JP2009095291A - Method of and device for monitoring cytotoxicity - Google Patents
Method of and device for monitoring cytotoxicity Download PDFInfo
- Publication number
- JP2009095291A JP2009095291A JP2007270471A JP2007270471A JP2009095291A JP 2009095291 A JP2009095291 A JP 2009095291A JP 2007270471 A JP2007270471 A JP 2007270471A JP 2007270471 A JP2007270471 A JP 2007270471A JP 2009095291 A JP2009095291 A JP 2009095291A
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- culture solution
- light
- absorption
- cell damage
- drug
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Pending
Links
Images
Landscapes
- Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Description
本発明は、培養細胞に対して被試験薬を与えたときの細胞障害をモニターする方法及び装置に関するものである。 The present invention relates to a method and apparatus for monitoring cell damage when a test drug is given to cultured cells.
ある薬品が細胞毒性の副作用を持つか否かを知ることは、医薬品を開発する上では欠くことができない。それには、細胞障害を測定する必要がある。また、そのような薬品による細胞障害のメカニズムを解明し、抑制方法を開発するためにも、細胞障害を測定する必要がある。そのため、従来から、ほ乳類等の培養細胞に対して被試験薬を与えて、細胞障害を測定することが行われてきている。 Knowing whether a drug has cytotoxic side effects is essential in developing a drug. This requires measuring cell damage. In addition, it is necessary to measure cell damage in order to elucidate the mechanism of cell damage caused by such drugs and to develop a suppression method. For this reason, conventionally, a drug to be tested is given to cultured cells such as mammals to measure cell damage.
非特許文献1には、被試験薬を与えた細胞における酵素活性やミトコンドリア活性を特定の試薬を用いて定量することで、細胞障害を測定することが開示されている。具体的には、96個の穴を持つマイクロプレートと呼ばれる測定器具の各穴内において、培養液によって細胞を培養し、細胞が十分に増殖した後に、毒性を測定すべき被試験薬を加える。一定時間後、試薬としてのMTT溶液を添加し、添加したMTTが、細胞内のミトコンドリアに存在する酵素によってフォルマザン(formazan)に変化した量を測定する。この測定は、フォルマザンが波長570nmの光を吸収することから、その吸光度をマイクロプレートリーダーによって測定することでなされる。
また、特許文献1には、細胞障害の定量を正確に行うために、1個ごとの細胞の生死を検知して、生細胞と死細胞の数によって細胞障害を測定することが開示されている。具体的には、細胞を接着させるコラーゲン等の膜パターンの表面に、細胞を接着させて培養し、毒性を測定すべき被試験薬を加える。次いで、細胞の生死によって染色後の色が異なる特定の染色液によって、細胞を染色する。染色後、膜パターン上の細胞の生死を、細胞1個ごとに顕微鏡によって判定し、その生存率によって細胞障害を測定している。
In addition,
しかしながら、非特許文献1の測定においては、マイクロプレートの1つの穴について、ある時間における1回限りの測定しか行うことができない。そのため、長時間の経時変化を見ようとすれば、多数の穴を使用して培養試験を行い、例えば10分間隔で、次々と異なる穴内の試料による測定を断続的に行わなければならない。そのような経時変化を必要とせずに、単に細胞障害の有無のみを検知する場合であっても、被試験薬による細胞障害がいつ起こるか分からないために、適切な測定のタイミングを知ることが困難である。また、細胞障害を測定するための特殊な試薬を用いる必要がある。
これらのことから、多くの労力とコストを必要とする。それにも拘わらず、断続的な測定しか行うことができず、しかも、1回の測定においては、測定を開始してから結果が出るまでに相当の時間がかかることから、正確にはいつの時点の細胞障害に関するデータであるかが明確でなく、リアルタイムでの測定をすることができなかった。
However, in the measurement of
From these things, much labor and cost are required. Nevertheless, only intermittent measurements can be made, and in one measurement, it takes a considerable amount of time from the start of measurement until results are obtained. It was not clear whether the data was related to cell damage, and real-time measurement could not be performed.
また、特許文献1の測定においては、細胞の生死に関する正確なデータによって細胞障害を測定することはできる。しかし、この方法においても、非特許文献1の場合と同じく、ある時間における1回限りの測定しか行うことができず、また、多くの労力とコストを必要とすること、1回の測定に時間がかかることも同様である。そのため、やはり、リアルタイムでの測定をすることができなかった。さらに、細胞が死滅しなければ、細胞障害について判断することができなかった。
Moreover, in the measurement of
本発明は、上記の問題点を解決するために、鋭意研究の結果、培養細胞に化学的又は物理的な障害を与えたときに、特定波長の紫外光を吸収する物質が細胞から培養液に放出されることを見出したことに基づく。そして、このような新たな知見に基づいて、細胞障害をリアルタイムで測定可能な方法と装置を完成させ得たものである。
すなわち、本発明は、簡易で低コストでありながら、リアルタイムでの細胞障害の測定が可能な細胞障害のモニター方法及び装置を提供することを目的とする。
In order to solve the above-mentioned problems, the present invention has been made through extensive research, and as a result, when a cultured cell is chemically or physically damaged, a substance that absorbs ultraviolet light having a specific wavelength is transferred from the cell to the culture solution. Based on finding that it is released. And based on such new knowledge, the method and apparatus which can measure a cell damage in real time have been completed.
That is, an object of the present invention is to provide a cell damage monitoring method and apparatus capable of measuring cell damage in real time while being simple and low-cost.
本発明に係る細胞障害のモニター方法は、被試験薬を含む培養液を培養細胞に与え、その後の培養液について、特定波長の光の吸収を経時的に計測することを特徴とする。
本発明によれば、細胞毒性の有無又はその程度を検出すべき被試験薬を含む培養液を培養細胞に与える。そうすると、細胞障害の発生に伴って培養液による特定波長の光吸収が変化することから、特定波長の光の吸収を経時的に計測することにより、細胞障害の発生又はその程度をリアルタイムにモニターすることができる。
The cell damage monitoring method according to the present invention is characterized in that a culture solution containing a drug to be tested is applied to cultured cells, and the absorption of light of a specific wavelength is measured over time for the subsequent culture solution.
