であった。これに対して、図４に示されるように、塩化ナトリウム５ｇ／ｌを添加した場合は、濃度比はネオアガロヘキサオース（６糖）：ネオアガロテトラオース（４糖）＝１：６に上昇した。
アセトンに水分が１０％含有されている場合、濃度比は図３に示されるようにネオアガロヘキサオース（６糖）：ネオアガロテトラオース（４糖）＝１：７であった。これに対して、図５に示されるように、さらに塩化ナトリウム５ｇ／ｌを添加した場合は、濃度比はネオアガロヘキサオース（６糖）：ネオアガロテトラオース（４糖）＝１：１２へと上昇した。
アセトニトリルに水分が２０％含有されている場合、濃度比は図３に示されるようにネオアガロヘキサオース（６糖）：ネオアガロテトラオース（４糖）＝１：５であった。これに対して、図４に示されるように塩化ナトリウム５ｇ／ｌを添加した場合は、濃度比はネオアガロヘキサオース（６糖）：ネオアガロテトラオース（４糖）＝１：９へと上昇した。
従って、有機溶媒に塩化ナトリウムを添加することにより、ネオアガロヘキサオース（６糖）に対するネオアガロテトラオース（４糖）の濃度比が上昇し、ネオアガロテトラオース（４糖）の選択性がより上昇することがわかる。
When 15% of water was contained in acetone, according to FIG. 3, the concentration ratio was neoagarohexaose (hexasaccharide): neoagarotetraose (tetrasaccharide) = 1: 2. On the other hand, as shown in FIG. 4, when 5 g / l of sodium chloride was added, the concentration ratio was neoagarohexaose (hexasaccharide): neoagarotetraose (tetrasaccharide) = 1: 6. Rose to.
When acetone contained 10% of water, the concentration ratio was neoagarohexaose (hexasaccharide): neoagarotetraose (tetrasaccharide) = 1: 7 as shown in FIG. On the other hand, as shown in FIG. 5, when sodium chloride 5 g / l is further added, the concentration ratio is neoagarohexaose (hexasaccharide): neoagarotetraose (tetrasaccharide) = 1: It rose to 12.
When acetonitrile contained 20% of water, the concentration ratio was neoagarohexaose (hexasaccharide): neoagarotetraose (tetrasaccharide) = 1: 5 as shown in FIG. On the other hand, when 5 g / l of sodium chloride is added as shown in FIG. 4, the concentration ratio is neoagarohexaose (hexasaccharide): neoagarotetraose (tetrasaccharide) = 1: 9. And rose.
Therefore, by adding sodium chloride to the organic solvent, the concentration ratio of neoagarotetraose (tetrasaccharide) to neoagarohexaose (hexasaccharide) increases, and selection of neoagarotetraose (tetrasaccharide). It turns out that sex rises more.
（最適フェニルホウ酸添加量の決定）
上記得られた寒天オリゴ糖粉末を所定量採取し、フェニルホウ酸を０〜２００ｇ／ｌ夫々添加した有機溶媒（アセトン、アセトニトリル、ブタノール）１ｍｌに溶解させた。前記有機溶媒には、蒸留水は含有させなかった。所定温度（２５℃）で３時間振とうした後、未溶解の固形物を遠心分離機（１０，０００ｒｐｍ、５分間）により取り除いた。上清液を試験管エバポレータにて減圧乾燥し、精製された寒天オリゴ糖の乾燥粉末が得られた。
精製された寒天オリゴ糖の乾燥粉末を採取した上清液と同量の蒸留水に溶解し、液体クロマトグラフィ（Ｄ−７０００、日立製作所社製）、カラム（Ｓｕｇａｒ ＫＳ−８０２、Ｓｈｏｄｅｘ社製）を用い、カラム温度は５０℃、流速０．８ｍｌ／分、移動相は蒸留水とし、検出器（refractive index detector、日立製作所社製Ｌ−７４９０）を用いて寒天オリゴ糖の定量分析を行った。
ネオアガロヘキサオース（６糖）に対するネオアガロテトラオース（４糖）の濃度比の結果について、アセトンとアセトニトリルについては図６に、ブタノールについては図７に示す。有機溶媒中の糖濃度の変化について、アセトンとアセトニトリルについては図８に、ブタノールについては図９に示す。
(Determination of optimum phenylboric acid addition amount)
A predetermined amount of the agar oligosaccharide powder obtained above was collected and dissolved in 1 ml of an organic solvent (acetone, acetonitrile, butanol) to which 0 to 200 g / l of phenylboric acid was added. The organic solvent did not contain distilled water. After shaking at a predetermined temperature (25 ° C.) for 3 hours, undissolved solids were removed by a centrifuge (10,000 rpm, 5 minutes). The supernatant was dried under reduced pressure using a test tube evaporator to obtain a purified dry powder of agar oligosaccharide.
