JP2009031121A - Biological sample preserving test tube - Google Patents
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Abstract
Description
本発明は、生体試料保存用試験管に関し、さらに詳しくは、微量の蛋白質やペプチドの吸着が起こりにくく、プロテオーム解析にも使用できる生体試料保存用試験管、特に尿検査試験管に関するものである。 The present invention relates to a biological sample storage test tube, and more particularly to a biological sample storage test tube, particularly a urine test test tube, which hardly adsorbs a minute amount of protein or peptide and can be used for proteomic analysis.
尿には、病態に関連する様々な物質、例えば、蛋白質、糖、電解質、血液などが含まれており、それらの有無や濃度を測定することにより、病気の有無、状態を知ることができる。そのため、現在、尿中のグルコース、クレアチニン、NAG、尿中アルブミン、カルシウム、マグネシウム、ナトリウム、カリウム、クロル等の項目を測定することが実用化されている。その様な場合、人体から排泄された尿を尿検査試験管に移して、これらの項目を測定している。また、尿成分として赤血球や白血球、尿酸、細胞、細菌などの固形成分の量や種類を調べるには、尿検査試験管として尿沈渣管が用いられている(特許文献1)。 Urine contains various substances related to pathological conditions, such as proteins, sugars, electrolytes, blood, and the like, and the presence or state of a disease can be known by measuring the presence or concentration thereof. Therefore, measuring items such as urine glucose, creatinine, NAG, urinary albumin, calcium, magnesium, sodium, potassium, chlor and the like is currently in practical use. In such a case, urine excreted from the human body is transferred to a urine test tube, and these items are measured. In order to examine the amount and type of solid components such as red blood cells, white blood cells, uric acid, cells, and bacteria as urine components, a urine sediment tube is used as a urine test tube (Patent Document 1).
一方、ここ数年、プロテオーム解析の研究が急速に進展し、種々の疾患特異的マーカーが新たに報告されてきている。尿を対象としたプロテオーム解析も広く取り組まれており、腎・泌尿器科疾患を対象により良いバイオマーカーの探索が検討されている。このような疾患プロテオミク研究では、疾患に関連した尿をいかに収集・保存するかが重要な問題であり、日常検査で採取した検体をそのまま保存できれば、簡便かつ迅速に研究に着手できる。従って、日常検査で扱う尿検査試験管がそのままサンプル収集に使えると、煩雑さが伴わずに有用である。 On the other hand, in recent years, research on proteome analysis has progressed rapidly, and various disease-specific markers have been newly reported. Proteome analysis for urine has been widely pursued, and the search for better biomarkers for renal and urological diseases is being studied. In such disease proteomic research, how to collect and store urine related to the disease is an important issue. If samples collected in daily examinations can be stored as they are, research can be started easily and quickly. Therefore, if a urine test tube handled in daily inspection can be used as it is for sample collection, it is useful without being complicated.
しかしながら、本発明者の検討によると、日常検査に使用されている尿検査試験管をプロテオーム解析の研究に用いると、通常の尿検査では問題とならなかった、サンプル保存において微量のタンパク質やペプチド吸着が起こり、結果を間違って解釈するという問題があるということを発見した。
本発明は、このような事情のもとで、微量の蛋白質やペプチドの吸着が起こりにくく、プロテオーム解析にも使用できる生体試料保存用試験管、特に尿検査試験管を提供することを目的とする。 Under such circumstances, an object of the present invention is to provide a biological sample storage test tube, particularly a urine test test tube, which hardly absorbs a minute amount of protein or peptide and can be used for proteome analysis. .
本発明者らは、前記目的を達成するために鋭意研究を重ねた。その結果、驚くべきことに、特定の共重合比の共重合体を市販の尿検査試験管にコーティングすると、尿検査試験管自体に尿を入れても蛋白が吸着しにくく、尿検査項目も正確に測定できかつプロテオーム解析も正確にできることを見出し、その知見に基づいて本発明を完成するに至った。 The inventors of the present invention have made extensive studies in order to achieve the above object. As a result, surprisingly, when a copolymer with a specific copolymerization ratio is coated on a commercially available urine test tube, even if urine is put into the urine test tube itself, it is difficult for protein to be adsorbed and the urine test items are accurate. The inventors have found that proteomic analysis can be performed accurately and the present invention has been completed based on the findings.