According to the present invention, a culture solution containing a test drug to be detected for the presence or absence or the degree of cytotoxicity is given to cultured cells. Then, since the light absorption of the specific wavelength by the culture medium changes with the occurrence of the cell damage, the occurrence or degree of the cell damage is monitored in real time by measuring the absorption of the light of the specific wavelength over time. be able to.
また、本発明に係る細胞障害のモニター方法は、被試験薬を含む培養液を連続的に培養細胞に供給し、連続的に流出する培養液について、特定波長の光の吸収を経時的に連続して計測することを特徴とする。
本発明によれば、被試験薬を含む培養液の培養細胞への供給、培養細胞からの培養液の流出、特定波長の光吸収の計測は、全て連続的に行われる。そのため、流量等の条件を最初に設定しておけば、特に手間を掛けることなく容易に計測が行われる。そして、細胞障害の発生に伴って培養液による特定波長の光吸収が変化した場合、細胞障害の発生又はその程度をリアルタイムにモニターすることができる。
In addition, the method for monitoring cell damage according to the present invention continuously supplies a culture medium containing a test drug to cultured cells, and continuously absorbs light of a specific wavelength over time for a culture liquid that continuously flows out. And measuring.
According to the present invention, the supply of the culture solution containing the test drug to the cultured cells, the outflow of the culture solution from the cultured cells, and the measurement of light absorption at a specific wavelength are all performed continuously. Therefore, if conditions such as the flow rate are set first, the measurement can be easily performed without any trouble. And when light absorption of a specific wavelength by a culture solution changes with generation | occurrence | production of cell damage, generation | occurrence | production or the extent of cell damage can be monitored in real time.
また、本発明において、特定波長を略260nm又は略285nmとする場合、それらの波長の光吸収によって、細胞障害をモニターすることができる。 In the present invention, when the specific wavelength is about 260 nm or about 285 nm, cell damage can be monitored by light absorption at these wavelengths.
また、本発明に係る細胞障害のモニター方法は、被試験薬を含む培養液を培養細胞に供給し、流出する培養液について、特定波長の光の吸収を経時的に計測するとともに、被試験薬を含む培養液を前記培養細胞と異なる培養細胞に供給し、流出する培養液について、前記特定波長の光の吸収を経時的に計測する比較試験を同時に行うことを特徴とする。
本発明によれば、細胞毒性の有無又はその程度を検出すべき被試験薬を含む培養液を培養細胞に供給する。そうすると、細胞障害の発生に伴って培養液による特定波長の光吸収が変化することから、培養細胞に灌流して流出する培養液について、特定波長の光の吸収を経時的に計測することにより、細胞障害の発生又はその程度をリアルタイムにモニターすることができる。また、それとともに、細胞障害の発生に関して比較すべき培養細胞についても、比較試験を同時に行うことができる。両方の試験とも、リアルタイムでの計測が可能であることから、経時的に一致した比較試験の結果を得ることができる。
In addition, the method for monitoring cell damage according to the present invention supplies a culture solution containing a test drug to the cultured cells, measures the absorption of light of a specific wavelength over time for the flowing culture solution, and A comparison test is performed simultaneously, in which a culture solution containing is supplied to a culture cell different from the culture cells, and the flowing culture solution is measured over time for the absorption of light of the specific wavelength.
According to the present invention, a culture solution containing a test drug to be detected for the presence or absence of cytotoxicity or its degree is supplied to the cultured cells. Then, since the light absorption of a specific wavelength by the culture medium changes with the occurrence of cell damage, by measuring the absorption of light of a specific wavelength over time for the culture liquid that perfuses and flows out of the cultured cells, The occurrence or extent of cell damage can be monitored in real time. At the same time, a comparative test can be simultaneously performed on cultured cells to be compared with respect to the occurrence of cell damage. Since both tests can be measured in real time, it is possible to obtain the result of a comparative test that coincides with time.
また、本発明に係る細胞障害のモニター方法は、被試験薬を含む培養液を培養細胞に供給し、流出する培養液について、特定波長の光の吸収を経時的に計測するとともに、被試験薬を含まないか又は前記被試験薬と異なる被試験薬を含む培養液を培養細胞に供給し、流出する培養液について、前記特定波長の光の吸収を経時的に計測する比較試験を同時に行うことを特徴とする。
本発明によれば、細胞毒性の有無又はその程度を検出すべき被試験薬を含む培養液を培養細胞に供給する。そうすると、細胞障害の発生に伴って培養液による特定波長の光吸収が変化することから、培養細胞に灌流して流出する培養液について、特定波長の光の吸収を経時的に計測することにより、細胞障害の発生又はその程度をリアルタイムにモニターすることができる。また、それとともに、細胞障害の発生に関して比較すべき被試験薬又は被試験薬無しの場合についても、比較試験を同時に行うことができる。両方の試験とも、リアルタイムでの計測が可能であることから、経時的に一致した比較試験の結果を得ることができる。
In addition, the method for monitoring cell damage according to the present invention supplies a culture solution containing a test drug to the cultured cells, measures the absorption of light of a specific wavelength over time for the flowing culture solution, and Supply a culture solution containing a test drug that does not contain or different from the test drug to the cultured cells, and simultaneously perform a comparative test that measures the absorption of light of the specific wavelength over time for the flowing culture solution It is characterized by.
According to the present invention, a culture solution containing a test drug to be detected for the presence or absence of cytotoxicity or its degree is supplied to the cultured cells. Then, since the light absorption of a specific wavelength by the culture medium changes with the occurrence of cell damage, by measuring the absorption of light of a specific wavelength over time for the culture liquid that perfuses and flows out of the cultured cells, The occurrence or extent of cell damage can be monitored in real time. At the same time, a comparative test can be simultaneously performed for a drug to be compared or no drug to be tested regarding the occurrence of cell damage. Since both tests can be measured in real time, it is possible to obtain the result of a comparative test that coincides with time.