The purified dry powder of agar oligosaccharide was dissolved in the same amount of distilled water as the collected supernatant, and liquid chromatography (D-7000, manufactured by Hitachi, Ltd.) and column (Sugar KS-802, manufactured by Shodex) were used. The column temperature was 50 ° C., the flow rate was 0.8 ml / min, the mobile phase was distilled water, and quantitative analysis of the agar oligosaccharide was performed using a detector (refractive index detector, L-7490 manufactured by Hitachi, Ltd.).
The results of the concentration ratio of neoagarotetraose (tetrasaccharide) to neoagarohexaose (hexasaccharide) are shown in FIG. 6 for acetone and acetonitrile, and in FIG. 7 for butanol. Regarding changes in the sugar concentration in the organic solvent, FIG. 8 shows acetone and acetonitrile, and FIG. 9 shows butanol.
図６、図７に示される通り、アセトン、アセトニトリル、ブタノールではフェニルホウ酸の濃度を増加してもネオアガロヘキサオース（６糖）に対するネオアガロテトラオース（４糖）の濃度比が変化せず、一定であることがわかる。
従って、有機溶媒にフェニルホウ酸を添加したとしても、ネオアガロヘキサオース（６糖）に対するネオアガロテトラオース（４糖）の濃度比は変動しないことがわかる。
As shown in FIGS. 6 and 7, in acetone, acetonitrile, and butanol, the concentration ratio of neoagarotetraose (tetrasaccharide) to neoagarohexaose (hexasaccharide) does not change even when the concentration of phenylboric acid is increased. It turns out that it is constant.
Therefore, even if phenylboric acid is added to the organic solvent, the concentration ratio of neoagarotetraose (tetrasaccharide) to neoagarohexaose (hexasaccharide) does not change.
図８、図９に示される通り、有機溶媒にフェニルホウ酸を添加すると、溶媒中の糖濃度が増加するのがわかる。糖濃度は、アセトニトリルを使用した場合、フェニルホウ酸濃度１２ｇ／ｌ、アセトンでは８ｇ／ｌ、ブタノールでは１２０ｇ／ｌ以上で一定となっており、これら各濃度が夫々の有機溶媒においての最適フェニルホウ酸の添加量であることがわかる。
従って、有機溶媒にフェニルホウ酸を添加すると、有機溶媒中の糖濃度が増加し、最適フェニルホウ酸濃度は、選択する有機溶媒によって異なることがわかる。
As shown in FIGS. 8 and 9, it can be seen that when phenylboric acid is added to the organic solvent, the sugar concentration in the solvent increases. When acetonitrile is used, the sugar concentration is constant at a phenylboric acid concentration of 12 g / l, acetone at 8 g / l, butanol at 120 g / l or more, and these concentrations are constant for the optimum phenylboric acid in each organic solvent. It turns out that it is an addition amount.
Therefore, it can be seen that when phenylboric acid is added to the organic solvent, the sugar concentration in the organic solvent increases, and the optimum phenylboric acid concentration varies depending on the organic solvent selected.