本発明は、以下のとおりである。
(1)単量体としてホスホリルコリン基を有する単量体(a)と疎水性単量体(b)とを含み、かつその共重合比a/bが35/65〜75/25である共重合体を原材料である試験管にコーティングしてなることを特徴とする生体試料保存用試験管。
(2)尿検査試験管である、上記(1)に記載の生体試料保存用試験管。
(3)プロテオーム解析用試験管を兼用している、上記(1)または(2)に記載の生体試料保存用試験管。
(4)プロテオーム解析が、分子量が1000〜6000の低分子量域の尿プロテオーム解析である、上記(3)に記載の生体試料保存用試験管。
(5)生体試料保存用試験管が尿沈渣管である、上記(1)〜(4)のいずれかに記載の生体試料保存用試験管。
(6)尿検査試験管が透明である、上記(1)〜(5)のいずれかに記載の生体試料保存用試験管。
(7)ホスホリルコリン基を有する単量体が2−メタクリロイルオキシエチルホスホリルコリンであり、疎水性単量体がメタクリル酸−n−ブチルエステルである、上記(1)〜(6)のいずれかに記載の生体試料保存用試験管。
(8)使い捨ての生体試料保存用試験管である、上記(1)〜(7)のいずれかに記載の生体試料保存用試験管。
(9)共重合体の共重合比a/bが40/60〜60/40である、上記(1)〜(8)のいずれかに記載の生体試料保存用試験管。
(10)上記(1)〜(9)のいずれかに記載した生体試料保存用試験管に尿を入れ、その尿中の尿検査項目を測定し、一方、残りの尿をプロテオーム解析することを特徴とするプロテオーム解析法。
(11)原材料である試験管に、単量体としてホスホリルコリン基を有する単量体(a)と疎水性単量体(b)とを含みかつその共重合比a/bが35/65〜75/25である共重合体の溶液を接触させ、得られる尿検査試験管を乾燥することを特徴とするプロテオーム解析兼用尿検査試験管の製造方法。
The present invention is as follows.
(1) Copolymer comprising a monomer (a) having a phosphorylcholine group as a monomer and a hydrophobic monomer (b) and having a copolymerization ratio a / b of 35/65 to 75/25 A test tube for storing biological samples, characterized in that the coalescence is coated on a test tube which is a raw material.
(2) The biological sample storage test tube according to (1) above, which is a urine test test tube.
(3) The biological sample storage test tube according to (1) or (2), which also serves as a proteome analysis test tube.
(4) The test tube for biological sample storage according to the above (3), wherein the proteome analysis is a urinary proteome analysis in a low molecular weight region having a molecular weight of 1000 to 6000.
(5) The biological sample storage test tube according to any one of (1) to (4), wherein the biological sample storage test tube is a urine sediment tube.
(6) The biological sample storage test tube according to any one of (1) to (5), wherein the urine test test tube is transparent.
(7) The monomer according to any one of (1) to (6), wherein the monomer having a phosphorylcholine group is 2-methacryloyloxyethyl phosphorylcholine, and the hydrophobic monomer is methacrylic acid-n-butyl ester. Test tube for biological sample storage.
(8) The biological sample storage test tube according to any one of (1) to (7), which is a disposable biological sample storage test tube.
(9) The test tube for biological sample storage according to any one of (1) to (8), wherein the copolymer has a copolymerization ratio a / b of 40/60 to 60/40.
(10) Putting urine into the biological sample storage test tube described in any one of (1) to (9) above, measuring urinalysis items in the urine, and proteomic analysis of the remaining urine Characteristic proteome analysis method.
(11) A test tube which is a raw material contains a monomer (a) having a phosphorylcholine group as a monomer and a hydrophobic monomer (b), and the copolymerization ratio a / b thereof is 35/65 to 75 A method for producing a urinalysis test tube for proteome analysis, which comprises contacting a solution of a copolymer of / 25 and drying the obtained urinalysis test tube.
本発明の生体試料保存用試験管は、単量体としてホスホリルコリン基を有する単量体(a)と疎水性単量体(b)とを含み、かつその共重合比a/bが35/65〜75/25である共重合体を原材料である試験管にコーティングしてなることを特徴とする。 The test tube for biological sample storage of the present invention comprises a monomer (a) having a phosphorylcholine group as a monomer and a hydrophobic monomer (b), and the copolymerization ratio a / b thereof is 35/65. A test tube which is a raw material is coated with a copolymer of ~ 75/25.