また、本発明に係る細胞障害のモニター装置は、培養液と、被試験薬を含む培養液とを切り換えて、培養細胞が封入される容器に供給する手段と、培養細胞を灌流して容器から流出する培養液又は被試験薬を含む培養液に対して、光を照射し特定波長の光の吸収を経時的に計測する手段と、計測された特定波長の光吸収の変化を情報処理する手段とを含むことを特徴とする。
本発明によれば、通常の培養液と、細胞毒性の有無又はその程度を検出すべき被試験薬を含む培養液とをどちらかに切り換えて、培養細胞が封入される容器に供給することができる。そして、容器内において、培養細胞を灌流して容器から流出する培養液又は被試験薬を含む培養液に対して、計測手段によって、光を照射し特定波長の光の吸収を経時的に計測する。細胞障害の発生に伴って培養液による特定波長の光吸収が変化することから、情報処理手段によって処理された計測結果によって、リアルタイムに、細胞障害の発生又はその程度を知ることができる。
Further, the cell damage monitoring apparatus according to the present invention comprises a means for switching between a culture solution and a culture solution containing a test drug and supplying the culture cell to a container in which the culture cell is sealed, and perfusing the culture cell from the container. Means for measuring the absorption of light of a specific wavelength over time by irradiating the culture medium containing the flowing out culture medium or drug to be tested, and means for processing information on changes in the measured light absorption of the specific wavelength It is characterized by including.
According to the present invention, the normal culture solution and the culture solution containing the drug to be tested for detecting the presence or absence of cytotoxicity are switched to either one and supplied to the container in which the cultured cells are enclosed. it can. Then, in the container, the measurement means irradiates light to the culture solution containing the culture solution or the drug to be tested that perfuses the cultured cells and flows out of the vessel, and measures the absorption of light of a specific wavelength over time. . Since the light absorption at a specific wavelength by the culture medium changes with the occurrence of cell damage, the occurrence or degree of cell damage can be known in real time from the measurement result processed by the information processing means.
また、各手段を備えるラインが複数設けられている場合は、各種の比較試験を含めて複数の試験を同時に行うことができる。
また、培養液と、被試験薬を含む培養液をそれぞれ貯留する槽がさらに設けられ、これらは複数のラインで共用されている場合は、複数の試験を同時に行う際に、培養液の槽と被試験薬を含む培養液の槽とを、共用することで装置を簡易化することができる。
Further, when a plurality of lines including each means are provided, a plurality of tests including various comparative tests can be performed simultaneously.
In addition, a tank for storing a culture solution and a culture solution containing a drug to be tested is further provided, and when these are shared by a plurality of lines, when performing a plurality of tests at the same time, The apparatus can be simplified by sharing the culture medium bath containing the drug under test.
本発明によれば、簡易で低コストでありながら、リアルタイムでの細胞障害の測定が可能な細胞障害のモニター方法及び装置を提供することができる。 According to the present invention, it is possible to provide a cell damage monitoring method and apparatus capable of measuring cell damage in real time while being simple and low-cost.
以下、本発明の実施の形態に係る細胞障害のモニター方法及びその装置について、添付の図面に基づいて説明する。なお、説明において、同一要素には同一符号を用い、重複する説明は省略する。
図1は、本発明の実施形態における細胞障害のモニター方法を実施するための細胞障害モニター装置1の一例である。試験に供する培養細胞に適した通常の培養液が収容された培養液槽2,及び細胞毒性の有無やそれがどの程度の毒性であるかを検出すべき被試験薬を含んだ培養液が収容された被試験薬含有培養液槽3が配置される。これらの槽から実験細胞封入容器6に至る流路には、切換弁4及びポンプ5が設置されており、通常の培養液と被試験薬含有培養液とを、切り換えて、そのどちらかを実験細胞封入容器に供給することができる。
実験細胞封入容器6は、培養液槽2内の培養液又は被試験薬含有培養液槽3内の被試験薬含有培養液が流入する流入口と、培養細胞を灌流した培養液が流出する流出口が、ほぼ容器の反対側に設けられている。容器内には、封入する細胞に適した支持物体、例えば、細胞接着性を備えるヒドロキシアパタイト等の多孔質個体や微粒子が備えられており、そこに試験に供される細胞が支持される。また、容器内の温度を所定の一定値に保つ手段が設けられている。
Hereinafter, a cell damage monitoring method and apparatus according to an embodiment of the present invention will be described with reference to the accompanying drawings. In the description, the same reference numerals are used for the same elements, and redundant descriptions are omitted.
FIG. 1 is an example of a cell
The
実験細胞封入容器6の流出口に繋がる下流の管路には、紫外光及び可視光を透過する窓部を備えた光測定部7が設けられている。光測定部7の窓部には、光源9からの光が照射される。光源9は、例えばキセノンランプであって、略260nm及び略285nmの波長を含む紫外光から可視光までの範囲を有する光を照射する。光源9から光測定部7に照射されて、光測定部7における培養液を透過した、略260nm又は略285nmの所定波長の光強度を測定するための光検出器10が設けられている。光検出器10は、例えば、光電子増倍管PMT等である。光測定部7の下流には、排液槽8が設けられている。
The downstream pipe line connected to the outlet of the
また、光検出器10の測定結果を記録、解析するとともに、切換弁4やポンプ5を制御する情報処理・制御装置11が設けられている。これは、例えばコンピュータからなり、光検出器10で検出した特定波長の光強度から、培養液による当該波長の光吸収の度合いの経時的変化を連続的に求め、それを記録し、また必要に応じて表示する。さらに、切換弁4を実験スタート時には通常の培養液槽2側に連通しておきポンプを作動させること、所定時間後に切換弁4を被試験薬含有培養液槽3側に切換えること、光検出器10からのデータによって、特定波長の光の吸収が所定の閾値に達したと判断した場合に、切換弁4を再び切り換えること、又はポンプの作動を止めて実験を終了すること等の制御を行ってもよい。
In addition, an information processing /
この図1の例に示した装置を用いた細胞障害のモニター方法について説明する。先ず、切換弁4を培養液槽2側に連通させた状態で、ポンプ5を稼働して、所定の実験細胞が封入された実験細胞封入容器6に培養液を灌流させる。ここでは、十分な時間灌流を行って、細胞を培養、増殖させてもよいが、そのような長時間をかけない場合であっても、通常の培養液によって、細胞を安定状態にするとともに、その際の実験細胞封入容器6から排出される培養液の特定波長光の光吸収度を基礎的なデータとして得るための時間は、培養液槽2からの供給を行う。
