JP2008151770A - Microchnnel chip - Google Patents

Microchnnel chip Download PDF

Info

Publication number
JP2008151770A
JP2008151770A JP2007296998A JP2007296998A JP2008151770A JP 2008151770 A JP2008151770 A JP 2008151770A JP 2007296998 A JP2007296998 A JP 2007296998A JP 2007296998 A JP2007296998 A JP 2007296998A JP 2008151770 A JP2008151770 A JP 2008151770A
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
reagent
microchannel
reaction
liquid
chip
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Pending
Application number
JP2007296998A
Other languages
Japanese (ja)
Inventor
Kota Kato
功太 加藤
Yoshihide Iwaki
義英 岩木
Akira Wakabayashi
彰 若林
Hideyuki Karaki
英行 唐木
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Fujifilm Corp
Original Assignee
Fujifilm Corp
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Fujifilm Corp filed Critical Fujifilm Corp
Priority to JP2007296998A priority Critical patent/JP2008151770A/en
Priority to US11/943,353 priority patent/US20080153155A1/en
Priority to EP07022554A priority patent/EP1935491A1/en
Publication of JP2008151770A publication Critical patent/JP2008151770A/en
Pending legal-status Critical Current

Links

Images

Abstract

<P>PROBLEM TO BE SOLVED: To provide a microchannel chip with the accuracy enhanced of dissolution and mixing treatment by causing a reagent carried at a predetermined position in a microchannel to be surely dissolved in and mixed with an inspected liquid, and further, with its miniaturization and manufacturing cost reduction materialized by downsizing a treatment position on the microchannel since subsequent reaction treatment and analysis treatment are executable in the same position. <P>SOLUTION: This microchannel chip 1 is used for thereinto introducing an inspected liquid with the reagent 39 disposed within the microchannel 14. The reagent 39 is mixed with a heat dissolving binder, carried in the predetermined position, and starts being dissolved by a temperature rise from a temperature at the time of introducing the inspected liquid at the predetermined position where the binder is carried. This allows dissolution treatment and mixing treatment to be efficiently executed. <P>COPYRIGHT: (C)2008,JPO&INPIT

Description

本発明は、乾燥試薬を予め流路内に担架して液体試薬を導入することにより溶解させるマイクロ流路チップに関する。   The present invention relates to a microchannel chip in which a dry reagent is previously suspended in a channel and dissolved by introducing a liquid reagent.

近年、微量の検体の分析や化学反応処理を安価に、且つ迅速に実現するシステムとして、マイクロ流路チップを使用する方法が提案されている。   In recent years, a method using a micro-channel chip has been proposed as a system that realizes analysis of a small amount of sample and chemical reaction processing inexpensively and quickly.

前記マイクロ流路チップはこのチップへ液体を供給して検査を実行する検査装置に適用される物である。この検査装置として例えば特許文献1に開示される生化学処理装置等があり、チャンバ(処理空間)とチャンバ間を連通するマイクロ流路とを有する生化学反応カートリッジ(マイクロ流路チップ)を載置するステージと、流路を介して液体を移動させるための移動手段と、チャンバ内の液体の有無或いは液量を検出する検出手段と、検出手段により検出されたチャンバ内の液体の情報により液体の移動の結果を判定する判定手段とを設けることにより、前記マイクロ流路内で予備処理した検体を前記チャンバ内に誘導して、チャンバ内の検査試薬と検体との化学反応又は生化学反応から、検体の分析を行う。   The microchannel chip is applied to an inspection apparatus that supplies liquid to the chip to perform inspection. For example, there is a biochemical processing apparatus disclosed in Patent Document 1 as this inspection apparatus, and a biochemical reaction cartridge (microchannel chip) having a chamber (processing space) and a microchannel communicating between the chambers is placed. Stage, a moving means for moving the liquid through the flow path, a detecting means for detecting the presence or absence or amount of liquid in the chamber, and information on the liquid in the chamber detected by the detecting means. By providing a determination means for determining the result of movement, the specimen pretreated in the microchannel is guided into the chamber, and from the chemical reaction or biochemical reaction between the test reagent and the specimen in the chamber, Analyze the sample.

前記マイクロ流路内での検体の予備処理とは、例えば、前記チャンバ内に保持した検査試薬と検体とが効率良く反応するように、検体に反応促進物質(試薬)を混合したり、あるいは検体中の特定成分を単離させたり溶解・増幅させるために検体に所定の反応物質を混合する処理である。   The sample pretreatment in the microchannel is, for example, mixing a sample with a reaction promoting substance (reagent) so that the test reagent held in the chamber and the sample react efficiently, or the sample. This is a process of mixing a predetermined reactant with a specimen in order to isolate, dissolve or amplify specific components therein.

そして、このような予備処理や分析用の反応処理を簡単に実施できるように、予め、チップ製造時に、予備処理や分析用の反応処理などに使う試薬を乾燥状態にしてマイクロ流路の内壁面の一部に担架させたマイクロ流路チップが提案されている(例えば、特許文献2,3参照)。このようなマイクロ流路チップにおいて、マイクロ流路の内壁面へ乾燥試薬を担架させる具体的方法としては、例えば、図8(a)に示すように、マイクロ流路51の途中にセル(処理空間)52を設けておき(図では効果的な混合を考えて流路を拡幅している。)、該セル52の内壁面に液状試薬53を点着させた後、該液状試薬53の水分を蒸発させることで、図8(b)に示すようにセルの内壁面に乾燥状態の試薬54が固着した状態を得るものが提案されている。   In order to facilitate such pretreatment and analysis reaction processing, the inner wall surface of the microchannel is made in advance by drying the reagents used for the pretreatment and analysis reaction processing in the manufacture of the chip in advance. There has been proposed a micro-channel chip suspended on a part of (see, for example, Patent Documents 2 and 3). In such a microchannel chip, as a specific method for suspending the dry reagent on the inner wall surface of the microchannel, for example, as shown in FIG. ) 52 is provided (in the figure, the flow path is widened in consideration of effective mixing), and after the liquid reagent 53 is spotted on the inner wall surface of the cell 52, the moisture of the liquid reagent 53 is removed. It has been proposed to obtain a state in which a dry reagent 54 is fixed to the inner wall surface of a cell as shown in FIG.

このようなマイクロ流路チップでは、マイクロ流路に検体を流すと、マイクロ流路を流れる検体がマイクロ流路の一部に担架された乾燥試薬に接触して、検体に接触した乾燥試薬が検体中に溶出することで試薬と検体との混合が開始するため、少量の試薬により閉鎖空間で混合が進むので、検体分析作業が手軽に実施できるようになる。   In such a microchannel chip, when a sample is caused to flow through the microchannel, the sample flowing through the microchannel contacts the dry reagent suspended on a part of the microchannel, and the dry reagent that has contacted the sample is in contact with the sample. Since the mixing of the reagent and the sample starts by elution, the sample analysis can be easily performed because the mixing proceeds in a closed space with a small amount of the reagent.

特開2006−170654号公報JP 2006-170654 A 特開2004−194652号公報Japanese Patent Laid-Open No. 2004-194652 特開2006−133003号公報JP 2006-133003 A

ところが、上記のようにセル52の内壁面に液状試薬を点着させた後、その液状試薬中の水分を蒸発させて試薬54を担架させた場合は、担架させた試薬54とセル52の内壁面との間の接着強度が低く、検体をマイクロ流路51に流すと、検体がセル52に流入して担架されている試薬54に接触開始した時の衝撃等で、図8(c)に示すように乾燥試薬54が塊状のままセル52の内壁面から剥離し、セル52の外に流されてしまう。   However, when the liquid reagent is spotted on the inner wall surface of the cell 52 as described above and then the moisture in the liquid reagent is evaporated and the reagent 54 is stretched, the inside of the stretched reagent 54 and the cell 52 When the specimen flows through the microchannel 51 because the adhesion strength between the wall surface and the specimen is made to flow into the cell 52, an impact or the like when the specimen 54 starts to contact the suspended reagent 54 is shown in FIG. As shown in the figure, the dry reagent 54 is peeled off from the inner wall surface of the cell 52 in a lump shape and flows out of the cell 52.

特許文献2の場合では、試薬固定位置が拡幅されている訳でもなく、液流が一方向と考えられ、図8(c)に示した場合と同様に、乾燥試薬の常温での溶解が早く、液流が来て直ぐに流れ方向に流れ出してしまう。また、特許文献3の場合では、試薬用のセルが流路に間接的に接続しており、試薬の溶解が遅れたり、あるいは溶解した試薬が検体の全域に均一に混合されずに、その後の反応処理や、分析処理の精度を低下させる虞があった。   In the case of Patent Document 2, the reagent fixing position is not widened, and the liquid flow is considered to be unidirectional. As in the case shown in FIG. As soon as the liquid flow comes, it will flow out in the flow direction. Further, in the case of Patent Document 3, the reagent cell is indirectly connected to the flow path, so that the dissolution of the reagent is delayed or the dissolved reagent is not uniformly mixed over the entire area of the specimen. There is a risk of reducing the accuracy of the reaction process and the analysis process.

ここで、検体に溶解・混合させるべき試薬が、セルの内壁面から剥離して流されてしまうと、試薬が実際に液体に溶解・混合される位置が、当初に想定していたセル内の所定位置からずれてしまう。また、分析のために検体と試薬とを化学的又は生化学的に反応させる場合には、反応を促進するために、加熱等を加える必要があるが、試薬が均一に混合された状態になっていないと、反応にばらつきが生じたり、あるいは、反応が遅れるといった問題も生じてしまう。   Here, if the reagent to be dissolved / mixed in the specimen is peeled off and flowed from the inner wall surface of the cell, the position where the reagent is actually dissolved / mixed in the liquid is the position in the cell originally assumed. Deviation from the predetermined position. In addition, when a sample and a reagent are reacted chemically or biochemically for analysis, it is necessary to apply heating or the like to accelerate the reaction, but the reagent is in a uniformly mixed state. Otherwise, there will be problems such as variations in the reactions or delays in the reactions.

試薬が剥離して流動する場合でも、試薬の溶解・混合が所定の精度で完遂され、試薬が均一に混合された検体に対して化学反応処理又は生化学反応処理を実施できるように、試薬の溶解処理、混合処理、化学・生化学反応処理、検査処理等を、マイクロ流路上の互いに異なる位置で実施するようにする構成が一般である。
ところが、このように処理位置を分けると、チップ上に形成するマイクロ流路の全長が長大化したり、流路が複雑な分岐構造となり、処理手順も複雑となり、マイクロ流路チップの大型化や、製造コストの増大という問題も生じる。
Even when the reagent peels and flows, the reagent is dissolved and mixed with a predetermined accuracy so that the chemical reaction process or biochemical reaction process can be performed on the specimen in which the reagent is uniformly mixed. In general, the dissolution process, the mixing process, the chemical / biochemical reaction process, the inspection process, and the like are performed at different positions on the microchannel.
However, if the processing positions are divided in this way, the total length of the microchannel formed on the chip becomes long, the channel has a complicated branch structure, the processing procedure becomes complicated, the size of the microchannel chip increases, The problem of increased manufacturing costs also arises.