本発明に用いる共重合体中のホスホリルコリン基を有する単量体とは、下記式 The monomer having a phosphorylcholine group in the copolymer used in the present invention has the following formula:
で表されるホスホリルコリン基を有する単量体であれば、特に限定されないが、通常、ビニル基とホスホリルコリン基とを有する単量体が好ましく例示できる。具体的には、2−メタクリロイルオキシエチルホスホリルコリン、2−アクロイルオキシエチルホスホリルコリン、3−メタクリロイルオキシプロピルホスホリルコリン、3−アクロイルオキシプロピルホスホリルコリン、4−メタクリロイルオキシブチルホスホリルコリン、4−アクロイルオキシブチルホスホリルコリン、アリルホスホリルコリン、ブテニルホスホリルコリン等を例示できる。これらの単量体のうち、下記式 Although it will not specifically limit if it is a monomer which has the phosphorylcholine group represented by these, Usually, the monomer which has a vinyl group and a phosphorylcholine group can illustrate preferably. Specifically, 2-methacryloyloxyethyl phosphorylcholine, 2-acryloyloxyethyl phosphorylcholine, 3-methacryloyloxypropyl phosphorylcholine, 3-acryloyloxypropyl phosphorylcholine, 4-methacryloyloxybutylphosphorylcholine, 4-acryloyloxybutylphosphorylcholine, Examples include allyl phosphoryl choline and butenyl phosphoryl choline. Among these monomers, the following formula
で表される2−メタクリロイルオキシエチルホスホリルコリンが入手の点から好ましい。 The 2-methacryloyloxyethyl phosphorylcholine represented by these is preferable from an acquisition point.
本発明に用いる共重合体中の疎水性単量体としては、ホスホリルコリン基を有する単量体と共重合可能な疎水性単量体が好ましい。そのような疎水性単量体としては、メタクリル酸エステル、アクリル酸エステル、スチレン系単量体、ビニルエーテル単量体、アルケン単量体、モノカルボン酸ビニル単量体、イタコン酸ジアルキルエステル単量体を例示できる。 The hydrophobic monomer in the copolymer used in the present invention is preferably a hydrophobic monomer copolymerizable with a monomer having a phosphorylcholine group. Examples of such hydrophobic monomers include methacrylic acid esters, acrylic acid esters, styrene monomers, vinyl ether monomers, alkene monomers, vinyl monocarboxylate monomers, dialkyl itaconate monomers. Can be illustrated.
メタクリル酸エステル単量体としては、メタクリル酸−n−ブチル、メタクリル酸メチル、メタクリル酸エチル、メタクリル酸プロピル、メタクリル酸ブチル、メタクリル酸ペンチル、メタクリル酸ヘキシル、メタクリル酸ヘプチル、メタクリル酸オクチル、メタクリル酸ノニル、メタクリル酸トリデシル、2−ヒドロキシエチルメタクリレート等の単量体を例示できる。 Methacrylic acid ester monomers include: n-butyl methacrylate, methyl methacrylate, ethyl methacrylate, propyl methacrylate, butyl methacrylate, pentyl methacrylate, hexyl methacrylate, heptyl methacrylate, octyl methacrylate, methacrylic acid Examples of the monomer include nonyl, tridecyl methacrylate, and 2-hydroxyethyl methacrylate.
アクリル酸エステル単量体としては、アクリル酸−n−ブチル、アクリル酸メチル、アクリル酸エチル、アクリル酸プロピル、アクリル酸ブチル、アクリル酸ペンチル、アクリル酸ヘキシル、アクリル酸ヘプチル、アクリル酸オクチル、アクリル酸ノニル、アクリル酸トリデシル、2−ヒドロキシエチルメタクリレート等の単量体を例示できる。 As acrylic acid ester monomers, acrylic acid-n-butyl, methyl acrylate, ethyl acrylate, propyl acrylate, butyl acrylate, pentyl acrylate, hexyl acrylate, heptyl acrylate, octyl acrylate, acrylic acid Examples of the monomer include nonyl, tridecyl acrylate, and 2-hydroxyethyl methacrylate.
スチレン系単量体としては、スチレン、メチルスチレン、クロロスチレン等の単量体を例示できる。 Examples of the styrene monomer include monomers such as styrene, methylstyrene, and chlorostyrene.