光測定部7においては、キセノンランプ等の光源9から照射された光は、実験細胞封入容器6において細胞を灌流して排出される培養液を透過して、光検出器10によって特定波長の光強度が検出される。特定波長としては、260nmかその近傍、285nmかその近傍、又はその両方の波長が候補として挙げられる。光測定部7を通過した培養液は、排液槽8に排出される。
A method for monitoring cell damage using the apparatus shown in the example of FIG. 1 will be described. First, in a state where the switching
In the
次に、切換弁4を、細胞に対する毒性を試験すべき被試験薬を含ませた培養液を収容する被試験薬含有培養液槽3に連通するように切り換える。そして、被試験薬含有培養液を実験細胞封入容器6の細胞に対して灌流させる。光検出器10は、継続的に実験細胞封入容器7からの排出培養液に対する特定波長の光強度を検出している。情報処理・制御装置11においては、光検出器10からの特定波長の光強度のデータに基づいて、培養液による光吸収度を経時的に記録している。
被試験薬の毒性によって、実験細胞封入容器6内の細胞が障害を受けると、細胞を灌流して排出される培養液による特定波長の光吸収、特に260nmと285nmの波長の光吸収が増加する。ここで、特に260nmの光の吸収度の変化が顕著に現れるが、これは、障害を受けた細胞から、ヌクレオチドやその重合体である核酸が漏れ出し、それによってこの波長の光を吸収していると考えられる。また、285nmの波長については、アミノ酸やその重合体であるペプチドかタンパク質が、障害を受けた細胞から漏れ出して、その波長の光を吸収するためと考えられる。
Next, the switching
When the cells in the
予め、特定波長の光の吸収度合いが、増加した場合の閾値を定めておけば、情報処理・制御装置11によって、閾値に達したことを検知した場合、ポンプ5を止めて実験を終了してもよく、また、切換弁4を切り換えて、通常の培養液を灌流するようにしてその後の変化を観察することも可能である。
If a threshold value when the degree of absorption of light of a specific wavelength increases is determined in advance, when the information processing /
この例では、実験細胞封入容器6から排出された後の培養液について、下流に設けた光測定部7において光吸収を測定したが、実験細胞封入容器6において、細胞の培養箇所と区分して灌流された培養液の溜まり部を設けて、そこの部分を光が透過するような透明にして、光の吸収を測定してもよい。その場合、光吸収の測定は連続的に行うが、培養液の供給と排出は必ずしも連続的に行わなくともよいため、培養液や被試験薬の量を節約できる。また、この例では、情報処理・制御装置11において、光検出器10で検出された光強度から光の吸収度を求めているが、透過した光強度と光吸収の度合いは逆の関係で現れるだけであるから、モニターする場合には、検出された光強度を光吸収に関する数値として直接採用してもよい。
また、情報処理・制御装置11によって、光検出器10による検出結果を自動的に処理するとともに、切換弁4やポンプ5を制御するようにしたが、このような自動化が必要ない場合は、人が適宜行ってもよい。
In this example, the light absorption of the culture solution after being discharged from the
In addition, the information processing /
次に、図2によって、本実施形態における他の例を説明する。この例では、細胞障害のモニター装置1は、図1で説明した装置を2つ並列に設置し、そのうちで、培養液槽2,被試験薬含有培養液槽3,排液槽8を共有化したものに相当する。それらを図においては、流路(A)と流路(B)として示している。
このような装置を用いると、各種の比較試験を行うことができる。図1の装置において説明したように、本実施形態では、リアルタイムでの細胞障害発生の観察が可能であることから、図2のように、並列に配置したそれぞれの流路において、リアルタイムでの観察が可能であるとともに、2つの流路での同時的な観察がなし得ることにおいて、従来のバッチ式の細胞障害の試験装置と大きく異なる。
Next, another example in the present embodiment will be described with reference to FIG. In this example, the cell
When such an apparatus is used, various comparative tests can be performed. As described in the apparatus of FIG. 1, in this embodiment, since it is possible to observe the occurrence of cell damage in real time, as shown in FIG. 2, real-time observation is performed in each flow path arranged in parallel. It is possible to perform simultaneous observation in two flow paths, and is greatly different from a conventional batch type cell damage testing apparatus.
図2の装置を用いた比較試験の一例として、同一の被試験薬に対する異なる細胞の細胞障害のモニターについて説明する。この場合、実験細胞封入容器6Aと6Bには、実験に供すべき異なる細胞をそれぞれ収容する。そして、図1において説明したと同様の実験をそれぞれの流路(A)と(B)において行うことになる。その場合の切換弁4A、4Bがどちらの槽2,3と連通するかのタイムチャートの例を図3に示す。図3のように、流路(A)と(B)での切換弁4A,4Bの切換は同じである。
先ず、切換弁4A,4Bは、培養液槽2に連通しており、実験細胞封入容器6A,6Bには、通常の培養液が供給されている。次に所定の時間経過後のt1において、切換弁4A,4Bを被試験薬含有培養液槽3に連通することにより、実験細胞封入容器6A、6Bには、同一の被試験薬含有培養液が供給される。この間、どちらの流路においても、光検出器10A,10Bによって光吸収が検出されている。そこで、どちらかの流路又は遅く細胞障害が現れた流路における光吸収の度合いが、図5に示すように時間t2を経過後に、所定の閾値nを越えたとすると、この時間t2を基準として、所定時間後のt3又はt2の時点において、切換弁4A,4Bを再度、培養液槽2に切り換えて、その後の経過を観察してもよく、あるいは、ポンプ5A,5Bを停止して実験を終了してもよい。
As an example of a comparative test using the apparatus shown in FIG. 2, monitoring of cell damage of different cells for the same drug to be tested will be described. In this case, different cells to be used for the experiment are accommodated in the
First, the switching
次に、図2の装置を用いて、同一の細胞に対して、被試験薬を与える場合と与えない場合の比較試験を行う例を説明する。実験細胞封入容器6A,6Bには、同一の細胞を収容する。そして、図4に示すように、流路(A)においては、図3のタイムチャートで述べたと同様の切換弁4Aの切換を行う。一方、流路(B)においては、切換弁4Bは、常に培養液槽2と連通させて、被試験薬含有培養液槽3とは連通させない。そのため、流路(B)における実験細胞封入容器6B内の細胞は、被試験薬を与えられることがなく、被試験薬を与えられた流路(A)の細胞との比較を行うことができる。
また、図2の装置において、被試験薬含有培養液槽3を、共通のものとせずに、流路(A)と(B)に別個に設ければ、異なる被試験薬を同一の細胞に対して実験できることはいうまでもない。
Next, an example will be described in which a comparison test is performed with and without the drug to be tested on the same cell using the apparatus of FIG. The same cells are accommodated in the
Further, in the apparatus of FIG. 2, if the drug-containing
図1〜図5によって説明した実施形態においては、光測定部7、7A、7Bにおいて、排出される培養液についての、特定波長の光の吸収を測定しておくことによって、特段の手間をかけることもなく、リアルタイムに細胞障害の発生を知ることができる。
また、その光吸収が大きく現れることは、細胞障害の程度が大きいことを示していることから、被試験薬の毒性の大きさも知ることができる。
また、細胞障害の発生を検出するための特殊な薬品を使用する必要もなく、単に培養細胞を灌流した液についての特定波長の光吸収を測定するだけで、細胞障害の発生やその程度をモニターすることができる。
さらに、細胞が死滅しない場合であっても、細胞障害の発生を検知できる。
In the embodiment described with reference to FIGS. 1 to 5, the
In addition, the fact that the light absorption appears greatly indicates that the degree of cell damage is large, so that the magnitude of toxicity of the test drug can also be known.