そこで、本発明の目的は上記課題を解消することに係り、被検査液に溶解・混合させるべくマイクロ流路内の所定位置に担架した試薬は、当初に想定した担架位置で、被検査液に確実に溶解・混合させて、溶解・混合処理の精度を向上させることができ、また、当初の担架位置でその後の反応処理や、分析処理を実施することができ、マイクロ流路上の処理位置の削減により、チップ上に形成するマイクロ流路の単純化や流路長の短縮を実現して、小型化や、製造コストの低減を図ることのできるマイクロ流路チップを提供することである。   Therefore, an object of the present invention is to solve the above-mentioned problems, and the reagent suspended at a predetermined position in the microchannel for dissolving / mixing in the liquid to be tested is transferred to the liquid to be tested at the initially assumed stretcher position. It can be dissolved and mixed reliably to improve the accuracy of the dissolution and mixing process, and the subsequent reaction process and analysis process can be performed at the original stretcher position. It is to provide a micro-channel chip that can be reduced in size and reduced in manufacturing cost by realizing simplification of the micro-channel formed on the chip and shortening the channel length by the reduction.

(1)本発明の上記課題の解決は、マイクロ流路内に試薬を担架して被検査液を導入するマイクロ流路チップであって、
前記試薬が熱溶解性結合剤と混合されてマイクロ流路内の所定位置に担架され、
前記被検査液の導入時温度からの昇温により前記所定位置での前記試薬の溶解が促進されるマイクロ流路チップにより達成される。
(1) The solution of the above-mentioned problem of the present invention is a microchannel chip that introduces a liquid to be inspected by suspending a reagent in the microchannel,
The reagent is mixed with a heat-soluble binder and stretched at a predetermined position in the microchannel,
This is achieved by a microchannel chip in which dissolution of the reagent at the predetermined position is promoted by raising the temperature from the introduction temperature of the test liquid.

上記構成によれば、マイクロ流路内の所定位置に担架された試薬は、混合される熱溶解性結合剤として、付着性(接着性)を有したものを採用しておくことで、流路壁面との間の接着強度を大幅に向上させることができる。そのため、マイクロ流路内に送給される被検査液の接触だけでは担架位置から剥離して流されることがない。
そして、被検査液が試薬の担架位置に導入された後の温度を規定温度に昇温させれば、その被検査液に接触した熱溶解性結合剤の溶解が促進され、試薬の溶解・混合も促進され、当初の担架位置で溶解・混合処理が開始・継続されることが担保されるため、例えば、試薬の担架位置を挟む一定区間に一定時間被検査液を滞留させたり、あるいは試薬の担架位置を挟む一定区間で被検査液を往復させることで、被検査液に確実に溶解・混合させて、溶解・混合処理の精度を向上させることができる。
According to the above-described configuration, the reagent suspended at a predetermined position in the micro flow channel employs an adhesive (adhesive) adhesive as the heat-soluble binder to be mixed. The adhesive strength between the wall surfaces can be greatly improved. For this reason, the contact with the liquid to be inspected fed into the micro flow path does not cause separation and flow from the stretcher position.
If the temperature after the test solution is introduced to the reagent stretcher is raised to a specified temperature, the dissolution of the heat-soluble binder in contact with the test solution is promoted, and the reagent is dissolved and mixed. This ensures that the dissolution / mixing process starts and continues at the initial stretcher position. By reciprocating the liquid to be inspected in a fixed section sandwiching the stretcher position, the liquid to be inspected can be surely dissolved and mixed, and the accuracy of the dissolution / mixing process can be improved.

更に、熱溶解性結合剤の溶解促進温度が、試薬と被検査液との反応促進温度となるように、熱溶解性結合剤の特性を調整しておけば、溶解・混合した試薬を効率良く被検査液に反応させることができ、当初の担架位置の周辺でその後の反応処理や、分析処理を実施することができる。即ち、当初の試薬の担架位置またはその周辺だけで、溶解・混合・増幅処理に加えて、その後の反応処理や、分析処理を実施することができる。従って、これらの溶解・混合処理,反応処理,分析処理をマイクロ流路上の互いに異なる位置で実施するようにしていた従来の場合と比較すると、マイクロ流路上の処理範囲を削減することができ、これにより、チップ上に形成するマイクロ流路の単純化や流路長の短縮を実現して、チップの小型化や、製造コストの低減を図ることもできる。   Furthermore, if the characteristics of the heat-soluble binder are adjusted so that the dissolution-accelerating temperature of the heat-soluble binder is the reaction-accelerating temperature between the reagent and the liquid to be tested, the dissolved / mixed reagent can be efficiently used. It can be made to react with the liquid to be inspected, and the subsequent reaction processing and analysis processing can be performed around the initial stretcher position. That is, in addition to the dissolution / mixing / amplification process, the subsequent reaction process and the analysis process can be performed only at or near the initial position of the reagent stretcher. Therefore, compared with the conventional case where these dissolution / mixing processing, reaction processing, and analysis processing are performed at different positions on the microchannel, the processing range on the microchannel can be reduced. Thus, simplification of the micro flow path formed on the chip and shortening of the flow path length can be realized, and the chip can be reduced in size and the manufacturing cost can be reduced.

(2)なお、好ましくは、上記(1)に記載のマイクロ流路チップにおいて、前記被検査液の昇温温度が35℃以上60℃以下である構成とすると良い。
このような構成にすると、被検査液の昇温温度設定により熱溶解性結合剤及び試薬の溶解促進開始のタイミングを管理できる同時に、例えば、試薬が血液中の標的核酸の増幅及び検出を目的として使用される乾燥プライマーである場合に、この乾燥プライマーの反応温度を維持して、反応促進を図ることもできる。
(2) Preferably, in the microchannel chip described in (1) above, the temperature rise of the liquid to be inspected may be 35 ° C. or more and 60 ° C. or less.
With such a configuration, it is possible to manage the start timing of the dissolution promotion of the heat-soluble binder and the reagent by setting the temperature rise of the test solution. When the dry primer is used, the reaction temperature of this dry primer can be maintained to promote the reaction.

(3)また、好ましくは、上記(1)又は(2)に記載のマイクロ流路チップにおいて、前記熱溶解性結合剤がゼラチンまたはヒドロキシプロピルセルロースである構成とすると良い。
このような構成にすると、ゼラチンやヒドロキシプロピルセルロースは、上記(2)を満足する熱溶解性を有すると同時に、付着性(接着性)も強いので、マイクロ流路上の所定位置への試薬の担架が容易になり、上記(2)の構成を容易に実現することができる。
(3) Preferably, in the microchannel chip described in (1) or (2) above, the heat-soluble binder is gelatin or hydroxypropyl cellulose.
With such a structure, gelatin and hydroxypropylcellulose have a heat solubility satisfying the above (2) and at the same time have a strong adhesion (adhesiveness). Thus, the configuration (2) can be easily realized.

(4)また、好ましくは、上記(1)乃至(3)のいずれか一つに記載のマイクロ流路チップにおいて、前記熱溶解性結合剤が固化状態の試薬に対して重量比で20%以上98%以下含まれている構成とすると良い。
マイクロ流路に担架する試薬に含まれる熱溶解性結合剤は、被検査液に溶解した際に、不純物となってしまう。従って、できるだけ熱溶解性結合剤の含有率を下げることが望ましいが、試薬を被検査液に均一に溶解・混合させるための所要時間や反応速度を最適に調整するためには、熱溶解性結合剤の含有率を高めることで試薬の溶解速度を抑えることが有効な場合が少なくない。このような観点から、上記のように、熱溶解性結合剤の含有率を規制しておけば、被検査液の組成や分析目的等に対応して、試薬の溶解性を柔軟に制御することができる。
(4) Preferably, in the microchannel chip according to any one of (1) to (3), the heat-soluble binder is 20% or more by weight with respect to the solidified reagent. It is preferable that 98% or less is included.
The heat-soluble binder contained in the reagent suspended on the microchannel becomes an impurity when dissolved in the liquid to be inspected. Therefore, it is desirable to reduce the content of the heat-soluble binder as much as possible, but in order to optimally adjust the time required and the reaction rate for uniformly dissolving and mixing the reagent in the test solution, In many cases, it is effective to suppress the dissolution rate of the reagent by increasing the content of the agent. From this point of view, if the content of the heat-soluble binder is regulated as described above, the solubility of the reagent can be flexibly controlled in accordance with the composition of the liquid to be inspected and the purpose of analysis. Can do.

(5)また、好ましくは、上記(1)乃至(4)のいずれか一つに記載のマイクロ流路チップにおいて、前記試薬が核酸増幅反応を起こすものである構成とすると良い。
このような構成にすると、試薬の担架位置又はその周辺で、核酸増幅反応を効率よく実施できる。
(5) Preferably, in the microchannel chip according to any one of (1) to (4) above, the reagent may cause a nucleic acid amplification reaction.
With such a configuration, the nucleic acid amplification reaction can be efficiently carried out at or around the position where the reagent is stretched.

(6)また、好ましくは、上記(5)に記載のマイクロ流路チップにおいて、前記核酸増幅反応が等温で行われる構成とすると良い。
このような構成にすると、核酸増幅反応が等温増幅反応となり、使用する酵素の活性が一定に維持できるため核酸増幅反応が安定して進行し、反応処理の信頼性、処理精度を向上させると共に、所要時間を短縮することができる。
(6) Preferably, in the microchannel chip described in (5) above, the nucleic acid amplification reaction may be performed isothermally.
With such a configuration, the nucleic acid amplification reaction becomes an isothermal amplification reaction, and the activity of the enzyme to be used can be maintained constant, so that the nucleic acid amplification reaction proceeds stably, improving the reliability and accuracy of the reaction process, The required time can be shortened.

(7)また、好ましくは、上記(1)又は(2)に記載のマイクロ流路チップにおいて、前記試薬が前記核酸増幅反応の起点となるプライマーである構成とすると良い。
このような構成にすると、試薬の担架位置での試薬の溶解促進開始が、核酸増幅反応の開始となるように制御することが可能となるため、反応時間の管理等が容易になり、核酸増幅反応を上手に制御・進行させることができる。
(7) Preferably, in the microchannel chip described in (1) or (2) above, the reagent is a primer that serves as a starting point for the nucleic acid amplification reaction.
With such a configuration, it is possible to control the start of the dissolution of the reagent at the position where the reagent is stretched, so that the start of the nucleic acid amplification reaction can be controlled. The reaction can be controlled and advanced well.