ビニルエーテル単量体としては、エチルビニルエーテル、プロピルビニルエーテル、ブチルビニルエーテル等の単量体を例示できる。アルケン単量体としては、エチレン、プロピレン、イソブチレンの単量体を例示できる。モノカルボン酸ビニル単量体としては、酢酸ビニル、プロピオン酸ビニル、ブタン酸ビニルの単量体を例示できる。イタコン酸ジアルキルエステル単量体としては、ジメチルイタコネート、ジエチルイタコネート、ジプロピルイタコネート、ジ−n−ブチルイタコネート等の単量体を挙げることができる。 Examples of the vinyl ether monomer include monomers such as ethyl vinyl ether, propyl vinyl ether, and butyl vinyl ether. Examples of alkene monomers include ethylene, propylene, and isobutylene monomers. Examples of the vinyl monocarboxylate monomer include vinyl acetate, vinyl propionate, and vinyl butanoate. Examples of the itaconic acid dialkyl ester monomer include monomers such as dimethyl itaconate, diethyl itaconate, dipropyl itaconate, and di-n-butyl itaconate.
疎水性単量体としては、下記式
で表されるメタクリル酸−n−ブチルエステル(CAS番号97-88-1)が、入手の点から最も好ましい。 Methacrylic acid-n-butyl ester (CAS No. 97-88-1) represented by the formula is most preferred from the viewpoint of availability.
本発明に用いる共重合体においては、ホスホリルコリン基を有する単量体が2−メタクリロイルオキシエチルホスホリルコリンであり、疎水性単量体がメタクリル酸−n−ブチルエステルであることが最も好ましい。 In the copolymer used in the present invention, the monomer having a phosphorylcholine group is most preferably 2-methacryloyloxyethyl phosphorylcholine, and the hydrophobic monomer is most preferably methacrylic acid-n-butyl ester.
本発明に用いる共重合体の共重合比a/bは、35/65〜75/25であり、40/60〜60/40がさらに好ましい。 The copolymerization ratio a / b of the copolymer used in the present invention is 35/65 to 75/25, more preferably 40/60 to 60/40.
本発明においては、共重合体においてどちらか一方の単量体に比が偏ると蛋白吸着防止機能が弱くなる。 In the present invention, if the ratio of the copolymer is biased to one of the monomers, the protein adsorption preventing function is weakened.
共重合体は、その共重合体を適当な溶媒に溶解させた状態でコーティング液にして用いることが好ましい。このとき、溶媒としては、例えば、水、メタノール、エタノール、プロパノール及びこれらの混合溶媒を用いることができるが、安全性の点から水が好ましい。 The copolymer is preferably used as a coating solution in a state where the copolymer is dissolved in an appropriate solvent. At this time, as the solvent, for example, water, methanol, ethanol, propanol and a mixed solvent thereof can be used, but water is preferable from the viewpoint of safety.
本発明において、コーティングするための原材料の試験管は、尿検査試験管が好適であり、さらに尿沈渣管であることが最も好適である。 In the present invention, the raw material test tube for coating is preferably a urine test tube, and most preferably a urine sediment tube.
原材料の試験管は、尿を入れることにより変質しない材料から構成されていることが好ましい。原材料の試験管の材質としては、具体的には、ガラス、プラスチックが好ましい。この場合、プラスチックとしては、ポリスチレン、ポリアクリロニトリルスチレンを例示できる。原材料の試験管は、さらに沈渣の状況、尿量やにごりを判別できるようにするため、透明な物質から製造されていることが好ましい。さらに、原材料の試験管は、使い捨ての試験管を用いて、本発明の生体試料保存用試験管を使い捨ての生体試料保存用試験管としてもよい。 The raw material test tube is preferably made of a material that does not change when urine is added. Specifically, the material of the raw material test tube is preferably glass or plastic. In this case, examples of the plastic include polystyrene and polyacrylonitrile styrene. The raw material test tube is preferably manufactured from a transparent substance so that the state of sediment, urine volume and dust can be discriminated. Furthermore, the test tube for raw materials may be a disposable test tube, and the biological sample storage test tube of the present invention may be used as a disposable biological sample storage test tube.