（フェニルホウ酸を添加した場合の水分の影響）
上記得られた寒天オリゴ糖粉末を所定量採取し、蒸留水を０、５、１０、１５、２０％夫々含有された有機溶媒（アセトン、アセトニトリル、ブタノール）１ｍｌに溶解させた。前記有機溶媒には、アセトニトリルを使用した場合は１２ｇ／ｌ、アセトンでは８ｇ／ｌ、ブタノールでは１２０ｇ／ｌ、フェニルホウ酸を添加している。所定温度（２５℃）で３時間振とうした後、未溶解の固形物を遠心分離機（１０，０００ｒｐｍ、５分間）により取り除いた。上清液を試験管エバポレータにて減圧乾燥し、精製された寒天オリゴ糖の乾燥粉末が得られた。
精製された寒天オリゴ糖の乾燥粉末を採取した上清液と同量の蒸留水に溶解し、液体クロマトグラフィ（Ｄ−７０００、日立製作所社製）、カラム（Ｓｕｇａｒ ＫＳ−８０２、Ｓｈｏｄｅｘ社製）を用い、カラム温度は５０℃、流速０．８ｍｌ／分、移動相は蒸留水とし、検出器（refractive index detector、日立製作所社製Ｌ−７４９０）を用いて寒天オリゴ糖の定量分析を行った。
フェニルホウ酸を添加した場合としなかった場合のネオアガロヘキサオース（６糖）とネオアガロテトラオース（４糖）の溶解度の結果について、アセトンについては図１０に、アセトニトリルについては図１１に、ブタノールについては図１２に夫々示す。
(Effect of moisture when phenylboric acid is added)
A predetermined amount of the agar oligosaccharide powder obtained above was collected and dissolved in 1 ml of an organic solvent (acetone, acetonitrile, butanol) each containing 0, 5, 10, 15, 20% distilled water. When the acetonitrile is used, the organic solvent is 12 g / l, acetone is 8 g / l, butanol is 120 g / l, and phenylboric acid is added. After shaking at a predetermined temperature (25 ° C.) for 3 hours, undissolved solids were removed by a centrifuge (10,000 rpm, 5 minutes). The supernatant was dried under reduced pressure using a test tube evaporator to obtain a purified dry powder of agar oligosaccharide.
The purified dry powder of agar oligosaccharide was dissolved in the same amount of distilled water as the collected supernatant, and liquid chromatography (D-7000, manufactured by Hitachi, Ltd.) and column (Sugar KS-802, manufactured by Shodex) were used. The column temperature was 50 ° C., the flow rate was 0.8 ml / min, the mobile phase was distilled water, and quantitative analysis of the agar oligosaccharide was performed using a detector (refractive index detector, L-7490 manufactured by Hitachi, Ltd.).
Regarding the results of the solubility of neoagarohexaose (hexasaccharide) and neoagarotetraose (tetrasaccharide) with and without phenylboric acid added, FIG. 10 shows acetone, FIG. 11 shows acetonitrile, Butanol is shown in FIG.
図１０、図１１、図１２に示す通り、有機溶媒にフェニルホウ酸を添加したネオアガロテトラオース（４糖）の溶解度が、有機溶媒にフェニルホウ酸を添加しないネオアガロテトラオース（４糖）の溶解度よりも高いことがわかる。
以上より、有機溶媒にフェニルホウ酸を添加すると、有機溶媒に溶解するネオアガロテトラオース（４糖）がより多く溶解されるため、寒天オリゴ糖の精製効率が上がることがわかる。
As shown in FIGS. 10, 11, and 12, the solubility of neoagarotetraose (tetrasaccharide) in which phenylboric acid is added to an organic solvent is higher than that of neoagarotetraose (tetrasaccharide) in which phenylboric acid is not added to an organic solvent. It can be seen that the solubility is higher.
From the above, it can be seen that when phenylboric acid is added to the organic solvent, more of the neoagarotetraose (tetrasaccharide) dissolved in the organic solvent is dissolved, so that the purification efficiency of the agar oligosaccharide increases.