本発明に係るマイクロ流路チップでは、マイクロ流路内の所定位置に担架された試薬は、混合される熱溶解性結合剤として、付着性(接着性)を有したものを採用しておくことで、流路壁面との間の接着強度を大幅に向上させることができる。
そのため、マイクロ流路内に送給される被検査液の接触だけで担架位置から剥離して流されることがない。しかも、被検査液の温度が規定温度まで昇温されていないときには、熱溶解性結合剤の溶解が促進されないため、試薬の溶解も開始されない。換言すると、試薬の担架位置に導入される被検査液の温度を規定温度に昇温させれば、その被検査液に接触した熱溶解性結合剤の溶解促進が始まり、試薬の溶解・混合が始まり、当初の担架位置で溶解・混合処理が開始・継続されることが担保されるため、例えば、試薬の担架位置を挟む一定区間に一定時間被検査液を滞留させたり、あるいは試薬の担架位置を挟む一定区間で被検査液を往復させることで、被検査液に確実に溶解・混合させて、溶解・混合処理の精度を向上させることができる。
In the microchannel chip according to the present invention, the reagent suspended at a predetermined position in the microchannel employs an adhesive (adhesive) adhesive as the heat-soluble binder to be mixed. Thus, the adhesive strength between the channel wall surfaces can be greatly improved.
Therefore, it is not peeled away from the stretcher position only by contact with the liquid to be inspected fed into the microchannel. In addition, when the temperature of the liquid to be inspected is not raised to the specified temperature, dissolution of the heat-soluble binder is not promoted, so that dissolution of the reagent is not started. In other words, if the temperature of the liquid to be inspected introduced to the position where the reagent is stretched is raised to a specified temperature, the dissolution of the heat-soluble binder that has contacted the liquid to be inspected begins to be dissolved, and the dissolution and mixing of the reagent begins. Since it is guaranteed that the dissolution / mixing process starts and continues at the initial stretcher position, for example, the liquid to be inspected is retained in a certain section across the stretcher position of the reagent, or the stretcher position of the reagent By reciprocating the liquid to be inspected in a fixed section sandwiching the gap, the liquid to be inspected can be surely dissolved and mixed, and the accuracy of the dissolution / mixing process can be improved.

更に、熱溶解性結合剤の溶解促進温度が、試薬と被検査液との反応促進温度となるように、熱溶解性結合剤の特性を調整しておけば、溶解・混合した試薬を効率良く被検査液に反応させることができ、当初の担架位置の周辺でその後の反応処理や、分析処理を実施することができる。即ち、当初の試薬の担架位置またはその周辺だけで、溶解・混合・増幅処理に加えて、その後の反応処理や、分析処理を実施することができる。従って、これらの溶解・混合処理,反応処理,分析処理をマイクロ流路上の互いに異なる位置で実施するようにしていた従来の場合と比較すると、マイクロ流路上の処理位置を削減することができ、これにより、チップ上に形成するマイクロ流路の単純化や流路長の短縮を実現して、チップの小型化や、製造コストの低減を図ることもできる。   Furthermore, if the characteristics of the heat-soluble binder are adjusted so that the dissolution-accelerating temperature of the heat-soluble binder is the reaction-accelerating temperature between the reagent and the liquid to be tested, the dissolved / mixed reagent can be efficiently used. It can be made to react with the liquid to be inspected, and the subsequent reaction processing and analysis processing can be performed around the initial stretcher position. That is, in addition to the dissolution / mixing / amplification process, the subsequent reaction process and the analysis process can be performed only at or near the initial position of the reagent stretcher. Therefore, compared with the conventional case where these dissolution / mixing processing, reaction processing, and analysis processing are performed at different positions on the microchannel, the processing positions on the microchannel can be reduced. Thus, simplification of the micro flow path formed on the chip and shortening of the flow path length can be realized, and the chip can be reduced in size and the manufacturing cost can be reduced.

以下、本発明に係るマイクロ流路チップの好適な実施の形態について、図面を参照して詳細に説明する。
図1は本発明に係るマイクロ流路チップの一実施の形態の分解斜視図、図2は図1に示したマイクロ流路チップを構成する流路基板の構成の説明図で、図2(a)は前記流路基板の平面図、図2(b)は図2(a)のA矢視図、図2(c)は図2(b)のB矢視図、図3(a)は図2(c)に示したマイクロ流路のC部の拡大図、図3(b)は試薬を図3(a)のセルの内壁面に点着した状態の説明図、図3(c)は被検査液がセル内に流入した時の作用説明図である。
Hereinafter, preferred embodiments of a microchannel chip according to the present invention will be described in detail with reference to the drawings.
FIG. 1 is an exploded perspective view of an embodiment of a microchannel chip according to the present invention, and FIG. 2 is an explanatory diagram of the configuration of a channel substrate constituting the microchannel chip shown in FIG. ) Is a plan view of the flow path substrate, FIG. 2B is a view taken in the direction of arrow A in FIG. 2A, FIG. 2C is a view taken in the direction of arrow B in FIG. 2B, and FIG. FIG. 3C is an enlarged view of a portion C of the microchannel shown in FIG. 2C, FIG. 3B is an explanatory diagram showing a state where the reagent is spotted on the inner wall surface of the cell in FIG. 3A, and FIG. These are operation | movement explanatory drawings when a to-be-tested liquid flows in in a cell.

図1及び図2に示したマイクロ流路チップ(以下、単に「チップ」とも称す。)1は、検査装置(図示せず)にセットされて使用され、一回の使用後に廃棄される。本実施の形態は、検体である血液(全血)がマイクロ流体チップ1に注入される。マイクロ流体チップ1は、検査装置にセットされることで、チップ外部からの物理的作用力によって検体液がハンドリングされ、例えば一塩基多型の複数ターゲット遺伝子が検査されるものであり、特開2005−160387号公報に示されているような、ターゲット配列の核酸を等温で特異的に増幅するための反応とその検出をチップ1上で実現可能とするものである。これにより、例えば、標的核酸を増幅してこれを検出することで、感染症の原因となる病原体に特異的な標的核酸の増幅及び検出が可能となり、検体中の該病原体の存否等が判定可能となる。   The microchannel chip (hereinafter simply referred to as “chip”) 1 shown in FIGS. 1 and 2 is set and used in an inspection apparatus (not shown), and is discarded after one use. In the present embodiment, blood (whole blood) that is a specimen is injected into the microfluidic chip 1. When the microfluidic chip 1 is set in a testing apparatus, a sample liquid is handled by a physical acting force from the outside of the chip, for example, a single nucleotide polymorphism multiple target gene is tested. As shown in JP-A-160387, a reaction for specifically amplifying a target sequence nucleic acid isothermally and its detection can be realized on the chip 1. This makes it possible to amplify and detect the target nucleic acid specific to the pathogen causing the infection, for example, by amplifying the target nucleic acid and detecting it, and determine the presence or absence of the pathogen in the sample. It becomes.

本実施の形態において、物理的作用力は、液流路の始点と終点に設けたポート部PTからエア供給又はエア吸引することにより発生する空気圧作用力(空圧駆動力)である。したがって、液流路内に供給された液体が、液流路の始点と終点とに作用されるエア供給又はエア吸引により、液流路内の所望位置へ移動制御可能となる。この際、液体は、始点と先端部、後端部と終点との間に介在する気体に挟持された状態で保持され、引っ張り力の作用により途中で分断されることがない。   In the present embodiment, the physical acting force is a pneumatic acting force (pneumatic driving force) generated by air supply or air suction from the port part PT provided at the start point and end point of the liquid flow path. Accordingly, the liquid supplied into the liquid flow path can be controlled to move to a desired position in the liquid flow path by air supply or air suction applied to the start point and end point of the liquid flow path. At this time, the liquid is held in a state of being sandwiched by the gas interposed between the start point and the front end portion and between the rear end portion and the end point, and is not divided in the middle by the action of the pulling force.

なお、DNA増幅反応は、等温増幅反応により、使用する酵素の活性が一定に維持できる温度に保たれる。ここで、「等温」とは、酵素およびプライマーが実質的に機能し得るような、ほぼ一定の温度をいう。さらに、「ほぼ一定の温度」とは、酵素及びプライマーの実質的な機能を損なわない程度の温度変化であれば許容されることを意味する。   The DNA amplification reaction is maintained at a temperature at which the activity of the enzyme used can be maintained constant by an isothermal amplification reaction. Here, “isothermal” refers to a substantially constant temperature at which the enzyme and primer can substantially function. Furthermore, “substantially constant temperature” means that any temperature change that does not impair the substantial functions of the enzyme and the primer is acceptable.

また、マイクロ流体チップ1は熱可塑性の高分子ポリマーの射出成形により製作される。使用する高分子ポリマーは、特に限定されないが、光学的に透明であり、耐熱性が高く、化学的に安定であり、射出成形が容易なものが望ましく、COP、COC、PMMA等が好適である。光学的に透明とは、検出に用いる励起光や蛍光の波長において透過性が高く、散乱が小さく、自家蛍光が少ないことである。マイクロ流体チップ1は、蛍光を検出可能とする透光性を有していることで、検出試薬に例えばサイバーグリーンが用いられ、反応によって増幅された2本鎖DNAにインターカレートすることで発する蛍光が測定可能となる。これにより、ターゲットとする遺伝子配列の存在の有無が検出可能となる。   The microfluidic chip 1 is manufactured by injection molding of a thermoplastic polymer. The polymer used is not particularly limited, but is preferably optically transparent, highly heat resistant, chemically stable, and easily injection-molded. COP, COC, PMMA, etc. are preferred. . Optically transparent means high transparency at the wavelength of excitation light or fluorescence used for detection, small scattering, and little autofluorescence. The microfluidic chip 1 has translucency that enables fluorescence to be detected, so that, for example, cyber green is used as a detection reagent, and the microfluidic chip 1 is emitted by intercalating into double-stranded DNA amplified by the reaction. Fluorescence can be measured. Thereby, the presence or absence of the target gene sequence can be detected.