In addition, there is no need to use special chemicals to detect the occurrence of cell damage, and the occurrence and extent of cell damage can be monitored simply by measuring the light absorption at a specific wavelength for the fluid perfused with cultured cells. can do.
Furthermore, the occurrence of cell damage can be detected even when the cells do not die.
「実施例1」この実施例においては、本発明の有用性を明らかにするために、図1に記載の装置を用い、被試験薬含有培養液としては薬品ではないが細胞障害を発生することが確実な低浸透圧の培養溶液HBSSを用いて実験を行った。
ラット胃粘膜細胞に由来する培養細胞株RGM1を、直径ハイドロキシアパタイト顆粒(直径0.2mm)の表面で培養し、この顆粒群を直径5mmで長さ10mmの円筒形プラスティックの実験細胞封入容器6に満載して詰めた。培養液槽2には、培養溶液HBSSを貯留し、切換弁4を培養液槽2に連通して、ポンプ5を稼働することで、実験細胞封入容器6内の培養細胞に対して、培養溶液HBSSを0.2ml/分の流量で灌流した。
灌流後に実験細胞封入容器6から排出される培養液について、光測定部7において、測定を行った。光源9には、100Wのキセノンランプを用いて、波長260nm、285nm、445nm、500nmの光を照射して、透過した光強度を光検出器10で検出することで、培養液による光吸収量を連続測定した。
培養細胞が安定した状態であることを確認し、切換弁4を被試験薬含有培養液槽3側に切り換えた。被試験薬含有培養液槽3には、蒸留水で希釈した50%の低浸透圧培養溶液HBSSを貯留しており、切換弁4の切換後は、この低浸透圧HBSSによって、前記と同様の流量で培養細胞を灌流した。
各波長の光の吸収量についての、50%HBSSへの切換後の連続的な測定結果は、図6のとおりであった。
[Example 1] In this example, in order to clarify the usefulness of the present invention, the apparatus shown in FIG. The experiment was conducted using a culture solution HBSS having a low osmotic pressure.
A cultured cell line RGM1 derived from rat gastric mucosa cells is cultured on the surface of hydroxyapatite granules (diameter 0.2 mm), and these granules are packed in a cylindrical plastic
The culture solution discharged from the
After confirming that the cultured cells were in a stable state, the switching
The continuous measurement result after switching to 50% HBSS was shown in FIG. 6 for the amount of light absorbed by each wavelength.
細胞障害の発生に伴って、光を吸収する物質が細胞から多く漏れ出てきたことが分かる。漏れパターンは各波長で異なっており、260nmの波長の光吸収物質はヌクレオチドとその重合体である核酸、285nmの波長の光吸収物質はアミノ酸とその重合体であるペプチドか蛋白質が候補であり、445nmの波長の光吸収物質はフラビン類と推測される。図6のとおり、260nmの波長の光の吸収の変化が、最も顕著に現れており、285nmがそれに次ぐ。
このように、低浸透圧ストレスによる細胞障害について、細胞を灌流した培養液に対する特定波長、例えば、260nm、285nm、445nm近傍における光吸収の増加により検出できることが分かる。
It can be seen that a large amount of light-absorbing substances leaked from the cells with the occurrence of cell damage. Leakage patterns are different at each wavelength. The light-absorbing substance with a wavelength of 260 nm is a nucleotide and its polymer nucleic acid, and the light-absorbing substance with a wavelength of 285 nm is an amino acid and its peptide or protein as a candidate. A light absorbing substance having a wavelength of 445 nm is presumed to be flavins. As shown in FIG. 6, the change in absorption of light having a wavelength of 260 nm appears most prominently, and 285 nm follows.
Thus, it can be seen that cell damage due to low osmotic pressure stress can be detected by an increase in light absorption in the vicinity of a specific wavelength, for example, 260 nm, 285 nm, and 445 nm, with respect to the culture medium perfused with cells.