用いる原材料の試験管としては、例えば、特開平7−280800号公報に記載の尿沈渣用遠心試験管、すなわち、円筒形状の試験管上部と、この試験管上部の下端に連続して内周面が先細りのテーパー状に形成された試験管中部と、この試験管中部の下端に連続して内周面が小径の円筒形状に形成され、下端が底壁で閉口した試験管下部とを備えることを特徴とする尿沈渣用遠心試験管(尿沈渣管)を用いることができる。 Examples of the test tube of the raw material to be used include, for example, a centrifugal test tube for urine sediment described in JP-A-7-280800, that is, a cylindrical test tube upper portion and an inner peripheral surface continuously to the lower end of the test tube upper portion. Has a taper-shaped test tube middle part, and a lower part of the test tube whose inner peripheral surface is formed in a small-diameter cylindrical shape continuously from the lower end of the test tube middle part and whose lower end is closed by a bottom wall. A centrifugal test tube for urine sediment (urine sediment tube) characterized by the above can be used.
本発明において、原材料の試験管から、本発明の生体試料保存用試験管を製造するには、1)共重合体の溶液に試験管を浸し、次いで乾燥させる方法、2)前記1)の方法において、試験管の浸漬及び乾燥を複数回、繰り返す方法、3)試験管の内部の表面に、共重合体の溶液を塗付して乾燥させる方法、4)前記3)の方法において、試験管への塗付及び乾燥を複数回、繰り返す方法、等を例示できる。これらの場合、共重合体の溶液に試験管を浸したり、共重合体の溶液を試験管に塗付したりした後、得られる試験管を水で洗浄した後、乾燥操作に付してもよい。 In the present invention, in order to produce a test tube for biological sample storage of the present invention from a test tube of raw materials, 1) a method in which the test tube is immersed in a copolymer solution and then dried, and 2) a method in 1) above 3) a method of repeating immersion and drying of a test tube a plurality of times, 3) a method of applying a copolymer solution to the inner surface of the test tube and drying, and 4) a method of 3) above. A method of repeating application and drying a plurality of times can be exemplified. In these cases, after immersing the test tube in the copolymer solution or applying the copolymer solution to the test tube, the resulting test tube may be washed with water and then subjected to a drying operation. Good.
本発明の生体試料保存用試験管を製造する際、共重合体の溶液は、共重合体の濃度が好ましくは0.001〜5重量%、さらに好ましくは0.005〜3重量%である。溶液への試験管の浸漬時間は、例えば、0.5〜10分が好ましい。乾燥温度は、例えば、20〜80℃が好ましい。この場合、乾燥は、自然乾燥でも減圧乾燥でもよい。 When producing the biological sample storage test tube of the present invention, the copolymer solution preferably has a copolymer concentration of 0.001 to 5 wt%, more preferably 0.005 to 3 wt%. The immersion time of the test tube in the solution is preferably, for example, 0.5 to 10 minutes. The drying temperature is preferably 20 to 80 ° C, for example. In this case, the drying may be natural drying or vacuum drying.
本発明の生体試料保存用試験管は、原材料の試験管が透明であれば、コーティング剤が吸着されていても透明な生体試料保存用試験管となる。 If the raw material test tube is transparent, the biological sample storage test tube of the present invention is a transparent biological sample storage test tube even if the coating agent is adsorbed.
本発明の生体試料保存用試験管は、尿プロテオーム解析に有用であり、実際に尿のプロテオームで解析されるペプチドや蛋白質の分子量は特に限定されないが、分子量が1000〜6000の低分子量域の尿プロテオーム解析に好適である。例えば、本発明の生体試料保存用試験管に患者や健常者の尿を入れ、尿検査として一般的な項目を測定した後、残りの尿をMALDI−TOF−MS、SELDI−TOF−MS等の質量分析計に付し、病態患者由来の尿と健常者由来の尿の種々の蛋白質の有無や量を比較することにより新たなマーカーを発見しうる。なお、本明細書においては、蛋白質にはペプチドも含まれるものとする。本発明の生体試料保存用試験管は蛋白質の吸着が起こりにくいので目的の蛋白質が微量に存在する物質でも構わない。また、それとは別に、尿中の微量蛋白質を測定するときに、生体試料保存用試験管への吸着がほとんどないので尿を長時間保存してもその蛋白質を正確に測定できる。 The test tube for biological sample storage of the present invention is useful for urinary proteome analysis, and the molecular weight of peptides and proteins actually analyzed by the urinary proteome is not particularly limited, but urine in a low molecular weight range having a molecular weight of 1000 to 6000. Suitable for proteome analysis. For example, after putting the urine of a patient or a healthy person into the biological sample storage test tube of the present invention and measuring general items as a urine test, the remaining urine is MALDI-TOF-MS, SELDI-TOF-MS, etc. A new marker can be discovered by attaching to a mass spectrometer and comparing the presence and amount of various proteins in urine from patients with a disease state and urine from healthy subjects. In the present specification, a protein includes a peptide. The biological sample storage test tube of the present invention may be a substance in which the target protein is present in a very small amount because protein adsorption hardly occurs. In addition, when measuring a trace amount of protein in urine, the protein can be accurately measured even if urine is stored for a long time because there is almost no adsorption to a biological sample storage test tube.