図1及び図2(a)において、流路基板3は、その厚さ寸法t、幅寸法W、長さ寸法Lが、省スペースで持ち運び可能な適度の大きさに設定されている。そして、流路基板3の表面には、外部の加熱手段を装備するための凹みである掘り込み11,12と、後述するマイクロ流路14の一端に連通して設けられた検体投入用のポートP1と、マイクロ流路14に連通して設けられてマイクロ流路14内における検体の移動を制御する制御用ポートP2,P3と、マイクロ流路14の途中に連通して設けられてマイクロ流路14内に予備処理用の試薬等の被混合物質を投入する試薬投入用のポートP4とが形成されている。   In FIG. 1 and FIG. 2A, the flow path substrate 3 has a thickness dimension t, a width dimension W, and a length dimension L set to appropriate sizes that can be carried in a space-saving manner. Then, on the surface of the flow path substrate 3, diggings 11 and 12 which are dents for mounting external heating means, and a sample input port provided in communication with one end of a micro flow path 14 to be described later. P1 and control ports P2 and P3 that are provided in communication with the microchannel 14 to control the movement of the specimen in the microchannel 14, and are provided in communication with the microchannel 14 in the middle of the microchannel. 14 is formed with a reagent loading port P4 for loading a material to be mixed such as a reagent for pretreatment.

流路基板3の表面に開口する各ポートP1〜P4の周囲は、流路基板3の他の部分より隆起したリング状の隆起部18a,18b,18c,18dとなっており(図2(b)参照)、この隆起部18a,18b,18c,18dには、ポートパッドを介して配管が接続され、各配管にはバルブを介して、検査装置による送液駆動(マイクロ流路14内での検体の移動操作)のためのポンプが接続される。   The periphery of each of the ports P1 to P4 opened on the surface of the flow path substrate 3 is ring-shaped raised portions 18a, 18b, 18c, and 18d that are raised from other portions of the flow path substrate 3 (FIG. 2B). )), A pipe is connected to the raised portions 18a, 18b, 18c, and 18d through a port pad, and each pipe is connected to a valve through a valve to drive liquid feeding (in the microchannel 14). A pump for the specimen movement operation) is connected.

各ポートP1〜P4は、流路基板3を貫通する貫通孔として形成され、流路基板3の裏面に形成されたマイクロ流路14に連通している。マイクロ流路14は、流路基板3に溝として形成され、その開放面が蓋材5によって封止されることで流路となる。このマイクロ流路14は、第1のマイクロ流路用溝21と、この第1のマイクロ流路用溝21に複数の分岐流路23を介して連通した第2のマイクロ流路用溝22とで構成されている。   Each port P <b> 1 to P <b> 4 is formed as a through-hole penetrating the flow path substrate 3 and communicates with the micro flow path 14 formed on the back surface of the flow path substrate 3. The micro flow path 14 is formed as a groove in the flow path substrate 3, and an open surface thereof is sealed with the lid member 5 to form a flow path. The microchannel 14 includes a first microchannel groove 21 and a second microchannel groove 22 that communicates with the first microchannel groove 21 via a plurality of branch channels 23. It consists of

第1のマイクロ流路用溝21は、基端が検体投入用のポートP1に連通し、終端が制御用ポートP2に連通していている。第2のマイクロ流路用溝22は、基端側が複数の分岐流路23を介して第1のマイクロ流路用溝21の途中に接続されており、終端が制御用ポートP3に連通している。   The base end of the first microchannel groove 21 communicates with the sample loading port P1, and the terminal end communicates with the control port P2. The second micro-channel groove 22 has a proximal end connected to the first micro-channel groove 21 in the middle of the first micro-channel groove 21 via a plurality of branch channels 23, and the terminal end communicates with the control port P3. Yes.

第1のマイクロ流路用溝21の基端であるポートP1寄りの位置には、第1の混合部24が設けられ、更に、試薬投入用のポートP4が第1のマイクロ流路用溝21に連通する合流部25と前述の第1の混合部24との間の第1のマイクロ流路用溝21には、加熱部26が設定されている。   A first mixing section 24 is provided at a position near the port P1, which is the base end of the first microchannel groove 21, and a reagent charging port P4 is provided at the first microchannel groove 21. A heating section 26 is set in the first microchannel groove 21 between the merging section 25 communicating with the first mixing section 24.

第1の混合部24は、第1のマイクロ流路用溝21の溝幅を広げた複数個の亀甲型の混合セル24aを流れ方向に沿って所定の間隔で直列に配置したものである。そして、マイクロ流路14の底面を提供する蓋材5の下方には、外部(検査装置)の加熱手段が配置され、マイクロ流路14の底面から加熱可能にされている。   The first mixing unit 24 includes a plurality of tortoiseshell type mixing cells 24a in which the groove width of the first microchannel groove 21 is increased and arranged in series at predetermined intervals along the flow direction. An external (inspection apparatus) heating unit is disposed below the lid member 5 that provides the bottom surface of the microchannel 14, and can be heated from the bottom surface of the microchannel 14.

加熱部26は、流路基板3の表面側に配置した掘り込み12位置の底面側である蓋材5に装着した加熱手段により、マイクロ流路14内を流れる被混合物質を所定の温度に昇温させる部位である。   The heating unit 26 raises the substance to be mixed flowing in the microchannel 14 to a predetermined temperature by heating means attached to the lid member 5 on the bottom surface side of the digging 12 position disposed on the surface side of the channel substrate 3. This is the part to be heated.

第1のマイクロ流路用溝21上で、第1のマイクロ流路用溝21に複数本の分岐流路23が接続された分注部28と合流部25との間には、合流部25側から順に、第2の混合部31と、第3の混合部32が装備されている。また、これらの第2の混合部31と第3の混合部32との間には、更に別の予備処理として検体に接触・反応させる乾燥試薬を保持した2つの試薬担架部34,35が設けられている。   On the first microchannel groove 21, there is a merging portion 25 between a dispensing portion 28 in which a plurality of branch channels 23 are connected to the first microchannel groove 21 and the merging portion 25. In order from the side, a second mixing unit 31 and a third mixing unit 32 are provided. In addition, between the second mixing unit 31 and the third mixing unit 32, two reagent stretchers 34 and 35 holding dry reagents that are brought into contact with and reacting with the specimen are provided as a further preliminary process. It has been.

試薬担架部34,35は、第1の混合部24における混合セル24aと同様に第1のマイクロ流路用溝21の溝幅を広げることで、マイクロ流路14よりも大きな流路断面を持つ流路空間を形成して、その流路空間の上面となる位置に、乾燥試薬が保持される。
そして、本実施の形態のマイクロ流体チップ1では、ポートP1からマイクロ流路14内に導入された液体試薬としての検体を、溶解・混合用のセルである2つの混合部31,32間で往復させることにより試薬担架部34,35に乾燥状態で担架された乾燥試薬を均一に溶解・混合する。
The reagent stretchers 34 and 35 have a channel cross section larger than that of the microchannel 14 by widening the groove width of the first microchannel groove 21 in the same manner as the mixing cell 24 a in the first mixing unit 24. The flow path space is formed, and the dry reagent is held at a position that becomes the upper surface of the flow path space.
In the microfluidic chip 1 of the present embodiment, the specimen as the liquid reagent introduced from the port P1 into the microchannel 14 is reciprocated between the two mixing units 31 and 32 that are cells for dissolution and mixing. As a result, the dry reagent stretched in a dry state on the reagent stretchers 34 and 35 is uniformly dissolved and mixed.

そして、本願発明を適用できる最適な部分として、分注部28を構成している複数本の分岐流路23がある。この分岐流路23は、第1のマイクロ流路用溝21と第2のマイクロ流路用溝22に並列に接続されていて、その途中に、亀甲型に流路を拡幅した複数の反応検出セル37を有している。各反応検出セル37は、その内部の重力方向の最上位置となる上面側流路壁面に、検出用の固化試薬39としてのプライマーが担架されており、予備処理を終えた検体が流入すると、検体と試薬の反応により、検体を分析する。   As an optimum part to which the present invention can be applied, there are a plurality of branch channels 23 constituting the dispensing unit 28. The branch flow path 23 is connected in parallel to the first micro flow path groove 21 and the second micro flow path groove 22, and a plurality of reaction detections in which the flow path is widened in the shape of a turtle shell A cell 37 is provided. In each reaction detection cell 37, a primer as a detection solidifying reagent 39 is stretched on the flow path wall surface on the upper surface, which is the uppermost position in the gravity direction, and when a sample that has undergone preliminary processing flows in, Analyze the sample by the reaction between the reagent and the reagent.

各分岐流路23の反応検出セル37には、互いに成分の異なるプライマーである固化試薬39を担架させておくことで、検体に対する多種の分析を一度に実施することができる。   By carrying the solidification reagent 39, which is a primer having different components, in the reaction detection cell 37 of each branch channel 23, various analyzes on the specimen can be performed at once.

分注部28は、流路基板3の表面側に形成された掘り込み11位置の底面側である蓋材5に当接する検査装置の加熱手段によって加熱可能になっていて、反応検出セル37に担架した分析用の固化試薬39の反応促進に適した温度に、加熱される。   The dispensing unit 28 can be heated by the heating means of the inspection device that comes into contact with the lid member 5 that is the bottom surface side of the digging 11 position formed on the surface side of the flow path substrate 3, The stretched analysis solidifying reagent 39 is heated to a temperature suitable for promoting the reaction.

本実施の形態の場合、各分岐流路23の反応検出セル37における固化試薬39の担架は、次のように行われている。
まず、図3(a)に示すように、反応検出セル37の上面側流路壁面に、熱溶解性結合剤と混合された適量の液状又は半液状(ゲル状)の試薬42を点着させる。そして、試薬42の水分を蒸発させることで、図3(b)に示すようにセルの内壁面に乾燥状態の試薬39が固着した状態を得る。
In the case of the present embodiment, the solidifying reagent 39 is stretched in the reaction detection cell 37 of each branch channel 23 as follows.
First, as shown in FIG. 3A, an appropriate amount of liquid or semi-liquid (gel-like) reagent 42 mixed with a heat-soluble binder is spotted on the upper surface side channel wall surface of the reaction detection cell 37. . Then, by evaporating the moisture of the reagent 42, a state in which the dry reagent 39 is fixed to the inner wall surface of the cell as shown in FIG. 3B is obtained.

本実施の形態の場合、反応検出セル37に担架させる試薬は、検体である血液に核酸増幅反応を起こす起点となるプライマーである。   In the case of the present embodiment, the reagent to be stretched on the reaction detection cell 37 is a primer serving as a starting point for causing a nucleic acid amplification reaction in blood as a sample.