「実施例2」実施例1と同じ装置と培養細胞を用いて、細胞膜の膜脂質の酸化による細胞障害を起こすとされている酸化剤を被試験薬として実験を行った。被試験薬含有培養液として、酸化剤である2,2'-azobis(2-amidinopropane)dihydrochloride (AAPH)を用いた。AAPHを0.1mMの濃度で含む培養液HBSSを被試験薬含有培養液槽3に貯留し、実施例1と同様の流量によって実験細胞封入容器6内の培養細胞を灌流した。このAAPHを含む培養液の灌流直後からの、各波長の光についての灌流後の培養液の光吸収の測定結果は、図7のとおりである。
これによって、AAPHによる膜脂質の酸化による細胞障害によって、260nmと285nmの波長の光を吸収する物質が細胞から漏れ出てくることが明らかとなった。漏出パターンは両波長で異なり、260nm吸収物質はAAPH投与直後に急激に放出されたが、285nm吸収物質は投与後しばらく微量な漏れが続き、約60分後に急激な漏れが生じた。この流出の加速は110分後になくなり、その後の流出速度は高いレベルで維持された。
2波長で吸収物質の流出速度の経時的変化パターンが違うことから、AAPHによる膜脂質の酸化に誘導されて、260nmと285nmを別々に吸収する複数の物質が細胞外に漏れ出たことが明らかとなった。なお、445nmに吸収特性を持つ物質の流出量は、図6で示した低浸透圧処理に比べて少量であった。これらの結果から、260nmと285nmの近傍の波長において細胞培養液の光吸収量を測定することにより、細胞膜の脂質酸化ストレスによる細胞障害を検出できることが示された。
このように、この実施例においても、細胞障害は細胞を灌流した培養液に対する特定波長、例えば、260nm、285nmにおける光吸収の増加により検出できることが分かる。
[Example 2] Using the same apparatus and cultured cells as in Example 1, an experiment was conducted using an oxidant that is supposed to cause cell damage due to oxidation of membrane lipids in the cell membrane as a test drug. 2,2'-azobis (2-amidinopropane) dihydrochloride (AAPH), which is an oxidant, was used as a test solution-containing culture solution. A culture solution HBSS containing AAPH at a concentration of 0.1 mM was stored in the test solution-containing
This revealed that substances that absorb light of wavelengths of 260 nm and 285 nm leak from the cells due to cell damage caused by oxidation of membrane lipids by AAPH. The leakage pattern was different at both wavelengths, and the 260 nm absorbing substance was released rapidly immediately after AAPH administration, but the 285 nm absorbing substance continued to leak for a while after administration, and sudden leakage occurred about 60 minutes later. This spill acceleration disappeared after 110 minutes and the subsequent spill rate was maintained at a high level.
It is clear that multiple substances that absorb 260nm and 285nm separately leaked out of the cell due to the oxidation of membrane lipids by AAPH because the time-dependent change pattern of the outflow rate of the absorbing substance at two wavelengths. It became. In addition, the outflow amount of the substance having an absorption characteristic at 445 nm was small compared with the low osmotic pressure treatment shown in FIG. From these results, it was shown that cell damage due to lipid oxidative stress in the cell membrane can be detected by measuring the light absorption amount of the cell culture solution at wavelengths near 260 nm and 285 nm.
Thus, also in this example, it can be seen that cell damage can be detected by an increase in light absorption at specific wavelengths, for example, 260 nm and 285 nm, with respect to the culture medium perfused with cells.
「実施例1,実施例2の確認試験」実施例1,2による低浸透圧と脂質酸化剤の処理によって細胞を刺激したときに、図6と図7で見られた紫外光吸収物質流出現象が細胞障害の発生とどのような経時的関係を持つかを確認するために、各刺激によるミトコンドリアと細胞膜の機能への影響を従来の障害度測定技術により調べた。
ミトコンドリアの機能に関しては、試薬キットTetra Color ONE(生化学工業)を用いて、ミトコンドリア脱水素酵素の活性を測定した。細胞膜機能に関しては、市販薬CytoTox96(Promega)を用いて細胞膜の半透性喪失によって細胞外に漏れ出る乳酸脱水素酵素の活性を測定した。
"Confirmation test of Example 1 and Example 2" When the cells were stimulated by the low osmotic pressure and the treatment with the lipid oxidant according to Examples 1 and 2, the ultraviolet light absorbing substance outflow phenomenon seen in Figs. In order to confirm the relationship between the occurrence of cell damage and the time course of cell damage, the influence of each stimulus on the function of mitochondria and cell membrane was examined by a conventional technique for measuring the degree of damage.
Regarding the function of mitochondria, the activity of mitochondrial dehydrogenase was measured using a reagent kit Tetra Color ONE (Seikagaku Corporation). Regarding the cell membrane function, the activity of lactate dehydrogenase leaking out of the cell due to the semipermeable loss of the cell membrane was measured using a commercially available drug CytoTox96 (Promega).
ミトコンドリアは酸素呼吸によってATPを合成する機能を持ち、細胞の生存に重要な器官であるため、細胞障害度の調査ではミトコンドリア機能レベルへの影響が重要となる。ミトコンドリア機能はミトコンドリア内に局在する脱水素酵素の活性に依存する。そこで、低浸透圧溶液(50%HBSS)又は膜脂質酸化剤(AAPH)に暴露されたRGM1培養細胞において、ミトコンドリア内在性脱水素酵素の活性の経時的変化を調べた。
未処理の細胞での障害度を0%、蒸留水で20分間処理して死滅させた細胞での障害度を100%と設定し、いろいろな時間でストレス処理した測定値を規格化して、その結果を図8に示した。
どちらの処理でも測定値はよく似た変化を示し、共に処理30分後には酵素活性が半分近くまで減少した。これは与えたストレス刺激によりミトコンドリア機能が障害を受けたことを示す。しかし、処理開始から2時間経過後もミトコンドリア活性は完全に喪失することはなく、両処理下で共に低いレベルに維持され続けたことから、これらのストレス刺激は全てのRGM1細胞を死滅させるものではないことが判った。
図8でのミトコンドリア活性の衰弱は与えたストレスによる細胞障害を反映しているが、障害を受けた細胞の生死情報は不確定である。
Since mitochondria have the function of synthesizing ATP by oxygen respiration and are an important organ for cell survival, the influence on the level of mitochondrial function is important in the investigation of the degree of cytotoxicity. Mitochondrial function depends on the activity of dehydrogenases located within mitochondria. Therefore, changes in the activity of mitochondrial endogenous dehydrogenase over time were examined in RGM1 cultured cells exposed to a hypotonic solution (50% HBSS) or a membrane lipid oxidant (AAPH).
The degree of damage in untreated cells was set to 0%, the degree of damage in cells killed by treatment with distilled water for 20 minutes was set to 100%, and the measured values after stress treatment at various times were normalized. The results are shown in FIG.
In both treatments, the measured values showed similar changes, and both enzyme activities decreased to almost half after 30 minutes of treatment. This indicates that mitochondrial function was impaired by the applied stress stimulus. However, mitochondrial activity was not completely lost even after 2 hours from the start of treatment, and these stress stimuli did not kill all RGM1 cells because both treatments were maintained at low levels. I found that there was no.
Although the weakening of mitochondrial activity in FIG. 8 reflects cell damage due to applied stress, the life / death information of the damaged cell is indeterminate.