原材料の尿沈渣管としては、特開平7−280800号公報に記載の尿沈渣用遠心分離管(国宗工業所製、材質はポリアクリロニトリルスチレン)を用いた。
実施例1及び実施例2 本発明の尿沈渣管の作製
2−メタクリロイルオキシエチルホスホリルコリンとメタクリル酸−n−ブチルエステルとの共重合体(共重合比50:50)の0.05重量%水溶液を作成し、これに原材料の尿沈渣管を1分、浸漬させ、一夜50℃インキュベータにて放置乾燥し、さらに一晩で真空乾燥機(デシケーター)に入れ十分乾燥することにより、実施例1の尿沈渣管(1回コート)を得た。同様にして水溶性ポリマーを浸漬乾燥の操作を2回し、実施例2の尿沈渣管(2回コート)を作製した。
比較例1〜3 比較の尿沈渣管の作製
比較の尿沈渣管としては、非コートの原材料の尿沈渣管を比較例1の尿沈渣管とした。
As a raw material urine sediment tube, a urine sediment centrifuge tube (manufactured by Kunimune Industrial Co., Ltd., made of polyacrylonitrile styrene) described in JP-A-7-280800 was used.
Example 1 and Example 2 Production of urinary sediment tube of the present invention
A 0.05% by weight aqueous solution of a copolymer of 2-methacryloyloxyethyl phosphorylcholine and methacrylic acid-n-butyl ester (copolymerization ratio 50:50) was prepared, and the raw material urine sediment tube was immersed for 1 minute. The urine sediment tube (one coat) of Example 1 was obtained by allowing it to stand in a 50 ° C. incubator overnight and further drying overnight in a vacuum dryer (desiccator). Similarly, the operation of dipping and drying the water-soluble polymer was performed twice to produce the urine sediment tube (twice coat) of Example 2.
Comparative Examples 1 to 3 Production of Comparative Urine Sedimentary Tube As a comparative urinary sedimentary tube, an uncoated raw material urinary sedimentary tube was used as the urinary sedimentary tube of Comparative Example 1.
また実施例1において、2−メタクリロイルオキシエチルホスホリルコリンとメタクリル酸−n−ブチルエステルとの共重合体の共重合比50:50を、共重合比30:70および80:20とした以外は同様に製造した尿沈渣管を、それぞれ比較例2および3の尿沈渣管とした。
実施例3 尿沈渣管への蛋白質の吸着の電気泳動による確認試験
上記の方法で作製した実施例1〜2、比較例1〜3の尿沈渣管に、それぞれ、尿試験紙法で尿タンパクが陰性の尿と500mg/dL以上であった尿を1.5mL分注した。これを、4℃に一昼夜保持し、尿を丁寧に取り除いた。次いで、吸着した蛋白質を回収するため、PBS(10mM りん酸バッファ、150mM NaCl、pH7.4)で尿沈渣管をリンスし、その沈渣管に50μLのサンプルバッファー(0.5%(v/v)グリセロール、1%(w/v) SDS、62.5mM Tris−HCl、0.2% BPB、pH6.8)を添加した。続いて、尿沈渣管のvortex攪拌を30秒間行い、SDS−PAGE電気泳動用のサンプルとした。SDS−PAGEは以下の手順で行った。10-20%グラジエントポリアクリルアミドゲル(ATTO社)にサンプルを20μLアプライし、定電流20mA 75分の泳動を行った。
Further, in Example 1, the copolymerization ratio of 50:50 of the copolymer of 2-methacryloyloxyethyl phosphorylcholine and methacrylic acid-n-butyl ester was changed to 30:70 and 80:20. The manufactured urinary sediment tubes were used as Comparative Example 2 and 3 urine sediment tubes, respectively.