そして、試薬42に混合される熱溶解性結合剤としては、溶解促進温度が35℃以上60℃以下とされるゼラチンまたはヒドロキシプロピルセルロース(HPC)が選定されている。
また、固化状態の試薬39において、熱溶解性結合剤であるゼラチンまたはヒドロキシプロピルセルロース(HPC)の含有率は、検体となる血液への溶解速度や反応速度を考慮して、重量比で、20%以上98%以下の範囲に設定される。
As the heat-soluble binder to be mixed with the reagent 42, gelatin or hydroxypropyl cellulose (HPC) having a dissolution promoting temperature of 35 ° C. or more and 60 ° C. or less is selected.
In addition, in the solidified reagent 39, the content of gelatin or hydroxypropyl cellulose (HPC), which is a heat-soluble binder, is 20 by weight in consideration of the dissolution rate and the reaction rate in blood as a specimen. % To 98% or less.

分注部28に装備された加熱手段は、各反応検出セル37内を、固化試薬39の反応が活発になる規定温度に一定に保ち、固化試薬39による等温反応を実現する。   The heating means provided in the dispensing unit 28 keeps the inside of each reaction detection cell 37 constant at a specified temperature at which the reaction of the solidifying reagent 39 becomes active, thereby realizing an isothermal reaction by the solidifying reagent 39.

以上のマイクロ流路チップ1は、制御用ポートP2,P3に接続された検査装置配管のバルブの開閉、又はバルブに接続されたポンプによる加圧、又は吸引を適宜に制御することで、検体投入用のポートP1からマイクロ流路14に投入された検体の位置を、マイクロ流路14の任意位置に移動させることができ、各混合部24,31,32等での予備処理用の混合処理を済ませた検体を、各反応検出セル37に分注することで、検体に対する多種の分析を行う。   The micro-channel chip 1 described above inputs the sample by appropriately controlling the opening and closing of the valves of the inspection apparatus piping connected to the control ports P2 and P3, or the pressurization or suction by the pump connected to the valves. The position of the sample put into the microchannel 14 from the port P1 can be moved to an arbitrary position in the microchannel 14, and mixing processing for preliminary processing in each mixing unit 24, 31, 32, etc. By dispensing dispensed specimens into each reaction detection cell 37, various kinds of analysis are performed on the specimens.

以上に説明したマイクロ流体チップ1によれば、マイクロ流路14内の所定位置としての反応検出セル37に担架された試薬39は、予め混合される熱溶解性結合剤として、付着性(接着性)を有したものを採用しておくことで、反応検出セル37内の流路壁面との間の接着強度を大幅に向上させることができる。
そのため、マイクロ流路14内に送給される被検査液(検体)の接触だけで担架位置から剥離して流されることがない。
しかも、被検査液の温度が熱溶解性結合剤の溶解促進温度である規定温度まで昇温されていないときには、熱溶解性結合剤の溶解が促進されず、試薬39の溶解も促進されない。
According to the microfluidic chip 1 described above, the reagent 39 suspended on the reaction detection cell 37 as a predetermined position in the microchannel 14 is used as an adhesive (adhesive) as a heat-soluble binder to be mixed in advance. ) Can be used to significantly improve the adhesive strength between the reaction detection cell 37 and the flow path wall surface.
Therefore, it is not peeled away from the stretcher position only by contact with the liquid to be tested (specimen) fed into the microchannel 14.
In addition, when the temperature of the liquid to be inspected is not raised to a specified temperature, which is the dissolution promoting temperature of the hot-soluble binder, the dissolution of the hot-soluble binder is not promoted, and the dissolution of the reagent 39 is not promoted.

換言すると、試薬39の担架位置に導入される被検査液の温度を分注部28に装備された加熱手段によって規定温度に昇温させれば、その被検査液に接触した熱溶解性結合剤の溶解が促進され、同時に、図3(c)に示すように試薬39の溶解・混合も促進され、当初の担架位置で溶解・混合処理が開始・継続されることが担保されるため、例えば、試薬39の担架位置を挟む一定区間(例えば、分岐流路23の範囲内)に一定時間被検査液を滞留させたり、あるいは試薬39の担架位置を挟む一定区間で被検査液を往復させることで、被検査液に確実に溶解・混合させて、溶解・混合処理の精度を向上させることができる。   In other words, if the temperature of the liquid to be inspected introduced to the stretcher position of the reagent 39 is raised to a specified temperature by the heating means provided in the dispensing unit 28, the heat-soluble binder in contact with the liquid to be inspected At the same time, the dissolution / mixing of the reagent 39 is also promoted as shown in FIG. 3C, and it is ensured that the dissolution / mixing process is started and continued at the initial stretcher position. The liquid to be inspected is retained for a certain period of time (for example, within the range of the branch flow path 23) sandwiching the stretch position of the reagent 39, or the liquid to be tested is reciprocated in a certain section sandwiching the stretch position of the reagent 39. Thus, it is possible to improve the accuracy of the dissolution / mixing process by reliably dissolving and mixing the liquid to be inspected.

更に、熱溶解性結合剤の溶解促進温度が、試薬39と被検査液との反応促進温度となるように、熱溶解性結合剤の特性を調整しておけば、溶解・混合した試薬39を効率良く被検査液に反応させることができ、当初の担架位置の周辺でその後の反応処理や、分析処理を実施することができる。
即ち、当初の試薬39の担架位置またはその周辺だけで、溶解・混合処理に加えて、その後の反応処理や、分析処理を実施することができる。
従って、これらの溶解・混合処理,反応処理,分析処理をマイクロ流路上の互いに異なる位置で実施するようにしていた従来の場合と比較すると、マイクロ流路上の処理位置を削減することができ、これにより、チップ上に形成するマイクロ流路マイクロ流路14、分岐流路23の単純化や流路長の短縮を実現して、チップの小型化や、製造コストの低減を図ることもできる。
Furthermore, if the characteristics of the heat-soluble binder are adjusted so that the dissolution-accelerating temperature of the heat-soluble binder is the reaction-accelerating temperature between the reagent 39 and the liquid to be inspected, It can be made to react efficiently with the liquid to be inspected, and subsequent reaction processing and analysis processing can be performed around the initial stretcher position.
That is, in addition to the dissolution / mixing process, the subsequent reaction process and analysis process can be performed only at the initial position where the reagent 39 is stretched or in the vicinity thereof.
Therefore, compared with the conventional case where these dissolution / mixing processing, reaction processing, and analysis processing are performed at different positions on the microchannel, the processing positions on the microchannel can be reduced. As a result, the micro flow path 14 and the branch flow path 23 formed on the chip can be simplified and the flow path length can be shortened, so that the chip can be downsized and the manufacturing cost can be reduced.

また、本実施の形態では、固化試薬39に混合する熱溶解性結合剤は、溶解促進温度が35℃以上60℃以下となるものを選定している。このような構成にすると、固化試薬39の溶解促進温度を常温からずらして溶解開始のタイミングを正確に管理できると同時に、例えば、試薬39が血液中の標的核酸の増幅及び検出を目的として使用される乾燥プライマーである場合に、この乾燥プライマーの反応温度を維持して、反応促進を図ることもできる。   In the present embodiment, the heat-soluble binder to be mixed with the solidifying reagent 39 is selected so that the dissolution promoting temperature is 35 ° C. or higher and 60 ° C. or lower. With such a configuration, the dissolution promotion temperature of the solidifying reagent 39 can be shifted from the normal temperature to accurately control the timing of the dissolution start. At the same time, for example, the reagent 39 is used for the purpose of amplification and detection of the target nucleic acid in blood. In the case of a dry primer, the reaction temperature of the dry primer can be maintained to promote the reaction.

また、本実施の形態では、熱溶解性結合剤として、ゼラチンまたはヒドロキシプロピルセルロース(HPC)を採用している。
このような構成にすると、ゼラチンやヒドロキシプロピルセルロース(HPC)は、上記の溶解促進温度が35℃以上60℃以下とする条件を設定できる熱溶解性を有すると同時に、付着性(接着性)も強いので、分岐流路23上の反応検出セル37の所定位置への試薬39の担架が容易になり、前述した溶解温度や反応温度の適正管理によって、均一混合や、反応促進を実現して、効率よく処理を進行させることができる。
In this embodiment, gelatin or hydroxypropyl cellulose (HPC) is employed as the heat-soluble binder.
With such a configuration, gelatin and hydroxypropyl cellulose (HPC) have heat solubility that allows the above-described dissolution promotion temperature to be set to 35 ° C. or more and 60 ° C. or less, and also have adhesion (adhesiveness). Since it is strong, it becomes easy to stretch the reagent 39 to a predetermined position of the reaction detection cell 37 on the branch flow path 23, and by the appropriate management of the dissolution temperature and reaction temperature described above, uniform mixing and reaction promotion are realized, The process can be advanced efficiently.

また、本実施の形態では、熱溶解性結合剤が固化状態の試薬に対して重量比で20%以上98%以下の含有率となるように規制している。
流路に担架する試薬39に含まれる熱溶解性結合剤は、被検査液に溶解した際に、不純物となってしまう。従って、できるだけ熱溶解性結合剤の含有率を下げることが望ましいが、試薬39を被検査液に均一に溶解・混合させるための所要時間や反応速度を最適に調整するためには、熱溶解性結合剤の含有率を高めることで試薬39の溶解速度を抑えることが有効な場合が少なくない。このような観点から、上記のように、熱溶解性結合剤の含有率を規制しておけば、被検査液の組成や分析目的等に対応して、試薬39の溶解性を柔軟に制御することができる。
In the present embodiment, the heat-soluble binder is regulated so as to have a content ratio of 20% or more and 98% or less by weight with respect to the solidified reagent.
The heat-soluble binder contained in the reagent 39 stretched on the flow path becomes an impurity when dissolved in the liquid to be inspected. Therefore, it is desirable to reduce the content of the heat-soluble binder as much as possible. However, in order to optimally adjust the time required to dissolve and mix the reagent 39 uniformly in the liquid to be inspected and the reaction rate, In many cases, it is effective to suppress the dissolution rate of the reagent 39 by increasing the content of the binder. From this point of view, if the content of the heat-soluble binder is regulated as described above, the solubility of the reagent 39 can be flexibly controlled in accordance with the composition of the liquid to be inspected and the analysis purpose. be able to.

また、本実施の形態では、試薬39が核酸増幅反応を起こすものであり、このような構成にすると、試薬39の担架位置又はその周辺で、核酸増幅反応を効率よく実施できる。   In the present embodiment, the reagent 39 causes a nucleic acid amplification reaction. With such a configuration, the nucleic acid amplification reaction can be efficiently carried out at or around the position where the reagent 39 is stretched.

更に、本実施の形態では、反応検出セル37内は、分注部28に装備された加熱手段によって等温に維持できるため、固化試薬39による被検査液の核酸増幅反応が等温増幅反応となり、使用する酵素の活性が一定に維持できるため核酸増幅反応が安定して進行し、反応処理の信頼性、処理精度を向上させると共に、所要時間を短縮することができる。   Furthermore, in the present embodiment, the reaction detection cell 37 can be maintained isothermally by the heating means provided in the dispensing unit 28, so that the nucleic acid amplification reaction of the liquid to be inspected by the solidifying reagent 39 becomes an isothermal amplification reaction. Since the activity of the enzyme to be maintained can be maintained constant, the nucleic acid amplification reaction proceeds stably, improving the reliability and accuracy of the reaction process and reducing the required time.