そこで次に、処理細胞の生死を判定するために、培養液中のLDH活性を測定した。生きている細胞では、蛋白質や核酸や糖などの生体物質が細胞膜の半透性により細胞内に閉じ込められている。細胞が死ねば、それに伴う細胞膜の破損により、それら高分子物質は細胞外に漏れ出る。細胞膜の半透性の破壊の割合に反映される死細胞の割合は、漏れ出た蛋白質の一種であるLDHの酵素活性量で評価することができる。図9に、RGM1細胞を50%HBSS又は0.1mMAAPHでいろいろな時間処理し、培養液中のLDH活性を測定した結果を示した。細胞を含まない条件での測定値を0%、20分間蒸留水処理した死滅細胞での障害度を100%として、測定値を規格化した。未処理細胞の培養液LDH量は細胞内全量の1.6〜1.8%と微弱ながら見られた。
刺激処理した細胞の培養液LDH活性は処理時間に依存して少しずつ増加したが、2時間処理でも希釈培養液で約6.8%、脂質酸化剤で約4.9%と、漏れLDH活性は微量であった。ストレス2時間暴露後でも死に至った細胞の割合は約5%と少ないことから、これらのストレス刺激は大部分の細胞に破壊的な死を導かないが、ミトコンドリア機能には大きな減少効果をもたらす障害レベルであることが判った。
Therefore, in order to determine whether the treated cells were alive or dead, the LDH activity in the culture solution was measured. In living cells, biological substances such as proteins, nucleic acids, and sugars are trapped in the cells due to the semi-permeability of the cell membrane. If the cell dies, the polymer membrane leaks out of the cell due to the damage of the cell membrane. The ratio of dead cells reflected in the ratio of semipermeable disruption of the cell membrane can be evaluated by the amount of enzyme activity of LDH, which is a kind of leaked protein. FIG. 9 shows the results of measuring the LDH activity in the culture medium after treating RGM1 cells with 50% HBSS or 0.1 mM AAPH for various times. The measurement value was normalized by setting the measurement value in a condition not containing cells to 0% and the degree of damage in dead cells treated with distilled water for 20 minutes as 100%. The culture solution LDH amount of untreated cells was seen as weak as 1.6 to 1.8% of the total intracellular amount.
The LDH activity of the stimulated cells increased little by little depending on the treatment time, but the leaked LDH activity was about 6.8% for the diluted culture and about 4.9% for the lipid oxidant even after 2 hours treatment. Was a trace amount. These stress stimuli do not lead to devastating death in most cells, although the percentage of cells that die even after 2 hours of stress exposure is low at about 5%. It turned out to be a level.
図8,9の結果に基づいて、図6,7の流出物質を考察した。
まず、一般に285nmに吸収を持つ物質はアミノ酸のチロシンとトリプトファン及びそれらを含む蛋白質である。このうち、蛋白質が細胞外へ漏れ出れば、その量は培養液中に漏れ出た蛋白質に含まれるLDH量に反映する。図9で見られたLDH量はどちらのストレス刺激でも処理開始直後から時間依存的に穏やかに増加しており、蛋白質の流出量が徐々に均一に増えたことを示す。
他方、285nm吸収物質の流出量は細胞外LDH量と異なったパターンで変化していた。50%HBSS刺激では、285nm吸収物質は処理直後の微弱な流出増加に続いて40分あたりから流出速度を高めた。
AAPH刺激でも、その流出量は処理開始後の微弱な流出増加に続いて約80分から加速度的に多量流出し始めた。両条件下での流出速度の加速はしばらく続いた後に消え、その後は高い流出速度レベルで安定した。このように、285nm吸収物質とLDHに代表される蛋白質の細胞外流出量の変化パターンが一致していないので、ストレス刺激で漏れ出た285nm吸収物質は、その大部分が蛋白質ではなくアミノ酸であろうと推測される。
Based on the results of FIGS. 8 and 9, the effluents of FIGS. 6 and 7 were considered.
First, substances having absorption at 285 nm are amino acids tyrosine and tryptophan and proteins containing them. Of these, if the protein leaks out of the cell, the amount is reflected in the amount of LDH contained in the protein leaked into the culture solution. The LDH amount observed in FIG. 9 increased gently in a time-dependent manner immediately after the start of treatment with both stress stimuli, indicating that the amount of protein efflux gradually and uniformly increased.
On the other hand, the outflow amount of the 285 nm absorbing substance changed in a pattern different from the extracellular LDH amount. With 50% HBSS stimulation, the 285 nm absorbing material increased the efflux rate from around 40 minutes following a slight increase in efflux immediately after treatment.
Even with AAPH stimulation, the amount of spillage started to flow out at a high rate from about 80 minutes following a slight increase in spillage after the start of treatment. The outflow velocity acceleration under both conditions disappeared after a while and then stabilized at a high outflow rate level. As described above, the change pattern of extracellular efflux of 285 nm absorbing substance and protein represented by LDH does not match. Therefore, most of the 285 nm absorbing substance leaked by stress stimulation is not a protein but an amino acid. I guess it would be.
次に、波長260nm吸収物質に関して考察した。この物質はその吸収波長からヌクレオチドおよびその巨大重合体であるRNAやDNA核酸が候補となる。巨大分子である核酸が細胞外に漏れるためには、蛋白質の場合と同様に、細胞膜の物理的な破壊が必須となる。細胞からの核酸の流出は蛋白質の流出と同じ変化パターンを示すはずであり、したがって、流出する核酸の量は図9の培養液LDH活性と同様に、ゆっくりと均一に増えることが予想される。しかしながら、260nm吸収物質の流出量は、50%HBSS処理において30分近傍に極大ピークを伴って一時的に増加し、AAPH処理においても45分近傍で増加の肩を示した。このような一時的な増加パターンは細胞外LDH活性の変化パターンと一致しないことから、主要な260nm吸収物質は、高分子核酸のRNAやDNAではなく、その構成ユニットのヌクレオチド単量体であると推測される。 Next, the 260 nm wavelength absorbing material was considered. This substance is a candidate for nucleotides and RNA or DNA nucleic acids that are macromolecules based on the absorption wavelength. In order for nucleic acids, which are macromolecules, to leak out of the cell, physical destruction of the cell membrane is essential as in the case of proteins. Nucleic acid efflux from cells should show the same pattern of change as protein efflux, and thus the amount of nucleic acid efflux is expected to increase slowly and evenly, similar to the culture LDH activity of FIG. However, the outflow amount of the 260 nm absorbing material temporarily increased with a maximum peak in the vicinity of 30 minutes in the 50% HBSS treatment, and showed an increase in the vicinity of 45 minutes in the AAPH treatment. Since such a temporary increase pattern does not coincide with the change pattern of extracellular LDH activity, the main 260 nm absorption substance is not a RNA or DNA of a high molecular nucleic acid but a nucleotide monomer of its constituent unit. Guessed.