（精製後の寒天オリゴ糖の純度の比較）
上記得られた寒天オリゴ糖粉末を所定量採取し、蒸留水が０〜２０％含有された有機溶媒（アセトン、アセトニトリル、ブタノール）１ｍｌに溶解させた。所定温度（２５℃）で３時間振とうした後、未溶解の固形物を遠心分離機（１０，０００ｒｐｍ、５分間）により取り除いた。上清液を試験管エバポレータにて減圧乾燥し、精製された寒天オリゴ糖の乾燥粉末が得られた。得られた寒天オリゴ糖の乾燥粉末の重量を測定した。
その後、精製された寒天オリゴ糖の乾燥粉末を採取した上清液と同量の蒸留水に溶解し、液体クロマトグラフィ（Ｄ−７０００、日立製作所社製）、カラム（Ｓｕｇａｒ ＫＳ−８０２、Ｓｈｏｄｅｘ社製）を用い、カラム温度は５０℃、流速０．８ｍｌ／分、移動相は蒸留水とし、検出器（refractive index detector、日立製作所社製Ｌ−７４９０）を用いて寒天オリゴ糖の定量分析を行った。
測定された重量を１００％とし、液体クロマトグラフィの結果から得られたネオアガロテトラオース（４糖）とネオアガロヘキサオース（６糖）の濃度から純度を算出した。
結果を表１に示す。
(Comparison of purity of agar oligosaccharide after purification)
A predetermined amount of the agar oligosaccharide powder obtained above was collected and dissolved in 1 ml of an organic solvent (acetone, acetonitrile, butanol) containing 0-20% distilled water. After shaking at a predetermined temperature (25 ° C.) for 3 hours, undissolved solids were removed by a centrifuge (10,000 rpm, 5 minutes). The supernatant was dried under reduced pressure using a test tube evaporator to obtain a purified dry powder of agar oligosaccharide. The weight of the dry powder of the obtained agar oligosaccharide was measured.
Thereafter, the purified dried powder of agar oligosaccharide was dissolved in the same amount of distilled water as the collected supernatant, and liquid chromatography (D-7000, manufactured by Hitachi, Ltd.), column (Sugar KS-802, manufactured by Shodex) was used. ), Column temperature is 50 ° C., flow rate is 0.8 ml / min, mobile phase is distilled water, and quantitative analysis of agar oligosaccharide is performed using a detector (refractive index detector, L-7490 manufactured by Hitachi, Ltd.). It was.
The measured weight was taken as 100%, and the purity was calculated from the concentrations of neoagarotetraose (tetrasaccharide) and neoagarohexaose (hexasaccharide) obtained from the results of liquid chromatography.
The results are shown in Table 1.
表１に示すように、アセトンに水分が５％含有されている場合、ネオアガロテトラオース（４糖）の純度が精製前約２６％から精製後約８６％、水分が１０％含有されている場合、精製後５７％となった。また、アセトニトリルに水分が２０％含有されている場合、ネオアガロテトラオース（４糖）の純度が約６０％、ブタノールに水分が１０％含有されている場合、ネオアガロテトラオース（４糖）の純度が６２％となった。
以上より、何れの場合も、精製前の純度２６％から約２倍以上高い純度でのネオアガロテトラオース（４糖）の精製が一回の有機溶媒による抽出で可能となっていることがわかる。
As shown in Table 1, when acetone contains 5% water, the purity of neoagarotetraose (tetrasaccharide) is about 26% before purification, about 86% after purification, and 10% water. If it was, it became 57% after purification. When acetonitrile contains 20% of water, the purity of neoagarotetraose (tetrasaccharide) is about 60%, and when butanol contains 10% of water, neoagarotetraose (tetrasaccharide) ) Became 62%.
From the above, in any case, it is possible to purify neoagarotetraose (tetrasaccharide) with a purity of about twice or more from the purity of 26% before purification by a single extraction with an organic solvent. Recognize.
本発明に係る寒天オリゴ糖の精製方法は、４糖、６糖が混在した寒天オリゴ糖から、ネオアガロテトラオース（４糖）とネオアガロヘキサオース（６糖）とを分離するのに好適に使用することができる。 The method for purifying agar oligosaccharide according to the present invention is to separate neoagarotetraose (tetrasaccharide) and neoagarohexaose (hexasaccharide) from agar oligosaccharide mixed with tetrasaccharide and hexasaccharide. It can be preferably used.
Claims (5)
前記寒天オリゴ糖を水分が含有された有機溶媒に溶解させ、残渣を分離した後、前記有機溶媒を乾燥させることによってネオアガロテトラオースを選択的に分離、精製することを特徴とする寒天オリゴ糖の分離精製方法。 A method for separating and purifying an agar oligosaccharide produced by adding β-agarase used as an agar-degrading enzyme to agar used as a substrate,
An agar oligo, wherein the agar oligosaccharide is selectively separated and purified by dissolving the agar oligosaccharide in an organic solvent containing water, separating the residue, and then drying the organic solvent. A method for separating and purifying sugar.
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2007
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Cited By (2)
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