更に、本実施の形態では、試薬39が被検査液の核酸増幅反応の起点となるプライマーであるため、試薬39の担架位置での試薬39の溶解開始が、核酸増幅反応の開始とするように制御することができ、反応時間の管理等が容易になることにより、核酸増幅反応を上手に制御・進行させることができる。   Furthermore, in this embodiment, since the reagent 39 is a primer that is the starting point of the nucleic acid amplification reaction of the test solution, the start of dissolution of the reagent 39 at the position where the reagent 39 is stretched is the start of the nucleic acid amplification reaction. Since it can be controlled and the management of the reaction time becomes easy, the nucleic acid amplification reaction can be well controlled and advanced.

なお,本発明の発明者は熱溶解性結合剤としてゼラチンを使用し、この熱溶解性結合剤を混合した固化試薬39を反応検出セル37に担架させた上記実施の形態における試薬の溶解・混合特性を確認するための実験を行った。   The inventor of the present invention uses gelatin as the heat-soluble binder, and dissolves and mixes the reagent in the above embodiment in which the solidification reagent 39 mixed with the heat-soluble binder is stretched on the reaction detection cell 37. An experiment was conducted to confirm the characteristics.

図4(a),(b),(c),(d)、図5に実験に用いたマイクロ流路チップ70の構造を示す。実験に用いたマイクロ流路チップ70は図2(c)に示した反応検出セル37を模した構造となっている。図4(a)はマイクロ流路チップ70の全体形状及び反応検出セル内で、水平方向に離間して設定された測定位置を示す図、図4(b)は(a)のY−Y断面を示す断面図、図4(c)は固化試薬が担架されたマイクロ流路チップ70の全体形状を示す図、図4(d)は(c)のY−Y断面を示す断面図である。図5はY−Y断面を拡大した断面図である。   4 (a), (b), (c), (d) and FIG. 5 show the structure of the microchannel chip 70 used in the experiment. The microchannel chip 70 used in the experiment has a structure simulating the reaction detection cell 37 shown in FIG. 4A is a diagram showing the overall shape of the microchannel chip 70 and the measurement positions set apart in the horizontal direction in the reaction detection cell, and FIG. 4B is a YY cross section of FIG. 4A. FIG. 4C is a view showing the overall shape of the microchannel chip 70 on which the solidifying reagent is stretched, and FIG. 4D is a cross-sectional view showing the YY cross section of FIG. FIG. 5 is an enlarged cross-sectional view of the YY cross section.

マイクロ流路チップ70の中央には反応検出セル72が配置され、両端位置に配置された貫通の送液ポート78が連通されている。マイクロ流路チップ70の側面60の少なくとも反応検出セル72位置は鏡面仕上げとなっており、反応検出セル72内が検出できるようになっている。更に、反応検出セル72の開口側は底面となる蓋76により、閉ざす構造となっている。反応検出セル72の大きさとしては、幅2.0mm,深さ1.0mmに設定されている。この寸法は実際の反応検出セルを模したものであるが、適宜に設計変更可能で、これに限定されるものではない。   A reaction detection cell 72 is disposed in the center of the microchannel chip 70, and a penetrating liquid feed port 78 disposed at both end positions is communicated. At least the position of the reaction detection cell 72 on the side surface 60 of the microchannel chip 70 has a mirror finish so that the inside of the reaction detection cell 72 can be detected. Furthermore, the opening side of the reaction detection cell 72 is closed by a lid 76 serving as a bottom surface. The size of the reaction detection cell 72 is set to a width of 2.0 mm and a depth of 1.0 mm. Although this dimension imitates an actual reaction detection cell, the design can be changed as appropriate, and the present invention is not limited to this.

次に、固化試薬39を反応検出セル72に担架させる手順を示す。
反応検出セル72に担架させる試薬39として液体状の合成プライマー(OPERON社製)を用い、溶解・混合特性を定量化するために蛍光標識されたプライマーであるPanomerTM 9 ランダムオリゴデオキシヌクレオチド、Alexa FluorR 488 Conjugate(インビトロジェン社製)を100μMとなるように滅菌水で溶解したものを体積比で5%混合して、プライマー溶液を作製した。
Next, a procedure for suspending the solidifying reagent 39 on the reaction detection cell 72 will be described.
A liquid synthetic primer (manufactured by OPERON) is used as the reagent 39 to be suspended on the reaction detection cell 72, and Panomer ™ 9 random oligodeoxynucleotide, Alexa Fluor® 488, which is a fluorescently labeled primer for quantifying dissolution and mixing characteristics A primer solution was prepared by mixing 5% by volume of Conjugate (manufactured by Invitrogen) dissolved in sterile water to a concentration of 100 μM.

更に前記プライマー溶液とゼラチン溶液[牛骨ゼラチン(新田ゼラチン社製)を2.5%(Weight / Volume)となるように10mM Trisバッファー{トリス-塩酸、pH 7.5 (1M)(インビトロジェン社製)を滅菌水で100倍希釈に溶解}で溶解したもの]を体積比で4:1に混合して、熱溶解性結合剤であるゼラチンを含有した液体状プライマー溶液を作製した。なお、前記ゼラチン溶液は常温では固化してしまうため、45℃に加熱してゲル化した後、前記プライマー溶液と混合した。混合後の溶液はゼラチン濃度が0.5%(Weight / Volume)となっているため、常温で固化することはない。
続いて、熱溶解性結合剤であるゼラチンを混合した前記液体状プライマー溶液1.0μLを反応検出セル内壁面74にピペットにて点着させた後、シリカゲル入りデシケータ内で2時間乾燥させることにより、固化試薬39である合成プライマーを反応検出セル72に担架させた。(図4(c),(d)参照)
Further, sterilize 10 mM Tris buffer (Tris-hydrochloric acid, pH 7.5 (1M) (Invitrogen) so that the primer solution and gelatin solution [cow bone gelatin (Nitta Gelatin)) becomes 2.5% (Weight / Volume). Dissolved in 100-fold dilution with water} was mixed at a volume ratio of 4: 1 to prepare a liquid primer solution containing gelatin as a heat-soluble binder. Since the gelatin solution solidifies at room temperature, it was gelled by heating to 45 ° C. and then mixed with the primer solution. Since the solution after mixing has a gelatin concentration of 0.5% (Weight / Volume), it does not solidify at room temperature.
Subsequently, 1.0 μL of the liquid primer solution mixed with gelatin, which is a heat-soluble binder, was spotted with a pipette on the inner wall surface 74 of the reaction detection cell, and then dried in a desiccator containing silica gel for 2 hours. A synthetic primer as the solidifying reagent 39 was stretched on the reaction detection cell 72. (See FIGS. 4C and 4D)

次に、固化試薬の溶解・混合特性を確認するための実験方法を示す。
上記の固化試薬39を担架させたマイクロ流路チップ70に粘着シールであるseal-TSRT2(Excel Scientific社製)を用いて蓋76をした。蓋76側を下にして送液ポート78からピペットで0.2%Tween20水溶液{10%Tween20(和光純薬社製)を滅菌水で50倍希釈}を送液して検出セル72内を満たした後、底面(蓋76側)から不図示のプレートヒーターでプライマーの反応促進温度である60℃に加熱(図5参照)して、水平方向及び重力方向の蛍光輝度分布を測定した。なお、水平方向はLAS−3000(富士フイルム社製)を用いて検出セル72上面側から,重力方向は実体蛍光顕微鏡システムVB−G25(KEYENCE社製)を用いて鏡面加工を施した検出セル側面60側から測定を行った。
Next, an experimental method for confirming the dissolution / mixing characteristics of the solidifying reagent is shown.
A lid 76 was attached to the microchannel chip 70 on which the solidifying reagent 39 was suspended using seal-TSRT2 (manufactured by Excel Scientific) as an adhesive seal. After filling the inside of the detection cell 72 by feeding 0.2% Tween20 aqueous solution {10% Tween20 (manufactured by Wako Pure Chemical Industries, Ltd.) diluted 50 times with sterile water} with a pipette from the liquid feeding port 78 with the lid 76 side down Then, it was heated from the bottom surface (the lid 76 side) to 60 ° C., which is the primer reaction acceleration temperature, using a plate heater (not shown) (see FIG. 5), and the fluorescence luminance distribution in the horizontal direction and the gravity direction was measured. The horizontal direction is from the upper surface side of the detection cell 72 using LAS-3000 (manufactured by FUJIFILM), and the gravity direction is the side surface of the detection cell mirror-finished using the stereoscopic fluorescence microscope system VB-G25 (manufactured by KEYENCE). Measurements were taken from the 60 side.

また、図4(a)には、反応検出セル内において、水平方向に離間して設定された5箇所の輝度測定場所を数字で示している。
図6は、反応検出セルに導入される被検査液の温度を60℃に維持して、反応検出セル内での処理を実施した場合に、図4(a)に示した各測定場所において測定される輝度の変化を示している。
60℃の等温加熱状態を維持すると、水平方向のどの位置でも、略3分位で略同一の蛍光強度に収束した。これにより、流路内の水平方向に略均一に試薬39が溶解・混合されたことが確認できた。
FIG. 4A shows five luminance measurement locations that are set apart in the horizontal direction in the reaction detection cell.
FIG. 6 shows the measurement at each measurement location shown in FIG. 4A when the temperature of the liquid to be inspected introduced into the reaction detection cell is maintained at 60 ° C. and the processing in the reaction detection cell is performed. The change in brightness is shown.
When the isothermal heating state at 60 ° C. was maintained, the fluorescence intensity converged to approximately the same fluorescence intensity in approximately the third quantile at any position in the horizontal direction. This confirmed that the reagent 39 was dissolved and mixed substantially uniformly in the horizontal direction in the flow path.

そして、図7は、反応検出セル内(セル深さ1.0mm)で底面からの離間距離を変えて、各所の重力方向輝度分布を測定したもので、反応検出セル内の各所の輝度分布のばらつきが、加熱時間の経過と共に低減し、120秒経過後には、輝度のばらつきが±20%以内に収束していて、反応検出セル内の垂直方向の略全域に渡って、固化試薬(プライマー)の成分が略均等に拡散し,固化試薬(プライマー)が被検査液に均一に溶解・混合されていることが確認できた。   FIG. 7 shows the measurement of the luminance direction luminance distribution at various locations in the reaction detection cell (cell depth 1.0 mm) while changing the separation distance from the bottom surface. The variation decreases as the heating time elapses, and after 120 seconds, the luminance variation converges to within ± 20%, and the solidification reagent (primer) extends over substantially the entire vertical direction in the reaction detection cell. It was confirmed that the solidified reagent (primer) was uniformly dissolved and mixed in the test solution.