以上から、培養細胞の培養液中において、波長260nm及び285nm近傍の紫外光の吸収量を測定することにより、ストレス刺激により誘発される細胞障害を検出でき、かつ細胞死に至らない微弱な細胞障害の段階で検出できることが示された。また、細胞から漏れ出る紫外光吸収物質はアミノ酸やヌクレオチドのような低分子物質であることが推測された。 From the above, by measuring the amount of absorption of ultraviolet light at wavelengths of 260 nm and 285 nm in the culture solution of cultured cells, cell damage induced by stress stimulation can be detected and weak cell damage that does not lead to cell death can be detected. It was shown that it could be detected in stages. Moreover, it was speculated that the ultraviolet light-absorbing substance leaking from the cells is a low-molecular substance such as an amino acid or a nucleotide.
1‥細胞障害のモニター装置、2‥培養液槽、3‥被試験薬含有培養液槽、4‥切換弁、5‥ポンプ、6‥実験細胞封入容器、7‥光測定部、8‥排液槽、9‥光源、10‥光検出器、11‥情報処理・制御装置
DESCRIPTION OF
Claims (8)
前記培養細胞を灌流して前記容器から流出する前記培養液又は前記被試験薬を含む培養液に対して、光を照射し特定波長の光の吸収を経時的に計測する手段と、
計測された特定波長の光吸収の変化を情報処理する手段とを含むことを特徴とする細胞障害のモニター装置。 Means for switching between the culture solution and the culture solution containing the drug to be tested, and supplying the vessel to which the cultured cells are enclosed;
Means for irradiating light to the culture solution containing the drug to be tested or the test solution to be perfused from the container by perfusing the cultured cells, and measuring the absorption of light of a specific wavelength over time;
And a means for processing information on a change in light absorption measured at a specific wavelength.
The cell damage monitoring apparatus according to claim 7, further comprising a tank for storing the culture solution and a culture solution containing the drug to be tested, which are shared by the plurality of lines. .
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP2007270471A JP2009095291A (en) | 2007-10-17 | 2007-10-17 | Method of and device for monitoring cytotoxicity |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP2007270471A JP2009095291A (en) | 2007-10-17 | 2007-10-17 | Method of and device for monitoring cytotoxicity |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JP2009095291A true JP2009095291A (en) | 2009-05-07 |
Family
ID=40698898
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP2007270471A Pending JP2009095291A (en) | 2007-10-17 | 2007-10-17 | Method of and device for monitoring cytotoxicity |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JP2009095291A (en) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JP2014171434A (en) * | 2013-03-08 | 2014-09-22 | National Institute Of Advanced Industrial & Technology | Method for producing stomach tissue cell |
WO2017018382A1 (en) * | 2015-07-24 | 2017-02-02 | ロート製薬株式会社 | Cell evaluation method, high-performance cell or drug screening method, and pharmaceutical composition |
-
2007
- 2007-10-17 JP JP2007270471A patent/JP2009095291A/en active Pending
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JP2014171434A (en) * | 2013-03-08 | 2014-09-22 | National Institute Of Advanced Industrial & Technology | Method for producing stomach tissue cell |
WO2017018382A1 (en) * | 2015-07-24 | 2017-02-02 | ロート製薬株式会社 | Cell evaluation method, high-performance cell or drug screening method, and pharmaceutical composition |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
US20050282152A1 (en) | Drug testing with bio-artificial organ slices including for example those derived from liver | |
JP2010501867A (en) | Method and apparatus for detecting living phytoplankton cells in water | |
BR112013026319B1 (en) | method and apparatus for monitoring a patient's treatment, preferably for monitoring hemodialysis, hemodiafiltration and/or peritoneal dialysis | |
JP2018516105A (en) | Process challenge device for automatic endoscope cleaning equipment | |
WO2013116834A2 (en) | Microfluidic device for generating neural cells to simulate post-stroke conditions | |
Alvarez-Leefmans et al. | [19] Use of ion-selective microelectrodes andfluorescent probes to measure cell volume | |
US20210301261A1 (en) | Human liver microphysiology platform and self assembly liver acinus model and methods of their use | |
JP2021507257A (en) | Methods and sensors to detect the presence or absence of contaminants | |
JP2009095291A (en) | Method of and device for monitoring cytotoxicity | |
Gowers et al. | An improved rapid sampling microdialysis system for human and porcine organ monitoring in a hospital setting | |
US9657260B2 (en) | Method and system for continous monitoring of toxicity | |
Gu et al. | In vivo and continuous measurement of bisulfide in the hippocampus of rat's brain by an on-line integrated microdialysis/droplet-based microfluidic system | |
US10151675B2 (en) | Method and device for increasing the optical transparency of regions of a tissue sample | |
BR112020001089A2 (en) | modified filter membrane and use of it | |
KR101619170B1 (en) | Microfluidic Chip for Sequencial Monitoring of Cell Susceptiblity to Samples | |
EP3289962A1 (en) | Endoscope reprocessor | |
Yamamoto et al. | A novel perfusion culture system for screening mitochondrial toxicity in primary mouse hepatocytes | |
US20070048734A1 (en) | Novel enhanced processes for drug testing including neoplasmic tissue slices and products thereby | |
JP4710005B2 (en) | Device for measuring ion concentration in biological fluids | |
CA2716269A1 (en) | Method and apparatus to conduct kinetic analysis of platelet function in whole blood samples | |
Rivera | Microphysiological System with Continuous Control and Sensing of Oxygen Elucidates Hypoxic Intestinal Epithelial Stem Cell Fates | |
JP2006187227A (en) | Method for measuring adhesive cell count and method for testing effect of drug using the same method | |
Wenzel et al. | Drug release from bone implants in-vitro: An experimental setup | |
JP2021048773A (en) | Cell proliferation apparatus | |
Formenti et al. | Experimental investigation of the effect of polymer matrices on polymer fibre optic oxygen sensors and their time response characteristics using a vacuum testing chamber and a liquid flow apparatus |