Example 3 Electrophoretic confirmation test of protein adsorption to urinary sediment tube The urinary protein was applied to the urinary sediment tubes of Examples 1 and 2 and Comparative Examples 1 to 3 prepared by the above method by the urine test paper method, respectively. 1.5 mL of negative urine and urine that was 500 mg / dL or more were dispensed. This was kept at 4 ° C. all day and night, and urine was carefully removed. Next, in order to recover the adsorbed protein, the urine sediment tube is rinsed with PBS (10 mM phosphate buffer, 150 mM NaCl, pH 7.4), and 50 μL of sample buffer (0.5% (v / v)) is added to the sediment tube. Glycerol, 1% (w / v) SDS, 62.5 mM Tris-HCl, 0.2% BPB, pH 6.8) was added. Subsequently, vortex stirring of the urinary sediment tube was performed for 30 seconds to obtain a sample for SDS-PAGE electrophoresis. SDS-PAGE was performed according to the following procedure. 20 μL of the sample was applied to a 10-20% gradient polyacrylamide gel (ATTO), and electrophoresis was performed at a constant current of 20 mA for 75 minutes.
結果を図1に示す。尿タンパク陰性のサンプル1、3、5、7では、非コートあるいは、表面コートした尿沈渣管(実施例1、2および比較例2)および非コートの尿沈渣管(比較例1)のいずれの場合にもCBB染色でバンドは確認されなかった。一方、500mg/dL以上のサンプル2、4、6、8では、比較例1の尿沈渣管(非コート)および比較例2の尿沈渣管(共重合比30:70)から、分子量66kDa付近のアルブミンに相当するバンドが検出された。比較例3の尿沈渣管(共重合比80:20)も同様な結果を示した(図省略)。一方、2−メタクリロイルオキシエチルホスホリルコリンとメタクリル酸−n−ブチルエステルとの共重合体(共重合比50:50)を、1回コートした実施例1の尿沈渣管および2回コートした実施例2の尿沈渣管では、CBB染色像からバンドがなく、タンパクの吸着が抑えられていることが明らかとなった。
実施例4 尿沈渣管への蛋白質の吸着のSELDI―TOF―MSによる確認試験
実施例2の2回コート尿沈渣管と比較例1の非コート尿沈渣管に、尿試験紙法で尿タンパクが陰性および100mg/dL以上であった尿を1.5mL分注した。これを、以下の条件で一昼夜保持した。
The results are shown in FIG. In urine protein-negative samples 1, 3, 5, and 7, either the uncoated or surface-coated urine sediment tube (Examples 1 and 2 and Comparative Example 2) and the uncoated urine sediment tube (Comparative Example 1) In some cases, no band was confirmed by CBB staining. On the other hand, in the samples 2, 4, 6, and 8 of 500 mg / dL or more, the molecular weight of 66 kDa is around from the urine sediment tube (uncoated) of Comparative Example 1 and the urine sediment tube of Comparative Example 2 (copolymerization ratio 30:70). A band corresponding to albumin was detected. The urine sediment tube of Comparative Example 3 (copolymerization ratio 80:20) also showed similar results (not shown). On the other hand, a urinary sediment tube of Example 1 coated twice and a copolymer of Example 2 which was coated twice with a copolymer of 2-methacryloyloxyethyl phosphorylcholine and methacrylic acid-n-butyl ester (copolymerization ratio 50:50). In the urinary sediment tube, it was revealed from the CBB stained image that there was no band and protein adsorption was suppressed.
Example 4 Confirmation test by SELDI-TOF-MS of protein adsorption to urinary sediment tube The urine protein was applied to the 2-coated urine sediment tube of Example 2 and the uncoated urine sediment tube of Comparative Example 1 by the urine test paper method. 1.5 mL of urine that was negative and 100 mg / dL or more was dispensed. This was held overnight under the following conditions.