次に、本発明の発明者は熱溶解性結合剤としてゼラチンおよびヒドロキシプロピルセルロース(HPC)を使用して、この熱溶解性結合剤を混合した固化試薬39を反応検出セル37に担架させた上記実施の形態における試薬の反応性を確認するための実験を行った。   Next, the inventor of the present invention uses gelatin and hydroxypropyl cellulose (HPC) as a heat-soluble binder, and the reaction detection cell 37 is loaded with a solidifying reagent 39 mixed with the heat-soluble binder. Experiments were conducted to confirm the reactivity of the reagents in the embodiment.

熱溶解性結合剤としてゼラチンを乾燥固化させたプライマーを用いた場合の核酸増幅反応を図9で、ゼラチンおよびヒドロキシプロピルセルロース(HPC)を乾燥固化させたプライマーを用いた場合の核酸増幅反応を図10で、ゼラチンおよびヒドロキシプロピルセルロース(HPC)を混合した液体プライマーを用いた場合の核酸増幅反応を図11で、それぞれ示す。なお、反応検出セル72に担架させる試薬39として液体状の合成プライマー(OPERON社製)を用い、ゼラチン溶液[牛骨ゼラチン(新田ゼラチン社製)を2.5%(Weight / Volume)となるように10mM Trisバッファー{トリス-塩酸、pH 7.5 (1M)(インビトロジェン社製)を滅菌水で100倍希釈に溶解}で溶解したもの]およびヒドロキシプロピルセルロース溶液[ヒドロキシプロピルセルロース(日本槽達社製)を2.5%(Weight / Volume)となるように10mM Trisバッファー{トリス-塩酸、pH 7.5 (1M)(インビトロジェン社製)を滅菌水で100倍希釈に溶解}で溶解したもの]を前記プライマー溶液に体積比で4:1混合して、熱溶解性結合剤であるゼラチンおよびヒドロキシルプロピルセルロース(HPC)を含有した液体状プライマー溶液を作製し、反応検出セル72内壁面74にピペットにて点着させた後、シリカゲル入りデシケータ内で2時間乾燥させることにより、固化試薬39である合成プライマーを反応検出セル72に担架させた。
熱溶解性結合剤としてゼラチンおよびヒドロキシプロピルセルロース(HPC)を用いた場合はいずれも液体プライマーを用いた場合と同様に反応開始から18min程度で蛍光強度の立ち上がりが認められ、核酸増幅反応が液体プライマーと同様に進行することが分かった。
Fig. 9 shows the nucleic acid amplification reaction using a primer obtained by drying and solidifying gelatin as a heat-soluble binder, and Fig. 9 shows the nucleic acid amplification reaction using a primer obtained by drying and solidifying gelatin and hydroxypropylcellulose (HPC). FIG. 11 shows the nucleic acid amplification reaction when a liquid primer mixed with gelatin and hydroxypropylcellulose (HPC) is used. In addition, a liquid synthetic primer (manufactured by OPERON) is used as the reagent 39 to be stretched on the reaction detection cell 72, and the gelatin solution [cow bone gelatin (manufactured by Nitta Gelatin) is adjusted to 2.5% (Weight / Volume). 10 mM Tris buffer {tris-hydrochloric acid, pH 7.5 (1M) (manufactured by Invitrogen) dissolved in 100-fold dilution with sterilized water} and hydroxypropyl cellulose solution [hydroxypropyl cellulose (manufactured by Nihon Tatsuda Co., Ltd.) Volume of 10 mM Tris buffer {Tris-hydrochloric acid, pH 7.5 (1M) (manufactured by Invitrogen) dissolved in 100-fold dilution with sterile water} to 2.5% (Weight / Volume)} in the primer solution A liquid primer solution containing gelatin and hydroxylpropyl cellulose (HPC), which are heat-soluble binders, was prepared by mixing at a ratio of 4: 1, and the reaction detection cell 7 After spotted on the inner wall surface 74 with a pipette, and dried for 2 hours in a silica gel desiccator, and the synthetic primer is a solidified reagent 39 is a stretcher into the reaction detection cell 72.
When gelatin and hydroxypropylcellulose (HPC) are used as the heat-soluble binder, the fluorescence intensity rises in about 18 minutes from the start of the reaction, as in the case of using the liquid primer, and the nucleic acid amplification reaction is performed with the liquid primer. It turns out that it progresses similarly.

なお、ゼラチン又はヒドロキシプロピルセルロース(HPC)等の熱溶解性結合剤を混合させた試薬を担架させておいて、試薬の溶解開始点を、試薬に接触させる被検査液の温度調整により制御可能にする試薬担架構造は、分注部28における反応検出セル37に限らず、第1の混合部24における各混合セル24aや、試薬担架部34,35に適用するようにしても良い。これにより、分注部28の上流側に位置していた2つの混合部31,32や、加熱部26の規模を縮小したり、あるいは一部を削減して、マイクロ流路14の全長を更に短縮したり、チップの小型化を促進することができる。   A reagent mixed with a heat-soluble binder such as gelatin or hydroxypropyl cellulose (HPC) is stretched, and the dissolution start point of the reagent can be controlled by adjusting the temperature of the liquid to be inspected to contact the reagent. The reagent stretcher structure to be applied is not limited to the reaction detection cell 37 in the dispensing unit 28, and may be applied to each mixing cell 24 a in the first mixing unit 24 and the reagent stretcher units 34 and 35. Thereby, the scale of the two mixing parts 31 and 32 and the heating part 26 which were located in the upstream of the dispensing part 28 is reduced, or a part is reduced, and the full length of the microchannel 14 is further increased. It can be shortened or the chip can be reduced in size.

また、ゼラチン又はヒドロキシプロピルセルロース(HPC)等の熱溶解性結合剤を混合させてマイクロ流路チップ上に担架させる手法は、本実施のプライマー以外にも、核酸増幅反応と検出に必要な試薬である酵素、dNTPミックス等の基質及び検査試薬であるサイバーグリーン等に適用しても良い。   In addition to the primer used in this embodiment, a method for mixing a heat-soluble binder such as gelatin or hydroxypropyl cellulose (HPC) and hanging it on the microchannel chip is a reagent necessary for nucleic acid amplification reaction and detection. The present invention may be applied to a certain enzyme, a substrate such as a dNTP mix, and cyber green as a test reagent.

熱溶解性結合剤の種類としては、上記ゼラチン又はヒドロキシプロピルセルロース(HPC)の他に、コラーゲン、アガロースなどがある。   Examples of the heat-soluble binder include collagen and agarose in addition to the gelatin or hydroxypropyl cellulose (HPC).

本発明に係るマイクロ流路チップの一実施の形態の分解斜視図である。It is a disassembled perspective view of one embodiment of the microchannel chip according to the present invention. 図1に示したマイクロ流路チップを構成する流路基板の構成の説明図で、(a)は前記流路基板の平面図、(b)は(a)のA矢視図、(c)は(b)のB矢視図である。It is explanatory drawing of the structure of the flow-path board | substrate which comprises the microchannel chip | tip shown in FIG. 1, (a) is a top view of the said flow-path board | substrate, (b) is an A arrow view of (a), (c) FIG. 6B is a view on arrow B in (b). (a)は図2(c)に示したマイクロ流路のC部の拡大図、(b)は試薬を(a)のセルの内壁面に点着した状態の説明図、(c)は被検査液がセル内に流入した時の作用説明図である。(A) is an enlarged view of part C of the microchannel shown in FIG. 2 (c), (b) is an explanatory diagram of a state in which a reagent is spotted on the inner wall surface of the cell of (a), and (c) is a cover. It is operation | movement explanatory drawing when a test | inspection liquid flows in in a cell. (a)はマイクロ流路チップ50の全体形状及び反応検出セル内で、水平方向に離間して設定された測定位置を示す図、(b)は(a)のY−Y断面を示す断面図、(c)は固化試薬が担架されたマイクロ流路チップ50の全体形状を示す図、(d)は(c)のY−Y断面を示す断面図である。(A) is a figure which shows the measurement position set apart in the horizontal direction in the whole shape and reaction detection cell of the microchannel chip | tip 50, (b) is sectional drawing which shows the YY cross section of (a). (C) is a figure which shows the whole shape of the microchannel chip | tip 50 with which the solidification reagent was stretched, (d) is sectional drawing which shows the YY cross section of (c). 図4のY−Y断面で蓋76側を底面として拡大した断面図である。FIG. 7 is an enlarged cross-sectional view of the Y-Y cross section of FIG. 図4に示した測定位置で測定したセル内の試薬拡散状況を示す蛍光強度グラフである。It is a fluorescence intensity graph which shows the reagent diffusion condition in the cell measured in the measurement position shown in FIG. 図4に示した反応検出セル内で、垂直方向における試薬拡散状況を示す蛍光強度グラフである。5 is a fluorescence intensity graph showing a reagent diffusion state in the vertical direction in the reaction detection cell shown in FIG. 4. (a)は従来のマイクロ流路チップにおいて、試薬を担架させたセルの説明図、(b)は試薬を(a)のセルの内壁面に点着した状態の説明図、(c)は被検査液がセル内に流入した時の作用説明図である(A) is an explanatory view of a cell on which a reagent is suspended in a conventional microchannel chip, (b) is an explanatory view of a state in which the reagent is spotted on the inner wall surface of the cell of (a), and (c) is a covered plate. It is operation | movement explanatory drawing when test | inspection liquid flows in in a cell. 熱溶解性結合剤としてゼラチンを乾燥固化させたプライマーを用いた場合の核酸増幅反応を示す図である。It is a figure which shows the nucleic acid amplification reaction at the time of using the primer which dried and solidified gelatin as a heat-soluble binder. ゼラチンおよびヒドロキシプロピルセルロース(HPC)を乾燥固化させたプライマーを用いた場合の核酸増幅反応を示す図である。It is a figure which shows the nucleic acid amplification reaction at the time of using the primer which dried and solidified gelatin and the hydroxypropyl cellulose (HPC). ゼラチンおよびヒドロキシプロピルセルロース(HPC)を混合した液体プライマーを用いた場合の核酸増幅反応を示す図である。It is a figure which shows the nucleic acid amplification reaction at the time of using the liquid primer which mixed gelatin and the hydroxypropyl cellulose (HPC).

符号の説明Explanation of symbols

1 マイクロ流路チップ
3 流路基板
5 蓋材
11,12 掘り込み
14 マイクロ流路
18 隆起部
21 第1のマイクロ流路用溝
22 第2のマイクロ流路用溝
23 分岐流路
24 第1の混合部
24a 混合セル
26 加熱部
31 第2の混合部
32 第3の混合部
34,35 試薬担架部
37 反応検出セル
39 固化試薬
42 試薬
P1〜P4 ポート
DESCRIPTION OF SYMBOLS 1 Microchannel chip | tip 3 Channel substrate 5 Lid | cover material 11,12 Digging 14 Microchannel 18 Raised part 21 First microchannel groove 22 Second microchannel groove 23 Branch channel 24 First Mixing unit 24a Mixing cell 26 Heating unit 31 Second mixing unit 32 Third mixing unit 34, 35 Reagent stretcher unit 37 Reaction detection cell 39 Solidification reagent 42 Reagent P1-P4 port

Claims (7)

マイクロ流路内に試薬を担架して被検査液を導入するマイクロ流路チップであって、
前記試薬が熱溶解性結合剤と混合されてマイクロ流路内の所定位置に担架され、
前記被検査液の導入時温度からの昇温により前記所定位置での前記試薬の溶解が促進されるマイクロ流路チップ。
A microchannel chip that introduces a test liquid by suspending a reagent in the microchannel,
The reagent is mixed with a heat-soluble binder and stretched at a predetermined position in the microchannel,
A microchannel chip in which dissolution of the reagent at the predetermined position is promoted by a temperature rise from a temperature at the time of introduction of the test liquid.
前記被検査液の昇温温度が35℃以上60℃以下である請求項1記載のマイクロ流路チップ。   The microchannel chip according to claim 1, wherein the temperature of the liquid to be inspected is 35 ° C or higher and 60 ° C or lower. 前記熱溶解性結合剤がゼラチンまたはヒドロキシプロピルセルロースである請求項1または請求項2に記載のマイクロ流路チップ。   The microchannel chip according to claim 1 or 2, wherein the heat-soluble binder is gelatin or hydroxypropylcellulose. 前記熱溶解性結合剤が固化状態の試薬に対して重量比で20%以上98%以下含まれている請求項1〜3のいずれか1項に記載のマイクロ流路チップ。   The microchannel chip according to any one of claims 1 to 3, wherein the heat-soluble binder is contained in a weight ratio of 20% to 98% with respect to the solidified reagent. 前記試薬が核酸増幅反応を起こすものである請求項1〜4のいずれか1項に記載のマイクロ流路チップ。   The microchannel chip according to claim 1, wherein the reagent causes a nucleic acid amplification reaction. 前記核酸増幅反応が等温で行われる請求項5記載のマイクロ流路チップ。   The microchannel chip according to claim 5, wherein the nucleic acid amplification reaction is performed isothermally. 前記試薬が前記核酸増幅反応の起点となるプライマーである請求項1または請求項2に記載のマイクロ流路チップ。   The microchannel chip according to claim 1 or 2, wherein the reagent is a primer serving as a starting point of the nucleic acid amplification reaction.
JP2007296998A 2006-11-22 2007-11-15 Microchnnel chip Pending JP2008151770A (en)

Priority Applications (3)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2007296998A JP2008151770A (en) 2006-11-22 2007-11-15 Microchnnel chip
US11/943,353 US20080153155A1 (en) 2006-11-22 2007-11-20 Microchannel chip
EP07022554A EP1935491A1 (en) 2006-11-22 2007-11-21 Microchannel chip comprising a reagent in a heat soluble binder

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2006316150 2006-11-22
JP2007296998A JP2008151770A (en) 2006-11-22 2007-11-15 Microchnnel chip

Publications (1)

Publication Number Publication Date
JP2008151770A true JP2008151770A (en) 2008-07-03

Family

ID=39654063

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP2007296998A Pending JP2008151770A (en) 2006-11-22 2007-11-15 Microchnnel chip

Country Status (1)

Country Link
JP (1) JP2008151770A (en)

Cited By (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP2284521A2 (en) 2009-08-12 2011-02-16 Sony Corporation Light detecting chip and light detecting device provided with light detecting chip
JP2011039051A (en) * 2009-08-07 2011-02-24 F Hoffmann-La Roche Ag Unit and method for processing of liquid sample
JP2013066885A (en) * 2011-09-23 2013-04-18 Imec Method and device for thermal insulation of micro-reactors
CN103097883A (en) * 2010-03-09 2013-05-08 网络百奥有限公司 Unitary biochip providing sample-in to results-out processing and methods of manufacture
JP2013198443A (en) * 2012-03-26 2013-10-03 Toshiba Corp Multiple nucleic acid reaction tool, multiple nucleic acid reaction carrier, and multiple nucleic acid reaction method
US9314795B2 (en) 2010-03-09 2016-04-19 Netbio Inc. Unitary biochip providing sample-in to results-out processing and methods of manufacture
JP2019007956A (en) * 2017-06-28 2019-01-17 積水化学工業株式会社 Micro flow passage chip, method for mixing reagent, and optical inspection system
JP2020525770A (en) * 2017-07-05 2020-08-27 ミダイアグノスティクス・エヌブイmiDiagnostics NV Device in a capillary-driven microfluidic system for dissolving reagents in a fluid
WO2023074574A1 (en) * 2021-10-26 2023-05-04 積水化学工業株式会社 Micro flow passage device

Cited By (23)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2011039051A (en) * 2009-08-07 2011-02-24 F Hoffmann-La Roche Ag Unit and method for processing of liquid sample
EP2284521A2 (en) 2009-08-12 2011-02-16 Sony Corporation Light detecting chip and light detecting device provided with light detecting chip
KR101951906B1 (en) 2010-03-09 2019-05-31 에이엔디이 코포레이션 Unitary biochip providing sample-in to results-out processing and methods of manufacture
JP2019047799A (en) * 2010-03-09 2019-03-28 アンディ・コーポレイションANDE Corporation Unitary biochip providing sample-in to results-out processing and methods of manufacture
JP2013521780A (en) * 2010-03-09 2013-06-13 ネットバイオ・インコーポレーテッド Single structure biochip and manufacturing method providing process from sample introduction to result output
US11612894B2 (en) 2010-03-09 2023-03-28 Ande Corporation Unitary biochip providing sample-in to results-out processing and methods of manufacture
US9314795B2 (en) 2010-03-09 2016-04-19 Netbio Inc. Unitary biochip providing sample-in to results-out processing and methods of manufacture
US9354199B2 (en) 2010-03-09 2016-05-31 Netbio, Inc. Unitary biochip providing sample-in to results-out processing and methods of manufacture
JP2017200481A (en) * 2010-03-09 2017-11-09 ネットバイオ・インコーポレーテッドNetBio, Inc. Unitary biochip providing sample-in to results-out processing and method for manufacturing the same
KR101796110B1 (en) 2010-03-09 2017-11-10 네트바이오, 인코포레이티드 Unitary biochip providing sample-in to results-out processing and methods of manufacture
KR20170142991A (en) * 2010-03-09 2017-12-28 네트바이오, 인코포레이티드 Unitary biochip providing sample-in to results-out processing and methods of manufacture
US11612893B2 (en) 2010-03-09 2023-03-28 Ande Corporation Unitary biochip providing sample-in to results-out processing and methods of manufacture
KR20190032460A (en) * 2010-03-09 2019-03-27 에이엔디이 코포레이션 Unitary biochip providing sample-in to results-out processing and methods of manufacture
CN103097883A (en) * 2010-03-09 2013-05-08 网络百奥有限公司 Unitary biochip providing sample-in to results-out processing and methods of manufacture
JP2019058172A (en) * 2010-03-09 2019-04-18 アンディ・コーポレイションANDE Corporation Unitary biochip providing sample-in to results-out processing and method of manufacture
US10821445B2 (en) 2010-03-09 2020-11-03 Ande Corporation Unitary biochip providing sample-in to results-out processing and methods of manufacture
KR102027441B1 (en) 2010-03-09 2019-10-01 에이엔디이 코포레이션 Unitary biochip providing sample-in to results-out processing and methods of manufacture
JP2013066885A (en) * 2011-09-23 2013-04-18 Imec Method and device for thermal insulation of micro-reactors
JP2013198443A (en) * 2012-03-26 2013-10-03 Toshiba Corp Multiple nucleic acid reaction tool, multiple nucleic acid reaction carrier, and multiple nucleic acid reaction method
JP2019007956A (en) * 2017-06-28 2019-01-17 積水化学工業株式会社 Micro flow passage chip, method for mixing reagent, and optical inspection system
JP2020525770A (en) * 2017-07-05 2020-08-27 ミダイアグノスティクス・エヌブイmiDiagnostics NV Device in a capillary-driven microfluidic system for dissolving reagents in a fluid
JP7200142B2 (en) 2017-07-05 2023-01-06 ミダイアグノスティクス・エヌブイ Devices in capillary-driven microfluidic systems for dissolving reagents in fluids
WO2023074574A1 (en) * 2021-10-26 2023-05-04 積水化学工業株式会社 Micro flow passage device

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP2008151770A (en) Microchnnel chip
JP5140386B2 (en) Microchannel mixing method and apparatus
US8092999B2 (en) Biological sample reaction chip and biological sample reaction method
JP2008128906A (en) Drive control method for microfluidic chip
JP2009284769A (en) Micro substrate
US20190160466A1 (en) Analysis cell, analysis device, analysis apparatus, and analysis system
JP2008151773A (en) Method of mixture in microchannel
JP2019536441A (en) Analysis system and method for testing a sample
US20080153155A1 (en) Microchannel chip
JP2010213649A (en) Reaction vessel and reaction method for biological specimen
JP6987133B2 (en) Methods and analytical systems for inspecting samples
JP2019537705A (en) Analysis system and method for testing a sample
US20220340953A1 (en) Detection method
US20210187509A1 (en) Method and analysis system for testing a sample
CN115305183A (en) Centrifugal microfluidic chip integrating isothermal amplification and CRISPR/Cas nucleic acid detection and method
JP7334363B2 (en) Inspection container, inspection device, and nucleic acid inspection method
EP3673083B1 (en) Analysis system with cartridge and method for testing a sample
CN111108217A (en) Sensor device and method for testing a sample
US20240139738A1 (en) Cartridge for detecting target analyte
EP4360758A1 (en) Cartridge for detecting target analyte
US20240139740A1 (en) Cartridge for detecting target analyte
JPWO2008090759A1 (en) Micro total analysis system
JPWO2018065102A5 (en)
JP2011097884A (en) Sample analyzer
KR20100101360A (en) Microfluidic device comprising reaction chamber and analysis chamber