(a)尿サンプルを尿沈渣管に分注後、室温に2時間保持した後、4℃保冷庫で静置
(b)尿サンプルを尿沈渣管に分注後、直ちに4℃保冷庫で静置
その後、尿サンプルを丁寧に取り除き、次いで、PBS(10mM りん酸、150mM NaCl、pH7.4)で尿沈渣管をリンスし、50μLの0.1%(v/v)TFA水溶液を添加した。続いて、尿沈渣管のvortex攪拌を30秒間行い、SELDI−TOF−MS解析用のサンプルとした。このサンプルをNP20 Array (Bio Rad社)に添加した後、マトリックスとしてsinapic acid (Bio Rad社)を塗布しSELDI−TOF−MS (Bio Rad社)でスペクトラムについて実施例2の表面コート尿沈渣管と比較例1の非コート尿沈渣管とで比較した。
(A) After dispensing the urine sample into the urine sediment tube, hold it at room temperature for 2 hours, and then leave it in a 4 ° C cooler (b) After dispensing the urine sample into the urine sediment tube, immediately leave it in a 4 ° C cooler Thereafter, the urine sample was carefully removed, and then the urine sediment tube was rinsed with PBS (10 mM phosphoric acid, 150 mM NaCl, pH 7.4), and 50 μL of 0.1% (v / v) aqueous TFA solution was added. Subsequently, vortex stirring of the urinary sediment tube was performed for 30 seconds to obtain a sample for SELDI-TOF-MS analysis. After this sample was added to NP20 Array (Bio Rad), sine acid (Bio Rad) was applied as a matrix and the spectrum was measured with SELDI-TOF-MS (Bio Rad) using the surface-coated urine sediment tube of Example 2. Comparison was made with the uncoated urine sediment tube of Comparative Example 1.
図2に、尿沈渣管に吸着した成分のSELDI−TOF−MSスペクトラムを示す。尿タンパク陰性のサンプルにおいて、比較例1の非コート尿沈渣管に上記(a)と(b)の保持条件で2800m/z付近および4700m/z付近にピークが確認され、尿紙試験法で蛋白陰性のサンプルにもかかわらず、タンパク/ペプチドの吸着していることが明らかとなった。同じ尿タンパク陰性のサンプルで共重合体を2回コートした実施例2の尿沈渣管ではいずれのピークも消失し、尿沈渣管へのタンパク/ペプチド吸着が回避されていることが判明した。同様に、尿タンパクが100mg/dL以上のサンプルにおいて、比較例1の非コート尿沈渣管では2800m/z付近、3400m/z付近、4700m/z付近、5000m/z付近にピークが検出された。一方、同じ尿タンパクが100mg/dL以上のサンプルで共重合体を2回コートした実施例2の尿沈渣管では、それらのピークは消失するか減衰し、タンパク/ペプチドの吸着が抑制されていることが示唆された。
実施例5 尿生化学の項目の測定
尿試験紙法でタンパクが陰性または100mg/dL以上であった尿を、それぞれ共重合体を2回コーティングした実施例2の尿沈渣管と比較例1の非コート尿沈渣管に移し、グルコース、総タンパク、クレアチニン、NAG、尿中アルブミン、カルシウム、マグネシウム、Na、K、Clについて既存の臨床検査試薬で測定した。ここでコントロールとして、尿沈渣管に移す前の検体(以下、原尿と記す)についても、尿生化学項目の測定を行った(表1、表2)。
FIG. 2 shows a SELDI-TOF-MS spectrum of components adsorbed on the urine sediment tube. In the urine protein negative sample, peaks were observed in the uncoated urinary sediment tube of Comparative Example 1 near 2800 m / z and 4700 m / z under the retention conditions (a) and (b) above, and the protein was detected by the urine paper test method. Despite the negative sample, protein / peptide adsorption was revealed. In the urine sediment tube of Example 2 in which the copolymer was coated twice with the same urine protein negative sample, it was found that any peak disappeared and protein / peptide adsorption to the urine sediment tube was avoided. Similarly, in the sample with a urine protein of 100 mg / dL or more, in the uncoated urine sediment tube of Comparative Example 1, peaks were detected at around 2800 m / z, around 3400 m / z, around 4700 m / z, and around 5000 m / z. On the other hand, in the urine sediment tube of Example 2 in which the same urine protein was coated twice with a sample of 100 mg / dL or more, those peaks disappeared or attenuated, and protein / peptide adsorption was suppressed. It has been suggested.
Example 5 Measurement of urine biochemistry items The urine sediment tube of Example 2 and Comparative Example 1 were coated with urine whose protein was negative or 100 mg / dL or more by the urine test paper method, respectively. The sample was transferred to an uncoated urine sediment tube, and glucose, total protein, creatinine, NAG, urinary albumin, calcium, magnesium, Na, K, and Cl were measured with existing clinical laboratory reagents. Here, as a control, urine biochemistry items were also measured for specimens (hereinafter referred to as raw urine) before being transferred to the urinary sediment tube (Tables 1 and 2).
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US11470841B2 (en) | 2016-06-15 | 2022-10-18 | Nissan Chemical Corporation | Cryopreservation vessel |
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